RU2782056C2 - Labeled nucleotides and their use - Google Patents

Labeled nucleotides and their use Download PDF

Info

Publication number
RU2782056C2
RU2782056C2 RU2019139633A RU2019139633A RU2782056C2 RU 2782056 C2 RU2782056 C2 RU 2782056C2 RU 2019139633 A RU2019139633 A RU 2019139633A RU 2019139633 A RU2019139633 A RU 2019139633A RU 2782056 C2 RU2782056 C2 RU 2782056C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
nucleotide
redox
label
charge
labeled
Prior art date
Application number
RU2019139633A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2019139633A (en
RU2019139633A3 (en
Inventor
Джеффри МЭНДЕЛЛ
Стивен БАРНАРД
Джон МУН
Мариа Канделариа РОДЖЕРТ БАЧИГАЛУПО
Original Assignee
Иллюмина, Инк.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Иллюмина, Инк. filed Critical Иллюмина, Инк.
Priority claimed from PCT/US2019/017830 external-priority patent/WO2019160937A1/en
Publication of RU2019139633A publication Critical patent/RU2019139633A/en
Publication of RU2019139633A3 publication Critical patent/RU2019139633A3/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2782056C2 publication Critical patent/RU2782056C2/en

Links

Images

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: invention relates to labeled nucleotide for sequencing of nucleic acids, to a method for sequencing of nucleic acids, using it, and to a kit for sequencing of nucleic acids. The proposed labeled nucleotide contains nucleotide, a binding group attached to a phosphate group of the specified nucleotide, and a redox-active charger label attached to the binding group, wherein the specified redox-active charger label is to be oxidized or reduced by means of a current-conductive channel, when retained near a sensitive zone of the current-conductive channel. At the same time, the binding group contains an alkyl chain containing at least 6 carbon atoms, an amide group, a poly(ethylene glycol) chain containing at least 3 ethylene glycol links, and triazole, and the redox-active charger label is selected from a group consisting of ferrocene, zinc-tetrabenzoporphyrin, cobalt phthalocyanine, tris-(2,2'-bipyrimidine)ruthenium, 4-ferrocenylbenzyl alcohol, 5-(4-hydroxymethylphenyl)-10,15,20-trimesitylporphinate-zinc (II), and redox-active calixarene.
EFFECT: obtaining labeled nucleotides.
21 cl, 6 dwg

Description

ПЕРЕКРЕСТНАЯ ССЫЛКА НА РОДСТВЕННЫЕ ЗАЯВКИCROSS-REFERENCE TO RELATED APPLICATIONS

Данная заявка заявляет приоритет по первоначальной заявке США №62/710465, поданной 16 февраля 2018 года, содержание которой включено в данный документ во всей своей полноте посредством ссылки.This application claims priority over original US application No. 62/710465, filed February 16, 2018, the contents of which are incorporated herein in their entirety by reference.

ПРЕДШЕСТВУЮЩИЙ УРОВЕНЬ ТЕХНИКИPRIOR ART

Разные протоколы в биологическом или химическом исследовании включают проведение большого количества контролируемых реакций на локальных поверхностях подложек или в пределах предварительно определенных реакционных камер. За указанными реакциями можно затем наблюдать или их выявлять, и последующий анализ может помочь идентифицировать или обнаружить свойства химических веществ, участвующих в реакции. В некоторых примерах в контролируемых реакциях генерируются флуоресценция, и, таким образом, для выявления можно использовать оптическую систему. В других примерах контролируемые реакции изменяют заряд, проводимость или какое-нибудь другое электрическое свойство, и, таким образом, для выявления можно использовать электронную систему.Various protocols in biological or chemical research involve conducting a large number of controlled reactions on local substrate surfaces or within predefined reaction chambers. These reactions can then be observed or detected, and subsequent analysis can help identify or reveal the properties of the chemicals involved in the reaction. In some examples, fluorescence is generated in controlled reactions and thus an optical system can be used for detection. In other examples, controlled reactions change charge, conductivity, or some other electrical property, and thus an electronic system can be used for detection.

КРАТКОЕ ИЗЛОЖЕНИЕ СУЩНОСТИ ИЗОБРЕТЕНИЯSUMMARY OF THE INVENTION

Первый аспект, раскрытый в данном документе, представляет собой меченый нуклеотид. Номера 1-6 относятся к данному первому аспекту.The first aspect disclosed in this document is a labeled nucleotide. Numbers 1-6 refer to this first aspect.

1. В одном примере меченый нуклеотид содержит нуклеотид; связывающую группу, присоединенную к фосфатной группе данного нуклеотида; редокс-активную зарядную метку, присоединенную к связывающей группе, причем редокс-активная зарядная метка подлежит окислению или восстановлению посредством токопроводящего канала при удерживании вблизи чувствительной зоны токопроводящего канала.1. In one example, the labeled nucleotide contains a nucleotide; a linking group attached to the phosphate group of the given nucleotide; a redox-active charge label attached to the linking group, wherein the redox-active charge label is subject to oxidation or reduction by the conductive channel when held near the sensitive area of the conductive channel.

2. В примере (1) меченого нуклеотида редокс-активная зарядная метка включает координированный атом металла, который подлежит вступлению в окислительно-восстановительную реакцию.2. In the labeled nucleotide example (1), the redox-active charge label includes a coordinated metal atom to be redox-reacted.

3. В примере (1) или (2) меченого нуклеотида связывающая группа содержит специфичную область, присоединенную к редокс-активной зарядной метке.3. In example (1) or (2) labeled nucleotide, the linking group contains a specific region attached to a redox-active charging label.

4. В примере (3) специфичная область предполагает взаимодействие с акцепторной областью на связке, связанной с токопроводящим каналом, и специфичная область включает аффинную метку.4. In example (3), the specific region involves interaction with an acceptor region on the ligament associated with the conductive channel, and the specific region includes an affinity label.

5. В примере (4) специфичная область предполагает гибридизацию с акцепторной областью на связке, связанной с токопроводящим каналом, и аффинная метка включает нуклеотидную последовательность, включающую от примерно одного нуклеотида до примерно десяти нуклеотидов, или последовательность пептидо-нуклеиновой кислоты, включающую от примерно одной пептидо-нуклеиновой кислоты до примерно десяти пептидо-нуклеиновых кислот.5. In example (4), the specific region involves hybridization with an acceptor region on the ligament associated with the conductive channel, and the affinity tag includes a nucleotide sequence comprising from about one nucleotide to about ten nucleotides, or a peptido nucleic acid sequence comprising from about one peptido nucleic acid to about ten peptido nucleic acids.

В любом из примеров (1)-(5) меченого нуклеотида редокс-активная зарядная метка включает 10 зарядов или меньше в неокисленном или невосстановленном состоянии; и редокс-активная зарядная метка включает от примерно 1 до примерно 100 зарядов в окисленном или восстановленном состоянии.In any of examples (1)-(5) of the labeled nucleotide, the redox active charge label comprises 10 charges or less in the unoxidized or unreduced state; and the redox active charge label includes from about 1 to about 100 charges in the oxidized or reduced state.

Следует понимать, что любые признаки меченого нуклеотида, раскрытые в данном документе, включая примеры (1)-(6), можно объединять вместе любым желаемым образом и/или в любой желаемой конфигурации.It should be understood that any features of a labeled nucleotide disclosed herein, including examples (1)-(6), can be combined together in any desired manner and/or in any desired configuration.

Второй аспект, раскрытый в данном документе, представляет собой способ. Номера 7-18 относятся к данному второму аспекту.The second aspect disclosed in this document is a method. Numbers 7-18 refer to this second aspect.

7. В примере способ включает введение нуклеиновой кислоты - матрицы в токопроводящий канал, имеющий связанную с ним полимеразу; введение меченых нуклеотидов в токопроводящий канал, по меньшей мере одного из меченых нуклеотидов, включающего нуклеотид и нуклеотид-специфичную редокс-активную зарядную метку, присоединенную к нему, посредством чего один из меченых нуклеотидов ассоциирует с полимеразой; при ассоциации одного из меченых нуклеотидов, инициацию окислительно-восстановительной реакции нуклеотид-специфичной редокс-активной зарядной метки с токопроводящим каналом с изменением состояния заряда нуклеотид-специфичной редокс-активной зарядной метки; и под действием окислительно-восстановительной реакции, выявление ответа токопроводящего канала.7. In an example, the method includes introducing a nucleic acid template into a conductive channel having a polymerase associated therewith; introducing labeled nucleotides into a conductive channel of at least one of the labeled nucleotides, comprising a nucleotide and a nucleotide-specific redox-active charge label attached thereto, whereby one of the labeled nucleotides associates with the polymerase; when one of the labeled nucleotides is associated, initiating a redox reaction of the nucleotide-specific redox-active charging label with a conductive channel with a change in the state of charge of the nucleotide-specific redox-active charging label; and under the action of a redox reaction, revealing the response of the conductive channel.

8. В примере (7) способа инициирование окислительно-восстановительной реакции включает прикладывание зарядного напряжения к токопроводящему каналу, и выявление ответа токопроводящего канала включает прикладывание напряжения считывания к токопроводящему каналу.8. In method example (7), initiating a redox reaction includes applying a charging voltage to a conductive path, and detecting a response of the conductive path includes applying a sense voltage to the conductive path.

9. Пример способа (7) или (8) дополнительно включает ассоциирование ответа токопроводящего канала с нуклеотид-специфичной редокс-активной зарядной меткой ассоциированного одного из меченых нуклеотидов; и на основе нуклеотид-специфичной редокс-активной зарядной метки, идентификацию нуклеотида ассоциированного меченого нуклеотида.9. An example of method (7) or (8) further comprises associating a conductive channel response with a nucleotide-specific redox active charge label of the associated one of the labeled nucleotides; and based on the nucleotide-specific redox active charge label, identifying the nucleotide of the associated labeled nucleotide.

10. Пример (9) может также дополнительно включать отщепление нуклеотид-специфичной редокс-активной зарядной метки от ассоциированного одного из меченых нуклеотидов, посредством чего нуклеотид ассоциированного меченого нуклеотида включается в растущую нить, комплементарную нуклеиновой кислоте - матрице.10. Example (9) may also further include cleavage of a nucleotide-specific redox active charge tag from an associated one of the labeled nucleotides, whereby the nucleotide of the associated labeled nucleotide is incorporated into a growing strand complementary to the nucleic acid template.

11. В примере (10) ассоциирование одного из меченых нуклеотидов, инициирование окислительно-восстановительной реакции, выявление, ассоциирование и идентификация вместе представляют собой цикл секвенирования; и способ дополнительно включает выполнение следующего цикла секвенирования, позволяя следующему одному из меченых нуклеотидов ассоциировать с полимеразой; при ассоциации следующего одного из меченых нуклеотидов, инициирование другой окислительно-восстановительной реакции другой нуклеотид-специфичной редокс-активной зарядной метки и токопроводящего канала с изменением состояния заряда другой нуклеотид-специфичной редокс-активной зарядной метки; под действием другой окислительно-восстановительной реакции, выявление другого ответа токопроводящего канала; ассоциирование другого ответа токопроводящего канала с другой нуклеотид-специфичной редокс-активной зарядной меткой; и на основе другой нуклеотид-специфичной редокс-активной зарядной метки, идентификацию нуклеотида следующего одного из меченых нуклеотидов.11. In example (10), association of one of the labeled nucleotides, initiation of a redox reaction, detection, association, and identification together constitute a sequencing cycle; and the method further includes performing the next round of sequencing, allowing the next one of the labeled nucleotides to associate with the polymerase; upon association of the next one of the labeled nucleotides, initiating another redox reaction of the other nucleotide-specific redox-active charging label and the conductive channel to change the state of charge of the other nucleotide-specific redox-active charging label; under the influence of a different redox reaction, revealing a different response of the conductive channel; associating another conductive channel response with another nucleotide-specific redox-active charge label; and based on the other nucleotide-specific redox active charge label, identifying the nucleotide of the next one of the labeled nucleotides.

12. Пример (11) может также дополнительно включать отщепление другой нуклеотид-специфичной редокс-активной зарядной метки следующего одного из меченых нуклеотидов, посредством чего нуклеотид следующего одного из меченых нуклеотидов включается в растущую нить, комплементарную нуклеиновой кислоте - матрице; и повторение цикла секвенирования.12. Example (11) may also further include cleavage of another nucleotide-specific redox-active charge label of the next one of the labeled nucleotides, whereby the nucleotide of the next one of the labeled nucleotides is included in a growing strand complementary to the nucleic acid template; and repeating the sequencing run.

13. В любом из примеров (7)-(12) способа редокс-активная зарядная метка включает координированный атом металла, который подлежит вступлению в окислительно-восстановительную реакцию.13. In any of the examples (7)-(12) of the method, the redox-active charge label includes a coordinated metal atom to be entered into a redox reaction.

14. В любом из примеров (7)-(13) способа редокс-активная зарядная метка включает 10 зарядов или меньше в неокисленном или невосстановленном состоянии; и редокс-активная зарядная метка включает от примерно 1 заряда до примерно 100 зарядов в измененном состоянии заряда.14. In any of the examples (7)-(13) of the method, the redox active charge label includes 10 charges or less in a non-oxidized or non-reduced state; and a redox active charge tag includes from about 1 charge to about 100 charges in an altered state of charge.

15. В любом из примеров (7)-(14) способа меченые нуклеотиды включают первый меченый нуклеотид, включающий дезоксиаденозинфосфат в качестве нуклеотида и первую нуклеотид-специфичную редокс-активную зарядную метку; второй меченый нуклеотид, включающий дезоксигуанозинфосфат в качестве нуклеотида и вторую нуклеотид-специфичную редокс-активную зарядную метку; третий меченый нуклеотид, включающий дезоксицитидинфосфат в качестве нуклеотида и третью нуклеотид-специфичную редокс-активную зарядную метку; и четвертый меченый нуклеотид, включающий дезокситимидинфосфат в качестве нуклеотида и четвертую нуклеотид-специфичную редокс-активную зарядную метку; и первая, вторая, третья и четвертая нуклеотид-специфичные редокс-активные зарядные метки отличаются друг от друга.15. In any of the method examples (7)-(14), the labeled nucleotides include a first labeled nucleotide comprising deoxyadenosine phosphate as a nucleotide and a first nucleotide-specific redox active charge label; a second labeled nucleotide comprising deoxyguanosine phosphate as a nucleotide and a second nucleotide-specific redox active charge label; a third labeled nucleotide comprising deoxycytidine phosphate as a nucleotide and a third nucleotide-specific redox active charge label; and a fourth labeled nucleotide comprising deoxythymidine phosphate as a nucleotide and a fourth nucleotide-specific redox active charge label; and the first, second, third and fourth nucleotide-specific redox active charge marks are different from each other.

16. В примере (15) две из первой, второй, третьей и четвертой нуклеотид-специфичных редокс-активных зарядных меток являются положительно заряженными в измененном состоянии заряда, и где другие две из первой, второй, третьей и четвертой нуклеотид-специфичных редокс-активных зарядных меток являются отрицательно заряженными в измененном состоянии заряда.16. In example (15), two of the first, second, third and fourth nucleotide-specific redox active charge labels are positively charged in the changed state of charge, and where the other two of the first, second, third and fourth nucleotide-specific redox active charge tags are negatively charged in an altered state of charge.

17. В любом из примеров (7)-(16) способа меченые нуклеотиды находятся в буфере с низким содержанием соли.17. In any of the method examples (7)-(16), the labeled nucleotides are in a low salt buffer.

18. В любом из примеров (7)-(17) способа токопроводящий канал представляет собой канал полевого транзистора.18. In any of the examples (7) to (17) of the method, the conductive channel is a FET channel.

Следует понимать, что любые признаки способа, включая примеры (7)-(17), можно объединять вместе любым желаемым образом. Кроме того, следует понимать, что любое сочетание признаков данного способа и/или меченого нуклеотида можно использовать вместе и/или объединять с любым из примеров, раскрытых в данном документе.It should be understood that any features of the method, including examples (7)-(17), can be combined together in any desired manner. In addition, it should be understood that any combination of features of this method and/or labeled nucleotide can be used together and/or combined with any of the examples disclosed herein.

Третий аспект, раскрытый в данном документе, представляет собой набор. Номера 19-22 относятся к данному третьему аспекту.The third aspect disclosed in this document is a set. Numbers 19-22 refer to this third aspect.

19. В примере набор содержит проточную ячейку, включающую токопроводящий канал, имеющий связку, присоединенную к нему, и полимеразу, присоединенную к данному токопроводящему каналу посредством связки; нуклеиновую кислоту - матрицу, подлежащую введению в проточную ячейку; реагенты, подлежащие введению в проточную ячейку, причем реагенты включают меченые нуклеотиды, по меньшей мере один из меченых нуклеотидов, включающий: нуклеотид; связывающую группу, присоединенную к фосфатной группе нуклеотида; и редокс-активную зарядную метку, присоединенную к связывающей группе, причем редокс-активная зарядная метка подлежит окислению или восстановлению посредством токопроводящего канала при удерживании вблизи чувствительной зоны токопроводящего канала; и детектор для выявления ответа от токопроводящего канала, когда окислительно-восстановительная реакция протекает между редокс-активной зарядной меткой и токопроводящим каналом.19. In an example, the kit contains a flow cell comprising a conductive channel having a ligament attached to it, and a polymerase attached to this conductive channel through a ligament; a nucleic acid matrix to be introduced into the flow cell; reagents to be introduced into the flow cell, and the reagents include labeled nucleotides, at least one of the labeled nucleotides, including: a nucleotide; a linking group attached to the phosphate group of the nucleotide; and a redox active charge label attached to the linking group, wherein the redox active charge label is subject to oxidation or reduction by the conductive channel while being held near a sensitive area of the conductive channel; and a detector for detecting a response from the conductive path when a redox reaction occurs between the redox active charging mark and the conductive path.

20. В примере (19) набора редокс-активная зарядная метка выбрана из группы, состоящей из ферроцена, цинк-тетрабензопорфирина, фталоцианина кобальта, трис-(2,2'-бипиримидин)рутения, 4-ферроценилбензилового спирта, 5-(4-гидроксиметилфенил)-10,15,20-тримезитилпорфинато-цинка (II) и редокс-активного каликсарена.20. In the example (19) of the kit, the redox active charge label is selected from the group consisting of ferrocene, zinc tetrabenzoporphyrin, cobalt phthalocyanine, tris-(2,2'-bipyrimidine)ruthenium, 4-ferrocenylbenzyl alcohol, 5-(4- hydroxymethylphenyl)-10,15,20-trimesitylporphynatozinc (II) and redox-active calixarene.

21. В любом из примеров (19) или (20) набора редокс-активная зарядная метка включает 10 зарядов или меньше в неокисленном или невосстановленном состоянии; и редокс-активная зарядная метка включает от примерно 1 заряда до примерно 100 зарядов в окисленном или восстановленном состоянии.21. In any one of examples (19) or (20) of the set, the redox active charge label includes 10 charges or less in the non-oxidized or non-reduced state; and the redox active charge label includes from about 1 charge to about 100 charges in the oxidized or reduced state.

22. В любом из примеров (19)-(21) набора токопроводящий канал представляет собой канал полевого транзистора.22. In any of the examples (19)-(21) of the set, the conductive channel is a FET channel.

Следует понимать, что любые признаки данного набора, включая примеры (19)-(22), можно объединять вместе любым желательным образом. Кроме того, следует понимать, что любое сочетание признаков данного набора и/или способа и/или меченого нуклеотида можно использовать совместно и/или объединять с любым из примеров, раскрытых в данном документе.It should be understood that any features of this set, including examples (19)-(22), can be combined together in any desired manner. In addition, it should be understood that any combination of features of this kit and/or method and/or labeled nucleotide can be used in conjunction with and/or combined with any of the examples disclosed herein.

Кроме того, следует понимать, что любые признаки любого из меченых нуклеотидов и/или любого из способов и/или любого из наборов можно объединять вместе любым желательным образом, и/или можно объединять с любым из примеров, раскрытых в данном документе.In addition, it should be understood that any features of any of the labeled nucleotides and/or any of the methods and/or any of the kits can be combined together in any desired manner, and/or can be combined with any of the examples disclosed herein.

КРАТКОЕ ОПИСАНИЕ ГРАФИЧЕСКИХ МАТЕРИАЛОВBRIEF DESCRIPTION OF GRAPHICS

Признаки примеров настоящего раскрытия станут очевидными посредством ссылки на следующее подробное описание и графические материалы, в которых номера позиций соответствуют похожим, хотя возможно не идентичным, компонентам. Для краткости, номера позиций и признаки, имеющие ранее описанную функцию, могут быть или могут не быть описаны в связи с другими графическими материалами, в которых они встречаются.Features of the examples of the present disclosure will become apparent by reference to the following detailed description and drawings, in which reference numbers correspond to similar, although possibly not identical, components. For brevity, reference numbers and features having a previously described function may or may not be described in connection with other drawings in which they occur.

Фиг. 1 представляет собой схематичное изображение примера меченого нуклеотида;Fig. 1 is a schematic representation of an example of a labeled nucleotide;

Фиг.2 представляет собой схематичное и частично перспективное изображение примера системы, раскрытой в данном документе;Fig. 2 is a schematic and partly perspective view of an example of the system disclosed herein;

Фиг. 3 представляет собой схематичное изображение полимераз, присоединенных к токопроводящему каналу сенсора заряда, и ассоциированных с мечеными нуклеотидами, которые можно различить на основе заряда.Fig. 3 is a schematic representation of polymerases attached to a conductive channel of a charge sensor and associated with labeled nucleotides that can be distinguished based on charge.

Фиг. 4 представляет собой блок-схему, иллюстрирующую пример способа, раскрытого в данном документе;Fig. 4 is a flowchart illustrating an example of the method disclosed herein;

Фиг. 5А представляет собой схематичное изображение примера меченого нуклеотида, используемого в способе секвенирования; иFig. 5A is a schematic representation of an example of a labeled nucleotide used in a sequencing method; and

Фиг. 5В представляет собой схематичное изображение примера взаимодействия связки и специфичной области примера меченого нуклеотида, раскрытого в данном документе.Fig. 5B is a schematic representation of an example of the interaction of a ligament and a specific region of an example of a labeled nucleotide disclosed herein.

ПОДРОБНОЕ ОПИСАНИЕDETAILED DESCRIPTION

В данном документе раскрыты меченые нуклеотиды, которые можно использовать для выявления одиночных молекул в способах секвенирования нуклеиновых кислот. Сенсор, используемый при выявлении одиночных молекул, может иметь один токопроводящий канал с одной полимеразой, присоединенной к нему. Это позволяет выявлять одно событие включения (то есть включение основания в растущую нить посредством полимеразы) за один раз на каждом отдельном сенсоре. Меченые нуклеотиды обеспечивают уникальный способ выявления, который можно использовать для секвенирования нуклеиновой кислоты и для выявления нуклеиновых кислот и в общем других аналитов.This document discloses labeled nucleotides that can be used to detect single molecules in nucleic acid sequencing methods. A sensor used in single molecule detection may have a single conductive channel with a single polymerase attached to it. This allows detection of one inclusion event (i.e. incorporation of the base into the growing strand by the polymerase) at a time on each individual sensor. Tagged nucleotides provide a unique detection method that can be used for nucleic acid sequencing and for the detection of nucleic acids and other analytes in general.

Пример меченого нуклеотида 10 схематично изображен на Фиг. 1. Как показано, меченый нуклеотид 10 включает нуклеотид 12, связывающую группу 14 или 14', присоединенную к фосфатной группе 16 нуклеотида 12, и редокс-активную зарядную метку 18, присоединенную к связывающей группе 14 или 14', причем редокс-активная зарядная метка 18 подлежит окислению или восстановлению посредством токопроводящего канала (номер позиции 32, Фиг. 2) при удерживании вблизи чувствительной зоны (номер позиции 31, Фиг. 3) токопроводящего канала 32. Меченый нуклеотид 10 можно считать неприродным или синтетическим нуклеотидом, поскольку он структурно или химически отличается от природного нуклеотида.An example of labeled nucleotide 10 is shown schematically in FIG. 1. As shown, labeled nucleotide 10 includes nucleotide 12, a linking group 14 or 14' attached to the phosphate group 16 of nucleotide 12, and a redox active charge label 18 attached to the linking group 14 or 14', and the redox active charge label 18 is to be oxidized or reduced by means of a conductive channel (position number 32, Fig. 2) when held near the sensitive zone (position number 31, Fig. 3) of the conductive channel 32. Labeled nucleotide 10 can be considered a non-natural or synthetic nucleotide, since it is structurally or chemically different from the natural nucleotide.

Нуклеотид 12 меченого нуклеотида 10 может представлять собой природный нуклеотид. Природные нуклеотиды включают азотсодержащее гетероциклическое основание 20, сахар 22 и одну или более фосфатных групп 16. Примеры природных нуклеотидов включают, например, рибонуклеотиды или дезоксирибонуклеотиды. В рибонуклеотиде сахар 22 представляет собой рибозу, и в дезоксирибонуклеотидах сахар 22 представляет собой дезоксирибозу, то есть сахар, лишенный гидроксильной группы, которая присутствует в положении 2' в рибозе. В примере нуклеотид 12 находится в полифосфатной форме, поскольку он включает несколько фосфатных групп 16 (например, трифосфат (то есть гамма фосфат), тетрафосфат, пентафосфат, гексафосфат и т.д.). Гетероциклическое основание 20 (то есть, нуклеооснование) может представлять собой пуриновое основание или пиримидиновое основание. Пуриновые основания включают аденин (А) и гуанин (G), и их модифицированные производные или аналоги. Пиримидиновые основания включают цитозин (С), тимин (Т) и урацил (U) и их модифицированные производные или аналоги. Атом С-1 дезоксирибозы связан с N-1 пиримидина или N-9 пурина. Аналог нуклеиновой кислоты может иметь любой фосфатный остов, сахар или измененное нуклеооснование. Примеры аналогов нуклеиновой кислоты включают, например, универсальные основания или аналоги фосфат-сахарного основа, такие как пептидо-нуклеиновые кислоты (PNA-от англ. peptide nucleic acid).Nucleotide 12 of labeled nucleotide 10 may be a natural nucleotide. Natural nucleotides include a nitrogen-containing heterocyclic base 20, a sugar 22, and one or more phosphate groups 16. Examples of natural nucleotides include, for example, ribonucleotides or deoxyribonucleotides. In a ribonucleotide, sugar 22 is a ribose, and in deoxyribonucleotides, sugar 22 is a deoxyribose, that is, a sugar lacking the hydroxyl group that is present at the 2' position in ribose. In the example, nucleotide 12 is in polyphosphate form because it contains several phosphate groups 16 (eg, triphosphate (ie, gamma phosphate), tetraphosphate, pentaphosphate, hexaphosphate, etc.). The heterocyclic base 20 (ie, the nucleobase) may be a purine base or a pyrimidine base. Purine bases include adenine (A) and guanine (G), and modified derivatives or analogues thereof. Pyrimidine bases include cytosine (C), thymine (T), and uracil (U) and modified derivatives or analogs thereof. The C-1 atom of deoxyribose is linked to the N-1 of the pyrimidine or the N-9 of the purine. The nucleic acid analog may have any phosphate backbone, sugar, or altered nucleobase. Examples of nucleic acid analogs include, for example, universal bases or phosphate-sugar backbone analogs such as peptide nucleic acids (PNA).

Меченый нуклеотид 10 также включает связывающую группу 14 или 14'. В некоторых примерах связывающая группа (показанная как 14 на Фиг. 1) не включает специфичную область 24. В других примерах связывающая группа (показанная как 14' на Фиг. 1) не включает специфичную область 24. Как схематично изображено на Фиг. 1, когда специфичная область 24 является частью связывающей группы 14', область 24 может быть расположена на конце, который химически связан с редокс-активной зарядной меткой 18. Специфичная область 24 будет описана дополнительно ниже в данном документе.Labeled nucleotide 10 also includes a linking group 14 or 14'. In some examples, the linking group (shown as 14 in FIG. 1) does not include specific region 24. In other examples, the linking group (shown as 14' in FIG. 1) does not include specific region 24. As schematically depicted in FIG. 1, when specific region 24 is part of linking group 14', region 24 may be located at the end that is chemically bonded to redox active charge tag 18. Specific region 24 will be described further hereinafter.

Связывающая группа 14 или 14' меченого нуклеотида 10 может представлять собой любую молекулу с длинной цепью, которая может химически связываться на одном конце с фосфатной группой 16 нуклеотида 12, и которая может химически связываться на другом конце с редокс-активной зарядной меткой 18. Связывающая группа 14 или 14' может быть также выбрана таким образом, чтобы она не взаимодействовала с полимеразой 26, используемой в системе 30 (см. Фиг. 2), раскрытой в данном документе. Связывающая группа 14 или 14' выбрана таким образом, чтобы они была достаточно длинной для того, чтобы позволить редокс-активной зарядной метке 18 расположиться в пределах чувствительной зоны 31 (Фиг. 3) токопроводящего канала 32 (Фиг. 2). В качестве примеров связывающая группа 14 или 14' может включать алкильную цепь, поли(этиленгликолевую) цепь, амидную группу, фосфатную группу, гетероцикл, такой как триазол, нуклеотиды или их комбинации. Примеры алкильной цепи могут включать по меньшей мере 6 атомов углерода и примеры поли(этиленгликолевой) цепи могут включать по меньшей мере 3 этиленгликолевых звена.The linking group 14 or 14' of labeled nucleotide 10 can be any long chain molecule that can chemically bond at one end to the phosphate group 16 of nucleotide 12, and which can chemically bond at the other end to the redox active charging tag 18. Linking group 14 or 14' may also be chosen such that it does not interact with polymerase 26 used in system 30 (see FIG. 2) disclosed herein. The bonding group 14 or 14' is chosen to be long enough to allow the redox active charging tag 18 to be located within the sensing zone 31 (FIG. 3) of the conductive channel 32 (FIG. 2). As examples, the linking group 14 or 14' may include an alkyl chain, a poly(ethylene glycol) chain, an amide group, a phosphate group, a heterocycle such as a triazole, nucleotides, or combinations thereof. Examples of an alkyl chain may include at least 6 carbon atoms, and examples of a poly(ethylene glycol) chain may include at least 3 ethylene glycol units.

Следующий пример иллюстрирует пример меченого нуклеотида 10, где связывающая группа 14, 14' содержит алкильную цепь, амидную группу, поли(этиленгликолевую) цепь и триазол:The following example illustrates an example of a labeled nucleotide 10 where the linking group 14, 14' contains an alkyl chain, an amide group, a poly(ethylene glycol) chain and a triazole:

Figure 00000001
Figure 00000001

Следующий пример иллюстрирует другой пример меченого нуклеотида 10, где связывающая группа 14, 14' содержит алкильные цепи, амидную группу, поли(этиленгликолевые) цепи, триазол и фосфатную группу:The following example illustrates another example of a labeled nucleotide 10 where the linking group 14, 14' contains alkyl chains, an amide group, poly(ethylene glycol) chains, a triazole, and a phosphate group:

Figure 00000002
Figure 00000002

Следующий пример иллюстрирует еще один пример меченого нуклеотида 10, где связывающая группа 14, 14' содержит алкильные цепи, амидные группы, поли(этиленгликолевые) цепи, триазол и фосфатную группу:The following example illustrates another example of labeled nucleotide 10 where the linking group 14, 14' contains alkyl chains, amide groups, poly(ethylene glycol) chains, a triazole and a phosphate group:

Figure 00000003
Figure 00000003

Следующий пример иллюстрирует еще один пример меченого нуклеотида 10, где связывающая группа 14, 14' содержит алкильные цепи, амидную группу, поли(этиленгликолевые) цепи, триазол, фосфатную группу и полинуклеотидную цепь:The following example illustrates another example of a labeled nucleotide 10 where the linking group 14, 14' contains alkyl chains, an amide group, poly(ethylene glycol) chains, a triazole, a phosphate group, and a polynucleotide chain:

Figure 00000004
Figure 00000004

В то время, как было описано несколько примеров связывающих групп 14, 14', следует понимать, что могут быть использованы другие связывающие группы 14, 14'.While several examples of linking groups 14, 14' have been described, it should be understood that other linking groups 14, 14' may be used.

Как показано на Фиг. 1 и в предыдущих примерах, некоторые из меченых нуклеотидов 10 могут также включать специфичную область 24 в составе связывающей группы 14'. Специфичная область 24 может взаимодействовать с акцепторной областью на связке 28 (Фиг. 2), которая связана с токопроводящим каналом 32. Специфичная область 24 может включать аффинную метку, которая может временно присоединяться к акцепторной области связки 28. Аффинность связывания аффинной метки может быть достаточно сильной, чтобы связывать специфичную область 24 с акцепторной областью на связке 28, когда меченый нуклеотид 10 удерживается полимеразой 26, но может также быть достаточно слабой, чтобы освобождать специфичную область 24 от акцепторной области после события включения (например, когда полимераза 26 естественным образом расщепляет связь между альфа-фосфатом и связывающей группой 14, 14' или между альфа-фосфатом и бета-фосфатом). Иными словами, скорости ассоциации и диссоциации специфичной области 24 (например, аффинной метки) с или от акцепторной области могут быть выбраны для улучшения суммарной чувствительности в отношении одиночных молекул. Скорость ассоциации при взаимодействии аффинная метка/акцепторная область может быть высокой, например, благодаря эффективно высокой концентрации специфичной области 24, и таким образом аффинной метки, перед включением нуклеотида. Данная высокая скорость ассоциации увеличивает период времени, за который аффинная метка связывается с акцепторной областью. После расщепления скорость диссоциации взаимодействия также может быть выбрана такой, чтобы быть достаточно высокой для того, чтобы комплекс (между аффинной меткой и акцепторной областью) диссоциировал достаточно быстро для того, чтобы существовала низкая вероятность связанного состояния (между аффинной меткой ранее включенного нуклеотида и акцепторной областью), когда следующий меченый нуклеотид 10 поступает к активному сайту полимеразы 26.As shown in FIG. 1 and in previous examples, some of the labeled nucleotides 10 may also include a specific region 24 as part of the linking group 14'. Specific region 24 may interact with an acceptor region on ligament 28 (FIG. 2) that is associated with conductive channel 32. Specific region 24 may include an affinity tag that may temporally attach to the acceptor region of ligament 28. The binding affinity of the affinity tag may be quite strong. to bind specific region 24 to an acceptor region on tether 28 when labeled nucleotide 10 is held by polymerase 26, but may also be weak enough to release specific region 24 from the acceptor region after an inclusion event (e.g., when polymerase 26 naturally cleaves the bond between alpha-phosphate and a linking group 14, 14' or between alpha-phosphate and beta-phosphate). In other words, the rates of association and dissociation of a specific region 24 (eg, affinity label) with or from the acceptor region can be chosen to improve the overall sensitivity for single molecules. The rate of association in an affinity tag/acceptor region interaction can be high, for example, due to an effectively high concentration of the specific region 24, and thus the affinity tag, prior to incorporation of the nucleotide. This high rate of association increases the time period for which the affinity label binds to the acceptor region. After cleavage, the dissociation rate of the interaction can also be chosen to be high enough that the complex (between the affinity tag and the acceptor region) dissociates fast enough that there is a low probability of a bound state (between the affinity tag of the previously incorporated nucleotide and the acceptor region). ) when the next labeled nucleotide 10 enters the active site of polymerase 26.

В конкретном примере специфичная область 24 предполагает гибридизацию с акцепторной областью на связке 28, и таким образом аффинная метка может включать нуклеотидную последовательность или последовательность пептидо-нуклеиновой кислоты, которая способна временно присоединяться к акцепторной области на связке 28 (Фиг. 2). В одном примере аффинная метка включает нуклеотидную последовательность, включающую от примерно одного нуклеотида до примерно десяти нуклеотидов или от примерно одной пептидо-нуклеиновой кислоты до примерно десяти пептидо-нуклеиновых кислот. В других примерах аффинная метка включает вплоть до шести нуклеотидов или пептидо-нуклеиновых кислот. В еще одном примере (как показано и описано дополнительно на Фиг. 5В), специфичная область 24 может дополнительно включать инозин(ы), фланкирующий(ие) обе стороны нуклеотидной последовательности. В еще одних примерах аффинная метка может представлять собой группировку, не являющуюся нуклеиновой кислотой, как например пептиды, которые обладают аффинностью друг к другу или к гидрофобным полимерам. Конкретный пример белка включает суперспираль, которая представляет собой структурный мотив в белках, в котором от 2 до 7 альфа-спиралей скручены вместе подобно нитям веревки. Иными словами, суперспирали построены двумя или более альфа-спиралями, которые обматывают друг друга с образованием суперспирали. Примеры суперспиралей включают онкобелки, подобно c-Fos и c-jun.In a specific example, specific region 24 is intended to hybridize to an acceptor region at tether 28, and thus an affinity tag may include a nucleotide or peptidonucleic acid sequence that is capable of transiently attaching to an acceptor region at tether 28 (FIG. 2). In one example, the affinity tag includes a nucleotide sequence comprising from about one nucleotide to about ten nucleotides, or from about one peptido nucleic acid to about ten peptido nucleic acids. In other examples, the affinity tag includes up to six nucleotides or peptidonucleic acids. In yet another example (as shown and described further in FIG. 5B), specific region 24 may further include inosine(s) flanking(s) on both sides of the nucleotide sequence. In still other examples, the affinity tag can be a non-nucleic acid moiety, such as peptides that have affinity for each other or for hydrophobic polymers. A specific example of a protein includes a supercoil, which is a structural motif in proteins in which 2 to 7 alpha helices are twisted together like strands of rope. In other words, supercoils are built by two or more alpha helices that wrap around each other to form a supercoil. Examples of supercoils include oncoproteins like c-Fos and c-jun.

Редокс-активная зарядная метка 18 может представлять собой любую зарядную метку, которая может увеличивать свой заряд при окислении (потеря электрона) или восстановлении (получение электрона) посредством токопроводящего канала 32, например, при удерживании вблизи чувствительной зоны 31 токопроводящего канала 32. Зарядная метка 18 может быть нейтральной по суммарному заряду (нулевой заряд) или близкой к данному состоянию (10 зарядов или меньше), перед тем, как произойдет окислительно-восстановительная реакция. Иными словами, в неокисленном или невосстановленном состоянии редокс-активная зарядная метка 18 несет 10 зарядов или меньше. Заряды, которые несет редокс-активная зарядная метка 18, не включают какого-либо заряда фосфата 16 или связывающей группы 14, 14' меченого нуклеотида 10. После протекания окислительно-восстановительной реакции общий суммарный заряд редокс-активной зарядной метки 18 меняется (то есть она несет больше положительных зарядов или больше отрицательных зарядов). В одном примере редокс-активная зарядная метка 18 включает 10 зарядов или меньше в неокисленном или невосстановленном состоянии, и редокс-активная зарядная метка 18 включает от примерно 1 заряда до примерно 100 зарядов в окисленном или восстановленном состоянии. Следует понимать, что число зарядов редокс-активной зарядной метки 18 в неокисленном или невосстановленном состоянии меньше, чем число зарядов редокс-активной зарядной метки 18 в окисленном или восстановленном состоянии. В другом примере редокс-активная зарядная метка 18 включает 10 зарядов или меньше в неокисленном или невосстановленном состоянии, и редокс-активная зарядная метка 18 включает от примерно 20 зарядов до примерно 50 зарядов в окисленном или восстановленном состоянии.The redox-active charging tag 18 can be any charging tag that can increase its charge by being oxidized (losing an electron) or reducing (gaining an electron) via the conductive channel 32, for example, by keeping the conductive channel 32 close to the sensing zone 31. Charging tag 18 may be neutral in total charge (zero charge) or close to this state (10 charges or less) before the redox reaction occurs. In other words, in the non-oxidized or non-reduced state, the redox active charging tag 18 carries 10 charges or less. The charges carried by the redox active charge tag 18 do not include any charge of the phosphate 16 or linking group 14, 14' of the labeled nucleotide 10. After the redox reaction has occurred, the total net charge of the redox active charge tag 18 changes (i.e., it carries more positive charges or more negative charges). In one example, the redox active charge tag 18 includes 10 charges or less in the unoxidized or unreduced state, and the redox active charge tag 18 includes from about 1 charge to about 100 charges in the oxidized or reduced state. It should be understood that the number of charges of the redox active charge mark 18 in the unoxidized or unreduced state is less than the number of charges of the redox active charge mark 18 in the oxidized or reduced state. In another example, the redox active charge tag 18 includes 10 charges or less in the unoxidized or unreduced state, and the redox active charge tag 18 includes from about 20 charges to about 50 charges in the oxidized or reduced state.

Редокс-активная зарядная метка 18 может включать любой координированный (то есть закрепленный на месте) атом металла, который может вступать в окислительно-восстановительную реакцию. Примеры атомов металла включают железо, кобальт, рутений, цинк, медь, литий, серебро и т.д. В качестве некоторых конкретных примеров редокс-активная зарядная метка 18 выбрана из группы, состоящей из ферроцена, цинк-тетрабензопорфирина, фталоцианина кобальта, трис-(2,2'-бипиримидин)рутения, 4-ферроценилбензилового спирта, 5-(4-гидроксиметилфенил)-10,15,20-тримезитилпорфинато-цинка (II) и редокс-активного каликсарена.The redox active charge label 18 may include any coordinated (ie, fixed in place) metal atom that can undergo a redox reaction. Examples of metal atoms include iron, cobalt, ruthenium, zinc, copper, lithium, silver, and so on. As some specific examples, the redox active charge label 18 is selected from the group consisting of ferrocene, zinc tetrabenzoporphyrin, cobalt phthalocyanine, tris-(2,2'-bipyrimidine)ruthenium, 4-ferrocenylbenzyl alcohol, 5-(4-hydroxymethylphenyl) -10,15,20-trimesitylporphynate-zinc (II) and redox-active calixarene.

Ферроцен может представлять собой любое металлоорганическое соединение, которое включает формулу Fe(C5H5)2. Конкретным примером является ферроценсодержащий дендример:Ferrocene can be any organometallic compound that includes the formula Fe(C 5 H 5 ) 2 . A specific example is a ferrocene-containing dendrimer:

Figure 00000005
Figure 00000005

в котором Fe2+ может становиться Fe3+ при окислении, вводя, таким образом, положительный заряд в каждом «Fe».in which Fe 2 + can become Fe 3 + when oxidized, thus introducing a positive charge in each "Fe".

Цинк-тетрабензопорфирин имеет структуру:Zinc tetrabenzoporphyrin has the structure:

Figure 00000006
Figure 00000006

в которой R=C2H5, С6Н13 или С12Н25. Zn1+ может становиться Zn2+ при окислении, вводя, таким образом, положительный заряд.in which R=C 2 H 5 , C 6 H 13 or C 12 H 25 . Zn 1+ can become Zn 2+ upon oxidation, thus introducing a positive charge.

Примеры фталоцианина кобальта включают:

Figure 00000007
Examples of cobalt phthalocyanine include:
Figure 00000007

и

Figure 00000008
and
Figure 00000008

оба из которых представляют собой суммарно нейтральные молекулы в растворе. При окислении Со2+ становится Со3+, вводя, таким образом, положительный заряд в каждом «Со» (например, один положительный заряд для первой структуры и пять положительных зарядов для второй структуры). Известны другие кобальт-содержащие соединения со степенями окисления, находящимися в интервале от -3 до +5, и они могут быть использованы в качестве отрицательно заряжаемых редокс-активных зарядных меток 18 или положительно заряжаемых редокс-активных зарядных меток 18.both of which are summarily neutral molecules in solution. When oxidized, Co 2+ becomes Co 3+ , thus introducing a positive charge in each "Co" (eg, one positive charge for the first structure and five positive charges for the second structure). Other cobalt-containing compounds with oxidation states ranging from -3 to +5 are known and can be used as negatively charged redox active charge tags 18 or positively charged redox active charge tags 18.

Трис-(2,2'-бипиримидин)рутений имеет структуру:Tris-(2,2'-bipyrimidine)ruthenium has the structure:

Figure 00000009
Figure 00000009

в которой Ru2+ может становиться Ru3+ при окислении, вводя, таким образом, положительный заряд.in which Ru 2 + can become Ru 3 + when oxidized, thus introducing a positive charge.

4-ферроценилбензиловый спирт имеет структуру:4-ferrocenylbenzyl alcohol has the structure:

Figure 00000010
Figure 00000010

в которой Fe2+ может становиться Fe3+ при окислении, вводя, таким образом, положительный заряд.in which Fe 2 + can become Fe 3 + when oxidized, thus introducing a positive charge.

5-(4-гидроксиметилфенил)-10,15,20-тримезитилпорфинато-цинк (II) имеет структуру:5-(4-hydroxymethylphenyl)-10,15,20-trimesitylporphynato-zinc (II) has the structure:

Figure 00000011
Figure 00000011

в которой Zn2+ может становиться Zn1+ при восстановлении, вводя, таким образом, отрицательный заряд.in which Zn 2 + can become Zn 1 + when reduced, thus introducing a negative charge.

Некоторые примеры редокс-активных каликсаренов включают:Some examples of redox active calixarenes include:

Figure 00000012
Figure 00000012

Figure 00000013
Figure 00000013

Каждая из ранее описанных окислительно-восстановительных реакций обратима, и таким образом соединения могут быть использованы в своем более окисленном состоянии и могут быть восстановлены в чувствительной зоне 31 токопроводящего канала, или могут быть использованы в своем менее окисленном состоянии и могут быть окислены в чувствительной зоне 31 токопроводящего канала.Each of the previously described redox reactions is reversible and thus the compounds can be used in their more oxidized state and can be reduced in the sensing zone 31 of the conductive channel, or can be used in their less oxidized state and can be oxidized in the sensing zone 31 conductive channel.

Как упомянуто выше, редокс-активная зарядная метка 18, раскрытая в данном документе, может быть нейтральной или почти нейтральной в растворе, и не несет большего заряда до тех пор, пока не вступит в окислительно-восстановительную реакцию. В связи с этим, нуклеотиды 10 в растворе не считаются высоко зарядными молекулами, и агломерация среди противоположно заряженных меченых нуклеотидов 10 (содержащих противоположно заряженные почти нейтральные редокс-активные зарядные метки 18) менее вероятно произойдет.As mentioned above, the redox active charging label 18 disclosed herein may be neutral or nearly neutral in solution, and does not carry more charge until it undergoes a redox reaction. Because of this, nucleotides 10 in solution are not considered to be highly charged molecules, and agglomeration among oppositely charged labeled nucleotides 10 (containing oppositely charged nearly neutral redox active charge labels 18) is less likely to occur.

Меченые нуклеотиды 10 можно использовать в наборе и/или в системе 30 (пример которой показан на Фиг. 2). Набор или система 30 может включать токопроводящий канал 32. Токопроводящий канал 32 может быть в пределах или частью сосуда, такого как лунка, трубка, канал, кювета, чашка Петри, бутыль или тому подобное. Другим примером подходящего сосуда является проточная ячейка 34. Может быть использована любая конфигурация проточной ячейки, подходящая для реализаций, описанных в данном документе. Некоторые примеры проточных ячеек представляют собой проточные ячейки, которые имеются в продаже от Ilumina, Inc. (San Diego, CA). Проточные ячейки 34 удобны для доставки основного объема реагентов к ряду токопроводящих каналов 32 с индивидуальной адресацией во время присоединения компонентов реакции (например, нуклеиновых кислот - матриц, меченых нуклеотидов 10 и т.д.) к соответствующему токопроводящему каналу 32 или во время последующих реакций, проводимых с компонентами реакции на соответствующих токопроводящих каналах 32. Циклические процессы, такие как реакции секвенирования нуклеиновых кислот, особенно хорошо подходят для проточных ячеек 34. Другим особенно полезным сосудом является лунка в многолуночном планшете или планшете для микротитрования.Labeled nucleotides 10 can be used in a kit and/or system 30 (an example of which is shown in FIG. 2). The kit or system 30 may include a conductive conduit 32. The conductive conduit 32 may be within or part of a vessel such as a well, tube, conduit, cuvette, petri dish, bottle, or the like. Another example of a suitable vessel is the flow cell 34. Any flow cell configuration suitable for the implementations described herein may be used. Some examples of flow cells are flow cells that are commercially available from Ilumina, Inc. (San Diego, CA). Flow cells 34 are convenient for delivering the bulk of the reagents to a series of individually addressable conductive channels 32 during attachment of reaction components (e.g., nucleic acids templates, labeled nucleotides 10, etc.) to the corresponding conductive channel 32 or during subsequent reactions, carried out with the reaction components on their respective conductive channels 32. Cyclic processes such as nucleic acid sequencing reactions are particularly well suited to flow cells 34. Another particularly useful vessel is a well in a multiwell or microtiter plate.

В примере, показанном на Фиг. 2, проточная ячейка 34 включает токопроводящий канал 32. В том виде, в котором он используется в данном документе, термин «токопроводящий канал» предназначен для обозначения части устройства выявления, которое преобразует возмущения на своей поверхности или в окружающем его электрическом поле в электрический сигнал. Например, токопроводящий канал 32 может преобразовывать прибытие или отправление компонента реакции (например, меченого нуклеотида 10) в электрический сигнал. В примерах, раскрытых в данном документе, токопроводящий канал 32 может также преобразовывать взаимодействия двух компонентов реакции (нуклеиновой кислоты - матрицы и нуклеотида 20 меченого нуклеотида 10) в выявляемый сигнал в результате его взаимодействия с редокс-активной зарядной меткой 18 меченого нуклеотида 10.In the example shown in FIG. 2, the flow cell 34 includes a conductive conduit 32. As used herein, the term "conductive conduit" is intended to refer to a portion of a detection device that converts disturbances on its surface or in its surrounding electric field into an electrical signal. For example, conductive channel 32 may convert the arrival or departure of a reaction component (eg, labeled nucleotide 10) into an electrical signal. In the examples disclosed herein, conductive channel 32 can also convert the interactions of the two reaction components (nucleic acid-template and nucleotide 20 of labeled nucleotide 10) into a detectable signal as a result of its interaction with the redox active charge label 18 of labeled nucleotide 10.

Токопроводящий канал 32 может представлять собой канал сенсора заряда 35. Сенсор заряда 35 может включать исток и электроды стока S, D и канал 32, соединяющий электроды S, D. Канал 32 может иметь подходящую геометрию, такую как, например, трубка, проволока, пластина и т.д.The conductive channel 32 may be a charge sensor channel 35. The charge sensor 35 may include a source and drain electrodes S, D and a channel 32 connecting the S, D electrodes. The channel 32 may have a suitable geometry, such as, for example, a tube, wire, plate etc.

Электроды S, D могут представлять собой любой подходящий проводниковый материал. Примеры подходящих материалов истока и электродов стока включают кобальт, силицид кобальта, никель, силицид никеля, алюминий, вольфрам, медь, титан, молибден, оксид индия-олова (ITO - от англ. Indium tin oxide), оксид индия-цинка, золото, платину, углерод и т.д.The electrodes S, D may be any suitable conductor material. Examples of suitable source and drain electrode materials include cobalt, cobalt silicide, nickel, nickel silicide, aluminum, tungsten, copper, titanium, molybdenum, indium tin oxide (ITO), indium zinc oxide, gold, platinum, carbon, etc.

Токопроводящий канал 32 может включать любой проводниковый или полупроводниковый материал, который может окислять или восстанавливать редокс-активную зарядную метку 18. Материал может включать органический материал, неорганический материал или оба материала. Некоторые примеры подходящих материалов канала включают кремний, углерод (например, стеклоуглерод, графен и т.п.), полимеры, такие как проводящие полимеры (например, полипиррол, полианилин, политиофен, поли(3,4-этилендиокситиофен) с примесью поли(4-стиролсульфоната) (PEDOT-PSS) и т.д.), металлы и т.д.The conductive path 32 may include any conductive or semiconductor material that can oxidize or reduce the redox charge tag 18. The material may include an organic material, an inorganic material, or both. Some examples of suitable channel materials include silicon, carbon (e.g., glassy carbon, graphene, etc.), polymers such as conductive polymers (e.g., polypyrrole, polyaniline, polythiophene, poly(3,4-ethylenedioxythiophene) doped with poly(4 -styrenesulfonate) (PEDOT-PSS), etc.), metals, etc.

В некоторых примерах токопроводящий канал 26 может также представлять собой наноструктуру, которая имеет по меньшей мере один линейный размер по наношкале (находясь в интервале от 1 нм до меньше чем 1 мкм). В одном примере данный линейный размер относится к наибольшему линейному размеру. В качестве примеров, токопроводящий канал 26 может представлять собой полупроводящую наноструктуру, графеновую наноструктуру, металлическую наноструктуру и наноструктуру на основе проводящего полимера. Наноструктура может представлять собой многостенную или одностенную нанотрубку, нанопроволоку, наноленту и т.дIn some examples, conductive channel 26 may also be a nanostructure that has at least one nanoscale linear dimension (ranging from 1 nm to less than 1 µm). In one example, a given linear dimension refers to the largest linear dimension. As examples, the conductive channel 26 may be a semiconductive nanostructure, a graphene nanostructure, a metal nanostructure, and a conductive polymer nanostructure. The nanostructure can be a multi-walled or single-walled nanotube, nanowire, nanoribbon, etc.

Примером сенсора заряда 35 является полевой транзистор (FET - от англ. field effect transistor), такой как FET на основе углеродной нанотрубки (CNT - от англ. carbon nanotube), FET на основе одностенной углеродной нанотрубки (SWNT - от англ. single-walled carbon nanotube), FET на основе кремниевой нанопроволоки (SiNW - от англ. silicon nanowire), FET на основе полимерной нанопроволоки, FET на основе графеновой наноленты (и родственные FET - наноленты, изготовленные из двухмерных материалов, таких как MoS2, силицен, и т.д.), туннельный FET (TFET - от англ. tunnel FET) и устройства с большой допороговой крутизной.An example of a charge sensor 35 is a field effect transistor (FET - from the English field effect transistor), such as FET based on carbon nanotube (CNT - from English carbon nanotube), FET based on single-walled carbon nanotube (SWNT - from English single-walled carbon nanotube), FET based on silicon nanowire (SiNW - from the English silicon nanowire), FET based on polymer nanowire, FET based on graphene nanoribbon (and related FET - nanoribbons made from two-dimensional materials such as MoS 2 , silicene, and etc.), tunnel FET (TFET - from the English tunnel FET) and devices with a large pre-threshold steepness.

Примером сенсора заряда 35, показанного на Фиг. 2, является наноструктура FET, включающая исток S, электрод стока D и токопроводящий канал 32 между истоком S и электродом стока D. Токопроводящий канал 32 может представлять собой углеродную нанотрубку, одностенную углеродную нанотрубку, кремниевую нанопроволоку, полимерную нанопроволоку и т.д. Токопроводящий канал 32 функционирует как вывод затвора и, таким образом, также показан как «G» на Фиг. 2. В примерах, раскрытых в данном документе, вывод затвора G/токопроводящий канал 32 может служить в качестве окислительно-восстановительного электрода (отдающего или принимающего электроны) в отношении редокс-активной зарядной метки 18 меченого нуклеотида 10. Более конкретно, вывод затвора G/токопроводящий канал 32 можно использовать для переноса электронов к или от редокс-активной зарядной метки 18. Перенос электронов может происходить посредством туннелирования через оксидный слой затвора (не показан) на по меньшей мере части поверхности вывода затвора G/токопроводящего канала 32. В некоторых примерах для модуляции эффективности передачи тока можно использовать толщину оксидного слоя затвора, такую, чтобы минимальное количество времени контакта проходило перед тем, как редокс-активная зарядная метка 18 станет достаточно активированной. Время контакта может относиться ко времени, на протяжении которого редокс-активная зарядная метка 18 удерживается в достаточной близости от вывода затвора G/токопроводящего канала 32 для того, чтобы перенос электронов происходил с высокой долей вероятности. Данный период времени будет зависеть от многих факторов, включая тип редокс-активной зарядной метки 18, толщину оксидного слоя затвора и расстояние от вывода затвора G/токопроводящего канала 32 до зарядной метки 18. Это можно использовать для обеспечения того, чтобы сенсор заряда 35 достаточно устанавливал различие между диффундирующими мечеными нуклеотидами 10, которые временно контактируют с выводом затвора G/токопроводящим каналом 32, но которые фактически не ассоциированы с полимеразой 26, присоединенной к выводу затвора G/токопроводящему каналу 32. Ожидают, что нуклеотиды 10, которые ассоциированы с активным сайтом полимеразы 26, остаются в ассоциированном состоянии на протяжении периода времени, который значительно продолжительнее, чем период времени, за который происходит временное взаимодействие. Например, меченый нуклеотид 10 может оставаться ассоциированным с активным сайтом полимеразы (например, полимеразы 26) на протяжении от сотен микросекунд до сотен миллисекунд. Временное взаимодействие будет происходить в сроки для диффузии, которые на порядки величины быстрее.An example of charge sensor 35 shown in FIG. 2 is an FET nanostructure including a source S, a drain electrode D, and a conductive path 32 between the source S and the drain electrode D. The conductive path 32 may be a carbon nanotube, a single-walled carbon nanotube, a silicon nanowire, a polymer nanowire, and so on. The conductive path 32 functions as a gate terminal and is thus also shown as "G" in FIG. 2. In the examples disclosed herein, gate G/conductive channel 32 may serve as a redox electrode (donating or accepting electrons) in relation to the redox active charge tag 18 of labeled nucleotide 10. More specifically, gate G/ conductive path 32 may be used to transfer electrons to or from redox active charge mark 18. Electron transfer may occur by tunneling through a gate oxide layer (not shown) on at least a portion of the gate terminal surface G/conductive path 32. In some examples, for To modulate the current transfer efficiency, the thickness of the gate oxide layer can be used such that a minimum amount of contact time elapses before the redox active charging mark 18 becomes sufficiently activated. The contact time may refer to the time that the redox active charging mark 18 is held in sufficient proximity to the G gate terminal/conductive path 32 for electron transfer to occur with a high degree of probability. This period of time will depend on many factors, including the type of redox active charging mark 18, the thickness of the gate oxide layer, and the distance from the G gate terminal/conductive path 32 to the charge mark 18. This can be used to ensure that the charge sensor 35 is sufficiently set the difference between diffusible labeled nucleotides 10 that are temporarily in contact with the G gate terminal/conductive channel 32, but which are not actually associated with the polymerase 26 attached to the G gate terminal/conductive channel 32. The 10 nucleotides that are expected to be associated with the active site of the polymerase 26 remain in the associated state for a period of time that is significantly longer than the period of time over which the temporal interaction occurs. For example, labeled nucleotide 10 may remain associated with the active site of a polymerase (eg, polymerase 26) for hundreds of microseconds to hundreds of milliseconds. Temporal interaction will occur at times for diffusion that are orders of magnitude faster.

В данном примере полимераза 26 иммобилизована на выводе затвора G/токопроводящем канале 32 сенсора заряда 32 посредством связки 28. Связку 28 используют в качестве якоря для полимеразы 26. Связка 28 может демонстрировать способность к транспорту электронов. Примеры подходящих связок 28 включают цепи нуклеиновых кислот (например, имеющие от 5 до 25 нуклеотидов), пептиды, одиночные углеродные цепи, непроводящие олигомеры или полимеры или олигомеры или полимеры с низкой проводимостью и т.д.In this example, polymerase 26 is immobilized on gate G/conductive channel 32 of charge sensor 32 via tether 28. Tie 28 is used as an anchor for polymerase 26. Tie 28 may exhibit electron transport capability. Examples of suitable linkages 28 include nucleic acid chains (eg, having 5 to 25 nucleotides), peptides, single carbon chains, non-conductive oligomers or polymers or low-conductivity oligomers or polymers, etc.

В некоторых примерах связка 28 удерживает полимеразу 26 на расстоянии по меньшей мере 10 нм от вывода затвора G/токопроводящего канала 32 сенсора заряда 35. Это может быть желательным, например, когда не желательно обнаруживать заряды полимеразы 26 и/или отрицательные заряды нуклеиновой кислоты - матрицы 36, удерживаемой полимеразой 26. Однако, если желательно обнаружить заряды полимеразы 26 и/или нуклеиновой кислоты - матрицы 36, тогда связка 28 может удерживать полимеразу 26 на расстоянии меньше чем примерно 10 нм, меньше чем примерно 9 нм, меньше чем примерно 8 нм, меньше чем примерно 7 нм, меньше чем примерно 6 нм, меньше чем примерно 5 нм, меньше чем примерно 4 нм, меньше чем примерно 3 нм, меньше чем примерно 2 нм или примерно 1 нм от вывода затвора G сенсора заряда 32.In some instances, tether 28 keeps polymerase 26 at least 10 nm away from the G gate/conductive channel 32 terminal of charge sensor 35. This may be desirable, for example, when it is not desirable to detect polymerase 26 charges and/or negative charges of the nucleic acid template. 36 held by polymerase 26. However, if it is desired to detect the charges of polymerase 26 and/or nucleic acid template 36, then tether 28 may hold polymerase 26 at less than about 10 nm, less than about 9 nm, less than about 8 nm, less than about 7 nm, less than about 6 nm, less than about 5 nm, less than about 4 nm, less than about 3 nm, less than about 2 nm, or about 1 nm from the G gate terminal of charge sensor 32.

Применение сенсора заряда на основе FET 35 может обеспечивать следующее: (1) чувствительность в отношении одиночной молекулы может достигаться посредством как следует сконструированного FET, и (2) можно способствовать высокой степени параллелизации (так называемая «способность к мультиплексированию»), поскольку выявляемое изменение в заряде локализовано вблизи вывода затвора G/токопроводящего канала 32, избегая, таким образом, перекрестных помех между соседними сайтами FET с индивидуальной адресацией (например, в ряду). Кроме того, кремниевую наноструктуру FET можно изготовлять с использованием способов, которые совместимы со средствами производства полупроводников.The use of a charge sensor based on FET 35 can provide the following: (1) single molecule sensitivity can be achieved with a well-designed FET, and (2) a high degree of parallelization (so-called "multiplexing capability") can be promoted because a detectable change in charge is localized near the G gate terminal/conductor path 32, thus avoiding crosstalk between adjacent individually addressed FET sites (eg, in a row). In addition, the FET silicon nanostructure can be manufactured using methods that are compatible with semiconductor manufacturing facilities.

Примеры набора и/или системы 30 могут также включать нуклеиновую кислоту - матрицу 36, которая подлежит введению в проточную ячейку 34, и реагенты (не показаны на Фиг. 2), которые подлежат введению в проточную ячейку 34.Examples of kit and/or system 30 may also include a nucleic acid template 36 to be injected into flow cell 34 and reagents (not shown in FIG. 2) to be injected into flow cell 34.

Нуклеиновая кислота - матрица 36 может представлять собой любой образец, который подлежит секвенированию, и может состоять из ДНК, РНК или их аналогов. Источник нуклеиновых кислот - матриц (или мишеней) 36 может представлять собой геномную ДНК, матричную РНК или другие нуклеиновые кислоты из нативных источников. В некоторых случаях нуклеиновые кислоты - матрицы 36, которые происходят из таких источников, могут быть амплифицированы перед применением в способе или системе 30 в данном документе. Можно использовать любую из множества известных методик амплификации, включая полимеразную цепную реакцию (ПЦР), амплификацию по типу катящегося кольца (RCA - от англ. rolling circle amplification), амплификацию с множественным замещением (MDA- от англ. multiple displacement amplification) или амплификацию со случайными праймерами (RPA - от англ. random primer amplification), но, не ограничиваясь ими. Следует понимать, что амплификация нуклеиновых кислот - мишеней 26 перед применением в способе или системе 30, изложенной в данном документе, является необязательной. В связи с этим, нуклеиновые кислоты - матрицы 36 не будут амплифицированы перед применением в некоторых примерах. Нуклеиновые кислоты - матрицы/мишени могут возможно происходить из синтетических библиотек. Синтетические нуклеиновые кислоты могут иметь композиции нативной ДНК или РНК или могут представлять собой их аналоги.Nucleic acid template 36 may be any sample to be sequenced and may be composed of DNA, RNA, or analogues thereof. The source of nucleic acids - templates (or targets) 36 may be genomic DNA, messenger RNA or other nucleic acids from native sources. In some instances, template nucleic acids 36 that originate from such sources may be amplified prior to use in the method or system 30 herein. Any of a variety of well-known amplification techniques can be used, including polymerase chain reaction (PCR), rolling circle amplification (RCA), multiple displacement amplification (MDA), or multiple displacement amplification. random primers (RPA - from the English random primer amplification), but not limited to them. It should be understood that amplification of the target nucleic acids 26 prior to use in the method or system 30 set forth herein is optional. In this regard, nucleic acids - templates 36 will not be amplified before use in some examples. Nucleic acid templates/targets may possibly be derived from synthetic libraries. Synthetic nucleic acids may have native DNA or RNA compositions, or may be analogs thereof.

Биологические образцы, из которых могут происходить нуклеиновые кислоты - матрицы 36, включают, например, биологические образцы из млекопитающего, такого как грызун, мышь, крыса, кролик, морская свинка, копытное животное, лошадь, овца, свинья, коза, корова, кошка, собака, примат, человекообразный примат или примат, отличный от человека; растения, такого как Arabidopsis thaliana, кукуруза, сорго, овес, пшеница, рис, канола или соя; водоросли, такой как Chlamydomonas reinhardtii; круглого червя, такого как Caenorhabditis elegans; насекомого, такого как Drosophila melanogaster, комар, плодовая мушка, медоносная пчела или паук; рыбы, такой как данио-рерио; рептилии; амфибии, такой как лягушка или Xenopus laevis; dictyostelium discoideum; грибов, таких как Pneumocystis carinii, Takifugu rubripes, дрожжи, Saccharamoyces cerevisiae или Schizosaccharomyces pombe; или Plasmodium falciparum. Нуклеиновые кислоты - матрицы 36 могут также происходить из прокариот, таких как бактерия, Escherichia coli, staphylococci или mycoplasma pneumoniae; архей; вируса, такого как вирус Гепатита С, вирус Эбола или вирус иммунодефицита человека; или вироида. Нуклеиновые кислоты - матрицы 36 могут происходить из гомогенной культуры или популяции указанных выше организмов или в качестве альтернативы из коллекции нескольких разных организмов, например, в сообществе или экосистеме.Biological samples from which the nucleic acid templates 36 may be derived include, for example, biological samples from a mammal such as a rodent, mouse, rat, rabbit, guinea pig, ungulate, horse, sheep, pig, goat, cow, cat, dog, primate, anthropoid primate or non-human primate; a plant such as Arabidopsis thaliana, corn, sorghum, oats, wheat, rice, canola or soybeans; algae such as Chlamydomonas reinhardtii; a roundworm such as Caenorhabditis elegans; an insect such as Drosophila melanogaster, mosquito, fruit fly, honey bee or spider; fish such as zebrafish; reptiles; an amphibian such as a frog or Xenopus laevis; dictyostelium discoideum; fungi such as Pneumocystis carinii, Takifugu rubripes, yeast, Saccharamoyces cerevisiae or Schizosaccharomyces pombe; or Plasmodium falciparum. Nucleic acid templates 36 may also be derived from prokaryotes such as bacteria, Escherichia coli, staphylococci, or mycoplasma pneumoniae; archaea; a virus such as Hepatitis C virus, Ebola virus or human immunodeficiency virus; or viroid. Nucleic acid templates 36 may be derived from a homogeneous culture or population of the above organisms, or alternatively from a collection of several different organisms, such as in a community or ecosystem.

Кроме того, нуклеиновые кислоты - матрицы/мишени 36 могут не происходить из природных источников, а скорее могут быть синтезированы с использованием известных методик. Например, зонды для анализа экспрессии генов или зонды генотипирования могут быть синтезированы и использованы в примерах, изложенных в данном документе.In addition, the template/target nucleic acids 36 may not be derived from natural sources, but rather may be synthesized using known techniques. For example, gene expression probes or genotyping probes can be synthesized and used in the examples set forth herein.

В некоторых примерах, нуклеиновые кислоты - матрицы/мишени 36 могут быть получены в виде фрагментов одной или более чем одной более длинной нуклеиновой кислоты. Фрагментацию можно проводить, используя любую из множества методик, известных в данной области, включая, например, распыление, обработку ультразвуком, химическое расщепление, ферментативное расщепление или физическую фрагментацию.In some examples, template/target nucleic acids 36 may be obtained as fragments of one or more longer nucleic acids. Fragmentation can be carried out using any of a variety of techniques known in the art, including, for example, spraying, sonication, chemical digestion, enzymatic digestion, or physical fragmentation.

Фрагментация может также получаться в результате применения конкретной методики амплификации, посредством которой получают ампликоны в результате создания копий только части более длинной нуклеиновой кислоты. Например, посредством ПЦР-амплификации получаются фрагменты, имеющие размер, определенный длиной нуклеотидной последовательности на исходной матрице, которая находится между положениями, где во время амплификации гибридизуются фланкирущие праймеры.Fragmentation may also result from the use of a specific amplification technique whereby amplicons are obtained by making copies of only a portion of a longer nucleic acid. For example, by PCR amplification, fragments are obtained having a size determined by the length of the nucleotide sequence on the original template, which is located between the positions where flanking primers hybridize during amplification.

Популяция нуклеиновых кислот - матриц/мишеней 36 или их ампликонов может иметь среднюю длину нити, которая желательна или подходит для конкретного применения способов, наборов или системы 30, изложенных в данном документе. Например, средняя длина нити может составлять меньше чем примерно 100000 нуклеотидов, 50000 нуклеотидов, 10000 нуклеотидов, 5000 нуклеотидов, 1000 нуклеотидов, 500 нуклеотидов, 100 нуклеотидов или 50 нуклеотидов. В качестве альтернативы или дополнительно средняя длина нити может быть больше чем примерно 10 нуклеотидов, 50 нуклеотидов, 100 нуклеотидов, 500 нуклеотидов, 1000 нуклеотидов, 5000 нуклеотидов, 10000 нуклеотидов, 50000 нуклеотидов или 100000 нуклеотидов. Средняя длина нити для популяции нуклеиновых кислот - мишеней или их ампликонов может находиться в интервале от максимального до минимального значения, установленного выше.The population of nucleic acid templates/targets 36 or their amplicons may have an average strand length that is desirable or suitable for a particular application of the methods, kits or system 30 set forth herein. For example, the average strand length may be less than about 100,000 nucleotides, 50,000 nucleotides, 10,000 nucleotides, 5,000 nucleotides, 1,000 nucleotides, 500 nucleotides, 100 nucleotides, or 50 nucleotides. Alternatively or additionally, the average strand length may be greater than about 10 nucleotides, 50 nucleotides, 100 nucleotides, 500 nucleotides, 1000 nucleotides, 5000 nucleotides, 10,000 nucleotides, 50,000 nucleotides, or 100,000 nucleotides. The average strand length for a population of target nucleic acids or their amplicons may be in the range from the maximum to the minimum value set above.

В некоторых случаях популяция нуклеиновых кислот - матриц/мишеней 36 может быть получена в условиях или иначе сконфигурирована таким образом, чтобы иметь максимальную длину для своих членов. Например, максимальная длина для членов может составлять меньше чем примерно 100000 нуклеотидов, 50000 нуклеотидов, 10000 нуклеотидов, 5000 нуклеотидов, 1000 нуклеотидов, 500 нуклеотидов, 100 нуклеотидов или 50 нуклеотидов. В качестве альтернативы или дополнительно популяция нуклеиновых кислот в качестве матрицы 36 или их ампликонов может быть получена в условиях или иначе сконфигурирована таким образом, чтобы иметь минимальную длину для своих членов. Например, минимальная длина для членов может составлять больше чем примерно 10 нуклеотидов, 50 нуклеотидов, 100 нуклеотидов, 500 нуклеотидов, 1000 нуклеотидов, 5000 нуклеотидов, 10000 нуклеотидов, 50000 нуклеотидов или 100000 нуклеотидов. Максимальная и минимальная длина нити для нуклеиновых кислот - матриц 36 в популяции может находиться в интервале от максимального до минимального значения, изложенного выше.In some instances, the population of nucleic acid templates/targets 36 may be conditioned or otherwise configured to have a maximum length for its members. For example, the maximum length for members may be less than about 100,000 nucleotides, 50,000 nucleotides, 10,000 nucleotides, 5,000 nucleotides, 1,000 nucleotides, 500 nucleotides, 100 nucleotides, or 50 nucleotides. Alternatively or additionally, the population of nucleic acids as template 36 or their amplicons can be obtained under conditions or otherwise configured to have a minimum length for its members. For example, the minimum length for members may be greater than about 10 nucleotides, 50 nucleotides, 100 nucleotides, 500 nucleotides, 1000 nucleotides, 5000 nucleotides, 10,000 nucleotides, 50,000 nucleotides, or 100,000 nucleotides. The maximum and minimum strand lengths for nucleic acid templates 36 in a population may range from the maximum to the minimum set forth above.

Как показано на Фиг. 2, нуклеиновая кислота - матрица 36 (например, нить одноцепочечной ДНК), подлежащая секвенированию, связана с полимеразой 26 после введения в жидкость вместе с или отдельно от реагентов, таких как ранее описанные меченые нуклеотиды 10 (не показано на Фиг. 2).As shown in FIG. 2, a nucleic acid template 36 (e.g., a single-stranded DNA strand) to be sequenced is bound to polymerase 26 after incorporation into the liquid, along with or separately from reagents such as previously described labeled nucleotides 10 (not shown in FIG. 2).

Нуклеиновая кислота - матрица 36 и/или реагенты (например, меченые нуклеотиды 10) могут находиться в жидкости и быть введены в проточную ячейку 34. Жидкость может включать буфер с низким содержанием соли. В качестве примеров, буфер с низким содержанием соли может включать от больше чем 0 мМ до примерно 50 мМ соли. В качестве одного примера, буфер с низким содержанием соли может включать вплоть до 5 мМ Mg2+ в трис-буфере (рН 8,0). Применение буфера с низким содержанием соли может быть желательным таким образом, чтобы на чувствительную зону 31 (то есть, Дебаевскую длину) не оказывалось вредного действия, то есть, чтобы она не была слишком длинной, таким образом, чтобы исключить возможность обнаружения зарядных меток 18. Жидкость может также включать катализаторы, такие как ферменты, которые облегчают реакцию, другие добавки и растворители (например, вода, диметилсульфоксид (ДМСО), бетаин, формамид и т.д.).Nucleic acid template 36 and/or reagents (eg, labeled nucleotides 10) may be present in the fluid and introduced into the flow cell 34. The fluid may include a low salt buffer. As examples, a low salt buffer may include greater than 0 mM to about 50 mM salt. As one example, a low salt buffer may include up to 5 mM Mg 2+ in Tris buffer (pH 8.0). The use of a low salt buffer may be desirable such that the sensing zone 31 (i.e., Debye length) is not adversely affected, i.e., not too long, such that the charge marks 18 cannot be detected. The liquid may also include catalysts such as enzymes that facilitate the reaction, other additives and solvents (eg water, dimethyl sulfoxide (DMSO), betaine, formamide, etc.).

В некоторых примерах несколько разных меченых нуклеотидов 10 можно использовать вместе в жидкости, которую вводят в сенсор заряда 35. В данных примерах следует понимать, что связывающая группа 14, 14' может быть либо идентична для всех типов меченых нуклеотидов, либо может быть разной. Свойства связывающей группы 14, 14', такие как длина и жесткость, могут быть изменены таким образом, чтобы влиять на скорость окислительно-восстановительной реакции. Такие свойства могут быть отрегулированы индивидуально для меченого нуклеотида 10 и его ассоциированной редокс-активной зарядной метки 18. Свойства специфичной области 24 связывающей группы 14' можно также менять для влияния на скорость окислительно-восстановительной реакции. Связывающую группу 14, 14' можно изменять для увеличения или уменьшения количества времени, на протяжении которого редокс-активная зарядная метка 18 находится вблизи токопроводящего канала 32. Такие изменения можно использовать для влияния на скорость переноса электронов. Таким образом, временные взаимодействия между зарядной меткой 18 и токопроводящим каналом 32 в результате диффузии меченых нуклеотидов 10 могут быть сделаны с меньшей вероятностью переноса электронов. В качестве альтернативы, удерживание редокс-активной зарядной метки 18 на протяжении более длительного периода в непосредственной близости от токопроводящего канала 32 может приводить к более высокой вероятности переноса электронов.In some examples, several different labeled nucleotides 10 can be used together in a fluid that is injected into the charge sensor 35. In these examples, it should be understood that the linking group 14, 14' may either be identical for all types of labeled nucleotides, or may be different. The properties of the linking group 14, 14', such as length and stiffness, can be changed in such a way as to influence the rate of the redox reaction. Such properties can be adjusted individually for the labeled nucleotide 10 and its associated redox active charge label 18. The properties of the specific region 24 of the linking group 14' can also be changed to influence the rate of the redox reaction. The linking group 14, 14' can be changed to increase or decrease the amount of time that the redox active charging mark 18 is near the conductive channel 32. Such changes can be used to influence the electron transfer rate. Thus, temporal interactions between charging label 18 and conductive channel 32 as a result of diffusion of labeled nucleotides 10 can be made less likely to transfer electrons. Alternatively, keeping the redox active charging tag 18 for a longer period in close proximity to conductive channel 32 may result in a higher probability of electron transfer.

В одном примере четыре разных меченых нуклеотида 10 используют в жидкости, которую вводят в сенсор заряда 35, причем каждый включает отличающийся нуклеотид 12 (в частности отличающееся основание 20) и отличающуюся нуклеотид-специфичную редокс-активную зарядную метку 18. Пример этого показан на Фиг. 3. В данном примере меченые нуклеотиды 10 включают: первый меченый нуклеотид 10А, включающий дезоксиаденозинполифосфат в качестве нуклеотида и первую нуклеотид-специфичную редокс-активную зарядную метку (показано с четырьмя положительными зарядами на Фиг. 3); второй меченый нуклеотид 10G, включающий дезоксигуанозинполифосфат в качестве нуклеотида и вторую нуклеотид-специфичную редокс-активную зарядную метку (показано с четырьмя отрицательными зарядами на Фиг. 3); третий меченый нуклеотид 10С, включающий дезоксицитидинполифосфат в качестве нуклеотида и третью нуклеотид-специфичную редокс-активную зарядную метку (показано с двумя отрицательными зарядами на Фиг. 3); и четвертый меченый нуклеотид 10Т, включающий дезокситимидинфосфат в качестве нуклеотида и четвертую нуклеотид-специфичную редокс-активную зарядную метку (показано с одним положительным зарядом на Фиг. 3). В данном примере первая, вторая, третья и четвертая нуклеотид-специфичные редокс-активные зарядные метки отличаются друг от друга.In one example, four different labeled nucleotides 10 are used in a fluid that is injected into the charge sensor 35, each including a different nucleotide 12 (in particular, a different base 20) and a different nucleotide-specific redox active charge label 18. An example of this is shown in FIG. 3. In this example, labeled nucleotides 10 include: a first labeled nucleotide 10A comprising deoxyadenosine polyphosphate as a nucleotide and a first nucleotide-specific redox active charge label (shown with four positive charges in FIG. 3); a second 10G labeled nucleotide comprising deoxyguanosine polyphosphate as the nucleotide and a second nucleotide-specific redox active charge tag (shown with four negative charges in FIG. 3); a third 10C labeled nucleotide comprising deoxycytidine polyphosphate as nucleotide and a third nucleotide-specific redox active charge tag (shown with two negative charges in FIG. 3); and a fourth 10T labeled nucleotide comprising deoxythymidine phosphate as the nucleotide and a fourth nucleotide-specific redox active charge tag (shown with one positive charge in FIG. 3). In this example, the first, second, third and fourth nucleotide-specific redox-active charge marks are different from each other.

В примере, показанном на Фиг. 3, две из первой, второй, третьей и четвертой нуклеотид-специфичных редокс-активных зарядных меток положительно заряжены (например, dATP и dTTP) в измененном состоянии заряда (то есть, после протекания окислительно-восстановительной реакции), и другие две из первой, второй, третьей и четвертой нуклеотид-специфичных редокс-активных зарядных меток (например, dGTP и dCTP) отрицательно заряжены в измененном состоянии заряда (то есть, после протекания окислительно-восстановительной реакции).In the example shown in FIG. 3, two of the first, second, third, and fourth nucleotide-specific redox active charge labels are positively charged (e.g., dATP and dTTP) in an altered state of charge (i.e., after a redox reaction has occurred), and the other two from the first, the second, third, and fourth nucleotide-specific redox-active charging labels (eg, dGTP and dCTP) are negatively charged in an altered state of charge (ie, after a redox reaction has occurred).

В примере, показанном на Фиг. 3, даже в том случае, если заряды на двух из нуклеотид-специфичных редокс-активных зарядных меток являются одинаковыми (положительными или отрицательными), метки 18 можно еще использовать для того, чтобы установить различие между разными типами нуклеотидов, поскольку заряды имеют разную силу (например, после редокс-активации). Согласно примеру конфигурации, показанному на Фиг. 3, предложено установление различия между четырьмя состояниями на основе единственного положения гибридизации со связкой и четырех разных редокс-активных зарядных меток 18. Конкретнее, как dGTP, так и dCTP содержат отрицательно заряженные редокс-активные зарядные метки 18, которые отличают их от dATP и dTTP; и dGTP можно отличить от dCTP, благодаря заряду, который различимо выше, чем заряд на dCTP. Аналогично, dATP и dTTP можно отличить друг от друга, благодаря более высокому положительному заряду на группировке dATP, по сравнению с группировкой dTTP.In the example shown in FIG. 3, even if the charges on two of the nucleotide-specific redox-active charge marks are the same (positive or negative), marks 18 can still be used to distinguish between different types of nucleotides, since the charges have different strengths ( e.g. after redox activation). According to the configuration example shown in FIG. 3, it is proposed to differentiate between four states based on a single bond hybridization position and four different redox active charge marks 18. More specifically, both dGTP and dCTP contain negatively charged redox active charge marks 18 that distinguish them from dATP and dTTP ; and dGTP can be distinguished from dCTP by a charge that is distinctly higher than the charge on dCTP. Similarly, dATP and dTTP can be distinguished from each other due to the higher positive charge on the dATP moiety compared to the dTTP moiety.

В некоторых примерах может быть невозможным иметь редокс-активные зарядные метки 18 как положительной, так и отрицательной величины, функционирующие в одной и той же жидкости, поскольку напряжение, требуемое для того, чтобы зарядить отрицательно зарядную метку, может разряжать положительно зарядную метку, и наоборот. В связи с этим, в других примерах может быть желательным использовать примеры меченых нуклеотидов 10, раскрытые в данном документе, которые включают редокс-активные зарядные метки 18 одной полярности, и использовать другие меченые нуклеотиды, которые включают постоянно зарядные (то есть, не редокс) метки. Примеры постоянно заряженных меток включают отрицательно заряженные метки, такие как, например, фосфатная группа, DMT и/или FMOC (от англ. 9-fluorenylmethoxycarbonyl - 9-флуоренилметоксикарбонил); или положительно заряженные метки, такие как первичный амин. В качестве примера, можно использовать от одного до трех разных меченых нуклеотидов 10 (включая редокс-активные зарядные метки 18), и остальная часть меченых нуклеотидов будет включать постоянно зарядные метки и не редокс-активные зарядные метки 18. Это особенно полезно в случае, когда используют условия восстановления или окисления (но не и те и другие). Следует понимать, что в данных примерах не должно происходить агломерации, поскольку отсутствует относительно высокая концентрация больших группировок обоих типов заряда в растворе в одно и то же время.In some instances, it may not be possible to have redox active charge marks 18 of both positive and negative magnitude operating in the same fluid, since the voltage required to charge a negative charge mark may discharge a positive charge mark, and vice versa. . In this regard, in other examples, it may be desirable to use the examples of labeled nucleotides 10 disclosed herein that include single polarity redox active charge labels 18, and to use other labeled nucleotides that include permanently charged (i.e., non-redox) labels. Examples of permanently charged labels include negatively charged labels such as, for example, a phosphate group, DMT and/or FMOC (9-fluorenylmethoxycarbonyl - 9-fluorenylmethoxycarbonyl); or positively charged labels such as a primary amine. As an example, one to three different labeled nucleotides 10 (including redox active charge labels 18) can be used, and the remainder of the labeled nucleotides will include permanently charge labels and non-redox active charge labels 18. This is especially useful when use reduction or oxidation conditions (but not both). It should be understood that in these examples no agglomeration should occur since there is no relatively high concentration of large groups of both types of charge in solution at the same time.

На Фиг. 3 также проиллюстрирована чувствительная зона 31 (заштрихованная область вокруг вывода затвора G/токопроводящего канала 32). Сенсоры заряда 35 могут функционировать в биологически релевантных солевых условиях, например, в интервале от примерно 1 мМ до примерно 100 мМ. Дебаевская длина таких солевых растворов может находиться в интервале от примерно 0,3 нМ до примерно 10 нМ, что может ограничивать чувствительную зону 31 до нескольких нм снаружи от поверхности вывода затвора G и часто может уменьшать уровни сигнала с ограничением возможности выявления.On FIG. 3 also illustrates the sensing area 31 (shaded area around the gate terminal G/conductive path 32). The charge sensors 35 can operate under biologically relevant saline conditions, for example, in the range of about 1 mM to about 100 mM. The Debye length of such saline solutions can range from about 0.3 nM to about 10 nM, which can limit the 31 sensitive area to a few nm outside the G gate exit surface and can often reduce signal levels with limited detection.

В то время как несколько связанных полимераз 28 показаны на токопроводящем канале 32 на Фиг. 3, следует понимать, что в конкретном сенсоре заряда 35 одна полимераза 28 связана с одним токопроводящим каналом 32. Вследствие этого, в примере, показанном на Фиг. 3, проиллюстрирована полимераза 28 во время событий включения четырех разных нуклеотидов, и эффект, оказываемый на разные редокс-активные зарядные метки 18 во время соответствующих событий включения.While several linked polymerases 28 are shown on conductive channel 32 in FIG. 3, it should be understood that in a particular charge sensor 35, one polymerase 28 is associated with one conductive channel 32. Therefore, in the example shown in FIG. 3 illustrates polymerase 28 during incorporation events of four different nucleotides, and the effect on different redox active charge marks 18 during corresponding incorporation events.

Обращаясь теперь к Фиг. 4, изображен пример способа. Способ 100 включает следующее: введение нуклеиновой кислоты - матрицы 36 в токопроводящий канал 32, имеющий связанную с ним полимеразу 26 (номер позиции 102); введение меченых нуклеотидов 10 в токопроводящий канал 32, причем по меньшей мере один из меченых нуклеотидов 10 включает нуклеотид 12 и нуклеотид-специфичную редокс-активную зарядную метку 18, присоединенную к нему, посредством чего один из меченых нуклеотидов 10 ассоциирует с полимеразой 26 (номер позиции 104); при ассоциации одного из меченых нуклеотидов 10, инициация окислительно-восстановительной реакции между нуклеотид-специфичной редокс-активной меткой 18 и токопроводящим каналом 32 с изменением состояния заряда нуклеотид-специфичной редокс-активной зарядной метки 18 (номер позиции 106); и под действием окислительно-восстановительной реакции, выявление ответа сенсора заряда 32 (номер позиции 108). На Фиг. 5А и 5Б также будут ссылаться на протяжении обсуждения способа 100.Turning now to FIG. 4 shows an example of the method. The method 100 includes the following: introducing a nucleic acid template 36 into a conductive channel 32 having a polymerase 26 associated therewith (position number 102); introduction of labeled nucleotides 10 into conductive channel 32, wherein at least one of the labeled nucleotides 10 includes nucleotide 12 and a nucleotide-specific redox active charging label 18 attached thereto, whereby one of the labeled nucleotides 10 associates with polymerase 26 (position number 104); upon association of one of the labeled nucleotides 10, initiation of a redox reaction between the nucleotide-specific redox-active label 18 and conductive channel 32 with a change in the state of charge of the nucleotide-specific redox-active charging label 18 (position number 106); and under the influence of a redox reaction, detecting the response of the charge sensor 32 (item number 108). On FIG. 5A and 5B will also be referred to throughout the discussion of method 100.

Как показано на Фиг. 5А, нуклеиновая кислота - матрица 36, вводимая в сенсор заряда 32, может закрепляться на месте посредством полимеразы 26, которая связана с сенсором заряда 32. Нуклеиновая кислота - матрица 36, показанная на Фиг. 5А, может представлять собой нить ДНК - матрицу.As shown in FIG. 5A, nucleic acid template 36 introduced into charge sensor 32 can be locked in place by polymerase 26 that is coupled to charge sensor 32. Nucleic acid template 36 shown in FIG. 5A may be a template DNA strand.

Также как показано на Фиг. 5А, меченый нуклеотид 10 может включать основание 20, которое комплементарно целевой нуклеиновой кислоте нуклеиновой кислоты - матрицы 36. Меченый нуклеотид 10 будет закреплен на месте, частично, посредством полимеразы 26, которая также связана с нуклеиновой кислотой - матрицей 36. Если имеется, специфичная область 24 связывающей группы 14' меченого нуклеотида 10 может взаимодействовать со связкой 28.Also as shown in FIG. 5A, labeled nucleotide 10 may include a base 20 that is complementary to the target nucleic acid of template nucleic acid 36. Labeled nucleotide 10 will be fixed in place, in part, by polymerase 26, which is also linked to nucleic acid template 36. If present, the specific region 24 linking group 14' of labeled nucleotide 10 can interact with ligament 28.

Пример меченого нуклеотида 10, ассоциированного со связкой 28, показан на 5В. В данном примере связывающая группа 14' меченого нуклеотида 10 включает специфичную область 24 (например, А', В', С), которая обладает аффинностью в отношении части (например, А, В, С) связки 28. В данном конкретном примере специфичная область 24 (например, А', В', С) включает нуклеотиды или пептидо-нуклеиновые кислоты, которые комплементарны нуклеотидам или пептидо-нуклеиновым кислотам данной части (например, А, В, С) связки 28. В другом примере, специфичная область 24 и акцепторная область связки 28 может представлять собой группировки, не являющиеся нуклеиновыми кислотами, которые обладают аффинностью друг к другу. В еще одном примере специфичная область 24 может представлять собой группировку, не являющуюся нуклеиновой кислотой, которая обладает аффинностью в отношении гидрофобного полимера (один пример связки 28). Специфичное связывание данных областей может быть получено в результате стандартного спаривания оснований по Уотсону-Крику. Специфичная область 24, в данном примере, может также включать инозины (I), фланкирующие А', В', С нуклеотидную последовательность. Инозины представляют собой универсальные основания, и, таким образом, могут спариваться со всеми четырьмя нативными нуклеотидами ДНК. В связи с этим, дополнительные связывающие взаимодействия могут быть результатом взаимодействий универсальных оснований (например, инозина I) с нативными нуклеотидами на связке 28. Таким образом, когда меченый нуклеотид 10 связывается с полимеразой 26 во время включения, происходит синергическое связывание между специфичной областью 24 меченого нуклеотида 10 и связкой 28, что значительно увеличивает стабильность взаимодействия меченого нуклеотида 10 и связки 28.An example of labeled nucleotide 10 associated with ligament 28 is shown in 5B. In this example, the 14' linking group of labeled nucleotide 10 includes a specific region 24 (eg, A', B', C) that has affinity for a portion (eg, A, B, C) of ligament 28. In this specific example, the specific region 24 (eg, A', B', C) includes nucleotides or peptidonucleic acids that are complementary to nucleotides or peptidonucleic acids of the given portion (eg, A, B, C) of tether 28. In another example, specific region 24 and the acceptor region of ligament 28 may be non-nucleic acid moieties that have an affinity for each other. In yet another example, specific region 24 may be a non-nucleic acid moiety that has affinity for a hydrophobic polymer (one example of linkage 28). Specific binding of these regions can be obtained by standard Watson-Crick base pairing. Specific region 24, in this example, may also include inosines (I) flanking the A', B', C nucleotide sequence. Inosines are universal bases and thus can pair with all four native DNA nucleotides. In this regard, additional binding interactions may result from interactions of universal bases (eg, inosine I) with native nucleotides at ligament 28. Thus, when labeled nucleotide 10 binds to polymerase 26 during incorporation, synergistic binding occurs between the specific region nucleotide 10 and ligament 28, which significantly increases the stability of the interaction between labeled nucleotide 10 and ligament 28.

Когда связывающая группа14 меченого нуклеотида 10 не включает специфичную область 24, следует понимать, что меченый нуклеотид 10 будет закреплен на месте в результате взаимодействия с полимеразой 26. Длина связывающей группы 14 может способствовать удерживанию редокс-активной зарядной метки 18 в пределах чувствительной зоны 31 вывода затвора G/токопроводящего канала 32.When the linking group 14 of the labeled nucleotide 10 does not include a specific region 24, it should be understood that the labeled nucleotide 10 will be fixed in place by interaction with the polymerase 26. The length of the linking group 14 may assist in keeping the redox active charge label 18 within the sensitive gate output zone 31 G/conductive channel 32.

Взаимодействие меченого нуклеотида 10 и полимеразы 26 или меченого нуклеотида 10 и полимеразы 26 и связки 28 вызывает попадание редокс-активной зарядной метки 18 в чувствительную зону 31 токопроводящего канала 32. Взаимодействие(я) также помогает(ют) в удержании редокс-активной зарядной метки 18 в чувствительной зоне 31 на протяжении периода времени, достаточного для эффективного и полного переноса заряда. Период времени может составлять вплоть до десятков миллисекунд. Данное относительно длительное взаимодействие отличается от других меченых нуклеотидов 10, находящихся в растворе, которые могут диффундировать и на протяжении непродолжительного времени соприкасаться с токопроводящим каналом 32. Непродолжительное взаимодействие не является достаточно длительным для того, чтобы происходил достаточный перенос заряда, и таким образом в данных примерах редокс-активная зарядная метка 18 не является заряженной, и ответа не выявляют посредством сенсора заряда 32.The interaction of labeled nucleotide 10 and polymerase 26 or labeled nucleotide 10 and polymerase 26 and binding 28 causes the redox active charge label 18 to enter the sensitive zone 31 of the conductive channel 32. The interaction(s) also help(s) in retaining the redox active charge label 18 in sensitive area 31 for a period of time sufficient for efficient and complete charge transfer. The time period can be up to tens of milliseconds. This relatively long interaction is different from other labeled nucleotides 10 in solution, which can diffuse and briefly contact the conductive channel 32. The short interaction is not long enough for sufficient charge transfer to occur, and thus in these examples the redox active charging label 18 is not charged and no response is detected by the charge sensor 32.

В примере, показанном на Фиг. 5А, редокс-активная зарядная метка 18 на основе фталоцианина меди меченого нуклеотида поступает в поле (например, чувствительную зону 31), которое находится в пределах от примерно 1 нм до примерно 2 нм от токопроводящего канала 32. Поскольку меченый нуклеотид 10 закреплен на месте, редокс-активная зарядная метка 18 способна стать заряженной посредством вывода затвора G/токопроводящего канала 32.In the example shown in FIG. 5A, a redox-active copper phthalocyanine charging label 18 of a labeled nucleotide enters a field (eg, sensitive area 31) that is within about 1 nm to about 2 nm from conductive channel 32. Since labeled nucleotide 10 is fixed in place, the redox active charging tag 18 is able to become charged by outputting the gate G/conductive path 32.

Для инициации окислительно-восстановительной реакции между выводом затвора G/токопроводящим каналом 32 (например, кремниевой нанопроволокой, углеродной нанотрубкой и т.д.) и редокс-активной зарядной меткой 18, напряжение, прикладываемое к выводу затвора G/токопроводящему каналу 32, можно доводить до напряжения оксидирования или напряжения восстановления редокс-активной зарядной метки 18. При окислении, редокс-активная зарядная метка 18 теряет электроны, и, таким образом, вывод затвора G/токопроводящий канал 32 создает суммарные положительные заряды на редокс-активной зарядной метке 18. При восстановлении, редокс-активная зарядная метка 18 получает электроны, и, таким образом, вывод затвора G/токопроводящий канал 32 привносит суммарные отрицательные заряды в редокс-активную зарядную метку 18. В результате окислительно-восстановительной реакции состояние заряда редокс-активной зарядной метки 18 меняется. Данное измененное сильно заряженное состояние (например, по сравнению с состоянием редокс-активной зарядной метки 18 перед зарядкой, которое является неокисленным или невосстановленным состоянием) вносит помехи в поле вокруг токопроводящего канала 32 и формирует выявляемый сигнал.In order to initiate a redox reaction between the G gate terminal/conductive path 32 (e.g., silicon nanowire, carbon nanotube, etc.) and the redox active charging tag 18, the voltage applied to the G gate terminal/conductive path 32 may be adjusted to the oxidation voltage or recovery voltage of the redox active charge mark 18. When oxidized, the redox active charge mark 18 loses electrons, and thus the G gate terminal/conductive path 32 generates total positive charges on the redox active charge mark 18. When recovery, the redox active charging mark 18 gains electrons, and thus the gate terminal G/conductive path 32 injects total negative charges into the redox active charging mark 18. As a result of the redox reaction, the state of charge of the redox active charging mark 18 changes . This altered highly charged state (eg, compared to the state of the redox active charging mark 18 before charging, which is a non-oxidized or non-reduced state) interferes with the field around the conductive path 32 and generates a detectable signal.

Напряжение, прикладываемое к токопроводящему каналу 32 во время окислительно-восстановительной реакции и во время выявления, может зависеть от используемой редокс-активной зарядной метки 18. Например, зарядное напряжение может отличаться от напряжения считывания, и, таким образом, токопроводящий канал 32 может циклично меняться от зарядного(ых) напряжения(ий) до напряжения(ий) считывания. В одном примере инициирование окислительно-восстановительной реакции включает прикладывание зарядного напряжения к токопроводящему каналу 32, и выявление ответа токопроводящего канала 32 включает прикладывание напряжения считывания к токопроводящему каналу 32.The voltage applied to conductive path 32 during the redox reaction and during detection may depend on the redox active charging tag 18 used. For example, the charging voltage may differ from the read voltage and thus conductive path 32 may cycle from charging voltage(s) to readout voltage(s). In one example, initiating a redox reaction includes applying a charging voltage to conductive path 32, and detecting the response of conductive path 32 includes applying a sense voltage to conductive path 32.

Ответ токопроводящего канала 32 после окислительно-восстановительной реакции является показателем измененного состояния заряда редокс-активной зарядной метки 18. Ответ токопроводящего канала 32 после окислительно-восстановительной реакции может также указывать на основание 20 меченого нуклеотида 10, поскольку редокс-активная зарядная метка 18 является нуклеотид-специфичной (то есть специфичная метка 18 выбрана для конкретного основания 20). В связи с этим, способ 100 может также включать ассоциирование ответа токопроводящего канала 32 с нуклеотид-специфичной редокс-активной зарядной меткой 18 ассоциированного одного из меченых нуклеотидов 10 (то есть меченого нуклеотида 10, ассоциировал с полимеразой 26), и, на основе нуклеотид-специфичной редокс-активной зарядной метки 18, идентификацию нуклеотида (например, основания 20) ассоциированного меченого нуклеотида 10 (то есть, меченого нуклеотида 10, который ассоциировал с полимеразой 26).The response of conductive channel 32 after the redox reaction is indicative of the changed state of charge of the redox active charge label 18. The response of conductive channel 32 after the redox reaction may also indicate the base 20 of the labeled nucleotide 10, since the redox active charge label 18 is a nucleotide- specific (ie, a specific label 18 is selected for a specific base 20). In this regard, the method 100 may also include associating the current channel response 32 with a nucleotide-specific redox active charge label 18 of the associated one of the labeled nucleotides 10 (i.e., the labeled nucleotide 10 associated with the polymerase 26), and, based on the nucleotide- a specific redox-active charge label 18, identifying the nucleotide (eg, base 20) of the associated labeled nucleotide 10 (ie, the labeled nucleotide 10 that has associated with polymerase 26).

Основание 20 ассоциированного меченого нуклеотида 10 будет включено в растущую нить 38, которая подвергается гибридизации с нуклеиновой кислотой - матрицей 36. В свою очередь, при этом будет естественно рваться связь между фосфатной группой 16 меченого нуклеотида 10 и только что включенного нуклеотидного основания 20. Например, после включения нуклеотидного основания 20 в растущую нить 38 связь между альфа-фосфатом и связывающей группой 16 или между альфа-фосфатом и бета-фосфатом естественно расщепляется. В результате, оставшееся количество меченого нуклеотида 10 (например, компоненты 14 или 14' и 18) может диссоциировать от нуклеотидного основания 20 и диффундировать в сторону от токопроводящего канала 32, возвращая, таким образом, поле вокруг токопроводящего канала 32 в состояние, в котором оно было до ассоциации меченого нуклеотида 10 с полимеразой 26. Появление и исчезновение сигнала, когда в поле вокруг токопроводящего канала 32 вносятся помехи, и оно возвращается в невозбужденное состояние, соответственно, может коррелировать с включением нуклеотидного основания 20 в растущую нить 38 нуклеиновой кислоты - матрицы 36. В связи с этим, примеры способа 100 также включают отщепление (например, на уровне фосфатной группы 16) нуклеотид-специфичной редокс-активной зарядной метки 18 и связывающей группы 14, 14' от ассоциированного одного из меченых нуклеотидов 10, вследствие чего нуклеотидное основание 20 ассоциированного меченого нуклеотида 10 включается в растущую нить 38, комплементарную нуклеиновой кислоте - матрице 36. Отщепление может включать ожидание того, чтобы происходило естественное отщепление. Поскольку сигнал возвращается к исходному состоянию между последовательными включениями оснований меченого нуклеотида 20, возможно выявление гомополимерных сегментов в растущей нити 38 вдоль нити матрицы 36.The base 20 of the associated labeled nucleotide 10 will be incorporated into the growing strand 38, which undergoes hybridization with the nucleic acid template 36. In turn, this will naturally break the bond between the phosphate group 16 of the labeled nucleotide 10 and the newly incorporated nucleotide base 20. For example, after incorporation of nucleotide base 20 into growing strand 38, the bond between alpha-phosphate and linking group 16 or between alpha-phosphate and beta-phosphate is naturally cleaved. As a result, the remaining amount of labeled nucleotide 10 (e.g., components 14 or 14' and 18) can dissociate from nucleotide base 20 and diffuse away from conductive channel 32, thus returning the field around conductive channel 32 to the state in which it was before the association of the labeled nucleotide 10 with polymerase 26. The appearance and disappearance of the signal, when interference is introduced into the field around the conductive channel 32 and it returns to the unexcited state, respectively, can correlate with the incorporation of the nucleotide base 20 into the growing strand 38 of the nucleic acid matrix 36 In this regard, examples of the method 100 also include cleavage (for example, at the level of the phosphate group 16) of the nucleotide-specific redox-active charge label 18 and the linking group 14, 14' from the associated one of the labeled nucleotides 10, whereby the nucleotide base 20 associated labeled nucleotide 10 is included in the growing strand 38, complementary yu nucleic acid template 36. Cleavage may include waiting for natural cleavage to occur. Since the signal returns to its original state between successive inclusions of the bases of the labeled nucleotide 20, it is possible to identify homopolymer segments in the growing strand 38 along the strand of the matrix 36.

Некоторые примеры, раскрытые в данном документе, используют синергическое связывание меченого нуклеотида 10 с полимеразой 26, отдельно или в комбинации со связкой 28, для приведения и удерживания редокс-активной зарядной метки 18 вблизи чувствительной зоны 31 токопроводящего канала 32. Стабильность комплекса, образованного связкой 28 и специфичной областью 24, может быть относительно низкой, такой что комплекс (образованный специфичной областью 24 и связкой 28) не образуется в случае меченых нуклеотидов 10, которые также не связаны с полимеразой 26 (то есть меченые нуклеотиды 10, которые свободны в растворе, по существу не связываются со связкой 28). Иными словами, скорость диссоциации комплекса может быть достаточной высокой, чтобы время жизни было коротким. Однако, когда образуется стабильная ассоциация между меченым нуклеотидом 10 и полимеразой 26, локальная концентрация связывающей группы 14, 14' повышается вокруг связки 28, таким образом, приводя к высокой скорости ассоциации специфичной области 24 со связкой 28. Таким образом, общая продолжительность ассоциации значительно увеличена в ассоциированном с полимеразой состоянии меченого нуклеотида 10, по сравнению с неассоциированным состоянием свободноплавающих меченых нуклеотидов 10. Синергическое действие аффинностей меченого нуклеотида 10 в отношении полимеразы 30, отдельно или в комбинации со связкой 28, делает возможной существенную общую аффинность связывания. После естественного отщепления посредством полимеразы 26 после включения нуклеотидного основания 20, синергическое действие теряется, и зарядная метка 18 также будет диссоциировать от токопроводящего канала 32.Some of the examples disclosed herein use the synergistic binding of labeled nucleotide 10 to polymerase 26, alone or in combination with tether 28, to bring and maintain a redox active charge tag 18 near the sensing zone 31 of conductive channel 32. Stability of the complex formed by tether 28 and specific region 24 can be relatively low such that the complex (formed by specific region 24 and ligament 28) is not formed in the case of labeled nucleotides 10 that are also not bound to polymerase 26 (i.e. labeled nucleotides 10 that are free in solution, according to essentially do not associate with ligament 28). In other words, the rate of dissociation of the complex can be high enough for the lifetime to be short. However, when a stable association is formed between labeled nucleotide 10 and polymerase 26, the local concentration of linking group 14, 14' increases around tether 28, thus leading to a high rate of association of specific region 24 with tether 28. Thus, the overall duration of association is greatly increased. in the polymerase-associated state of labeled nucleotide 10, compared to the unassociated state of free-floating labeled nucleotides 10. The synergistic effect of the affinities of labeled nucleotide 10 for polymerase 30, alone or in combination with tether 28, allows for substantial overall binding affinity. After natural cleavage by polymerase 26 after incorporation of nucleotide base 20, the synergistic effect is lost and charge label 18 will also dissociate from conductive channel 32.

В примере способа 100 ассоциирование одного из меченых нуклеотидов 10 с полимеразой 28, инициирование окислительно-восстановительной реакции, выявление, ассоциирование ответа и идентификация включенного нуклеотидного основания 20 вместе представляют собой цикл секвенирования. Способ 100 может дополнительно включать следующее: проведение другого цикла секвенирования с другим меченым нуклеотидом 10, который ассоциирует с полимеразой 26. Проведение следующего цикла секвенирования может включать обеспечение ассоциации следующего из меченых нуклеотидов 10 с полимеразой 26; при ассоциации следующего из меченых нуклеотидов 10 инициирование другой окислительно-восстановительной реакции между другой нуклеотид-специфичной редокс-активной зарядной меткой 18 и сенсором заряда 32 с изменением состояния заряда другой нуклеотид-специфичной редокс-активной зарядной метки 18; под действием другой окислительно-восстановительной реакции выявление другого ответа сенсора заряда 32; ассоциирование другого ответа сенсора заряда 32 с другой нуклеотид-специфичной редокс-активной зарядной меткой; и на основе другой нуклеотид-специфичной редокс-активной зарядной метки 18, идентификацию нуклеотида (основания 20) следующего одного из меченых нуклеотидов 10 (то есть, который проассоциировал с полимеразой 26). Другая нуклеотид-специфичная редокс-активная зарядная метка может быть отщеплена, и нуклеотид (основание 20) следующего одного из меченых нуклеотидов 10 включается в растущую нить 38, комплементарную нуклеиновой кислоте - матрице 36. Цикл секвенирования можно повторять.In the exemplary method 100, association of one of the labeled nucleotides 10 with polymerase 28, initiation of a redox reaction, detection, association of the response, and identification of the included nucleotide base 20 together constitute a sequencing cycle. The method 100 may further include: performing another sequencing run with a different labeled nucleotide 10 that associates with polymerase 26. Performing the next sequencing run may include allowing the next of the labeled nucleotides 10 to be associated with polymerase 26; upon association of the next of the labeled nucleotides 10, initiating another redox reaction between the other nucleotide-specific redox active charge label 18 and the charge sensor 32 to change the state of charge of the other nucleotide-specific redox active charge label 18; under the influence of another redox reaction, the detection of a different response of the charge sensor 32; associating another charge sensor response 32 with another nucleotide-specific redox active charge label; and based on another nucleotide-specific redox active charge label 18, identifying the nucleotide (base 20) of the next one of the labeled nucleotides 10 (ie, which has associated with polymerase 26). Another nucleotide-specific redox-active charge label can be cleaved off and the nucleotide (base 20) of the next one of the labeled nucleotides 10 is included in the growing strand 38 complementary to the nucleic acid template 36. The sequencing cycle can be repeated.

В примерах, раскрытых в данном документе, также можно использовать форму волны. За формой волны можно следить для определения того, когда она достигнет одного или более пороговых значений напряжения в отношении окислительно-восстановительного потенциала редокс-активных зарядных меток 18, которые имеют разные окислительно-восстановительные потенциалы. В данных примерах изменение в полученном токе через вывод затвора G/токопроводящий канал 32 может быть использовано в качестве информации для идентификации основания 20 меченого нуклеотида 10, включая редокс-активную зарядную метку 18, которая ассоциирована с конкретным пороговым напряжением.In the examples disclosed in this document, you can also use the waveform. The waveform can be monitored to determine when it reaches one or more voltage thresholds in relation to the redox potential of the redox charging tags 18 that have different redox potentials. In these examples, a change in received current through gate G/conductive channel 32 can be used as information to identify base 20 of labeled nucleotide 10, including a redox active charging label 18 that is associated with a particular threshold voltage.

В примерах, раскрытых в данном документе, число электронов, переносимых к или от редокс-активной зарядной метки 18, можно также отслеживать. Переносимое число электронов можно использовать для идентификации основания нуклеотида 20, ассоциированного с полимеразой 26, и что полимераза 26 включается в растущую нить 38.In the examples disclosed herein, the number of electrons transferred to or from the redox active charging mark 18 can also be monitored. The carried electron number can be used to identify the base of nucleotide 20 associated with polymerase 26 and that polymerase 26 is incorporated into the growing strand 38.

Меченые нуклеотиды 10 и систему 10, раскрытую в данном документе, можно использовать для любого из множества применений. Как описано в ссылке на Фиг. 4, 5А и 5В, конкретным полезным применением является секвенирование нуклеиновой кислоты, такое как секвенирование одиночных молекул методом синтеза (SBS - от англ. sequencing-by-synthesis). В SBS одиночных молекул удлинение праймера нуклеиновой кислоты вдоль нуклеиновой кислоты - матрицы 36 (например, целевая нуклеиновая кислота или ее ампликон) отслеживают для определения последовательности нуклеотидов в матрице 36. Лежащий в основе химический процесс может представлять собой полимеризацию (например, катализируемую ферментом полимеразой 26, как описано в данном документе). В конкретном примере SBS одиночных молекул на основе полимеразы нуклеотиды (например, основания 20) добавляют к праймеру (удлиняя, таким образом, праймер и образуя растущую нить 38) в матрице зависимым образом таким образом, чтобы можно было использовать выявление порядка и типа нуклеотидов, добавляемых к праймеру, для определения последовательности матрицы. Множество разных матриц 36 в разных токопроводящих каналах 32 целого ряда можно подвергать анализу на основе методики SBS одиночных молекул в условиях, где события, происходящие в случае разных матриц 36, можно различить посредством индивидуальных детекторов, которые функционально связаны с каждым из токопроводящих каналов 32. Каждый токопроводящий канал 32 (и его исток и электроды стока S, D) может быть размещен в углублении или лунке проточной ячейки, что помогает физически отделять один канал 32 от соседнего канала 32 в ряду.The labeled nucleotides 10 and system 10 disclosed herein can be used for any of a variety of applications. As described in reference to FIG. 4, 5A and 5B, a particular useful application is nucleic acid sequencing such as single molecule sequencing by synthesis (SBS). In single molecule SBS, nucleic acid primer extension along nucleic acid template 36 (e.g., the target nucleic acid or its amplicon) is monitored to determine the nucleotide sequence in template 36. The underlying chemical process may be polymerization (e.g., catalyzed by the enzyme polymerase 26, as described in this document). In a specific example of polymerase-based single molecule SBS, nucleotides (e.g., base 20) are added to a primer (thus extending primer and forming a growing strand of 38) in a template in a dependent manner such that detection of the order and type of nucleotides added can be used. to the primer, to determine the sequence of the template. A plurality of different matrices 36 in different arrays of conductive channels 32 can be analyzed based on the single molecule SBS technique under conditions where events occurring in the case of different matrices 36 can be distinguished by individual detectors that are operatively associated with each of the conductive channels 32. Each conductive conduit 32 (and its source and drain electrodes S, D) may be placed in a recess or well of the flow cell, which helps to physically separate one conduit 32 from an adjacent conduit 32 in a row.

Другие подходящие применения для меченых нуклеотидов 10, набора и системы 30, раскрытых в данном документе, включают секвенирование методом лигирования и секвенирование методом гибридизации. Другим полезным применением для меченых нуклеотидов 10 и системы 30, раскрытых в данном документе, является анализ экспрессии генов. Экспрессию генов можно выявлять или количественно определять, используя методики секвенирования РНК, такие как методики, называемые цифровым секвенированием РНК. Методики секвенирования РНК можно осуществлять, используя методы секвенирования, известные в данной области, такие как методы, изложенные выше, за исключением того, что флуоресцентное выявление оптически меченых нуклеотидов можно заменить способами выявления на основе заряда, изложенными в данном документе.Other suitable uses for labeled nucleotides 10, kit and system 30 disclosed herein include ligation sequencing and hybridization sequencing. Another useful application for labeled nucleotides 10 and system 30 disclosed in this document is the analysis of gene expression. Gene expression can be detected or quantified using RNA sequencing techniques such as those referred to as digital RNA sequencing. RNA sequencing techniques can be performed using sequencing techniques known in the art, such as those set forth above, except that the fluorescent detection of optically labeled nucleotides can be replaced by the charge-based detection methods set forth herein.

Экспрессию генов можно также выявлять или количественно определять с использованием методик гибридизации, проводимых посредством прямой гибридизации с чипом, или с использованием мультиплексного анализа, продукты которого выявляют на чипе. Данные способы можно легко адаптировать посредством замены оптических меток и флуоресцентного выявления методиками выявления на основе заряда и редокс-активными зарядными метками 18, изложенными в данном документе.Gene expression can also be detected or quantified using hybridization techniques carried out by direct hybridization to an array, or using multiplex analysis whose products are detected on an array. These methods can be readily adapted by replacing optical labels and fluorescent detection with charge-based detection techniques and redox active charge labels 18 set forth herein.

Следует понимать, что все комбинации приведенных выше понятий и дополнительных понятий, обсуждаемых более подробно ниже (в том случае, если такие понятия не являются взаимно противоречащими), рассматриваются как часть предмета изобретения, раскрытого в данном документе. В частности, все комбинации заявленного предмета изобретения, появляющиеся в конце данного раскрытия, рассматриваются как часть предмета изобретения, раскрытого в данном документе. Также следует понимать, что терминология, в явном виде используемая в данном документе, которая также может появляться в любом раскрытии, включенном посредством ссылки, должна предоставлять значение, наиболее соответствующее конкретным понятиям, раскрытым в данном документе.It should be understood that all combinations of the above concepts and additional concepts discussed in more detail below (in the event that such concepts are not mutually contradictory) are considered as part of the subject matter disclosed in this document. In particular, all combinations of claimed subject matter appearing at the end of this disclosure are considered part of the subject matter disclosed herein. It should also be understood that the terminology explicitly used in this document, which may also appear in any disclosure incorporated by reference, should provide the meaning that is most appropriate for the specific concepts disclosed in this document.

Ссылка на протяжении всего описания изобретения на «один пример», «другой пример», «пример» и т.п., означает, что конкретный элемент (например, признак, структура и/или характеристика), описанный в связи с данным примером, включен в по меньшей мере один пример, описанный в данном документе, и может быть представлен или может не быть представлен в других примерах. Кроме того, следует понимать, что описанные элементы для любого примера можно объединять любым подходящим образом в разных примерах, если контекстом явным образом не продиктовано иное.Reference throughout the description of the invention to "one example", "another example", "example", etc., means that a particular element (for example, a feature, structure and/or characteristic) described in connection with this example, included in at least one example described herein and may or may not be present in other examples. In addition, it should be understood that the described elements for any example can be combined in any suitable way in different examples, unless the context clearly dictates otherwise.

Термины «по существу» и «примерно», используемые на протяжении данного раскрытия, включая формулу изобретения, используют для описания и объяснения небольших отклонений, как например, вследствие разброса при обработке. Например, они могут относиться к меньше чем или равным плюс/минус 5%, как например, меньше чем или равным плюс/минус 2%, как например, меньше чем или равным плюс/минус 1%, как например, меньше чем или равным плюс/минус 0,5%, как например, меньше чем или равным плюс/минус 0,2%, как например, меньше чем или равным плюс/минус 0,1%, как например, меньше чем или равным плюс/минус 0,05%.The terms "substantially" and "about" as used throughout this disclosure, including the claims, are used to describe and explain small variations, such as due to processing scatter. For example, they may refer to less than or equal to plus/minus 5%, such as less than or equal to plus/minus 2%, such as less than or equal to plus/minus 1%, such as less than or equal to plus /minus 0.5%, such as less than or equal to plus/minus 0.2%, such as less than or equal to plus/minus 0.1%, such as less than or equal to plus/minus 0.05 %.

Кроме того, следует понимать, что диапазоны, предложенные в данном документе, включают установленный диапазон или любое значение или поддиапазон в пределах установленного диапазона, как если бы такое значение или поддиапазон были в явном виде перечислены. Например, следует понимать, что диапазон, представленный от примерно 1 заряда до примерно 100 зарядов, включает не только в явном виде перечисленные пределы от примерно 1 заряда до примерно 100 зарядов, но также включает отдельные значения, такие как, например, 5 зарядов, 50 зарядов, 75 зарядов и т.д., и поддиапазоны, как например, от примерно 15 зарядов до примерно 85 зарядов, и т.д.In addition, it should be understood that the ranges proposed herein include the specified range or any value or subrange within the specified range, as if such a value or subrange were explicitly listed. For example, it should be understood that the range represented from about 1 charge to about 100 charges includes not only the explicitly listed ranges of about 1 charge to about 100 charges, but also includes individual values such as, for example, 5 charges, 50 charges, 75 charges, etc., and subranges such as from about 15 charges to about 85 charges, etc.

В то время как несколько примеров было подробно описано, следует понимать, что раскрытые примеры можно модифицировать. Таким образом, приведенное выше описание нужно считать неограничивающим.While several examples have been described in detail, it should be understood that the disclosed examples may be modified. Thus, the above description is to be considered non-limiting.

Claims (62)

1. Меченый нуклеотид для секвенирования нуклеиновых кислот, содержащий:1. Labeled nucleotide for nucleic acid sequencing, containing: нуклеотид;nucleotide; связывающую группу, присоединенную к фосфатной группе указанного нуклеотида; иa linking group attached to the phosphate group of the specified nucleotide; and редокс-активную зарядную метку, присоединенную к связывающей группе, причем указанная редокс-активная зарядная метка подлежит окислению или восстановлению посредством токопроводящего канала при удерживании вблизи чувствительной зоны токопроводящего канала;a redox-active charge label attached to the linking group, said redox-active charge label being oxidized or reduced by the conductive channel when held near a sensitive area of the conductive channel; где указанная связывающая группа содержит алкильную цепь, содержащую по меньшей мере 6 атомов углерода, амидную группу, поли(этиленгликолевую)цепь, содержащую по меньшей мере 3 этиленгликолевых звена, и триазол;where said linking group contains an alkyl chain containing at least 6 carbon atoms, an amide group, a poly(ethylene glycol) chain containing at least 3 ethylene glycol units, and a triazole; где редокс-активная зарядная метка выбрана из группы, состоящей из ферроцена, цинк-тетрабензопорфирина, фталоцианина кобальта, трис-(2,2'-бипиримидин)рутения, 4-ферроценилбензилового спирта, 5-(4-гидроксиметилфенил)-10,15,20-тримезитилпорфинато-цинка (II) и редокс-активного каликсарена.where the redox active charge label is selected from the group consisting of ferrocene, zinc tetrabenzoporphyrin, cobalt phthalocyanine, tris-(2,2'-bipyrimidine)ruthenium, 4-ferrocenylbenzyl alcohol, 5-(4-hydroxymethylphenyl)-10.15, 20-trimesitylporphynato-zinc (II) and redox-active calixarene. 2. Меченый нуклеотид по п. 1, в котором редокс-активная зарядная метка включает координированный атом металла, который подлежит вступлению в окислительно-восстановительную реакцию.2. A labeled nucleotide according to claim 1, wherein the redox active charge label includes a coordinated metal atom that is subject to redox reaction. 3. Меченый нуклеотид по п. 1 или 2, в котором связывающая группа содержит специфичную область, присоединенную к редокс-активной зарядной метке.3. A labeled nucleotide according to claim 1 or 2, wherein the linking group contains a specific region attached to a redox active charge label. 4. Меченый нуклеотид по п. 3, в котором специфичная область подлежит взаимодействию с акцепторной областью на связке, связанной с токопроводящим каналом, при этом специфичная область включает аффинную метку.4. A labeled nucleotide according to claim 3, wherein the specific region is to be interacted with an acceptor region on the ligament associated with the conductive channel, wherein the specific region includes an affinity label. 5. Меченый нуклеотид по п. 4, в котором специфичная область подлежит гибридизации с акцепторной областью на связке, связанной с токопроводящим каналом, и аффинная метка включает нуклеотидную последовательность, включающую от одного нуклеотида до десяти нуклеотидов, или последовательность пептидо-нуклеиновой кислоты, включающую от одной пептидо-нуклеиновой кислоты до десяти пептидо-нуклеиновых кислот.5. The tagged nucleotide according to claim 4, wherein the specific region is to be hybridized with an acceptor region on the ligament associated with the conductive channel, and the affinity tag includes a nucleotide sequence comprising from one nucleotide to ten nucleotides, or a peptido nucleic acid sequence comprising from one peptido-nucleic acid to ten peptido-nucleic acids. 6. Меченый нуклеотид по любому из пп. 1-5, в котором:6. Labeled nucleotide according to any one of paragraphs. 1-5, in which: редокс-активная зарядная метка включает 10 зарядов или менее в неокисленном или невосстановленном состоянии; иthe redox active charge label includes 10 charges or less in the non-oxidized or non-reduced state; and редокс-активная зарядная метка включает от 1 до 100 зарядов в окисленном или восстановленном состоянии.redox-active charge label includes from 1 to 100 charges in the oxidized or reduced state. 7. Способ секвенирования нуклеиновых кислот, включающий:7. Method for sequencing nucleic acids, including: введение нуклеиновой кислоты - матрицы в токопроводящий канал, имеющий связанную с ним полимеразу;introducing a nucleic acid matrix into a conductive channel having a polymerase associated with it; введение меченых нуклеотидов по п.1 в токопроводящий канал, причем по меньшей мере один из меченых нуклеотидов включает нуклеотид, связывающую группу, присоединенную к фосфатной группе указанного нуклеотида, и нуклеотид-специфичную редокс-активную зарядную метку, присоединенную к нему, посредством чего один из меченых нуклеотидов ассоциирует с полимеразой, и где указанная связывающая группа содержит алкильную цепь, содержащую по меньшей мере 6 атомов углерода, амидную группу, поли(этиленгликолевую)цепь, содержащую по меньшей мере 3 этиленгликолевых звена, и триазол; и где редокс-активная зарядная метка выбрана из группы, состоящей из ферроцена, цинк-тетрабензопорфирина, фталоцианина кобальта, трис-(2,2'-бипиримидин)рутения, 4-ферроценилбензилового спирта, 5-(4-гидроксиметилфенил)-10,15,20-тримезитилпорфинато-цинка (II) и редокс-активного каликсарена,introduction of labeled nucleotides according to claim 1 into a conductive channel, wherein at least one of the labeled nucleotides includes a nucleotide linking group attached to the phosphate group of the specified nucleotide, and a nucleotide-specific redox-active charging label attached to it, whereby one of labeled nucleotides associates with a polymerase, and where the specified linking group contains an alkyl chain containing at least 6 carbon atoms, an amide group, a poly(ethylene glycol) chain containing at least 3 ethylene glycol units, and a triazole; and wherein the redox active charge label is selected from the group consisting of ferrocene, zinc tetrabenzoporphyrin, cobalt phthalocyanine, tris(2,2'-bipyrimidine)ruthenium, 4-ferrocenylbenzyl alcohol, 5-(4-hydroxymethylphenyl)-10.15 ,20-trimesitylporfinato-zinc (II) and redox-active calixarene, при ассоциировании одного из меченых нуклеотидов инициирование окислительно-восстановительной реакции между нуклеотид-специфичной редокс-активной зарядной меткой и токопроводящим каналом с изменением состояния заряда нуклеотид-специфичной редокс-активной зарядной метки; иwhen associating one of the labeled nucleotides, initiating a redox reaction between the nucleotide-specific redox-active charging label and the conductive channel with a change in the state of charge of the nucleotide-specific redox-active charging label; and под действием окислительно-восстановительной реакции выявление ответа токопроводящего канала.under the action of a redox reaction, the detection of the response of the conductive channel. 8. Способ по п. 7, в котором:8. The method according to claim 7, in which: инициирование окислительно-восстановительной реакции включает прикладывание зарядного напряжения к токопроводящему каналу, иinitiating a redox reaction includes applying a charging voltage to a conductive path, and выявление ответа включает прикладывание напряжения считывания к токопроводящему каналу.detecting a response involves applying a sense voltage to the conductive path. 9. Способ по п. 7 или 8, дополнительно включающий:9. The method according to claim 7 or 8, further comprising: ассоциирование ответа токопроводящего канала с нуклеотид-специфичной редокс-активной зарядной меткой одного из меченых нуклеотидов, являющегося ассоциированным; иassociating the conductive channel response with a nucleotide-specific redox-active charging label of one of the labeled nucleotides that is associated; and идентификацию нуклеотида ассоциированного меченого нуклеотида на основе нуклеотид-специфичной редокс-активной зарядной метки.nucleotide identification of the associated labeled nucleotide based on the nucleotide-specific redox-active charge label. 10 Способ по п. 9, дополнительно включающий отщепление нуклеотид-специфичной редокс-активной зарядной метки от одного из меченых нуклеотидов, являющегося ассоциированным, посредством чего нуклеотид ассоциированного меченого нуклеотида включается в растущую нить, комплементарную нуклеиновой кислоте - матрице.10 The method of claim 9, further comprising cleaving a nucleotide-specific redox-active charge tag from one of the labeled nucleotides that is associated, whereby the nucleotide of the associated labeled nucleotide is incorporated into a growing strand complementary to the nucleic acid template. 11. Способ по п. 10, в котором11. The method according to claim 10, in which ассоциирование одного из меченых нуклеотидов, инициирование окислительно-восстановительной реакции, выявление, ассоциирование и идентификация совместно представляют собой цикл секвенирования; при этомassociation of one of the labeled nucleotides, initiation of a redox reaction, detection, association and identification together constitute a sequencing cycle; wherein способ дополнительно включаетthe method further includes проведение следующего цикла секвенирования посредством следующего:conducting the next sequencing run through the following: обеспечение возможности ассоциирования следующего одного из меченых нуклеотидов с полимеразой;allowing the next one of the labeled nucleotides to associate with the polymerase; при ассоциировании указанного следующего одного из меченых нуклеотидов инициирование другой окислительно-восстановительной реакции между другой нуклеотид-специфичной редокс-активной зарядной меткой и токопроводящим каналом с изменением состояния заряда указанной другой нуклеотид-специфичной редокс-активной зарядной метки;when associating said next one of the labeled nucleotides, initiating another redox reaction between the other nucleotide-specific redox active charging label and the conductive channel to change the state of charge of said other nucleotide-specific redox active charging label; под действием указанной другой окислительно-восстановительной реакции выявление другого ответа токопроводящего канала;under the influence of the specified other redox reaction, the detection of another response of the conductive channel; ассоциирование указанного другого ответа токопроводящего канала с указанной другой нуклеотид-специфичной редокс-активной зарядной меткой; иassociating said different conductive channel response with said different nucleotide-specific redox-active charging label; and идентификация нуклеотида следующего одного из меченых нуклеотидов на основе указанной другой нуклеотид-специфичной редокс-активной зарядной метки.identifying a nucleotide of the next one of the labeled nucleotides based on said other nucleotide-specific redox active charge label. 12. Способ по п. 11, дополнительно включающий:12. The method of claim 11, further comprising: отщепление указанной другой нуклеотид-специфичной редокс-активной зарядной метки, посредством чего нуклеотид следующего одного из меченых нуклеотидов включается в растущую нить, комплементарную нуклеиновой кислоте-матрице; иcleaving said other nucleotide-specific redox-active charge tag, whereby a nucleotide of the next one of the labeled nucleotides is incorporated into a growing strand complementary to the nucleic acid template; and повторение цикла секвенирования.repetition of the sequencing cycle. 13. Способ по любому из пп. 7-12, в котором редокс-активная зарядная метка включает координированный атом металла, который подлежит вступлению в окислительно-восстановительную реакцию.13. The method according to any one of paragraphs. 7-12, in which the redox-active charge label includes a coordinated metal atom that is subject to entry into a redox reaction. 14. Способ по любому из пп. 7-13, в котором:14. The method according to any one of paragraphs. 7-13, in which: редокс-активная зарядная метка включает 10 зарядов или менее в неокисленном или невосстановленном состоянии; иthe redox active charge label includes 10 charges or less in the non-oxidized or non-reduced state; and редокс-активная зарядная метка включает от 1 заряда до 100 зарядов в измененном состоянии заряда.a redox active charging tag includes from 1 charge to 100 charges in an altered state of charge. 15. Способ по любому из пп. 7-14, в котором15. The method according to any one of paragraphs. 7-14, in which меченые нуклеотиды включают:labeled nucleotides include: первый меченый нуклеотид, включающий дезоксиаденозинполифосфат в качестве нуклеотида и первую нуклеотид-специфичную редокс-активную зарядную метку;a first labeled nucleotide comprising deoxyadenosine polyphosphate as a nucleotide and a first nucleotide-specific redox active charge label; второй меченый нуклеотид, включающий дезоксигуанозинполифосфат в качестве нуклеотида и вторую нуклеотид-специфичную редокс-активную зарядную метку;a second labeled nucleotide comprising deoxyguanosine polyphosphate as a nucleotide and a second nucleotide-specific redox active charge label; третий меченый нуклеотид, включающий дезоксицитидинполифосфат в качестве нуклеотида и третью нуклеотид-специфичную редокс-активную зарядную метку; иa third labeled nucleotide comprising deoxycytidine polyphosphate as a nucleotide and a third nucleotide-specific redox active charge label; and четвертый меченый нуклеотид, включающий дезокситимидинполифосфат в качестве нуклеотида и четвертую нуклеотид-специфичную редокс-активную зарядную метку; при этомa fourth labeled nucleotide comprising deoxythymidine polyphosphate as a nucleotide and a fourth nucleotide-specific redox active charge label; wherein первая, вторая, третья и четвертая нуклеотид-специфичные редокс-активные зарядные метки отличаются друг от друга.the first, second, third and fourth nucleotide-specific redox-active charge marks are different from each other. 16. Способ по п. 15, в котором две из первой, второй, третьей и четвертой нуклеотид-специфичных редокс-активных зарядных меток являются положительно заряженными в измененном состоянии заряда и где другие две из первой, второй, третьей и четвертой нуклеотид-специфичных редокс-активных зарядных меток являются отрицательно заряженными в измененном состоянии заряда.16. The method of claim 15, wherein two of the first, second, third, and fourth nucleotide-specific redox active charge labels are positively charged in an altered state of charge, and wherein the other two are of the first, second, third, and fourth nucleotide-specific redox -active charge tags are negatively charged in an altered state of charge. 17. Способ по любому из пп. 7-16, в котором меченые нуклеотиды находятся в буфере с низким содержанием соли.17. The method according to any one of paragraphs. 7-16, in which the labeled nucleotides are in a low salt buffer. 18. Способ по любому из пп. 7-17, в котором токопроводящий канал представляет собой канал полевого транзистора.18. The method according to any one of paragraphs. 7-17, in which the conductive channel is a FET channel. 19. Набор для секвенирования нуклеиновых кислот, содержащий:19. Nucleic acid sequencing kit, comprising: проточную ячейку, включающую:flow cell including: токопроводящий канал, имеющий полимеразу, связанную с ним;a conductive channel having a polymerase associated therewith; нуклеиновую кислоту - матрицу, подлежащую введению в проточную ячейку;a nucleic acid matrix to be introduced into the flow cell; реагенты, подлежащие введению в проточную ячейку, включающие меченые нуклеотиды, при этом по меньшей мере один из меченых нуклеотидов представляет собой меченый нуклеотид по п. 1; иreagents to be introduced into the flow cell, including labeled nucleotides, wherein at least one of the labeled nucleotides is a labeled nucleotide according to claim 1; and детектор для выявления ответа от токопроводящего канала, когда протекает окислительно-восстановительная реакция между редокс-активной зарядной меткой и токопроводящим каналом,a detector for detecting a response from the conductive channel when a redox reaction occurs between the redox active charging tag and the conductive channel, где редокс-активная зарядная метка выбрана из группы, состоящей из ферроцена, цинк-тетрабензопорфирина, фталоцианина кобальта, трис-(2,2'-бипиримидин)рутения, 4-ферроценилбензилового спирта, 5-(4-гидроксиметилфенил)-10,15,20-тримезитилпорфинато-цинка (II) и редокс-активного каликсарена.where the redox active charge label is selected from the group consisting of ferrocene, zinc tetrabenzoporphyrin, cobalt phthalocyanine, tris-(2,2'-bipyrimidine)ruthenium, 4-ferrocenylbenzyl alcohol, 5-(4-hydroxymethylphenyl)-10.15, 20-trimesitylporphynato-zinc (II) and redox-active calixarene. 20. Набор по п. 19, в котором:20. The set according to claim 19, in which: редокс-активная зарядная метка включает 10 зарядов или менее в неокисленном или невосстановленном состоянии; иthe redox active charge label includes 10 charges or less in the non-oxidized or non-reduced state; and редокс-активная зарядная метка включает от 1 заряда до 100 зарядов в окисленном или восстановленном состоянии.a redox-active charging label includes from 1 charge to 100 charges in an oxidized or reduced state. 21. Набор по любому из пп. 19, 20, в котором токопроводящий канал представляет собой канал полевого транзистора.21. Set according to any one of paragraphs. 19, 20, in which the conductive channel is a FET channel.
RU2019139633A 2018-02-16 2019-02-13 Labeled nucleotides and their use RU2782056C2 (en)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US201862710465P 2018-02-16 2018-02-16
US62/710,465 2018-02-16
PCT/US2019/017830 WO2019160937A1 (en) 2018-02-16 2019-02-13 Labeled nucleotides and uses thereof

Publications (3)

Publication Number Publication Date
RU2019139633A RU2019139633A (en) 2021-06-07
RU2019139633A3 RU2019139633A3 (en) 2021-06-07
RU2782056C2 true RU2782056C2 (en) 2022-10-21

Family

ID=

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2637310C1 (en) * 2016-06-08 2017-12-04 Федеральное Государственное Бюджетное Учреждение Науки Институт Молекулярной Биологии Им. В.А. Энгельгардта Российской Академии Наук (Имб Ран) Fluorescently-labeled deoxyuridine triphosphates

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2637310C1 (en) * 2016-06-08 2017-12-04 Федеральное Государственное Бюджетное Учреждение Науки Институт Молекулярной Биологии Им. В.А. Энгельгардта Российской Академии Наук (Имб Ран) Fluorescently-labeled deoxyuridine triphosphates

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
В.Г.Беликов "Фармацевтическая химия", учебное пособие, 2007, Москва, "МЕДпресс-информ", стр.27-29. Химическая Энциклопедия под ред. И.Л. Кнунянца, М., из-во Большая Российская Энциклопедия, 1992, т. 3, стр. 302, нуклеотиды, стр. 106-109, "молекула". Рекомендации по межгосударственной стандартизации РМГ 29-2013 ГСИ. Метрология. Основные термины и определения, Москва, Стандартинформ, 2014, стр. 18, п.6.14, https://files.stroyinf.ru/Data2/1/4293772/4293772305.pdf. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Tosar et al. Electrochemical DNA hybridization sensors applied to real and complex biological samples
US5824477A (en) Electrochemical denaturation of double-stranded nucleic acid
US6365400B1 (en) Electrochemical denaturation of double-stranded nucleic acid
US11332786B2 (en) Sensor and sensing system
US8715932B2 (en) Nucleic acid sequencing
US10203297B2 (en) Device and method for detecting redox reactions in solution
Pedrero et al. Electrochemical genosensors based on PCR strategies for microorganisms detection and quantification
GB2247889A (en) DNA denaturation by an electric potential
AU2019222685B2 (en) Labeled nucleotides and uses thereof
Wan et al. Multiplexed electrochemical DNA sensor for single-nucleotide polymorphism typing by using oligonucleotide-incorporated nonfouling surfaces
RU2782056C2 (en) Labeled nucleotides and their use
US20140228247A1 (en) Sequence-specific analysis of nucleic acids
Palchetti et al. Electrochemical hybridization-based biosensor in environmental monitoring
Kara et al. Electrochemical Genoassay Design for Allele‐Specific Detection of Toll‐Like Receptor‐2 Gene Polymorphism
Bowater et al. Sensitive electrochemical assays of DNA structure
NZ760030A (en) Sensor And Sensing System
BOWATER et al. Electronic science Sensitive electrochemical assays of DNA structure
Krüger 2) Patent Application Publication o Pub. No.: US 2014/0228247 A1