RU2778997C1 - Nutrient medium for differentiation of parahemolytic vibrios - Google Patents

Nutrient medium for differentiation of parahemolytic vibrios Download PDF

Info

Publication number
RU2778997C1
RU2778997C1 RU2021139727A RU2021139727A RU2778997C1 RU 2778997 C1 RU2778997 C1 RU 2778997C1 RU 2021139727 A RU2021139727 A RU 2021139727A RU 2021139727 A RU2021139727 A RU 2021139727A RU 2778997 C1 RU2778997 C1 RU 2778997C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
medium
vibrios
meat
glucose
kanagawa
Prior art date
Application number
RU2021139727A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Ольга Сергеевна Чемисова
Алексей Борисович Мазрухо
Георгий Давидович Харабаджахян
Ирина Константиновна Савельева
Оксана Алексеевна Цырулина
Маргарита Мартиросовна Сагакянц
Денис Игоревич Каминский
Елена Павловна Ульрих
Original Assignee
Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека"
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека" filed Critical Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека"
Application granted granted Critical
Publication of RU2778997C1 publication Critical patent/RU2778997C1/en

Links

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: invention relates to the field of biotechnology. The invention is a nutrient medium that can be used in laboratory practice to determine the pathogenic properties of vibrios in the Kanagawa test in the diagnosis of food poisoning, wound infections and septicemia of a bacterial nature. The substance of the proposed invention lies in the fact that the medium additionally includes a hemophilic microbial growth stimulant, glucose, sodium carbonate, methylene violet, and the nutritional base is an enzymatic digest of meat at the following quantitative ratios of components, g/l: enzymatic digest of meat (GMF - broth) - 20.0±2.0, growth stimulator of hemophilic microbes (HMGS) - 5.0±0.5, microbiological agar - 15.0±2.0, glucose - 5.0±1.0, mannitol - 5, 0±1.0, sodium chloride - 50.0±2.0
sodium carbonate - 1.5±0.2, potassium hydrogen phosphate - 5.0±0.5, methylene violet - 0.002±0.0005, washed erythrocytes - 50±1.0, at pH 8.0.
EFFECT: creation of nutrient medium that can be used in laboratory practice to determine the pathogenic properties of vibrios in the Kanagawa test in the diagnosis of food poisoning, wound infections and septicemia of a bacterial nature.
1 cl, 6 tbl, 6 ex

Description

Предполагаемое изобретение относится к области медицинской микробиологии, а именно является питательной средой, которая может быть использована в лабораторной практике для определения патогенных свойств вибрионов в тесте Канагава при диагностике пищевых токсикоинфекций, раневых инфекций и септицимий бактериальной природы.The alleged invention relates to the field of medical microbiology, namely, it is a nutrient medium that can be used in laboratory practice to determine the pathogenic properties of vibrios in the Kanagawa test in the diagnosis of food poisoning, wound infections and septicemia of a bacterial nature.

В тесте Канагава используют среду Вагатцума, которая предназначалась только для определения патогенности V. parahaemolyticus. В настоящее время существует более 11 патогенных видов парагемолитических вибрионов (ПГВ), из которых только часть может быть тестирована на среде Вагатцума. В связи с этим возникла необходимость в создании унифицированной питательной среды для всех видов патогенных ПГВ при использовании в тестировании на наличие гемолитического токсина в тесте Канагава.The Kanagawa test uses Wagatsuma medium, which was only intended to determine the pathogenicity of V. parahaemolyticus. There are currently more than 11 pathogenic parahemolytic vibrios (PHV) species, of which only a fraction can be tested on Wagatsuma medium. In this regard, it became necessary to create a unified nutrient medium for all types of pathogenic PHV when used in testing for the presence of hemolytic toxin in the Kanagawa test.

Известна питательная среда для выделения и идентификации ПГВ (1) следующего состава: пептон, агар микробиологический, сахароза, бромтимоловый синий с добавлением калия карбоната, калия сульфита, желчи КРС, экстракта дрожжевого сухого и смеси алкилсульфатов, а в качестве идентифицирующей добавки используют натрий хлорид.Known nutrient medium for the isolation and identification of PGV (1) of the following composition: peptone, microbiological agar, sucrose, bromthymol blue with the addition of potassium carbonate, potassium sulfite, cattle bile, dry yeast extract and a mixture of alkyl sulfates, and sodium chloride is used as an identifying additive.

Недостатком известной среды является невозможность ее использования для дифференциации среды в тесте КанагаваThe disadvantage of the known environment is the impossibility of using it to differentiate the environment in the Kanagawa test.

Наиболее близкой к предлагаемой питательной среде для определения патогенности парагемолитических вибрионов в тесте Канагава является среда Вагатцума (2) состоящая из:The closest to the proposed nutrient medium for determining the pathogenicity of parahemolytic vibrios in the Kanagawa test is Wagatsuma medium (2) consisting of:

Пептон ферментативныйPeptone enzymatic 10,0 г10.0 g Натрия хлоридSodium chloride 70,0 г70.0 g МаннитMannitol 10,0 г10.0 g Калия гидрофосфатPotassium hydrogen phosphate 5,0 г5.0 g Дрожжевой экстрактYeast extract 3,0 г3.0 g Кристаллический фиолетовыCrystal violet 0,001 г0.001 g Агар микробиологическийAgar microbiological 15,0 г15.0 g Эритроциты отмытыеErythrocytes washed 20,020.0

рН 8,0.pH 8.0.

Однако данная среда является импортным препаратом. При этом высокое содержание натрия хлорид - 7% ограничивает прорастание в данной среде ряда патогенных вибрионов -V. mimicus,V. damsela,V. hollisae, V. vulnificus, V. harveyi. Наличие в среде маннита в качестве углеводного компонента ухудшает условия культивирования V. damsela, V. hollisae, V. vulnificus, V. harveyi.However, this medium is an imported preparation. At the same time, the high content of sodium chloride - 7% limits the germination in this environment of a number of pathogenic vibrios -V. mimicus, V. damsela, V. hollisae, V. vulnificus, V. harveyi. The presence of mannitol as a carbohydrate component in the medium worsens the cultivation conditions for V. damsela, V. hollisae, V. vulnificus, V. harveyi.

Таким образом, среда Вагатцума не может быть в полной мере использована для идентификации патогенных свойств всей группы ПГВ. В связи с необходимостью стандартизации и унификации бактериологических исследований материала на наличие инфекционных патогенов, повышения эффективности среды и использования отечественных препаратов появилась потребность в новой питательной среде.Thus, the Wagatsuma medium cannot be fully used to identify the pathogenic properties of the entire PGV group. In connection with the need for standardization and unification of bacteriological studies of the material for the presence of infectious pathogens, increasing the efficiency of the medium and the use of domestic preparations, there was a need for a new nutrient medium.

Недостатком среды является ее высокая себестоимость, невозможность использования для всех видов патогенных ПГВ - V. parahaemolyticus, V. alginolyticus и в первую очередь - V. damsela, V. vulnificus, V. harveyi, V. hollisae.The disadvantage of the medium is its high cost, the inability to use for all types of pathogenic PGV - V. parahaemolyticus, V. alginolyticus and, first of all, V. damsela, V. vulnificus, V. harveyi, V. hollisae.

Технической задачей предполагаемого изобретения является создание новой дифференциальной питательной среды СГВ для определения патогенности ПГВ путем усиления гемолитической активности в тесте Канагава.The technical objective of the proposed invention is the creation of a new differential GBS nutrient medium for determining the pathogenicity of PBV by enhancing hemolytic activity in the Kanagawa test.

Поставленная задача достигается тем, что в известной питательной среде для дифференциации парагемолитических вибрионов, включающей питательную основу из пептона, агара микробиологического, натрия хлорид, маннит, калий гидрофосфат, эритроциты, отличие заключается в том, что среда дополнительно включает стимулятор роста гемофильных микробов, глюкозу, натрия карбонат, метиленовый фиолетовый, а питательная основа представляет собой ферментативный перевар мяса при следующих количественных соотношениях компонентов, г/л:This task is achieved by the fact that in a well-known nutrient medium for differentiation of parahemolytic vibrios, including a nutrient base of peptone, microbiological agar, sodium chloride, mannitol, potassium hydrogen phosphate, erythrocytes, the difference lies in the fact that the medium additionally includes a growth stimulator of hemophilic microbes, glucose, sodium carbonate, methylene violet, and the nutritional base is an enzymatic digest of meat at the following quantitative ratios of components, g/l:

Ферментативный перевар мяса (ГМФ - бульон) - 20,0±2,0Enzymatic digestion of meat (GMF - broth) - 20.0±2.0

Стимулятор роста гемофильных микробов (СРГМ) - 5,0±0,5Growth stimulator of hemophilic microbes (SHGM) - 5.0±0.5

Агар микробиологический - 15,0±2,0Microbiological agar - 15.0±2.0

ГлюкозаGlucose 5,0±1,05.0±1.0 МаннитMannitol 5,0±1,05.0±1.0 Натрия хлоридSodium chloride 50,0±2,050.0±2.0 Натрия карбонатsodium carbonate 1,5±0,21.5±0.2 Калия гидрофосфатPotassium hydrogen phosphate 5,0±0,55.0±0.5 Метиленовый фиолетовыйmethylene violet 0,002±0,00050.002±0.0005 Эритроциты отмытыеErythrocytes washed 50±1,050±1.0

при рН 8,0.at pH 8.0.

Способ приготовления питательной среды осуществляют по следующей технологии.The method of preparation of the nutrient medium is carried out according to the following technology.

Питательная среда компануется из реагентов отечественного производства: ферментативный перевар мяса (ГМФ - бульон) - производитель ООО НИЦФ г. Санкт-Петербург;The nutrient medium is compiled from domestically produced reagents: enzymatic digestion of meat (GMF - broth) - manufacturer NITsF LLC, St. Petersburg;

стимулятор роста гемофильных микробов (СРГМ) - СРГМ ФБУН ГНЦ ПМБ П. Оболенск, Московская обл. и т.д.growth stimulator of hemophilic microbes (SRGM) - SRGM FBUN SRC PMB P. Obolensk, Moscow region. etc.

Вышеуказанные реагенты заливают 950 мл дистиллированной воды и доводят до кипения, расплавляют при тщательном перемешивании, стерилизуют, охлаждают до 45-50°С, вносят эритроциты. Реакция среды 8,0. Готовую среду разливают в чашки Петри.The above reagents are poured into 950 ml of distilled water and brought to a boil, melted with thorough stirring, sterilized, cooled to 45-50°C, erythrocytes are added. Medium reaction 8.0. The prepared medium is poured into Petri dishes.

Методические указания МУК 4.2.2046.06 предусматривают необходимость анализа всех видов патогенных парагемолитических вибрионов -V. parahaemolyticus, V. mimicus, V. hollisae, V. damsela, V. vulnificus, V. harveyi, V.metscnicovii, V. cincinnatiensis, V. fluvialis, V. furnissii, V. alginolyticus (3).Guidelines MUK 4.2.2046.06 provide for the need to analyze all types of pathogenic parahemolytic vibrios -V. parahaemolyticus, V. mimicus, V. hollisae, V. damsela, V. vulnificus, V. harveyi, V. metscnicovii, V. cincinnatiensis, V. fluvialis, V. furnissii, V. alginolyticus (3).

Решение задачи достигают тем, что к известной прописи среды - прототипа содержащий агар, маннит, калия гидрофосфат, добавляют более питательный ферментативный перевар мяса, для активизации гемолитической активности - стимулятор роста гемофильных микробов, глюкозу и менее токсичный ингибитор метиловый фиолетовый, а так же для оптимизации роста всех видов ПГВ - снижают навеску натрия хлорида до 50 г/л. После варки, стерилизации среды, охлаждения до 45-50% вносят 5% отмытых эритроцитов крови человека.The solution to the problem is achieved by adding a more nutritious enzymatic digest of meat to the known recipe of the medium - a prototype containing agar, mannitol, potassium hydrogen phosphate, to activate hemolytic activity - a growth stimulator of hemophilic microbes, glucose and a less toxic inhibitor methyl violet, as well as to optimize growth of all types of PGV - reduce the weight of sodium chloride to 50 g/l. After boiling, sterilization of the medium, cooling to 45-50%, 5% of the washed human erythrocytes are added.

Чувствительность искомой среды в отношении 4 тест-штаммов ПГВ составляла 10-7, показатель прорастания повышался до 30-70%. При этом показатель прорастания этой среды для всех видов патогенных ПГВ составляли от 35 до 80%. Эффективность получения результатов теста Канагава в отношении всех видов патогенных ПГВ бала высокой и стабильной.The sensitivity of the desired environment in relation to 4 test strains of PGV was 10 -7 , the germination rate increased to 30-70%. At the same time, the germination rate of this medium for all types of pathogenic PGV ranged from 35 to 80%. The effectiveness of obtaining the results of the Kanagawa test in relation to all types of pathogenic PGV was high and stable.

Таким образом, состав среды СГВ:Thus, the composition of the SGW medium:

1. Ферментативный перевар мяса (ГМФ - бульон) - 20,0±2,0,1. Enzymatic digestion of meat (GMF - broth) - 20.0 ± 2.0,

2. Стимулятор роста гемофильных микробов (СРГМ) - 5,0±0,5,2. Growth stimulator of hemophilic microbes (SHGM) - 5.0±0.5,

3. Агар микробиологический - 15,0±2,0,3. Microbiological agar - 15.0±2.0,

4. Глюкоза - 5,0±1,0,4. Glucose - 5.0±1.0,

5. Маннит - 5,0±1,0,5. Mannitol - 5.0±1.0,

6. Натрия хлорид - 50,0±2,0,6. Sodium chloride - 50.0±2.0,

7. Натрия карбонат - 1,5±0,2,7. Sodium carbonate - 1.5±0.2,

8. Калия гидрофосфат - 5,0±0,5,8. Potassium hydrophosphate - 5.0±0.5,

9. Метиловый фиолетовый - 0,002±0,0005,9. Methyl violet - 0.002±0.0005,

10. Эритроциты отмытые - 50±1,10. Washed erythrocytes - 50±1,

при рН 8,0.at pH 8.0.

Контроль среды проводят в соответствии с Методическими указаниями (3, 4) с использованием тест-штаммов: V. parahaemolyticus, а так же V. mimicus,V. damsel,V. vulnificus по основным биологическим показателям для этой группы питательных сред - чувствительность, показатель прорастания, дифференцирующие свойства - размер зоны гемолиза в тесте Канагава.The environment control is carried out in accordance with the Guidelines (3, 4) using test strains: V. parahaemolyticus, as well as V. mimicus, V. Damsel, V. vulnificus according to the main biological indicators for this group of nutrient media - sensitivity, germination index, differentiating properties - the size of the hemolysis zone in the Kanagawa test.

Питательная среда состоит из сухих компонентов и после регистрации будет выпускаться в виде сухого препарата-изделия медицинского назначения с последующим освоением производства.The nutrient medium consists of dry components and, after registration, will be produced in the form of a dry preparation-medical product with subsequent development of production.

Ниже представлены результаты сравнительных испытаний различных комбинаций состава предлагаемой среды (СГВ) как в рамках нормированных показателей, так и за их пределами (примеры 1-5, таблицы 1-5). Также даны результаты проверки дифференцирующих свойств среды СГВ и сред сравнения в отношении представителей всех основных видов патогенных ПГВ.Below are the results of comparative tests of various combinations of the composition of the proposed environment (SGW) both within the normalized indicators and beyond (examples 1-5, tables 1-5). Also, the results of testing the differentiating properties of the SGV environment and comparison media in relation to representatives of all the main types of pathogenic PGV are given.

Пример 1Example 1

Для приготовления среды используют вышеуказанные препараты в следующих максимальных концентрациях (г):To prepare the medium, the above preparations are used in the following maximum concentrations (g):

1. Ферментативный перевар мяса (ГМФ - бульон) - 22,0,1. Enzymatic digestion of meat (GMF - broth) - 22.0,

2. Стимулятор роста гемофильных микробов (СРГМ) - 5,5,2. Growth stimulator of hemophilic microbes (SHM) - 5.5,

3. Агар микробиологический - 17,0,3. Microbiological agar - 17.0,

4. Глюкоза - 6,0,4. Glucose - 6.0,

5. Маннит - 6,0,5. Mannitol - 6.0,

6. Натрия хлорид - 52,0,6. Sodium chloride - 52.0,

7. Натрия карбонат - 1,7,7. Sodium carbonate - 1.7,

8. Калия гидрофосфат - 5,5,8. Potassium hydrophosphate - 5.5,

9. Метиловый фиолетовый - 0,0025,9. Methyl violet - 0.0025,

10. Эритроциты отмытые – 51,10. Washed erythrocytes - 51,

пПри рН 8,2pAt pH 8.2

Данные реагенты заливают 950 мл дистиллированной воды и доводят до кипения, расплавляют при тщательном перемешивании, стерилизуют, охлаждают до (45-50)°С вносят эритроциты. Реакция среды 8,2. Готовую среду разливают в чашки Петри.These reagents are poured into 950 ml of distilled water and brought to a boil, melted with thorough stirring, sterilized, cooled to (45-50) ° C, erythrocytes are added. Environment reaction 8.2. The prepared medium is poured into Petri dishes.

Figure 00000001
Figure 00000001

Figure 00000002
Figure 00000002

Таким образом, предлагаемая среда обеспечивает более высокую в сравнении с прототипом ростовую активность тест-штаммов при требуемом уровне дифференцирующих свойств вибрионов (обязательное наличие роста на чашках при посеве всех тест-штаммов ПГВ - из 10 м.к. и не менее 30% при посеве 100 м.к., образование зон лизиса вокруг колоний Канагава - положительных ПГВ и отсутствие зон лизиса вокруг Канагава - отрицательного штамма).Thus, the proposed environment provides a higher growth activity of test strains in comparison with the prototype at the required level of differentiating properties of vibrios (obligatory presence of growth on cups when sowing all PGV test strains - from 10 mc and at least 30% when sowing 100 MK, the formation of zones of lysis around the colonies of Kanagawa - positive PGV and the absence of zones of lysis around Kanagawa - a negative strain).

Пример 2Example 2

Для приготовления среды используют вышеуказанные препараты в средних концентрациях (г):To prepare the medium, the above preparations are used in medium concentrations (g):

1. Ферментативный перевар мяса (ГМФ - бульон) - 20,0,1. Enzymatic digestion of meat (GMF - broth) - 20.0,

2. Стимулятор роста гемофильных микробов (СРГМ) - 5,0,2. Growth stimulator of hemophilic microbes (SHGM) - 5.0,

3. Агар микробиологический - 15,0,3. Microbiological agar - 15.0,

4. Глюкоза - 5,0,4. Glucose - 5.0,

5. Маннит - 5,0,5. Mannitol - 5.0,

6. Натрия хлорид - 50,0,6. Sodium chloride - 50.0,

7. Натрия карбонат - 1,5,7. Sodium carbonate - 1.5,

8. Калия гидрофосфат - 5,0,8. Potassium hydrophosphate - 5.0,

9. Метиловый фиолетовый - 0,002,9. Methyl violet - 0.002,

10. Эритроциты отмытые – 50,10. Washed erythrocytes - 50,

при рН 8,2.at pH 8.2.

Данные реагенты заливают 950 мл дистиллированной воды и доводят до кипения, расплавляют при тщательном перемешивании, стерилизуют, охлаждают до 45-50°С вносят эритроциты. Реакция среды 8,2. Готовую среду разливают в чашки Петри.These reagents are poured into 950 ml of distilled water and brought to a boil, melted with thorough stirring, sterilized, cooled to 45-50°C, erythrocytes are added. Environment reaction 8.2. The prepared medium is poured into Petri dishes.

Figure 00000003
Figure 00000003

Вывод: предлагаемая среда обеспечивает более высокую в сравнении с прототипом ростовую активность тест-штаммов при требуемом уровне дифференцирующих свойств вибрионов (обязательное наличие роста на чашках при посеве всех тест-штаммов ПГВ - из 10 м.к. и не менее 30% при посеве 100 м.к., образование зон лизиса вокруг колоний Канагава - положительных ПГВ и отсутствие зон лизиса вокруг Канагава - отрицательного штамма). Пример 3Conclusion: the proposed environment provides a higher growth activity of test strains in comparison with the prototype at the required level of differentiating properties of vibrios (obligatory presence of growth on cups when sowing all PGV test strains - from 10 mc and at least 30% when sowing 100 mk, the formation of zones of lysis around the Kanagawa colonies - positive PGV and the absence of zones of lysis around Kanagawa - a negative strain). Example 3

Для приготовления среды используют вышеуказанные препараты в минимальных концентрациях (г):To prepare the medium, the above preparations are used in minimum concentrations (g):

1. Ферментативный перевар мяса (ГМФ - бульон) - 18,0,1. Enzymatic digestion of meat (GMF - broth) - 18.0,

2. Стимулятор роста гемофильных микробов (СРГМ) - 4,5,2. Growth stimulator of hemophilic microbes (SHGM) - 4.5,

3. Агар микробиологический - 13,0,3. Microbiological agar - 13.0,

4. Глюкоза - 4,0,4. Glucose - 4.0,

5. Маннит - 4,0,5. Mannitol - 4.0,

6. Натрия хлорид - 48,0,6. Sodium chloride - 48.0,

7. Натрия карбонат - 1,3,7. Sodium carbonate - 1.3,

8. Калия гидрофосфат - 4,5,8. Potassium hydrophosphate - 4.5,

9. Метиловый фиолетовый - 0,0015,9. Methyl violet - 0.0015,

10. Эритроциты отмытые - 49,10. Washed erythrocytes - 49,

при рН 8,0.at pH 8.0.

Данные реагенты заливают 950 мл дистиллированной воды и доводят до кипения, расплавляют при тщательном перемешивании, стерилизуют, охлаждают до 45-50°С вносят эритроциты. Реакция среды 8,0. Готовую среду разливают в чашки Петри.These reagents are poured into 950 ml of distilled water and brought to a boil, melted with thorough stirring, sterilized, cooled to 45-50°C, erythrocytes are added. Medium reaction 8.0. The prepared medium is poured into Petri dishes.

Figure 00000004
Figure 00000004

Figure 00000005
Figure 00000005

Следовательно, предлагаемая среда обеспечивает более высокую в сравнении с прототипом ростовую активность тест-штаммов при требуемом уровне дифференцирующих свойств вибрионов (обязательное наличие роста на чашках при посеве всех тест-штаммов ПГВ - из 10 м.к. и не менее 30% при посеве 100 м.к., образование зон лизиса вокруг колоний Канагава - положительных ПГВ и отсутствие зон лизиса вокруг Канагава - отрицательного штамма).Therefore, the proposed environment provides a higher growth activity of test strains in comparison with the prototype at the required level of differentiating properties of vibrios (obligatory presence of growth on cups when sowing all PGV test strains - from 10 microns and not less than 30% when sowing 100 mk, the formation of zones of lysis around the Kanagawa colonies - positive PGV and the absence of zones of lysis around Kanagawa - a negative strain).

Пример 4Example 4

Для приготовления среды используют вышеуказанные препараты ниже минимальной концентрации (г):To prepare the medium, use the above preparations below the minimum concentration (g):

1. Ферментативный перевар мяса (ГМФ - бульон) - 15,0,1. Enzymatic digestion of meat (GMF - broth) - 15.0,

2. Стимулятор роста гемофильных микробов (СРГМ) - 4,0,2. Growth stimulator of hemophilic microbes (SHGM) - 4.0,

3. Агар микробиологический - 12,0,3. Microbiological agar - 12.0,

4. Глюкоза - 3,0,4. Glucose - 3.0,

5. Маннит - 3,0,5. Mannitol - 3.0,

6. Натрия хлорид - 45,0,6. Sodium chloride - 45.0,

7. Натрия карбонат - 1,2,7. Sodium carbonate - 1.2,

8. Калия гидрофосфат - 4,0,8. Potassium hydrophosphate - 4.0,

9. Метиловый фиолетовый - 0,001,9. Methyl violet - 0.001,

10. Эритроциты отмытые – 45,10. Washed erythrocytes - 45,

при рН 8,0.at pH 8.0.

Данные реагенты заливают 950 мл дистиллированной воды и доводят до кипения, расплавляют при тщательном перемешивании, стерилизуют, охлаждают до 45-50°С вносят эритроциты. Реакция среды 8,0. Готовую среду разливают в чашки Петри.These reagents are poured into 950 ml of distilled water and brought to a boil, melted with thorough stirring, sterilized, cooled to 45-50°C, erythrocytes are added. Medium reaction 8.0. The prepared medium is poured into Petri dishes.

Figure 00000006
Figure 00000006

Figure 00000007
Figure 00000007

Пример 5Example 5

Для приготовления среды используют вышеуказанные препараты выше максимальной концентрации (г):To prepare the medium, the above preparations are used above the maximum concentration (g):

1. Ферментативный перевар мяса (ГМФ - бульон) - 25,0,1. Enzymatic digestion of meat (GMF - broth) - 25.0,

2. Стимулятор роста гемофильных микробов (СРГМ) - 6,0,2. Growth stimulator of hemophilic microbes (SHGM) - 6.0,

3. Агар микробиологический - 18,0,3. Microbiological agar - 18.0,

4. Глюкоза - 7,0,4. Glucose - 7.0,

5. Маннит - 7,0,5. Mannitol - 7.0,

6. Натрия хлорид - 60,0,6. Sodium chloride - 60.0,

7. Натрия карбонат - 2,0,7. Sodium carbonate - 2.0,

8. Калия гидрофосфат - 6,0,8. Potassium hydrophosphate - 6.0,

9. Метиловый фиолетовый - 0,003,9. Methyl violet - 0.003,

10. Эритроциты отмытые – 52,10. Washed erythrocytes - 52,

при рН 8,0at pH 8.0

Данные реагенты заливают 950 мл дистиллированной воды и доводят до кипения, расплавляют при тщательном перемешивании, стерилизуют, охлаждают до 45-50°С вносят эритроциты. Реакция среды 8,0. Готовую среду разливают в чашки Петри.These reagents are poured into 950 ml of distilled water and brought to a boil, melted with thorough stirring, sterilized, cooled to 45-50°C, erythrocytes are added. Medium reaction 8.0. The prepared medium is poured into Petri dishes.

Figure 00000008
Figure 00000008

Figure 00000009
Figure 00000009

Таким образом, представленные данные указывают на высокую эффективность среды СГВ в рамках нормированного показателя состава. Ее чувствительность и показатель прорастания полностью соответствует существующим нормативным требованиям и в отличие от среды сравнения, обеспечивает высокие ростовые свойства и гемолитическую активность всех испытанных тест-штаммов.Thus, the presented data indicate the high efficiency of the SGW medium within the normalized composition index. Its sensitivity and germination rate fully complies with existing regulatory requirements and, unlike the reference medium, provides high growth properties and hemolytic activity of all tested test strains.

Пример 6Example 6

Оптимальный вариант искомой среды СГВ прошел испытания в отношении тест-штаммов основных видов патогенных ПГВ. Приготовление и контроль среды проводили с методическими подходами, использованными в вышеописанных примерах. Культуры контрольных штаммов вибрионов готовили по методике идентичной при подготовке тест-штаммов.The optimal variant of the desired SGV medium was tested against test strains of the main types of pathogenic PGV. The preparation and control of the environment was carried out with the methodological approaches used in the above examples. Cultures of control strains of vibrios were prepared according to the method identical to the preparation of test strains.

Результаты проведенного испытания представлены таблице 6.The results of the test are presented in table 6.

Figure 00000010
Figure 00000010

Исходя из представленных материалов и по результатам сравнительных испытаний предложенная композиция СГВ соответствует среде прототип Вагацума по ростовым и дифференцирующим показателям в отношении V. parahaemolyticus, и значительно превосходит в отношении других видов ПГВ. Полученные данные позволяют характеризовать новый препарат как дифференциальную среду, соответствующую современным требованиям к средам данного назначения. Особым преимуществом данного препарата можно считать ее эффективность при определении ее гемолитической активности в отношении всех групп ПГВ, что позволяет использовать ее при диагностике различных заболеваний, вызываемых ПГВ. Дополнительным преимуществом можно считать возможность ее изготовления из отечественных компонентов, и за счет этого низкую себестоимость (300-350 руб/л).Based on the presented materials and the results of comparative tests, the proposed composition of the SGV corresponds to the Vagatsuma prototype medium in terms of growth and differentiation indicators in relation to V. parahaemolyticus, and significantly exceeds in relation to other types of PGV. The data obtained make it possible to characterize the new drug as a differential medium that meets modern requirements for media for this purpose. A special advantage of this drug can be considered its effectiveness in determining its hemolytic activity against all groups of PHV, which allows it to be used in the diagnosis of various diseases caused by PHV. An additional advantage can be considered the possibility of its manufacture from domestic components, and due to this, low cost (300-350 rubles / l).

Государственная регистрация среды включена в сетевой график внедрения результатов НИР ФКУЗ Ростовского-на-Дону противочумного института Роспотребнадзора.The state registration of the environment is included in the network schedule for the implementation of the results of research and development of the FKUZ of the Rostov-on-Don Anti-Plague Institute of Rospotrebnadzor.

Источники информацииSources of information

1. Патент на изобретения №2711914 от 23.01.2020. «Питательная среда для выделения и идентификации парагемолитических вибрионов».1. Patent for inventions No. 2711914 dated 01/23/2020. "A culture medium for the isolation and identification of parahemolytic vibrios".

2. Патент на изобретения №2711914 от 23.01.2020. «Питательная среда для выделения и идентификации парагемолитических вибрионов».2. Patent for inventions No. 2711914 dated 01/23/2020. "A culture medium for the isolation and identification of parahemolytic vibrios".

3. Методы контроля бактериологических питательных сред МУК 4.2.2316-08, М., - 20083. Methods for monitoring bacteriological nutrient media MUK 4.2.2316-08, M., - 2008

4. Контроль диагностических питательных сред по биологическим показателям для возбудителя чумы, холеры, сибирской язвы, туляремии, бруцеллеза, легионеллеза МУ 3.3.2.2124-06, М., - 2007.4. Control of diagnostic nutrient media for biological indicators for the causative agent of plague, cholera, anthrax, tularemia, brucellosis, legionellosis MU 3.3.2.2124-06, M., - 2007.

5. Методы выявления и определения парагемолитических вибрионов в рыбе, не рыбных объектах промысла, продуктах вырабатываемых из них, в воде поверхностных водоемов и других объектах. МУК 4.2.2046-06, М., - 2006.5. Methods for the detection and determination of parahemolytic vibrios in fish, non-fish species, products derived from them, in surface water and other objects. MUK 4.2.2046-06, M., - 2006.

6. Лабораторная диагностика заболеваний, вызываемых парагемолитическими и другими патогенными для человека вибрионами. МУК 4.2.1793-03, М., - 2003.6. Laboratory diagnostics of diseases caused by parahemolytic and other vibrios pathogenic for humans. MUK 4.2.1793-03, M., - 2003.

7. Приказ №535 от 22 апреля 1985 г «Об унификации микробиологических методов исследований применяемых в клиниках - диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений».7. Order No. 535 of April 22, 1985 "On the unification of microbiological research methods used in clinics - diagnostic laboratories of medical institutions."

Claims (4)

Питательная среда для дифференциации парагемолитических вибрионов, включающая питательную основу, агар микробиологический, натрия хлорид, маннит, калия гидрофосфат эритроциты, отличающаяся тем, что среда дополнительно включает стимулятор роста гемофильных микробов, глюкозу, натрия карбонат, метиленовый фиолетовый, а питательная основа представляет собой ферментативный перевар мяса при следующих количественных соотношениях компонентов, г/л:Nutrient medium for the differentiation of parahemolytic vibrios, including a nutrient base, microbiological agar, sodium chloride, mannitol, potassium hydrogen phosphate erythrocytes, characterized in that the medium additionally includes a growth stimulant for hemophilic microbes, glucose, sodium carbonate, methylene violet, and the nutrient base is an enzymatic digest meat at the following quantitative ratios of components, g/l: Ферментативный перевар мяса (ГМФ - бульон)Enzymatic digestion of meat (GMF - broth) - 20,0±2,0- 20.0±2.0 Стимулятор роста гемофильных микробов (СРГМ)Haemophilus microbial growth stimulator (SHGM) - 5,0±0,5- 5.0±0.5 Агар микробиологическийAgar microbiological 15,0±2,015.0±2.0 ГлюкозаGlucose 5,0±1,05.0±1.0 МаннитMannitol 5,0±1,05.0±1.0 Натрия хлоридSodium chloride 50,0±2,050.0±2.0 Натрия карбонатsodium carbonate 1,5±0,21.5±0.2 Калия гидрофосфатPotassium hydrogen phosphate 5,0±0,55.0±0.5 Метиленовый фиолетовыйmethylene violet 0,002±0,00050.002±0.0005 Эритроциты отмытыеErythrocytes washed 50±1,050±1.0
при рН8,0at pH8.0 с последующим растворением в 950 мл дистиллированной воды.followed by dissolution in 950 ml of distilled water.
RU2021139727A 2021-12-28 Nutrient medium for differentiation of parahemolytic vibrios RU2778997C1 (en)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2778997C1 true RU2778997C1 (en) 2022-08-29

Family

ID=

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2711914C1 (en) * 2019-02-14 2020-01-23 Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Nutrient medium for separation and identification of para-hemolytic vibrios (embodiments) and method for production thereof (embodiments)

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2711914C1 (en) * 2019-02-14 2020-01-23 Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Nutrient medium for separation and identification of para-hemolytic vibrios (embodiments) and method for production thereof (embodiments)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
РЫКОВСКАЯ О.А. и др., Разработка комплексного метода оценки вирулентности парагемолитических вибрионов, Клиническая лабораторная диагностика, 2013, N 2, с. 38-41. KAMINSKII D.I., Testing of the liquid enrichment nutrient medium HDS-N for the purpose of Vibrio cholera cultivation and isolation, Biotechnology in Russia 2003, N 4, pp. 67−71. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN103282513B (en) For detecting goods and the method for target microorganism
JP2831474B2 (en) Salmonella identification method and culture medium
US5702944A (en) Microbial transport media
CN104105795B (en) The method for detecting Salmonella microorganisms
EP0254771A2 (en) Detection of microbes in a sample
JPH05505312A (en) Bacteriological analysis method and culture medium for detecting Salmonella bacteria
Yagupsky et al. Comparison of BACTEC 9240 Peds Plus medium and isolator 1.5 microbial tube for detection of Brucella melitensis from blood cultures
US7087401B2 (en) Culture medium and method for detecting thermonuclease-positive staphylococci
CN110129406A (en) A kind of pseudomonas aeruginosa chromogenic culture medium and the method quickly detected using it
CN110055301A (en) A method of the culture medium of detection Bifidobacterium and quickly detection count
CN112961805B (en) Salmonella typhimurium with quinolone drug resistance genes gyrA and parE mutated simultaneously and application thereof
US10550437B2 (en) Clostridium difficile culture medium
RU2778997C1 (en) Nutrient medium for differentiation of parahemolytic vibrios
CN102146429A (en) Vibrio alginolyticus selectivity differential medium
Desmasures et al. Lactococcus spp., yeasts and Pseudomonas spp. on teats and udders of milking cows as potential sources of milk contamination
CN107287275B (en) Culture medium, kit containing culture medium and application of culture medium
US5759799A (en) Marker for revealing contaminants and application method for performing an antibiogram carried out directly on a sample
Magalhães et al. Traditional methods for isolation of Listeria monocytogenes
CN100345977C (en) Preparing method for cow mammitis staphylococcus culture fluid and its use
TWI627277B (en) Medium, including the set of the group, and its application
Tortorello et al. Rapid identification of Escherichia coli O157: H7 in bovine feces using the antibody-direct epifluorescent filter technique (Ab-DEFT)
Yagupsky et al. Clinical evaluation of a novel chromogenic agar dipslide for diagnosis of urinary tract infections
US5380652A (en) Device and procedure for identifying pathogenic microorganisms
McDivitt et al. Comparison of Three Media for the Isolation of Exterotoxigenic Micrococci
RU2328526C1 (en) Method for revealing cattle tuberculosis mycobacteria