RU2760530C1 - Method for determination of residual amounts of fenoxycarb in soil by high-performance liquid chromatography - Google Patents

Method for determination of residual amounts of fenoxycarb in soil by high-performance liquid chromatography Download PDF

Info

Publication number
RU2760530C1
RU2760530C1 RU2020134488A RU2020134488A RU2760530C1 RU 2760530 C1 RU2760530 C1 RU 2760530C1 RU 2020134488 A RU2020134488 A RU 2020134488A RU 2020134488 A RU2020134488 A RU 2020134488A RU 2760530 C1 RU2760530 C1 RU 2760530C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
soil
liquid chromatography
performance liquid
fenoxycarb
extract
Prior art date
Application number
RU2020134488A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Марина Ефимовна Подгорная
Надежда Александровна Диденко
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Северо-Кавказский федеральный научный центр садоводства, виноградарства, виноделия"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Северо-Кавказский федеральный научный центр садоводства, виноградарства, виноделия" filed Critical Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Северо-Кавказский федеральный научный центр садоводства, виноградарства, виноделия"
Priority to RU2020134488A priority Critical patent/RU2760530C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2760530C1 publication Critical patent/RU2760530C1/en

Links

Images

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N47/00Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing organic compounds containing a carbon atom not being member of a ring and having no bond to a carbon or hydrogen atom, e.g. derivatives of carbonic acid
    • A01N47/08Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing organic compounds containing a carbon atom not being member of a ring and having no bond to a carbon or hydrogen atom, e.g. derivatives of carbonic acid the carbon atom having one or more single bonds to nitrogen atoms
    • A01N47/10Carbamic acid derivatives, i.e. containing the group —O—CO—N<; Thio analogues thereof
    • A01N47/12Carbamic acid derivatives, i.e. containing the group —O—CO—N<; Thio analogues thereof containing a —O—CO—N< group, or a thio analogue thereof, neither directly attached to a ring nor the nitrogen atom being a member of a heterocyclic ring
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D11/00Solvent extraction
    • B01D11/02Solvent extraction of solids
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N1/00Sampling; Preparing specimens for investigation
    • G01N1/28Preparing specimens for investigation including physical details of (bio-)chemical methods covered elsewhere, e.g. G01N33/50, C12Q
    • G01N1/34Purifying; Cleaning

Abstract

FIELD: chemical analysis.
SUBSTANCE: invention relates to a method for determining the residual amounts of fenoxycarb in the soil by high-performance liquid chromatography, including sample preparation: extraction from the soil, subsequent purification of the extract in a system of immiscible solvents: hexane, saturated sodium chloride solution, aqueous sodium bicarbonate solution and directly quantitative determination of fenoxycarb in the soil by high-performance liquid chromatography, and at the extraction stage the less toxic carbon tetrachloride is used as a solvent, and at the stage of purification of the extract, a corrugated filter was used.
EFFECT: extension of the range of methods for determining chemical substances in soil.
1 cl, 2 ex, 3 tbl, 4 dwg

Description

Изобретение относится к сельскому хозяйству и может быть использовано для определения массовой концентрации феноксикарба в почве методом высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ).The invention relates to agriculture and can be used to determine the mass concentration of phenoxycarb in soil by high performance liquid chromatography (HPLC).

Феноксикарб - белый кристаллический порошок, температура плавления 53-54°С, температура кипения 100°С, температура разложения 248°С. Давление паров при 25°С: 8,67×10-4 мПа. Коэффициент распределения н-октанол/вода: Kow log Р= -4,07. Растворимость (г/л) при 25°С: ацетон - 770, этанол - 510, этилацетат - 500, толуол - 630, гексан - 5,3, н-октанол -130, вода - 0,008. Вещество стабильно на свету и не гидролизуется в водных растворах при рН 3-9. Феноксикарб - инсектицид, относящийся к регуляторам роста насекомых ювеноидного типа с контактно-кишечным действием. Применяется против вредителей из отряда чешуекрылых на хлопчатнике, виноградниках, фруктовых деревьях и декоративных культурах. Применяется в России для борьбы с яблонной и сливовой плодожоркой, гроздевой листоверткой на семечковых, косточковых культурах и винограде путем одно-трехкратного опрыскивания в течение вегетационного сезона с нормой расхода 0,4-0,6 кг/га. Согласно ГН 1.2.3539-18 ориентировочные допустимые концентрации феноксикарба в почве (ОДК) составляют 0,003 мг/кг.Fenoxycarb is a white crystalline powder, melting point 53-54 ° C, boiling point 100 ° C, decomposition temperature 248 ° C. Vapor pressure at 25 ° C: 8.67 × 10 -4 MPa. Partition coefficient n-octanol / water: K ow log P = -4.07. Solubility (g / l) at 25 ° C: acetone - 770, ethanol - 510, ethyl acetate - 500, toluene - 630, hexane - 5.3, n-octanol -130, water - 0.008. The substance is stable in the light and does not hydrolyze in aqueous solutions at pH 3-9. Fenoxycarb is an insecticide related to the growth regulators of juvenile insects with a contact-intestinal effect. It is used against lepidoptera pests in cotton, vineyards, fruit trees and ornamental crops. It is used in Russia to combat apple and plum moths, bunch moths on pome and stone fruit crops and grapes by one to three spraying during the growing season with a consumption rate of 0.4-0.6 kg / ha. According to GN 1.2.3539-18, the approximate permissible concentration of phenoxycarb in soil (APC) is 0.003 mg / kg.

Для количественной оценки содержания пестицидов в объектах исследования применяются ТСХ (тонкослойная хроматография), ГХ (газовая хроматография), КЭ/МС (капиллярный электрофорез с МС-детектором), ВЭЖХ (высокоэффективная жидкостная хроматография). Количественное определение используют для мониторинга концентрации пестицидов в почве, источниках воды, реках, воздухе и пищевых продуктах. В некоторых странах введен законодательный контроль за допустимым уровнем пестицидов в окружающей среде.TLC (thin layer chromatography), GC (gas chromatography), CE / MS (capillary electrophoresis with an MS detector), HPLC (high performance liquid chromatography) are used to quantify the content of pesticides in the objects of study. Quantification is used to monitor the concentration of pesticides in soil, water sources, rivers, air and food. Some countries have introduced legal control over the permissible levels of pesticides in the environment.

Известен способ определения феноксикарба в почве методом газожидкостной хроматографии или тонкослойной хроматографией (ВМУ 6176-91 Временные методические указания по определению феноксикарба (Инсегара, ВДГ) в растительном материале, воде и почве хроматографическими методами). Метод основан на извлечении феноксикарба из исследуемого объекта ацетоном или хлороформом и последующем определении методом реакционной газожидкостной хроматографии в виде ацильного производного (Мурашко С.В., Щербакова И.П., ВНИИГИНТОКС, Киев). Недостатком способа является то, что используемый хлороформ относится к сильнодействующим ядовитым веществам, класс 6 списка ООН. Яд. ГОСТ 20015-88 Хлороформ. Технические условия. Использование ацетона предусматривает специальные требования, для хранения необходимо оборудованное помещение. Ацетон обладает наркотическим действием и легко воспламеняется. Класс 3 списка ООН. Все работы с ацетоном должны проводиться с использованием приточно-вытяжной вентиляции вдали от огня и источников искрообразования. При отборе проб, проведении анализа и обращении в процессе транспортных и производственных операций с ацетоном применяются индивидуальные средства защиты по нормам выдачи специальной одежды, специальной обуви и других средств защиты, утвержденным в установленном порядке. ГОСТ 2768-84 Ацетон технический. Технические условия.There is a known method for the determination of phenoxycarb in soil by gas-liquid chromatography or thin-layer chromatography (VMU 6176-91 Temporary guidelines for the determination of phenoxycarb (Insegara, VDG) in plant material, water and soil by chromatographic methods). The method is based on the extraction of phenoxycarb from the test object with acetone or chloroform and subsequent determination by the method of reaction gas-liquid chromatography in the form of an acyl derivative (Murashko S.V., Shcherbakova I.P., VNIIGINTOKS, Kiev). The disadvantage of this method is that the chloroform used is a highly toxic substance, class 6 of the UN list. I. GOST 20015-88 Chloroform. Technical conditions. The use of acetone provides for special requirements; an equipped room is required for storage. Acetone is narcotic and highly flammable. Class 3 of the UN list. All work with acetone should be carried out using supply and exhaust ventilation away from fire and sources of sparking. When sampling, conducting analysis and handling in the process of transport and production operations with acetone, personal protective equipment is used in accordance with the norms for the issuance of special clothing, special shoes and other protective equipment, approved in the prescribed manner. GOST 2768-84 Technical acetone. Technical conditions.

Известен способ измерения концентраций феноксикарба в атмосферном воздухе населенных мест методом капиллярной газожидкостной хроматографии МУК 4.1.3461-17 (ФБУН «Федеральный научный центр гигиены им. Ф.Ф. Эрисмана» Роспотребнадзора Н.Е. Федорова, О.Е. Егорченкова, Д.Н. Соболев). Для измерения показателей применяется хроматограф (ГЖХ) с масс-селективным детектором (МСД). Определяемый диапазон массовой концентрации феноксикарба - 0,0004-0,004 мг/м3. Концентрирование вещества из воздуха осуществляют на пробоотборные трубки, заполненные пористым полимерным сорбентом, экстракцию с трубок проводят ацетоном. Нижний предел измерения в анализируемом объеме пробы - 0,01 нг. Средняя полнота извлечения с трубок: 92,5%. Недостатком способа является применение ацетона, относящегося к вредным веществам (4 класс опасности).A known method of measuring the concentrations of phenoxycarb in the atmospheric air of populated areas by capillary gas-liquid chromatography MUK 4.1.3461-17 (FBUN "Federal Scientific Center for Hygiene named after F.F. Erisman" Rospotrebnadzor N.E. Fedorov, O.E. N. Sobolev). To measure indicators, a chromatograph (GLC) with a mass-selective detector (MSD) is used. The determined range of mass concentration of phenoxycarb is 0.0004-0.004 mg / m 3 . The concentration of the substance from the air is carried out on sampling tubes filled with a porous polymer sorbent, extraction from the tubes is carried out with acetone. The lower limit of measurement in the analyzed sample volume is 0.01 ng. Average tube recovery: 92.5%. The disadvantage of this method is the use of acetone, which is classified as harmful (hazard class 4).

Известен способ определения 25 комбинированных пестицидов (неоникотиноидов, производных имидазола, производных мочевины, сим-триазинов, триазолов, карбаматов, фосфорорганических соединений, пиретроидов) в воде, овощах и плодах в диапазоне концентраций 0,005-10 мг/л (мг/кг) методом ВЭЖХ с диодной матрицей детектирования при 220 Нм. Определение осуществляют по методу «QuEChERS» (быстрый, простой, дешевый, эффективный, прочный и безопасный). Исследуемые овощи и фрукты измельчали с помощью миксера. В центрифужную пробирку вместимостью 50 мл вносили навеску измельченного образца массой 10,0 г, добавляли 10 мл ацетонитрила, закрывали пробирку и энергично взбалтывали в течение одной минуты. Затем вносили следующие соли: 4,0 г безводного сульфата магния, 1,0 г хлорида натрия, 1,0 г натрия лимоннокислого тризамещенного двойного гидрата и 0,5 г натрия лимоннокислого двузамещенного полуторного гидрата. Затем смесь взбалтывали в течение одной минуты (во избежание образования комков) и центрифугировали в течение 5 мин при 3000 об/мин, отбирали 4 мл верхней части экстракта и переносили в центрифужную пробирку (15 мл), которая содержала смесь сорбента Bondesil-PSA (0,5 г) и сульфата магния (0,5 г). Пробирку энергично встряхивали в течение 30 с и центрифугировали в течение 5 мин при 3000 об/мин, затем отбирали экстракт и пропускали через хроматограф. Недостаток этого метода неточность анализа, плохая очистка образца.A known method for the determination of 25 combined pesticides (neonicotinoids, imidazole derivatives, urea derivatives, sim-triazines, triazoles, carbamates, organophosphorus compounds, pyrethroids) in water, vegetables and fruits in the concentration range of 0.005-10 mg / l (mg / kg) by HPLC with diode detection matrix at 220 Nm. The determination is carried out according to the "QuEChERS" method (fast, simple, cheap, effective, durable and safe). The investigated vegetables and fruits were ground using a mixer. A weighed portion of a crushed sample weighing 10.0 g was added to a centrifuge tube with a capacity of 50 ml, 10 ml of acetonitrile was added, the tube was closed and the tube was vigorously shaken for one minute. Then the following salts were added: 4.0 g of anhydrous magnesium sulfate, 1.0 g of sodium chloride, 1.0 g of sodium citrate trisubstituted double hydrate and 0.5 g of sodium citrate disubstituted sesquihydrate. Then the mixture was shaken for one minute (to avoid the formation of lumps) and centrifuged for 5 min at 3000 rpm, 4 ml of the upper part of the extract was taken and transferred to a centrifuge tube (15 ml), which contained a mixture of Bondesil-PSA sorbent (0 , 5 g) and magnesium sulfate (0.5 g). The tube was vigorously shaken for 30 s and centrifuged for 5 min at 3000 rpm, then the extract was taken and passed through the chromatograph. The disadvantage of this method is inaccurate analysis, poor sample cleaning.

Наиболее близким к заявленному является способ определения остаточных количеств феноксикарба в яблоках, сливах и винограде методом высокоэффективной жидкостной хроматографии МУК 4.1.2272-07 (Талалакина Т.Н., науч. сотр; Макеев A.M., зав. лаб., канд. биол. наук. ВНИИ фитопатологии). Методика основана на определении феноксикарба с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) с ультрафиолетовым детектором. Контроль феноксикарба в образцах яблок, сливы, ягод и сока винограда осуществляется по содержанию вещества после экстракции его из сока гексаном, из яблок, слив и ягод метанолом, очистки экстракта перераспределением в системе несмешивающихся растворителей, а также на колонке с силикагелем и концентрирующем патроне Диапак С8. К недостаткам способа можно отнести применение сильнодействующего ядовитого вещества - метанола (ГОСТ 2222-95 Метанол технический. Технические условия). Это особо опасная легковоспламеняющаяся жидкость. Температура вспышки 6°С, температура воспламенения 13°С. При работе с продуктом, сливно-наливных операциях должны соблюдаться требования электростатической искробезопасности по ГОСТ 12.1.018. Производственные и лабораторные помещения, в которых проводятся работы с метанолом, должны быть снабжены приточно-вытяжной вентиляцией и местной вентиляцией, соответствующими требованиям ГОСТ 12.4.021, обеспечивающими состояние воздуха рабочей зоны в соответствии с требованиями ГОСТ 12.1.005.The closest to the claimed method is the method for determining the residual amounts of phenoxycarb in apples, plums and grapes by the method of high-performance liquid chromatography MUK 4.1.2272-07 (Talalakina T.N., scientific researcher; Makeev AM, head of laboratory, Candidate of Biological Sciences . Research Institute of Phytopathology). The technique is based on the determination of phenoxycarb using high performance liquid chromatography (HPLC) with an ultraviolet detector. Control of phenoxycarb in samples of apples, plums, berries and grape juice is carried out according to the substance content after its extraction from juice with hexane, from apples, plums and berries with methanol, purification of the extract by redistribution in a system of immiscible solvents, as well as on a column with silica gel and a Diapak C8 concentrating cartridge ... The disadvantages of this method include the use of a potent poisonous substance - methanol (GOST 2222-95 Methanol technical. Specifications). This is an especially hazardous flammable liquid. Flash point 6 ° C, flash point 13 ° C. When working with the product, loading and unloading operations, the requirements of electrostatic intrinsic safety in accordance with GOST 12.1.018 must be observed. Production and laboratory premises in which work with methanol is carried out must be equipped with supply and exhaust ventilation and local ventilation that meet the requirements of GOST 12.4.021, ensuring the air condition of the working area in accordance with the requirements of GOST 12.1.005.

Техническим результатом предлагаемого изобретения является повышение точности показателя феноксикарба при определении его микроколичеств в почве посредством высокоэффективной жидкостной хроматографии, при этом способ позволяет повысить безопасность работников токсикологических лабораторий.The technical result of the proposed invention is to improve the accuracy of the phenoxycarb indicator in determining its microamounts in the soil by means of high performance liquid chromatography, while the method improves the safety of workers in toxicological laboratories.

Технический результат достигается за счет замены на этапе экстракции растворителя сильнодействующих ядовитых метанола, ацетона или хлороформа на менее токсичный растворитель - тетрахлорметан, при применении которого отмечается полное разделение пиков, высокая точность результата. На стадии фильтрации экстракта для почвы вместо воронки Бюхнера (ГОСТ 0147) применяли гофрофильтр, который удерживает на своей поверхности частички почвы. Стандартное отклонение 4,8%, доверительный интервал среднего при n=5 и d=0,95±4,95%.The technical result is achieved by replacing, at the stage of solvent extraction, potent toxic methanol, acetone or chloroform with a less toxic solvent - carbon tetrachloride, the use of which shows complete separation of peaks, high accuracy of the result. At the stage of filtration of the soil extract, instead of a Buchner funnel (GOST 0147), a corrugated filter was used, which retains soil particles on its surface. Standard deviation 4.8%, confidence interval mean at n = 5 and d = 0.95 ± 4.95%.

Предлагаемый способ может быть использован для контроля качества почвы многолетних насаждений (яблоня, слива, виноград). Контроль содержания феноксикарба в почве осуществляется по содержанию вещества после экстракции его из почвы тетрахлорметаном, последующей очистке экстракта в системе несмешивающихся растворителей, на колонке с силикагелем и концентрирующем патроне Диапак С8. Количественное определение проводится методом абсолютной калибровки с помощью программы ClarityChrom.The proposed method can be used to control the quality of the soil of perennial plantations (apple, plum, grapes). The control of the content of phenoxycarb in the soil is carried out by the content of the substance after its extraction from the soil with carbon tetrachloride, followed by purification of the extract in a system of immiscible solvents, on a column with silica gel and a Diapak C8 concentrating cartridge. Quantification is carried out by the absolute calibration method using the ClarityChrom software.

Способ осуществлялся следующим образом. На первом этапе подбирали растворитель для экстракции для определения остаточных количеств феноксикарба в почве. Для испытания были взяты следующие растворители: тетрахлорметан, гексан, этилацетат, для стандартного варианта метанол. В почву вводили феноксикарб в количестве 10 мг/кг. Далее проводили исследование на определение концентрации после экстракции и очистки образца. За результаты брали среднее арифметическое трех параллельных измерений (таблица 1).The method was carried out as follows. At the first stage, an extraction solvent was selected to determine the residual amounts of phenoxycarb in the soil. The following solvents were taken for testing: carbon tetrachloride, hexane, ethyl acetate, methanol for the standard version. Fenoxycarb was added to the soil in an amount of 10 mg / kg. Further, a study was carried out to determine the concentration after extraction and purification of the sample. The arithmetic mean of three parallel measurements was taken for the results (table 1).

Figure 00000001
Figure 00000001

Из полученных данных видно, что наибольшей экстрагируемой способностью обладает метанол и тетрахлорметан. Так как метанол относится к сильнодействующим ядовитым веществам, следующие исследования проводились с тетрахлорметаном.From the data obtained, it can be seen that methanol and carbon tetrachloride have the highest extractable capacity. Since methanol is a potent poisonous substance, the following studies were carried out with carbon tetrachloride.

При подготовке проб и выполнении измерений соблюдали следующие условия: температура окружающего воздуха (23±5)°С; атмосферное давление (97±10) кПа; относительная влажность воздуха не более 80% при 25°С; частота переменного тока (50±0,4) Гц; напряжение в сети (220±22). Для выполнения определения потребовались следующие реактивы и материалы: Феноксикарб, аналитический стандарт с содержанием действующего вещества 99,5% (Сингента, Швейцария), для анализа готовят 2 стандартных раствора основной 1 мг/кг и рабочий 10 мкг/мл, ацетонитрил для хроматографии, хч (ТУ 2634-002-54260861-2013), вода бидистиллированная или деионизованная (ГОСТ 6709-72), н-Гексан, хч (ТУ 6-09-3375-78), кислота орто-фосфорная, хч, 85% (ГОСТ 6552-80), тетрахлорметан (четыреххлористый углерод), хч (ГОСТ 20288-74), натрий сернокислый, безводный, хч (ГОСТ 4166-76), натрий хлористый, хч (ГОСТ 4233-77), натрий двууглекислый, хч (ГОСТ 83-79), этиловый эфир уксусной кислоты, ч (ГОСТ 22300-76).When preparing samples and performing measurements, the following conditions were observed: ambient air temperature (23 ± 5) ° С; atmospheric pressure (97 ± 10) kPa; relative air humidity not more than 80% at 25 ° С; AC frequency (50 ± 0.4) Hz; mains voltage (220 ± 22). To carry out the determination, the following reagents and materials were required: Fenoxycarb, an analytical standard with an active ingredient content of 99.5% (Syngenta, Switzerland), for analysis prepare 2 standard solutions of the basic 1 mg / kg and working 10 μg / ml, acetonitrile for chromatography, reagent grade (TU 2634-002-54260861-2013), bidistilled or deionized water (GOST 6709-72), n-Hexane, reagent grade (TU 6-09-3375-78), orthophosphoric acid, reagent grade, 85% (GOST 6552 -80), carbon tetrachloride (carbon tetrachloride), reagent grade (GOST 20288-74), sodium sulfate, anhydrous, reagent grade (GOST 4166-76), sodium chloride, reagent grade (GOST 4233-77), sodium bicarbonate, reagent grade (GOST 83- 79), ethyl ester of acetic acid, h (GOST 22300-76).

В навеску (20 г) почвы вводили феноксикарб с заданными концентрациями, помещали в стакан гомогенизатора вместимостью 500 см3, приливали 100 см3 тетрахлорметана и гомогенизировали 5 минут при 8000 об/мин. Гомогенат фильтровали через гофрированный бумажный фильтр в колбу вместимостью 250 см3. Осадок на фильтре промывали 50 см3 тетрахлорметана. Экстракт и промывную жидкость переносили в химический стакан, перемешивали, измеряли объем раствора и 1/4 его часть (эквивалентна 5 г образца) переносили в кругло донную колбу вместимостью 100 см3.Fenoxycarb was introduced into a weighed portion (20 g) of soil with specified concentrations, placed in a homogenizer glass with a capacity of 500 cm 3 , added 100 cm 3 of carbon tetrachloride and homogenized for 5 minutes at 8000 rpm. The homogenate was filtered through a pleated paper filter into a 250 cm 3 flask. The filter cake was washed with 50 cm 3 of carbon tetrachloride. The extract and the washing liquid were transferred into a beaker, stirred, the volume of the solution was measured, and 1/4 of it (equivalent to 5 g of the sample) was transferred into a round bottom flask with a capacity of 100 cm 3 .

Отобранные аликвоты упаривали при температуре 40°С на ротационном вакуумном испарителе до водного остатка экстракта - 1-2 см3. Дальнейшая очистка экстракта феноксикарба проводится в системе несмешивающихся растворителей: гексан + насыщенный раствор хлорида натрия + 0,5%-ный водный раствор двууглекислого натрия.The selected aliquots were evaporated at a temperature of 40 ° C on a rotary vacuum evaporator until the aqueous extract residue was 1–2 cm 3 . Further purification of the phenoxycarb extract is carried out in a system of immiscible solvents: hexane + saturated sodium chloride solution + 0.5% aqueous solution of sodium bicarbonate.

К водному остатку экстракта приливали 15 см3 деионизованной воды, 25 см3 насыщенного раствора хлорида натрия, перемешивали и переносили в делительную воронку вместимостью 100 см3. В воронку вносили 30 см3 гексана, интенсивно встряхивали несколько раз с промежутками в полминуты; перед каждым очередным встряхиванием стравливали давление в делительной воронке. После разделения фаз верхний органический слой собирали в делительную воронку вместимостью 250 см3, а нижнюю водную фазу экстрагировали еще дважды, используя по 25 см3 гексана. Гексановые фракции объединяли, в воронку вносили 40 см3 0,5%-ного водного раствора двууглекислого натрия и содержимое интенсивно встряхивали в течение 2-х минут. После разделения фаз нижний водный слой отбрасывали, а гексановую фракцию повторно обрабатывали 30 см3 0,5%-ного водного раствора двууглекислого натрия при встряхивании. После разделения фаз гексановую фракцию фильтровали через слой безводного сульфата натрия в круглодонную колбу вместимостью 100 см3 и затем упаривали досуха на ротационном вакуумном испарителе при температуре 30°С. 15 cm 3 of deionized water, 25 cm 3 of a saturated solution of sodium chloride were added to the aqueous residue of the extract, stirred and transferred into a separating funnel with a capacity of 100 cm 3 . 30 cm 3 of hexane was introduced into the funnel, vigorously shaken several times at intervals of half a minute; before each successive shaking, the pressure in the separatory funnel was relieved. After separation of the phases, the upper organic layer was collected in a separating funnel with a capacity of 250 cm 3 , and the lower aqueous phase was extracted twice more using 25 cm 3 of hexane. The hexane fractions were combined, 40 cm 3 of a 0.5% aqueous solution of sodium bicarbonate was added to the funnel, and the contents were vigorously shaken for 2 minutes. After phase separation, the lower aqueous layer was discarded, and the hexane fraction was re-treated with 30 cm 3 of a 0.5% aqueous solution of sodium bicarbonate with shaking. After phase separation, the hexane fraction was filtered through a layer of anhydrous sodium sulfate into a round-bottom flask with a capacity of 100 cm 3 and then evaporated to dryness on a rotary vacuum evaporator at a temperature of 30 ° C.

Сухие остатки в круглодонной колбе, растворяли в 2,4 см3 гексана, помещая в ультразвуковую ванну на 1 мин., добавляли 0,6 см3 этилацетата, перемешивали, вновь помещали в ультразвуковую ванну на 1 мин. Раствор наносили на колонку содержащую слой стекловаты, суспензию 5 г силикагеля I степени активности в 20 см3 гексана и слой безводного натрия. Колбу обмывали 5 см3 смеси гексан-этилацетат (8:2, по объему), которые также наносили на колонку. Колонку промывали 15 см3 смеси гексан-этилацетат (8:2, по объему) со скоростью 1-2 капли в сек., элюат отбрасывали. Феноксикарб элюировал с колонки 45 см3 смеси гексан-этилацетат (7:3, по объему), собирали элюат непосредственно в круглодонную колбу вместимостью 100 см3. Раствор упаривали досуха на ротационном вакуумном испарителе при температуре 30°С.The dry residues in a round-bottomed flask were dissolved in 2.4 cm 3 of hexane, placed in an ultrasonic bath for 1 min, 0.6 cm 3 of ethyl acetate was added, stirred, and again placed in an ultrasonic bath for 1 min. The solution was applied to a column containing a layer of glass wool, a suspension of 5 g of silica gel of I degree of activity in 20 cm 3 of hexane and a layer of anhydrous sodium. The flask was washed with 5 cm 3 of a mixture of hexane-ethyl acetate (8: 2, by volume), which was also applied to the column. The column was washed with 15 cm 3 of a mixture of hexane-ethyl acetate (8: 2, by volume) at a rate of 1-2 drops per second, the eluate was discarded. Fenoxycarb was eluted from the column with 45 cm 3 of a mixture of hexane-ethyl acetate (7: 3, by volume), the eluate was collected directly into a round-bottom flask with a capacity of 100 cm 3 . The solution was evaporated to dryness on a rotary vacuum evaporator at a temperature of 30 ° C.

Сухой остаток в круглодонной колбе растворяли в 1,2 см3 ацетонитрила, помещали в ультразвуковую ванну на 1 мин., добавляли 1,8 см3 деионизованной воды, перемешивали, вновь помещали в ультразвуковую ванну на 1 мин. Раствор наносили на концентрирующий патрон Диапак С8, элюат отбрасывали. Колонку промывали 2 см3 смеси ацетонитрил-вода (1:1, по объему), элюат отбрасывали. Феноксикарб промывали с патрона 5 см3 ацетонитрила, собирали элюат непосредственно в круглодонную колбу. Раствор упаривали досуха при температуре не выше 40°С. Остаток в колбе растворяли в 1 см3 подвижной фазы, помещали в ультразвуковую ванну на 1 мин., и анализировали на содержание феноксикарба.The dry residue in a round-bottom flask was dissolved in 1.2 cm 3 of acetonitrile, placed in an ultrasonic bath for 1 min., 1.8 cm 3 of deionized water was added, stirred, and again placed in an ultrasonic bath for 1 min. The solution was applied to a Diapak C8 concentrating cartridge, and the eluate was discarded. The column was washed with 2 cm 3 of a mixture of acetonitrile-water (1: 1, by volume), the eluate was discarded. Fenoxycarb was washed from a cartridge with 5 cm 3 of acetonitrile, the eluate was collected directly into a round-bottom flask. The solution was evaporated to dryness at a temperature not exceeding 40 ° C. The remainder in the flask was dissolved in 1 cm 3 of the mobile phase, placed in an ultrasonic bath for 1 min, and analyzed for the content of phenoxycarb.

Определение остаточных количеств феноксикарба в почве определяли методом высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ), с помощью жидкостного хроматографа с ультрафиолетовым детектором (фирмы Knauer, Германия), с колонкой стальной длиной 15 см, внутренним диаметром 4 мм, содержащей в качестве неподвижной фазы Диасфер 110-С18, зернением 5 мкм. Температура колонки: 22-25°С, рабочая длина волны: 230 нм, чувствительность: 0,005 ед. абсорбции на шкалу. Объем вводимой пробы: 20 мм3, линейный диапазон детектирования 1-10 нг, подвижная фаза: ацетонитрил-0,005 М Н3РО4 (65:35, по объему), скорость потока элюента: 0,8 см3/мин, время удерживания феноксикарба: 4-5 минут.The determination of the residual amounts of phenoxycarb in the soil was determined by high performance liquid chromatography (HPLC), using a liquid chromatograph with an ultraviolet detector (Knauer, Germany), with a steel column 15 cm long, 4 mm inner diameter, containing Diaspheres 110-С18 as a stationary phase , grain size 5 microns. Column temperature: 22-25 ° С, operating wavelength: 230 nm, sensitivity: 0.005 units. absorption on the scale. Injected sample volume: 20 mm 3 , linear detection range 1-10 ng, mobile phase: acetonitrile-0.005 M H 3 PO 4 (65:35, by volume), eluent flow rate: 0.8 cm 3 / min, retention time fenoxycarb: 4-5 minutes.

Примеры конкретного примененияExamples of specific applications

Пример 1. В лабораторных условиях в образцы почвы весом 20 г, в дозировках: 1, 2, 5 и 10 мг/кг был введен феноксикарб. Количественные показатели феноксикарба определяли после его экстракции из почвы метанолом. На следующей затем стадии фильтрации экстракта использовали воронку Бюхнера. Очистку экстракта проводили в системе несмешивающихся растворителей, на колонке с силикагелем и концентрирующем патроне Диапак С8. Обработка данных проводилась с помощью программы ClarityChrom.Example 1. Under laboratory conditions, phenoxycarb was introduced into soil samples weighing 20 g at dosages: 1, 2, 5 and 10 mg / kg. The quantitative parameters of phenoxycarb were determined after its extraction from soil with methanol. At the next stage of filtration of the extract, a Buchner funnel was used. The extract was purified in a system of immiscible solvents, on a column with silica gel and a Diapak C8 concentrating cartridge. Data processing was carried out using the ClarityChrom program.

За результаты было принято среднее арифметическое трех параллельных измерений. В результате проведенных анализов выявлено, что максимальный процент извлечения феноксикарба посредством метанола отмечен при введении концентрации 1 и 10 мг/кг и составила 97,9-99,1%, что отражено в фигурах 1 и 2.The arithmetic mean of three parallel measurements was taken as the results. As a result of the analyzes carried out, it was revealed that the maximum percentage of extraction of phenoxycarb by means of methanol was noted with the introduction of a concentration of 1 and 10 mg / kg and amounted to 97.9-99.1%, which is reflected in figures 1 and 2.

Figure 00000002
Figure 00000002

Пример 2. В лабораторных условиях в разные образцы почвы весом 20 г был введен феноксикарб в дозировках: 1, 2, 5, 7 и 10 мг/кг. В качестве растворителя был применен тетрахлорметан. На стадии фильтрации экстракта был использован бумажный гофрофильтр. Дальнейшая пробоподготовка была проведена аналогично примеру 1.Example 2. Under laboratory conditions, phenoxycarb was introduced into different soil samples weighing 20 g at dosages: 1, 2, 5, 7 and 10 mg / kg. Carbon tetrachloride was used as a solvent. At the stage of filtration of the extract, a paper corrugated filter was used. Further sample preparation was carried out analogously to example 1.

Обработка данных проводилась аналогично примеру 1. Процент извлечения феноксикарба в исследовании, где в качестве растворителя применен менее токсичный в сравнении с метанолом тетрахлорметан оказался близким к результатам исследования, где в качестве растворителя применялся метанол, что отражено в фигурах 3 и 4.Data processing was carried out analogously to example 1. The percentage of phenoxycarb recovery in the study, where carbon tetrachloride, which is less toxic than methanol, was used as a solvent turned out to be close to the results of a study where methanol was used as a solvent, which is reflected in Figures 3 and 4.

Figure 00000003
Figure 00000003

Claims (1)

Способ определения остаточных количеств феноксикарба в почве методом высокоэффективной жидкостной хроматографии, включающий пробоподготовку: экстракцию его из почвы, последующую очистку экстракта в системе несмешивающихся растворителей гексан, насыщенный раствор хлорида натрия, водный раствор двууглекислого натрия и непосредственно количественное определение феноксикарба в почве методом высокоэффективной жидкостной хроматографии, отличающийся тем, что на этапе экстракции в качестве растворителя используется менее токсичный тетрахлорметан, а на стадии очистки экстракта применен гофрофильтр. A method for determining residual amounts of phenoxycarb in soil by high performance liquid chromatography, including sample preparation: its extraction from soil, subsequent purification of the extract in a system of immiscible solvents, hexane, saturated sodium chloride solution, aqueous solution of sodium bicarbonate and directly quantitative determination of phenoxycarb in soil by high performance liquid chromatography, characterized in that at the stage of extraction, less toxic carbon tetrachloride is used as a solvent, and at the stage of purification of the extract, a corrugated filter is used.
RU2020134488A 2020-10-20 2020-10-20 Method for determination of residual amounts of fenoxycarb in soil by high-performance liquid chromatography RU2760530C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2020134488A RU2760530C1 (en) 2020-10-20 2020-10-20 Method for determination of residual amounts of fenoxycarb in soil by high-performance liquid chromatography

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2020134488A RU2760530C1 (en) 2020-10-20 2020-10-20 Method for determination of residual amounts of fenoxycarb in soil by high-performance liquid chromatography

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2760530C1 true RU2760530C1 (en) 2021-11-26

Family

ID=78719554

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2020134488A RU2760530C1 (en) 2020-10-20 2020-10-20 Method for determination of residual amounts of fenoxycarb in soil by high-performance liquid chromatography

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2760530C1 (en)

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2363234C2 (en) * 2004-05-07 2009-08-10 Баркон Ньютрасайнс (Мб) Корп. Protein extraction methods implemented to decrease content of phytic acid

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2363234C2 (en) * 2004-05-07 2009-08-10 Баркон Ньютрасайнс (Мб) Корп. Protein extraction methods implemented to decrease content of phytic acid

Non-Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
AMELIN V. G., and others. "The combination of the QUECHERS method and dispersion liquid-lobby microextraction when identifying and determining pesticides of various classes in food products of gas-liquid chromatography methods," Proceedings of the Federal Animal Health Center, 2012, T. X, C.169-190. *
Fedorova N. E., Egorchenkova O. E., Sobolev D. N. "MUK 4.1.3461-17. *
Talalakina T. N., Makeev A. M. "MUK 4.1.2272-07. Determination of residual amounts of fenoxycarb in apples, plums and grapes by high performance liquid chromatography", 2009, P.1-19. *
Голодников Г.В. и др. "Практикум по органическому синтезу", Учебное пособие, 1976, С.37. *
Талалакина Т. Н., Макеев А. М. "МУК 4.1.2272-07. Определение остаточных количеств феноксикарба в яблоках, сливах и винограде методом высокоэффективной жидкостной хроматографии", 2009, С.1-19. Амелин В. Г. и др. "СОЧЕТАНИЕ МЕТОДА QuEChERS И ДИСПЕРСИОННОЙ ЖИДКОСТНОЖИДКОСТНОЙ МИКРОЭКСТРАКЦИИ ПРИ ИДЕНТИФИКАЦИИ И ОПРЕДЕЛЕНИИ ПЕСТИЦИДОВ РАЗЛИЧНЫХ КЛАССОВ В ПИЩЕВЫХ ПРОДУКТАХ МЕТОДАМИ ГАЗОЖИДКОСТНОЙ ХРОМАТОГРАФИИ", ТРУДЫ ФЕДЕРАЛЬНОГО ЦЕНТРА ОХРАНЫ ЗДОРОВЬЯ ЖИВОТНЫХ, 2012, Т. Х, С.169-190. *
Федорова Н. Е., Егорченкова О. Е., Соболев Д. Н. "МУК 4.1.3461-17. Измерение концентраций феноксикарба в атмосферном воздухе населенных мест методом капиллярной газожидкостной хроматографии", 2017, С.1-18. Голодников Г.В. и др. "Практикум по органическому синтезу", Учебное пособие, 1976, С.37. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Hofmann et al. Sample preparation techniques for the determination of natural 15N/14N variations in amino acids by gas chromatography-combustion-isotope ratio mass spectrometry (GC-C-IRMS)
Stack et al. Liquid chromatographic determination of tenuazonic acid and alternariol methyl ether in tomatoes and tomato products
CN102890130B (en) Method for detecting residual amount of abamectin in tobacco
CN104374849A (en) Method for treating pyrethroid pesticide residue soil environment sample before measurement
RU2760530C1 (en) Method for determination of residual amounts of fenoxycarb in soil by high-performance liquid chromatography
CN103197009B (en) Measuring method of residual quantity of preservatives
RU2484458C1 (en) Method of determining imidacloprid in biological objects using high-performance liquid chromatography
CN110361477A (en) The measurement of organic phosphorus pesticide multi-residue in vegetables and fruit
CN100378455C (en) Quick determination method for pesticide avermectin and its toxic metabolite residue
CN101832980B (en) Method for measuring di-ethylhexyl maleate in food packaging material
Volker et al. The determination of ergosterol in environmental samples. An interdisciplinary Project involving techniques of analytical and organic chemistry
Grover A method for determining the volatility of herbicides
Komarova et al. Determination of ametoctradin in plant residues and environmental samples by HPLC with an UV detector
CN102288690A (en) Method for determining content of tri (2-chloroethyl) phosphate
Miles et al. Storage and analysis of samples of water, fish, and mud from environments contaminated with Abate
Burger et al. The chemical nature of the defensive larval secretion of the citrus swallowtail, Papilio demodocus
Newsome A method for the determination of ethyleneurea in foods as the pentafluorobenzamide
CN103604880B (en) Method for detecting triazophos pesticide in environmental samples of different types
CN104897805A (en) Method for rapid detection of paclobutrazol residue in plant traditional Chinese medicinal materials
RU2517075C1 (en) Method of determining thiacloprid in biological objects using high-performance liquid chromatography
RU2806370C1 (en) Method of simultaneous quantitative determination of persistent organochlorine pesticides in animal hair using gas chromatography-mass spectrometry
RU2427836C1 (en) Method of determining parathion-methyl (metaphos) in soil
Bates et al. The removal of plant extractives interfering in the determination of malathion residues in barley and rice bran
RU2427833C1 (en) Method for simultaneous determination of desmedipham and phenmedipham in soil
CN101832978A (en) Measuring method of sodium naphthalene acetate residue in soybeans and soil