RU2776561C1 - Method for treating bullous keratopathy - Google Patents

Method for treating bullous keratopathy Download PDF

Info

Publication number
RU2776561C1
RU2776561C1 RU2021122949A RU2021122949A RU2776561C1 RU 2776561 C1 RU2776561 C1 RU 2776561C1 RU 2021122949 A RU2021122949 A RU 2021122949A RU 2021122949 A RU2021122949 A RU 2021122949A RU 2776561 C1 RU2776561 C1 RU 2776561C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
cornea
corneal
film
anterior chamber
reducing
Prior art date
Application number
RU2021122949A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Екатерина Олеговна Филиппова
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Сибирский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Сибирский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации filed Critical Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Сибирский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Application granted granted Critical
Publication of RU2776561C1 publication Critical patent/RU2776561C1/en

Links

Images

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: invention relates to medicine, namely, to ophthalmology. A surgical access to the cornea and implantation of an implant into the anterior chamber of the eye are performed. An incision is made preliminarily from 12 to 4 o'clock by the limbus, followed by implanting a polycaprolactone film with a diameter of 6.0 mm, a thickness of 20 mcm, and suturing said film to the cornea with two interrupted sutures. A cellular suspension - autologous mononuclear leukocytes - is therein layered on the endothelium at the boundary between the film and the inner surface of the cornea. The corneal incision is sutured shut with a continuous suture, followed by inflating sterile air into the anterior chamber.
EFFECT: possibility of reducing the injury rate of surgical intervention, reducing the risk of developing tissue incompatibility, facilitating the production of cells, reducing the swelling of the corneal tissue, thereby contributing to the regeneration of the transparency thereof and relief of surface bullae, significantly reducing the thickness of the implant.
1 cl, 17 dwg

Description

Изобретение относится к медицине, в частности, к офтальмологии, и может быть использовано для лечения буллезной кератопатии.The invention relates to medicine, in particular to ophthalmology, and can be used for the treatment of bullous keratopathy.

Буллезная кератопатия является тяжелым, прогрессирующим заболеванием, связанным с декомпенсацией эндотелиального слоя роговой оболочки. После повреждения эндотелия и утраты им функции полупроницаемой мембраны между стромой роговицы и влагой передней камеры постепенно развивается отек стромы роговой оболочки. В дальнейшем влага передней камеры проникает под эпителий роговицы и отслаивает его с развитием рецидивирующих эрозий, вызывающих мучительные для пациента болевые ощущения, светобоязнь и слезотечение.Bullous keratopathy is a severe, progressive disease associated with decompensation of the endothelial layer of the cornea. After damage to the endothelium and the loss of its function as a semipermeable membrane between the stroma of the cornea and the moisture of the anterior chamber, edema of the stroma of the cornea gradually develops. In the future, the moisture of the anterior chamber penetrates under the epithelium of the cornea and exfoliates it with the development of recurrent erosions, causing excruciating pain for the patient, photophobia and lacrimation.

В настоящее время разработаны различные методы хирургического лечения буллезной кератопатии: сквозная кератопластика с замещением роговой оболочки аллотрансплантантом (Копаева В.Г., Субтотальная сквозная кератопластика при дистрофии роговой оболочки. Оптикореконструктивные операции и аллопластика в офтальмологии. М. 1974), послойная кератопластика с пересадкой задних слоев роговицы (Волков В.В. К разработке хирургического метода лечения энтотелиально-эпителиальной дистрофии роговицы. Первый съезд офтальмологов Закавказья: Тез. докл. Тбилиси: 1976), интерламеллярная пересадка задней капсулы хрусталика (Авторское свидетельство СССР N 810235, кл. A61F 9/007, 1981), послойная кератопластика с использованием желатиновой пленки (Способ лечения буллезной кератопатии, патент РФ №2082364, 27.06.1997), задняя послойная кератопластика - Posterior lamellar keratoplasty (PLK) и Deep lamellar endothelial keratoplasty (DLEK) (Ko, W. W. Feldman, S. T. Frueh, В. E. Experimental posterior lamellar transplantation of the rabbit cornea / W. W. Ko, S. T. Feldman, В. E. Frueh //Invest. Ophthalmol. - 1993. - №34. - P. 1102.; Terry, M. A. Ousley, P. J. Deep lamellar endothelial keratoplasty in the first United States patients: early clinical results /M. A. Terry, P. J. Ousley, // Cornea. 2001. - №20. - P. 239 - 243.), кератопластика с пересадкой Десцеметовой мембраны (Мамиконян, В.Р. Труфанов, С.В. Автоматизированная эндотелиальная кератопластика с трансплантацией Десцеметовой мембраны (DMAEK) /В.Р. Мамиконян, С.В. Труфанов // Восток-Запад: сборник научных трудов научн. - прак. конференции. - Уфа, 2011. - С. 89 Gorovoy, М. Descemet stripping automated endothelial keratoplasty / M. Gorovoy // Cornea. - 2006. - №25: 8. - P. 886 - 889. Melles, G. R. Ong, T. S. Ververs, B. van der Wees, J. Descemet membrane endothelial keratoplasty (DMEK) / G. R. Melles, T. S. Ong, B. Ververs, J. van der Wees // Cornea. - 2006. - Vol.25. - №8. - P. 987 - 990), кератопластика с использованием гидрогеля (Способ лечения буллезной кератопатии, патент РФ №2405513, 13.10.2009) и гидрогеля с культивированными эндотелиальными клетками (Fabrication of gelatin hydrogel sheet for the transplantation of corneal endothelium patent US 20140377326, 2018), кератопластика, путем интраламеллярной пересадки биологической мембраны (Способ лечения отечной дистрофии роговицы, 1979, патент СССР №810235), кератопластика с применением псевдоэндотелиальных имплантатов (Implantes pseudoendoteliales hidrofobos para tratar un edema corneal, Pat. 2 442 768, 2010, Sergio RIZZO). Однако перечисленные способы имеют ряд существенных недостатков: техническая сложность операции, высокая частота развития осложнений, вероятность иммунного конфликта с последующим отторжением донорского материала, рецидив заболевания.Currently, various methods of surgical treatment of bullous keratopathy have been developed: penetrating keratoplasty with replacement of the cornea with an allograft (Kopaeva V.G., Subtotal penetrating keratoplasty in corneal dystrophy. Opticoreconstructive operations and alloplasty in ophthalmology. M. 1974), layered keratoplasty with transplantation of the posterior layers of the cornea (Volkov V.V. To develop a surgical method for the treatment of endothelial-epithelial dystrophy of the cornea. The First Congress of Transcaucasian ophthalmologists: Abstracts of the report. Tbilisi: 1976), interlamellar transplantation of the posterior lens capsule (USSR Author's certificate N 810235, class A61F 9 / 007, 1981), layered keratoplasty using a gelatin film (Method of treating bullous keratopathy, RF patent No. 2082364, 06/27/1997), posterior layered keratoplasty - Posterior lamellar keratoplasty (PLK) and Deep lamellar endothelial keratoplasty (DLEK) (Ko, W. W. Feldman , S. T. Frueh, B. E. Experimental posterior lamellar trans plantation of the rabbit cornea / W. W. Ko, S. T. Feldman, B. E. Frueh //Invest. Ophthalmol. - 1993. - No. 34. - P. 1102.; Terry, M. A. Ousley, P. J. Deep lamellar endothelial keratoplasty in the first United States patients: early clinical results /M. A. Terry, P. J. Ousley, // Cornea. 2001. - No. 20. - P. 239 - 243.), keratoplasty with transplantation of Descemet's membrane (Mamikonyan, V.R. Trufanov, S.V. Automated endothelial keratoplasty with transplantation of Descemet's membrane (DMAEK) / V.R. Mamikonyan, S.V. Trufanov / / East-West: collection of scientific papers of scientific - practical conferences - Ufa, 2011. - P. 89 Gorovoy, M. Descemet stripping automated endothelial keratoplasty / M. Gorovoy // Cornea. - 2006. - No. 25: 8. - P. 886 - 889. Melles, G. R. Ong, T. S. Ververs, B. van der Wees, J. Descemet membrane endothelial keratoplasty (DMEK) / G. R. Melles, T. S. Ong, B. Ververs, J. van der Wees // Cornea. - 2006. - Vol. 25. - No. 8. - P. 987 - 990), keratoplasty using a hydrogel (Method for the treatment of bullous keratopathy, RF patent No. sheet for the transplantation of corneal endothelium patent US 20140377326, 2018), keratoplasty, by intralamellar transplantation of biological membranes (Method of treating edematous corneal degeneration, 1979, USSR patent No. 810235), keratoplasty using pseudoendothelial implants (Implantes pseudoendoteliales hidrofobos para tratar un edema corneal, Pat. 2 442 768, 2010, Sergio RIZZO). However, these methods have a number of significant drawbacks: the technical complexity of the operation, the high incidence of complications, the likelihood of an immune conflict with subsequent rejection of the donor material, and relapse of the disease.

Известен способ кератопластики для лечения буллезной кератопатии с использованием гидрогелевого диска, выполняющего роль биологической мембраны, который вводят на расстоянии 1,5-2 мм от лимба на 12 часах трансконъюнктивально в направлении глубоких слоев стромы роговицы, формируют тоннельный разрез шириной 2,5-3,0 мм и длиной 2,5-3,0 мм. Производят расслаивание стромы роговицы на глубине 2/3 ее толщины с последующим формированием интрастромального кармана округлой формы с диаметром 8,5-9,0 мм. В сформированный интрастромальный карман имплантируют в сложенном виде при помощи стандартного инжектора для имплантации интраокулярных линз гидрогелевый диск диаметром 8,0 мм и толщиной 0.1 мм. Недостатками этого способа являются: протяженный разрез роговицы и формирование кармана, что сопряжено с разрывом коллагеновых волокон и отсутствием гладкой поверхности соприкосновения стромы расслоенной роговицы с гидрогелевым диском, а также с ухудшением трофики роговицы и сохранением несостоятельного отечного эндотелиального слоя (Способ лечения буллезной кератопатии, RU 2405513, 2010).A known method of keratoplasty for the treatment of bullous keratopathy using a hydrogel disc acting as a biological membrane, which is inserted at a distance of 1.5-2 mm from the limbus at 12 hours transconjunctivally in the direction of the deep layers of the corneal stroma, a tunnel incision 2.5-3 wide is formed, 0 mm and 2.5-3.0 mm long. The corneal stroma is exfoliated at a depth of 2/3 of its thickness, followed by the formation of a rounded intrastromal pocket with a diameter of 8.5-9.0 mm. A folded hydrogel disc 8.0 mm in diameter and 0.1 mm thick is implanted into the formed intrastromal pocket using a standard injector for implanting intraocular lenses. The disadvantages of this method are: an extended incision of the cornea and the formation of a pocket, which is associated with a rupture of collagen fibers and the absence of a smooth contact surface of the stroma of the stratified cornea with a hydrogel disk, as well as with a deterioration in the trophism of the cornea and the preservation of an incompetent edematous endothelial layer (Method of treating bullous keratopathy, RU 2405513 , 2010).

Известен способ того же назначения, включающий имплантацию между стромой и десцеметовой мембраной роговицы гидрогелевого диска. При этом сначала формируют трепанационное отверстие роговицы таким образом, чтобы его дно не достигало десцеметовой мембраны на величину 80-120 мкм. Извлекают трепанационный диск роговицы. На дне трепанационного отверстия создают канал до десцеметовой мембраны и вводят через него окрашенный вискоматериал до момента отслаивания десцеметовой мембраны. Вымывают вискоматериал и в образовавшееся пространство между стромой и десцеметовой мембраной имплантируют гидрогелевый диск. В трепанационное отверстие роговицы помещают извлеченный трепанационный диск роговицы, после чего в переднюю камеру глаза вводят воздух. Основным недостатком способа является полное сохранение десцеметовой мембраны, которая также может быть вовлечена в патологический процесс и обусловливает снижение прозрачности роговицы и, следовательно, низкую остроту зрения (Способ интраламеллярной кератопластики, патент RU 2463025, 10.10.2012).A known method for the same purpose, including implantation between the stroma and Descemet's membrane of the cornea of the hydrogel disc. In this case, a trepanation hole of the cornea is first formed so that its bottom does not reach the Descemet's membrane by 80-120 μm. The trepanation disk of the cornea is removed. At the bottom of the burr hole, a channel is created up to the Descemet's membrane and the colored viscomaterial is injected through it until the Descemet's membrane is peeled off. The viscomaterial is washed out and a hydrogel disk is implanted into the space formed between the stroma and the Descemet's membrane. The removed burr disc of the cornea is placed into the burr hole of the cornea, after which air is introduced into the anterior chamber of the eye. The main disadvantage of this method is the complete preservation of the Descemet's membrane, which can also be involved in the pathological process and causes a decrease in the transparency of the cornea and, consequently, low visual acuity (Method of intralamellar keratoplasty, patent RU 2463025, 10.10.2012).

Известен способ кератопластики с использованием имплантатов размером от 1-2 мм до 6 мм, толщиной от 1 мкм до 100 мкм на основе биологически совместимых материалов: полиметилметакрилата (ПММА), силикона, силиконового каучука, коллагена, гиалуроновой кислоты, акрилового или метакрилового гидрогелей, гидроксиэтилметакрилат или частично гидролизованного поли (2-гидроксиэтилметакрилат / метакриловая кислота / сополимера), полисульфона (Fabrication of gelatin hydrogel sheet for the transplantation of corneal endothelium, patent US 100523506, 2018). Согласно этому способу, имплантат на основе одного из указанных полимеров со сформированными парацентральными отверстиями крепится к задней поверхности роговицы по методу задней пластинчатой кератопластики (PLK) или эндотелиальной кератопластики с замещением десцеметовой мембраны (DSEK) путем подготовки роговичного ложа (предварительное удаление части эндотелия и десцеметовой мембраны) и последующим введением связующего вещества. В качестве связующего вещества могут выступать поли-L-лизин, поли-D-лизин, фибронектин, ламинин, коллаген I, II, III и IV типа, тромбоспондин, полистирол, витронектин, полиаргинин и фактор тромбоцитов IV. Кроме того, в данном способе указывается необходимость использования цитотоксических агентов: белки, ингибирующие рибосомы (сапорин и рицин), а также антимитотические препараты, такие как метотрексат, 5-фторурацил, дауномицин, доксорубицин, митоксантрон, алкалоиды барвинка, винбластин, колхицин и цитохалазины и ионофоры, такие как монензин и уабаин. Не смотря на ряд преимуществ данного способа (возможность варьирования материала для создания имплантата, широкий разбег его размеров и толщины), главными недостатками являются: необходимость подготовки роговичного ложа с удалением эндотелия и десцеметовой мембраны, обязательное использование связующего агента, необходимость применения цитотоксических препаратов.A known method of keratoplasty using implants ranging in size from 1-2 mm to 6 mm, thickness from 1 μm to 100 μm based on biologically compatible materials: polymethyl methacrylate (PMMA), silicone, silicone rubber, collagen, hyaluronic acid, acrylic or methacrylic hydrogels, hydroxyethyl methacrylate or partially hydrolyzed poly (2-hydroxyethyl methacrylate / methacrylic acid / copolymer), polysulfone (Fabrication of gelatin hydrogel sheet for the transplantation of corneal endothelium, patent US 100523506, 2018). According to this method, an implant based on one of these polymers with formed paracentral holes is attached to the posterior surface of the cornea using the method of posterior lamellar keratoplasty (PLK) or endothelial keratoplasty with Descemet's membrane replacement (DSEK) by preparing the corneal bed (preliminary removal of a part of the endothelium and Descemet's membrane ) followed by the introduction of a binder. As a binder, poly-L-lysine, poly-D-lysine, fibronectin, laminin, type I, II, III and IV collagen, thrombospondin, polystyrene, vitronectin, polyarginine and platelet factor IV can act. In addition, this method indicates the need for the use of cytotoxic agents: proteins that inhibit ribosomes (saporin and ricin), as well as antimitotic drugs such as methotrexate, 5-fluorouracil, daunomycin, doxorubicin, mitoxantrone, vinca alkaloids, vinblastine, colchicine and cytochalasins and ionophores such as monensin and ouabain. Despite a number of advantages of this method (the possibility of varying the material for creating an implant, a wide range of its dimensions and thickness), the main disadvantages are: the need to prepare the corneal bed with the removal of the endothelium and Descemet's membrane, the mandatory use of a binding agent, the need to use cytotoxic drugs.

Кроме того, в качестве альтернативы существующих хирургических методов лечения буллезной кератопатии применяют клеточные технологии. Известен способ интракамеральной локальной экспресс-аутоцитокинотерапии (ЛЭАЦКТ) (Способ лечения отека роговицы и других проявлений ранней буллезной кератопатии, патент РФ №2357743, 13.10.2009). Согласно этому способу, в переднюю камеру больного глаза вводятся активированные Полуданом аутологичные мононуклеарные клетки крови пациента. Забор крови у пациента производится с соблюдением правил асептики и антисептики в условиях процедурного кабинета. Кровь берется из локтевой вены пациента в количестве 5,0 мл. Содержимое 2 флаконов Полудана растворяют в 2,0 мл раствора воды для инъекций, и водный раствор Полудана переносят в стерильную пробирку с 5,0 мл крови. Содержимое пробирки тщательно перемешивают путем переворачивания. Далее пробирку помещают в термостат на 2-4 часа. После окончания инкубирования пробирку со свернувшейся кровью центрифугируют в течение 5-10 минут при 500-1000 об/мин. Далее на границе сыворотки и сгустка свернувшейся крови пипеткой собирают клеточную взвесь. В условиях операционной после обработки операционного поля и ретробульбарной анестезии больного глаза пациента вблизи лимба лезвием производится парацентез роговицы. В переднюю камеру постепенно осуществляют инфузию суспензии аутологичных мононуклеаров крови в количестве 1,0-2,0 мл вплоть до полного замещения ею влаги передней камеры. В зоне парацентеза роговицы накладывают супрамидный шов. Сразу после операции больной должен принять положение лицом вниз и лежать в течение 1 часа, чтобы введенные клетки контактировали с эндотелием роговицы. Сеансы ЛЭАЦКТ проводят с интервалом 3-6 дней в количестве от 1 до 4 раз. Недостатками этого метода являются: длительность и трудоемкость получения аутологичных мононуклеаров крови, активированных с помощью Полудана, высокая вероятность потери клеток вследствие отсутствия подложки для крепления и направленного потока внутриглазной жидкости к внутреннему углу глаза.In addition, cellular technologies are used as an alternative to existing surgical methods for the treatment of bullous keratopathy. A known method of intracameral local express autocytokine therapy (LEACCT) (Method for the treatment of corneal edema and other manifestations of early bullous keratopathy, RF patent No. 2357743, 13.10.2009). According to this method, the patient's autologous blood mononuclear cells activated by Poludan are introduced into the anterior chamber of the diseased eye. Blood sampling from the patient is carried out in compliance with the rules of asepsis and antiseptics in the conditions of the treatment room. Blood is taken from the patient's cubital vein in an amount of 5.0 ml. The contents of 2 vials of Poludan are dissolved in 2.0 ml of water for injection, and the aqueous solution of Poludan is transferred into a sterile tube with 5.0 ml of blood. The contents of the tube are thoroughly mixed by inverting. Next, the test tube is placed in a thermostat for 2-4 hours. After the end of incubation, the test tube with clotted blood is centrifuged for 5-10 minutes at 500-1000 rpm. Further, at the border of the serum and the coagulated blood clot, a cell suspension is collected with a pipette. In the conditions of the operating room, after processing the surgical field and retrobulbar anesthesia of the diseased eye of the patient near the limbus, a corneal paracentesis is performed with a blade. A suspension of autologous blood mononuclear cells is gradually infused into the anterior chamber in an amount of 1.0-2.0 ml until it completely replaces the anterior chamber moisture. In the zone of paracentesis of the cornea, a supramid suture is applied. Immediately after the operation, the patient should take a position face down and lie down for 1 hour so that the injected cells come into contact with the corneal endothelium. LEACCT sessions are carried out with an interval of 3-6 days in an amount of 1 to 4 times. The disadvantages of this method are: the duration and complexity of obtaining autologous blood mononuclear cells activated with Poludan, the high probability of cell loss due to the lack of a substrate for attachment and a directed flow of intraocular fluid to the inner corner of the eye.

Наиболее близким к предлагаемому способу является способ замещения поврежденного эндотелиального слоя роговицы путем его трансплантации с помощью желатин-гидрогелевого диска (Fabrication of gelatin hydrogel sheet for the transplantation of corneal endothelium Patent US 20140377326, 2012). Согласно этому способу, желатин-гидрогелевый каркас (скэфолд) толщиной 100-300 мкм, с порами размером 20-30 мкм, модифицированный гепарином, содержащий один слой предварительно культивированных в течении 7-21 дней эндотелиальных клеток роговицы, имплантируется на предварительно подготовленное - после удаления эндотелия и десцеметовой мембраны реципиента - роговичное ложе. Введенный в переднюю камеру глаза трансплантат фиксируется к заранее подготовленному ложу узловыми швами, для иммобилизации каркаса используется фибриновый клей или фибронектин, в переднюю камеру вводится стерильный воздух.Closest to the proposed method is a method of replacing the damaged endothelial layer of the cornea by transplantation using a gelatin hydrogel disk (Fabrication of gelatin hydrogel sheet for the transplantation of corneal endothelium Patent US 20140377326, 2012). According to this method, a gelatin-hydrogel scaffold (scaffold) 100-300 μm thick, with pores 20-30 μm in size, modified with heparin, containing one layer of corneal endothelial cells pre-cultured for 7-21 days, is implanted on a previously prepared - after removal endothelium and Descemet's membrane of the recipient - corneal bed. The graft introduced into the anterior chamber of the eye is fixed to a previously prepared bed with interrupted sutures, fibrin glue or fibronectin is used to immobilize the frame, and sterile air is introduced into the anterior chamber.

Недостатками этого метода являются: техническая сложность оперативного вмешательства (подготовка роговичного ложа с удалением эндотелиального слоя и десцеметовой мембраны), необходимость культивирования клеток эндотелия роговицы, высокий риск развития тканевой несовместимости эндотелиоцитов донора и тканей роговой оболочки реципиента, относительно большая толщина имплантируемого диска (100-300 мкм), использование фибринового клея или фибронектина как связующего агента, модифицирование гепарином.The disadvantages of this method are: the technical complexity of the surgical intervention (preparation of the corneal bed with the removal of the endothelial layer and Descemet's membrane), the need for cultivation of corneal endothelial cells, a high risk of tissue incompatibility between the donor's endotheliocytes and the recipient's corneal tissues, the relatively large thickness of the implanted disc (100-300 micron), the use of fibrin glue or fibronectin as a binding agent, modification with heparin.

Новой технической задачей изобретения является уменьшение травматичности оперативного вмешательства, использование для имплантации биодеградируемого материала как временной клеточной подложки, применение аутологичных клеток, что снижает риск развития тканевой несовместимости, упрощение получение клеток, существенное уменьшение толщины имплантата (20-30 мкм).A new technical objective of the invention is to reduce the trauma of surgical intervention, the use of biodegradable material for implantation as a temporary cell substrate, the use of autologous cells, which reduces the risk of tissue incompatibility, simplification of cell production, a significant reduction in the thickness of the implant (20-30 microns).

Для решения поставленной задачи в способе хирургического лечения буллезной кератопатии, включающем имплантацию полимерного материала в переднюю камеру с последующим его подшиванием к роговице узловыми швами, наслаивают аутологичные мононуклеарные лейкоциты на поврежденную поверхность роговицы на границе между пленкой и роговой оболочкой. Имплантат представляет собой пленку из поликапролактона диаметром 6,0 мм, толщиной 20-30 мкм.To solve the problem in the method of surgical treatment of bullous keratopathy, which includes the implantation of a polymeric material into the anterior chamber with its subsequent suturing to the cornea with interrupted sutures, autologous mononuclear leukocytes are layered on the damaged surface of the cornea at the border between the film and the cornea. The implant is a film of polycaprolactone with a diameter of 6.0 mm, a thickness of 20-30 microns.

Благодаря подобному способу применения аутологичных мононуклеарных лейкоцитов и имплантированной полимерной пленки как клеточной подложки значительно уменьшается отек ткани роговицы, что способствует восстановлению ее прозрачности и купированию булл на поверхности.Thanks to this method of using autologous mononuclear leukocytes and an implanted polymer film as a cell substrate, the swelling of the corneal tissue is significantly reduced, which contributes to the restoration of its transparency and the relief of bullae on the surface.

Сущность изобретения поясняется чертежами. Ниже представлено краткое описание приложенных чертежей, используемых для описания осуществления изобретения.The essence of the invention is illustrated by drawings. Below is a brief description of the attached drawings used to describe the implementation of the invention.

На фиг.1 показана сторона пленки поликапролактона;Figure 1 shows the side of the polycaprolactone film;

на фиг.2 представлена фотография краевого угла смачивания (60,1°) пленки поликапролактона после обработки сторон плазмой;figure 2 shows a photograph of the contact angle (60.1°) of the film of polycaprolactone after treatment of the sides with plasma;

на фиг.3. показан спектр пропускания пленки поликапролактона, где 1 - исходный образец; 2 - после плазменной обработки;in Fig.3. the transmission spectrum of the polycaprolactone film is shown, where 1 is the initial sample; 2 - after plasma treatment;

на фиг.4. показана инъекция сосудов конъюнктивы, выраженная отечность отечность роговицы у экспериментального животного через 2 недели после моделирования буллезной кератопатии;in Fig.4. shows the injection of conjunctival vessels, severe edema, edema of the cornea in an experimental animal 2 weeks after the modeling of bullous keratopathy;

на фиг.5. показана инъекция сосудов конъюнктивы, слезотечение, отек роговицы экспериментального животного второй группы на 3-й сутки после имплантации пленки поликапролактона и наслоения мононуклеарных лейкоцитов;in Fig.5. shows the injection of conjunctival vessels, lacrimation, corneal edema of the experimental animal of the second group on the 3rd day after implantation of the polycaprolactone film and layering of mononuclear leukocytes;

на фиг.6. показан умеренно выраженный отек роговицы экспериментального животного второй группы на 14-и сутки после имплантации пленки поликапролактона и наслоения мононуклеарных лейкоцитов;in Fig.6. a moderately pronounced corneal edema of the experimental animal of the second group was shown on the 14th day after the implantation of the polycaprolactone film and the layering of mononuclear leukocytes;

на фиг.7. показан слабо выраженный отек поверхностных слоев роговицы экспериментального животного второй группы через 4 недели после имплантации пленки поликапролактона и наслоения мононуклеарных лейкоцитов;in Fig.7. shows a mild swelling of the surface layers of the cornea of the experimental animal of the second group 4 weeks after the implantation of the polycaprolactone film and the layering of mononuclear leukocytes;

на фиг.8. показан умеренно выраженная инъекция сосудов конъюнктивы и отечность роговицы экспериментального животного первой группы через 6 недель от начала эксперимента;in Fig.8. shows a moderately pronounced injection of conjunctival vessels and swelling of the cornea of the experimental animal of the first group after 6 weeks from the start of the experiment;

на фиг.9. представлена оптическая когерентная томография (ОКТ) роговицы экспериментального животного через 2 недели после моделирования буллезной кератопатии;in Fig.9. presents optical coherence tomography (OCT) of the cornea of an experimental animal 2 weeks after the modeling of bullous keratopathy;

на фиг.10. представлена ОКТ роговицы экспериментального животного второй группы через 4 недели после имплантации пленки поликапролактона и наслоения мононуклеарных лейкоцитов;in Fig.10. OCT of the cornea of the experimental animal of the second group is shown 4 weeks after the implantation of the polycaprolactone film and the layering of mononuclear leukocytes;

на фиг.11. представлена ОКТ роговицы экспериментального животного первой группы через 6 недель от начала эксперимента;in Fig.11. presented OCT of the cornea of the experimental animal of the first group after 6 weeks from the start of the experiment;

на фиг.12. показан передний эпителий, Боуменова мембрана и собственное вещество роговицы экспериментального животного второй группы. Окраска гематоксилин-эозин, х200;in Fig.12. shows the anterior epithelium, Bowman's membrane and corneal proper substance of the experimental animal of the second group. Hematoxylin-eosin stain, x200;

на фиг.13. показано собственное вещество роговицы экспериментального животного второй группы. Окраска гематоксилин-эозин, х200;in Fig.13. the own substance of the cornea of the experimental animal of the second group is shown. Hematoxylin-eosin stain, x200;

на фиг.14. показана адгезия мононуклеарных лейкоцитов к десцеметовой мембране роговицы экспериментального животного второй группы. Окраска гематоксилин-эозин, х400;in Fig.14. adhesion of mononuclear leukocytes to the Descemet's membrane of the cornea of an experimental animal of the second group is shown. Hematoxylin-eosin stain, x400;

на фиг.15. показаны слои отростчатых клеток роговицы экспериментального животного второй группы. Окраска гематоксилин-эозин, х200;in Fig.15. layers of process cells of the cornea of an experimental animal of the second group are shown. Hematoxylin-eosin stain, x200;

на фиг.16. показан передний эпителий, Боуменова мембрана и собственное вещество роговицы экспериментального животного первой группы. Окраска гематоксилин-эозин, х200;in Fig.16. shows the anterior epithelium, Bowman's membrane and corneal proper substance of the experimental animal of the first group. Hematoxylin-eosin stain, x200;

на фиг.17. показан передний эпителий, Боуменова мембрана и собственное вещество роговицы экспериментального животного первой группы. Окраска гематоксилин-эозин, х200.in Fig.17. shows the anterior epithelium, Bowman's membrane and corneal proper substance of the experimental animal of the first group. Hematoxylin-eosin stain, x200.

Пленки поликапролактона (фиг.1) получают из 1%-го раствора поликапролактона с молекулярным весом, Mw=80000 г/моль (Sigma-Aldrich, Англия). Готовый раствор в количестве 12 г выливают в чашки Петри и выдерживают в вытяжном шкафу до полного испарения растворителя (48 часов). Сформированные полимерные пленки удаляют из чашки Петри и помещают в вакуумную камеру на 24 часа (давление 10-3 Торр, температура 25°С) для полного устранения остаточного растворителя. Толщина пленок, полученных по данной методике, составляет (25±5) мкм. В целях увеличения смачиваемости полимера и, как следствие, улучшения адгезии клеток, введенных в переднюю камеру глаза между пленкой и внутренней поверхностью роговицы, стороны материала обрабатывают низкотемпературной плазмой атмосферного давления с напряжением 25 кВ и частотой - 5 кГц продолжительность 30 секунд. Краевой угол смачиваемости (по воде) пленок поликапролактона после обработки сторон плазмой составляет 60,6°±2,3° (фиг.2). Коэффициент пропускания видимого спектра пленок поликапролактона составляет 90%-95% (фиг.3). Способ осуществляется следующим образом.Film polycaprolactone (figure 1) is obtained from a 1% solution of polycaprolactone with a molecular weight, Mw=80000 g/mol (Sigma-Aldrich, England). The finished solution in an amount of 12 g is poured into Petri dishes and kept in a fume hood until the solvent has completely evaporated (48 hours). The formed polymer films are removed from the Petri dish and placed in a vacuum chamber for 24 hours (pressure 10-3 Torr, temperature 25°C) to completely eliminate the residual solvent. The thickness of the films obtained by this method is (25±5) µm. In order to increase the wettability of the polymer and, as a result, improve the adhesion of cells introduced into the anterior chamber of the eye between the film and the inner surface of the cornea, the sides of the material are treated with low-temperature atmospheric pressure plasma with a voltage of 25 kV and a frequency of 5 kHz for 30 seconds. The contact angle of wettability (in water) of polycaprolactone films after treatment of the sides with plasma is 60.6°±2.3° (figure 2). The transmittance of the visible spectrum of polycaprolactone films is 90%-95% (figure 3). The method is carried out as follows.

Аутологичные мононуклеарные клетки из крови экспериментального животного выделяют методом фракционирования в градиенте плотности на разделяющем растворе фиколл-верографин. Кровь, взятую в количестве 4,0-5,0 мл, помещают в стерильную пробирку, содержащую 1,0 мл раствора гепарина. Гепаринизированную кровь разбавляют в 2 раза изотоническим раствором хлорида нартия. Полученная суспензия наслаивается на 3,0 мл смеси фиколла-верографина. Пробы центрифугируют при комнатной температуре в течение 15 мин при 800 g (2000 об/мин). После центрифугирования интерфазный слой, содержащий мононуклеарные клетки и располагающийся между плазмой и градиентом, забирается пастеровской пипеткой. Добавляется 1,0 мл изотонического раствора хлорида натрия, и полученная суспензия вновь центрифугируется в течение 7 мин при 400 g (1550 об/мин). Чистота мононуклеаров, полученных на градиенте фиколл-верографин, составляет до 96-98%. Жизнеспособность клеточного материала оценивается в тесте с трплановым синим следующим способом: предварительно на основе раствора Рингера готовится 0,1% раствор эозина. Далее на основе дистиллированной воды готовится 0,1% раствор трипанового синего. После этого к капле клеточной суспензии добавляют 1-2 капли свежей смеси растворов, приготовленных ранее красителей, взятых в равных объемах. Полученную смесь помещают в камеру Горяева. При подсчете клеток процент окрашенных (погибших) элементов должен составлять 1,5-2%, что не превышало бы допустимое (не более 3%) количество. Жизнеспособность клеточного материала в тесте с трипановым синим составляет 97-98%.Autologous mononuclear cells from the blood of an experimental animal are isolated by density gradient fractionation on a ficoll-verografin separating solution. Blood taken in the amount of 4.0-5.0 ml is placed in a sterile test tube containing 1.0 ml of heparin solution. Heparinized blood is diluted 2 times with isotonic sodium chloride solution. The resulting suspension is layered on 3.0 ml of a mixture of ficoll-verografin. Samples are centrifuged at room temperature for 15 min at 800 g (2000 rpm). After centrifugation, the interphase layer containing mononuclear cells and located between the plasma and the gradient is taken with a Pasteur pipette. 1.0 ml of isotonic sodium chloride solution is added and the resulting suspension is again centrifuged for 7 minutes at 400 g (1550 rpm). The purity of mononuclear cells obtained on a ficoll-verografin gradient is up to 96-98%. The viability of the cell material is assessed in the Triplan blue test in the following way: a 0.1% eosin solution is preliminarily prepared on the basis of Ringer's solution. Next, a 0.1% solution of trypan blue is prepared on the basis of distilled water. After that, 1-2 drops of a fresh mixture of solutions of previously prepared dyes, taken in equal volumes, are added to a drop of the cell suspension. The resulting mixture is placed in the Goryaev chamber. When counting cells, the percentage of stained (dead) elements should be 1.5-2%, which would not exceed the allowable (no more than 3%) amount. The viability of cellular material in the test with trypan blue is 97-98%.

В условиях операционной после наркоза и обработки операционного поля с соблюдением правил асептики и антисептики, животным проводится оперативное вмешательство. В роговице с предварительно индуцированной буллезной кератопатией производят разрез с 12 до 4 часов у лимба, через который имплантируют пленку поликапролактона в переднюю камеру глаза. Пленку подшивают двумя узловыми швами к роговице. На границе между пленкой и внутренней поверхностью роговицы на эндотелий наслаивают клеточную суспензию, роговичный разрез зашивают непрерывным швом. В переднюю камеру вводится стерильный воздух.In the conditions of the operating room after anesthesia and processing of the surgical field in compliance with the rules of asepsis and antisepsis, the animals undergo surgery. In the cornea with pre-induced bullous keratopathy, an incision is made from 12 to 4 hours at the limbus, through which a polycaprolactone film is implanted into the anterior chamber of the eye. The film is sutured with two interrupted sutures to the cornea. On the border between the film and the inner surface of the cornea, a cell suspension is layered on the endothelium, the corneal incision is sutured with a continuous suture. Sterile air is introduced into the anterior chamber.

Способ апробирован на 12 кроликах породы Sylvilagus bachmani весом 2,5-3,0 кг.The method was tested on 12 Sylvilagus bachmani rabbits weighing 2.5-3.0 kg.

Обзор экспериментального материала: общая продолжительность эксперимента составила 6 недель. На I этапе каждому животному в условиях операционной моделировали буллезную кератопатию путем механического повреждения и удаления эндотелия роговицы одного из глаз. На II этапе спустя 2 недели после развития патологического процесса животные были поделены на следующие группы:Review of the experimental material: the total duration of the experiment was 6 weeks. At stage I, bullous keratopathy was simulated in each animal under operating conditions by mechanical damage and removal of the corneal endothelium of one of the eyes. At stage II, 2 weeks after the development of the pathological process, the animals were divided into the following groups:

1 группа - (n=6) группа модели заболевания;group 1 - (n=6) disease model group;

2 группа - (n=6) группа животных, которым в переднюю камеру глаза осуществляли имплантацию пленки поликапролактона и наслоение аутологичных мононуклеарных лейкоцитов описанным способом.group 2 - (n=6) a group of animals in which the anterior chamber of the eye was implanted with a film of polycaprolactone and layered with autologous mononuclear leukocytes by the described method.

В ходе эксперимента проводили наружный осмотр, фоторегистрацию, оптическую когерентную томографию (ОКТ) роговицы. Забор материала производили спустя 6 недель от начала эксперимента.During the experiment, an external examination, photographic recording, and optical coherence tomography (OCT) of the cornea were performed. The material was taken 6 weeks after the start of the experiment.

Энуклеированные глаза фиксировали в 12% нейтральном формалине. Фиксацию проводили при комнатной температуре в течение 24 часов. Затем объекты, после 24-часового промывания в проточной воде, подвергали обезвоживанию в спиртах восходящей концентрации, просветляли в О-ксилоле и заливали в парафин. Полученные срезы окрашивали гематоксилином и эозином, а также по методу Ван-Гизона.Enucleated eyes were fixed in 12% neutral formalin. Fixation was carried out at room temperature for 24 hours. Then the objects, after 24-hour washing in running water, were subjected to dehydration in alcohols of increasing concentration, clarified in O-xylene, and embedded in paraffin. The resulting sections were stained with hematoxylin and eosin, as well as by the Van Gieson method.

Для подсчета различных структурных компонентов и клеточной инфильтрации использовали световой микроскоп ЛОМО Биолам АУ-12 (ок. х7, об. Х40, х90, собственное увеличение микроскопа x1,5), окулярную сетку Автандилова на 50 точек, окулярную вставку с известной площадью.Various structural components and cell infiltration were counted using a LOMO Biolam AU-12 light microscope (approx. x7, x40, x90, native magnification of the microscope x1.5), an Avtandilov 50-point eyepiece grid, and an eyepiece insert with a known area.

Полученные данные обработаны с использованием пакета программ IBM SPSS Statistics 20.The obtained data were processed using the IBM SPSS Statistics 20 software package.

В результате наружно осмотра через 2 недели после моделирования буллезной кератопатии у всех животных было отмечено слезотечение, светобоязнь, инъекция сосудов конъюнктивы, выраженная отечность отечность роговицы (фиг.4). На третьи сутки после имплантации у животных второй группы сохранялась инъекция сосудов конъюнктивы, слезотечение, отек роговицы (фиг.5), на 14-е сутки отек роговой оболочки заметно уменьшился, слезотечение и инъекция сосудов конъюнктивы полностью купировались (фиг.6). Через 4 недели после имплантации пленок поликапролактона и наслоения мононуклеарных лейкоцитов у животных второй группы был заметен слабо выраженный отек поверхностных слоев роговицы (фиг.7). У животных первой группы на протяжении всего эксперимента сохранялись слезотечение, умеренно выраженная инъекция сосудов конъюнктивы и отечность роговицы (фиг.8).As a result of external examination 2 weeks after the modeling of bullous keratopathy in all animals, lacrimation, photophobia, injection of conjunctival vessels, severe swelling of the cornea (figure 4) were noted. On the third day after implantation in animals of the second group, the injection of conjunctival vessels, lacrimation, corneal edema (figure 5) remained, on the 14th day the corneal edema decreased markedly, lacrimation and injection of conjunctival vessels were completely stopped (figure 6). 4 weeks after the implantation of polycaprolactone films and layering of mononuclear leukocytes in animals of the second group, a mild swelling of the surface layers of the cornea was noticeable (Fig.7). In animals of the first group throughout the experiment, lacrimation, moderately pronounced injection of conjunctival vessels and swelling of the cornea remained (Fig.8).

В ходе ОКТ роговицы было выявлено увеличение толщины роговицы у всех животных через 2 недели после моделирования буллезной кератопатии, которая составляла в среднем 745 мкм (фиг.9). Через 2 недели после имплантации пленок поликапролактона и наслоения мононуклеарных лейкоцитов у животных второй группы было замечено снижение толщины роговицы до 703 мкм, через 4 недели - до 633 мкм, р<0,05 (по сравнению с первой группой в эти же сроки по критерию Манна-Уитни) (фиг.10). У животных первой группы толщина роговой оболочки на 6 неделе от начала эксперимента составила 702 мкм (фиг.11).During OCT of the cornea, an increase in the thickness of the cornea was revealed in all animals 2 weeks after the modeling of bullous keratopathy, which averaged 745 μm (Fig.9). 2 weeks after implantation of polycaprolactone films and layering of mononuclear leukocytes in animals of the second group, a decrease in the thickness of the cornea to 703 μm was observed, after 4 weeks - to 633 μm, p<0.05 (compared to the first group at the same time according to the Mann criterion -Whitney) (Fig.10). In animals of the first group, the thickness of the cornea at 6 weeks from the start of the experiment was 702 μm (Fig.11).

В ходе морфологических исследований у второй группы животных было выявлено следующее.In the course of morphological studies in the second group of animals, the following was revealed.

Передний эпителий роговицы представлен 4-5 слоями плоского эпителия с нормохромными ядрами и сохранен на всем протяжении (фиг.12). Боуменова мембрана визуализировалась в виде гомогенной эозинофильной полоски. В собственном веществе роговицы обнаруживались неравномерные умеренные изменения (фиг.12, фиг 13). Собственное вещество роговой оболочки содержало преимущественно компактно расположенные коллагеновые волокна (фиг.12, фиг 13). Удельный объем щелей между ними составил 9,9%. Задняя пограничная мембрана не изменена и хорошо визуализировалась на всем протяжении. Местами было обнаружена адгезия мононуклеарных лейкоцитов, наслоенных на поврежденную поверхность роговицы, к десцеметовой мембране (фиг.14). Во многих местах эндотелий был представлен слоями отростчатых клеток (фиг.15).The anterior corneal epithelium is represented by 4-5 layers of squamous epithelium with normochromic nuclei and is preserved throughout (Fig.12). Bowman's membrane was visualized as a homogeneous eosinophilic strip. In its own substance of the cornea showed uneven moderate changes (Fig.12, Fig. 13). Own substance of the cornea contained predominantly compact collagen fibers (Fig.12, Fig. 13). The specific volume of gaps between them was 9.9%. The posterior limiting membrane was not changed and was well visualized throughout. In places, adhesion of mononuclear leukocytes, layered on the damaged surface of the cornea, to the Descemet's membrane was found (Fig.14). In many places, the endothelium was represented by layers of process cells (Fig.15).

В ходе морфологических исследований у первой группы животных выявлено следующее.In the course of morphological studies in the first group of animals, the following was revealed.

Передний эпителий роговицы представлен слоями плоского эпителия и сохранен на всем протяжении (фиг.16). Боуменова мембрана визуализировалась в виде гомогенной эозинофильной полоски, местами неравномерно утолщена (фиг.16). Собственное вещество роговой оболочки содержало преимущественно извитые коллагеновые волокна, удельный объем щелей между которыми составил 16%, р<0,05 (по сравнению со второй группой по критерию Манна-Уитни) (фиг.17). Задняя пограничная мембрана визуализировалась на всем протяжении. Эндотелий отсутствовал (фиг.17).The anterior corneal epithelium is represented by layers of squamous epithelium and is preserved throughout (Fig.16). Bowman's membrane was visualized as a homogeneous eosinophilic strip, unevenly thickened in places (Fig. 16). The intrinsic substance of the cornea contained predominantly tortuous collagen fibers, the specific volume of gaps between which was 16%, p<0.05 (compared to the second group according to the Mann-Whitney test) (Fig. 17). The posterior limiting membrane was visualized throughout. The endothelium was absent (Fig.17).

Анализ полученных в ходе эксперимента данных, свидетельствует о уменьшении отека роговицы, и, как следствие, стабилизации патологического процесса.Analysis of the data obtained during the experiment indicates a decrease in corneal edema, and, as a result, stabilization of the pathological process.

Таким образом, результаты экспериментального исследования показали, что имплантация пленок поликапролактона в переднюю камеру глаза и наслаивание мононуклеарных лейкоцитов на границе между материалом и внутренней поверхность роговицы при буллезной кератопатии позволяет компенсировать нарушенную функцию эндотелиального слоя роговой оболочки и стабилизировать течение патологического процесса, благодаря чему уменьшается отек ткани и восстанавливается прозрачность роговицы.Thus, the results of an experimental study showed that the implantation of polycaprolactone films in the anterior chamber of the eye and the layering of mononuclear leukocytes at the border between the material and the inner surface of the cornea in bullous keratopathy can compensate for the impaired function of the endothelial layer of the cornea and stabilize the course of the pathological process, thereby reducing tissue edema. and the transparency of the cornea is restored.

Claims (1)

Способ лечения буллезной кератопатии, включающий выполнение хирургического доступа к роговицы и имплантации в переднюю камеру глаза импланта, отличающийся тем, что предварительно производят разрез с 12 до 4 часов у лимба, с последующей имплантацией пленки из поликапролактона диаметром 6,0 мм, толщиной 20 мкм и подшиванием ее двумя узловыми швами к роговице, при этом на границе между плёнкой и внутренней поверхностью роговицы на эндотелий наслаивают клеточную суспензию - аутологичные мононуклеарные лейкоциты, роговичный разрез зашивают непрерывным швом, после чего в переднюю камеру вводится стерильный воздух.A method for the treatment of bullous keratopathy, which includes performing a surgical access to the cornea and implanting an implant in the anterior chamber of the eye, characterized in that an incision is made from 12 to 4 o'clock at the limbus, followed by implantation of a polycaprolactone film with a diameter of 6.0 mm, a thickness of 20 μm and by suturing it with two interrupted sutures to the cornea, while at the border between the film and the inner surface of the cornea, a cell suspension is layered on the endothelium - autologous mononuclear leukocytes, the corneal incision is sutured with a continuous suture, after which sterile air is introduced into the anterior chamber.
RU2021122949A 2021-08-02 Method for treating bullous keratopathy RU2776561C1 (en)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2776561C1 true RU2776561C1 (en) 2022-07-22

Family

ID=

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20140377326A1 (en) * 2011-09-16 2014-12-25 Wake Forest University Health Sciences Fabrication of gelatin hydrogel sheet for the transplantation of corneal endothelium
RU2544306C2 (en) * 2013-03-12 2015-03-20 Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Амурская государственная медицинская академия" Министерства здравоохранения Российской Федерации" Method of treating bullous keratopathy
RU2594447C1 (en) * 2015-07-30 2016-08-20 государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Сибирский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ГБОУ ВПО СибГМУ Минздрава России) Method of treating endothelial-epithelial corneal dystrophy
RU2688795C1 (en) * 2017-11-22 2019-05-22 Федеральное государственное автономное учреждение "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова" Министерства здравоохранения Российской Федерации Method of treating bullous keratopathy
RU2716508C1 (en) * 2019-03-04 2020-03-12 федеральное государственное автономное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова" Министерства здравоохранения Российской Федерации Method of treating painful bullous keratopathy

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20140377326A1 (en) * 2011-09-16 2014-12-25 Wake Forest University Health Sciences Fabrication of gelatin hydrogel sheet for the transplantation of corneal endothelium
RU2544306C2 (en) * 2013-03-12 2015-03-20 Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Амурская государственная медицинская академия" Министерства здравоохранения Российской Федерации" Method of treating bullous keratopathy
RU2594447C1 (en) * 2015-07-30 2016-08-20 государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Сибирский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ГБОУ ВПО СибГМУ Минздрава России) Method of treating endothelial-epithelial corneal dystrophy
RU2688795C1 (en) * 2017-11-22 2019-05-22 Федеральное государственное автономное учреждение "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова" Министерства здравоохранения Российской Федерации Method of treating bullous keratopathy
RU2716508C1 (en) * 2019-03-04 2020-03-12 федеральное государственное автономное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова" Министерства здравоохранения Российской Федерации Method of treating painful bullous keratopathy

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Филиппова Е.О. и др. Исследование применения мембран в хирургическом лечении буллезной кератопатии. В книге: Международный междисциплинарный симпозиум "Иерархические материалы: разработка и приложения для новых технологий и надежных конструкций". Тезисы докладов International Workshop, Международной конференции и VIII Всероссийской научно-практической конференции с международным участием, посвященной 50-летию основания института химии нефти. 2019. С. 278-279. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Lai et al. Tissue-engineered human corneal endothelial cell sheet transplantation in a rabbit model using functional biomaterials
EP1944045B1 (en) Sheet-like composition
Baradaran-Rafii et al. Midterm outcomes of autologous cultivated limbal stem cell transplantation with or without penetrating keratoplasty
US6045791A (en) Retinal pigment epithelium transplantation
JP5946046B2 (en) Human corneal endothelial cell sheet
JP4834802B2 (en) Culture layer laminate of human corneal endothelial cells and method for producing the same
CN101522133B (en) Implantable optical system, method for developing it and applications
Samarawickrama et al. Collagen-based fillers as alternatives to cyanoacrylate glue for the sealing of large corneal perforations
JP3490447B2 (en) Retinal pigment epithelium transplantation
JP2001161353A (en) Cell piece for transplantation and method for preparing the same
US20070280993A1 (en) Corneal Epithelial Sheet, Method Of constructing The Same, And Transplantation Method Using The Sheet
De Groot et al. In vitro study on the closure of posterior capsulorrhexis in the human eye
Crouzet et al. Tissue engineered endothelial keratoplasty in rabbit: tips and tricks
RU2776561C1 (en) Method for treating bullous keratopathy
CN116348157B (en) High-adhesion artificial cornea endothelial sheet and preparation method and application thereof
Jorge E et al. In vivo Biocompatibility of Chitosan and Collagen–Vitrigel Membranes for Corneal Scaffolding: a Comparative Analysis
Flaxel Histology of cataract extractions
Yazgan et al. Novel Bacterial Cellulose Membrane to Reduce Fibrosis Following Trabeculectomy
Galin et al. Experimental cataract surgeryelectron microscopy
RU2814630C1 (en) Method of treating limbal insufficiency by transplantation of cultured stem cells into intrastromal corneal tunnels
CN115067321B (en) Nutritional capsule for medium-long-term three-dimensional preservation of cornea tissue and preparation method thereof
Sharma et al. Limbal stem cell transplants and amniotic membrane grafts in ocular surface disease: current perspectives.
RU2082364C1 (en) Method to treat bullous keratopathy
CA2161659C (en) Retinal pigment epithelium transplantation
D'Antin Lens capsule tissue culture for the investigation and prevention of posterior capsule opacification