RU2794355C1 - Method for primary plating of periodontal pockets - Google Patents

Method for primary plating of periodontal pockets Download PDF

Info

Publication number
RU2794355C1
RU2794355C1 RU2022126835A RU2022126835A RU2794355C1 RU 2794355 C1 RU2794355 C1 RU 2794355C1 RU 2022126835 A RU2022126835 A RU 2022126835A RU 2022126835 A RU2022126835 A RU 2022126835A RU 2794355 C1 RU2794355 C1 RU 2794355C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
agar
streptococcus
medium
hours
biomaterial
Prior art date
Application number
RU2022126835A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Ирина Владимировна Бажутова
Артем Викторович Лямин
Дмитрий Александрович Трунин
Андрей Владимирович Козлов
Алексей Евгеньевич Яблоков
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Самарский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Самарский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации filed Critical Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Самарский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Application granted granted Critical
Publication of RU2794355C1 publication Critical patent/RU2794355C1/en

Links

Abstract

FIELD: medicine; microbiology; dentistry.
SUBSTANCE: invention relates to a method for primary plating of periodontal pockets.
EFFECT: invention allows to improve the diagnosis of infectious and inflammatory periodontal diseases of bacterial aetiology by obtaining the maximum number of types of clinically significant microorganisms separated from periodontal pockets from patients with periodontitis in the primary culture.
1 cl, 2 ex

Description

Область техники, к которой относится изобретениеThe field of technology to which the invention belongs

Изобретение относится к медицине, а именно к микробиологии и стоматологии, и может быть использовано для первичного посева биоматериала, выделенного из полости рта пациентов с болезнями пародонта при стоматологическом обследовании. SUBSTANCE: invention relates to medicine, namely to microbiology and dentistry, and can be used for primary inoculation of biomaterial isolated from the oral cavity of patients with periodontal diseases during a dental examination.

Уровень техникиState of the art

Известен способ экспресс-диагностики Escherichia coli и бактерий группы кишечной палочки в ротовой полости, осуществляемый следующим образом: у пациента проводят забор биологического материала из ротовой полости: ротовую и десневую жидкости с помощью микропипетки, мазок-отпечаток со слизистой оболочки рта - стерильным ватным тампоном, зубную биопленку с помощью экскаватора (Экрадент, Россия). Биоматериалы помещают в питательную среду Кода (peг. удостоверение РЗН 2013/699, ТУ 20.59.52-222-19862939-2018), разлитую по микропробиркам типа Эппендорф, в объеме 1,8 мл. Микропробирки инкубируют в термостате ТС-80 (Анкар, Россия) в течение 24 ч при температуре 37°С. После этого оценивают изменение цвета и мутности питательной среды Кода. В случае сохранения исходного зеленого цвета и прозрачности среды Е. coli и БГКП в пробе отсутствуют. Изменение цвета на интенсивный желтый с образованием пузырьков газа и помутнения среды в пробе свидетельствуют о присутствии Е. coli и БГКП [Патент РФ на изобретение № 2732412, Заявка 2020108748, 27.02.2020, Опубликовано: 16.09.2020 Бюл.№26].A known method for rapid diagnosis of Escherichia coli and bacteria of the Escherichia coli group in the oral cavity, carried out as follows: the patient is taken biological material from the oral cavity: oral and gingival fluids using a micropipette, smear-imprint from the oral mucosa - with a sterile cotton swab, dental biofilm using an excavator (Ekradent, Russia). The biomaterials are placed in the Koda nutrient medium (reg. certificate RZN 2013/699, TU 20.59.52-222-19862939-2018), poured into Eppendorf-type microtubes, in a volume of 1.8 ml. The microtubes are incubated in a thermostat TC-80 (Ankar, Russia) for 24 hours at 37°C. After that, the change in color and turbidity of the nutrient medium of the Code is evaluated. If the original green color and transparency of the medium are preserved, E. coli and BGKP are absent in the sample. The color change to intense yellow with the formation of gas bubbles and turbidity of the medium in the sample indicate the presence of E. coli and BGKP [RF Patent for invention No. 2732412, Application 2020108748, 27.02.2020, Published: 16.09.2020 Bull. No. 26].

Недостатками данного способа являются низкая чувствительность и специфичность метода, а также отсутствие условий для культивирования специфичной для полости рта микрофлоры, в том числе анаэробных микроорганизмов.The disadvantages of this method are the low sensitivity and specificity of the method, as well as the lack of conditions for the cultivation of microflora specific to the oral cavity, including anaerobic microorganisms.

Известен способ культивирования бактерий рода Leptotrichia - резидентов микрофлоры полости рта, осуществляемый следующим образом: после забора клинического материала из полости рта пациента в кабинете стоматолога его помещают в транспортную среду для анаэробов и в течение 1-2 часов доставляют в бактериологическую лабораторию. Из полученного материала делают разведения 10-3-10-5стерильным 0,85% раствором NaCl. Первичный посев материала из приготовленных разведений осуществляют калиброванной бактериологической петлей (0,2 мм, емкость 0,005 мл) на поверхность пластинчатой среды «Уриселект» методом секторных посевов на четыре сектора, каждый раз обжигая петлю, в 90 мм чашки Петри и далее инкубируют первичные посевы в анаэробных и микроаэрофильных (5%-10% СО2) условиях, topt=+35+37°С в течение 48-72 часов. В случае отсутствия роста чашки повторно выдерживались еще 24 часа для исключения ложноотрицательных результатов, вызванных недостаточной инкубацией [Патент РФ на изобретение № 2441908, Заявка 2010110394/10, 18.03.2010, Опубликовано: 10.02.2012 Бюл.№4].There is a known method of cultivating bacteria of the genus Leptotrichia - residents of the microflora of the oral cavity, carried out as follows: after taking clinical material from the patient's oral cavity in the dentist's office, it is placed in a transport medium for anaerobes and delivered to the bacteriological laboratory within 1-2 hours. Dilutions of 10 -3 -10 -5 are made from the obtained material with a sterile 0.85% NaCl solution. The primary inoculation of the material from the prepared dilutions is carried out with a calibrated bacteriological loop (0.2 mm, capacity 0.005 ml) on the surface of the Uriselect plate medium by the method of sector inoculation into four sectors, each time firing the loop, into 90 mm Petri dishes and then the primary inoculations are incubated in anaerobic and microaerophilic (5%-10% CO 2 ) conditions, t opt =+35+37°C for 48-72 hours. In the absence of growth, the cups were repeatedly kept for another 24 hours to exclude false negative results caused by insufficient incubation [RF Patent for invention No. 2441908, Application 2010110394/10, 03/18/2010, Published: 02/10/2012 Bull. No. 4].

Недостатками данного способа являются отсутствие в предлагаемой схеме питательных сред для культивирования анаэробов, что ограничивает возможности их выделения из биоматериала.The disadvantages of this method are the lack of nutrient media for the cultivation of anaerobes in the proposed scheme, which limits the possibility of their isolation from the biomaterial.

Известен способ прогнозирования негативных последствий в полости рта при ортодонтическом лечении зубочелюстных аномалий несъемной техникой, осуществляемый следующим образом: проводят забор зубной бляшки пациента до чистки зубов и помещают в тиогликолевую питательную транспортную среду для последующей транспортировки. Готовят серию двукратных разведений исходного материала 10-2-10-12 для посева микроорганизмов на соответствующие питательные среды на 5% кровяной агар с азидом натрия, на 5% кровяной гемин-агар для выявления стрептококков. Культивирование проводят при температуре 37°C. После термостатирования осуществляют количественный подсчет колоний каждого вида с учетом посевной дозы и степени разведения биосубстрата. Видовую идентификацию выделенных чистых культур микроорганизмов осуществляют на основании изучения их морфологических, тинкториальных, культуральных, биохимических и антигенных свойств в соответствии с определителем Берджи (Дж. Хоулт, 1997). Проводят оценку количественной и качественной характеристики стрептококков полости рта. Количественное содержание оральных стрептококков S. mutans и S. sanguis определяют бактериологическим методом микробиологического исследования, концентрацию выражают через десятичный логарифм величины выросших колоний (lg КОЕ/мл). Интерпретацию полученных данных проводят в соответствии с методическими рекомендациями по бактериологической диагностике (РФ отраслевой стандарт ОСТ 91500.11.0004-2003 «Протокол ведения больных. Дисбактериоз кишечника») [Патент РФ на изобретение № 2639476, Заявка 2014124674, 17.06.2014, Опубликовано: 21.12.2017 Бюл.№36].There is a known method for predicting negative consequences in the oral cavity during orthodontic treatment of dentoalveolar anomalies with fixed equipment, carried out as follows: the patient's dental plaque is taken before brushing the teeth and placed in a thioglycol nutrient transport medium for subsequent transportation. A series of two-fold dilutions of the starting material 10 -2 -10 -12 is prepared for inoculation of microorganisms on appropriate nutrient media on 5% blood agar with sodium azide, on 5% blood hemin agar to detect streptococci. Cultivation is carried out at a temperature of 37°C. After temperature control, a quantitative count of the colonies of each species is carried out, taking into account the inoculation dose and the degree of dilution of the biosubstrate. Species identification of isolated pure cultures of microorganisms is carried out on the basis of the study of their morphological, tinctorial, cultural, biochemical and antigenic properties in accordance with the determinant of Bergy (J. Holt, 1997). The quantitative and qualitative characteristics of streptococci of the oral cavity are assessed. The quantitative content of oral streptococci S. mutans and S. sanguis is determined by the bacteriological method of microbiological research, the concentration is expressed through the decimal logarithm of the size of the grown colonies (lg CFU / ml). The interpretation of the obtained data is carried out in accordance with the guidelines for bacteriological diagnostics (RF industry standard OST 91500.11.0004-2003 "Protocol for managing patients. Intestinal dysbacteriosis") [RF Patent for invention No. 2639476, Application 2014124674, 17.06.2014, Published: 21.12. 2017 Bull. No. 36].

Недостатками данного способа являются отсутствие в предлагаемой схеме питательных сред для культивирования анаэробов, что ограничивает возможности их выделения из биоматериала.The disadvantages of this method are the lack of nutrient media for the cultivation of anaerobes in the proposed scheme, which limits the possibility of their isolation from the biomaterial.

За прототип принимается способ первичного посева биоматериала, выделенного из полости рта пациентов с муковисцидозом при стоматологическом обследовании. Суть метода заключается в следующем: на поверхность двух чашек с 5% кровяным агаром с дефибринированной бараньей кровью, двух чашек с универсальной хромогенной средой, по одной чашке с селективной средой для Burkholderia cepacia (OFPBL-агар) с бацитрацином и полимиксина сульфатом, Veilonella-агаром, агаром для анаэробов, Clostridium-агаром, агаром для лактобактерий, агаром для бифидобактерий производится посев биоматериала из ротовой полости пациентов с муковисцидозом, взятого при стоматологическом обследовании, с использованием техники посева «штрихом»; на поверхность чашек с агаром Сабуро с хлорамфениколом производится посев гомогенизированного материала методом бляшек с последующей инкубацией при 28°С до 14 суток с ежедневными просмотрами посевов; затем по одной засеянной чашке с 5% кровяным агаром с дефибринированной бараньей кровью и с универсальной хромогенной средой инкубируются в термостате при температуре 37°С в течение 24-48 часов с ежедневным просмотром посевов; чашки с селективной средой для Burkholderia cepacia (OFPBL-агар) с бацитрацином и полимиксина сульфатом инкубируются в аэробных условиях 24-48 часов при температуре 37°С, далее инкубируются до 14 суток при температуре 28°С с ежедневным просмотром посевов; по одной засеянной чашке с 5% кровяным агаром с дефибринированной бараньей кровью и с универсальной хромогенной средой, а также чашки с Veilonella-агаром, агаром для анаэробов, Clostridium-агаром, агаром для лактобактерий, агаром для бифидобактерий инкубируются в анаэробных условиях 120 часов при температуре 37°С с просмотром после окончания срока инкубирования [Патент РФ на изобретение № 2779641, Заявка 2022105520, 01.03.2022, Опубликовано: 12.09.2022 Бюл.№26].The prototype is the method of primary seeding of biomaterial isolated from the oral cavity of patients with cystic fibrosis during a dental examination. The essence of the method is as follows: on the surface of two plates with 5% blood agar with defibrinated sheep blood, two plates with universal chromogenic medium, one plate each with selective medium for Burkholderia cepacia (OFPBL-agar) with bacitracin and polymyxin sulfate, Veilonella-agar , anaerobic agar, Clostridium agar, lactobacilli agar, bifidobacteria agar, biomaterial is inoculated from the oral cavity of patients with cystic fibrosis, taken during a dental examination, using the "stroke" technique; on the surface of the plates with Sabouraud agar with chloramphenicol, the homogenized material is inoculated by the plaque method, followed by incubation at 28°C for up to 14 days with daily views of the crops; then one inoculated plate with 5% blood agar with defibrinated sheep blood and with universal chromogenic medium are incubated in a thermostat at a temperature of 37°C for 24-48 hours with daily viewing of crops; dishes with selective medium for Burkholderia cepacia (OFPBL-agar) with bacitracin and polymyxin sulfate are incubated under aerobic conditions for 24-48 hours at a temperature of 37°C, then incubated for up to 14 days at a temperature of 28°C with daily viewing of crops; one inoculated plate each with 5% blood agar with defibrinated sheep blood and universal chromogenic medium, as well as plates with Veilonella agar, anaerobic agar, Clostridium agar, lactobacillus agar, bifidobacteria agar are incubated under anaerobic conditions for 120 hours at a temperature 37 ° C with a review after the end of the incubation period [RF Patent for invention No. 2779641, Application 2022105520, 03/01/2022, Published: 09/12/2022 Bull. No. 26].

Недостатками данного способа являются посева методом «штриха», что исключает выделение микроорганизмов в титрах менее 103, а также затрудняет выделение микроорганизмов в случае большой микробной нагрузки в биологическом материале; набор предложенных сред не предусмотрен для выделения большого видового разнообразия облигатно анаэробных микроорганизмов, имеющих наибольшее клиническое значение при пародонтопатогенных процессах.The disadvantages of this method are inoculation by the "stroke" method, which eliminates the isolation of microorganisms in titers less than 10 3 and also makes it difficult to isolate microorganisms in the case of a large microbial load in the biological material; the set of proposed media is not provided for isolating a large species diversity of obligate anaerobic microorganisms that have the greatest clinical significance in periodontopathogenic processes.

Раскрытие изобретенияDisclosure of invention

Задачей изобретения является улучшение диагностики инфекционно-воспалительных заболеваний пародонта бактериальной этиологии путем получения в первичном посеве отделяемого из полости рта от пациентов с пародонтитом максимального количества видов клинически значимых микроорганизмов.The objective of the invention is to improve the diagnosis of infectious and inflammatory periodontal diseases of bacterial etiology by obtaining the maximum number of types of clinically significant microorganisms separated from the oral cavity from patients with periodontitis in the primary seeding.

Это достигается тем, что в отличие от известных способов первичного посева отделяемого из полости рта одноразовым стоматологическим зондом проводится взятие биоматериала из пародонтального кармана пациента с пародонтитом. Далее одноразовый зонд с биоматериалом помещается в пробирку с 2 мл тиогликолиевой питательной транспортной среды, что позволяет сохранить жизнеспособность аэробных и анаэробных микроорганизмов и в течение 2 часов доставляется в бактериологическую лабораторию, где проводится посев на 7 питательных сред: 5% кровяной агар с дефибринированной бараньей кровью [Atlas, Ronald M., 1946-. Handbook of microbiological media. - Taylor & Francis, 2010-01-01.], универсальную хромогенную среду [1. Pezzlo M (1998), Clinical Microbiology Reviews 1:268-280; 2.Wilkie M.E.,Almond M.K.,Marsh F.P.(1992),British Medical Journal 305:1137-1141; 3.Friedman M.P. et al (1991), Journal of Clinical Microbiology, 29:2385-2389; 4.Murray P., Traynor P. Hopson D., (1992), Journal of Clinical Microbiology 30:1600-1601; 5.Soriano F., Ponte C., (1992), Journal of Clinical Microbiology 30:3033-3034; 6.Merlino et al (1995) Abstr. Austr. Microbiol. 16(4):17-3.], Veilonella-агар [Регистрационное удостоверение на медицинское изделие ФСЗ 2009/03709], агар для анаэробов [Регистрационное удостоверение на медицинское изделие ФСЗ 2009/03707], Clostridium-агар [Регистрационное удостоверение на медицинское изделие ФСЗ 2009/03707], агар для лактобактерий [Регистрационное удостоверение на медицинское изделие ФСЗ 2009/03709], Brucella-агар с добавлением 7% дефибринированной бараньей крови [Регистрационное удостоверение на медицинское изделие ФСЗ 2009/03709]. Дополнительно на чашки Петри с питательными средами помещают диски с антибактериальными препаратами: ампициллин 10 мкг, ципрофлоксацин 5 мкг, эритромицин 15 мкг; далее засеянные чашки с дисками с антибактериальными препаратами инкубируются в анаэробных условиях в течение 120 часов при температуре 37°С.This is achieved by the fact that, unlike the known methods of primary seeding discharged from the oral cavity, a disposable dental probe is used to take the biomaterial from the periodontal pocket of a patient with periodontitis. Next, a disposable probe with biomaterial is placed in a test tube with 2 ml of thioglycol nutrient transport medium, which allows maintaining the viability of aerobic and anaerobic microorganisms and is delivered to the bacteriological laboratory within 2 hours, where seeding is carried out on 7 nutrient media: 5% blood agar with defibrinated sheep blood [Atlas, Ronald M., 1946-. Handbook of microbiological media. - Taylor & Francis, 2010-01-01.], universal chromogenic medium [1. Pezzlo M (1998), Clinical Microbiology Reviews 1:268-280; 2. Wilkie M. E., Almond M. K., Marsh F. P. (1992), British Medical Journal 305:1137-1141; 3 Friedman M.P. et al (1991), Journal of Clinical Microbiology, 29:2385-2389; 4. Murray P., Traynor P. Hopson D., (1992), Journal of Clinical Microbiology 30:1600-1601; 5. Soriano F., Ponte C., (1992), Journal of Clinical Microbiology 30:3033-3034; 6 Merlino et al (1995) Abstr. Austr. microbiol. 16(4):17-3.], Veilonella agar [Registration certificate for a medical device FSS 2009/03709], anaerobic agar [Registration certificate for a medical device FSS 2009/03707], Clostridium agar [Registration certificate for a medical device FSZ 2009/03707], agar for lactobacilli [Registration certificate for a medical product FSZ 2009/03709], Brucella agar with the addition of 7% defibrinated sheep blood [Registration certificate for a medical device FSZ 2009/03709]. Additionally, disks with antibacterial drugs are placed on Petri dishes with nutrient media: ampicillin 10 µg, ciprofloxacin 5 µg, erythromycin 15 µg; then seeded cups with disks with antibacterial drugs are incubated under anaerobic conditions for 120 hours at a temperature of 37°C.

Технический результат изобретения заключается в том, что заявленный способ первичного посева позволяет одномоментно выделить максимальное количество микроорганизмов, имеющих клиническое значение в развитии стоматологических заболеваний, в частности кариеса и заболеваний пародонта: бактерии родов Capnocytophaga spp., Eikenella spp., Veilonella spp., Actinomyces spp., Aggregatibacter spp, Streptococcus spp., Porphyromonas spp., Campylobacter spp., Fusobacterium spp., Eubacterium spp., Prevotella spp., большинство из которых является трудно культивируемыми облигатными анаэробами.The technical result of the invention lies in the fact that the claimed method of primary seeding allows you to simultaneously select the maximum number of microorganisms of clinical importance in the development of dental diseases, in particular caries and periodontal diseases: bacteria of the genera Capnocytophaga spp., Eikenella spp., Veilonella spp., Actinomyces spp. ., Aggregatibacter spp, Streptococcus spp., Porphyromonas spp., Campylobacter spp., Fusobacterium spp., Eubacterium spp., Prevotella spp., most of which are difficult to cultivate obligate anaerobes.

Осуществление изобретенияImplementation of the invention

Сущность предложенного метода заключается в следующем: одноразовым стоматологическим зондом проводится взятие биоматериала из пародонтального кармана пациента с пародонтитом. Далее одноразовый зонд с биоматериалом помещается в пробирку с 2 мл тиогликолиевой питательной транспортной среды, что позволяет сохранить жизнеспособность аэробных и анаэробных микроорганизмов и в течение 2 часов доставляется в бактериологическую лабораторию. В бактериологической лаборатории отобранный материал вортексируется, отбирается по 50 мкл тиогликолиевой питательной среды и засевается на поверхность чашек Петри со всеми типами питательных сред: 5% кровяным агаром с дефибринированной бараньей кровью, универсальной хромогенной средой, Veilonella-агаром, агаром для анаэробов, Clostridium-агаром, агаром для лактобактерий, Brucella-агаром с 7% дефибринированной бараньей кровью с использованием техники посева «газоном». Затем на поверхность питательных сред помещают диски с антибактериальными препаратами: ампициллин 10 мкг, ципрофлоксацин 5 мкг, эритромицин 15 мкг; далее засеянные чашки с дисками с антибактериальными препаратами инкубируются в анаэробных условиях в течение 120 часов при температуре 37°С.The essence of the proposed method is as follows: a biomaterial is taken from the periodontal pocket of a patient with periodontitis with a disposable dental probe. Next, a disposable probe with biomaterial is placed in a test tube with 2 ml of thioglycol nutrient transport medium, which allows maintaining the viability of aerobic and anaerobic microorganisms and is delivered to the bacteriological laboratory within 2 hours. In the bacteriological laboratory, the selected material is vortexed, 50 µl of thioglycol nutrient medium is taken and inoculated on the surface of Petri dishes with all types of nutrient media: 5% blood agar with defibrinated sheep blood, universal chromogenic medium, Veilonella agar, anaerobic agar, Clostridium agar , lactobacillus agar, Brucella agar with 7% defibrinated sheep blood using the "lawn" technique. Then disks with antibacterial preparations are placed on the surface of nutrient media: ampicillin 10 µg, ciprofloxacin 5 µg, erythromycin 15 µg; then seeded cups with disks with antibacterial drugs are incubated under anaerobic conditions for 120 hours at a temperature of 37°C.

В предложенном способе первичного посева биоматериала, выделенного из полости рта пациентов с болезнями пародонта при стоматологическом обследовании предусмотрены оптимальные условия для выделения клинически значимых микроорганизмов: набор из 7 питательных сред, инкубация в анаэробных условиях позволяют выявить максимальное количество видов неприхотливых и трудно культивируемых микроорганизмов; добавление 3 дисков с антибактериальными препаратами при культивировании засеянных чашек в анаэробных условиях ингибирует рост нормальной микрофлоры слизистой полости рта, способной подавить выделение клинически значимых бактерий. In the proposed method for the primary inoculation of biomaterial isolated from the oral cavity of patients with periodontal diseases during a dental examination, optimal conditions are provided for the isolation of clinically significant microorganisms: a set of 7 nutrient media, incubation under anaerobic conditions make it possible to identify the maximum number of species of unpretentious and difficult to cultivate microorganisms; the addition of 3 antibacterial disks when cultivating inoculated plates under anaerobic conditions inhibits the growth of normal microflora of the oral mucosa, which can suppress the isolation of clinically significant bacteria.

Осуществление предлагаемого способа можно продемонстрировать на следующих примерах:The implementation of the proposed method can be demonstrated by the following examples:

Пример 1. Example 1

Пациент Н., 45 лет. Диагноз: хронический пародонтит. В лабораторию поступил материал, полученный при стоматологическом исследовании - отделяемое пародонтального кармана. Произведен первичный посев двумя способами: способом, описанном в прототипе, а также предлагаемым нами способом. Были получены следующие результаты:Patient N., 45 years old. Diagnosis: chronic periodontitis. The laboratory received the material obtained during the dental examination - detachable periodontal pocket. Produced primary sowing in two ways: the method described in the prototype, as well as our proposed method. The following results were obtained:

Способ посева, указанный в прототипеThe sowing method specified in the prototype Предлагаемый нами способOur proposed method 5% кровяной агар с дефибринированной бараньей кровью5% defibrinated sheep blood agar Streptococcus oralis 104
Streptococcus parasanguinis 103
Streptococcus oralis 10 4
Streptococcus parasanguinis 10 3
Streptococcus oralis 104
Streptococcus mitis 104
Streptococcus constellatus 104
Aggregatibacter aphrophilus 104
Streptococcus oralis 10 4
Streptococcus mitis 10 4
Streptococcus constellatus 10 4
Aggregatibacter aphrophilus 10 4
Универсальная хромогенная средаUniversal chromogenic medium Streptococcus oralis 105
Streptococcus mitis 104
Streptococcus parasanguinis 103
Streptococcus oralis 10 5
Streptococcus mitis 10 4
Streptococcus parasanguinis 10 3
Streptococcus oralis 104
Streptococcus mitis 103
Streptococcus parasanguinis 104
Streptococcus constellatus 104
Streptococcus oralis 10 4
Streptococcus mitis 10 3
Streptococcus parasanguinis 10 4
Streptococcus constellatus 10 4
Veilonella-агарVeilonella agar Neisseria perflava 103
Veilonella parvula 104
Neisseria perflava 10 3
Veilonella parvula 10 4
Neisseria perflava 103
Veilonella parvula 104
Lactobacillus salivarius 104
Neisseria perflava 10 3
Veilonella parvula 10 4
Lactobacillus salivarius 10 4
Агар для анаэробовAgar for anaerobes Streptococcus anginosus 103
Streptococcus oralis 103
Actinomyces odontolyticus 103
Streptococcus anginosus 10 3
Streptococcus oralis 10 3
Actinomyces odontolyticus 10 3
Capnocytophaga ochracea 104
Eikenella corrodens 104
Streptococcus anginosus 104
Streptococcus oralis 104
Actinomyces odontolyticus 103
Capnocytophaga ochracea 10 4
Eikenella corrodens 10 4
Streptococcus anginosus 10 4
Streptococcus oralis 10 4
Actinomyces odontolyticus 10 3
Clostridium-агарClostridium agar Streptococcus anginosus 104
Streptococcus constellatus 104
Streptococcus anginosus 10 4
Streptococcus constellatus 10 4
Streptococcus anginosus 104
Capnocytophaga ochracea 104
Streptococcus constellatus 103
Actinomyces odontolyticus 104
Streptococcus anginosus 10 4
Capnocytophaga ochracea 10 4
Streptococcus constellatus 10 3
Actinomyces odontolyticus 10 4
Агар для лактобактерийAgar for lactobacilli Lactobacillus salivarius 104 Lactobacillus salivarius 10 4 Streptococcus gordonii 104
Eikenella corrodens 104
Lactobacillus salivarius 104
Streptococcus gordonii 10 4
Eikenella corrodens 10 4
Lactobacillus salivarius 10 4
-- Brucella-агар с 7% дефибринированной бараньей кровьюBrucella agar with 7% defibrinated sheep blood -- Eikenella corrodens 105
Aggregatibacter aphrophilus 105
Leptotrichia hofstadii 104
Prevotella intermedia 104
Eikenella corrodens 10 5
Aggregatibacter aphrophilus 10 5
Leptotrichia hofstadii 10 4
Prevotella intermedia 10 4

Таким образом, благодаря применению предлагаемого нами способа был получен рост 15 видов микроорганизмов на питательных средах, в то время как при использовании способа, указанного в прототипе, был получен рост 10 видов микроорганизмов. При использовании предлагаемого нами способа посева был получен рост клинически значимой анаэробной парадонтопатогенной флоры - Aggregatibacter aphrophilus, Capnocytophaga ochracea, Prevotella intermedia, Streptococcus gordonii, что было бы невозможно получить при использовании только перечня питательных сред, указанного в прототипе, а также без применения дисков с антибактериальными препаратами ввиду метаболических особенностей, указанных микроорганизмов. Thus, thanks to the application of our proposed method, the growth of 15 types of microorganisms on nutrient media was obtained, while using the method specified in the prototype, the growth of 10 types of microorganisms was obtained. When using our method of sowing, the growth of clinically significant anaerobic paradontopathogenic flora was obtained - Aggregatibacter aphrophilus, Capnocytophaga ochracea, Prevotella intermedia, Streptococcus gordonii, which would be impossible to obtain using only the list of nutrient media specified in the prototype, and also without the use of disks with antibacterial drugs due to the metabolic characteristics of these microorganisms.

Пример 2:Example 2:

Пациент Т., 54 года. Диагноз: хронический пародонтит. В лабораторию поступил материал, полученный при стоматологическом исследовании - отделяемое пародонтального кармана. Произведен первичный посев двумя способами: способом, описанном в прототипе, а также предлагаемым нами способом. Были получены следующие результаты:Patient T., 54 years old. Diagnosis: chronic periodontitis. The laboratory received the material obtained during the dental examination - detachable periodontal pocket. Produced primary sowing in two ways: the method described in the prototype, as well as our proposed method. The following results were obtained:

Способ посева, указанный в прототипеThe sowing method specified in the prototype Предлагаемый нами способOur proposed method 5% кровяной агар с дефибринированной бараньей кровью5% defibrinated sheep blood agar Streptococcus vestibularis 105
Staphylococcus aureus 104 Streptococcus constellatus 104
Rothia dentocariosa 105
Streptococcus vestibularis 10 5
Staphylococcus aureus 10 4 Streptococcus constellatus 10 4
Rothia dentocariosa 10 5
Streptococcus vestibularis 105
Staphylococcus aureus 103
Streptococcus constellatus 104
Rothia dentocariosa 105
Fusobacterium nucleatum 103
Porphyromonas gingivalis 103
Streptococcus vestibularis 10 5
Staphylococcus aureus 10 3
Streptococcus constellatus 10 4
Rothia dentocariosa 10 5
Fusobacterium nucleatum 10 3
Porphyromonas gingivalis 10 3
Универсальная хромогенная средаUniversal chromogenic medium Streptococcus vestibularis 104
Staphylococcus aureus 103
Rothia dentocariosa 104
Streptococcus vestibularis 10 4
Staphylococcus aureus 10 3
Rothia dentocariosa 10 4
Streptococcus vestibularis 105
Staphylococcus aureus 103
Rothia dentocariosa 105
Streptococcus vestibularis 10 5
Staphylococcus aureus 10 3
Rothia dentocariosa 10 5
Veilonella-агарVeilonella agar Veilonella parvula 104 Veilonella parvula 10 4 Veilonella parvula 104
Veilonella atypica 103
Veilonella parvula 10 4
Veilonella atypica 10 3
Агар для анаэробовAgar for anaerobes Actinomyces odontolyticus 103
Streptococcus constellatus 104
Actinomyces odontolyticus 10 3
Streptococcus constellatus 10 4
Actinomyces odontolyticus 103
Streptococcus constellatus 104
Actinomyces oris 103
Actinomyces odontolyticus 10 3
Streptococcus constellatus 10 4
Actinomyces oris 10 3
Clostridium-агарClostridium agar Actinomyces odontolyticus 103
Streptococcus constellatus 103
Actinomyces odontolyticus 10 3
Streptococcus constellatus 10 3
Actinomyces odontolyticus 103
Streptococcus constellatus 104
Actinomyces odontolyticus 10 3
Streptococcus constellatus 10 4
Агар для лактобактерийAgar for lactobacilli Lactobacillus salivarius 104
Lactobacillus fermentum 103
Lactobacillus salivarius 10 4
Lactobacillus fermentum 10 3
Lactobacillus salivarius 103
Lactobacillus fermentum 104
Lactobacillus salivarius 10 3
Lactobacillus fermentum 10 4
-- Brucella-агар с 7% дефибринированной бараньей кровьюBrucella agar with 7% defibrinated sheep blood -- Actinomyces oris 104
Actinomyces odontolyticus 104
Aggregatibacter aphorophilis 103
Streptococcus intermedius 105
Fusobacterium nucleatum 104
Porphyromonas gingivalis 103
Actinomyces oris 10 4
Actinomyces odontolyticus 10 4
Aggregatibacter aphorophilis 10 3
Streptococcus intermedius 10 5
Fusobacterium nucleatum 10 4
Porphyromonas gingivalis 10 3

Таким образом, благодаря применению предлагаемого нами способа был получен рост 14 видов микроорганизмов на питательных средах, в то время как при использовании способа, указанного в прототипе, был получен рост 10 видов микроорганизмов. При использовании предлагаемого нами способа посева был получен рост клинически значимой анаэробной парадонтопатогенной флоры - Veilonella atypica, Aggregatibacter aphrophilus, Fusobacterium nucleatum, Streptococcus intermedius, Porphyromonas gingivalis что было бы невозможно получить при использовании только перечня питательных сред, указанного в прототипе, а также без применения дисков с антибактериальными препаратами ввиду метаболических особенностей, указанных микроорганизмов. Thus, thanks to the use of our proposed method, the growth of 14 types of microorganisms on nutrient media was obtained, while using the method specified in the prototype, the growth of 10 types of microorganisms was obtained. When using our method of seeding, the growth of clinically significant anaerobic paradontopathogenic flora was obtained - Veilonella atypica, Aggregatibacter aphrophilus, Fusobacterium nucleatum, Streptococcus intermedius, Porphyromonas gingivalis, which would be impossible to obtain using only the list of nutrient media specified in the prototype, and also without the use of disks with antibacterial drugs due to the metabolic characteristics of these microorganisms.

Предлагаемый способ позволяет оценить качественный и количественный состав микрофлоры слизистых оболочек ротовой полости, выявлять и дифференцировать парадонтопатогенные виды бактерий, что способствует оптимизации терапии пациентов с заболеваниями тканей пародонта. The proposed method allows to evaluate the qualitative and quantitative composition of the microflora of the mucous membranes of the oral cavity, to identify and differentiate paradontopathogenic bacteria, which helps to optimize the therapy of patients with periodontal tissue diseases.

Claims (1)

Способ первичного посева отделяемого из пародонтальных карманов, включающий взятие биоматериала из пародонтального кармана пациента с пародонтитом, отличающийся тем, что одноразовый зонд с биоматериалом помещается в пробирку с 2 мл тиогликолиевой питательной транспортной среды и в течение 2 часов доставляется в бактериологическую лабораторию, где после вортексирования проводится посев материала из тиогликолевой среды в объеме по 50 мкл на каждую из 7 питательных сред: 5% кровяной агар с дефибринированной бараньей кровью, универсальную хромогенную среду, Veilonella-агар, агар для анаэробов, Clostridium-агар, агар для лактобактерий, Brucella-агар с добавлением 7% дефибринированной бараньей крови; после посева на поверхность питательных сред помещают диски с антибактериальными препаратами: ампициллин 10 мкг, ципрофлоксацин 5 мкг, эритромицин 15 мкг; далее засеянные чашки с дисками с антибактериальными препаратами инкубируются в анаэробных условиях в течение 120 часов при температуре 37°С.A method for primary seeding of discharge from periodontal pockets, including taking biomaterial from the periodontal pocket of a patient with periodontitis, characterized in that a disposable probe with biomaterial is placed in a test tube with 2 ml of thioglycol nutrient transport medium and delivered to a bacteriological laboratory within 2 hours, where, after vortexing, inoculation of material from thioglycol medium in a volume of 50 µl for each of 7 nutrient media: 5% blood agar with defibrinated sheep blood, universal chromogenic medium, Veilonella agar, anaerobic agar, Clostridium agar, lactobacillus agar, Brucella agar with adding 7% defibrinated sheep blood; after sowing, disks with antibacterial drugs are placed on the surface of nutrient media: ampicillin 10 µg, ciprofloxacin 5 µg, erythromycin 15 µg; then seeded cups with disks with antibacterial drugs are incubated under anaerobic conditions for 120 hours at a temperature of 37°C.
RU2022126835A 2022-10-15 Method for primary plating of periodontal pockets RU2794355C1 (en)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2794355C1 true RU2794355C1 (en) 2023-04-17

Family

ID=

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU180687U1 (en) * 2017-12-29 2018-06-21 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Самарский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации TOOL FOR COLLECTING THE CONTENT OF THE PERIODONTAL POCKET
RU2773275C1 (en) * 2021-07-26 2022-06-01 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Дальневосточный государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО ДВГМУ Минздрава России) Method for predicting the severity of periodontitis by the composition of conditionally periodontopathogenic species of the microbiome of the root of the tongue
US20220186176A1 (en) * 2020-12-14 2022-06-16 The First Affiliated Hospital Of Henan University Of Science And Technology Medium for primary isolation of porphyromonas gingivalis, and a medium for preparing the medium and use thereof

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU180687U1 (en) * 2017-12-29 2018-06-21 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Самарский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации TOOL FOR COLLECTING THE CONTENT OF THE PERIODONTAL POCKET
US20220186176A1 (en) * 2020-12-14 2022-06-16 The First Affiliated Hospital Of Henan University Of Science And Technology Medium for primary isolation of porphyromonas gingivalis, and a medium for preparing the medium and use thereof
RU2773275C1 (en) * 2021-07-26 2022-06-01 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Дальневосточный государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО ДВГМУ Минздрава России) Method for predicting the severity of periodontitis by the composition of conditionally periodontopathogenic species of the microbiome of the root of the tongue
RU2779641C1 (en) * 2022-03-01 2022-09-12 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Самарский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации Method for primary seeding of biomaterial isolated from the oral cavity of patients with cystic fibriosis during dental examination

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
MYSAK J. et al., Porphyromonas gingivalis: major periodontopathic pathogen overview. J Immunol Res. 2014. Vol. 2014. Art. 476068. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Lo et al. Newly discovered mycoplasma isolated from patients infected with HIV
Yang et al. Evaluation of the susceptibility of multispecies biofilms in dentinal tubules to disinfecting solutions
Waseem et al. Isolation and identification of major mastitis causing bacteria from clinical cases of bovine mastitis in Kashmir Valley
RU2794355C1 (en) Method for primary plating of periodontal pockets
Justesen et al. Anaerobic infections in chronic prostatitis and chronic urethritis
Domingue et al. The possible role of microbial L-forms in pyelonephritis
Karim et al. Aerobic and anaerobic bacteria in tonsils of different ages with recurrent tonsillitis
RU2779641C1 (en) Method for primary seeding of biomaterial isolated from the oral cavity of patients with cystic fibriosis during dental examination
Sabiston et al. The microbiology of dentalpyogenic infections
Rusinovci et al. Bacteria that cause dentoalveolar abscesses after failed endodontic treatments: a pilot study
Maniruzzaman et al. Isolation and identification of bacterial flora from milk of apparently healthy buffalo-cows
RU2768493C1 (en) Method for diagnosing degree of periodontitis by determining proteinolytic activity of oral fluid microorganisms
RU2642322C1 (en) Bacterial strains kit used for training on microbiology and plague laboratory diagnostics methods
Hessan et al. PHENOTYPIC DETECTION OF SOME VIRULENCE FACTORS AMONG STREPTOCOCCUS ANGINOSUS ISOLATED FROM PATIENTS SUFFERING FROM ACUTE INFLAMMATION AFTER SURGICAL TOOTH EXTRACTION
Ayop et al. Design investigation about oral microbes causing dental caries of children under 12 years
Hamdoon Prevalence of anaerobic bacteria in periodontitis in relation to pocket depth
Tejashree et al. Isolation and identification of anaerobic organisms in dentoalveolar abscess: A descriptive study
Vlad et al. Phenotypic characterization of gram-positive cocci strains isolated from infections localized in the oro-maxillo-facial sphere
Al-Ezee et al. Detection of the effect of some resistance antibiotics on Staphylococcus aureus isolated from urinary tract infections and molecular investigation of the clfA gene encoding the biofilm
UA120725C2 (en) METHOD FOR DETERMINATION OF ANTIBACTERIAL ACTIVITY OF HONEY AGAINST KLEBSIELLA PNEUMONIAE
Hasan et al. Antibiofilm activity of fructophilic lactic acid bacteria filtrate against Klebsiella pneumoniae virulence gene expression
Murakami et al. Growth of Bacteroides fragilis inoculated on rabbit tracheal explant in an atmospheric environment
Alfaro et al. Applied Microbiology: Open Access
Konar et al. An Initial Study on Normal Commensel Flora of Throat
Pan et al. Acute death of kangaroos in a zoo due to highly pathogenic Corynebacterium pseudotuberculosis and Yersinia pseudotuberculosis