RU2802585C1 - Biological method of combating saprolegniosis of fish roe during incubation of unglued eggs - Google Patents

Biological method of combating saprolegniosis of fish roe during incubation of unglued eggs Download PDF

Info

Publication number
RU2802585C1
RU2802585C1 RU2022110877A RU2022110877A RU2802585C1 RU 2802585 C1 RU2802585 C1 RU 2802585C1 RU 2022110877 A RU2022110877 A RU 2022110877A RU 2022110877 A RU2022110877 A RU 2022110877A RU 2802585 C1 RU2802585 C1 RU 2802585C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
eggs
fish
incubation
shrimp
saprolegniosis
Prior art date
Application number
RU2022110877A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2802585C9 (en
Inventor
Алексей Владимирович Мышкин
Евгений Алексеевна Мышкина
Сергей Борисович Мустаев
Степан Сергеевич Мустаев
Иван Андреевич Монахов
Original Assignee
Алексей Владимирович Мышкин
Сергей Борисович Мустаев
Filing date
Publication date
Application filed by Алексей Владимирович Мышкин, Сергей Борисович Мустаев filed Critical Алексей Владимирович Мышкин
Publication of RU2802585C1 publication Critical patent/RU2802585C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2802585C9 publication Critical patent/RU2802585C9/en

Links

Abstract

FIELD: fish farming.
SUBSTANCE: invention relates to fish farming, in particular, to methods for improving the preservation of caviar and can be used for the artificial breeding of fish. During the laying of non-glued eggs in the incubation container, freshwater cherry shrimp 5–10 mm in size are placed there in the amount of 10–20 specimens per 1,000 fish eggs. After hatching of the prelarvae, which did not swim until the yolk sac is resorbed, the shrimp are removed from the incubation tank.
EFFECT: increase in the yield of fish larvae.
1 cl, 1 tbl

Description

Сапролегниоз икры рыб (биссус) - микозная болезнь икры, характеризующаяся поражением ее сапролегниевыми грибами во время заводской инкубации. Широко распространена со времен применения искусственного метода инкубации икры. В настоящее время встречается при инкубации карповых, осетровых, лососевых рыб, а также при разведении аквариумных рыб.Saprolegniosis of fish eggs (byssus) is a mycotic disease of eggs, characterized by damage to it by saprolegnia fungi during factory incubation. Widespread since the use of the artificial method of incubating eggs. Currently, it is found during the incubation of carp, sturgeon, and salmon fish, as well as during the breeding of aquarium fish.

Сапролегниозом поражается икра нерестующих рыб осенью и весной в инкубационных аппаратах на рыбозаводах, а также в рыбхозах при инкубации икры форели, сиговых, карпа и растительноядных рыб. Болезнь икры можно наблюдать как при низкой температуре воды (до 5-10°С) - при инкубации икры осенненерестующих рыб, так и при более высокой (до 18-22°С), когда идет инкубация икры весенненерестующих рыб. На пораженной икре сначала появляются единичные точечные нити гиф гриба. Затем, разрастаясь, они обволакивают икринку сплошным слоем, которая имеет вид маленького пуфика или созревшего одуванчика. Вначале поражается неоплодотворенная, травмированная, а также физиологически неполноценная икра с недостаточным запасом питательных веществ (желтка). С развитием патологического процесса на ослабленной икре и накоплением заразного начала в инкубационных аппаратах поражается и вся остальная икра. Если инкубация и развитие икры протекают при неудовлетворительных условиях внешней среды (неблагоприятный газовый режим, высокая окисляемость), а также при низком уровне технологии производства (несвоевременное удаление неоплодотворенной или мертвой икры, травмирование икры при ее сборе и оплодотворении и др.), болезнь развивается очень быстро. В условиях заводской инкубации от сапролегниоза погибает 10-50% икры. Иногда в аппарате гибнет вся партия икры. Поэтому большое внимание уделяется мерам по предупреждению и лечению сапролегниевых инфекций. [Васильков Г.В., Грищенко Л.И, Енгашев В.Г. и др.; Под редакцией Осетрова В.С. Болезни рыб: Справочник. - М. - Агропромиздат, 1989. - 288 с.].Saprolegniosis affects the eggs of spawning fish in autumn and spring in incubation apparatus at fish factories, as well as in fish farms when incubating eggs of trout, whitefish, carp and herbivorous fish. Egg disease can be observed both at low water temperatures (up to 5-10°C) - when incubating eggs of autumn-spawning fish, and at higher temperatures (up to 18-22°C), when incubating eggs of spring-spawning fish. On the affected eggs, single dotted threads of fungal hyphae first appear. Then, growing, they envelop the egg with a continuous layer, which looks like a small ottoman or a ripe dandelion. Initially, unfertilized, injured, and physiologically inferior eggs with an insufficient supply of nutrients (yolk) are affected. With the development of the pathological process on the weakened eggs and the accumulation of the infectious principle in the incubation apparatus, the rest of the eggs are also affected. If incubation and development of eggs occur under unsatisfactory environmental conditions (unfavorable gas conditions, high oxidation), as well as at a low level of production technology (untimely removal of unfertilized or dead eggs, injury to eggs during their collection and fertilization, etc.), the disease develops very quickly. fast. Under factory incubation conditions, 10-50% of eggs die from saprolegniosis. Sometimes the entire batch of caviar dies in the machine. Therefore, much attention is paid to measures to prevent and treat saprolegnia infections. [Vasilkov G.V., Grishchenko L.I., Engashev V.G. and etc.; Edited by Osetrova V.S. Fish diseases: Handbook. - M. - Agropromizdat, 1989. - 288 p.].

Клейкость икры - свойство, при котором оболочка оплодотворенной икры с помощью выделяемой жидкости приклеивается к субстрату. Известна у рыб фитофилов, псаммофилов и литофилов [Козлов В.И., Абрамович Л.С. Краткий словарь рыбовода. - М. - Россельхозиздат, - 1982. - 160 с.].Egg stickiness is a property in which the shell of fertilized eggs sticks to the substrate with the help of secreted liquid. Known among phytophilous, psammophilic and lithophilic fish [Kozlov V.I., Abramovich L.S. A short dictionary of the fish farmer. - M. - Rosselkhozizdat, - 1982. - 160 p.].

Фитофилы (от лат. Fitos - растения) - группа рыб, откладывающих икру на растения. К ним относятся рыбы семейств карповые, щуковые, из аквариумных рыб - неоны, скалярии.Phytophiles (from Latin Fitos - plants) are a group of fish that lay eggs on plants. These include fish from the families carp, pike, and aquarium fish - neons and angelfish.

Псаммофилы (от лат. Psammos - песок) - группа рыб, откладывающих икру на песчаный грунт. К ним относятся рыбы семейства сиговые, из аквариумных рыб некоторые представители подотряда харациновых.Psammophiles (from Latin Psammos - sand) are a group of fish that lay eggs on sandy soil. These include fish of the whitefish family, and of aquarium fish, some representatives of the characin suborder.

Литофилы (от лат. Litos - камень) - группа рыб, откладывающих икру на каменистый и гравийный грунты. К ним относятся рыбы семейств осетровые, лососевые, из аквариумных рыб - цихлазомы, бычки. [Власов В.А. Рыбоводство. - Изд. «Лань» - Санкт-Петербург-Москва-Краснодар. - 2010. - 349 с.].Lithophiles (from Latin Litos - stone) are a group of fish that lay eggs on rocky and gravel soils. These include fish of the families sturgeon, salmon, and aquarium fish - cichlids and gobies. [Vlasov V.A. Fish farming. - Ed. "Lan" - St. Petersburg-Moscow-Krasnodar. - 2010. - 349 p.].

Для рыб с клейкой икрой используют два способа инкубации. Первый предполагает обесклеивание икры с помощью молочной суспензии, талька и некоторых других обесклеивающих препаратов, а инкубацию проводят в аппаратах Вейса или ВНИИПРХа. Второй не предполагает обесклеивание икры, а инкубацию проводят в лоточном инкубаторе, где икринки приклеиваются к поверхности лотка и вода подается на верхний лоток, с которого стекает на лотки, находящиеся ниже. При обоих способах инкубации требуется регулярно, иногда каждые 2 часа, отбирать мертвую икру. В противном случае мертвая икра, пораженная сапролегниозом, заражает живые икринки и гибель икры может составлять 100% [Власов В.А. Рыбоводство. - Изд. «Лань» - Санкт-Петербург-Москва-Краснодар. - 2010. - 349 с.]. Второй способ позволяет уменьшить травмирование икры во время обесклеивания, однако затрудняет удаление мертвых икринок, крепко прикрепленных к субстрату - поверхности лотка.For fish with sticky eggs, two incubation methods are used. The first involves de-gluing the eggs using a milk suspension, talc and some other de-gluing preparations, and incubation is carried out in Weiss or VNIIPRKh apparatus. The second does not involve de-sticking the eggs, and incubation is carried out in a tray incubator, where the eggs are glued to the surface of the tray and water is supplied to the top tray, from which it flows onto the trays below. With both incubation methods, it is necessary to regularly, sometimes every 2 hours, remove dead eggs. Otherwise, dead eggs affected by saprolegniosis infect live eggs and the death of eggs can be 100% [Vlasov V.A. Fish farming. - Ed. "Lan" - St. Petersburg-Moscow-Krasnodar. - 2010. - 349 p.]. The second method allows you to reduce injury to eggs during degumming, but makes it difficult to remove dead eggs that are firmly attached to the substrate - the surface of the tray.

Для профилактики и лечения сапролегниоза применяют малахитовый зеленый в соотношении 1:200000 при экспозиции 60 мин или раствор метиленовой сини 1:100000 в течение 30 мин. Положительный результат получают при выдерживании икры в течение 15 мин в растворе формалина (1:500 и 1:1000). Эффективны также слабые растворы медного купороса (1:200000 в течение 60 мин) и перманганата калия (1:100000 в течение 15 мин). [Васильков Г.В., Грищенко Л.И, Енгашев В.Г. и др.; Под редакцией Осетрова B.C. Болезни рыб: Справочник. - М. - Агропромиздат, 1989. - 288 с.].For the prevention and treatment of saprolegniosis, malachite green is used in a ratio of 1:200000 with an exposure of 60 minutes or a solution of methylene blue 1:100000 for 30 minutes. A positive result is obtained by keeping caviar for 15 minutes in a formaldehyde solution (1:500 and 1:1000). Weak solutions of copper sulfate (1:200,000 for 60 minutes) and potassium permanganate (1:100,000 for 15 minutes) are also effective. [Vasilkov G.V., Grishchenko L.I., Engashev V.G. and etc.; Edited by Osetrova V.S. Fish diseases: Handbook. - M. - Agropromizdat, 1989. - 288 p.].

Известен способ двукратной профилактической обработки икры стандартным раствором препарата фиолетовый «К» (10 мг на 1 л воды) с экспозицией 30 минут в период эмбрионального развития [Ларцева Л.В. Профилактика и терапия сапролегниоза икры осетровых и белорыбицы при искусственном их разведении. - Автореферат канд. дисс., М. - ВНИИПРХ. - М. - 1987. - 22 с.].There is a known method of double preventive treatment of caviar with a standard solution of the drug violet “K” (10 mg per 1 liter of water) with an exposure of 30 minutes during the period of embryonic development [Lartseva L.V. Prevention and treatment of saprolegniosis in sturgeon and whitefish caviar during artificial breeding. - Abstract of Ph.D. diss., M. - VNIIPRH. - M. - 1987. - 22 p.].

Известен способ инкубации икры осетровых рыб, включающий профилактическую обработку препаратом фиолетовый «К» путем поддержания постоянной его концентрации в пределах 0,1-0,3 мг/л воды, до стадии вращения эмбрионов [Мамедов Ч.А.О. Патент РФ №2165696 - 1999].There is a known method for incubating sturgeon caviar, including preventive treatment with the drug purple “K” by maintaining a constant concentration within 0.1-0.3 mg/l of water, until the stage of embryo rotation [Mamedov Ch.A.O. RF Patent No. 2165696 - 1999].

Известен способ повышения сопротивляемости икры рыб к заболеваниям путем однократной (на стадии закладки икры) или двукратной (дополнительно на стадии «глазка») обработки икры йодсодержащим препаратом «Монклавит-1» [Нечаева Т.А., Кузнецова Е.В., Варюхин А.В., Петропавловский А.Г. Способ повышения сопротивляемости икры к заболеваниям. Патент РФ №2 421 987. - 2011].There is a known method of increasing the resistance of fish eggs to diseases by single-time (at the stage of egg laying) or double-time (additionally at the “eye” stage) treatment of eggs with the iodine-containing preparation “Monclavit-1” [Nechaeva T.A., Kuznetsova E.V., Varyukhin A. .V., Petropavlovsky A.G. A method for increasing the resistance of caviar to diseases. RF Patent No. 2 421 987. - 2011].

Все указанные способы профилактики и лечения сапролегниоза имеют существенные недостатки. Первый заключается в том, что все эти способы предполагают химические реагенты, которые тем или иным способом вредят нормальному процессу эмбриогенеза. Так, сейчас в странах ЕС и РФ запрещены к применению все органические красители, включая малахитовый зеленый, бриллиантовый зеленый, метиленовая синь, фиолетовый «К» ввиду их канцерогенности. Второй существенный недостаток - довольно большие трудозатраты. При инкубации икры рыб обычно устраивают круглосуточные дежурства и, как отмечалось выше, даже при профилактической обработке указанными препаратами требуется постоянное удаление мертвой икры. Поэтому перед авторами стояла задача устранения этих недостатков.All of these methods for the prevention and treatment of saprolegniosis have significant drawbacks. The first is that all these methods involve chemical reagents that in one way or another harm the normal process of embryogenesis. So, now in the EU countries and the Russian Federation all organic dyes are prohibited for use, including malachite green, brilliant green, methylene blue, violet “K” due to their carcinogenicity. The second significant drawback is the rather large labor costs. When incubating fish eggs, they are usually on duty around the clock and, as noted above, even with preventive treatment with these drugs, constant removal of dead eggs is required. Therefore, the authors were faced with the task of eliminating these shortcomings.

Целью данного изобретения является снижение потерь рыбоводной продукции путем повышения выхода личинок рыб и уменьшение трудозатрат при инкубации икры с клейкой икрой.The purpose of this invention is to reduce losses of fish farming products by increasing the yield of fish larvae and reducing labor costs when incubating eggs with sticky eggs.

Поставленная цель достигается тем, что во время закладки необесклеенной икры в лотковый инкубатор или аквариум, туда помещают креветок черри размером 5-10 мм из расчета 10-20 экземпляров на 1000 икринок. После выклева предличинок, не перешедших на плав до рассасывания желточного мешка, креветок удаляют из емкостей для инкубирования икры.This goal is achieved by the fact that when laying unbleached eggs in a tray incubator or aquarium, cherry shrimp measuring 5-10 mm are placed there at the rate of 10-20 specimens per 1000 eggs. After hatching of the prelarvae, which did not float until the yolk sac is absorbed, the shrimp are removed from the containers for incubating the eggs.

Креветка черри (вишня) - Neocaridina Davidi - пресноводная креветка из семейства Alyidae относится к отряду десятиногих раков. Среди аквариумистов она больше известна как креветка вишня, или вишневая креветка черри [moreryb.com/racoobraznye/neocardina-davidi]. Креветка вишня, или черри - селективно выведенный в Германии вид, полученный в процессе долгого скрещивания диких креветок Neocaridina Heteropoda. Креветки черри - это сборщики отходов на воле. Они едят все, что находят, в режиме 24/7 [fanfishka.ru/news/1040-krevetka-vishnya-cherri.html].Cherry shrimp (Cherry) - Neocaridina Davidi - a freshwater shrimp from the family Alyidae belongs to the order of decapods. Among aquarists, it is better known as the cherry shrimp, or cherry shrimp [moreryb.com/racoobraznye/neocardina-davidi]. Cherry shrimp, or cherry shrimp, is a species selectively bred in Germany, obtained through a long process of crossing wild shrimp Neocaridina Heteropoda. Cherry shrimp are waste collectors in the wild. They eat everything they find 24/7 [fanfishka.ru/news/1040-krevetka-vishnya-cherri.html].

Свойство креветок черри потреблять сапрофиты (отмершее органическое вещество) натолкнуло авторов на мысль использовать их при инкубации необесклееной икры для борьбы с сапролегнией для уничтожения мертвой икры. Наблюдения показали, что креветки, постоянно перебирая лапками икринки, находят мертвые и употребляют их в пищу, не трогая живую икру.The property of cherry shrimp to consume saprophytes (dead organic matter) gave the authors the idea of using them when incubating non-glued eggs to combat saprolegnia to destroy dead eggs. Observations have shown that shrimp, constantly fingering the eggs with their paws, find dead ones and eat them without touching live eggs.

Пример осуществления способа.An example of the method.

В 6 аквариумов емкостью 100 л каждый поместили по 2000 оплодотворенных икринок карпа. Они приклеились к дну аквариумов. Аквариумы были объединены в единую систему установки замкнутого водоиспользования с проточностью 2 л/мин. В 3 аквариума были помещены креветки черри в количестве 20, 30 и 40 экземпляров. В 3-х контрольных вариантах креветки отсутствовали. Температура инкубации составляла 21-22°С. Средняя концентрация кислорода во всех аквариумах составляла 6,5-8,5 мг/л. Продолжительность инкубации составила 4 суток. Через 4 суток, после выклева предличинок, не перешедших на плав до рассасывания желточного мешка, креветок удалили из аквариумов. Дополнительным сопутствующим эффектом данного эксперимента стало подращивание креветок черри. Их масса возросла с 400 мг до 800 мг в среднем. При инкубации икры карпа с пресноводными креветками черри не было установлено круглосуточных дежурств. Работа велась в режиме 5/2. Участвовал один сотрудник. Рабочий день сотрудника длился обычные 8 часов. Для контроля за инкубацией икры в вариантах без пресноводных креветок черри были установлены круглосуточные дежурства сотрудников сутки через трое. Было задействовано 4 человека. Результаты осуществления способа представлены в таблице.2000 fertilized carp eggs were placed in 6 aquariums with a capacity of 100 liters each. They stuck to the bottom of the aquariums. The aquariums were combined into a single closed water system with a flow rate of 2 l/min. Cherry shrimp in quantities of 20, 30 and 40 were placed in 3 aquariums. In 3 control variants there were no shrimps. The incubation temperature was 21-22°C. The average oxygen concentration in all aquariums was 6.5-8.5 mg/l. The duration of incubation was 4 days. After 4 days, after hatching of the prelarvae, which did not swim until the yolk sac was reabsorbed, the shrimp were removed from the aquariums. An additional side effect of this experiment was the growth of cherry shrimp. Their weight increased from 400 mg to 800 mg on average. When incubating carp eggs with freshwater cherry shrimp, no 24-hour watch was established. The work was carried out in 5/2 mode. One employee participated. The employee's working day lasted the usual 8 hours. To control the incubation of eggs in variants without freshwater cherry shrimp, round-the-clock duty of employees was established every three days. 4 people were involved. The results of the method are presented in the table.

Как видно из таблицы, выход предличинок при предлагаемом способе оказался более чем в 2 раза выше при примерно одинаковом проценте оплодотворения. Трудозатраты за четверо суток составили 32 человека-часа вместо 96 человеко-часов при круглосуточном дежурстве при инкубации икры без пресноводных креветок черри, то есть сократились в три раза.As can be seen from the table, the yield of prelarvae using the proposed method turned out to be more than 2 times higher with approximately the same percentage of fertilization. Labor costs for four days amounted to 32 man-hours instead of 96 man-hours with round-the-clock duty when incubating eggs without freshwater cherry shrimp, that is, they were reduced by three times.

Claims (1)

Биологический способ борьбы с сапролегниозом икры рыб при инкубации, характеризующийся тем, что во время закладки необесклеенной икры в инкубационную емкость, туда помещают пресноводных креветок черри размером 5-10 мм в количестве 10-20 экземпляров на 1000 икринок рыб, после выклева предличинок, не перешедших на плав до рассасывания желточного мешка, креветок удаляют из инкубационной емкости.A biological method of combating saprolegniosis of fish eggs during incubation, characterized by the fact that when laying unbleached eggs in an incubation tank, freshwater cherry shrimp 5-10 mm in size are placed there in the amount of 10-20 copies per 1000 fish eggs, after hatching the pre-larvae that have not passed float until the yolk sac is absorbed, the shrimp are removed from the incubation container.
RU2022110877A 2022-04-21 Biological method of combating saprolegniosis of fish roe during incubation of unglued eggs RU2802585C9 (en)

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2802585C1 true RU2802585C1 (en) 2023-08-30
RU2802585C9 RU2802585C9 (en) 2024-01-23

Family

ID=

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2006101060A1 (en) * 2005-03-22 2006-09-28 Kyushu Medical Co., Ltd. Method of preventing crustacean fungal diseases and fish funcal diseases by using bacillus subtilis
RU2421987C1 (en) * 2010-01-11 2011-06-27 Федеральное государственное научное учреждение "ГОСУДАРСТВЕННЫЙ НАУЧНО-ИССЛЕДОВАТЕЛЬСКИЙ ИНСТИТУТ ОЗЕРНОГО И РЕЧНОГО РЫБНОГО ХОЗЯЙСТВА" (ФГНУ "ГосНИОРХ") Method to increase resistance of roe to diseases
WO2016063432A1 (en) * 2014-10-21 2016-04-28 助川化学株式会社 Method for controlling saprolegniasis in culture water

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2006101060A1 (en) * 2005-03-22 2006-09-28 Kyushu Medical Co., Ltd. Method of preventing crustacean fungal diseases and fish funcal diseases by using bacillus subtilis
RU2421987C1 (en) * 2010-01-11 2011-06-27 Федеральное государственное научное учреждение "ГОСУДАРСТВЕННЫЙ НАУЧНО-ИССЛЕДОВАТЕЛЬСКИЙ ИНСТИТУТ ОЗЕРНОГО И РЕЧНОГО РЫБНОГО ХОЗЯЙСТВА" (ФГНУ "ГосНИОРХ") Method to increase resistance of roe to diseases
WO2016063432A1 (en) * 2014-10-21 2016-04-28 助川化学株式会社 Method for controlling saprolegniasis in culture water

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Kalagayan et al. IHHN virus as an etiological factor in runt‐deformity syndrome (RDS) of juvenile Penaeus vannamei cultured in Hawaii
Arimoro Culture of the freshwater rotifer, Brachionus calyciflorus, and its application in fish larviculture technology
RU2723037C2 (en) Method for producing infertile fish and infertile aquatic animal eggs and method of delivering compounds into caviar and embryos
Moser et al. Lamprey reproduction and early life history: insights from artificial propagation
Pavlov et al. Bacterial destruction of the egg shell of common wolffish during incubation
Meyer et al. Second report to the fish farmers: the status of warmwater fish farming and progress in fish farming research
Chen et al. Sea cucumber aquaculture in China
RU2802585C1 (en) Biological method of combating saprolegniosis of fish roe during incubation of unglued eggs
RU2802585C9 (en) Biological method of combating saprolegniosis of fish roe during incubation of unglued eggs
Roca et al. Improving larval culture and rearing techniques on common snook (Centropomus undecimalis)
Aydın et al. Turbot and flounder aquaculture
Anil et al. Recent advances in marine ornamental breeding and seed production at Vizhinjam Regional Centre of CMFRI India
Holst et al. Cephalopoda
KR101839314B1 (en) mandarin fish farming method and the system thereof in early stage
KR101839315B1 (en) mandarin fish farming method and the system thereof in early stage
Csorbai et al. Results and outcomes of induced breeding and fry rearing of zander (Sander lucioperca L.)
Katow et al. Sea cucumber farming in Japan
RU2788532C1 (en) Method for cultivation of oithona davisae marine cyclopoid copepods
Ingram et al. Murray cod aquaculture—current information and current status
Effendi et al. Ectoparasite attack on star pomfret (Trachinotus blochii) at Batam Mariculture Center, Indonesia
Baihaki et al. The Effect Dose and Soaking Time of Camellia sinensis Solution to the Egg Adhesion and Hatching of Pangasionodon hypophthalmus
Ranjan et al. Copepod parasite Lepeophtheirus kabatai (Ho & Dojiri, 1977) infestation in orange spotted grouper, Epinephelus coioides (Hamilton, 1822) and its control in captivity
Mulan Growth performance of clarias gariepinus larvae raised in Happa-in-pond
Polishchuk et al. Main aspects of pikepersh (Sander lucioperca) reproduction (a review)
Meena et al. Research Biotica