RU2819447C1 - Method of lactobacillus casei biofilm formation, separated from periodontal pockets, on inert surfaces - Google Patents

Method of lactobacillus casei biofilm formation, separated from periodontal pockets, on inert surfaces Download PDF

Info

Publication number
RU2819447C1
RU2819447C1 RU2023130688A RU2023130688A RU2819447C1 RU 2819447 C1 RU2819447 C1 RU 2819447C1 RU 2023130688 A RU2023130688 A RU 2023130688A RU 2023130688 A RU2023130688 A RU 2023130688A RU 2819447 C1 RU2819447 C1 RU 2819447C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
biofilm
hours
cultivated
lactobacilli
lactobacillus casei
Prior art date
Application number
RU2023130688A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Ирина Анатольевна Гимранова
Гульнара Раилевна Газизуллина
Гюзель Маратовна Акмалова
Лилия Ралисовна Хакимова
Дарья Юрьевна Швец
Альфред Айсович Азнагулов
Original Assignee
федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Башкирский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Filing date
Publication date
Application filed by федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Башкирский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации filed Critical федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Башкирский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Application granted granted Critical
Publication of RU2819447C1 publication Critical patent/RU2819447C1/en

Links

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: invention relates to biotechnology and clinical microbiology. Disclosed is a method of forming a biofilm with anaerobic bacteria Lactobacillus casei recovered from periodontal pockets, involving cultivation of periodontal contents on MRS agar for lactobacilli for 24 hours at 37 °C, then isolated isolates are cultivated on medium for lactobacillus of specified composition at pH 6.2 for 24 hours at 37 °C, after which pure cultures are diluted to concentration of 107 CFU/ml and cultured under Parafilm film in wells of a polystyrene plate, which is placed in a CO2-incubator with an oxygen-free gas mixture containing 80% of nitrogen, 15% of hydrogen, 5% of carbon dioxide, for 3-14 days at 37 °C.
EFFECT: invention enables to recreate the Lactobacillus casei biofilm model for research on creating new effective probiotics in dentistry.
1 cl, 3 dwg, 1 tbl, 2 ex

Description

Изобретение относится к области медицины, а именно к клинической микробиологии, и может быть использовано для формирования биопленки Lactobacillus casei, выделенных из пародонтальных карманов, на инертных носителях.The invention relates to the field of medicine, namely to clinical microbiology, and can be used to form a biofilm of Lactobacillus casei isolated from periodontal pockets on inert carriers.

Согласно данным литературы, вид L. casei с высокой адгезивной способностью выживает в стрессовых условиях полости рта, может формировать агрегаты, микроколонии, а далее и биопленки на поверхностях слизистой оболочки ротовой полости. L. casei с высокой адгезивной способностью может ингибировать активность патогенных бактерий, уменьшать взаимодействие между патогенными бактериями и слизистой оболочкой ротовой полости, конкурируя за рецепторы для адгезии эпителиальных клеток, и ингибировать образование биопленок патогенными бактериями [Jamal М., Ahmad W., Andleeb S., Jalil F., Imran M., Nawaz M.A. et al. Bacterial biofilm and associated infections // J. Chin. Med. Assoc. - 2018. - V. 81 (1). - P. 7-11; Barzegari A., Kheyrolahzadeh K., Khatibi S.M.H., Sharifi S., Memar M.Y., Vahed S.Z. The battle of probiotics and their derivatives against biofilms. Infect. Drag. Resistance. - 2020. V. - 13. - P. 659-72; Gou H.-Z., Zhang Y.-L., Ren L.-F., Li Z.-J., Zhang L. How do intestinal probiotics restore the intestinal barrier? // Front. Microbiol. - 2022. -V. 13. P. 929346; Vasiee A., Falah F., Mortazavi S.A. Evaluation of probiotic potential of autochthonous lactobacilli strains isolated from Zabuli yellow kashk, an Iranian dairy product // J. Appl. Microbiol. - 2022. - V. 133. - P. 3201-14]. Таким образом, информация о возможности воссоздания модели биопленок L. casei имеет большое значение для медицины и стоматологии, а именно для дальнейших исследований по созданию новых эффективных пробиотиков на основе биопленок для восстановления микробиологического равновесия полости рта при дисбиотических состояниях.According to the literature, the species L. casei with high adhesive ability survives under stressful conditions of the oral cavity and can form aggregates, microcolonies, and then biofilms on the surfaces of the oral mucosa. L. casei with high adhesive ability can inhibit the activity of pathogenic bacteria, reduce the interaction between pathogenic bacteria and the oral mucosa by competing for receptors for epithelial cell adhesion, and inhibit the formation of biofilms by pathogenic bacteria [Jamal M., Ahmad W., Andleeb S. , Jalil F., Imran M., Nawaz M.A. et al. Bacterial biofilm and associated infections // J. Chin. Med. Assoc. - 2018. - V. 81 (1). - P. 7-11; Barzegari A., Kheyrolahzadeh K., Khatibi S.M.H., Sharifi S., Memar M.Y., Vahed S.Z. The battle of probiotics and their derivatives against biofilms. Infect. Drag. resistance. - 2020. V. - 13. - P. 659-72; Gou H.-Z., Zhang Y.-L., Ren L.-F., Li Z.-J., Zhang L. How do intestinal probiotics restore the intestinal barrier? //Front. Microbiol. - 2022. -V. 13. P. 929346; Vasiee A., Falah F., Mortazavi S.A. Evaluation of probiotic potential of autochthonous lactobacilli strains isolated from Zabuli yellow kashk, an Iranian dairy product // J. Appl. Microbiol. - 2022. - V. 133. - P. 3201-14]. Thus, information about the possibility of recreating the L. casei biofilm model is of great importance for medicine and dentistry, namely for further research on the creation of new effective probiotics based on biofilms to restore the microbiological balance of the oral cavity in dysbiotic conditions.

Известен способ моделирования биопленок, формируемых Vibrio cholerae Ol серогруппы на поверхности хитина, включающий использование хитина для формирования биопленки, образуемой клетками V. cholerae, с последующей инкубацией и анализом результатов в ПЦР, отличающийся тем, что в качестве хитина используют пластины речного рака Astacus astacus в количестве 10-15 штук и размером 0,3x0,3 см, которые размещают во флакон емкостью 100 мл, содержащий 30 мл отстоянной речной воды, затем флакон автоклавируют 10 минут при 120°С, а после охлаждения во флакон вносят взвесь культур Vibrio cholerae Ol серогруппы до конечной концентрации 104 м.к./мл, инкубирование проводят в заданные интервалы времени при 10°С и 28°С, анализ результатов образования как простых, так и сложных биопленок V. cholerae проводят в ПЦР с использованием праймеров:There is a known method for modeling biofilms formed by Vibrio cholerae Ol serogroup on the surface of chitin, including the use of chitin for the formation of a biofilm formed by V. cholerae cells, followed by incubation and analysis of the results in PCR, characterized in that plates of crayfish Astacus astacus are used as chitin quantity of 10-15 pieces and size 0.3x0.3 cm, which are placed in a 100 ml bottle containing 30 ml of settled river water, then the bottle is autoclaved for 10 minutes at 120°C, and after cooling, a suspension of Vibrio cholerae Ol cultures is added to the bottle serogroups to a final concentration of 10 4 mc/ml, incubation is carried out at specified time intervals at 10°C and 28°C, analysis of the results of the formation of both simple and complex biofilms of V. cholerae is carried out by PCR using primers:

VC 1699-1 GCTTAGCTATTTTTGGGTATAGGTT,VC 1699-1 GCTTAGCTATTTTTGGGTATAGGTT,

VC 1699-2 CGTTCATTTTTACTCAAACAGTCAVC 1699-2 CGTTCATTTTTACTCAAACAGTCA

к INDEL-локусу 1699, при этом атоксигенные штаммы ctx-tcpA-формируют ампликон массой 132 п. о., а токсигенные штаммы ctx+tcpA+образуют ампликон массой 116 п. о., подтверждая присутствие клеток токсигенного штамма в составе сложной биопленки и способность колонизировать поверхность хитина [Патент РФ №2685878, 2019 г.].to the INDEL locus 1699, while atoxigenic strains ctx-tcpA- form an amplicon weighing 132 bp, and toxigenic strains ctx+tcpA+ form an amplicon weighing 116 bp, confirming the presence of cells of the toxigenic strain in the composition of a complex biofilm and the ability colonize the surface of chitin [RF Patent No. 2685878, 2019].

Известен способ моделирования образования биопленок холерных вибрионов в условиях эксперимента, включающий формирование биопленок на твердом носителе, отличающийся тем, что биопленку создают на покровных стеклах, установленных наклонно под углом 10-12° к вертикальной оси в количестве 8-9 штук, которые помещают между витками пружинообразного приспособления, размещенного внутри емкости объемом 100 мл, затем емкость заполняют экспериментальной средой в объеме 40-50 мл до полного погружения покровных стекол, добавляют в емкость суспензию холерных вибрионов и инкубируют при конечной концентрации холерных вибрионов в n×108 КОЕ/мл с доведением до минимального порога чувствительности ОД КОЕ/мл при комнатной температуре [Патент РФ №2559546, 2015 г.].There is a known method for simulating the formation of Vibrio cholerae biofilms under experimental conditions, including the formation of biofilms on a solid support, characterized in that the biofilm is created on cover glasses installed obliquely at an angle of 10-12° to the vertical axis in the amount of 8-9 pieces, which are placed between the turns a spring-like device placed inside a container with a volume of 100 ml, then the container is filled with an experimental medium in a volume of 40-50 ml until the cover glasses are completely immersed, a suspension of Vibrio cholerae is added to the container and incubated at a final concentration of Vibrio cholerae in n×10 8 CFU/ml with adjustment to the minimum sensitivity threshold of OD CFU/ml at room temperature [RF Patent No. 2559546, 2015].

Описанные способы не позволяют воссоздать модель биопленок в анаэробных условиях и потому не могут быть использованы для L. casei, как у предполагаемого кандидата в пробиотики полости рта.The described methods do not allow the reconstitution of a biofilm model under anaerobic conditions and therefore cannot be used for L. casei, as in the putative candidate for oral probiotics.

Наиболее близким аналогом изобретения является способ формирования смешанной биопленки пародонтопатогенных анаэробных бактерий в условиях текучих сред in vitro, включающий три этапа, причем на первом этапе на подложку из полимерных материалов в замкнутой емкости вносят бактериальную взвесь чистой культуры Streptococcus sanguinis, на втором - Fusobacterium nucleatum, на третьем Porphyromonas gingivalis, или Aggregatibacter actinomycetemcomitans, или Tannerella forsythia, или Prevotella intermedia и культивируют 48 ч, 72 ч, 120 ч соответственно, при этом бактериальную взвесь каждой чистой культуры разводят в 0,1% полужидкой агаризованной среде - сердечно-мозговом бульоне BHI, LIM или АС, содержащей 0,01% менадиона и 0,1%) гемина, до концентрации 106-108 КОЕ/мл, замкнутую емкость помещают в микроанаэростат с постоянным составом бескислородной газовой смеси, состоящей из 80% азота, 10% водорода, 10% углекислого газа, который в свою очередь помещается в шейкер-термостат, обеспечивающий возвратно-поступательные движения в диапазоне 60-120 движений в минуту, при температуре 37°С с получением смешанной биопленки. [Патент РФ №2619169, 2017 г.]. Новизна этого способа состоит в том, что он позволяет при необходимости оценить вклад каждого вида в индукцию медиаторов воспаления, факторов патогенности или резистентности к антибиотикам. Недостатком прототипа является использование дорогостоящих коммерческих сред, кроме этого, не показана его эффективность при исследовании клинического материала.The closest analogue of the invention is a method for forming a mixed biofilm of periodontopathogenic anaerobic bacteria in fluid conditions in vitro, which includes three stages, and at the first stage a bacterial suspension of a pure culture of Streptococcus sanguinis is added to a substrate of polymeric materials in a closed container, at the second - Fusobacterium nucleatum, at the third Porphyromonas gingivalis, or Aggregatibacter actinomycetemcomitans, or Tannerella forsythia, or Prevotella intermedia and cultivated for 48 hours, 72 hours, 120 hours, respectively, while the bacterial suspension of each pure culture is diluted in 0.1% semi-solid agar medium - BHI brain heart broth, LIM or AC containing 0.01% menadione and 0.1%) hemin, to a concentration of 10 6 -10 8 CFU/ml, a closed container is placed in a microanaerostat with a constant composition of an oxygen-free gas mixture consisting of 80% nitrogen, 10% hydrogen , 10% carbon dioxide, which in turn is placed in a shaker-thermostat, providing reciprocating movements in the range of 60-120 movements per minute, at a temperature of 37 ° C to obtain a mixed biofilm. [RF Patent No. 2619169, 2017]. The novelty of this method is that it allows, if necessary, to evaluate the contribution of each species to the induction of inflammatory mediators, pathogenicity factors or antibiotic resistance. The disadvantage of the prototype is the use of expensive commercial media; in addition, its effectiveness in the study of clinical material has not been shown.

Задачей изобретения является разработка достоверного и доступного способа формирования биопленки L. casei, выделенных из пародонтальных карманов.The objective of the invention is to develop a reliable and accessible method for the formation of biofilm of L. casei isolated from periodontal pockets.

Технический результат - получение биопленки L. casei, выделенных из пародонтальных карманов, на инертных носителях.The technical result is the production of L. casei biofilm isolated from periodontal pockets on inert carriers.

Предлагаемый способ проводят в три этапа: на первом -культивируют посевы лактобактерий, выделенных из пародонтальных карманов на агаре MRS для лактобактерий, на втором - культивируют выделенные изоляты на среде для лактобактерий, содержащей на 1 л питательной среды: пептон - 10 г, дрожжевой экстракт - 20 г, глюкоза - 20 г, твин-80 - 1 г, дикалия гидрофосфат - 2 г, ацетат натрия - 5 г, цитрат триаммония - 2 г, сульфат магния - 0,2 г, тетрагидрат сульфата марганца (MnSO4*4H2O) - 0,05 г, мясная вода - остальное до 1 л, рН 6.2, в течение 24 ч при 37°С.На третьем этапе чистые культуры разводят до концентрации 107КОЕ/мл и инкубируют под пленкой в лунках полистиролового планшета, который помещают в С02-инкубатор с постоянным составом бескислородной газовой смеси, содержащий 80% -азота, 15% - водорода, 5% - углекислого газа, в течение 3-14 суток при 37°С.The proposed method is carried out in three stages: in the first stage, cultures of lactobacilli isolated from periodontal pockets are cultivated on MRS agar for lactobacilli; in the second, isolated isolates are cultivated in a medium for lactobacilli containing per 1 liter of nutrient medium: peptone - 10 g, yeast extract - 20 g, glucose - 20 g, Tween-80 - 1 g, dipotassium hydrogen phosphate - 2 g, sodium acetate - 5 g, triammonium citrate - 2 g, magnesium sulfate - 0.2 g, manganese sulfate tetrahydrate (MnSO 4 * 4H 2 O) - 0.05 g, meat water - the rest up to 1 l, pH 6.2, for 24 hours at 37°C. At the third stage, pure cultures are diluted to a concentration of 10 7 CFU/ml and incubated under film in the wells of a polystyrene plate, which is placed in a CO 2 incubator with a constant composition of an oxygen-free gas mixture containing 80% nitrogen, 15% hydrogen, 5% carbon dioxide, for 3-14 days at 37°C.

Изобретение иллюстрируется следующими фигурами: на фиг. 1 представлен вид колоний L. casei, выделенных из пародонтальных карманов, на агаре MRS для лактобактерий; на фиг. 2 - результат масс-спектрометрии чистых культур L. casei; на фиг. 3 - анализ изменений в относительной биомассе биопленок изолятовЬ. casei на 3, 7, 14 сутки.The invention is illustrated by the following figures: FIG. Figure 1 shows a view of L. casei colonies isolated from periodontal pockets on MRS agar for lactobacilli; in fig. 2 - result of mass spectrometry of pure cultures of L. casei; in fig. 3 - analysis of changes in the relative biomass of biofilms of isolates b. casei on days 3, 7, 14.

Предлагаемый способ формирования биопленки L. casei, выделенных из пародонтальных карманов, на инертных носителях осуществляется следующим образом:The proposed method of forming a biofilm of L. casei isolated from periodontal pockets on inert carriers is carried out as follows:

Первый этап. Для получения накопительной культуры клинический материал (содержимое пародонта) засеивают на агар MRS для лактобактерий [HiMedia Laboratories Pvt. Limited: [Электронный ресурс]. URL: https://himedialabs.ru. Дата обращения: 13.11.2023], инкубируют в течение 24 ч при температуре 37°С (фигура 1). Идентификацию до рода и вида проводят с помощью метода масс-спектрометрии (автоматической системы идентификации микроорганизмов по принципу MALDI-TOF) (Autof MS 2600, Китай) (фигура 2).First stage. To obtain an enrichment culture, clinical material (periodontal contents) is inoculated onto MRS agar for lactobacilli [HiMedia Laboratories Pvt. Limited: [Electronic resource]. URL: https://himedialabs.ru. Access date: 11/13/2023], incubated for 24 hours at 37°C (Figure 1). Identification to genus and species is carried out using the mass spectrometry method (automatic system for identifying microorganisms based on the MALDI-TOF principle) (Autof MS 2600, China) (Figure 2).

Второй этап: Выделенные изоляты L. casei культивируют в течение 24 ч при температуре 37°С на среде для лактобактерий, содержащей на 1 л питательной среды: пептон - 10 г, дрожжевой экстракт - 20 г, глюкоза - 20 г, твин-80 - 1 г, дикалия гидрофосфат - 2 г, ацетат натрия - 5 г, цитрат триаммония - 2 г, сульфат магния - 0,2 г, тетрагидрат сульфата марганца (MnSO4*4H2O) - 0,05 г, мясная вода - остальное до 1 л, рН 6.2.Second stage: The isolated L. casei isolates are cultivated for 24 hours at a temperature of 37°C on a medium for lactobacilli containing per 1 liter of nutrient medium: peptone - 10 g, yeast extract - 20 g, glucose - 20 g, Tween-80 - 1 g, dipotassium hydrogen phosphate - 2 g, sodium acetate - 5 g, triammonium citrate - 2 g, magnesium sulfate - 0.2 g, manganese sulfate tetrahydrate (MnSO 4 * 4H 2 O) - 0.05 g, meat water - the rest up to 1 l, pH 6.2.

Третий этап: суспензии суточных чистых культур L. casei, выращенных на среде для лактобактерий, разводят до концентрации 107 КОЕ/мл. В лунки полистиролового 48-луночного планшета вносят по 300 мкл полученной разведенной бактериальной суспензии. Планшет накрывают крышкой, заворачивают пленкой Parafilm («Атсог», США) и инкубируют в CO2-инкубаторе HF-100 (Heal Force, КНР) с постоянным составом бескислородной газовой смеси, содержащей 80% - азота, 15% -водорода, 5% - углекислого газа, в течение 3-14 суток при 37°С.Third stage: suspensions of daily pure cultures of L. casei grown on lactobacilli medium are diluted to a concentration of 10 7 CFU/ml. 300 μl of the resulting diluted bacterial suspension is added to the wells of a polystyrene 48-well plate. The plate is covered with a lid, wrapped in Parafilm film (Acco, USA) and incubated in a CO 2 incubator HF-100 (Heal Force, China) with a constant composition of an oxygen-free gas mixture containing 80% nitrogen, 15% hydrogen, 5% - carbon dioxide, for 3-14 days at 37°C.

Пример №1. Пациент М., 48 лет. Диагноз: хронический генерализованный пародонтит средней степени тяжести. Жалобы на отечность десен, подвижность зубов, запах изо рта, кровоточивость десен, слизистое отделяемое из пародонтальных карманов.Example No. 1. Patient M., 48 years old. Diagnosis: chronic generalized periodontitis of moderate severity. Complaints about swelling of the gums, mobility of teeth, bad breath, bleeding gums, mucous discharge from periodontal pockets.

Забор содержимого пародонта производился при помощи стерильных бумажных штифтов Absorbent Paper Points (МЕТА BIOMED, Южная Корея) (размер №25 по ISO). Стерильным пинцетом штифт вводили в наиболее глубокие участки пародонтальных карманов на 15 секунд, затем немедленно помещали в стерильные пробирки типа Eppendorf 1,5 мл объема с тиогликолевой средой (HiMedia, Индия). В дальнейшем в соответствии с предлагаемым нами способом культивирование содержимого пародонта осуществляли на агаре MRS для лактобактерий, затем проводили идентификацию до вида с помощью метода масс-спектрометрии (Autof MS 2600, Китай), после чего выделенные изоляты культивировали на среде для лактобактерий, содержащей на 1 л питательной среды: пептон - 10 г, дрожжевой экстракт - 20 г, глюкозу - 20 г, твин-80 - 1 г, дикалия гидрофосфат - 2 г, ацетат натрия - 5 г, цитрат триаммония - 2 г, сульфат магния - 0,2 г, тетрагидрат сульфата марганца (MnSO4⋅4H2O) - 0,05 г, мясная вода - остальное до 1 л, рН 6.2, в течение 24 ч при 37°С, суспензии чистых культур изолятов 2,3 L. casei разводили до концентрации 107 КОЕ/мл и культивировали под пленкой в лунках полистиролового планшета, который помещали в С02-инкубатор с постоянным составом бескислородной газовой смеси, содержащей 80% - азота, 15%) - водорода, 5% - углекислого газа, в течение 3-14 суток при 37°С.The periodontal contents were collected using sterile Absorbent Paper Points (META BIOMED, South Korea) (ISO size No. 25). Using sterile tweezers, the pin was inserted into the deepest areas of the periodontal pockets for 15 seconds, then immediately placed in sterile Eppendorf tubes of 1.5 ml volume with thioglycollate medium (HiMedia, India). Subsequently, in accordance with our proposed method, the cultivation of periodontal contents was carried out on MRS agar for lactobacilli, then identification was carried out to the species using the mass spectrometry method (Autof MS 2600, China), after which the isolated isolates were cultivated on a medium for lactobacilli containing 1 l nutrient medium: peptone - 10 g, yeast extract - 20 g, glucose - 20 g, Tween-80 - 1 g, dipotassium hydrogen phosphate - 2 g, sodium acetate - 5 g, triammonium citrate - 2 g, magnesium sulfate - 0, 2 g, manganese sulfate tetrahydrate (MnSO 4 ⋅4H 2 O) - 0.05 g, meat water - the rest up to 1 l, pH 6.2, for 24 hours at 37°C, suspensions of pure cultures of isolates 2.3 L. casei diluted to a concentration of 10 7 CFU/ml and cultured under film in the wells of a polystyrene plate, which was placed in a CO 2 incubator with a constant composition of an oxygen-free gas mixture containing 80% nitrogen, 15%) hydrogen, 5% carbon dioxide, for 3-14 days at 37°C.

Для проверки эффективности способа, сформировавшиеся на 3, 7, 14 сутки биопленки окрашивали генцианвиолетом («Агат-Мед», Россия), с последующим элюированием связавшегося с биопленками красителя этиловым спиртом. Результаты изменений в относительной биомассе бипленок выделенных изолятов L. casei, учитывали спектрофотометрически путем измерения оптической плотности спиртового экстракта при длине волны 590 нм с использованием прибора Enspire Model 2300 Multilabel Microplate Reader («Perkin Elmer», США) (таблица, фигура 3) [Вершинина З.Р., Чубукова О.В., Никоноров Ю.М., Хакимова Л.Р., Лавина А.М., Каримова Л.Р., Баймиев Ан.X., Баймиев А.X. Влияние сверхэкспрессии гена rosR на образование биопленок бактериями Rhizobium leguminosarum II Микробиология. - 2021. - Т. 90, №2. - С. 191-203.].To check the effectiveness of the method, biofilms formed on days 3, 7, 14 were stained with gentian violet (Agat-Med, Russia), followed by elution of the dye bound to the biofilms with ethyl alcohol. The results of changes in the relative biomass of bifilms of isolated L. casei isolates were taken into account spectrophotometrically by measuring the optical density of the alcohol extract at a wavelength of 590 nm using an Enspire Model 2300 Multilabel Microplate Reader (Perkin Elmer, USA) (table, figure 3) [Vershinina Z.R., Chubukova O.V., Nikonorov Yu.M., Khakimova L.R., Lavina A.M., Karimova L.R., Baymiev An.X., Baymiev A.X. Effect of overexpression of the rosR gene on the formation of biofilms by bacteria Rhizobium leguminosarum II Microbiology. - 2021. - T. 90, No. 2. - P. 191-203].

Пример №2. Пациент Б., 38 лет. Диагноз: хронический генерализованный пародонтит легкой степени тяжести. Жалобы на отечность и гиперемию десен, запах изо рта, кровоточивость десен периодическая.Example No. 2. Patient B., 38 years old. Diagnosis: chronic generalized periodontitis of mild severity. Complaints of swelling and hyperemia of the gums, bad breath, periodic bleeding of the gums.

Забор содержимого пародонта производился при помощи стерильных бумажных штифтов Absorbent Paper Points (МЕТА BIOMED, Южная Корея) (размер №25 по ISO). Стерильным пинцетом штифт вводили в наиболее глубокие участки пародонтальных карманов на 15 секунд, затем немедленно помещали в стерильные пробирки типа Eppendorf 1,5 мл объема с тиогликолевой средой (HiMedia, Индия). В дальнейшем в соответствии с предлагаемым нами способом культивирование содержимого пародонта осуществляли на агаре MRS для лактобактерий, затем проводили идентификацию до вида с помощью метода масс-спектрометрии (Autof MS 2600, Китай), после чего выделенные изоляты культивировали на среде для лактобактерий, содержащей на 1 л питательной среды: пептон - 10 г, дрожжевой экстракт - 20 г, глюкозу - 20 г, твин-80 - 1 г, дикалия гидрофосфат - 2 г, ацетат натрия - 5 г, цитрат триаммония - 2 г, сульфат магния - 0,2 г, тетрагидрат сульфата марганца (MnSO4⋅4H2O) - 0,05 г, мясная вода - остальное до 1 л, рН 6.2, в течение 24 ч при 37°С, суспензии чистых культур изолятов 5,8,9 L. casei разводили до концентрации 107 КОЕ/мл и культивировали под пленкой в лунках полистиролового планшета, который помещали в CO2-инкубатор с постоянным составом бескислородной газовой смеси, содержащей 80% - азота, 15%) - водорода, 5% - углекислого газа, в течение 3-14 суток при 37°С.The periodontal contents were collected using sterile Absorbent Paper Points (META BIOMED, South Korea) (ISO size No. 25). Using sterile tweezers, the pin was inserted into the deepest areas of the periodontal pockets for 15 seconds, then immediately placed in sterile Eppendorf tubes of 1.5 ml volume with thioglycollate medium (HiMedia, India). Subsequently, in accordance with our proposed method, the cultivation of periodontal contents was carried out on MRS agar for lactobacilli, then identification was carried out to the species using the mass spectrometry method (Autof MS 2600, China), after which the isolated isolates were cultivated on a medium for lactobacilli containing 1 l nutrient medium: peptone - 10 g, yeast extract - 20 g, glucose - 20 g, Tween-80 - 1 g, dipotassium hydrogen phosphate - 2 g, sodium acetate - 5 g, triammonium citrate - 2 g, magnesium sulfate - 0, 2 g, manganese sulfate tetrahydrate (MnSO 4 ⋅4H 2 O) - 0.05 g, meat water - the rest up to 1 l, pH 6.2, for 24 hours at 37 ° C, suspensions of pure cultures of isolates 5,8,9 L casei was diluted to a concentration of 10 7 CFU/ml and cultured under film in the wells of a polystyrene plate, which was placed in a CO 2 incubator with a constant composition of an oxygen-free gas mixture containing 80% nitrogen, 15%) hydrogen, 5% carbon dioxide. , for 3-14 days at 37°C.

Для проверки эффективности способа, сформировавшиеся на 3, 7, 14 сутки биопленки окрашивали генцианвиолетом («Агат-Мед», Россия), с последующим элюированием связавшегося с биопленками красителя этиловым спиртом. Результаты изменений в относительной биомассе биопленок выделенных изолятов L. casei, учитывали спектрофотометрически путем измерения оптической плотности спиртового экстракта при длине волны 590 нм с использованием прибора Enspire Model 2300 Multilabel Microplate Reader («Perkin Elmer», США) (таблица, фигура 3) [Вершинина З.Р., Чубукова О.В., Никоноров Ю.М., Хакимова Л.Р., Лавина А.М., Каримова Л.Р., Баймиев Ан.X., Баймиев А.X. Влияние сверхэкспрессии гена rosR на образование биопленок бактериями Rhizobium leguminosarum II Микробиология. - 2021. - Т. 90, №2. - С. 191-203.].To check the effectiveness of the method, biofilms formed on days 3, 7, 14 were stained with gentian violet (Agat-Med, Russia), followed by elution of the dye bound to the biofilms with ethyl alcohol. The results of changes in the relative biomass of biofilms of isolated L. casei isolates were taken into account spectrophotometrically by measuring the optical density of the alcohol extract at a wavelength of 590 nm using an Enspire Model 2300 Multilabel Microplate Reader (Perkin Elmer, USA) (table, figure 3) [Vershinina Z.R., Chubukova O.V., Nikonorov Yu.M., Khakimova L.R., Lavina A.M., Karimova L.R., Baymiev An.X., Baymiev A.X. Effect of overexpression of the rosR gene on the formation of biofilms by bacteria Rhizobium leguminosarum II Microbiology. - 2021. - T. 90, No. 2. - P. 191-203].

Таким образом, предлагаемый нами способ формирования биопленок видом L. casei, выделенным из пародонтальных карманов, на инертных поверхностях продемонстрировал свою эффективность при исследовании клинического материала.Thus, our proposed method for the formation of biofilms by the species L. casei, isolated from periodontal pockets, on inert surfaces demonstrated its effectiveness in the study of clinical material.

Claims (1)

Способ формирования биопленки анаэробными бактериями, включающий культивирование сначала на питательной среде, затем в аппарате для культивирования микроорганизмов в анаэробных условиях с бескислородной газовой смесью, содержащей 80% азота, водород и углекислый газ, отличающийся тем, что для формирования биопленки Lactobacillus casei проводят культивирование содержимого пародонта на агаре MRS для лактобактерий в течение 24 ч при температуре 37°С, после чего выделенные изоляты культивируют на среде для лактобактерий, содержащей на 1 л питательной среды: пептон – 10 г, дрожжевой экстракт – 20 г, глюкоза – 20 г, твин-80 – 1 г, дикалия гидрофосфат – 2 г, ацетат натрия – 5 г, цитрат триаммония – 2 г, сульфат магния – 0,2 г, тетрагидрат сульфата марганца MnSO4*4H2O – 0,05 г, мясная вода – остальное до 1 л, рН 6.2, в течение 24 ч при 37°С, после чего чистые культуры разводят до концентрации 107 КОЕ/мл и культивируют под пленкой Parafilm в лунках полистиролового планшета, который помещают в аппарат для культивирования микроорганизмов, в качестве которого используют CO2-инкубатор, содержащий 15% водорода, 5% углекислого газа, в течение 3-14 суток при 37°С.A method for forming a biofilm by anaerobic bacteria, including cultivation first on a nutrient medium, then in an apparatus for cultivating microorganisms under anaerobic conditions with an oxygen-free gas mixture containing 80% nitrogen, hydrogen and carbon dioxide, characterized in that to form a biofilm of Lactobacillus casei, periodontal contents are cultivated on MRS agar for lactobacilli for 24 hours at a temperature of 37°C, after which the isolated isolates are cultivated on a medium for lactobacilli containing per 1 liter of nutrient medium: peptone - 10 g, yeast extract - 20 g, glucose - 20 g, Tween - 80 – 1 g, dipotassium hydrogen phosphate – 2 g, sodium acetate – 5 g, triammonium citrate – 2 g, magnesium sulfate – 0.2 g, manganese sulfate tetrahydrate MnSO4*4H2O – 0.05 g, meat water – the rest up to 1 l , pH 6.2, for 24 hours at 37°C, after which pure cultures are diluted to a concentration of 10 7 CFU/ml and cultivated under Parafilm film in the wells of a polystyrene plate, which is placed in an apparatus for cultivating microorganisms, which uses CO 2 - incubator containing 15% hydrogen, 5% carbon dioxide, for 3-14 days at 37°C.
RU2023130688A 2023-11-24 Method of lactobacillus casei biofilm formation, separated from periodontal pockets, on inert surfaces RU2819447C1 (en)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2819447C1 true RU2819447C1 (en) 2024-05-21

Family

ID=

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2619169C1 (en) * 2015-11-20 2017-05-12 Виктор Николаевич Царев Method for forming of combined periodontal anaerobic bacteria biofilm under fluid conditions in vitro
RU2773533C2 (en) * 2015-05-11 2022-06-06 Майбиотикс Фарма Лтд Systems and methods for growing probiotic bacterium biofilm on solid particles for intestine colonization by bacteria

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2773533C2 (en) * 2015-05-11 2022-06-06 Майбиотикс Фарма Лтд Systems and methods for growing probiotic bacterium biofilm on solid particles for intestine colonization by bacteria
RU2619169C1 (en) * 2015-11-20 2017-05-12 Виктор Николаевич Царев Method for forming of combined periodontal anaerobic bacteria biofilm under fluid conditions in vitro

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
АФОНЮШКИН В.Н. и др. "Определение концентрации клеток в стационарно растущих культурах Lactobacillus salivarius в связи с формированием биопленок и агрегатов клеток"; Микробиология, 2017, т.86 N 6, с.770-776. УСАТЫХ Е.А. "Оценка способности штаммов Lactobacillus spp. формировать биопленки"; Материалы IX международной студенческой научной конференции "Студенческий научный форум-2017", 2017, с.1-2. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Lin et al. Effect of probiotic lactobacilli on the growth of Streptococcus mutans and multispecies biofilms isolated from children with active caries
Hamada et al. Production and properties of bacteriocins (mutacins) from Streptococcus mutans
Slots Selective medium for isolation of Actinobacillus actinomycetemcomitans
Albritton Biology of Haemophilus ducreyi
Mattman et al. L variation in mycobacteria
Andrews Acinetobacter bacteriocin typing
Koch The etiology of tuberculosis
Wade Non-culturable bacteria in complex commensal populations
EP0540897B1 (en) Method for the culture of microorganisms of the genera helicobacter, campylobacter and arcobacter employing culture media comprising cyclodextrins, methylcellulose or mixtures thereof
Burnett et al. Bacteriologic studies of the advancing dentinal lesion
Sidaway A microbiological study of dental calculus: I. The microbial flora of mature calculus
RU2819447C1 (en) Method of lactobacillus casei biofilm formation, separated from periodontal pockets, on inert surfaces
RU2817419C1 (en) Method of lactobacillus fermentum biofilm formation, recovered from periodontal pockets, on inert surfaces
Brown et al. Description of Corynebacterium tuberculostearicum sp. nov., a leprosy-derived Corynebacterium
van Palenstein Helderman et al. Elective medium for the direct count of vibrio (campylobacter) fusobacteria, bacteroides, selenomonas and veillonella in the gingival crevice flora
Holmberg Isolation and identification of gram-positive rods in human dental plaque
CN115820450A (en) Lactobacillus plantarum with effects of preventing or treating dental caries and periodontal disease and application thereof
RU2388489C1 (en) Method for preparing vaccine associated against pseudomonosis and enterococcus infection of nutrias
Holm et al. Improved selective culture media for Actinobacillus actinomycetemcomitans and Haemophilus aphrophilus
MAEDA Anaerobic, gram-positive, pleomorphic rods in human gingival crevice
CN115717113B (en) Lactobacillus paracasei and application thereof in preventing or treating oral diseases
Piccolomini et al. Laboratory and clinical comparison of preservation media and transport conditions for survival of Actinobacillus actinomycetemcomitans
Rabkin et al. Thermophilic bacteria: a new cause of human disease
CN114574405B (en) Lactobacillus plantarum WKA86, application thereof in preparation of halitosis preventing and treating product and halitosis preventing and treating product
RU2268942C1 (en) METHOD FOR INTRASPECIES DIFFERENTIATION OF Vibrio cholerae O139