RU2821925C1 - METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs67579710 (G>A) OF THBS3 GENE IN HUMAN BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES - Google Patents

METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs67579710 (G>A) OF THBS3 GENE IN HUMAN BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES Download PDF

Info

Publication number
RU2821925C1
RU2821925C1 RU2024110394A RU2024110394A RU2821925C1 RU 2821925 C1 RU2821925 C1 RU 2821925C1 RU 2024110394 A RU2024110394 A RU 2024110394A RU 2024110394 A RU2024110394 A RU 2024110394A RU 2821925 C1 RU2821925 C1 RU 2821925C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
insdseq
insdqualifier
allele
gene
thbs3
Prior art date
Application number
RU2024110394A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Ольга Юрьевна Бушуева
Елизавета Ивановна Колодежная
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Курский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Курский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации filed Critical Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Курский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Application granted granted Critical
Publication of RU2821925C1 publication Critical patent/RU2821925C1/en

Links

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: present invention relates to biotechnology, in particular to a method for genotyping a polymorphic locus rs67579710 (G>A) of the THBS3 gene in a human by real-time PCR using primers SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2 and allele-specific fluorescent probes SEQ ID NO: 3, SEQ ID NO: 4 in an amplifier with fluorescence detection.
EFFECT: invention is effective for accurate and cheap genotyping of human THBS3 gene polymorphic locus rs67579710 (G>A).
1 cl, 1 dwg, 1 ex

Description

Область техники, к которой относится изобретениеField of technology to which the invention relates

Изобретение относится к области биотехнологии, молекулярно-генетической диагностики, в частности к оценке однонуклеотидного полиморфизма rs67579710 (G>A) гена THBS3 молекулярно-генетическим методом исследования.The invention relates to the field of biotechnology, molecular genetic diagnostics, in particular to the assessment of single nucleotide polymorphism rs67579710 (G>A) of the THBS3 gene using a molecular genetic research method.

Уровень техникиState of the art

Полиморфный маркер rs67579710 (G>A) гена THBS3 был установлен широкогеномными исследованиями ассоциаций как вариант, ассоциированный с тяжелым течением COVID-19 [https://www.ebi.ac.uk/gwas/variants/rs67579710]. Ген THBS3 (Gene ID: 7059) локализован на хромосоме 1q22. Однонуклеотидный полиморфизм rs67579710, позиция chr1:155203736 (GRCh38.p14) (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/snp/rs67579710) локализован в интроне и характеризуется заменой G>A. The polymorphic marker rs67579710 (G>A) of the THBS3 gene was identified by genome-wide association studies as a variant associated with severe COVID-19 [https://www.ebi.ac.uk/gwas/variants/rs67579710]. The THBS3 gene (Gene ID: 7059) is located on chromosome 1q22. Single nucleotide polymorphism rs67579710, position chr1:155203736 (GRCh38.p14) (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/snp/rs67579710) is localized in the intron and is characterized by the G>A substitution.

Высокая клинико-диагностическая значимость данного генетического варианта относительно тяжелого течения COVID-19 создает потребность в создании простого в исполнении, недорого и доступного исследователям, работающим в области генетической эпидемиологии, метода идентификации однонуклеотидного полиморфизма rs67579710 (G>A) гена THBS3. The high clinical and diagnostic significance of this genetic variant in the relatively severe course of COVID-19 creates the need to create a method for identifying the single nucleotide polymorphism rs67579710 (G>A) of the THBS3 gene that is simple to implement, inexpensive and accessible to researchers working in the field of genetic epidemiology.

Известен способ анализа генетических вариаций в геноме человека методом секвенирования амплифицированных участков ДНК [Mardis E. R. DNA sequencing technologies: 2006–2016 //Nature protocols. – 2017. – Vol. 12. – №. 2. – P. 213-218]. Недостатками метода являются высокая стоимость оборудования и реагентов, что исключает широкое внедрение метода в экспериментальные исследования, особенно изучение заболеваний, которые требуют большого размера выборок для обеспечения высокой мощности исследований. There is a known method for analyzing genetic variations in the human genome by sequencing amplified DNA sections [Mardis E. R. DNA sequencing technologies: 2006–2016 //Nature protocols. – 2017. – Vol. 12. – No. 2. – P. 213-218]. The disadvantages of the method are the high cost of equipment and reagents, which precludes the widespread implementation of the method in experimental studies, especially the study of diseases that require large sample sizes to ensure high power of research.

Известен способ анализа генетических вариаций в геноме человека методом матрично-активированной лазерной десорбционно-ионизационной масс-спектрометрии (MALDI). Метод заключается в том, анализируемая ДНК переносится на подложку, где она кристаллизуется с матрицей. Затем кристаллизованные аналиты переносят, облучают лазером, вызывая десорбцию и ионизацию молекул в вакуумной камере. Положительно заряженные ионы ДНК ускоряются и мигрируют через вакуумную трубку к высокочувствительному детектору с разной скоростью в зависимости от массы ионов, что приводит к различному времени пролета. Используя время пролета отдельных ионизированных ДНК-аналитов, система определяет массу и отображает масс-спектр, идентифицирующий различные генетические мишени [Li D. et al. MALDI-TOF mass spectrometry in clinical analysis and research //ACS Measurement Science Au. – 2022. – Vol. 2. – №. 5. – P. 385-404]. Недостатками метода являются трудоемкость, высокая стоимость оборудования, высокая стоимость эксперимента, наличие высококвалифицированного персонала.There is a known method for analyzing genetic variations in the human genome using matrix-assisted laser desorption ionization mass spectrometry (MALDI). The method involves transferring the DNA to be analyzed onto a substrate, where it crystallizes with a matrix. The crystallized analytes are then transferred and irradiated with a laser, causing desorption and ionization of the molecules in a vacuum chamber. Positively charged DNA ions are accelerated and migrate through a vacuum tube to a highly sensitive detector at different speeds depending on the mass of the ions, resulting in different times of flight. Using the time of flight of individual ionized DNA analytes, the system determines mass and displays a mass spectrum identifying various genetic targets [Li D. et al. MALDI-TOF mass spectrometry in clinical analysis and research //ACS Measurement Science Au. – 2022. – Vol. 2. – No. 5. – P. 385-404]. The disadvantages of the method are labor intensity, high cost of equipment, high cost of the experiment, and the presence of highly qualified personnel.

За прототип выбран коммерческий набор по генотипированию rs67579710 (G/A) THBS3 (C__96698905_10; каталог 4351379) компании ThermoFisher. Однако генотипирование с использованием коммерческих наборов характеризуется высокой стоимостью, а информация о структуре необходимых для проведения ПЦР праймеров и аллель-специфических зондов является закрытой для исследователей, в связи с чем он не может быть воспроизведен при наличии стандартного набора оборудования и реактивов. The commercial genotyping kit rs67579710 (G/A) THBS3 (C__96698905_10; catalog 4351379) from ThermoFisher was selected as the prototype. However, genotyping using commercial kits is characterized by high cost, and information about the structure of primers and allele-specific probes necessary for PCR is closed to researchers, and therefore it cannot be reproduced with a standard set of equipment and reagents.

Таким образом, существует реальная потребность в создании быстрого, недорогого и легко воспроизводимого способа идентификации полиморфизма rs67579710 (G>A) гена THBS3, с доступной всем исследователям структурой праймеров и аллель-специфических зондов, который мог бы использоваться в качестве «рутинного» метода генотипирования в любой ПЦР-лаборатории. Thus, there is a real need to create a fast, inexpensive and easily reproducible method for identifying the rs67579710 (G>A) polymorphism of the THBS3 gene, with a structure of primers and allele-specific probes available to all researchers, which could be used as a “routine” genotyping method in any PCR laboratory.

Раскрытие сущности изобретенияDisclosure of the invention

Техническим результатом данного изобретения является разработка простого в исполнении и экономически целесообразного способа генотипирования однонуклеотидного полиморфизма rs67579710 (G>A), локализованного в позиции chr1:155203736 (GRCh38.p14) гена THBS3 (Gene ID: 7059) методом полимеразной цепной реакции в режиме «реального времени» с применением аллель-специфических сигнальных зондов, содержащие флуорофоры FAM и ROX.The technical result of this invention is the development of an easy-to-use and economically feasible method for genotyping the single nucleotide polymorphism rs67579710 (G>A), localized at position chr1:155203736 (GRCh38.p14) of the THBS3 gene (Gene ID: 7059) using the polymerase chain reaction method in “real” mode time" using allele-specific signal probes containing FAM and ROX fluorophores.

Технический результат достигается тем, что идентификацию аллельных вариантов rs67579710 (G>A) гена THBS3 осуществляют с использованием прямого праймера rs67579710 5'- AATAAAGATGGGGTGCTGGA-3' (SEQ ID NO 1), обратного праймера rs67579710 5'-TCCATCCCTTCTGCCACTAC-3' (SEQ ID NO 2), rs67579710-G-аллель-специфичного флуоресцентно-меченого зонда 5'-(FAM)AGGCCCTCTAAGGGAGTTGCTTCACA(RTQ1)-3'(SEQ ID NO 3), rs67579710-A-аллель-специфичного флуоресцентно-меченого зонда 5'-(ROX)AGGCCCTCTAAGAGAGTTGCTTCACA(BHQ2)-3' (SEQ ID NO 4). The technical result is achieved by the fact that the identification of allelic variants rs67579710 (G>A) of the THBS3 gene is carried out using the forward primer rs67579710 5'- AATAAAGATGGGGTGCTGGA-3' (SEQ ID NO 1), the reverse primer rs67579710 5'-TCCATCCCTTCTGCCACTAC-3' (SEQ ID NO 2), rs67579710-G-allele-specific fluorescently labeled probe 5'-(FAM)AGGCCCTCTAAGGGAGTTGCTTCACA(RTQ1)-3'(SEQ ID NO 3), rs67579710-A-allele-specific fluorescently labeled probe 5'-( ROX)AGGCCCTCTAAGAGAGTTGCTTCACA(BHQ2)-3' (SEQ ID NO 4).

Изобретение поясняется следующим чертежом: дискриминация аллелей по локусу rs67579710 гена THBS3 при генотипировании методом ПЦР в режиме «реального времени» с применением аллель-специфических флуоресцентных зондов по данным величин RFU (относительные единицы флуоресценции) на амплификаторе CFX96: генотипы rs67579710-G/G показаны оранжевыми кругами, генотипы rs67579710-G/A показаны зелеными треугольниками, генотипы rs67579710-A/A показаны голубыми квадратами; черным ромбом отмечен отрицательный контроль.The invention is illustrated by the following drawing: discrimination of alleles at the rs67579710 locus of the THBS3 gene when genotyping by real-time PCR using allele-specific fluorescent probes according to RFU values (relative fluorescence units) on a CFX96 amplifier: rs67579710-G/G genotypes are shown in orange circles, rs67579710-G/A genotypes are shown as green triangles, rs67579710-A/A genotypes are shown as blue squares; The black diamond indicates the negative control.

Работа над дизайном олигонуклеотидов включала несколько этапов:Work on the design of oligonucleotides included several stages:

1) С применением открытой базы данных Ensembl genome browser 109 [https://www.ensembl.org/index.html] выбран синвенс, фланкирующий искомую однонуклеотидную замену [G/A] rs67579710 гена THBS3, и затем с помощью доступного онлайн программного обеспечения Primer3web version 4.1.0 [https://primer3.ut.ee/] подобрана последовательность олигонуклеотидов, используемых для проведения ПЦР-реакции: 1) Using the open database Ensembl genome browser 109 [https://www.ensembl.org/index.html], a synvenge flanking the desired single nucleotide substitution [G/A] rs67579710 of the THBS3 gene was selected, and then using available online software Primer3web version 4.1.0 [https://primer3.ut.ee/] the sequence of oligonucleotides used to carry out the PCR reaction has been selected:

прямой общий праймер rs67579710 5'- AATAAAGATGGGGTGCTGGA-3' (SEQ ID NO 1), forward general primer rs67579710 5'- AATAAAGATGGGGTGCTGGA-3' (SEQ ID NO 1),

обратный общий праймер rs67579710 5'-TCCATCCCTTCTGCCACTAC-3' (SEQ ID NO 2).reverse general primer rs67579710 5'-TCCATCCCTTCTGCCACTAC-3' (SEQ ID NO 2).

Размер амплифицируемого в ходе ПЦР фрагмента гена THBS3 составляет 159 пар нуклеотидов: The size of the THBS3 gene fragment amplified during PCR is 159 nucleotide pairs:

2) Для дизайна зондов пользовались практическими рекомендациями [Basu C. (ed.). PCR primer design. – New York: Humana Press, 2015]. В реакции использовались гидролизные зонды. Последовательность зонда подбирали таким образом, чтобы он отжигался на матрицу между прямым и обратным праймерами. Зонды подбирали на обратную цепь ДНК. Каждый зонд снабжали флуорофором и гасителем флуоресценции, спектр поглощения которого соответствует длинам волн спектра флуорофора. Для гашения флуоресценции FAM пользовались гасителем RTQ1; для гашения флуоресценции ROX - гасителем BHQ2. 2) For the design of probes, we used practical recommendations [Basu C. (ed.). PCR primer design. – New York: Humana Press, 2015]. Hydrolysis probes were used in the reaction. The probe sequence was selected so that it would anneal to the template between the forward and reverse primers. The probes were selected for the reverse strand of DNA. Each probe was equipped with a fluorophore and a fluorescence quencher whose absorption spectrum corresponded to the wavelengths of the fluorophore spectrum. To quench FAM fluorescence, we used the RTQ1 quencher; for ROX fluorescence quenching - BHQ2 quencher.

На основании изложенных критериев и практических рекомендаций были подобраны зонды со следующей структурой:Based on the stated criteria and practical recommendations, probes with the following structure were selected:

rs67579710-G-аллель-специфичный флуоресцентно-меченый зонд rs67579710-G-allele-specific fluorescently labeled probe

5'-(FAM)AGGCCCTCTAAGGGAGTTGCTTCACA(RTQ1)-3'(SEQ ID NO 3), 5'-(FAM)AGGCCCTCTAAGGGAGTTGCTTCACA(RTQ1)-3'(SEQ ID NO 3),

rs67579710-A-аллель-специфичный флуоресцентно-меченый зонд rs67579710-A-allele-specific fluorescently labeled probe

5'-(ROX)AGGCCCTCTAAGAGAGTTGCTTCACA(BHQ2)-3' (SEQ ID NO 4). 5'-(ROX)AGGCCCTCTAAGAGAGTTGCTTCACA(BHQ2)-3' (SEQ ID NO 4).

3) Изготовление праймеров и зондов осуществлялось в сервисном центре НПК «Синтол», Москва.3) The production of primers and probes was carried out at the service center of NPK Syntol, Moscow.

4) С помощью практических экспериментов подобраны оптимальные условия для проведения генотипирования, которые включают следующие этапы: 50°C в течение 2 минут, 95°C в течение 10 минут, затем 39 циклов [95°C в течение 10 секунд и 66°C в течение 1 минуты]. 4) Using practical experiments, optimal conditions for genotyping were selected, which include the following steps: 50°C for 2 minutes, 95°C for 10 minutes, then 39 cycles [95°C for 10 seconds and 66°C for for 1 minute].

5) Разработанный способ был апробирован в лаборатории геномных исследований на 200 образцах ДНК здоровых индивидуумов биобанка НИИ генетической и молекулярной эпидемиологии КГМУ. Генотипирование осуществляли по данным величин RFU (относительные единицы флуоресценции) зондов с флуоресцентными красителями. По результатам генотипирования rs67579710 163 человека (81,5%) оказались гомозиготами по аллелю G (генотип G/G); 35 человек (17,5%) являлись гетерозиготами (генотип G/A), 2 человека (1%) индивидуумов оказались гомозиготами по аллелю A (генотип A/A). 5) The developed method was tested in the laboratory of genomic research on 200 DNA samples of healthy individuals in the biobank of the Research Institute of Genetic and Molecular Epidemiology of KSMU. Genotyping was carried out according to the RFU (relative fluorescence units) values of probes with fluorescent dyes. According to the results of genotyping rs67579710, 163 people (81.5%) were homozygous for the G allele (genotype G/G); 35 people (17.5%) were heterozygotes (genotype G/A), 2 people (1%) individuals were homozygous for allele A (genotype A/A).

6) Валидацию способа проводили методом масс-спектрометрического анализа на геномном времяпролетном масс-спектрометре MassArray analyzer 4 (Agena Bioscience). Результаты обоих способов генотипирования полностью (100% генотипов) совпали. Однако патентуемый способ генотипирования полиморфного локуса rs67579710 (G>A) гена THBS3 методом ПЦР в режиме «реального времени» с применением аллель-специфических зондов позволяет значительно (на 6 часов) сократить время проведения анализа, а также снижает себестоимость анализа (в 4-5 раз).6) Validation of the method was carried out by mass spectrometric analysis on a genomic time-of-flight mass spectrometer MassArray analyzer 4 (Agena Bioscience). The results of both genotyping methods completely coincided (100% of genotypes). However, the patented method for genotyping the polymorphic locus rs67579710 (G>A) of the THBS3 gene using real-time PCR using allele-specific probes can significantly (by 6 hours) reduce the time of analysis, and also reduces the cost of analysis (by 4-5 once).

Осуществление изобретенияCarrying out the invention

Способ осуществляют следующим образом:The method is carried out as follows:

1. Выделение ДНК из периферической венозной крови. На первом этапе к 0,5 мл крови добавляли 0,5 мл PBS и центрифугировали 10 мин при 12 тыс. об/мин. Надосадочную жидкость сливали, добавляли 1 мл PBS и вновь центрифугировали при тех же условиях. Надосадочную жидкость сливали, добавляли 200 мкл ТЕ-буфера, пипетировали до растворения осадка и затем последовательно добавляли 10 мкл 1% раствора додецилсульфата натрия SDS и 5 мкл протеиназы К. Пробирки инкубировали в термостате при t=37°C 12 ч. В ходе второго этапа проводили четыре последовательных центрифугирования с фенолом и хлороформом согласно протоколу методики (10 мин, 8 тыс. об/мин), после чего ДНК осаждали ледяным раствором 95% этилового спирта и центрифугировали 10 мин при 14,3 тыс. об/мин. По испарении спирта ДНК растворяли в 100 мкл деионизированной дистиллированной воды. Получаемый раствор ДНК в воде имел чистоту в диапазоне А260/280=1,5-2,0 и среднюю концентрацию около 180-200 нг/мкл. 1. Isolation of DNA from peripheral venous blood. At the first stage, 0.5 ml of PBS was added to 0.5 ml of blood and centrifuged for 10 min at 12 thousand rpm. The supernatant was discarded, 1 ml of PBS was added and centrifuged again under the same conditions. The supernatant was discarded, 200 μl of TE buffer was added, pipetted until the sediment dissolved, and then 10 μl of 1% sodium dodecyl sulfate SDS and 5 μl of proteinase K were sequentially added. The tubes were incubated in a thermostat at t=37°C for 12 hours. During the second stage Four successive centrifugations with phenol and chloroform were performed according to the protocol (10 min, 8 thousand rpm), after which the DNA was precipitated with an ice-cold solution of 95% ethyl alcohol and centrifuged for 10 min at 14.3 thousand rpm. After the alcohol had evaporated, the DNA was dissolved in 100 μl of deionized distilled water. The resulting DNA solution in water had a purity in the range A260/280=1.5-2.0 and an average concentration of about 180-200 ng/μl.

2. Подготовка образцов ДНК к генотипированию. Качество выделенной ДНК оценивали по степени чистоты и концентрации раствора на спектрофотометре NanoDrop (Thermo Fisher Scientific, США). Все анализируемые образцы ДНК были разведены деионизированной водой до концентрации 15-20 нг/мкл при А260/280=1,5-2,0. 2. Preparation of DNA samples for genotyping. The quality of the isolated DNA was assessed by the degree of purity and concentration of the solution using a NanoDrop spectrophotometer (Thermo Fisher Scientific, USA). All analyzed DNA samples were diluted with deionized water to a concentration of 15-20 ng/μl at A260/280=1.5-2.0.

3. Анализ полиморфизма rs67579710 (G>A) гена THBS3 с помощью полимеразной цепной реакции в реальном времени с использованием аллель-специфических зондов. Для генотипирования использовали два фланкирующих праймера, прямой (SEQ ID NO 1) и обратный (SEQ ID NO 2), а также аллель-специфические зонды: G-аллель-специфичный флуоресцентно-меченый зонд (SEQ ID NO 3), A-аллель-специфичный флуоресцентно-меченый зонд (SEQ ID NO 4). 3. Analysis of the rs67579710 (G>A) polymorphism of the THBS3 gene using real-time polymerase chain reaction using allele-specific probes. For genotyping, two flanking primers were used, forward (SEQ ID NO 1) and reverse (SEQ ID NO 2), as well as allele-specific probes: G-allele-specific fluorescently labeled probe (SEQ ID NO 3), A-allele- specific fluorescently labeled probe (SEQ ID NO 4).

ПЦР в «реальном времени» проводили в 25 мл реакционной смеси, содержащей 1,25 ЕД ДНК-полимеразы Hot Start Taq («Биолабмикс», Новосибирск, Россия), 20 нг ДНК, по 10 мкM каждого праймера, по 5 мкM каждого зонда, 0.03 мM каждого dNTP, 2,5 мМ MgCl2; 1xПЦР-буфер [67 мМ Tris-HCl, pH 8,8, 16,6 мМ (NH4)2SO4, 0,01% Tween-20]. Реакция амплификации состояла из стадии нагревания до 50°C в течение 2 минут, 95°C в течение 10 минут, затем 39 циклов [95°C в течение 10 секунд и 66°C в течение 1 минуты].Real-time PCR was carried out in 25 ml of a reaction mixture containing 1.25 U of Hot Start Taq DNA polymerase (Biolabmix, Novosibirsk, Russia), 20 ng of DNA, 10 μM of each primer, 5 μM of each probe, 0.03 mM each dNTP, 2.5 mM MgCl2; 1xPCR buffer [67 mM Tris-HCl, pH 8.8, 16.6 mM (NH4)2SO4, 0.01% Tween-20]. The amplification reaction consisted of a heating step of 50°C for 2 minutes, 95°C for 10 minutes, then 39 cycles [95°C for 10 seconds and 66°C for 1 minute].

4. Генотипирование. При проведении ПЦР в амплификаторе с флуоресцентной детекцией (Bio-Rad CFX96 или аналогичном амплификаторе) генотипирование осуществляют по данным величин RFU (относительных единиц флуоресценции). Для rs67579710 (G>A) гена THBS3 зонд с флуоресцентным красителем FAM соответствует аллелю G, зонд с красителем ROX - аллелю A (фиг. 1). На чертеже видно четкое разделение образцов на кластеры, где черный ромб соответствуют отрицательному контролю, кластер оранжевых кругов – соответствует зонду с флуоресцентным красителем FAM и позволяет идентифицировать гомозигот G/G. Кластер синих квадратов соответствует зонду с красителем ROX и позволяет идентифицировать гомозигот A/A. Кластер зеленых треугольников соответствует накоплению уровня флуоресценции по обоим зондам и позволяет идентифицировать гетерозигот G/A.4. Genotyping. When performing PCR in a cycler with fluorescent detection (Bio-Rad CFX96 or similar cycler), genotyping is carried out according to RFU (relative fluorescence units) values. For rs67579710 (G>A) of the THBS3 gene, the probe with the fluorescent dye FAM corresponds to the G allele, and the probe with the ROX dye corresponds to the A allele (Fig. 1). The drawing shows a clear division of samples into clusters, where the black diamond corresponds to the negative control, the cluster of orange circles corresponds to the probe with the fluorescent dye FAM and allows the identification of G/G homozygotes. The cluster of blue squares corresponds to the ROX dye probe and allows the identification of A/A homozygotes. The cluster of green triangles corresponds to the accumulation of fluorescence levels for both probes and allows the identification of G/A heterozygotes.

РезюмеSummary

Таким образом, разработан эффективный и недорогой способ для экспресс-идентификации полиморфного варианта rs67579710 (G>A) гена THBS3 у человека методом ПЦР в режиме «реального времени» с применением аллель-специфических флуоресцентных зондов, который может быть использован в медицине при определении предрасположенности к развитию заболеваний, ассоциированных с носительством полиморфизмов гена THBS3, а также в научных целях.Thus, an effective and inexpensive method has been developed for the rapid identification of the rs67579710 (G>A) polymorphic variant of the THBS3 gene in humans using real-time PCR using allele-specific fluorescent probes, which can be used in medicine to determine susceptibility to the development of diseases associated with carriage of THBS3 gene polymorphisms, as well as for scientific purposes.

--->--->

Перечень последовательностейList of sequences

<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?><?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>

<!DOCTYPE ST26SequenceListing PUBLIC "-//WIPO//DTD Sequence Listing <!DOCTYPE ST26SequenceListing PUBLIC "-//WIPO//DTD Sequence Listing

1.3//EN" "ST26SequenceListing_V1_3.dtd">1.3//EN" "ST26SequenceListing_V1_3.dtd">

<ST26SequenceListing dtdVersion="V1_3" fileName="Способ <ST26SequenceListing dtdVersion="V1_3" fileName="Method

генотипирования полиморфного локуса rs67579710 (G A) гена THBS3 у genotyping of the polymorphic locus rs67579710 (G A) of the THBS3 gene in

человека методом ПЦР в режиме «реального времени» с применением human by real-time PCR using

аллель-специфических флуоресцентных зондов.xml" softwareName="WIPO allele-specific fluorescent probes.xml" softwareName="WIPO

Sequence" softwareVersion="2.3.0" productionDate="2024-02-25">Sequence" softwareVersion="2.3.0" productionDate="2024-02-25">

<ApplicationIdentification> <ApplicationIdentification>

<IPOfficeCode>RU</IPOfficeCode> <IPOfficeCode>RU</IPOfficeCode>

<ApplicationNumberText></ApplicationNumberText> <ApplicationNumberText></ApplicationNumberText>

<FilingDate></FilingDate> <FilingDate></FilingDate>

</ApplicationIdentification> </ApplicationIdentification>

<ApplicantFileReference>1872</ApplicantFileReference> <ApplicantFileReference>1872</ApplicantFileReference>

<ApplicantName languageCode="ru">Федеральное государственное <ApplicantName languageCode="ru">Federal state

бюджетное образовательное учреждение высшего образования budgetary educational institution of higher education

&quot;Курский государственный медицинский университет&quot; &quot;Kursk State Medical University&quot;

Министерства здравоохранения Российской Федерации,</ApplicantName>Ministry of Health of the Russian Federation</ApplicantName>

<ApplicantNameLatin>Kursk State Medical <ApplicantNameLatin>Kursk State Medical

University</ApplicantNameLatin>University</ApplicantNameLatin>

<InventionTitle languageCode="ru">Способ генотипирования <InventionTitle languageCode="en">Genotyping method

полиморфного локуса rs67579710 (G&gt;A) гена THBS3 у человека методом polymorphic locus rs67579710 (G&gt;A) of the THBS3 gene in humans using the method

ПЦР в режиме «реального времени» с применением аллель-специфических Real-time PCR using allele-specific

флуоресцентных зондов</InventionTitle>fluorescent probes</InventionTitle>

<SequenceTotalQuantity>4</SequenceTotalQuantity> <SequenceTotalQuantity>4</SequenceTotalQuantity>

<SequenceData sequenceIDNumber="1"> <SequenceData sequenceIDNumber="1">

<INSDSeq> <INSDSeq>

<INSDSeq_length>20</INSDSeq_length> <INSDSeq_length>20</INSDSeq_length>

<INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype> <INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype>

<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division> <INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>

<INSDSeq_feature-table> <INSDSeq_feature-table>

<INSDFeature> <INSDFeature>

<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key> <INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>1..20</INSDFeature_location> <INSDFeature_location>1..20</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals> <INSDFeature_quals>

<INSDQualifier> <INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name> <INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>other DNA</INSDQualifier_value> <INSDQualifier_value>other DNA</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier> </INSDQualifier>

<INSDQualifier id="q2"> <INSDQualifier id="q2">

<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name> <INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>synthetic construct</INSDQualifier_value> <INSDQualifier_value>synthetic construct</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier> </INSDQualifier>

</INSDFeature_quals> </INSDFeature_quals>

</INSDFeature> </INSDFeature>

</INSDSeq_feature-table> </INSDSeq_feature-table>

<INSDSeq_sequence>aataaagatggggtgctgga</INSDSeq_sequence> <INSDSeq_sequence>aataaagatggggtgctgga</INSDSeq_sequence>

</INSDSeq> </INSDSeq>

</SequenceData> </SequenceData>

<SequenceData sequenceIDNumber="2"> <SequenceData sequenceIDNumber="2">

<INSDSeq> <INSDSeq>

<INSDSeq_length>20</INSDSeq_length> <INSDSeq_length>20</INSDSeq_length>

<INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype> <INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype>

<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division> <INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>

<INSDSeq_feature-table> <INSDSeq_feature-table>

<INSDFeature> <INSDFeature>

<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key> <INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>1..20</INSDFeature_location> <INSDFeature_location>1..20</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals> <INSDFeature_quals>

<INSDQualifier> <INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name> <INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>other DNA</INSDQualifier_value> <INSDQualifier_value>other DNA</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier> </INSDQualifier>

<INSDQualifier id="q4"> <INSDQualifier id="q4">

<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name> <INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>synthetic construct</INSDQualifier_value> <INSDQualifier_value>synthetic construct</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier> </INSDQualifier>

</INSDFeature_quals> </INSDFeature_quals>

</INSDFeature> </INSDFeature>

</INSDSeq_feature-table> </INSDSeq_feature-table>

<INSDSeq_sequence>tccatcccttctgccactac</INSDSeq_sequence> <INSDSeq_sequence>tccatcccttctgccactac</INSDSeq_sequence>

</INSDSeq> </INSDSeq>

</SequenceData> </SequenceData>

<SequenceData sequenceIDNumber="3"> <SequenceData sequenceIDNumber="3">

<INSDSeq> <INSDSeq>

<INSDSeq_length>26</INSDSeq_length> <INSDSeq_length>26</INSDSeq_length>

<INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype> <INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype>

<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division> <INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>

<INSDSeq_feature-table> <INSDSeq_feature-table>

<INSDFeature> <INSDFeature>

<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key> <INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>1..26</INSDFeature_location> <INSDFeature_location>1..26</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals> <INSDFeature_quals>

<INSDQualifier> <INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name> <INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>other DNA</INSDQualifier_value> <INSDQualifier_value>other DNA</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier> </INSDQualifier>

<INSDQualifier id="q6"> <INSDQualifier id="q6">

<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name> <INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>synthetic construct</INSDQualifier_value> <INSDQualifier_value>synthetic construct</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier> </INSDQualifier>

</INSDFeature_quals> </INSDFeature_quals>

</INSDFeature> </INSDFeature>

</INSDSeq_feature-table> </INSDSeq_feature-table>

<INSDSeq_sequence>aggccctctaagggagttgcttcaca</INSDSeq_sequence> <INSDSeq_sequence>aggccctctaagggagttgcttcaca</INSDSeq_sequence>

</INSDSeq> </INSDSeq>

</SequenceData> </SequenceData>

<SequenceData sequenceIDNumber="4"> <SequenceData sequenceIDNumber="4">

<INSDSeq> <INSDSeq>

<INSDSeq_length>26</INSDSeq_length> <INSDSeq_length>26</INSDSeq_length>

<INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype> <INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype>

<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division> <INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>

<INSDSeq_feature-table> <INSDSeq_feature-table>

<INSDFeature> <INSDFeature>

<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key> <INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>1..26</INSDFeature_location> <INSDFeature_location>1..26</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals> <INSDFeature_quals>

<INSDQualifier> <INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name> <INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>other DNA</INSDQualifier_value> <INSDQualifier_value>other DNA</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier> </INSDQualifier>

<INSDQualifier id="q8"> <INSDQualifier id="q8">

<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name> <INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>synthetic construct</INSDQualifier_value> <INSDQualifier_value>synthetic construct</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier> </INSDQualifier>

</INSDFeature_quals> </INSDFeature_quals>

</INSDFeature> </INSDFeature>

</INSDSeq_feature-table> </INSDSeq_feature-table>

<INSDSeq_sequence>aggccctctaagagagttgcttcaca</INSDSeq_sequence> <INSDSeq_sequence>aggccctctaagagagttgcttcaca</INSDSeq_sequence>

</INSDSeq> </INSDSeq>

</SequenceData> </SequenceData>

</ST26SequenceListing></ST26SequenceListing>

<---<---

Claims (1)

Способ генотипирования полиморфного локуса rs67579710 (G>A) гена THBS3 у человека методом ПЦР в режиме «реального времени» с применением аллель-специфических флуоресцентных зондов, отличающийся тем, что идентификацию аллельных вариантов rs67579710 (G>A) гена THBS3 осуществляют с использованием прямого праймера rs67579710 5'-AATAAAGATGGGGTGCTGGA-3' (SEQ ID NO 1), обратного праймера rs67579710 5'-TCCATCCCTTCTGCCACTAC-3' (SEQ ID NO 2), rs67579710-G-аллель-специфичного флуоресцентно-меченого зонда 5'-(FAM)AGGCCCTCTAAGGGAGTTGCTTCACA(RTQ1)-3' (SEQ ID NO 3), rs67579710-A-аллель-специфичного флуоресцентно-меченого зонда 5'-(ROX)AGGCCCTCTAAGAGAGTTGCTTCACA(BHQ2)-3' (SEQ ID NO 4).A method for genotyping the polymorphic locus rs67579710 (G>A) of the THBS3 gene in humans using real-time PCR using allele-specific fluorescent probes, characterized in that the identification of allelic variants rs67579710 (G>A) of the THBS3 gene is carried out using a forward primer rs67579710 5'-AATAAAGATGGGGTGCTGGA-3' (SEQ ID NO 1), reverse primer rs67579710 5'-TCCATCCCTTCTGCCACTAC-3' (SEQ ID NO 2), rs67579710-G-allele-specific fluorescent-labeled probe 5'-(FAM)AGGCCCTCTAAG G GAGTTGCTTCACA(RTQ1)-3' (SEQ ID NO 3), rs67579710-A allele-specific fluorescently labeled probe 5'-(ROX)AGGCCCTCTAAG A GAGTTGCTTCACA(BHQ2)-3' (SEQ ID NO 4).
RU2024110394A 2024-04-16 METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs67579710 (G>A) OF THBS3 GENE IN HUMAN BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES RU2821925C1 (en)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2821925C1 true RU2821925C1 (en) 2024-06-27

Family

ID=

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
DAVY VANHOUTTE et al. Thbs1 induces lethal cardiac atrophy through PERK-ATF4 regulated autophagy, Nat Commun., 2021, vol. 12, no 1, article number 3928. ER-YI WANG et al. Serum levels of the IgA isotype switch factor TGF-β1 are elevated in patients with COVID-19, FEBS Lett., 2021, vol. 595, no 13, pp. 1819-1824. MING-SHENG TENG et al. Pleiotropic Effects of Functional MUC1 Variants on Cardiometabolic, Renal, and Hematological Traits in the Taiwanese Population, Int J Mol Sci., 2021, vol. 22, no 19, article number 10641. K.W. ADOLPH et al. Structure and organization of the human thrombospondin 3 gene (THBS3), Genomics, 1995, vol. 27, no 2, pp. 329-336. ЖУКОВА О.А. и др. Динамическая роль FOXP3 + TREG в развитии сепсиса при SARS-COV-2 и терапевтические возможности CAR-TREG в профилактике осложнений, Гены и клетки, 2022, том 17, номер 3, стр. 86-87. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN108998505B (en) Gene polymorphism site detection technology and kit thereof
US20100222227A1 (en) Rapid genotyping analysis and the device thereof
CN110484621B (en) Early warning method for liver cancer
CN108913757B (en) Primer group and detection kit for chromosome aneuploid number abnormality and application thereof
WO2008077330A1 (en) Taqman mgb probe for detecting maternal inherited mitochondrial genetic deafness c1494t mutation and its usage
WO2008077329A1 (en) Probe for detecting maternal inherited mitochondrial genetic deafness a1555g mutation and its usage
WO2013122319A1 (en) Method for detecting target gene or mutation thereof using ligase reaction and nicking enzyme amplification reaction
RU2821925C1 (en) METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs67579710 (G&gt;A) OF THBS3 GENE IN HUMAN BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2821922C1 (en) METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs12610495 (A&gt;G) OF DPP9 GENE IN HUMAN BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2820347C1 (en) METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs9636867 (A&gt;G) OF IFNAR2 GENE IN HUMANS BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2821891C1 (en) METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs17713054 (G&gt;A) IN HUMAN BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2821083C1 (en) Method for genotyping polymorphic locus rs17078346 (a&gt;c) in human by real-time pcr using allele-specific fluorescent probes
RU2821081C1 (en) Method for genotyping polymorphic locus rs12585036 (c&gt;t) of atp11a gene in humans by real-time pcr using allele-specific fluorescent probes
RU2821904C1 (en) METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs7949972 (C&gt;T) OF ELF5 GENE IN HUMAN BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2821080C1 (en) Method for genotyping polymorphic locus rs42202 (a&gt;g) in human by real-time pcr using allele-specific fluorescent probes
RU2808846C1 (en) METHOD OF GENOTYPING rs8107914 (CT) POLYMORPHIC LOCUS OF C19orf53 GENE IN HUMANS BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2810474C1 (en) METHOD OF GENOTYPING rs2901077 (C&gt;T) POLYMORPHIC LOCUS OF C19orf53 GENE IN HUMANS BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2820349C1 (en) METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs10766342 (GA) OF C11orf58 GENE IN HUMAN BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2819255C1 (en) Method for genotyping a polymorphic locus rs11024030 (t&gt;c) of the c11orf58 gene in a human by real-time pcr using allele-specific fluorescent probes
RU2819930C1 (en) METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs10832676 (A&gt;G) OF C11orf58 GENE IN HUMANS BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2821905C1 (en) METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs706121 (C&gt;T) OF THE BAG1 GENE IN HUMAN BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2819835C1 (en) METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs7951676 (GT) OF C11orf58 GENE IN PERSON BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2808839C1 (en) METHOD OF GENOTYPING rs346158 (T&gt;C) POLYMORPHIC LOCUS OF C19orf53 GENE IN HUMANS BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2807808C1 (en) Set of primers and probes for genotyping of rs12566098 (cg) polymorphic locus of serbp1 gene in human using real-time pcr
RU2819931C1 (en) METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs11024031 (TC) OF THE C11orf58 GENE IN HUMANS BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES