RU2775753C1 - Кристаллическая форма трициклического соединения и ее применение - Google Patents

Кристаллическая форма трициклического соединения и ее применение Download PDF

Info

Publication number
RU2775753C1
RU2775753C1 RU2021105946A RU2021105946A RU2775753C1 RU 2775753 C1 RU2775753 C1 RU 2775753C1 RU 2021105946 A RU2021105946 A RU 2021105946A RU 2021105946 A RU2021105946 A RU 2021105946A RU 2775753 C1 RU2775753 C1 RU 2775753C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
compound
added
solution
crystalline form
formula
Prior art date
Application number
RU2021105946A
Other languages
English (en)
Inventor
Цзин ВАН
Чжигань ЦЗЯН
Хайин Хэ
Ясюнь Ян
Original Assignee
Фуцзянь Акейлинк Биотекнолоджи Ко., Лтд.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Фуцзянь Акейлинк Биотекнолоджи Ко., Лтд. filed Critical Фуцзянь Акейлинк Биотекнолоджи Ко., Лтд.
Application granted granted Critical
Publication of RU2775753C1 publication Critical patent/RU2775753C1/ru

Links

Images

Abstract

Изобретение относится к кристаллической форме А и кристаллической форме В соединения, представленного формулой (I), и их применению в получении лекарственных препаратов для лечения HBV. Технический результат: получены новые кристаллические формы соединения, представленного формулой (I), которые могут быть применимы в получении лекарственных препаратов для лечения HBV. 3 н. и 10 з.п. ф-лы, 10 табл., 9 пр., 8 ил.

Description

[1] Данная заявка испрашивает приоритет по заявке на патент Китая № CN 2018109690068, поданной 23 августа 2018 г., содержание которой включено в данный документ во всей своей полноте.
Область техники
[2] Настоящее изобретение относится к кристаллической форме А и кристаллической форме В соединения, представленного формулой (I), и их применению в получении лекарственного препарата для лечения HBV.
Уровни техники
[3] Гепатит В представляет собой воспалительный ответ, обусловленный проникновением вируса гепатита В, который может привести к ряду проблем, таких как боль в области печени, гепатоспленомегалия, фиброз печени, и цирроз, и даже рак печени в тяжелых случаях. Статистически в мире насчитывается 350-400 миллионов носителей вируса гепатита В, 1/3 из которых находится в Китае, а число смертей, обусловленных гепатитом В, в Китае составляет до 500000 каждый год.
[4] На данном этапе в мире нет конкретных лекарственных средств для лечения гепатита В. Лекарственные средства первой линии для лечения гепатита В в Китае в основном представляют собой нуклеозидные лекарственные средства, интерфероны и средства традиционной китайской медицины. Однако существуют такие проблемы, как высокая стоимость и подверженность рецидивам, и поэтому крайне необходимо разработать новый тип лекарственного средства для лечения гепатита.
[5] В WO 2008154817 A1 раскрыта следующая структура GLS4:
Figure 00000001
Содержание изобретения
[6] В настоящем изобретении предусмотрена кристаллическая форма А соединения, представленного формулой (I), при этом ее порошковая рентгеновская дифрактограмма (XRPD) содержит характеристические дифракционные пики при следующих значениях угла 2θ: 5,56±0,2°, 10,84±0,2°, 15,56±0,2°, 16,17±0,2°, 22,14±0,2°, 22,70±0,2°, 27,76±0,2° и 28,44±0,2°,
Figure 00000002
[7] В некоторых вариантах осуществления настоящего изобретения дифрактограмма XRPD кристаллической формы А, как определено выше, представлена на фигуре 1.
[8] В некоторых вариантах осуществления настоящего изобретения данные анализа из дифрактограммы XRPD кристаллической формы А, как определено выше, представлены в таблице 1.
[9] Таблица 1. Аналитические данные дифрактограммы XRPD кристаллической формы А
Figure 00000003
[10] В некоторых вариантах осуществления настоящего изобретения кристаллическая форма А, как определено выше, проявляет эндотермический пик с началом при 229,95°С, как измерено с помощью кривой дифференциальной сканирующей калориметрии (DSC).
[11] В некоторых вариантах осуществления настоящего изобретения DSC кристаллической формы А, как определено выше, показана на фигуре 2.
[12] В некоторых вариантах осуществления настоящего изобретения кристаллическая форма А, как определено выше, имеет кривую термогравиметрического анализа (TGA) с потерей веса 0,3382% при 62±3°С и потерей веса 0,8753% при 230±3°С.
[13] В некоторых вариантах осуществления настоящего изобретения TGA кристаллической формы А, как определено выше, показана на фигуре 3.
[14] В настоящем изобретении также предусмотрена кристаллическая форма В соединения, представленного формулой (I), при этом ее порошковая рентгеновская дифрактограмма содержит характеристические дифракционные пики при следующих значениях угла 2θ: 9,56±0,2°, 12,70±0,2°, 14,41±0,2°, 15,64±0,2°, 19,70±0,2°, 23,03±0,2°, 23,98±0,2° и 27,65±0,2°.
[15] В некоторых вариантах осуществления настоящего изобретения дифрактограмма XRPD кристаллической формы В, как определено выше, представлена на фигуре 4.
[16] В некоторых вариантах осуществления настоящего изобретения данные анализа из дифрактограммы XRPD кристаллической формы В, как определено выше, представлены в таблице 2.
[17] Таблица 2. Аналитические данные дифрактограммы XRPD кристаллической формы В
Figure 00000004
[18] В некоторых вариантах осуществления настоящего изобретения кристаллическая форма В, как определено выше, проявляет эндотермический пик с началом при 233,59°С, как измерено с помощью кривой дифференциальной сканирующей калориметрии.
[19] В некоторых вариантах осуществления настоящего изобретения DSC кристаллической формы В, как определено выше, показана на фигуре 5.
[20] В некоторых вариантах осуществления настоящего изобретения кристаллическая форма В, как определено выше, имеет кривую термогравиметрического анализа с потерей веса 0,04890% при 120±3°С.
[21] В некоторых вариантах осуществления настоящего изобретения TGA кристаллической формы В, как определено выше, показана на фигуре 6.
[22] В настоящем изобретении также предусмотрено применение кристаллической формы А или кристаллической формы В, как определено выше, в получении лекарственного препарата для лечения HBV.
[23] Технические эффекты
[24] Кристаллическая форма А и кристаллическая форма В соединения, представленного формулой (I), по настоящему изобретению, являются устойчивыми и меньше подвержены влиянию тепла и влажности с хорошей эффективностью при введении in vivo и имеют широкие перспективы в получении лекарственных препаратов.
[25] Определения и объяснения
[26] Если не указано иное, предполагается, что следующие термины и выражения, используемые в настоящем документе, имеют следующие значения. Конкретный термин или выражение при отсутствии точного определения не следует считать неопределенным или неясным, а следует понимать в соответствии с традиционным значением. Если в данном документе встречается торговое название, то предполагается, что оно относится к соответствующему продукту или его активному ингредиенту.
[27] Промежуточные соединения по настоящему изобретению могут быть получены с помощью различных способов синтеза, известных специалисту в данной области техники, в том числе вариантов осуществления, описанных ниже, вариантов осуществления, образованных путем объединения вариантов осуществления, описанных ниже, с другими способами химического синтеза, и эквивалентных альтернатив, общеизвестных специалисту в данной области техники. Предпочтительные варианты осуществления включают без ограничения варианты осуществления настоящего изобретения.
[28] Химические реакции в вариантах осуществления настоящего изобретения осуществляют в подходящем растворителе, и растворитель должен быть подходящим для химического изменения, и с применением необходимых реагентов и материалов в соответствии с настоящим изобретением. С целью получения соединения по настоящему изобретению, специалистам в данной области техники иногда необходимо модифицировать или выбирать стадии синтеза или схемы реакций на основе существующих вариантов осуществления.
[29] Настоящее изобретение будет конкретно описано ниже с помощью вариантов осуществления, но объем настоящего изобретения ими не ограничивается.
[30] Все растворители, применяемые в настоящем изобретении, являются коммерчески доступными и могут непосредственно применяться без дополнительной очистки.
[31] Применяемые в настоящем изобретении растворители являются коммерчески доступными. В настоящем изобретении используются следующие сокращения: ЕЮН обозначает этанол; МеОН обозначает метанол; TFA обозначает трифторуксусную кислоту; TsOH обозначает п-толуолсульфоновую кислоту; т. пл. обозначает точку плавления; EtSO3H обозначает этансульфоновую кислоту; MeSO3H обозначает метансульфоновую кислоту; THF обозначает тетрагидрофуран; EtOAc обозначает этилацетат; THF обозначает тетрагидрофуран; ЕА обозначает этилацетат; DMAP обозначает 4-диметиламинопиридин; DCM обозначает дихлорметан; DIPEA обозначает N,N-диизопропилэтиламин.
[32] Порошковая рентгеновская дифракция (XRPD)
[33] Применяли приблизительно 10-20 мг образца для обнаружения с помощью XRPD.
[34] Подробные параметры XRPD являются следующими:
[35] рентгеновская трубка: Cu, kα, (λ = 1,54056 Å);
[36] напряжение на рентгеновской трубке: 40 кВ; сила тока на рентгеновской трубке: 40 мА;
[37] щель расходимости: 0,60 мм;
[38] щель детектора: 10,50 мм;
[39] антирассеивающая щель: 7,10 мм;
[40] диапазон сканирования: 3-40 град, или 4-40 град.;
[41] размер шага: 0,02 град.;
[42] время шага: 0,12 секунды;
[43] скорость вращения лотка для образцов: 15 об./мин.
[44] Дифференциальная сканирующая калориметрия (DSC)
[45] 0,5-1 мг образца помещали в алюминиевый тигель для DSC для проведения испытания путем повышения температуры образца от 30°С до 300°С со скоростью 10°С/ мин. при 50 мл/мин. N2.
[46] Термогравиметрический анализ (TGA)
[47] 2-5 мг образца помещали в платиновый тигель для TGA для проведения испытания и нагревали со скоростью 10°С/мин. при 25 мл/мин. N2 с повышением температуры образца от комнатной температуры до 300°С или до потери 20% веса образца.
[48] Анализ динамической сорбции пара (DVS)
[49] Условия обнаружения: 10-15 мг образца помещали в лоток для образцов для обнаружения с помощью DVS.
[50] Подробные параметры DVS указаны ниже:
[51] температура: 25°С;
[52] равновесие: dm/dt=0,01%/MHH.: (наименьшее: 10 мин., наибольшее: 180 мин.);
[53] высушивание: относительная влажность 0%, 120 мин.;
[54] градиент относительной влажности (%) для проведения испытания: 10%;
[55] диапазон градиента относительной влажности (%) для проведения испытания: 0%-90%-0%.
[56] Ниже приведены критерии для оценки.
Figure 00000005
Краткое описание графических материалов
[58] На фигуре 1 представлена дифрактограмма XRPD кристаллической формы А соединения, представленного формулой (I), с применением излучения Cu-Kα.
[59] На фигуре 2 представлена термограмма DSC кристаллической формы А соединения, представленного формулой (I).
[60] На фигуре 3 представлена термограмма TGA кристаллической формы А соединения, представленного формулой (I).
[61] На фигуре 4 представлена дифрактограмма XRPD кристаллической формы В соединения, представленного формулой (I), с применением излучения Cu-Kα.
[62] На фигуре 5 представлена термограмма DSC кристаллической формы В соединения, представленного формулой (I).
[63] На фигуре 6 представлена термограмма TGA кристаллической формы В соединения, представленного формулой (I).
[64] Фигура 7. Уровень ДНК вируса гепатита В в плазме крови; ломаная линия 1 обозначает 10% водный раствор Solutol в качестве холостого контроля, который вводили один раз в сутки (QD), перорально (РО); ломаная линия 2 обозначает, что WX-325 вводили в дозе 15 мг/кг два раза в сутки (BID) в интервалом 8 часов, перорально (РО); ломаная линия 3 обозначает, что WX-325 вводили в дозе 50 мг/кг два раза в сутки (BID) с ин тервалом 8 часов, перорально (РО); ломаная линия 5 обозначает, что WX-325 вводили в дозе 150 мг/кг два раза в сутки (BID) с интервалом 8 часов, перорально (РО); ломаная линия 6 обозначает, что тенофовир (TDF) в качестве соединения, являющегося положительным контролем, вводили в дозе 15 мг/кг два раза в сутки (BID) с интервалом 8 часов, перорально (РО); LLOQ обозначает нижний предел обнаружения; примечание: WX-325 на фигуре 7 обозначает соединение, представленное формулой (I), по настоящему изобретению.
[65] Фигура 8. Уровень ДНК вируса гепатита В в печени на 28-й день; примечание: QD обозначает один раз в сутки; BID обозначает два раза в сутки; МРК обозначает мг/кг; носитель обозначает раствор в качестве холостого контроля; примечание: WX-325 на фигуре 8 обозначает соединение, представленное формулой (I), по настоящему изобретению.
Подробное описание предпочтительного варианта осуществления
[66] С целью лучшего понимания содержания настоящего изобретения следующие варианты осуществления дополнительно иллюстрируют настоящее изобретение, но настоящее изобретение не ограничивается ими.
[67] Пример 1. Получение соединения, представленного формулой (I)
Figure 00000006
[68] Путь синтеза
Figure 00000007
[69] Стадия 1. Синтез соединения 1-А
[70] Безводный дихлорметан (5 л) добавляли в сухую трехгорлую колбу (10 л) и перемешивали, затем в трехгорлую колбу последовательно добавляли соединение 1-SMA (500,00 г) и нитрометаы с получением смеси. Смесь помещали на баню с сухим льдом и этанолом и охлаждали до -10°С. Температуру контролировали в пределах от -10°С до 0°С. Трихлорид алюминия (1,15 кг) медленно добавляли в реакционную колбу и температуру контролировали до менее 0°С. Затем в реакционный сосуд медленно добавляли α,α-дихлордиметилметиловый эфир (495,00 г) с получением реакционного раствора, который медленно нагревали до комнатной температуры и перемешивали в течение 18 часов. С помощью мониторинга посредством TLC (РЕ:ЕА 3:1) выявили исчезновение пятна исходного материала и появление нового пятна с высокой полярностью. Раствор бисульфата калия (3 л) медленно добавляли по каплям к экстрагированному реакционному раствору до концентрации 10%, перемешивали в течение 20 минут, при этом добавляли измельченный лед, чтобы предотвратить перегрев. Смешанный раствор переносили в делительную воронку объемом 25 л и оставляли отстояться для расслоения, чтобы отделить слой дихлорметана, и экстрагировали водную фазу дихлорметаном (2 л*2). После промывания 10% раствором бисульфата калия (5 л*2) органическую фазу отделяли и высушивали над безводным сульфатом натрия (1 кг). Органическую фазу концентрировали при пониженном давлении с получением соединения 1-А в виде темно-зеленого твердого вещества.
[71] 1Н ЯМР (400 МГц, дейтерированный хлороформ) δ = 9,97 (br s, 1Н), 9,87-9,82 (m, 1Н), 7,58 (dd, 7=1,5, 3,3 Гц, 1Н), 7,36-7,29 (m, 1Н), 4,37 (q, 7-7,1 Гц, 2Н), 1,38 (t, 7=7,2 Гц, 3Н).
[72] Стадия 2. Синтез соединения 1-В
[73] Добавляли п-толуолсульфонилгидразид (2,23 кг, 11,96 моль) к раствору THF (20 л), содержащему соединение 1-А (2 кг, 11,96 моль). Раствор перемешивали при 20°С в течение приблизительно 1 ч. При наблюдении за исчезновением исходного материала с помощью ТГС реакционную систему нагревали до 60°С и добавляли порциями цианоборогидрид натрия (902 г, 14,36 моль). После добавления реакционный раствор нагревали до 70°С и перемешивали в течение 3 ч. Затем нагревание прекращали и обеспечивали охлаждение до комнатной температуры, добавляли 5 л воды для гашения реакции с последующим удалением большей части THF при пониженном давлении и остаток экстрагировали большим количеством ЕА (1,5 л*3). Органические фазы объединяли, промывали с помощью насыщенного хлорида натрия и высушивали над безводным сульфатом натрия. Затем органические фазы фильтровали и растворитель удаляли при пониженном давлении. Наконец, неочищенный продукт подвергали колоночной хроматографии с получением соединения 1-В в виде бледно-желтого твердого вещества.
[74] Стадия 3. Синтез соединения 1-С
[75] Добавляли метанол (32 л) в реактор с рубашкой объемом 50 л и перемешивали, затем добавляли последовательно соединение 1-SMB (4000,00 г) и диизопропилэтиламин (5,25 л) и внутреннюю температуру понижали до 5-10°С. Медленно добавляли по каплям бензилмеркаптан (2490,00 г) и внутреннюю температуру поддерживали при 5-15°С. После завершения добавления систему охлаждения отключали для обеспечения повышения температуры естественным образом и продолжали перемешивание в течение 2,5 ч. Затем перемешивание останавливали, скорость доводили до 100 об./мин. и реакционную жидкость высвобождали и фильтровали через настольный фильтр с получением осадка на фильтре. Осадок на фильтре промывали водой трижды (5 л), затем один раз с помощью EtOH (3 л). Осадок на фильтре фильтровали путем фильтрования с отсасыванием до тех пор, пока он не переставал быть вязким, с получением соединения 1-С в виде бледно-желтого твердого вещества.
[76] Стадия 4. Синтез соединения 1-D
[77] Дихлорметан (7,5 л) добавляли в реактор объемом 50 л и перемешивали, затем добавляли соединение 1-С (1500 г). Внутреннюю температуру снижали до 0-10°С и добавляли раствор HCl (6 М, 4,12 л). Добавляли по каплям раствор гипохлорита натрия (коммерчески доступный 8% раствор, 23,0 кг) при 0-10°С с открытой крышкой. После добавления по каплям отключали систему охлаждения и продолжали перемешивание в течение приблизительно 17 часов с открытой крышкой. Затем для теплоемкости добавляли бисульфит натрия (1000 г, 5 л водного раствора) и использовали йодокрахмальную реактивную бумагу, чтобы определить, не осталось ли окислителя в водной фазе. Затем перемешивание останавливали, раствор оставляли отстояться для расслоения. Слой дихлорметана собирали при экстрагировании водного слоя дихлорметаном (2,5 л) и слои дихлорметана объединяли. Органическую фазу высушивали над безводным сульфатом натрия и фильтровали, затем растворитель удаляли при пониженном давлении с получением соединения 1-D в виде белого твердого вещества.
[78] 1Н ЯМР (400 МГц, дейтерированный хлороформ) δ = 8,50-8,43 (m, 2Н), 8,34 (d, 7=8,2 Гц, 1Н), 4,04 (s, 3Н).
[79] Стадия 5. Синтез соединения 1-Е
[80] Тетрагидрофуран (10 л) добавляли в сухой реактор с рубашкой объемом 50 л и перемешивали, затем добавляли соединение 1-В (2000 г). Внутреннюю температуру снижали до 0-10°С. Температуру поддерживали при 0-15°С в течение приблизительно 1,5 часов и добавляли трет-бутоксид калия (1 М раствор THF, 15,67 л). После добавления температуру повышали до приблизительно 20°С и продолжали перемешивание в течение 1 часа. Затем температуру снижали до 0-10°С и медленно добавляли раствор THF (10 л), содержащий соединение 1-D (4380 г). После добавления температуру медленно повышали до 15°С и перемешивание продолжали в течение приблизительно 16 часов. Добавляли этилацетат (10 л) для экстракции и дважды промывали органическую фазу насыщенным раствором хлоридом натрия (10 л). Водные фазы объединяли и экстрагировали с помощью ЕА (5 л) и органические фазы объединяли. Наконец, растворитель удаляли из органической фазы при пониженном давлении с получением соединения 1-Е в виде бледно-желтого твердого вещества.
[81] 1Н ЯМР (400 МГц, DMSO-d6) δ = 8,55 (d, 7=1,4 Гц, 1Н), 8,37 (dd, 7=1,5, 8,3 Гц, 1Н), 7,91 (d, 7=8,3 Гц, 1Н), 7,60 (s, 1Н), 7,13 (d, 7=1,8 Гц, 1Н), 4,02 (q, 7=7,0 Гц, 2Н), 3,93 (s, 3Н), 2,10 (s. 3Н), 1,08 (t, 7=7,1 Гц, 3Н).
[82] Стадия 6. Синтез соединения 1-SM1
[83] Соединение 1-Е (1000,0 г) добавляли в сухую трехгорлую колбу объемом 10 л и перемешивали, затем добавляли ледяную уксусную кислоту (5 л) и внутреннюю температуру реакции контролировали при 25-30°С. Медленно добавляли порошок железа (1 экв., 140,9 г). После перемешивания в течение 30 минут медленно добавляли вторую партию порошка железа (0,5 экв., 70,44 г). После перемешивания, продолжающегося в течение 30 минут, добавляли третью партию порошка железа (0,5 экв., 70,44 г). Через еще 30 мин. перемешивания добавляли четвертую партию порошка железа (0,5 экв. 70,44 г) и реакционную смесь продолжали перемешивать с мониторингом исчезновения исходного материала и появления новой точки с высокой полярностью. Затем перемешивание останавливали и реакционный раствор переносили в дозатор объемом 25 л для разделения жидкости. Добавляли 10 л этилацетата к раствору, который затем дважды промывали с помощью 5 л насыщенного водного раствора бисульфата натрия. После отделения жидкости водную фазу подвергали обратной экстракции с помощью 5 л этилацетата. Органические фазы затем объединяли и промывали с помощью 10% водного раствора NaOH до рН>8 и органические фазы собирали путем разделения жидкостей. Органическую фазу концентрировали при пониженном давлении с получением соединения 1-SM1 в виде белого твердого вещества.
[84] 1Н ЯМР (400 МГц, DMSO-d6) δ = 7,79-7,71 (m, 2Н), 7,50 (d, 7=1,8 Гц, 1Н), 7,14 (dd, 7=1,7, 8,5 Гц, 1Н), 6,96 (d, 7=2,0 Гц, 1Н), 6,42 (s, 2Н), 4,11 (q, 7=7,2 Гц, 2Н), 3,84 (s, 3Н), 2,04 (s, 3Н), 1,16 (t, 7=7,1 Гц, 3Н).
[85] Стадия 7. Синтез соединения 1-F
[86] Добавляли толуол (12 л) в сухой реактор с рубашкой объемом 50 л и перемешивали, затем добавляли 2-бромэтанол (9930 г) с последующим добавлением эфира трифторида бора (268 г). Реакционную смесь нагревали до 30-35°С. Медленно добавляли по каплям соединение 1-SMC (3500 г) и завершали добавление через приблизительно 1,5 часа. После добавления повышали внутреннюю температуру реакции до приблизительно 55-65°С и регулировали настройки температуры нагревателя до 60°С для поддержания внутренней температуры при 55-65°С в течение 1 часа. Затем внутреннюю температуру системы снижали до приблизительно 10°С и в реакционную систему медленно добавляли водный раствор гидроксида натрия (3783 г, 17,5 л воды) при приблизительно 20°С при поддержании внутренней температуры при 10-20°С. После добавления раствора NaOH контроль температуры нагревателя отключали и реакционную смесь продолжали перемешивать в течение приблизительно 16 ч. Затем перемешивание останавливали для стационарного разделения реакционного раствора. Водный слой экстрагировали 2-метилтетрагидрофураном (10 л) и органические фазы объединяли, промывали с помощью воды (10 л) и оставляли отстояться для расслоения для сбора органической фазы. Наконец, органическую фазу концентрировали при пониженном давлении с получением соединения 1-F в виде бесцветного масла.
[87] 1Н ЯМР (400 МГц, дейтерированный хлороформ) δ = 3,87-3,71 (m, 4Н), 3,66-3,59 (m, 3Н), 3,42 (dd, J=6,0, 11,7 Гц, 1Н), 3,20-3,13 (m, 1Н), 2,79 (t. 7=4,6 Гц, 1Н), 2,65-2,59 (m, 1Н).
[88] Стадия 8. Синтез соединения 1-G
[89] Водный раствор гидроксида натрия (3240 г, 15 л воды) добавляли в реактор с рубашкой объемом 50 л, затем добавляли соединение 1-F (4430 г) и включали нагревание. После нагревания реакционной смеси до 90°С продолжали перемешивание в течение 1 ч. Включали охлаждение для снижения температуры реакции до приблизительно 15°С, затем добавляли раствор THF (6180 г, 15 л тетрагидрофурана), содержащий раствор п-толуолсульфонилхлорида. Контроль температуры нагревателя отключали и реакционную смесь дополнительно перемешивали при приблизительно 15°С в течение приблизительно 16 ч. Затем перемешивание останавливали для обеспечения отстаивания реакционной смеси для расслоения. Водную фазу экстрагировали 2-метилтетрагидрофураном (10 л) и фазу 2-метилтетрагидрофурана (представляющую собой белое нерастворимое вещество, которое исчезало после промывки) промывали водой (5 л) и органические фазы объединяли. DMAP (500 г) и триэтиламин (2,5 л) добавляли к органической фазе с последующим перемешиванием органической фазы в течение 30 минут. Затем органическую фазу промывали насыщенным раствором хлорида натрия (10 л) и оставляли отстояться для расслоения и водную фазу отбрасывали. Органическую фазу последовательно промывали раствором гидросульфата калия (3800 г, 15 л воды) и насыщенным раствором хлорида натрия (5 л, дважды), а затем оставляли отстояться для расслоения и собирали органическую фазу. Органическую фазу наконец концентрировали при пониженном давлении для удаления растворителя с получением неочищенного продукта в виде соединения 1-G.
[90] 1Н ЯМР (400 МГц, дейтерированный хлороформ) δ = 7,77 (d, J=8,3 Гц, 2Н), 7,34 (d, J=8,2 Гц, 2Н), 4,03-3,91 (m, 2Н), 3,80-3,49 (m, 8Н), 3,33 (dd,.7=9,9, 11,4 Гц, 1H), 2,43 (s, 3Н).
[91] Стадия 9. Синтез соединения 1-Н
[92] Ацетон (30 л) добавляли в чистый реактор с рубашкой объемом 50 л, затем добавляли соединение 1-G (4500 г) с последующим добавлением йодида натрия (6190 г). Включали нагревание и после нагревания реакционной смеси до 75°С продолжали перемешивание в течение 16 часов. После охлаждения до комнатной температуры реакционную смесь фильтровали и фильтрат концентрировали при пониженном давлении при 50°С. Добавляли этилацетат (15 л) и воду (10 л) в концентрированный неочищенный продукт и смесь перемешивали, а затем оставляли отстояться для расслоения. Органическую фазу промывали 0,5 М тиосульфатом натрия (10 л). Водную фазу и раствор тиосульфата натрия объединяли и экстрагировали с помощью EtOAc (5 л). Органические фазы объединяли и промывали с помощью насыщенного раствора хлорида натрия (10 л), затем оставляли отстояться для расслоения и собирали органическую фазу. Органическую фазу наконец концентрировали при пониженном давлении для удаления растворителя с получением неочищенного продукта в виде соединения 1-Н.
[93] 1Н ЯМР (400 МГц, дейтерированный хлороформ) δ = 3,90-3,83 (m, 2Н), 3,81-3,75 (m, 2Н), 3,74-3,65 (m, 5Н), 3,63-3,49 (m, 7Н), 3,31-3,18 (m, 3Н), 3,06-3,04 (m, 2Н).
[94] Стадия 10. Синтез соединения 1-1
[95] DMSO (20 л) добавляли в чистый реактор с рубашкой объемом 50 л, затем добавляли соединение 1-Н (4700 г) и температуру повышали до 35°С с последующим добавлением цианида натрия (1010 г). Внутреннюю температуру реакции повышали до приблизительно 60°С в течение 20 минут, затем температуру постепенно понижали до 35°С и продолжали перемешивание в течение приблизительно 16 часов. Раствор бикарбоната натрия (2000 г бикарбоната натрия, 10 л воды) добавляли в реакционную систему, которую затем перемешивали в течение приблизительно 5 минут. Добавляли EtOAc: МеОН (20 л, 2 л) и реакционную систему дополнительно перемешивали в течение 2 минут с последующим отстаиванием в течение приблизительно 1 часа. Затем реакционную систему разделяли и отделяли приблизительно 30 л нижнего слоя раствора. Нижний слой раствора экстрагировали дважды с помощью ЕЮАс : МеОН (15 л: 1,5 л для первого раза и 5 л: 0,5 л для второго раза). После экстракции верхнюю органическую фазу и верхний слой оставшейся реакционной жидкости объединяли, трижды промывали насыщенным раствором хлорида натрия (каждый по 10 л) и оставляли отстояться для расслоения. Водную фазу отбрасывали, в то время как органическую фазу собирали. Наконец, удаляли растворитель из органической фазы при пониженном давлении и неочищенный продукт подвергали колоночной хроматографии с получением соединения 1 -I в виде бесцветного масла.
[96] 1Н ЯМР (400 МГц, дейтерированный хлороформ) δ = 3,84-3,65 (m, 6Н), 3,61-3,53 (m, 2Н), 3,35 (t, J=10,5 Гц, 1Н), 2,49-2,44 (m, 2Н).
[97] Стадия 11. Синтез соединения 1-J
[98] В защитной атмосфере аргона добавляли никель Ренея (10,00 г, 116,73 ммоль) и EtOH (150 мл) в сухую колбу для гидрогенизации, а затем добавляли 1-I (20 г, 157,31 ммоль) и NH3⋅H2O (13,65 г, 97,36 ммоль, 15,00 мл, чистота 25%) с последующей заменой и реакционную смесь перемешивали при 50 фунтах/кв. дюйм и 50°С в течение 3,5 ч. Реакционный раствор фильтровали с применением диатомита и фильтрат концентрировали при пониженном давлении с получением соединения 1-J в виде желтого масла.
[99] 'Н ЯМР (400 МГц, дейтерированный хлороформ) δ = 3,82-3,57 (m, 6Н), 3,34-3,18 (m, 1Н), 2,86-2,72 (m, 2Н), 1,60-1,38 (m, 2Н).
[100] Стадия 12. Синтез соединения 1-SM2
[101] Добавляли 1-J (800,00 г) в трехгорлую колбу объемом 5 л и перемешивали, затем добавляли этилацетат (800 мл) в течение 0,5 ч. и медленно добавляли по каплям 4М HCl/EtOAc (1,6 л) до тех пор, пока значение рН системы не стало меньше 5, при этом внутреннюю температуру поддерживали при 5-15°С. Затем систему охлаждения отключали и реакционную смесь нагревали до комнатной температуры и дополнительно перемешивали в течение 1 часа. После прекращения перемешивания реакционную смесь фильтровали через настольный фильтр с получением осадка на фильтре, который затем концентрировали при пониженном давлении (40-45°С) с получением неочищенного продукта. Ацетонитрил (2 мл/г) добавляли к предыдущему продукту и смесь суспендировали в течение 1 часа. После суспендирования продукт фильтровали, осадок на фильтре собирали по отдельности и органический раствор удаляли при пониженном давлении с получением белого твердого вещества соединения 1-SM2.
[102] 1Н ЯМР (399 МГц, МЕТАНОЛ-d4) δ = 3,88-3,72 (m, 5Н), 3,67-3,59 (m, 1Н), 3,36-3,31 (m, 1Н), 3,14 (t, J=6,7 Гц, 2Н), 1,87-1,67 (m, 2Н).
[103] Стадия 13. Синтез соединения 1-1-А и соединения 1-1-В
[104] Добавляли толуол (20 л) в сухой реактор с рубашкой объемом 50 л и перемешивали, затем добавляли соединение 1-SM1 (2500 г) и внутреннюю температуру повышали до 30-35°С.Среду инертного газа в реакторе поддерживали продувкой азотом. Затем добавляли по каплям триметилалюминий (3,0 л, температуру в реакторе медленно повышали добавлением Al(СН3)3). После добавления отключали продувку азотом. Температуру повышали до 80-85°С и реакционную смесь дополнительно перемешивали в течение приблизительно 16 часов. Затем отключали охлаждение для снижения температуры реакционной смеси до 20-30°С.Половину реакционного раствора (приблизительно 12 л), к которому добавляли EtOAc (10 л), переносили и хорошо перемешивали. Смешанный раствор добавляли к раствору 10% KHSO4 (10 мл) при перемешивании, перемешивали в течение 2 минут, а затем оставляли отстояться для расслоения. Органический слой промывали с помощью 10% раствора KHSO4 (10 л), водные фазы объединяли и экстрагировали дважды с помощью DCM (каждый раз по 7,5 л). Переносили другую половину реакционного раствора (приблизительно 12 л) и обрабатывали таким же образом, как определено выше. Затем органические фазы объединяли и концентрировали при пониженном давлении с получением неочищенного продукта. Добавляли двукратный объем н-гептана и взбивали в течение 1 часа с образованием суспензии. Суспензию фильтровали и высушивали в вакууме в течение > 12 часов при 40°С, Р≤-0,1МРа. Смесь соединения 1-1-А и соединения 1-1-В получали в виде белого твердого вещества.
[105] Стадия 14. Синтез соединения 1-2
[106] Тетрагидрофуран (3840 мл) добавляли в трехгорлую колбу объемом 10 л и перемешивали и медленно добавляли смесь соединения 1-1-А и соединения 1-1-В (480,00 г), затем медленно добавляли по каплям раствор LiOH⋅H2O (118,84) в Н2О (960 мл). После добавления температуру повышали до 60°С и реакционную смесь перемешивали в течение 1 часа. Затем добавляли концентрированную HCl к реакционному раствору для доведения рН системы до 2 и останавливали перемешивание. Затем раствор оставляли отстаиваться для расслоения жидкости. Водную фазу экстрагировали дважды с помощью THF (600 мл) и органические фазы объединяли и концентрировали при пониженном давлении (40-45°С). Твердое вещество суспендировали в чистой воде (2 мл/г) в течение 0,5 часа, и фильтровали, и осадок на фильтре высушивали в вакууме в течение 12 часов при 40°С и Р≤-0,1МРа с получением соединения 1-2 в виде бледно-желтого твердого вещества.
[107] 1Н ЯМР (399 МГц, DMSO-d6) δ = 11,19 (s, 1Н). 8,09 (d, J=8,2 Гц, 1H), 8,00 (d, J=1,6 Гц, 1H), 7,88 (dd, J=1,5, 8,3 Гц, 1H), 7,39 (dd, J=1,2, 2,0 Гц, 1H), 7,01 (d, J=2,0 Гц, 1H), 2,05 (s, 3H).
[108] Стадия 15. Синтез соединения, представленного формулой (1)
[109] DMF (2,25 л) добавляли в трехгорлую колбу объемом 5 л и перемешивали, затем последовательно добавляли соединение 1-2 (400,00 г) и HATU (744,83 г) и перемешивали в течение 30 мин. с последующим добавлением соединения 1-SM2 (229,86 г). Медленно добавляли по каплям DIPEA (568,68 мл) при комнатной температуре в течение 1 часа. После добавления реакционную смесь дополнительно перемешивали при комнатной температуре в течение 16 часов. Затем реакционный раствор переносили в делительную воронку, добавляли этилацетат (2 л) и чистую воду (1 л), и раствор перемешивали в течение 2 мин., а затем оставляли отстаиваться для расслоения с отделением водной фазы. Затем добавляли чистую воду (1 л) для промывки водной фазы, которую затем перемешивали и оставляли отстояться для расслоения. Объединенную водную фазу экстрагировали три раза с помощью EtOAc (500 мл) и органические фазы объединяли. Органическую фазу последовательно промывали дважды с помощью раствора карбоната натрия (1,5 л), дважды с помощью раствора гидросульфата калия (1 л) и дважды чистой водой (1 л). Органическую фазу концентрировали при пониженном давлении (40-45°С) с получением неочищенного продукта. Этилацетат (2 мл/г) добавляли к неочищенному продукту и смесь суспендировали в течение 1 часа. Наконец, суспендированную смесь фильтровали и собирали осадок на фильтре с получением соединения, представленного формулой (I).
[110] 1Н ЯМР (400 МГц, DMSO-d6) δ = 11,13 (br s, 1Н), 8,73 (br t, J=5,5 Гц, 1H), 8,05 (d, J=8,2 Гц, 1H), 7,83 (d, J=1,3 Гц, 1H), 7,74 (dd, J=1,5, 8,4 Гц, 1H), 7,36 (s, 1H), 6,98 (d, J=2,0 Гц, 1H), 3,71-3,48 (m, 5H), 3,45-3,31 (m, 1H), 3,45-3,30 (m, 1H), 3,27-3,21 (m, 1HJ, 3,14 (dd, J=9,9, 11,2 Гц, 1H), 2,03 (s, 3H), 1,53 (q, J=7,0 Гц, 2H).
[111] Пример 2. Получение кристаллической формы А соединения, представленного формулой (I)
[112] Последовательно добавляли 35 мг соединения, представленного формулой (I), и 400 мкл трет-бутилметилового эфира во флакон с жидкой фазой объемом 1,5 мл и затем смешивали или растворяли с помощью ультразвука. Образец суспензии перемешивали (с защитой от света) в течение 3 дней в шейкере с постоянной температурой (40°С). Затем раствор образца быстро центрифугировали и центрифугированное твердое вещество высушивали в вакуумном сушильном шкафу при 30°С в течение 5 часов. Полученный сухой образец подвергали XRPD с подтверждением того, что была получена кристаллическая форма А соединения, представленного формулой (1).
[113] Пример 3. Получение кристаллической формы В соединения, представленного формулой (I)
[114] Последовательно добавляли 35 мг соединения, представленного формулой (I), и 400 мкл ацетона во флакон с жидкой фазой объемом 1,5 мл и затем смешивали или растворяли с помощью ультразвука. Образец суспензии перемешивали (с защитой от света) в течение 3 дней в шейкере с постоянной температурой (40°С). Затем раствор образца подвергали быстрому центрифугированию и твердое вещество после центрифугирования высушивали в вакуумном сушильном шкафу при 30°С в течение 5 часов. Полученный сухой образец подвергали XRPD с подтверждением того, что была получена кристаллическая форма В соединения, представленного формулой (I).
[115] Пример 4. Испытание в отношении предварительной стабильности кристаллической формы В соединения, представленного формулой (I)
[116] Таблица 3. Условия исследования и испытуемый параметр
Figure 00000008
[117] Примечание:
[118] X указывает на испытуемые параметры, в том числе XRPD, содержание и сопутствующие вещества, образцы 0 дня хранили при -20°С;
[119] ICH указывает на условия освещения, которые определяют размещение образцов, то есть освещение (общая освещенность = 1,2×106 люкс⋅ч./ближняя ультрафиолетовая область = 200 Вт⋅ч./м2, с открытой крышкой).
[120] Стадии эксперимента.
[121] Приблизительно 10 мг кристаллической формы В соединения, представленного формулой (I), взвешивали и помещали на дно стеклянного флакона объемом 40 мл и распределяли тонким слоем. Горло флакона оборачивали алюминиевой фольгой (за исключением освещаемых образцов) и проделывали несколько небольших отверстий в алюминиевой фольге для того, чтобы убедиться, что обеспечивается полный контакт образцов с воздухом окружающей среды. Освещаемый образец помещали на дно стеклянного флакона объемом 40 мл, который помещали вертикально в освещенный бокс с открытой крышкой; контрольный образец помещали на дно стеклянных флаконов, которые помещали вертикально с открытой крышкой и оборачивали фольгой для защиты от света. При каждом условии 2 аликвоты образца взвешивали параллельно в каждый момент времени и отбирали дополнительное подходящее количество образца (не взвешивали) для обнаружения с помощью XRPD. Полученные образцы помещали в различные условия, показанные в следующей таблице, и образцы соответственно анализировали посредством HPLC после достижения моментов времени. Способ анализа показан в таблице 4, а экспериментальные результаты показаны в таблице 5.
[122] Анализ посредством HPLC.
[123] 1.1 Получение разбавителя и подвижной фазы
[124] Разбавитель: ацетонитрил: вода (2:1).
[125] Пример: равномерно смешивали 1000 мл ацетонитрила и 500 мл воды, подвергали ультразвуковой дегазации и охлаждали до комнатной температуры.
[126] Подвижная фаза А: 0,1% водный раствор трифторуксусной кислоты.
[127] Пример: добавляли 2,0 мл трифторуксусной кислоты в 2 л воды и хорошо смешивали, подвергали ультразвуковой дегазации и охлаждали до комнатной температуры.
[128] Подвижная фаза В: 100% ацетонитрил.
[129] 1.2 Получение контрольного образца и растворов образца
[130] Кристаллическую форму В соединения, представленного формулой (I), применяли в качестве контроля. Кристаллическую форму В соединения, представленного формулой (I), помещали в стеклянный флакон, затем во флакон добавляли 5 мл разбавителя до концентрации 1 мг/мл и раствор хорошо перемешивали с помощью ультразвука. Затем смесь разбавляли в 5 раз с получением раствора контрольного образца STD1. STD1 разбавляли в 1, 2, 4, 20 и 200 раз с получением 1% контрольного раствора.
[131] 1.3 Получение раствора тестируемого образца
[132] Добавляли разбавитель к каждому тестируемому образцу до концентрации 10 мл, затем образцы растворяли с помощью ультразвука. Анализ посредством HPLC проводили после охлаждения до комнатной температуры.
[133] В то же время раствор образца разбавляли в 5 раз и хорошо смешивали, а затем анализировали посредством HPLC. Способ анализа показан в таблице 4.
[134] Таблица 4. Способ анализа посредством HPLC
Figure 00000009
[135] Таблица 5. Результаты анализа посредством HPLC из испытания стабильности твердого вещества для кристаллической формы В соединения, представленного формулой (I)
Figure 00000010
[136] Примечание: «-» означает «не определено»;
[137] TRS относится к сумме оставшихся примесей после удаления основного пика.
[138] Анализ относится к содержанию образца.
[139] Заключение: кристаллическая форма В соединения, представленного формулой (I), является стабильной в условиях высокой температуры и высокой влажности.
[140] Пример 5. Тест в отношении HBV in vitro: количественный qPCR-тест
[141] 1 Цели эксперимента
[142] Содержание ДНК HBV в клетках HepG2.2.15 определяли с помощью количественного qPCR-анализа в реальном времени, а значение ЕС50 соединений применяли в качестве индикатора для оценки ингибирующего действия соединений на HBV.
[143] 2 Экспериментальные материалы
[144] 2.1 Клеточная линия: клетки HepG2.2.15.
[145] Культуральная среда для клеток HepG2.2.15 (DMEM/F12, Invitrogen-11330057; 10% сыворотка, Invitrogen-10099141; 100 единиц/мл пенициллина и 10 мкг/мл стрептомицина, Invitrogen-15140122; 1% заменимых аминокислот, Invitrogen-11140076; 2 мМ L-глутамина, Invitrogen-25030081; 300 мкг/мл генетицина, Invitrogen-10131027).
[146] 2.2 Реагенты
[147] Панкреатин (Invitrogen-25300062);
[148] DPBS (Hyclone-SH30028.01B);
[149] DMSO(Sigma-D2650-100ML);
[150] набор для очистки ДНК с высокой пропускной способностью (QIAamp 96 DNA Blood Kit, Qiagen-51162);
[151] универсальный реагент для зонда FastStart для количественного определения (FastStart Universal Probe Master, Roche-04914058001);
[152] 2.3 Расходные материалы и оборудование
[153] 96-луночный планшет для культивирования клеток (Corning-3599);
[154] СО2-инкубатор (HERA-CELL-240);
[155] оптически прозрачная герметизирующая пленка (ABI-4311971);
[156] 96-луночный планшет для количественной ПЦР (Applied Biosystems-4306737);
[157] оборудование для количественной ПЦР с флуоресцентной детекцией (Applied Biosystems-7500 Real Time PCR System).
[158] 3. Экспериментальные стадии и способы
[159] 3.1 Клетки HepG2.2.15 (4×104 клеток/лунка) помещали в 96-луночный планшет и культивировали в течение ночи при 37°С, 5% СО2.
[160] 3.2 На 2 день соединение разбавляли до в общей сложности 8 концентраций с 3-кратным градиентным разбавлением. Соединения в разных концентрациях добавляли в лунки с культурой в двух повторностях. Конечная концентрация DMSO в культуральной среде составляла 1%. 1 мкМ GLS4 применяли в качестве контроля со 100% ингибированием; 1% DMSO применяли в качестве контроля с 0% ингибированием.
[161] 3.3 На 5 день культуральную среду заменяли свежей культуральной средой, содержащей соединение.
[162] 3.4 На 8 день собирали культуральную среду в лунке с культурой и выделяли ДНК с помощью набора для очистки ДНК с высокой пропускной способностью (Qiagen-51162). Для получения информации о конкретных стадиях обращаться к руководству по применению продукта.
[163] 3.5 Получение реакционного раствора для ПЦР показано в таблице 6.
[164] Таблица 6. Получение реакционного раствора для ПЦР
Figure 00000011
[165] Последовательность прямого праймера: GTGTCTGCGGCGTTTTATCA (SEQ ID N0.1)
[166] Последовательность обратного праймера:
GACAAACGGGCAACATACCTT (SEQ ID NO. 2)
[167] Последовательность зонда: 5'+FAM+CCTCTKCATCCTGCTGCTATGCCTCATC(SEQ ID NO.3)+TAMRA -3'
[168] 3.6 15 мкл реакционной смеси добавляли в каждую лунку 96-луночного планшета для ПЦР, а затем в каждую лунку добавляли 10 мкл образца ДНК или стандартных ДНК HBV.
[169] 3.7 Условия реакции для ПЦР: нагревание при 95°С в течение 10 минут; затем денатурация при 95°С в течение 15 секунд и удлинение при 60°С в течение 1 минуты, всего 40 циклов.
[170] 3.8 Анализ данных
[171] 3.8.1 Расчет процента ингибирования % инг. = [1 - (количество копий ДНК в образце - количество 1 мкМ копий ДНК в СЕ84)/(количество копий ДНК в контроле DMSO - количество 1 мкМ копий ДНК в GLS4)] × 100.
[172] 3.8.2 Расчет ЕС50 Значение 50% ингибирующей концентрации (ЕС50) соединения в отношении HBV рассчитывали с помощью программного обеспечения GraphPad Prism.
[173] 4. Результаты эксперимента показаны в таблице 7.
[174] Таблица 7. Результаты испытания в отношении ЕС50 из эксперимента с qPCR
Figure 00000012
[175] Заключение: соединение, представленное формулой (I). обладает значительным ингибирующим эффектом в отношении HBV.
[176] Пример 6. Ингибирование изофермента цитохрома Р450
[177] Цели эксперимента. Определение ингибирующего эффекта тестируемого соединения в отношении активности изоферментов микросомального цитохрома Р450 печени человека (CYP1A2, CYP2C9, CYP2C19, CYP2D6 и CYP3A4).
[178] Процедура эксперимента. Сначала тестируемое соединение (10 мМ) подвергали градиентному разбавлению с получением рабочих растворов (100× конечная концентрация). Концентрации рабочих растворов составляли 5, 1,5. 0,5, 0,15, 0,05, 0,015 и 0,005 мМ. В то же время также получали рабочие растворы смеси (5 в 1) положительных ингибиторов каждого изофермента Р450 (CYP1A2, CYP2C9, CYP2C19, CYP2D6 и CYP3A4) и специфического субстрата изоферментов; при этом микросомы печени человека, замороженные в холодильнике при -80°С, размораживали на льду. После полного растворения микросом печени человека их разбавляли с помощью РВ с получением определенной концентрации (0,253 мг/мл) рабочего раствора; добавляли 20 мкл смеси субстратов в реакционный планшет (20 мкл РВ добавляли в холостую лунку), а также 158 мкл рабочего раствора микросом печени человека, затем реакционный планшет помещали на лед и отставляли; в это время в соответствующую лунку добавляли 2 мкл каждой концентрации тестируемого соединения (N=1) и специфический ингибитор (N=2), добавляли группу без ингибитора (тестируемое соединение или положительный ингибитор) с соответствующим органическим растворителем в качестве контрольного образца (контрольный образец тестируемого соединения представлял собой смесь 1:1 DMSO: МеОН, и положительный контрольный образец представлял собой смесь 1:9 DMSO: МеОН); после предварительной инкубации на водяной бане при 37°С в течение 10 мин. в реакционный планшет добавляли 20 мкл раствора фактора кофермента (NADPH) и воду, выдержанную при 37°С в течение 10 мин.; добавляли 400 мкл холодного раствора ацетонитрила (внутренний стандарт составлял 200 нг/мл толбутамида и лабеталола) для прекращения реакции; затем реакционный планшет помещали на шейкер и встряхивали в течение 10 мин. с последующим центрифугированием при 4000 об./мин. в течение 20 мин.; 200 мкл надосадочной жидкости добавляли в 100 мкл воды для разбавления образца; наконец, планшет герметично закрывали, хорошо встряхивали и подвергали обнаружению с помощью LC/MS/MS. Экспериментальные результаты показаны в таблице 8.
[179] Таблица 8. Результаты ингибирующего эффекта тестируемого соединения в отношении активности изоферментов микросомального цитохрома Р450 печени человека
Figure 00000013
[180] Заключение: соединение, представленное формулой (I), не оказывает явного ингибирующего эффекта в отношении CYP1A2, CYP2C9, CYP2C19, CYP2D6 и CYP3A4.
[181] Пример 7. Исследование степени связывания белка в плазме крови
[182] Цели эксперимента: определить степень связывания тестируемого соединения с белками в плазме крови человека и мыши CD-1.
[183] Процедура эксперимента. Отбирали 796 мкл контрольных образцов плазмы крови у человека и мышей CD-1 и добавляли 4 мкл рабочего раствора тестируемого соединения (400 мкМ) или рабочего раствора варфарина (400 мкМ) с получением конечных концентраций обоих тестируемых соединений и варфарина в образце плазмы крови 2 мкМ. Образец тщательно перемешивали. Конечная концентрация DMSO в органической фазе составляла 0,5%; 50 мкл образцов плазмы тестируемого соединения и варфарина переносили в планшет для приема образцов (в трех повторностях) и сразу же добавляли соответствующий объем контрольных образцов плазмы крови или буфера с получением конечного объема каждого образца 100 мкл и объемного соотношения плазмы крови и буфера для диализа 1:1. Затем к этим образцам добавляли 400 мкл останавливающего раствора. Эти образцы будут использоваться в качестве образцов ТО для определения восстановления и стабильности. Образцы Т0 хранили при 2-8°С и ожидали последующей обработки с другими диализованными образцами; 150 мкл тестируемых образцов соединения и варфарина в плазме крови добавляли в часть каждой лунки для диализа, предназначенную для введения дозы, и 150 мкл холостого диализного буфера в принимающую часть лунки каждой лунки для диализа. Затем планшет для диализа накрывали газопроницаемой мембраной и инкубировали в инкубаторе с увлажненной атмосферой при 5% СО2 и 37°С со встряхиванием при приблизительно 100 об./мин. в течение 4 часов. После диализа 50 мкл диализированного образца буфера и диализированного образца плазмы крови вносили пипеткой в новый планшет для приема образцов. Соответствующий объем контрольных образцов плазмы крови или буфера добавляли к образцам так, чтобы конечный объем каждого образца в лунке составлял 100 мкл, и объемное соотношение плазма : буфер для диализа составляло 1:1. Все образцы анализировали после осаждения белка с помощью LC/MS/MS и рассчитывали степень связывания белка и степень восстановления по формуле: % диссоциации (степень диссоциации) - 100 * FC/TC; % связывания (степень связывания)=100 - % диссоциации; % извлечения (степень извлечения) = 100 * (FC + ТС)/Т0. Результаты эксперимента показаны в таблице 9.
[184] Таблица 9. Степень связывания тестируемого соединения с белком в плазме крови человека и мыши CD-1.
Figure 00000014
[185] Заключение: соединение, представленное формулой (I), проявляет более низкую скорость связывания с белками как в плазме человека, так и в плазме мыши CD-1.
[186] Пример 8. Фармакокинетическое исследование in vivo
[187] 1. Исследование фармакокинетики перорального введения и внутривенной инъекции соединения, представленного формулой (I), на мышах Balb/c.
[188] Соединение, представленное формулой (I), смешивали с 5% DMSO/55% полиэтиленгликоля 400/40% водного раствора, встряхивали и обрабатывали с помощью ультразвука с получением 1 мг/мл практически прозрачного раствора, который затем фильтровали через микропористую мембрану для последующего применения. Выбирали самок мышей Balb/c возрастом 7-10 недель и вводили внутривенно раствор соединения-кандидата в дозе 1 мг/кг. Соединение, представленное формулой (I), смешивали с 10% водным раствором солютола (полиэтиленгликоль-15-гидроксистеарат), встряхивали и обрабатывали с помощью ультразвука с получением 1 мг/мл практически прозрачного раствора, который затем фильтровали через микропористую мембрану для последующего применения. Выбирали самок мышей Balb/c возрастом 7-10 недель и вводили перорально раствор соединения-кандидата в дозе 10 мг/кг.
[189] В определенный момент времени собирали цельную кровь с получением плазмы, анализировали концентрацию лекарственного средства с помощью способа LC-MS/MS и рассчитывали фармакокинетические параметры с помощью программного обеспечения Phoenix WinNonlin (Pharsight, США).
[190] 2. Исследование фармакокинетики перорального введения и внутривенной инъекции соединения, представленного формулой (I), на крысах SD.
[191] Соединение, представленное формулой (I), смешивали с 5% DMSO/55% полиэтиленгликоля 400/40% водного раствора, встряхивали и обрабатывали с помощью ультразвука с получением 1 мг/мл практически прозрачного раствора, который затем фильтровали через микропористую мембрану для последующего применения. Выбирали самцов крыс SD возрастом 7-10 недель и вводили внутривенно раствор соединения-кандидата в дозе 1 мг/кг.
[192] Соединение, представленное формулой (I), смешивали с 10% водным раствором солютола, встряхивали и обрабатывали с помощью ультразвука с получением 1 мг/мл практически прозрачного раствора, который затем фильтровали через микропористую мембрану для последующего применения. Выбирали самцов крыс SD возрастом 7-10 недель и вводили перорально раствор соединения-кандидата в дозе 10 мг/кг.
[193] В определенный момент времени собирали цельную кровь с получением плазмы, анализировали концентрацию лекарственного средства с помощью способа LC-MS/MS и рассчитывали фармакокинетические параметры с помощью программного обеспечения Phoenix WinNonlin (Pharsight, США).
[194] 3. Исследование фармакокинетики перорального введения и внутривенной инъекции соединения, представленного формулой (1), на собаках породы бигль.
[195] Соединение, представленное формулой (I), смешивали с 5% DMSO/55% полиэтиленгликоля 400/40% водного раствора, встряхивали и обрабатывали с помощью ультразвука с получением 1 мг/мл практически прозрачного раствора, который затем фильтровали через микропористую мембрану для последующего применения. Выбирали самцов собак породы бигль весом приблизительно 10 кг и им внутривенно вводили раствор соединения-кандидата в дозе 1 мг/кг.
[196] Соединение, представленное формулой (I), смешивали с 10% водным раствором солютола, встряхивали и обрабатывали с помощью ультразвука с получением 2 мг/мл практически прозрачного раствора, который затем фильтровали через микропористую мембрану для последующего применения. Выбирали самцов собак породы бигль весом приблизительно 10 кг и им перорально вводили раствор соединения-кандидата в дозе 10 мг/кг.
[197] В определенный момент времени собирали цельную кровь с получением плазмы, анализировали концентрацию лекарственного средства с помощью способа LC-MS/MS и рассчитывали фармакокинетические параметры с помощью программного обеспечения Phoenix WinNonlin (Pharsight, США).
[198] Экспериментальные результаты показаны в таблице 10.
[199] Таблица 10. Результаты фармакокинетики тестируемого соединения
Figure 00000015
[200] Примечание: Т1/2 означает период полувыведения; Vdss означает кажущийся объем распределения; Cl означает почечный клиренс; AUC0-last означает площадь под кривой лекарственное средство-время; Tmax означает время достижения пика; Cmax означает пиковую концентрацию; F% означает биодоступность при пероральном введении; iv означает внутривенную инъекцию; РО означает пероральное введение; mpk означает мг/кг.
[201] Заключение: соединение, представленное формулой (I), имеет хороший единичный или частичный показатель фармакокинетики собак породы бигль.
[202] Пример 9. Исследование эффективности лекарственного средства in vivo
[203] Модель AAV/HBV
[204] Цели эксперимента. Выявление эффекта соединения в отношении вируса гепатита В in vivo с применением мышиной модели AAV/HBV.
[205] Процедура эксперимента. День осуществления первого введения обозначали как день 0, день перед введением обозначали как день -1, день после введения обозначали как день 1 и т.д. На 28 день перед введением всем животным внутривенно вводили в хвостовую вену l*1011v.g. вирус rAAV8-1.3HBV, 200 мкл для каждого животного. За 14 дней до введения и за 7 дней до введения у всех мышей, которым через поднижнечелюстную вену вводили вирус rAAV8-1.3HBV, собирали сыворотку крови. Собранные образцы крови помещали при температуре 37°С в течение приблизительно 30 минут, затем центрифугировали при 13200 g при 4°С в течение 3 минут и собирали надосадочную жидкость. Содержание ДНК HBV, HBeAg и HBsAg определяли с помощью сыворотки крови. Мыши с более низкими уровнями содержания ДНК HBV DNA, HBsAg и HBeAg и меньшим весом, вероятно, будут исключены из эксперимента. Выбранные 25 мышей равномерно распределяли в каждую группу и обеспечивали отсутствие статистического расхождения между уровнями содержания ДНК HBV, HBsAg и HBeAg и весом тела для мышей в каждой группе с обработкой соединением на 21 день после введения вируса по сравнению с таковыми в группе с растворителем (Р>0,05). Соединение, представленное формулой (I) (WX-325), смешивали с 10% водным раствором солютола, встряхивали и обрабатывали с помощью ультразвука с получением гомогенной суспензии, которую фильтровали посредством микропористой мембраны для последующего применения. Тенофовир в качестве соединения, являющегося положительным контролем, растворяли в физиологическом растворе, подвергали воздействию ультразвука и перемешивали до растворения, затем получали в виде 0,1 мг/мл мастер-микса, который разбавляли до 0,01 мг/мл с помощью физиологического раствора и хранили при 4°С до применения. Соединение, представленное формулой (I) (WX-325), вводили перорально (РО) и два раза в сутки (BID) с интервалом в 8 часов. Эталонное соединение тенофовир вводили перорально и два раза в сутки. Оба лекарственных средства вводили в течение 28 дней и образцы крови отбирали на 3, 7, 10 и 28 дни после введения и уровень ДНК HBV в плазме определяли с помощью qPCR. На 28 день мышей умерщвляли ингаляцией СО2, их печень собирали и измеряли уровень ДНК HBV с помощью qPCR. Результаты эксперимента показаны на фигуре 7 и фигуре 8.
[206] Заключение: соединение по настоящему изобретению проявляет хорошую эффективность in vivo и дозозависимый эффект.
[207] Специалистам в данной области должно быть понятно, что вышеуказанное описание конкретных вариантов осуществления предназначено исключительно для иллюстрации, и различные изменения или модификации будут очевидны специалистам в данной области техники без отступления от принципа и сущности настоящего изобретения. Следовательно, настоящее изобретение предполагается как не ограниченное, за исключением четко изложенного в следующей формуле изобретения.

Claims (15)

1. Кристаллическая форма А соединения, представленного формулой (I), характеризующаяся порошковой рентгеновской дифрактограммой (XRPD), содержащей характеристические дифракционные пики при следующих значениях угла 2θ: 5,56±0,2°, 10,84±0,2°, 15,56±0,2°, 16,17±0,2°, 22,14±0,2°, 22,70±0,2°, 27,76±0,2° и 28,44±0,2°,
Figure 00000016
2. Кристаллическая форма А по п. 1, где дифрактограмма XRPD показана на фигуре 1.
3. Кристаллическая форма А по п. 1 или 2, проявляющая эндотермический пик с началом при 229,95°С, как измерено с помощью кривой дифференциальной сканирующей калориметрии (DSC).
4. Кристаллическая форма А по п. 3, где DSC показана на фигуре 2.
5. Кристаллическая форма А по п. 1 или 2, характеризующаяся кривой термогравиметрического анализа (TGA) с потерей веса 0,3382% при 62±3°С и потерей веса 0,8753% при 230±3°С.
6. Кристаллическая форма А по п. 5, где TGA показана на фигуре 3.
7. Кристаллическая форма В соединения, представленного формулой (I), характеризующаяся порошковой рентгеновской дифрактограммой (XRPD), содержащей характеристические дифракционные пики при следующих значениях угла 2θ: 9,56±0,2°, 12,70±0,2°, 14,41±0,2°, 15,64±0,2°, 19,70±0,2°, 23,03±0,2°, 23,98±0,2° и 27,65±0,2°,
Figure 00000017
8. Кристаллическая форма В по п. 7, где дифрактограмма XRPD показана на фигуре 4.
9. Кристаллическая форма В по п. 7 или 8, проявляющая эндотермический пик с началом при 233,59°С, как измерено с помощью кривой дифференциальной сканирующей калориметрии (DSC).
10. Кристаллическая форма В по п. 9, где DSC показана на фигуре 5.
11. Кристаллическая форма В по п. 7 или 8, характеризующаяся кривой термогравиметрического анализа (TGA) с потерей веса 0,04890% при 120±3°С.
12. Кристаллическая форма В по п. 11, где TGA показана на фигуре 6.
13. Применение кристаллической формы А по любому из пп. 1-6 или кристаллической формы В по любому из пп. 7-12 в получении лекарственного препарата для лечения HBV.
RU2021105946A 2018-08-23 2019-08-23 Кристаллическая форма трициклического соединения и ее применение RU2775753C1 (ru)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201810969006.8 2018-08-23

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2775753C1 true RU2775753C1 (ru) 2022-07-07

Family

ID=

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2443703C2 (ru) * 2007-06-18 2012-02-27 Саншайн Лейк Фарма Ко., Лтд Бром-фенил замещенные тиазолилдигидропиримидины
RU2537549C2 (ru) * 2008-01-04 2015-01-10 Интелликайн ЭлЭлСи Некоторые химические структуры, композиции и способы
CN106413402A (zh) * 2014-03-13 2017-02-15 美国印第安纳大学研究和技术公司 乙型肝炎核心蛋白变构调节剂
WO2017069279A1 (ja) * 2015-10-23 2017-04-27 武田薬品工業株式会社 複素環化合物

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2443703C2 (ru) * 2007-06-18 2012-02-27 Саншайн Лейк Фарма Ко., Лтд Бром-фенил замещенные тиазолилдигидропиримидины
RU2537549C2 (ru) * 2008-01-04 2015-01-10 Интелликайн ЭлЭлСи Некоторые химические структуры, композиции и способы
CN106413402A (zh) * 2014-03-13 2017-02-15 美国印第安纳大学研究和技术公司 乙型肝炎核心蛋白变构调节剂
WO2017069279A1 (ja) * 2015-10-23 2017-04-27 武田薬品工業株式会社 複素環化合物

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP3889154A1 (en) Heterocyclic compound intermediate, preparation method therefor and application thereof
EP2854800B1 (en) Substituted pyrrolidine-2-carboxamides
TW420663B (en) Indole compounds for cyclic nucleotide-PDEs inhibitors
EP1720859B1 (en) Chemokine receptor antagonists
EP3027602B1 (fr) Nouveaux derives d'indole et de pyrrole, leur procede de preparation et les compositions pharmaceutiques qui les contiennent
EP4361141A1 (en) Protein degradation agent
WO2022194399A1 (en) Macrocycles as cftr modulators
EP3814329B1 (en) Novel pyridine and pyrazine compounds as inhibitors of cannabinoid receptor 2
US10399981B2 (en) Crystal form A of 7-(cyclopropylmethyl)-1-(((cis )-4-hydroxy-4-methylcyclohexyl)methyl)-3-methyl-1H-purine-2,6-(3H,7H)-dione for treating liver diseases
RU2775753C1 (ru) Кристаллическая форма трициклического соединения и ее применение
US11952388B2 (en) Crystal form of tri-cycle compound and application thereof
KR20230002706A (ko) 결정질 ret 억제제
US20230203000A1 (en) Inhibitors of apol1 and methods of using same
CN114292270B (zh) 一种btk抑制剂及其制备方法与应用
FR2758329A1 (fr) Derives d'imidazole-4-butane boronique, leur preparation et leur utilisation en therapeutique
WO2010131738A1 (ja) アゼチジン化合物およびその医薬用途
CN114437046B (zh) 5-氟尿嘧啶拼接4-苯胺喹唑啉类化合物及其制备方法与应用
RU2810067C2 (ru) Соединение ингибитора FGFR в твердой форме и способ его получения
CN103848816B (zh) 二肽基肽酶抑制剂的还原胺化制法、中间体及制法
CN117645603A (zh) p300溴结构域抑制剂及其药用组合物及其应用
EP3237403B1 (fr) Nouveaux composés hétérocycliques et leur utilisation en médecine ainsi qu'en cosmétique
TW202313014A (zh) 作為pd-l1相互作用的免疫調節劑的雜環化合物
CN116283955A (zh) 一种靶向降解hdac7的化合物及其制备方法和应用
AU2021434528A1 (en) Macrocycles as cftr modulators
CN116354982A (zh) 一种acc抑制剂的制备方法