RU2786886C1 - Средство для дезинвазии объектов внешней среды против ооцист эймерий индеек - Google Patents

Средство для дезинвазии объектов внешней среды против ооцист эймерий индеек Download PDF

Info

Publication number
RU2786886C1
RU2786886C1 RU2022105908A RU2022105908A RU2786886C1 RU 2786886 C1 RU2786886 C1 RU 2786886C1 RU 2022105908 A RU2022105908 A RU 2022105908A RU 2022105908 A RU2022105908 A RU 2022105908A RU 2786886 C1 RU2786886 C1 RU 2786886C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
eimeria
oocysts
turkeys
disinfection
turkey
Prior art date
Application number
RU2022105908A
Other languages
English (en)
Inventor
Ринат Туктарович Сафиуллин
Эльвира Ивановна Чалышева
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный научный центр - Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии им. К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук" (ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный научный центр - Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии им. К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук" (ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН) filed Critical Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный научный центр - Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии им. К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук" (ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН)
Application granted granted Critical
Publication of RU2786886C1 publication Critical patent/RU2786886C1/ru

Links

Abstract

Изобретение относится к области ветеринарии, а именно ветеринарной паразитологии, и может быть использовано в индейководческих хозяйствах промышленного типа при заболеваниях молодняка индеек эймериозом. Средство для дезинвазии объектов внешней среды против ооцист эймерий индеек включает следующие компоненты, мас. %: парахлорметаксиленол - 27; сульфоновая кислота - 12; изопропанол - 14; молочная кислота - 4; поверхостно-активные вещества - 17; вода - до 100. Полученное средство обладает высокой эффективностью против ооцист эймерий индеек, пригодно для применения как ручным, так и механическим способом, не оказывает коррозионное воздействие на имеющееся в птицеводческих помещениях технологическое оборудование. 1 табл., 2 пр.

Description

Изобретение относится к области ветеринарии, а именно ветеринарной паразитологии и может быть использовано в индейководческих хозяйствах промышленного типа при заболеваниях молодняка индеек эймериозом.
Индейководство - важный источник увеличения производства высококачественного птичьего мяса. Опыт работы успешных хозяйств показывает, что разведение индеек в хозяйствах промышленного типа позволяет резко поднять эффективность производства. Индейка - одна из самых крупных сельскохозяйственных птиц. Масса взрослых самцов достигает 20-30 кг, самок - 8-10 кг. Мясо индейки содержит все необходимые ингредиенты и практически может полностью удовлетворить потребность человека в животном белке, является отличным сырьем для глубокой переработки и приготовления разнообразных диетических продуктов, рекомендованных при гипертонической болезни, атеросклерозе, заболеваниях желудочно-кишечного тракта и других.
В настоящее время в условиях промышленного птицеводства, когда на ограниченной территории содержится большое поголовье птицы, существует большой риск возникновения паразитарных заболеваний - эймериоза, криптоспоридиоза, гистомоноза и других [1, 4].
Лечебно-профилактические мероприятия, которые проводятся на данный момент в индейководческих хозяйствах промышленного типа, не всегда обеспечивают должный результат, поэтому паразитарные болезни продолжают беспокоить их и приносят им весомый экономический ущерб. Об этом свидетельствуют работы отечественных и зарубежных ветеринарных паразитологов [2, 3, 5].
Проведенными исследованиями установлено, что любое птицеводческое хозяйство, практикующее напольное содержание птиц, неблагополучно по паразитарным болезням и наиболее часто кокцидиозом. Работами ученых установлено, что в кишечнике молодняка индеек паразитируют семь видов эймерий (Eimeria spp.), а в числе наиболее патогенных и распространенных следует отметить: Eimeria meleagridis, Е. dispersa, Е. meleagrimitis, Е. adenoides, Е. gallopavonis. В условиях птицеводческих хозяйств у молодняка индеек весьма часто имеет место смешанная инвазия, обусловленная паразитированием нескольких видов эймерий одновременно, при этом они поражают как тонкий, так и толстый отделы кишечника оказывая наибольшее патогенное действие организму птицы.
Эймериоз индеек (кокцидиоз) - острая, подострая, или хроническая болезнь молодняка птиц в возрасте от 7 до 90 суток и более, проявляющаяся истощением, вялостью молодняка, энтеритом, колитом, диарея, потерей массы и снижением продуктивности. При смешанной инвазии с высокой интенсивностью наиболее часто отмечают массовую гибель молодняка. Источником данной инвазии является больная эймериозом птица, а также переболевшие в течение определенного времени. Передача инвазии в неблагополучных хозяйствах происходит через загрязненные спорулированными ооцистами подстилку, кормушки, корма, воду и инвентарь. Механическими разносчиками ооцист эймерий часто являются синантропные птицы, грызуны, насекомые: мухи, тараканы, сверчки, а также обслуживающий персонал - на обуви, одежде и предметах ухода за птицей. Различные нарушения технологии выращивания молодняка такие как повышенная влажность воздуха и подстилки, скученность птицы в помещениях, неполноценное кормление, контакт между индюшатами и птицей старших возрастных групп и нарушения ветеринарно-санитарных правил способствуют широкому распространению эймериоза среди молодняка.
Кроме того, ооцисты кокцидий птиц весьма устойчивы во внешней среде и способны сохранять свою жизнеспособность в условиях средней полосы России больше года.
При организации противопаразитарных мероприятий необходимо исходить из того, что эпизоотический процесс при паразитозах птиц, как и при многих заразных болезнях, состоит из трех звеньев: источник инвазии, факторы передачи и восприимчивые животные. Воздействуя на факторы передачи инвазии можно прервать эту цепочку, уничтожая экзогенную стадию развития эймерий.
Для борьбы с эймериозом птиц предложено большое количество средств, как против эндогенных стадий, так и экзогенных. Актуальность проблемы ставит задачи перед исследователями - разработать средства и способы дезинвазии объектов внешней среды против ооцист кокцидий птиц.
Среди рекомендованных средств, которые применяют против экзогенных стадий кокцидий следует отметить: 4,0%-й раствор едкого натра, который должен иметь температуру не ниже 80°С; 7,0%-й раствор аммиака; 2,0%-я эмульсия ортохлорфенола; 10%-й раствор однохлористого йода [3]. Отмеченные выше средства дезинвазии применяют во многих животноводческих хозяйствах, но их эффективность не устраивает запросы птицеводства на промышленной основе. В современных условиях нужны комбинированные средства, состоящие из нескольких действующих веществ (ДВ) и вспомогательных компонентов.
В числе таковых уместно рассматривать комплексное средство, имеющее в своем составе в качестве действующих веществ: парахлорметаксиленол, сульфоновую кислоту, изопропанол, молочную кислоту и вспомогательные компоненты, при их совместном применении в оптимальных концентрациях.
Из ранее отмеченных веществ первые три: парахлорметаксиленол, сульфоновая кислота и изопропанол, известны как высокоэффективные дезинфицирующие средства для наружного применения. Входящее в состав рассматриваемого средства следующее вещество - молочная кислота, является антисептиком и оказывает действие на оболочку ооцист эймерий, облегчая доступ действующим веществам.
При совместном применении отмеченных составляющих против ооцист эймерий индеек они оказывают синергетическое действие на паразитарный объект, а используемые вспомогательные компоненты - поверхностно-активные вещества, способствуют очищению пола птичников, стен и технологического оборудования от биозагрязнений и равномерно распределяют ДВ по поверхности.
В задачу наших исследований входило разработать эффективное средство дезинвазии против ооцист эймерий индеек доступными средствами, пригодными для применения как ручным, так и механическим способом, не оказывая коррозионное воздействие на имеющееся в птицеводческих помещениях технологическое оборудование.
Решение поставленной задачи достигается тем, что в качестве средства дезинвазии против ооцист эймерий индеек было использовано составленное нами комплексное средство «Токицид», имеющее следующий состав: действующие вещества - парахлорметаксиленол 27,0%, сульфоновая кислота 12,0%, изопропанол 14,0%, молочная кислота 4,0% и вспомогательные компоненты - поверхностно-активные вещества - 17,0%, вода до 100%.
Из доступных заявителю источников информации не известна указанная совокупность существующих признаков, позволяющих получать указанный технический результат, поэтому заявляемое изобретение соответствует условию патентоспособности «новизна».
Заявителю также не известны средства аналогичного назначения, в которых были раскрыты отличительные признаки заявляемого изобретения с получением от использования его в какой-либо совокупности признаков указанного технического результата. Следовательно, заявляемое изобретение соответствует условию патентоспособности «изобретательский уровень».
Доказательства промышленной применимости заявляемого приводятся в следующих примерах.
Пример 1. Приготовление рабочих растворов, разведение культуры ооцист кокцидий индеек и проведение лизис-теста с разными концентрациями средства дезинвазии
Исследования по рассматриваемой проблеме проводили в условиях лаборатории Всероссийского научно-исследовательского института фундаментальной и прикладной паразитологии животных и растений -филиал ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН (г. Москва).
Рабочий раствор с разными концентрациями комбинированного средства «Токицид» готовили следующим образом. В приготовленные четыре стеклянные колбы на 1 л наливали по 700 мл дистиллированной воды и в первые три из них добавляли по 10; 20 и 30 мл средства, тщательно размешивали в течение пяти минут, объем доводили до 1 литра, снова размешивали в течение 5 минут и раствор был готов к использованию. В четвертую колбу к 700 мл воды добавляли 40 г кристаллического фенола, размешивали, объем доводили до 1 литра, снова размешивали, дали отстояться и раствор был готов к использованию.
Приготовление культуры ооцист Eimeria spp.индеек.
Для сбора ооцист использовали фекалии спонтанно зараженных эймериями молодняка индеек 26-35-суточного возраста при напольной технологии их содержания на птицефабрике. Доставленный из хозяйства материал от зараженных индюшек исследовали флотационным методом Фюллеборна. Поверхностную пленку из стаканов снимали с помощью паразитологической петли и собирали в чашку Петри с дихлорированной водой, трижды отмывали ооцист от соли, подсчитывали их количество в 1 мл, перемешивали со слоем консерванта - 2%-ный раствор бихромата калия и использовали в дальнейшей работе - при культивировании их в термостате в условиях лаборатории при температуре +26°С. В процессе культивирования, который проходил в течение шести дней, ежедневно проводили аэрацию культуры (40 минут), а с четвертого дня проводили осмотр и оценку культуры ооцист под микроскопом. Заключительную оценку культуры проводили через шесть дней культивирования, определяли процент споруляции, который составил 97%. Для разведения готовой культуры использовали буфер SWH. При приготовлении, которого к 3300 мл дистиллированной воды добавили 17,5 мл 10%-ного раствора хлорида кальция и 5 мл 10%-ного раствора сульфата магния, автоклавировали в течение 20 минут при 120°С, рн раствора определяли с помощью прибора «Авилон-410».
Лизис-тест культуры ооцист Eimeria spp.с приготовленными концентрациями средства (1; 2 и 3%-ные растворы средства и 4%-й фенол) проводили в условиях лаборатории. При этом в 250 мл колбы Эрленмейера поместили по 50 мл приготовленного средства, фенола и буфера SWH по отдельности и добавили по 50 мл раствора с ооцистами кокцидий в концентрации 2000 ооцист/мл. После чего колбы с содержимым ставили на вибростолик со скоростью 100 об/минуту на 2 часа.
По истечении времени содержимое из колбы выливали в пластиковую бутылку с завинчивающийся крышкой объемом 1500 мл, колбу с остатком раствора ополаскивали несколько раз и сливали в пластиковую бутылку и объем доводили буфером до 1500 мл. Перемешивали содержимое бутылки путем переворачивания (три раза) и оставляли при комнатной температуре (22±2°С) на 24 часа. Затем раствор сливали до отметки 30 мл, а осадок переливали в новую емкость объемом 100 мл, пластиковую бутылку ополаскивали несколько раз с использованием буфера, доводя объем до 50 мл и использовали в дальнейшей работе.
Пример 2. Биопроба по экспериментальному заражению индюшат для определения эффективности средства для дезинвазии птичников
Определение эффективности разных концентраций средства для дезинвазии проводили в условиях экспериментального хозяйства ранее отмеченного института на 60 индюшатах 21-дневного возраста, свободных от кокцидий и их корма не содержали антикокцидийные препараты. Опытных индюшат взвешивали индивидуально, пронумеровали, по принципу аналогов разделили на 6 групп по 10 голов в каждой, содержали их в клетках изолировано и подвергали клиническому обследованию. Для контроля концентрации ооцист (2000 экз./мл) кокцидий использовали камеру Мак Мастера и микроскопа МБС. Для разведения культуры применяли буфер SWH с таким расчетом, чтобы было возможно задавать 2 мл суспензии каждой птице с общим количеством ооцист 4000 экз./гол.
Индюшатам 1, 2 и 3 групп задавали внутрь при помощи микропипетки, постепенно по 2 мл суспензии ооцист эймерий, обработанной 1 -, 2 и 3%-ной растворами комплексного средства. Индюшатам 4 группы - по 2 мл суспензии ооцист эймерий, обработанной 4%-м раствором фенола. Индюшатам 5-й группы назначали внутрь 2 мл суспензию ооцист в дозе 2000 экз/мл в разведении с буфером, они служили зараженным контролем. Индюшата 6-й группы - по 2 мл буферного раствора, они служили незараженным контролем.
В ходе опыта индюшата всех шести групп находились в аналогичных условиях содержания и имели одинаковый рацион. За ними проводили ежедневные клинические наблюдения: за общим состоянием, их поведением, приемом корма и воды, видимыми физиологическими изменениями.
Для установления выделения ооцист эймерий в фекалиях от индюшат каждой группы отдельно с 6 по 12 сутки после дачи инвазионного материала ежедневно собирали весь помет, взвешивали, добавляли воду до массы 2000 г, смешивали смесителем в течение пяти минут. Пробы для дальнейших исследований отбирали из каждой группы в количестве 25 г, консервировали 4%-ным раствором бихромата калия, доводили до однородной массы и хранили при +4°С в холодильнике.
Наличие ооцист в фекалиях определяли флотационным методом Фюллеборна с использованием насыщенного раствора хлористого натрия, плотностью 1,18 г/см3, а количество ооцист/г фекалий подсчитывали с использованием камеры Мак Мастера.
Эффективность разных концентраций средства и 4%-ной концентрации фенола устанавливали, исходя из процента снижения выделения ооцист эймерий после воздействия на них отмеченными концентрациями средства дезинвазии, по сравнению с индюшатами зараженного контроля.
При исследовании опытных индюшат первой группы, которым задавали суспензию ооцист, обработанную 1%-ной концентрацией средства, ооцист эймерий в фекалиях находили через две, три и пять суток в количестве 9, 15 и 19 экземпляров, средний показатель в одной камере за период исследований 3,71. В 1 г фекалий индюшат первой группы обнаружил 742 экз. ооцист, что в проценте от контроля 9,39 (табл.1). Интенсэффективность «средства» в 1%-й концентрации или процент снижения ооцист после воздействия на них средством составила:
Figure 00000001
У индюшат второй и третьей групп, которым назначали суспензию ооцист, обработанную 2 и 3%-ной концентрациями средства, при исследовании проб фекалий ни в одном случае ооцист не находили, что свидетельствует о 100%-й эффективности средства в отмеченных концентрациях против ооцист эймерий индюшат.
У индюшат четвертой группы после назначения суспензии ооцист эймерий, обработанной 4%-ной концентрацией фенола (базовый препарат), ооцист эймерий в фекалиях находили во все сроки исследований в количестве от 4 до 28 в камере, средний показатель в камере за период исследований 9,64. В г фекалий обнаружили 1928 экз. ооцист эймерий или 24,40% от контроля. Интенсэффективность фенола в 4%-й концентрации против ооцист эймерий индеек составила 75,6%.
Индюшата пятой группы, получавшие 2000 ооцист/мл, во все сроки исследований с фекалиями выделяли ооцист эймерий в количестве от 22 до 57 в камере, средний показатель за период исследований 39,5. В г фекалий при исследовании обнаружили 7900 экз. ооцист эймерий и данный показатель был использован нами как исходный при расчете интенсэффективности испытанного средства и базового препарата.
По результатам проведенных исследований интенсэффективность средства в 1,0%-й концентрации против ооцист эймерий индюшат составила 90,61%, в концентрациях 2 и 3,0% испытанное средство показало против эймерий 100%-ю эффективность, а базовый препарат фенол 4,0%-й обеспечил 75,6%-ю интенсэффективность.
Исходя из полученных результатов для борьбы с экзогенной стадией развития эймерий индюшек испытанное средство в 2%-й концентрации рекомендуем использовать в индейководческих хозяйствах промышленного типа для дезинвазии птичников при их подготовке к заселению молодняком.
Источники информации
1. Акбаев М.Ш., Василевич Ф.И., Акбаев P.M., Водянов А.А., Косминков Н.Е., Пашкин П.И., Ятусевич А.И. Паразитология и инвазионные болезни животных; под ред. М.Ш. Акбаева. - 3-е изд., перераб. и доп. - М.: Колос, 2008. - 776 с.
2. Вершинин, И.И. Кокцидиозы животных и их дифференциальная диагностика / И.И. Вершинин. - Екатеринбург, 1996. - 264 с.
3. Методические рекомендации по борьбе с эймериозами с изоспорозами животных. - М., 1994, РАСХН. - 30 с.
4. Сафиуллин Р.Т. Паразитарные болезни птиц, средства и методы борьбы. - М., 2019. - 260 с.
5. Чалышева Э.И., Сафиуллин Р.Т. Распространение кишечных паразитических простейших у молодняка индеек на птицефабриках Центральной России // Российский паразитологический журнал. - М., 2019. - Т. 13. - Вып. 3. - С. 71-74.
ПРИЛОЖЕНИЕ
Figure 00000002

Claims (2)

  1. Средство для дезинвазии объектов внешней среды против ооцист эймерий индеек, включающее компоненты, мас. %:
  2. парахлорметаксиленол 27 сульфоновая кислота 12 изопропанол 14 молочная кислота 4 поверхостно-активные вещества 17 вода до 100
RU2022105908A 2022-03-05 Средство для дезинвазии объектов внешней среды против ооцист эймерий индеек RU2786886C1 (ru)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2786886C1 true RU2786886C1 (ru) 2022-12-26

Family

ID=

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2193416C2 (ru) * 1999-05-05 2002-11-27 Всероссийский научно-исследовательский институт гельминтологии им. К.И.Скрябина Средство для дезинвазии
RU2454995C1 (ru) * 2011-03-04 2012-07-10 Государственное научное учреждение (ГНУ) Всероссийский научно-исследовательский институт гельминтологии им. К.И. Скрябина (ВИГИС) Способ дезинвазии против ооцистов кокцидий птиц
UA85722U (ru) * 2013-06-17 2013-11-25 Сумской Национальный Аграрный Университет Способ обеззараживания навоза в животноводческих хозяйствах
RU2640500C1 (ru) * 2017-06-30 2018-01-09 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт фундаментальной и прикладной паразитологии животных и растений имени К.И. Скрябина (ФГБНУ "ВНИИП им. К.И. Скрябина") Способ дезинвазии против ооцист кокцидий птиц

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2193416C2 (ru) * 1999-05-05 2002-11-27 Всероссийский научно-исследовательский институт гельминтологии им. К.И.Скрябина Средство для дезинвазии
RU2454995C1 (ru) * 2011-03-04 2012-07-10 Государственное научное учреждение (ГНУ) Всероссийский научно-исследовательский институт гельминтологии им. К.И. Скрябина (ВИГИС) Способ дезинвазии против ооцистов кокцидий птиц
UA85722U (ru) * 2013-06-17 2013-11-25 Сумской Национальный Аграрный Университет Способ обеззараживания навоза в животноводческих хозяйствах
RU2640500C1 (ru) * 2017-06-30 2018-01-09 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт фундаментальной и прикладной паразитологии животных и растений имени К.И. Скрябина (ФГБНУ "ВНИИП им. К.И. Скрябина") Способ дезинвазии против ооцист кокцидий птиц

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
САФИУЛЛИН Р.Т. и др. Комплексное средство Вирукилл 260 против яиц аскаридий у кур. Птицеводство, N2, 2021, с.59-63. САФИУЛЛИН Р.Т. и др. Эффективность комплексного препарата Делеголь против ооцист эймерий птиц. Sciences of Europe, N2(2), 2016, с.115-19. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RU2336885C1 (ru) Способ выводимости гусиных яиц
RU2640500C1 (ru) Способ дезинвазии против ооцист кокцидий птиц
Khushnazarov et al. DIAGNOSTICS OF RABBIT EMERIOSIS
O’Rourke et al. Biology and diseases of reptiles
US20200345794A1 (en) Composition for improving the well-being of animals
Paliy et al. Effectiveness of a modern antiparasitic agent for deworming in domestic animals
Ergashov et al. PROTECTION OF RABBITS FROM EYMERIOSIS (COCCIDIOSIS)
RU2673677C1 (ru) Средство для дезинвазии против цист букстонелл крупного рогатого скота
RU2786886C1 (ru) Средство для дезинвазии объектов внешней среды против ооцист эймерий индеек
Arisova Efficacy of ivermectin-based drugs against ectoparasites in broiler chickens
Doll et al. The use of peracetic acid to obtain germfree invertebrate eggs for gnotobiotic studies
RU2751602C1 (ru) Система мероприятий по борьбе с эндо- и экзогенными стадиями кокцидий цыплят-бройлеров при напольной технологии их содержания
Shkromada et al. DEVELOPMENT OF PREVENTING MEANS FOR RABBITS’COCCIDIOSIS
RU2687487C1 (ru) Способ дезинвазии против ооцист кокцидий лисиц и песцов
CN101795570B (zh) 用于灭活形成孢子的和/或未形成孢子的球虫亚纲寄生虫的水性组合物
Safiullin et al. Experimental model of coccidiosis caused by Eimeria Tenella in broiler chickens
RU2748168C1 (ru) Средство для дезинвазии объектов внешней среды
RU2802317C1 (ru) Средство дезинвазии против паразитических простейших молодняка крупного рогатого скота
RU2727519C1 (ru) Средство для дезинвазии объектов внешней среды
RU2581198C1 (ru) Способ трансовариального питания эмбрионов яичных кур на стадии инкубации яиц препаратом "селен-актив"
de Araújo et al. Efficacy of chlorine, sodium chloride and trichlorfon baths against monogenean Dawestrema cycloancistrium parasite of pirarucu Arapaima gigas
RU2787391C2 (ru) Способ дезинвазии против экзогенной стадии развития яиц аскаридий птиц
Delaski et al. Detection and management of air sac trematodes (Szidatitrema species) in captive multispecies avian exhibits
Juárez et al. Prevalence of Caryospora (Apicomplexa: Eimeriidae) oocysts in the environment of a gyrfalcon (Falco rusticolus) breeding center in the United Arab Emirates
RU2454995C1 (ru) Способ дезинвазии против ооцистов кокцидий птиц