RU2814723C1 - Method of enclosing biomaterial in gelatinous medium for temporary storage and subsequent scanning on computer tomograph - Google Patents
Method of enclosing biomaterial in gelatinous medium for temporary storage and subsequent scanning on computer tomograph Download PDFInfo
- Publication number
- RU2814723C1 RU2814723C1 RU2023130588A RU2023130588A RU2814723C1 RU 2814723 C1 RU2814723 C1 RU 2814723C1 RU 2023130588 A RU2023130588 A RU 2023130588A RU 2023130588 A RU2023130588 A RU 2023130588A RU 2814723 C1 RU2814723 C1 RU 2814723C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- biomaterial
- gelatin
- medium
- enclosing
- plastic
- Prior art date
Links
- 239000012620 biological material Substances 0.000 title claims abstract description 33
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 24
- 229920000159 gelatin Polymers 0.000 claims abstract description 50
- 235000019322 gelatine Nutrition 0.000 claims abstract description 49
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims abstract description 14
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 claims abstract description 7
- 238000004321 preservation Methods 0.000 claims abstract description 3
- 239000008273 gelatin Substances 0.000 claims description 49
- 108010010803 Gelatin Proteins 0.000 claims description 48
- 235000011852 gelatine desserts Nutrition 0.000 claims description 48
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 14
- ISWSIDIOOBJBQZ-UHFFFAOYSA-N Phenol Chemical compound OC1=CC=CC=C1 ISWSIDIOOBJBQZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 6
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 claims description 6
- 239000008187 granular material Substances 0.000 claims description 6
- 238000003756 stirring Methods 0.000 claims description 3
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 abstract description 19
- 230000005855 radiation Effects 0.000 abstract description 5
- 238000012549 training Methods 0.000 abstract description 4
- 230000000007 visual effect Effects 0.000 abstract description 3
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract description 2
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract description 2
- 239000001828 Gelatine Substances 0.000 abstract 1
- 238000002591 computed tomography Methods 0.000 description 14
- 210000000056 organ Anatomy 0.000 description 10
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 5
- 230000001575 pathological effect Effects 0.000 description 5
- 238000011888 autopsy Methods 0.000 description 4
- 230000007170 pathology Effects 0.000 description 4
- QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N Acetic acid Chemical compound CC(O)=O QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 description 3
- 235000010419 agar Nutrition 0.000 description 3
- 230000000052 comparative effect Effects 0.000 description 3
- 238000013480 data collection Methods 0.000 description 3
- 210000000629 knee joint Anatomy 0.000 description 3
- 238000011160 research Methods 0.000 description 3
- 210000000689 upper leg Anatomy 0.000 description 3
- 101100008049 Caenorhabditis elegans cut-5 gene Proteins 0.000 description 2
- 229920000742 Cotton Polymers 0.000 description 2
- WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N Formaldehyde Chemical compound O=C WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000206672 Gelidium Species 0.000 description 2
- CPLXHLVBOLITMK-UHFFFAOYSA-N Magnesium oxide Chemical compound [Mg]=O CPLXHLVBOLITMK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- HCHKCACWOHOZIP-UHFFFAOYSA-N Zinc Chemical compound [Zn] HCHKCACWOHOZIP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 2
- 210000003484 anatomy Anatomy 0.000 description 2
- 210000000988 bone and bone Anatomy 0.000 description 2
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 2
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 2
- 239000008098 formaldehyde solution Substances 0.000 description 2
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 2
- 210000003141 lower extremity Anatomy 0.000 description 2
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 2
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 2
- 239000011701 zinc Substances 0.000 description 2
- 229910052725 zinc Inorganic materials 0.000 description 2
- 208000004434 Calcinosis Diseases 0.000 description 1
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 208000032843 Hemorrhage Diseases 0.000 description 1
- 206010052428 Wound Diseases 0.000 description 1
- 208000027418 Wounds and injury Diseases 0.000 description 1
- 238000009825 accumulation Methods 0.000 description 1
- 239000008272 agar Substances 0.000 description 1
- 150000001298 alcohols Chemical class 0.000 description 1
- 238000002583 angiography Methods 0.000 description 1
- 238000013459 approach Methods 0.000 description 1
- 230000002308 calcification Effects 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 238000003745 diagnosis Methods 0.000 description 1
- 238000002405 diagnostic procedure Methods 0.000 description 1
- 238000002224 dissection Methods 0.000 description 1
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 1
- 230000001815 facial effect Effects 0.000 description 1
- 210000001105 femoral artery Anatomy 0.000 description 1
- 238000003384 imaging method Methods 0.000 description 1
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 1
- 239000000395 magnesium oxide Substances 0.000 description 1
- 238000002595 magnetic resonance imaging Methods 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 210000000236 metacarpal bone Anatomy 0.000 description 1
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 description 1
- 230000003562 morphometric effect Effects 0.000 description 1
- 238000013425 morphometry Methods 0.000 description 1
- 238000011886 postmortem examination Methods 0.000 description 1
- 239000003755 preservative agent Substances 0.000 description 1
- 230000002335 preservative effect Effects 0.000 description 1
- 238000002601 radiography Methods 0.000 description 1
- 230000035945 sensitivity Effects 0.000 description 1
- 210000003625 skull Anatomy 0.000 description 1
- 238000004611 spectroscopical analysis Methods 0.000 description 1
- 230000000472 traumatic effect Effects 0.000 description 1
- 230000006439 vascular pathology Effects 0.000 description 1
- 238000012800 visualization Methods 0.000 description 1
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 1
Abstract
Description
Изобретение относится к медицине, а именно к морфологии, нормальной анатомии, патологической анатомии, лучевым исследованиям, музейному делу, а именно музейной технике.The invention relates to medicine, namely to morphology, normal anatomy, pathological anatomy, radiation studies, museum work, namely museum technology.
Виртопсия - комплекс методик посмертного исследования тела, объединяющий проведение классического патологоанатомического или судебно-медицинского вскрытия с предварительным использованием основных методов, которыми располагает современная лучевая диагностика: компьютерная томография (КТ), магнитно-резонансная томография (МРТ), рентгенография, ангиография, 3D-фотограмметрия, магнитно-резонансная спектрометрия.Virtopsy is a set of methods for post-mortem examination of the body, combining a classical pathological or forensic autopsy with the preliminary use of the basic methods available in modern radiation diagnostics: computed tomography (CT), magnetic resonance imaging (MRI), radiography, angiography, 3D photogrammetry , magnetic resonance spectrometry.
Среди различных способов получения изображений, используемых в рамках виртопсии, КТ играет центральную роль в предоставлении подробной информации о внутренних структурах тела и отдельных органов. К ее преимуществам относят: высокую точность диагностики костной травматической патологии, в том числе патологии лицевого отдела черепа, хорошую визуализацию кровоизлияний, огнестрельной и взрывной раны, а также меньшую чувствительность к физико-химическим изменениям, происходящим с телом после прекращения жизнедеятельности. К другим положительным сторонам посмертной компьютерной томографии можно отнести высокую скорость сканирования с возможностью построения 3D-реконструкций в нескольких плоскостях. По данным ВОЗ доля вскрытий умерших в странах Европейского союза в 1989 году составила 23,5%, а в 2020 уже 11,1%, что связывают с религиозными и культурными причинами, а также с доверием к результатам прижизненной диагностики. Перспективность развития виртопсии и дальнейшего ее внедрения в практику связано не только с удобством метода и тенденцией к отказу от классического посмертного исследования, но и с мультидисциплинарным подходом, которого требует современная медицина.Among the various imaging modalities used in virtopsy, CT plays a central role in providing detailed information about the internal structures of the body and individual organs. Its advantages include: high accuracy of diagnosis of bone traumatic pathology, including pathology of the facial part of the skull, good visualization of hemorrhages, gunshot and blast wounds, as well as less sensitivity to physicochemical changes occurring in the body after the cessation of vital activity. Other positive aspects of postmortem computed tomography include high scanning speed with the ability to create 3D reconstructions in several planes. According to WHO, the share of autopsies of the dead in the countries of the European Union in 1989 was 23.5%, and in 2020 it is already 11.1%, which is associated with religious and cultural reasons, as well as with trust in the results of intravital diagnostics. The prospects for the development of virtopsy and its further implementation in practice are associated not only with the convenience of the method and the tendency to abandon classical post-mortem research, but also with the multidisciplinary approach that modern medicine requires.
Инструменты виртопсии позволяют исследовать как тело целиком, так и отдельные его части или органы. В контексте изучения некоторых патологий, в том числе на архивном патологическом материале, удобнее прибегать к исследованию отдельных частей или органов. Для соблюдения механической, химической и биологической изоляции изучаемого образца необходимо создание специальной изолирующей среды, обладающей свойствами внешней инертности и способностью к консервации заключенного в среду биологического материала.Virtopsy tools allow you to examine both the entire body and its individual parts or organs. In the context of studying certain pathologies, including archival pathological material, it is more convenient to resort to the study of individual parts or organs. To maintain the mechanical, chemical and biological isolation of the sample being studied, it is necessary to create a special isolating medium that has the properties of external inertness and the ability to preserve the biological material enclosed in the medium.
В настоящее время активно ведутся исследования в области посмертной лучевой диагностики, а также внедрение ее в практику для оценки причин смерти и других патологических состояний в рамках посмертной диагностики, что в свою очередь диктует необходимость создания сравнительных наглядных учебных пособий и атласов между результатами аутопсии и виртопсии. Изучение структурных особенностей и патологий отдельных органов, таким образом, способствует накоплению архива готовых анатомических препаратов и базы данных в виде цифровых изображений. Currently, research is actively being carried out in the field of post-mortem radiation diagnostics, as well as its implementation in practice to assess the causes of death and other pathological conditions within the framework of post-mortem diagnostics, which in turn dictates the need to create comparative visual teaching aids and atlases between the results of autopsy and virtopsy. The study of the structural features and pathologies of individual organs, thus, contributes to the accumulation of an archive of finished anatomical preparations and a database in the form of digital images.
Известен ряд способов сохранения биологического материала в изолирующей среде.There are a number of known methods for preserving biological material in an isolating environment.
Известен метод Г. В. Шора, позволяющий сохранять биологический материал в сухом виде посредством желатинирования. Вначале его фиксируют, восстанавливают цвет и переносят в консервирующую жидкость Шора, после чего хранят не более двух недель. Затем подсушивают на воздухе во взвешенном состоянии, удаляя излишки влаги гигроскопической ватой, после чего покрывают препарат тонким слоем горячего желатина на 1-2% карболовой воде при помощи мягкой кисточки. Препарат свободно подвешивают на нитке и в таком виде оставляют на воздухе, давая стечь излишнему желатину и ожидая его затвердения в течение 10-15 минут, после чего для дубления желатина препарат помещают в 20%-ный раствор формалина на 5-15 минут. Из органического или обычного стекла делают камеру по размеру органа, а края тщательно замазывают менделеевской замазкой. Чтобы не конденсировалась влага, помещают в уголок камеры на ватке жженую магнезию. The well-known method of G.V. Shor allows one to preserve biological material in dry form through gelatinization. First, it is fixed, restored to color and transferred to Shor’s preservative liquid, after which it is stored for no more than two weeks. Then it is dried in air in a suspended state, removing excess moisture with absorbent cotton, after which the preparation is covered with a thin layer of hot gelatin in 1-2% carbolic water using a soft brush. The preparation is hung loosely on a thread and left in this form in the air, allowing excess gelatin to drain and waiting for it to harden for 10-15 minutes, after which, to tan the gelatin, the preparation is placed in a 20% formaldehyde solution for 5-15 minutes. A chamber is made from organic or ordinary glass according to the size of the organ, and the edges are carefully covered with Mendeleev putty. To prevent moisture from condensing, place burnt magnesia on cotton wool in the corner of the chamber.
Однако этот метод имеет ряд недостатков, такие как длительность подготовительного этапа и высокий расход фиксирующих, восстанавливающих и консервирующих растворов, а также неизбежное нарушение анатомо-топографических и размерных характеристик в процессе подсушивания. Также к недостаткам метода можно отнести достаточно тонкий слой изолирующей среды.However, this method has a number of disadvantages, such as the duration of the preparatory stage and the high consumption of fixing, restoring and preserving solutions, as well as the inevitable violation of anatomical, topographical and dimensional characteristics during the drying process. Also, the disadvantages of the method include a fairly thin layer of insulating medium.
Известен метод изготовления пластинчатых препаратов по способу Н. К. Лысенкова, основанный на заключении распилов, срезов органов в плоские сосуды или стеклянные рамки, наполненные застывающей прозрачной средой. Замороженные распилы обмывают водой и помещают в 2% раствор формалина и выдерживают не менее трех недель. Затем распилы извлекают, подсушивают на воздухе и заливают глицерино-желатиновым раствором Кайзера и заключают между цинковых полосок с пригнанными к ним стеклами или чашки Петри.There is a known method for producing plate-like preparations according to N.K. Lysenkov’s method, based on enclosing cuts and sections of organs in flat vessels or glass frames filled with a solidifying transparent medium. Frozen cuts are washed with water and placed in a 2% formaldehyde solution and kept for at least three weeks. Then the cuts are removed, dried in air and filled with Kaiser's glycerin-gelatin solution and placed between zinc strips with glasses fitted to them or Petri dishes.
Недостатками данного метода являются наличие артефактов, создаваемых цинковыми полосками при КТ-исследовании, а также длительность подготовительного этапа и нарушение анатомо-топографических и размерных характеристик в процессе подсушивания.The disadvantages of this method are the presence of artifacts created by zinc strips during CT examination, as well as the duration of the preparatory stage and the violation of anatomical, topographical and dimensional characteristics during the drying process.
Известен метод по В. Т. Талалаеву, который принимается нами за прототип (Талалаев В.Т. Пластинчатые патолого-анатомические препараты и техника их изготовления. Избранные труды. М., Медгиз, 1953, С. 193-201). Патологоанатомические препараты из органов и тканей делают в виде пластинок и заключают в желатин или агар-агар: из свежего, нефиксированного органа вырезается тонкая пластинка 1-1,5 см, которая фиксируется и обрабатывается по методу Кайзерлинга. После фиксации пластинка отжимается и проводится через 96° спирты и подсушивается на воздухе. Далее производится заливка в уксуснокислый агар и препарат закладывается между двумя стеклами. В расплавленный желатин или агар-агар сразу кладут пластинку из органа и плотно прижимают ее к стеклу дна коробочки.The method according to V.T. Talalaev is known, which we take as a prototype (Talalaev V.T. Lamellar pathological-anatomical preparations and techniques for their production. Selected works. M., Medgiz, 1953, pp. 193-201). Pathological preparations from organs and tissues are made in the form of plates and enclosed in gelatin or agar-agar: a thin plate of 1-1.5 cm is cut out from a fresh, unfixed organ, which is fixed and processed according to the Keyserling method. After fixation, the plate is wrung out and passed through 96° alcohols and dried in air. Next, it is poured into acetic acid agar and the preparation is placed between two glasses. Immediately place a plate from the organ into melted gelatin or agar-agar and press it tightly against the glass bottom of the box.
Недостатком данного метода является то, что спирт значительно обезвоживает ткани, тем самым искажая их нормальные размеры и топографические отношения. Существуют также недостатки, связанные с отсутствием возможности приготовления полноразмерного анатомического препарата. Кроме того, ввиду слишком тонкого среза в 1,5 см отсутствует возможность полноценного сканирования препарата при помощи компьютерного томографа.The disadvantage of this method is that alcohol significantly dehydrates tissues, thereby distorting their normal sizes and topographic relationships. There are also disadvantages associated with the inability to prepare a full-size anatomical specimen. In addition, due to the too thin section of 1.5 cm, it is not possible to fully scan the specimen using a computed tomograph.
Технический результат заключается в разработке способа заключения биоматериала в желатиновую среду для временного сохранения с последующим КТ-исследованием анатомического препарата.The technical result consists in developing a method for enclosing a biomaterial in a gelatin medium for temporary preservation, followed by CT examination of the anatomical specimen.
Технический результат достигается тем, что биоматериал промывают 0,9 об. % раствором хлорида натрия, затем приготавливают желатиновую среду следующим образом, в емкость помещают 1 литр дистиллированной воды и 60 г желатина, выдерживают полученный раствор в течение 30 минут до набухания гранул желатина, затем нагревают на водяной бане до 60°С, после чего к раствору добавляют 5 г фенола и размешивают до получения однородной прозрачной массы, после этого биоматериал помещают на дно пластиковой посуды и заливают приготовленной желатиновой средой, закрывают посуду пластиковой крышкой и оставляют до полного застывания желатиновой среды на 1 час, затем желатиновый блок с заключенным биоматериалом извлекают из пластиковой посуды, сохраняя его целостность, после чего биоматериал готов к проведению исследования в компьютерном томографе.The technical result is achieved by washing the biomaterial with 0.9 vol. % sodium chloride solution, then prepare the gelatin medium as follows: place 1 liter of distilled water and 60 g of gelatin in a container, keep the resulting solution for 30 minutes until the gelatin granules swell, then heat in a water bath to 60 ° C, then add to the solution add 5 g of phenol and stir until a homogeneous transparent mass is obtained, after which the biomaterial is placed on the bottom of a plastic dish and filled with the prepared gelatin medium, close the dish with a plastic lid and leave until the gelatin medium has completely hardened for 1 hour, then the gelatin block with the enclosed biomaterial is removed from the plastic dishes, maintaining its integrity, after which the biomaterial is ready for examination in a computed tomograph.
ИЗОБРЕТЕНИЕ ПОЯСНЯЕТСЯ ФИГУРАМИ (фиг. 1 - 4).THE INVENTION IS EXPLAINED BY FIGURES (Fig. 1 - 4).
На фиг. 1 препарат сагиттального распила коленного сустава, заключенный в изолирующую желатиновую среду.In fig. 1 preparation of a sagittal section of the knee joint, enclosed in an insulating gelatin medium.
На фиг. 2 томограмма коленного сустава, заключенного в изолирующую желатиновую среду.In fig. 2 tomogram of the knee joint, enclosed in an insulating gelatin medium.
На фиг. 3 препарат фронтального распила дистального отдела бедра, заключенный в изолирующую желатиновую среду.In fig. 3 preparation of a frontal cut of the distal femur, enclosed in an insulating gelatin medium.
На фиг. 4 томограмма дистального отдела бедра, заключенного в изолирующую желатиновую среду. In fig. 4 tomogram of the distal femur, enclosed in an insulating gelatin medium.
В отличие от макроскопического препарата, на компьютерной томограмме отчетливо визуализируется точная толщина костной стенки, а также наличие кальцификатов в бедренной артерии. Unlike a macroscopic specimen, a CT scan clearly visualizes the exact thickness of the bone wall, as well as the presence of calcifications in the femoral artery .
Способ осуществляется следующим образом: препарируют биоматериал при помощи ленточнопильного станка для получения распилов толщиной 5 см, затем биоматериал промывают 0,9 об. % раствором хлорида натрия, затем приготавливают желатиновую среду следующим образом, в емкость помещают 1 литр дистиллированной воды и 60 г желатина, выдерживают полученный раствор в течение 30 минут до набухания гранул желатина, затем нагревают на водяной бане до 60°С, после чего к раствору добавляют 5 г фенола и размешивают до получения однородной прозрачной массы, после этого биоматериал помещают на дно пластиковой посуды и заливают приготовленной желатиновой средой, закрывают посуду пластиковой крышкой и оставляют до полного застывания желатиновой среды на 1 час, затем желатиновый блок с заключенным биоматериалом извлекают из пластиковой посуды, сохраняя его целостность, после чего биоматериал готов к проведению исследования в компьютерном томографе. The method is carried out as follows: the biomaterial is prepared using a band saw to obtain cuts 5 cm thick, then the biomaterial is washed with 0.9 vol. % sodium chloride solution, then prepare the gelatin medium as follows: place 1 liter of distilled water and 60 g of gelatin in a container, keep the resulting solution for 30 minutes until the gelatin granules swell, then heat in a water bath to 60 ° C, then add to the solution add 5 g of phenol and stir until a homogeneous transparent mass is obtained, after which the biomaterial is placed on the bottom of a plastic dish and filled with the prepared gelatin medium, close the dish with a plastic lid and leave until the gelatin medium has completely hardened for 1 hour, then the gelatin block with the enclosed biomaterial is removed from the plastic dishes, maintaining its integrity, after which the biomaterial is ready for examination in a computed tomograph.
После этого изолированный и заключенный в желатиновую среду биоматериал подвергают КТ-исследованию в одном из двух возможных режимов: After this, the biomaterial isolated and enclosed in a gelatin medium is subjected to CT examination in one of two possible modes:
1. Режим 1 представлен сбором данных в классическом режиме, аналогичном сбору данных в конвенциональном КТ в спиральном режиме: напряжение на трубке 120 кВ, экспозиция рентгеновского излучения - 200 мАс, питч - 0,6, используется большой фокус рентгеновской трубки, движущейся со скоростью 1 оборот в 0,5 с. Указанный режим используется для получения изображений крупных объектов.1. Mode 1 is represented by data collection in the classical mode, similar to data collection in conventional CT in the spiral mode: tube voltage 120 kV, X-ray exposure - 200 mAs, pitch - 0.6, a large focus of the X-ray tube moving at a speed of 1 is used revolution in 0.5 s. This mode is used to obtain images of large objects.
2. Режим 2 представлен сбором данных в режиме высокого разрешения: напряжение на трубке 120 кВ, экспозиция рентгеновского излучения - 60 мАс, питч - 0,55, используется малый фокус рентгеновской трубки, движущейся со скоростью 1 оборот в секунду, что позволяет получать срезы с разрешением до 0,6 мм. Указанный режим используется для получения изображений мелких объектов с высоким разрешением.2. Mode 2 is represented by data collection in high-resolution mode: tube voltage 120 kV, X-ray exposure - 60 mAs, pitch - 0.55, uses a small focus of the X-ray tube moving at a speed of 1 revolution per second, which allows you to obtain sections with resolution up to 0.6 mm. This mode is used to obtain high-resolution images of small objects.
ПРИМЕР ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО ИСПОЛЬЗОВАНИЯ СПОСОБАEXAMPLE OF EXPERIMENTAL USE OF THE METHOD
Были использованы архивные музейные препараты ампутированных нижних конечностей с сосудистой патологией.Archival museum preparations of amputated lower extremities with vascular pathology were used.
Было произведено препарирование бедра во фронтальной плоскости на уровне дистального отдела при помощи ленточнопильного станка для получения распила толщиной 5 см, затем биоматериал промыли 0,9 об. % раствором хлорида натрия, затем приготовили желатиновую среду следующим образом. В емкость поместили 1 литр дистиллированной воды и 60 г желатина, выдержали полученный раствор в течение 30 минут до набухания гранул желатина, затем нагрели на водяной бане до 60°С, после чего к раствору добавили 5 г фенола и размешали до получения однородной прозрачной массы, после этого биоматериал поместили на дно пластиковой посуды и залили приготовленной желатиновой средой, закрыли посуду пластиковой крышкой и оставили до полного застывания желатиновой среды на 1 час, затем желатиновый блок с заключенным биоматериалом извлекли из пластиковой посуды, сохраняя его целостность, после этого готовый препарат сканировали на компьютерном томографе в режиме 1.The femur was prepared in the frontal plane at the level of the distal section using a band saw to obtain a cut 5 cm thick, then the biomaterial was washed with 0.9 vol. % sodium chloride solution, then prepared the gelatin medium as follows. 1 liter of distilled water and 60 g of gelatin were placed in a container, the resulting solution was kept for 30 minutes until the gelatin granules swelled, then heated in a water bath to 60°C, after which 5 g of phenol was added to the solution and stirred until a homogeneous transparent mass was obtained, after this, the biomaterial was placed at the bottom of a plastic dish and filled with the prepared gelatin medium, the dish was closed with a plastic lid and left until the gelatin medium completely hardened for 1 hour, then the gelatin block with the enclosed biomaterial was removed from the plastic dish, maintaining its integrity, after which the finished preparation was scanned for computed tomograph in mode 1.
Было произведено препарирование нижней конечности в сагиттальной плоскости на уровне коленного сустава при помощи ленточнопильного станка для получения распила толщиной 5 см.The lower limb was prepared in the sagittal plane at the level of the knee joint using a band saw to obtain a 5 cm thick cut.
Затем биоматериал промыли 0,9 об. % раствором хлорида натрия и поместили на дно пластиковой посуды и залили желатиновой средой, приготовленной следующим образом. В емкость поместили 1 литр дистиллированной воды и 60 г желатина, выдержали полученный раствор в течение 30 минут до набухания гранул желатина, затем нагрели на водяной бане до 60°С, после чего к раствору добавили 5 г фенола и размешали до получения однородной прозрачной массы. Закрыли посуду пластиковой крышкой и оставили до полного застывания желатиновой среды на 1 час. Затем желатиновый блок с заключенным биоматериалом извлекли из пластиковой посуды, сохраняя его целостность, после этого готовый препарат сканировали на компьютерном томографе в режиме 1.Then the biomaterial was washed with 0.9 vol. % sodium chloride solution and placed on the bottom of a plastic dish and filled with gelatin medium prepared as follows. 1 liter of distilled water and 60 g of gelatin were placed in a container, the resulting solution was kept for 30 minutes until the gelatin granules swelled, then heated in a water bath to 60°C, after which 5 g of phenol was added to the solution and stirred until a homogeneous transparent mass was obtained. Cover the dish with a plastic lid and leave until the gelatin medium hardens completely for 1 hour. Then the gelatin block with the enclosed biomaterial was removed from the plastic container, maintaining its integrity, after which the finished preparation was scanned on a computed tomograph in mode 1.
Было произведено препарирование кисти в горизонтальной плоскости на уровне тел пястных костей при помощи ленточнопильного станка для получения распила толщиной 5 см.The hand was prepared in a horizontal plane at the level of the bodies of the metacarpal bones using a band saw to obtain a cut 5 cm thick.
Затем биоматериал промыли 0,9 об. % раствором хлорида натрия и поместили на дно пластиковой посуды и залили желатиновой средой, приготовленной следующим образом. В емкость поместили 1 литр дистиллированной воды и 60 г желатина, выдержали полученный раствор в течение 30 минут до набухания гранул желатина, затем нагрели на водяной бане до 60°С, после чего к раствору добавили 5 г фенола и размешали до получения однородной прозрачной массы. Закрыли посуду пластиковой крышкой и оставили до полного застывания желатиновой среды на 1 час. Затем желатиновый блок с заключенным биоматериалом извлекли из пластиковой посуды, сохраняя его целостность, после этого готовый препарат сканировали на компьютерном томографе в режиме 2.Then the biomaterial was washed with 0.9 vol. % sodium chloride solution and placed on the bottom of a plastic dish and filled with gelatin medium prepared as follows. 1 liter of distilled water and 60 g of gelatin were placed in a container, the resulting solution was kept for 30 minutes until the gelatin granules swelled, then heated in a water bath to 60°C, after which 5 g of phenol was added to the solution and stirred until a homogeneous transparent mass was obtained. Cover the dish with a plastic lid and leave until the gelatin medium hardens completely for 1 hour. Then the gelatin block with the enclosed biomaterial was removed from the plastic container, maintaining its integrity, after which the finished preparation was scanned on a computed tomograph in mode 2.
КТ-исследование показало, что изолирующая желатиновая среда не является препятствием для проведения КТ-исследования. Макроскопические характеристики приготовленных препаратов совпадали с рентгенологическими данными КТ-изображений. Проведение КТ-исследования позволяет сохранить морфологические данные о конкретных препаратах для дальнейшего использования в исследовании и научного обмена, провести сравнительное исследование макроскопических и рентгенологических характеристик изучаемых объектов, а также выявить наличие невидимых глазу особенностей и морфометрических характеристик.The CT study showed that the gelatin isolation medium was not an obstacle to the CT study. The macroscopic characteristics of the prepared preparations coincided with the radiological data of CT images. Carrying out a CT study allows you to save morphological data on specific preparations for further use in research and scientific exchange, conduct a comparative study of macroscopic and radiological characteristics of the objects being studied, and also identify the presence of features and morphometric characteristics invisible to the eye.
Данная методика позволяет осуществить КТ-исследование отдельных частей тела или органов для анализа и сопоставления макроскопических и рентгенологических характеристик. В рамках такого метода препарирования возможна сравнительная оценка особенностей макропрепаратов и томограмм, что соответствует совпадению данных, полученных в рамках классической аутопсии, и информации, полученной при анализе цифровых изображений в рамках виртопсии. This technique allows for CT examination of individual parts of the body or organs for analysis and comparison of macroscopic and radiological characteristics. Within the framework of this dissection method, a comparative assessment of the features of macroscopic preparations and tomograms is possible, which corresponds to the coincidence of data obtained in the framework of a classical autopsy and information obtained from the analysis of digital images in the framework of virtopsy.
Данную методику можно применять для создания атласов и наглядных учебных пособий, содержащих иллюстрации как с анатомическими препаратами, так и с томограммами и 3D-реконструкциями, для профессиональной подготовки рентгенологов, патологоанатомов и судебно-медицинских экспертов в рамках обучения методам посмертной лучевой диагностики.This technique can be used to create atlases and visual teaching aids containing illustrations of both anatomical preparations and tomograms and 3D reconstructions, for the professional training of radiologists, pathologists and forensic experts as part of training in post-mortem radiation diagnostic methods.
Claims (1)
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2814723C1 true RU2814723C1 (en) | 2024-03-04 |
Family
ID=
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
SU1465454A1 (en) * | 1987-07-08 | 1989-03-15 | Научно-Исследовательский Конструкторско-Технологический Институт Биологически Активных Веществ | Method of storing collection cultures of microorganisms |
US8015677B2 (en) * | 2000-12-01 | 2011-09-13 | Aard-Balm Limited | Embalming fluid |
RU2692917C1 (en) * | 2018-06-27 | 2019-06-28 | Дарья Геннадьевна Рыкова | Method of fixing and storing biomaterial using highly efficient and non-toxic reagent |
RU2795363C1 (en) * | 2022-06-01 | 2023-05-03 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Курский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method for preparing anatomical preparations of upper and lower limbs ischemic as a result of thrombogenic complications |
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
SU1465454A1 (en) * | 1987-07-08 | 1989-03-15 | Научно-Исследовательский Конструкторско-Технологический Институт Биологически Активных Веществ | Method of storing collection cultures of microorganisms |
US8015677B2 (en) * | 2000-12-01 | 2011-09-13 | Aard-Balm Limited | Embalming fluid |
RU2692917C1 (en) * | 2018-06-27 | 2019-06-28 | Дарья Геннадьевна Рыкова | Method of fixing and storing biomaterial using highly efficient and non-toxic reagent |
RU2795363C1 (en) * | 2022-06-01 | 2023-05-03 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Курский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method for preparing anatomical preparations of upper and lower limbs ischemic as a result of thrombogenic complications |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Anderson | Manual for the Examination of Bone | |
Lynnerup | Medical imaging of mummies and bog bodies–a mini-review | |
Chhem et al. | Paleoradiology | |
Babaei et al. | Contrast-enhanced X-ray micro-computed tomography as a versatile method for anatomical studies of adult zebrafish | |
Umar et al. | A review of imaging techniques in scientific research/clinical diagnosis | |
Tesařová et al. | Use of micro computed-tomography and 3D printing for reverse engineering of mouse embryo nasal capsule | |
RU2814723C1 (en) | Method of enclosing biomaterial in gelatinous medium for temporary storage and subsequent scanning on computer tomograph | |
de Almeida Lima Massari et al. | Computed tomography examination of the os cordis in a lamb (Ovis aries Linnaeus, 1758) | |
Yamada et al. | Human embryology | |
Arliss et al. | Massive thymic hyperplasia in an adolescent | |
US20100183212A1 (en) | Methods and compositions for imaging cartilage and bone | |
Rahmoun et al. | Morphological and radiological study of lymph nodes in dromedaries in Algeria | |
Lynnerup | Methods in mummy research | |
Adams et al. | Imaging in Egyptian mummies | |
Sena et al. | On the possibilities of polychromatic synchrotron radiation microtomography for visualization of internal structures of Rhodnius prolixus | |
Clear et al. | A review and case study of 3D imaging modalities for female amniote reproductive anatomy | |
Pallares et al. | In vivo virtual histology of mouse embryogenesis by ultrasound biomicroscopy and magnetic resonance imaging | |
US20100172463A1 (en) | Methods and compositions for imaging atherosclerotic plaques | |
Brosig et al. | X-ray micro-computed-tomography in pediatric surgery: a new tool for studying embryos | |
Tsandev et al. | Evaluation of the compatibility between corrosion casts and 3D reconstruction of pig head arterial system on cone beam computed tomography. | |
Succu et al. | Fetal Growth and Osteogenesis Dynamics during Early Development in the Ovine Species | |
Anderson | Potential medical applications for ultrasonic holography | |
Kim et al. | Near-field clutter artifact reduction algorithm based on wavelet thresholding method in echocardiography using 3D printed cardiac phantom | |
Adams | Scientific studies of pharaonic remains: imaging | |
Kogan et al. | Visualisation of penile structures of laboratory rabbit: ultrasound, histology, and micro-CT |