RU2760399C1 - Attenuated asfv/cv60/2020 strain of african swine fever virus of the asfarviridae family, genus asfivirus for the study of immunological reactions, molecular genetic analysis, genetic modification and creation of a prototype vaccine against asf - Google Patents

Attenuated asfv/cv60/2020 strain of african swine fever virus of the asfarviridae family, genus asfivirus for the study of immunological reactions, molecular genetic analysis, genetic modification and creation of a prototype vaccine against asf Download PDF

Info

Publication number
RU2760399C1
RU2760399C1 RU2021111962A RU2021111962A RU2760399C1 RU 2760399 C1 RU2760399 C1 RU 2760399C1 RU 2021111962 A RU2021111962 A RU 2021111962A RU 2021111962 A RU2021111962 A RU 2021111962A RU 2760399 C1 RU2760399 C1 RU 2760399C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
virus
strain
asf
swine fever
asfv
Prior art date
Application number
RU2021111962A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Наталья Никифоровна Власова
Алексей Сергеевич Иголкин
Али Мазлум
Андрей Сергеевич Першин
Иван Юрьевич Жуков
Иван Вячеславович Шевченко
Андрей Романович Шотин
Александра Андреевна Елсукова
Елена Владимировна Аронова
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ")
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ") filed Critical Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ")
Priority to RU2021111962A priority Critical patent/RU2760399C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2760399C1 publication Critical patent/RU2760399C1/en

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: invention relates to the field of biotechnology. The invention is a strain of the African swine fever virus "ASFV/CV60/2020". The characterized strain was obtained by deep adaptation by sequential passaging of the virus in a continuous culture of African green monkey kidney cells (CV-1) and deposited in the collection of a microorganism strain of the FSBI "ARRIAH" under registration number 334-dep/20-122. The presented strain has a moderate infectious activity, accumulates in the culture of bone marrow and CV-1 cells. The virulence for pigs of all age groups with intramuscular injection does not exceed 12.5%.
EFFECT: presented virus strain can be used to study immunity factors in pigs when creating a prototype vaccine against African swine fever.
4 cl, 3 dwg, 4 tbl, 5 ex

Description

Изобретение относится к области ветеринарной вирусологии, в частности, к штаммам вируса африканской чумы свиней (АЧС) и может быть использовано в научно-исследовательских институтах и лабораториях в качестве штамма для изучения иммунологических реакций, молекулярно-генетического анализа, генетической модификации вируса, а также для изготовления антигенсодержащих биопрепаратов и создания прототипа вакцины против АЧС.The invention relates to the field of veterinary virology, in particular, to strains of the African swine fever (ASF) virus and can be used in research institutes and laboratories as a strain for studying immunological reactions, molecular genetic analysis, genetic modification of the virus, as well as for production of antigen-containing biological products and creation of a prototype vaccine against ASF.

АЧС - вирусная болезнь свиней, характеризующаяся лихорадкой, отказом от корма, лимфаденитами и обширными геморрагиями во внутренних органах инфицированных животных. Для АЧС характерно многообразие форм течения болезни: от сверхострой и острой со 100% летальностью до хронической. В настоящее время с учетом степени интенсивности течения эпизоотического процесса и масштабов географического распространения можно говорить о развитии панзоотии АЧС [1].ASF is a viral disease of pigs characterized by fever, food refusal, lymphadenitis and extensive hemorrhages in the internal organs of infected animals. ASF is characterized by a variety of forms of the course of the disease: from hyperacute and acute with 100% mortality to chronic. At present, taking into account the degree of intensity of the course of the epizootic process and the scale of geographical distribution, we can talk about the development of ASF panzootic disease [1].

В 2014-2020 гг. панзоотия АЧС охватила многие страны Африканского континента, Европы, в том числе, Украина, Беларусь, Россия, а также страны Азии (Китай, Корея, Индия, Вьетнам, Лаос и т.п.) и Океании. Кроме того, прослеживается тенденция к дальнейшему распространению болезни в мире.In 2014-2020. ASF panzootic disease has spread to many countries of the African continent, Europe, including Ukraine, Belarus, Russia, as well as countries of Asia (China, Korea, India, Vietnam, Laos, etc.) and Oceania. In addition, there is a tendency for the further spread of the disease in the world.

Трудности глобальной эрадикации АЧС связаны с отсутствием средств специфической профилактики и лечения, а также сложностью контроля за ее распространением в свиноводческих хозяйствах с низким уровнем биологической безопасности и в популяции дикого кабана.Difficulties in the global eradication of ASF are associated with the lack of specific prevention and treatment tools, as well as the difficulty of controlling its spread in pig farms with a low level of biological safety and in the wild boar population.

В настоящее время для научных исследований, проводимых с целью изучения вирулентных свойств, генотиповой и серотиповой принадлежности выделенных изолятов в качестве референс-штаммов II генотипа, VIII серотипа наиболее часто используют два штамма: Georgia 2007/01 и Arm07, положившие начало развитию текущей панзоотии на Евразийском континенте.Currently, for scientific research carried out to study the virulent properties, genotypic and serotypic belonging of the isolated isolates, two strains are most often used as reference strains of genotype II, serotype VIII: Georgia 2007/01 and Arm07, which initiated the development of the current panzootic disease in the Eurasian continent.

Аттенуированные штаммы, как наиболее безопасные, могут быть использованы при получении гипериммунных сывороток и антигенов для постановки ИФА и иммуноблоттинга, для определения сероиммунотипа вновь выделяемых природных вариантов вируса АЧС в реакции задержки гемадсорбции (РЗГАд), а также в качестве источника референс-ДНК при апробации новых тест-систем на основе ПЦР, и для разработки средств специфической профилактики.Attenuated strains, as the safest, can be used to obtain hyperimmune sera and antigens for ELISA and immunoblotting, to determine the seroimmunotype of newly isolated natural variants of the ASF virus in the hemadsorption delay reaction (RHAD), as well as as a source of reference DNA when testing new test systems based on PCR, and for the development of specific prophylaxis tools.

Однако, попытки использования разработанных по классическим канонам вариантов вакцин против этой особо опасной болезни свиней в 60-х годах прошлого века не только не способствовали улучшению эпизоотической ситуации с АЧС, но и усугубили ее [2].However, attempts to use vaccine variants developed according to the classical canons against this especially dangerous pig disease in the 60s of the last century not only did not improve the epizootic situation with ASF, but also exacerbated it [2].

В настоящий момент различные мировые научные группы проводят исследования по разработке вакцины против АЧС. За основу для разработки вакцины используют, как высоковирулентные варианты вируса АЧС, так и его природно- или лабораторно-аттенуированные варианты [3, 4, 5].Currently, various scientific groups worldwide are conducting research on the development of an ASF vaccine. As a basis for the development of a vaccine, both highly virulent variants of the ASF virus and its natural or laboratory-attenuated variants are used [3, 4, 5].

По мнению Lacasta et al., живые аттенуированные вирусы АЧС -идеальные инструменты для анализа механизмов, участвующих в вирусном патогенезе и иммунной защите [6].According to Lacasta et al., Live attenuated ASF viruses are ideal tools for analyzing the mechanisms involved in viral pathogenesis and immune defense [6].

Вследствие формирования эндемичных по АЧС зон на территории Российской Федерации остро стоит вопрос о наличии банка российских изолятов, анализ которых позволит не только выяснить природу вирулентности вируса, но и разработать научно-обоснованную платформу для разработки эффективной вакцины против АЧС.Due to the formation of ASF-endemic zones on the territory of the Russian Federation, there is an urgent question about the availability of a bank of Russian isolates, the analysis of which will allow not only to find out the nature of the virus virulence, but also to develop a scientifically grounded platform for the development of an effective vaccine against ASF.

На данный момент известен ряд отечественных и зарубежных штаммов вируса АЧС, используемых для изготовления антигенсодержащих биопрепаратов [7, 8, 9].At the moment, a number of domestic and foreign strains of the ASF virus are known, which are used for the manufacture of antigen-containing biological products [7, 8, 9].

Аттенуированный штамм КК-262/С I генотипа, II серотипа использовался для разработки вакцинных препаратов. Он обладает способностью к репродукции в первичных культурах клеток костного мозга свиней (KMC), а его введение свиньям индуцирует формирование протективного иммунного ответа к заражению гомологичным вирулентным вирусом I генотипа II серотипа [9, 10].The attenuated strain KK-262 / C of genotype I, serotype II was used for the development of vaccine preparations. It has the ability to reproduce in primary cultures of porcine bone marrow cells (KMC), and its administration to pigs induces the formation of a protective immune response to infection with a homologous virulent virus I of genotype II serotype [9, 10].

История патентования в нашей стране циркулирующих штаммов вируса АЧС II генотипа VIII серотипа начинается с 2010 года, когда впервые был зарегистрирован патент на российский штамм Ставрополь 01/08 [11]. Это высоковирулентный вирус, способный репродуцироваться только в первичной культуре KMC, альвеолярных макрофагов (АМС) или лейкоцитов свиньи (ЛС).The history of patenting circulating strains of the ASF virus II genotype VIII serotype in our country begins in 2010, when a patent was first registered for the Russian strain Stavropol 01/08 [11]. It is a highly virulent virus that can reproduce only in primary culture of KMC, alveolar macrophages (AMC) or porcine leukocytes (PM).

В дальнейшем вирус штамма Ставрополь 01/08 был адаптирован к росту в перевиваемой культуре клеток А4С2 (гибрид СПЭВ и спленоцитов свиньи - Sus scrofa L) и CV - 1 (почка африканской зеленой мартышки - Cercopithecus aethiops) [12]. Однако, полученный аттенуированный штамм Ставрополь 01/08 не защищал животных от заражения вирулентным вирусом, т.к. утратил часть свойств, необходимых для формирования протективного иммунного ответа при АЧС.Subsequently Stavropol 01/08 strain virus was adapted to grow in a continuous culture of cells A 4 C 2 (SPEV and splenocyte hybrid pigs - Sus scrofa L) and CV - 1 (African green monkey kidney - Cercopithecus aethiops) [12]. However, the obtained attenuated strain Stavropol 01/08 did not protect animals from infection with a virulent virus, since lost some of the properties necessary for the formation of a protective immune response in ASF.

Известен штамм Волгоград/14с, применяемый для разработки диагностических препаратов и проведения вирусологических, молекулярно-генетических исследований [13], который получен из вирулентного российского изолята Волгоград/14с, принадлежащего к VIII серотипу. Хотя рекомбинантный вирус Волгоград/14с после удаления гена A238L утратил патогенность исходного вируса, он не обладает протективными свойствами и не защищает от контрольного заражения вирулентным вирусом VIII серотипа [14]. Следовательно, этот штамм не может быть использован для изучения протективных свойств и разработки защитных препаратов.Known strain Volgograd / 14s, used for the development of diagnostic drugs and virological, molecular genetic studies [13], which is obtained from the virulent Russian isolate Volgograd / 14c, belonging to the VIII serotype. Although the recombinant Volgograd / 14c virus, after deleting the A238L gene, lost the pathogenicity of the original virus, it does not possess protective properties and does not protect against challenge with a virulent virus of serotype VIII [14]. Consequently, this strain cannot be used to study protective properties and develop protective drugs.

Наиболее близким аналогом (прототипом) предлагаемого штамма, обладающего протективными свойствами и способностью репродуцироваться в гетерологичной перевиваемой культуре клеток, является адаптированный к росту в Vero (почка африканской зеленой мартышки - Cercopithecus aethiops) аттенуированный штамм BA71V, I генотипа IV серотипа [15], испытания которого доказали возможность достижения защиты от заражения как гомологичным (одного генотипа), так и гетерологичным изолятами (разных генотипов). Кроме того, сравнительный анализ генома вирулентных и аттенуированных штаммов позволил определить группы генов, обуславливающих вирулентность вируса АЧС [16]. Однако он принадлежит к I генотипу и IV серотипу, поэтому применение его в дальнейшем в качестве компонента диагностических систем является нецелесообразным.The closest analogue (prototype) of the proposed strain, which has protective properties and the ability to reproduce in a heterologous continuous cell culture, is the attenuated strain BA71V, genotype IV serotype I, adapted to growth in Vero (kidney of the African green monkey - Cercopithecus aethiops), strain BA71V, genotype I, serotype IV [15]. proved the possibility of achieving protection against infection with both homologous (one genotype) and heterologous isolates (different genotypes). In addition, a comparative analysis of the genome of virulent and attenuated strains made it possible to determine the groups of genes that determine the virulence of the ASF virus [16]. However, it belongs to genotype I and serotype IV, so its use in the future as a component of diagnostic systems is inappropriate.

Несмотря на предпринимаемые меры борьбы, ареал распространения АЧС в мире продолжает расширяться. В связи с этим необходимость проведения сравнительного геномного анализа вирулентных и авирулентных вариантов и изучения иммуногенеза болезни с дальнейшей целью создания вакцины является приоритетным направлением исследований по защите от панзоотии АЧС.Despite the ongoing control measures, the distribution area of ASF in the world continues to expand. In this regard, the need to conduct a comparative genomic analysis of virulent and avirulent variants and to study the immunogenesis of the disease with the further aim of creating a vaccine is a priority area of research to protect against ASF panzootic disease.

Аттенуированные штаммы вируса АЧС с отличающимися по вирулентности, контагиозности, реактогенности и выраженности клинических признаков свойствами, необходимы, как для определения причин вирулентности вируса АЧС, так и для разработки средств ее специфической профилактики.Attenuated ASF virus strains with properties differing in virulence, contagiousness, reactogenicity and severity of clinical signs are necessary both for determining the causes of ASF virus virulence and for developing means of its specific prophylaxis.

Техническая проблема, на решение которой направлено настоящее изобретение, заключается в расширении арсенала аттенуированных штаммов вируса африканской чумы свиней, которые необходимы для изучения иммунологии этого заболевания, молекулярно-генетического анализа и генетической модификации возбудителя при создании прототипа вакцины, а также для диагностических исследований, получения антигенсодержащих препаратов.The technical problem to be solved by the present invention is to expand the arsenal of attenuated strains of African swine fever virus, which are necessary for studying the immunology of this disease, molecular genetic analysis and genetic modification of the pathogen when creating a vaccine prototype, as well as for diagnostic studies, obtaining antigen-containing drugs.

Все вышеизложенные факты указывают на приоритетность задачи по получению нового аттенуированного штамма вируса АЧС, пригодного для детального изучения структуры его генома, анализа функций генов и механизмов формирования иммунного ответа при АЧС у инфицированных животных, а также диагностических исследований и модификации вируса при получении вакцинных препаратов.All the above facts indicate the priority of the task of obtaining a new attenuated strain of the ASF virus, suitable for a detailed study of the structure of its genome, analysis of gene functions and mechanisms of the formation of an immune response in ASF in infected animals, as well as diagnostic studies and modification of the virus when obtaining vaccine preparations.

Указанная проблема была решена получением аттенуированного штамма вируса АЧС II генотипа VIII серотипа со сниженной вирулентностью, стабильными культурально-биологическими свойствами, обладающего способностью к эффективной репликации в перевиваемой культуре клеток CV-1, предназначенного для изучения особенностей иммуногенеза при АЧС и для разработки диагностических и защитных препаратов. Кроме того, аттенуированный штамм также может быть использован для получения авирулентных клонов вируса, проведения генетических модификаций, как с целью изучения функций отдельных генов, так и для создания прототипа маркированной вакцины на его основе.This problem was solved by obtaining an attenuated strain of the ASF virus II genotype VIII serotype with reduced virulence, stable cultural and biological properties, capable of effective replication in a continuous culture of CV-1 cells, intended for studying the characteristics of immunogenesis in ASF and for the development of diagnostic and protective drugs. ... In addition, the attenuated strain can also be used to obtain avirulent clones of the virus, carry out genetic modifications, both in order to study the functions of individual genes, and to create a prototype of a labeled vaccine based on it.

Исходным материалом, послужившим источником для получения штамма вируса «ASFV/CV60/2020», являлся адаптированный к росту в перевиваемой культуре клеток CV-1 вирус штамма «АЧС/ВНИИЗЖ/СV-1» [17]. В свою очередь, штамм «АЧС/ВНИИЗЖ/СV-1» был получен в процессе адаптации к росту в перевиваемой культуре клеток вируса с летальностью 85,7% штамма «АЧС-8 №2/Одинцово 02/14» вируса африканской чумы свиней, выделенный из селезенки отстрелянного на территории Одинцовского района Московской области в 2014 году дикого кабана. Вирус штамма «АЧС/ВНИИЗЖ/CV-1» накапливается в культуре клеток костного мозга свиней и CV-1 в титре 6,0-7,0 lg ГАдЕ50/см3, а его летальность для домашних свиней всех возрастных групп не превышает 37,5%.The initial material, which served as a source for obtaining the ASFV / CV60 / 2020 virus strain, was the ASF / ARRIAH / CV-1 virus strain adapted to growth in a continuous culture of CV-1 cells [17]. In turn, the strain "ASF / ARRIAH / CV-1" was obtained in the process of adaptation to growth in a continuous culture of virus cells with a lethality of 85.7% of the strain "ASF-8 No. 2 / Odintsovo 02/14" of the African swine fever virus, isolated from the spleen of a wild boar shot in the Odintsovo district of the Moscow region in 2014. Virus strain "ASF / ARRIAH / CV-1" accumulates in the culture of bone marrow cells of pigs and CV-1 in a titer of 6.0-7.0 lg GAE 50 / cm 3 , and its lethality for domestic pigs of all age groups does not exceed 37 ,5%.

По сравнению с известными штаммами II генотипа, вирус АЧС штамма «ASFV/CV60/2020» обладает сниженной остаточной летальностью для свиней (12,5%) и эффективно репродуцируется в культуре клеток почки зеленой мартышки CV-1, а титр вируса достигает значений 7,5-8,0 lg ГАдЕ50/см3. Кроме того, вирус АЧС штамма «ASFV/CV60/2020» обладает выраженной иммуногенностью, поскольку при его введении животным большинство клинических признаков АЧС отсутствуют, а выжившие животные приобретают устойчивость к повторному заражению вирулентным вирусом II генотипа VIII серотипа, что дает возможность использовать его для получения специфической гипериммунной сыворотки.Compared with the known strains of genotype II, the ASFV / CV60 / 2020 strain has a reduced residual lethality for pigs (12.5%) and is effectively reproduced in the culture of CV-1 green monkey kidney cells, and the virus titer reaches 7, 5-8.0 lg HUDE 50 / cm 3 . In addition, the ASFV strain "ASFV / CV60 / 2020" has a pronounced immunogenicity, since when it is administered to animals, most of the clinical signs of ASF are absent, and the surviving animals acquire resistance to repeated infection with the virulent virus of genotype VIII serotype II, which makes it possible to use it to obtain specific hyperimmune serum.

Полученный путем длительной адаптации (60 пассажей) аттенуированный штамм «ASFV/CV60/2020» вируса африканской чумы свиней депонирован в Коллекции штаммов микроорганизмов ФГБУ «ВНИИЗЖ» под авторским названием «ASFV/CV60/2020» с регистрационным номером №334 - деп / 20-122 - ГКШМ ФГБУ «ВНИИЗЖ».The attenuated ASFV / CV60 / 2020 strain of African swine fever virus obtained by long-term adaptation (60 passages) was deposited in the Collection of Microorganism Strains of the FGBI ARRIAH under the author's name “ASFV / CV60 / 2020” with registration number No. 334 - dep / 20- 122 - SCSM FGBU "ARRIAH".

Штамм вируса африканской чумы свиней «ASFV/CV60/2020» характеризуется следующими признаками и свойствами:The African swine fever virus strain "ASFV / CV60 / 2020" is characterized by the following features and properties:

Морфологические свойства.Morphological properties.

Штамм «ASFV/CV60/2020» вируса африканской чумы свиней относится к семейству Asfarviridae, род Asfivirus. Обладает морфологическими признаками, характерными для возбудителя АЧС: при электронно-микроскопическом исследовании наблюдаются вирионы возбудителя икосаэдрической формы с диаметром -200 нм, имеющие нескольких концентрических слоев. Центральный нуклеоид вириона или кор, представленный двухцепочечной молекулой ДНК с плотным слоем белковой оболочки, покрывает внутренняя липидная оболочка, заключенная в капсид. Капсид состоит из 1892-2172 капсомеров и окружен суперкапсидной (наружной) липопротеидной оболочкой.The African swine fever virus strain "ASFV / CV60 / 2020" belongs to the Asfarviridae family, genus Asfivirus. It has morphological features characteristic of the ASF causative agent: during electron microscopic examination, virions of the pathogen of an icosahedral shape with a diameter of -200 nm, having several concentric layers, are observed. The central nucleoid of the virion or core, represented by a double-stranded DNA molecule with a dense layer of a protein coat, covers the inner lipid coat, enclosed in a capsid. The capsid consists of 1892-2172 capsomeres and is surrounded by a supercapsid (outer) lipoprotein sheath.

Антигенные свойства.Antigenic properties.

В состав зрелых вирионов вируса АЧС входит более 50 белков. Основные антигенные свойства штамма «ASFV/CV60/2020» соответствуют таковым вируса VIII серотипа: вирусспецифические антигены выявляются специфическими антителами в иммуноферментном анализе и иммуноблоттинге; в реакции задержки гемадсорбции и иммунопробе проявляются свойства, характерные для соответствующего серотипа, а в реакции прямой иммунофлуоресценции его антиген взаимодействует со специфическими антителами к вирусу АЧС.The mature virions of the ASF virus contain more than 50 proteins. The main antigenic properties of the strain "ASFV / CV60 / 2020" correspond to those of the virus of VIII serotype: virus-specific antigens are detected by specific antibodies in enzyme-linked immunosorbent assay and immunoblotting; in the reaction of delayed hemadsorption and immunoassay, properties characteristic of the corresponding serotype appear, and in the reaction of direct immunofluorescence, its antigen interacts with specific antibodies to the ASF virus.

Генотаксономическая характеристика.Genotaxonomic characteristics.

С использованием филогенетического анализа на основе нуклеотидного секвенирования фрагмента гена B646L штамм вируса АЧС «ASFV/CV60/2020» отнесен ко II генотипу вируса АЧС (100% гомология с референс-штаммом II генотипа Georgia 2007/01).Using phylogenetic analysis based on nucleotide sequencing of the B646L gene fragment, ASFV / CV60 / 2020 strain was assigned to ASFV genotype II (100% homology with reference strain II of Georgia 2007/01 genotype).

Генетическая принадлежность предлагаемого для патентования варианта вируса проиллюстрирована на дендрограмме, отражающей филогенетическое родство штамма «ASFV/CV60/2020» с эпизоотическими штаммами вируса африканской чумы свиней II генотипа (дендрограмма основана на сравнении полных нуклеотидных последовательностей участка гена B646L, кодирующего основной капсидный белок вируса АЧС) (фиг. 2).The genetic affiliation of the variant of the virus proposed for patenting is illustrated on a dendrogram reflecting the phylogenetic relationship of the ASFV / CV60 / 2020 strain with the epizootic strains of the African swine fever virus genotype II (the dendrogram is based on a comparison of the complete nucleotide sequences of the B646L region encoding the main capsid protein of the virus) (Fig. 2).

Сущность изобретения пояснена на графических изображениях, на которых отображены:The essence of the invention is explained in graphic images, which show:

Фиг. 1 - Динамика изменения уровня антител в сыворотке крови четырех групп свиней, инфицированных вирусом аттенуированного штамма «ASFV/CV60/2020» в твердофазном иммуноферментном анализе (ТФ ИФА);FIG. 1 - Dynamics of changes in the level of antibodies in the blood serum of four groups of pigs infected with the virus of the attenuated strain "ASFV / CV60 / 2020" in the enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA);

Фиг. 2 - Положение штамма вируса АЧС «ASFV/CV60/2020» на филогенетическом древе семейства Asfarviridae рода Asfivirus;FIG. 2 - Position of the ASFV strain "ASFV / CV60 / 2020" on the phylogenetic tree of the Asfarviridae family of the genus Asfivirus;

Фиг. 3 - Специфичность взаимодействия антител к вирусу штамма «ASFV/CV60/2020» с антигеном вируса АЧС разных серотипов (а - блоттограмма белков препарата очищенного цитоплазматического антигена (a1-I серотип, a2-IV серотип) после электрофореза в 10% разделяющем геле; б - реакция непрямой иммунофлуоресценции с вирусом гетерологичного серотипа (б1 - IV серотип, б2 - контроль незараженной культуры клеток). Сероиммунотиповая принадлежность.FIG. 3 - Specificity of the interaction of antibodies to the virus of the strain "ASFV / CV60 / 2020" with the antigen of the ASF virus of different serotypes (a - blottogram of proteins of the preparation of the purified cytoplasmic antigen (a1-I serotype, a2-IV serotype) after electrophoresis in 10% separating gel; b - reaction of indirect immunofluorescence with a virus of a heterologous serotype (b1 - IV serotype, b2 - control of uninfected cell culture).

Серотип вируса АЧС определен в РЗГАд (реакции задержки гемадсорбции) и в иммунопробе по разработанной во ВНИИВВиМ методике [18, 19].The serotype of the ASF virus was determined in the RHAD (hemadsorption delay reaction) and in the immunoassay according to the method developed at VNIIVViM [18, 19].

Серотиповая принадлежность штамма «ASFV/CV60/2020» вируса АЧС была установлена в РЗГАд с использованием специфических сывороток к VIII и IV серотипам.The serotypic affiliation of the ASFV / CV60 / 2020 strain of the ASF virus was established in the RZHAD using specific sera for VIII and IV serotypes.

Первичную культуру клеток (KMC, АМС) выращивали на 96-луночных планшетах в посадочной концентрации 6-7×106/см3. После сорбции клеток неприкрепленные клетки и избыток эритроцитов удаляли, а в лунки вносили 200 мкл ростовой среды и панели инкубировали 48 часов при 37°С и 3-5% СО2. Реакцию проводили в объеме 250 мкл поддерживающей среды следующего состава:Primary cell culture (KMC, AMC) was grown in 96-well plates at a seeding concentration of 6-7 × 10 6 / cm 3 . After sorption of cells, unattached cells and excess erythrocytes were removed, and 200 μl of growth medium was added to the wells and the panels were incubated for 48 hours at 37 ° C and 3-5% CO 2 . The reaction was carried out in a volume of 250 μL of a supporting medium of the following composition:

- 200 мкл среда DMEM,- 200 μl DMEM medium,

- 25 мкл вируссодержащей суспензии,- 25 μl vaccinated suspension,

- 25 мкл специфической или контрольной сыворотки.- 25 μl of specific or control serum.

Учет реакции проводили через 24-72 часа при выраженной гемадсорбции в контрольных образцах.The reaction was taken into account after 24-72 hours with pronounced hemadsorption in the control samples.

Установлено, что специфическая сыворотка, полученная на штамм «Arm07» VIII серотипа вируса АЧС, вызывает задержку (отсутствие ГАд) в разведениях 1:20, в то время, как внесение отрицательной сыворотки свиньи и референс-сыворотки IV серотипа, полученной из Референтной лаборатории Европейского Союза «CISA INIA» (Испания), не вызывало задержки появления специфической гемадсорбции. Результаты типирования штамма приведены в таблице 1.It was found that the specific serum obtained for the "Arm07" strain of the VIII serotype of the ASF virus causes a delay (absence of GAD) in dilutions of 1:20, while the introduction of negative porcine serum and reference serum of the IV serotype obtained from the Reference Laboratory of the European Union "CISA INIA" (Spain), did not cause a delay in the appearance of specific hemadsorption. The results of strain typing are shown in Table 1.

По результатам постановки реакции задержки ГАд с использованием референс-сывороток разных серотипов вируса АЧС, аттенуированный и адаптированный к росту в перевиваемой культуре клеток CV-1 штамм «ASFV/CV60/2020» отнесен к вирусу африканской чумы свиней VIII серотипа (таблица 1).According to the results of staging the GAD delay reaction using reference sera of different serotypes of the ASF virus, attenuated and adapted to growth in a continuous culture of CV-1 cells, the ASFV / CV60 / 2020 strain was assigned to African swine fever virus of VIII serotype (Table 1).

Сероиммунотиповая принадлежность определялась посредством постановки иммунопробы на свиньях (7 голов), зараженных вирусом штамма «ASFV/CV60/2020», в дозе 10 ГАдЕ/гол. Через 35 дней после заражения всем свиньям вводили 1000 ГАдЕ/гол вирулентного вируса АЧС штамма «Arm07». Животные приобрели устойчивость к повторному заражению вирулентным вирусом АЧС VIII серотипа. Таким образом, иммунопроба подтвердила принадлежность вируса штамма «ASFV/CV60/2020» к VIII серотипу.Seroimmunity was determined by setting an immunoassay on pigs (7 heads) infected with the virus of the ASFV / CV60 / 2020 strain at a dose of 10 HAU / head. 35 days after infection, all pigs were injected with 1000 HAU / head of the virulent ASF virus strain "Arm07". The animals acquired resistance to re-infection with the virulent ASF virus serotype VIII. Thus, the immunoassay confirmed that the virus of the ASFV / CV60 / 2020 strain belongs to the VIII serotype.

Культуральные свойства.Cultural properties.

Вирус штамма «ASFV/CV60/2020» размножается в первичных культурах клеток АМС, ЛС, СС (селезенки свиней) и KMC, причем, его репродукция сопровождается появлением «рыхлой» гемадсорбции, когда к одной инфицированной клетке прикреплено не более 20-30 эритроцитов свиней [23]. Титр накопления вируса на 5 сутки достигает значений 7,0-7,5 lg ГАдЕ50/см3.The virus strain "ASFV / CV60 / 2020" multiplies in primary cell cultures AMC, LS, CC (pig spleen) and KMC, moreover, its reproduction is accompanied by the appearance of "loose" hemadsorption, when no more than 20-30 pig erythrocytes are attached to one infected cell [23]. The titer of virus accumulation on the 5th day reaches values of 7.0-7.5 lg HADU 50 / cm 3 .

В культуре клеток почки зеленой мартышки (CV-1) титры накопления вируса составляют 7,5-8,0 lg ГАдЕ50/см3 при репродукции в течение 7 суток при температуре 36-37°С (таблица 2). Установлено, что вирус штамма «ASFV/CV60/2020» сохраняет данные свойства в течение 15 серийных пассажей (срок наблюдения).In a culture of green monkey kidney cells (CV-1), the titers of virus accumulation are 7.5-8.0 lg HAE 50 / cm 3 during reproduction for 7 days at a temperature of 36-37 ° C (Table 2). It has been established that the virus of the ASFV / CV60 / 2020 strain retains these properties for 15 serial passages (observation period).

Патогенные свойства.Pathogenic properties.

Вирус штамма «ASFV/CV60/2020» слабопатогенен для свиней при внутримышечном введении, у выживших животных наблюдается лишь кратковременное повышение температуры до 41,0°С, а клинические признаки, характерные для АЧС, у большинства животных отсутствуют.The virus strain "ASFV / CV60 / 2020" is weakly pathogenic for pigs when injected intramuscularly, surviving animals have only a short-term temperature rise up to 41.0 ° C, and clinical signs characteristic of ASF are absent in most animals.

Контаминация бактериями, грибами, микоплазмами и посторонними вирусами.Contamination with bacteria, fungi, mycoplasmas and foreign viruses.

Штамм не контаминирован бактериями, грибами, микоплазмами и гетерологичными вирусами.The strain is not contaminated with bacteria, fungi, mycoplasmas and heterologous viruses.

Способ получения и условия хранения.Method of obtaining and storage conditions.

Штамм хранится при минус 70°С в виде лиофилизированной вируссодержащей суспензии, которая получена путем культивирования вируса в монослое клеток CV-1 при 37°С в течение 7 суток, с добавлением 10% фетальной сыворотки КРС. Периодичность освежения штамма один раз в 10 лет.The strain is stored at minus 70 ° C in the form of a lyophilized vaccinated suspension, which is obtained by culturing the virus in a monolayer of CV-1 cells at 37 ° C for 7 days, with the addition of 10% fetal cattle serum. The frequency of refreshing the strain is once every 10 years.

Дополнительные характеристики.Additional characteristics.

Вирулентность - низковирулентен (12,5%) для естественно восприимчивых животных при внутримышечном заражении.Virulence - low virulence (12.5%) for naturally susceptible animals with intramuscular infection.

Антигенная активность - введение вируса аттенуированного штамма «ASFV/CV60/2020» свиньям индуцирует образование вирусспецифических антител, которые выявляются в иммуноферментном анализе, иммуноблоттинге и реакции непрямой иммунофлуоресценции с тест-антигенами вируса I, IV и VIII серотипа (Фиг. 3). На данном изображении представлено:Antigenic activity - the introduction of the virus of the attenuated strain "ASFV / CV60 / 2020" to pigs induces the formation of virus-specific antibodies, which are detected in the enzyme immunoassay, immunoblotting and the reaction of indirect immunofluorescence with test antigens of the virus I, IV and VIII serotype (Fig. 3). This image shows:

М - маркер молекулярной массы белка;M - protein molecular weight marker;

ВА I - вирусный антиген I серотипа, выявленный с помощью антител к вирусу «ASFV/CV60/2020»;BA I - viral antigen of serotype I, detected using antibodies to the virus "ASFV / CV60 / 2020";

ВА IV - вирусный антиген IV серотипа, выявленный с помощью антител к вирусу «ASFV/CV60/2020»;BA IV - viral antigen of the IV serotype, detected using antibodies to the virus "ASFV / CV60 / 2020";

Figure 00000001
- стрелкой отмечено специфическое свечение комплекса антигена вируса АЧС IV серотипа с антителами к вирусу «ASFV/CV60/2020», мечеными ФИТЦ.
Figure 00000001
- the arrow marks the specific luminescence of the ASFV serotype IV antigen complex with antibodies to the ASFV / CV60 / 2020 virus labeled with FITC.

Иммуногенная активность - контрольное заражение выживших свиней позволило определить, что 100% животных приобрели стойкий протективный иммунитет.Immunogenic activity - control infection of the surviving pigs made it possible to determine that 100% of the animals acquired persistent protective immunity.

Стабильность - стабильно активен при репродукции в перевиваемой культуре клеток CV-1, сохраняет исходные биологические свойства при пассировании в чувствительных биологических системах в течение 15 последовательных пассажей (срок наблюдения).Stability - stably active during reproduction in a continuous culture of CV-1 cells, retains its original biological properties when passaged in sensitive biological systems for 15 consecutive passages (observation period).

Сущность предлагаемого изобретения пояснена примерами его использования, которые не ограничивают объем изобретения.The essence of the invention is illustrated by examples of its use, which do not limit the scope of the invention.

Пример 1.Example 1.

Изучение стабильности и репродукционных свойств вируса АЧС аттенуированного штамма «ASFV7CV60/2020» проводили в культуре клеток CV-1 в течение 15 последовательных пассажей. Наличие гемадсорбирующей активности определяли в культуре клеток KMC. Основные характеристики вируса АЧС аттенуированного штамма «ASFV/CV60/2020» в культурах клеток KMC и CV-1 в процессе пассирования представлены в таблице 2.The study of the stability and reproductive properties of the ASF virus of the attenuated strain "ASFV7CV60 / 2020" was carried out in a CV-1 cell culture for 15 consecutive passages. The presence of hemadsorbing activity was determined in the KMC cell culture. The main characteristics of the ASF virus of the attenuated strain "ASFV / CV60 / 2020" in KMC and CV-1 cell cultures during passaging are presented in Table 2.

Данные, приведенные в таблице 2, свидетельствуют о том, что в течение 15 (с 61 по 75 пассажи) последовательных пассажей вирус аттенуированного штамма «ASFV/CV60/2020» вируса АЧС эффективно размножался в клетках CV-1 и сохранял способность к репродукции в культуре клеток KMC, причем, репродукция вируса в культуре клеток KMC сопровождалась появлением «рыхлой» гемадсорбции в присутствии в питательной среды 0,01% эритроцитов свиньи.The data given in Table 2 indicate that during 15 (from 61 to 75 passages) consecutive passages the virus of the attenuated ASFV / CV60 / 2020 strain of the ASF virus effectively multiplied in CV-1 cells and retained the ability to reproduce in culture KMC cells, moreover, the reproduction of the virus in the culture of KMC cells was accompanied by the appearance of "loose" hemadsorption in the presence of 0.01% pig erythrocytes in the nutrient medium.

Через 7 суток культивирования в культуре клеток CV-1 при температуре 37,0°С титр накопления вируса составлял 7,5-8,0 lg ГАдЕ50/см3.After 7 days of cultivation in a CV-1 cell culture at a temperature of 37.0 ° C, the titer of virus accumulation was 7.5-8.0 lg HAU 50 / cm 3 .

Пример 2.Example 2.

При исследовании структуры популяции и биологических свойств вируса аттенуированного штамма «ASFV/CV60/2020» проведено внутримышечное заражение 8 голов свиней крупной белой породы массой ~15-18 кг вируссодержащей суспензией в дозе 10 ГАдЕ/гол. Такая минимальная доза инфекционного вируса, вводимая животным, позволяет установить четкое различие в биологических свойствах отдельных компонентов вирусной популяции.In the study of the population structure and biological properties of the virus of the attenuated strain "ASFV / CV60 / 2020", intramuscular infection of 8 heads of large white pigs weighing ~ 15-18 kg with a virus-containing suspension at a dose of 10 GAU / bird was carried out. Such a minimum dose of an infectious virus administered to animals makes it possible to establish a clear difference in the biological properties of individual components of the viral population.

Исходя из анализа клинического проявления и уровня виремии у инфицированных животных выявлена неоднозначность клинических проявлений у зараженных животных, в результате на основе экспериментальных данных всех подопытных животных распределили на 4 группы (таблица 3).Based on the analysis of clinical manifestations and the level of viremia in infected animals, the ambiguity of clinical manifestations in infected animals was revealed, as a result, based on experimental data, all experimental animals were divided into 4 groups (Table 3).

Из 8 зараженных животных только у одного наблюдались характерные для подострой формы АЧС клинические признаки с максимальной температурой тела до 41,7°С, а гибель наступила на 17 день после заражения (д.п.з.) (I группа). Титр вируса в крови достигал значений 7,2 lg ГАдЕ50/см3.Out of 8 infected animals, only one showed clinical signs characteristic of the subacute form of ASF with a maximum body temperature of up to 41.7 ° C, and death occurred on the 17th day after infection (d.p.) (group I). The titer of the virus in the blood reached values of 7.2 lg HAU 50 / cm 3 .

У двух свиней (II группа) наблюдались характерные для хронической формы АЧС клинические признаки с максимальной температурой тела до 41,0°С, выражавшиеся в кратковременных подъемах температуры, некротических поражениях кожи, припухлости суставов, титр вируса в крови не превышал 6,25 lg ГАдЕ50/см.Two pigs (group II) showed clinical signs characteristic of the chronic form of ASF with a maximum body temperature of up to 41.0 ° C, expressed in short-term rises in temperature, necrotic skin lesions, swelling of the joints, the titer of the virus in the blood did not exceed 6.25 lg HAU 50 / cm.

У двух из 8 зараженных свиней (III группа) отсутствовали клинические признаки заболевания африканской чумы свиней, а значения титра вируса в крови держались в границах 2,0-3,8 lg ГАдЕ50/см.Two of the 8 infected pigs (group III) had no clinical signs of African swine fever disease, and the virus titer in the blood was kept within the range of 2.0-3.8 lg GAADE50 / cm.

У IV группы свиней (3 головы) не только не регистрировали клинические признаки заболевания, но и не установили наличия виремии ни в ПЦР, ни в РГАд на всем протяжении эксперимента (35 дней) до контрольного заражения вирулентным штаммом.In the IV group of pigs (3 heads), not only clinical signs of the disease were not recorded, but the presence of viremia was not established either in PCR or in RGAD throughout the entire experiment (35 days) prior to challenge with a virulent strain.

Полученные результаты свидетельствуют о неоднородности структуры популяции вируса штамма «ASFV/CV60/2020», которая проявилась в неоднозначности вызываемых отдельными вариантами вируса клиническими проявлениями болезни или отсутствием таковых у зараженных животных.The results obtained indicate the heterogeneity of the population structure of the virus of the strain "ASFV / CV60 / 2020", which manifested itself in the ambiguity of clinical manifestations of the disease caused by individual variants of the virus or the absence of such in infected animals.

У выживших подопытных свиней отобрали кровь, в сыворотке которой при постановке твердофазного иммуноферментного анализа (ТФ ИФА), обнаружили вирусспецифические антитела. В результате анализа с использованием набора ТФ ИФА производства фирмы «Ingenaza» определили наличие выявляемых постинфекционных вирусспецифических антител, титр которых на 27 д.п.з. достигал у свиней III и IV группы значений 4,0 log2/cм3, а у свиней II группы - 7,0 log2/cм3.Blood was taken from the surviving experimental pigs, in the serum of which, when performing an enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), virus-specific antibodies were detected. As a result of analysis using a TF ELISA kit manufactured by Ingenaza, the presence of detectable post-infectious virus-specific antibodies was determined, the titer of which was 27 bp. reached in pigs III and IV groups values of 4.0 log 2 / cm 3 , and in pigs of group II - 7.0 log 2 / cm 3 .

Пример 3.Example 3.

Изучение особенностей динамики антителообразования у зараженных аттенуированным штаммом «ASFV/CV60/2020» вируса АЧС свиней проводили путем определения титра антител в сыворотке крови, отобранной на 1-32 сутки после заражения у животных I-IV группы (представленных в примере 2).The study of the dynamics of antibody production in pigs infected with the attenuated ASFV / CV60 / 2020 strain of the ASF virus was carried out by determining the antibody titer in the blood serum sampled 1-32 days after infection from animals of groups I-IV (presented in example 2).

Уровень антител в крови определяли титрованием сыворотки двукратными разведениями с дальнейшим анализом проб в ТФ ИФА с помощью коммерческого набора Ingenasa-Ingezim РРА Сотрас К3 (Испания).The level of antibodies in the blood was determined by titration of serum with two-fold dilutions with further analysis of samples in TF ELISA using a commercial kit Ingenasa-Ingezim PPA Sotras K3 (Spain).

В результате установлено, что динамика антителообразования различается у всех 4 групп свиней, особенности которой выявляются, как на раннем этапе их появления в крови (7-9 день после заражения - д.п.з.), так и на этапе с 11 по 25 д.п.з. (Фиг. 1), причем уровень антител достиг своего максимума на 28 д.п.з. и оставался неизменным до 35 суток у трех групп животных (срок наблюдения).As a result, it was found that the dynamics of antibody production differs in all 4 groups of pigs, the features of which are revealed both at the early stage of their appearance in the blood (7-9 days after infection - d.p.), and at the stage from 11 to 25 d.c.z. (Fig. 1), and the level of antibodies reached its maximum at 28 DPH. and remained unchanged up to 35 days in three groups of animals (observation period).

Анализ полученных результатов подтвердил различие вызываемых иммунологических проявлений у животных I - IV групп при введении малых доз аттенуированного штамма «ASFV/CV60/2020» вируса АЧС.The analysis of the results obtained confirmed the difference in the induced immunological manifestations in animals of groups I-IV upon administration of low doses of the attenuated ASFV / CV60 / 2020 strain of the ASF virus.

Таким образом, полученный аттенуированный штамм «ASFV/CV60/2020» вируса АЧС обладает инфекционной активностью для культуры клеток и свиней в дозе 10 ГАдЕ/гол, летальностью 12,5% и может быть использован при проведении экспериментальных работ по изучению динамики антителообразования и протективных свойств, а также поисковых научно-исследовательских работ.Thus, the obtained attenuated ASFV / CV60 / 2020 strain of the ASF virus has infectious activity for cell culture and pigs at a dose of 10 GAU / head, a mortality rate of 12.5% and can be used in experimental studies to study the dynamics of antibody formation and protective properties. , as well as exploratory research work.

Пример 4.Example 4.

Определение основных клинических признаков течения болезни и сравнительный анализ уровня содержания вируса в крови и назальных смывах являются важными характеристиками патогенности/иммуногенности вируса АЧС. Заражение проводили путем внутримышечной инокуляции вирусной суспензии в дозе 10 ГАдЕ50/гол вируса аттенуированного штамма «ASFV/CV60/2020» группе из 7 свиней, а вторая группа из 7 свиней, была заражена вируссодержащим материалом штамма «АЧС-8 №2/Одинцово 02/14» с использованием той же дозы вируса и метода заражения [20]. 2 головы свиньи использовали в качестве контроля, т.е. оставались не зараженными (контрольная группа).Determination of the main clinical signs of the course of the disease and a comparative analysis of the level of the virus in the blood and nasal washings are important characteristics of the pathogenicity / immunogenicity of the ASF virus. Infection was carried out by intramuscular inoculation of a viral suspension at a dose of 10 GAE 50 / head of the attenuated strain ASFV / CV60 / 2020 virus to a group of 7 pigs, and the second group of 7 pigs was infected with virus-containing material of the ASF-8 No. 2 / Odintsovo 02 / 14 "using the same dose of the virus and the method of infection [20]. 2 pig heads were used as control, i.e. remained uninfected (control group).

Далее проводили изучение динамики развития клинических признаков болезни, виремии и вирусовыделения при АЧС путем сравнительного анализа температурных показателей и параметров накопления вируса в крови. С этой целью у подопытных животных проводили измерение ректальной температуры и отбирали пробы крови и назальных смывов с интервалом 2 дня в течение всего эксперимента (32 суток).Further, the dynamics of the development of clinical signs of the disease, viremia and virus shedding in ASF was studied by comparative analysis of temperature indicators and parameters of virus accumulation in the blood. For this purpose, the rectal temperature was measured in the experimental animals and samples of blood and nasal washings were taken with an interval of 2 days during the entire experiment (32 days).

Определение наличия вирусного генома в назальных смывах и крови проводили методом ПЦР в реальном времени в соответствии с инструкцией к тест-системе "АЧС" для выявления вируса африканской чумы свиней методом полимеразной цепной реакции (ФБУН ЦНИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора, г. Москва) [21]. Титр вируса в крови определяли в реакции гемадсорбции согласно Методическим рекомендациям по выделению и титрованию вируса африканской чумы свиней, ФГБУ «ВНИИЗЖ» [22].The presence of the viral genome in nasal washes and blood was determined by real-time PCR in accordance with the instructions for the ASF test system for detecting African swine fever virus by polymerase chain reaction (FBSI Central Research Institute of Epidemiology, Rospotrebnadzor, Moscow) [21]. The titer of the virus in the blood was determined in the hemadsorption reaction according to the Methodological Recommendations for the Isolation and Titration of African Swine Fever Virus, FGBI ARRIAH [22].

Для определения количества инфицированных клеток в крови животных применяли метод окрашивания с использованием ФИТЦ-конъюгата анти-АЧС антител к структурному белку р72 (Ingenaza, Испания). После окрашивания пробы анализировали с помощью проточной цитофлуориметрии.To determine the number of infected cells in the blood of animals, a staining method was used using the FITC conjugate of anti-ASF antibodies to the structural protein p72 (Ingenaza, Spain). After staining, the samples were analyzed using flow cytometry.

Сравнительный анализ основных характеристик вируса АЧС штаммов «АЧС-8 №2/Одинцово 02/14» и «ASFV/CV60/2020» при постановке биопробы приведен в таблице 4.Comparative analysis of the main characteristics of the ASF virus of the strains "ASF-8 No. 2 / Odintsovo 02/14" and "ASFV / CV60 / 2020" when setting up a bioassay is shown in Table 4.

Как видно из результатов, приведенных в таблице 4, максимальная ректальная температура у животных, зараженных вирусом штамма «АЧС-8 №2/Одинцово 02/14» достигала 42°С, а длительность течения болезни составила 7-9 дней, в то время как у свиней, инфицированных вирусом аттенуированного штамма «ASFV/CV60/2020», регистрировали незначительную температурную реакцию при отсутствии других признаков заболевания АЧС у большинства животных.As can be seen from the results shown in Table 4, the maximum rectal temperature in animals infected with the virus strain "AShS-8 No. 2 / Odintsovo 02/14" reached 42 ° C, and the duration of the course of the disease was 7-9 days, while in pigs infected with the attenuated strain ASFV / CV60 / 2020 virus, a slight temperature reaction was recorded in the absence of other signs of ASF disease in most animals.

Сравнительный анализ уровней виремии и вирусовыделения в назальных смывах позволил выявить существенные различия в обоих показателях. Так, титр вируса в крови у свиней, инфицированных вирусом аттенуированного штамма «ASFV/CV60/2020», был ниже в 100 и более раз, а в назальных смывах обнаружен не был, в отличие от животных, зараженных вирусом штамма «АЧС-8 №2/Одинцово 02/14».Comparative analysis of the levels of viremia and virus secretion in nasal washings revealed significant differences in both indicators. Thus, the titer of the virus in the blood of pigs infected with the virus of the attenuated strain "ASFV / CV60 / 2020" was 100 or more times lower, and it was not detected in nasal washings, in contrast to animals infected with the virus of the strain "ASFV-8 No. 2 / Odintsovo 02/14 ".

Таким образом, использование сравнительного анализа биологических свойств различных изолятов и штаммов вируса АЧС с таковыми аттенуированного штамма «ASFV/CV60/2020» с определением основных клинических признаков течения болезни и уровней содержания вируса в крови и назальных смывах позволяет охарактеризовать патогенность и/или иммуногенность вновь выделенных изолятов вируса АЧС.Thus, the use of a comparative analysis of the biological properties of various isolates and strains of the ASF virus with those of the attenuated strain "ASFV / CV60 / 2020" with the determination of the main clinical signs of the course of the disease and the levels of the virus in the blood and nasal washings makes it possible to characterize the pathogenicity and / or immunogenicity of the newly isolated ASF virus isolates.

Пример 5.Example 5.

Для изучения протективных свойств и иммунного ответа у свиней, инфицированных внутримышечно в дозе 10 ГАдЕ50/гол аттенуированным штаммом «ASFV/CV60/2020» вируса АЧС, проводили их контрольное заражение вирулентным вирусом «Arm07» в дозе 1000 ГАдЕ50/гол. Все 7 животных, переживших заражение вирусом «ASFV/CV60/2020» приобрели 100% защиту к заражению гомологичным вирулентным вирусом «Arm07», при гибели всех не иммунных контрольных животных (2 свиньи - контрольная группа). Установлено, что приобретенный иммунитет полностью предохранял свиней от развития клинических признаков, характерных для АЧС, таких, как лихорадка, отказ от корма, покраснение кожи. При этом у привитых животных обнаруживали непродолжительную виремию (не более 7 дней). Выделение вируса с носовыми экскретами не отмечено.To study the protective properties and immune response in pigs infected intramuscularly at a dose of 10 HAU 50 / head with the attenuated ASFV / CV60 / 2020 strain of the ASF virus, they were challenged with the virulent Arm07 virus at a dose of 1000 HAU 50 / head. All 7 animals that survived the infection with the ASFV / CV60 / 2020 virus acquired 100% protection against infection with the homologous virulent virus Arm07, with the death of all non-immune control animals (2 pigs - control group). It was found that the acquired immunity completely protected pigs from the development of clinical signs characteristic of ASF, such as fever, refusal to feed, and skin redness. At the same time, short-term viremia was found in vaccinated animals (no more than 7 days). Nasal excretion of the virus was not observed.

При посмертном вскрытии через 28 суток после контрольного заражения у всех выживших животных отсутствовали патологоанатомические изменения, характерные для АЧС.At postmortem autopsy 28 days after challenge, all surviving animals showed no pathological changes characteristic of ASF.

В это же время у контрольных животных отмечали характерные для АЧС клинические признаки и патологоанатомические изменения, а также высокие значения титра вируса (в крови 7,0-7,5 lg ГАдЕ50/см3 и в носовых смывах 2,0-4,5 lg ГАдЕ50/см3), которые обнаруживали, начиная с 3 д.п.з.At the same time, the control animals showed clinical signs and pathological changes characteristic of ASF, as well as high values of the virus titer (in the blood 7.0-7.5 lg HADE 50 / cm 3 and in nasal washings 2.0-4.5 lg HUDE 50 / cm 3 ), which were detected starting from 3 DPZ.

Источники информации, принятые во внимание при составлении описания изобретения к заявке на выдачу патента РФ на изобретение «Аттенуированный штамм «ASFV760CV/2020» вируса африканской чумы свиней семейства Asfarviridae рода Asfivirus для изучения иммунологических реакций при АЧС, молекулярно-генетического анализа и генетической модификации при создании прототипа вакцины»:Sources of information taken into account in the preparation of the description of the invention for the application for the grant of a patent of the Russian Federation for the invention "Attenuated strain" ASFV760CV / 2020 "of the African swine fever virus of the Asfarviridae family of the genus Asfivirus for studying immunological reactions in ASF, molecular genetic analysis and genetic modification when creating vaccine prototype ":

1. The Federal Service for Veterinary and Phytosanitary Supervision [in Russian], [electronic resource]. - Режим доступа: https://fsvps.gov.ru/fsvps/asf1. The Federal Service for Veterinary and Phytosanitary Supervision [in Russian], [electronic resource]. - Access mode: https://fsvps.gov.ru/fsvps/asf

2. Manso Ribeiro, J.

Figure 00000002
sur la vaccination contre la Peste Porcine Africaine
Figure 00000003
la XXXe Session
Figure 00000004
del'Office International des Epizooties / J. Manso Ribeiro // Bull. Off. Intern. Epiz. - 1962. - Vol.58. - P. 1031-1040.2. Manso Ribeiro, J.
Figure 00000002
sur la vaccination contre la Peste Porcine Africaine
Figure 00000003
la XXXe Session
Figure 00000004
del'Office International des Epizooties / J. Manso Ribeiro // Bull. Off. Intern. Epiz. - 1962. - Vol.58. - P. 1031-1040.

3. Barasona J.A. et al. First oral vaccination of Eurasian wild boar against African swine fever virus genotype II // Frontiers in veterinary science. - 2019. - T. 6.-C. 137.3. Barasona J.A. et al. First oral vaccination of Eurasian wild boar against African swine fever virus genotype II // Frontiers in veterinary science. - 2019. - T. 6.-C. 137.

4. Gallardo C. et al. Attenuated and non-haemadsorbing (non-HAD) genotype II African swine fever virus (ASFV) isolated in Europe, Latvia 2017 // Transboundary and emerging diseases. - 2019. - Т. 66. - №. 3. - C. 1399-1404.4. Gallardo C. et al. Attenuated and non-haemadsorbing (non-HAD) genotype II African swine fever virus (ASFV) isolated in Europe, Latvia 2017 // Transboundary and emerging diseases. - 2019. - T. 66. - No. 3. - C. 1399-1404.

5. In vivo experimental studies of genotype II African swine fever virus (ASFV) isolates currently circulating in two Estonian counties / C. Gallardo [et al.] // Proc. 10th Annu. Meet. EPIZONE, Madrid, Sept. 2016. - P. 81.5. In vivo experimental studies of genotype II African swine fever virus (ASFV) isolates currently circulating in two Estonian counties / C. Gallardo [et al.] // Proc. 10th Annu. Meet. EPIZONE, Madrid, Sept. 2016. - P. 81.

6. Lacasta A. et al. Live attenuated African swine fever viruses as ideal tools to dissect the mechanisms involved in viral pathogenesis and immune protection // Veterinary research. -2015. -T. 46. - №. l. - C. 1-16.6. Lacasta A. et al. Live attenuated African swine fever viruses as ideal tools to dissect the mechanisms involved in viral pathogenesis and immune protection // Veterinary research. -2015. -T. 46. - No. l. - C. 1-16.

7. Monteagudo P.L., Lacasta A., Lopez E., Bosch L., Collado J. BA71ACD2: a New Recombinant Live Attenuated African Swine Fever Virus with Cross Protective Capabilities. Journal of virology. 2017; 91:101 - 109.7. Monteagudo P.L., Lacasta A., Lopez E., Bosch L., Collado J. BA71ACD2: a New Recombinant Live Attenuated African Swine Fever Virus with Cross Protective Capabilities. Journal of virology. 2017; 91: 101 - 109.

8. Leitao A, Cartaxeiro C, Coelho R, Cruz B, Parkhouse RME, Portugal FC, Vigario JD, Martins CLV (2001) The non-hemadsorbing African swine fever virus isolate ASFV/NH/P68 provides a model for defining the protective anti-virus immune response. J Gen Virol 82:513-523.8. Leitao A, Cartaxeiro C, Coelho R, Cruz B, Parkhouse RME, Portugal FC, Vigario JD, Martins CLV (2001) The non-hemadsorbing African swine fever virus isolate ASFV / NH / P68 provides a model for defining the protective anti -virus immune response. J Gen Virol 82: 513-523.

9. Патент РФ 2452511. Аттенуированный штамм вируса африканской чумы свиней II серотипа для разработки диагностических и вакцинных препаратов. Калантаенко Ю.Ф., Жестерев В.И., Балышев В.М., Мищанин В.А. Москва, 2010.9. RF patent 2452511. Attenuated African swine fever virus serotype II for the development of diagnostic and vaccine preparations. Kalantaenko Yu.F., Zhesterev V.I., Balyshev V.M., Mishchanin V.A. Moscow, 2010.

10. Крутько С.А., Малоголовкин А.С., Кольцова Г.С.Делеция гена EP402R отменяет протективность штамма КК-262/С вируса африканской чумы свиней / Ветеринария, 2020, №11, Стр.25-28. DOI:10.30896/0042-4846.2020.23.11.25-28.10. Krutko SA, Malogolovkin AS, Koltsova GS Deletion of the EP402R gene cancels the protection of the KK-262 / C strain of the African swine fever virus / Veterinary, 2020, No. 11, pp. 25-28. DOI: 10.30896 / 0042-4846.2020.23.11.25-28.

11. Патент РФ 2439152. Штамм «Ставрополь 01/08» вируса АЧС для вирусологических, молекулярно - генетических и мониторинговых исследований / Балышев В.М., Колбасов Д.В., Куриннов В.В. [и др.]; Москва, 2012.11. RF patent 2439152. Strain "Stavropol 01/08" of the ASF virus for virological, molecular - genetic and monitoring studies / Balyshev VM, Kolbasov DV, Kurinnov VV. [and etc.]; Moscow, 2012.

12. Прудникова Е.Ю. Особенности репродукции вируса африканской чумы свиней в перевиваемой культуре клеток А4С2 // Ветеринария и кормление. - 2012.- №. 5. - С.43-45.12. Prudnikova E.Yu. Features of the reproduction of African swine fever virus in continuous cell culture A 4 C 2 // Veterinary medicine and feeding. - 2012.- no. 5. - P.43-45.

13. Патент РФ 2575079. Штамм вируса африканской чумы свиней 8-го серотипа, адаптированный к перевиваемой культуре клеток COS-1. Моргунов Ю.П., Моргунов С.Ю., Бурмакина Г. С, Малоголовкин А. С.и др., Москва, 2016.13. RF patent 2575079. African swine fever virus strain of the 8th serotype, adapted to the continuous culture of COS-1 cells. Morgunov Yu.P., Morgunov S.Yu., Burmakina G.S., Malogolovkin A.S. et al., Moscow, 2016.

14. Нефедьева, М.В. Получение рекомбинантного вируса африканской чумы свиней с делецией гена A238L и изучение его ростовых характеристик / М.В. Нефедьева, И. А. Титов, А.С. Малоголовкин // Биотехнология в растениеводстве, животноводстве и сельскохозяйственной микробиологии. XIX-я Всерос.конф. молодых ученых. Сборник тезисов. Москва, 15-16 апреля 2019 г. - ФГБНУ ВНИИСБ. - М., 2019. - С.99-100.14. Nefedieva, M.V. Obtaining a recombinant African swine fever virus with a deletion of the A238L gene and the study of its growth characteristics / M.V. Nefedieva, I.A. Titov, A.S. Malogolovkin // Biotechnology in plant growing, animal husbandry and agricultural microbiology. XIXth All-Russian Conf. young scientists. Collection of abstracts. Moscow, April 15-16, 2019 - FGBNU VNIISB. - M., 2019 .-- S. 99-100.

15. Rodriguez J.M. et al. Genome sequence of African swine fever virus BA71, the virulent parental strain of the nonpathogenic and tissue-culture adapted В A71V //PloS one. - 2015. - T. 10 - https://doi.org/10.1371/journal.pone.014288915. Rodriguez J.M. et al. Genome sequence of African swine fever virus BA71, the virulent parental strain of the nonpathogenic and tissue-culture adapted В A71V // PloS one. - 2015. - T. 10 - https://doi.org/10.1371/journal.pone.0142889

16. Chapman D.A.G. et al. Comparison of the genome sequences of nonpathogenic and pathogenic African swine fever virus isolates // Journal of General Virology. - 2008. - T. 89. - №. 2. - C. 397-408.16. Chapman D.A.G. et al. Comparison of the genome sequences of nonpathogenic and pathogenic African swine fever virus isolates // Journal of General Virology. - 2008. - T. 89. - no. 2. - S. 397-408.

17. Патент РФ 2675535. Штамм «АЧС/ВНИИЗЖ/CV-1» вируса африканской чумы свиней, со сниженной вирулентностью для свиней, для вирусологических, диагностических, молекулярно-генетических и мониторинговых исследований. Власова Н.Н., Жуков И.Ю., Мазлум А., Шарыпова Д.В., Першин А.С, Иголкин А.С., Москва, 2018.17. RF patent 2675535. ASF / ARRIAH / CV-1 strain of African swine fever virus, with reduced virulence for pigs, for virological, diagnostic, molecular genetic and monitoring studies. Vlasova N.N., Zhukov I.Yu., Mazlum A., Sharypova D.V., Pershin A.S, Igolkin A.S., Moscow, 2018.

18. Вишняков И.Ф. и др. Сероиммунологическая классификация природных изолятов вируса африканской чумы свиней // Актуальные вопросы ветеринарной вирусологии. - 1995. - С. 141-143.18. Vishnyakov I.F. Seroimmunological classification of natural isolates of African swine fever virus // Actual problems of veterinary virology. - 1995 .-- S. 141-143.

19. Диагностика африканской чумы свиней. И.Ф. Вишняков, Н.И. Митин, А.Н. Курносов, В.М. Колосов, Ф.А. Бадаев, И.В. Федорищев, В.А. Бурлаков // Материалы научной конференции ВНИИВВиМ. - Покров, 1992. - С.57-70.19. Diagnosis of African swine fever. I.F. Vishnyakov, N.I. Mitin, A.N. Kurnosov, V.M. Kolosov, F.A. Badaev, I. V. Fedorishchev, V.A. Burlakov // Materials of the scientific conference VNIIVViM. - Pokrov, 1992. - S. 57-70.

20. Elsukova А.А., Shevchenko I.V., Varentsova А.А. et al., 2017 Biological properties of African swine fever virus Odintsovo 02/14 isolate and its genome analysis. International Journal of Environmental & Agriculture Research (IJOEAR) ISSN: 2454-1850; 2017 - Vol.:3, Issue.: 10 (October), Page 26-37.20. Elsukova A.A., Shevchenko I.V., Varentsova A.A. et al., 2017 Biological properties of African swine fever virus Odintsovo 02/14 isolate and its genome analysis. International Journal of Environmental & Agriculture Research (IJOEAR) ISSN: 2454-1850; 2017 - Vol.:3, Issue .: 10 (October), Page 26-37.

21. Инструкция по применению тест-системы «АЧС» для выявления вируса африканской чумы свиней методом полимеразной цепной реакции. - ФБУН ЦНИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора, г. Москва. - 2017 г.21. Instructions for the use of the ASF test system for the detection of African swine fever virus by polymerase chain reaction. - FBSI Central Research Institute of Epidemiology of Rospotrebnadzor, Moscow. - 2017

22. Методические рекомендации по выделению и титрованию вируса африканской чумы свиней в культуре клеток костного мозга свиней / А.А. Варенцова [и др.]; ФГБУ «ВНИИЗЖ». - Владимир, 2014. - 17 с.22. Guidelines for the isolation and titration of African swine fever virus in pig bone marrow cell culture / А.А. Varentsova [and others]; FGBI "ARRIAH". - Vladimir, 2014 .-- 17 p.

23. Популяционная структура вируса африканской чумы свиней по признаку количественной гемадсорбции / В.В. Макаров [и др.] // Вопросы вирусологии. - 1991. - Т. 4. - С.321-324.23. Population structure of African swine fever virus based on quantitative hemadsorption / V.V. Makarov [et al.] // Questions of virology. - 1991. - T. 4. - S. 321-324.

Figure 00000005
Figure 00000005

Figure 00000006
Figure 00000006

Figure 00000007
Figure 00000007

Figure 00000008
Figure 00000008

Claims (4)

1. Штамм «ASFV/CV60/2020» вируса африканской чумы свиней II генотипа VIII серотипа семейства Asfarviridae рода Asfivirus, депонированный в Коллекцию штаммов микроорганизмов ФГБУ «ВНИИЗЖ» под регистрационным номером: №334-деп/20-122 - ГКШМ ФГБУ «ВНИИЗЖ», для изучения факторов иммунитета у свиней при создании прототипа вакцины против африканской чумы свиней.1. Strain "ASFV / CV60 / 2020" of African swine fever virus II genotype VIII serotype of the Asfarviridae family of the genus Asfivirus, deposited in the Collection of microorganism strains of the FGBI "ARRIAH" under the registration number: No. 334-dep / 20-122 - GKShM FGBU "ARRIAH" , to study immunity factors in pigs when creating a prototype vaccine against African swine fever. 2. Штамм по п. 1, характеризующийся тем, что он получен в течение 60 серийных пассажей в культуре клеток CV-1, титр накопления вируса составляет 7,5-8,0 lg ГАдЕ50/см3, стабилен при пассировании в культуре клеток CV-1 в течение 15 последовательных пассажей.2. The strain according to claim 1, characterized in that it was obtained during 60 serial passages in a CV-1 cell culture, the titer of virus accumulation is 7.5-8.0 lg HADE 50 / cm 3 , is stable when passaged in cell culture CV-1 for 15 consecutive passages. 3. Штамм по п. 1, характеризующийся тем, что он получен в течение 60 серийных пассажей в культуре клеток CV-1 с остаточной вирулентностью для свиней не более 12,5% при внутримышечном заражении, инфекционная активность составляет 6,5-7,0 lg ГАдЕ50/см3.3. The strain according to claim 1, characterized in that it is obtained within 60 serial passages in a CV-1 cell culture with a residual virulence for pigs of not more than 12.5% with intramuscular infection, the infectious activity is 6.5-7.0 lg HADE 50 / cm 3 . 4. Штамм по п. 1, характеризующийся тем, что он индуцирует в организме свиней образование выявляемых в ТФ ИФА постинфекционных вирусспецифических антител, титр которых достигал значений в диапазоне 4,0-7,0 log2/см3.4. The strain according to claim 1, characterized in that it induces in pigs the formation of post-infectious virus-specific antibodies detected in TF ELISA, the titer of which reached values in the range of 4.0-7.0 log 2 / cm 3 .
RU2021111962A 2021-04-26 2021-04-26 Attenuated asfv/cv60/2020 strain of african swine fever virus of the asfarviridae family, genus asfivirus for the study of immunological reactions, molecular genetic analysis, genetic modification and creation of a prototype vaccine against asf RU2760399C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2021111962A RU2760399C1 (en) 2021-04-26 2021-04-26 Attenuated asfv/cv60/2020 strain of african swine fever virus of the asfarviridae family, genus asfivirus for the study of immunological reactions, molecular genetic analysis, genetic modification and creation of a prototype vaccine against asf

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2021111962A RU2760399C1 (en) 2021-04-26 2021-04-26 Attenuated asfv/cv60/2020 strain of african swine fever virus of the asfarviridae family, genus asfivirus for the study of immunological reactions, molecular genetic analysis, genetic modification and creation of a prototype vaccine against asf

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2760399C1 true RU2760399C1 (en) 2021-11-24

Family

ID=78719354

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2021111962A RU2760399C1 (en) 2021-04-26 2021-04-26 Attenuated asfv/cv60/2020 strain of african swine fever virus of the asfarviridae family, genus asfivirus for the study of immunological reactions, molecular genetic analysis, genetic modification and creation of a prototype vaccine against asf

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2760399C1 (en)

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2675535C1 (en) * 2018-05-15 2018-12-19 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ") Achs/vniizzh/cv-1 strain of african swine fever, with decreased virulence for pigs, for virologic, diagnostic, molecular-genetic and surveillance studies

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2675535C1 (en) * 2018-05-15 2018-12-19 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ") Achs/vniizzh/cv-1 strain of african swine fever, with decreased virulence for pigs, for virologic, diagnostic, molecular-genetic and surveillance studies

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
CHAPMAN D.A.G. et al., Comparison of the genome sequences of nonpathogenic and pathogenic African swine fever virus isolates, Journal of General Virology, 2008, T. 89. - N. 2, c. 397-408. *
GALLARDO C. et al. Attenuated and non-haemadsorbing (non-HAD) genotype II African swine fever virus (ASFV) isolated in Europe, Latvia 2017, Transboundary and emerging diseases, 2019, Т. 66, N 3. - c. 1399-1404. *
RODRIGUEZ J.M. et al., Genome sequence of African swine fever virus BA71, the virulent parental strain of the nonpathogenic and tissue-culture adapted В A71V, PloS one. - 2015. - T. 10, https, doi.org/10.1371/journal.pone.0142889. *
RODRIGUEZ J.M. et al., Genome sequence of African swine fever virus BA71, the virulent parental strain of the nonpathogenic and tissue-culture adapted В A71V, PloS one. - 2015. - T. 10, https, doi.org/10.1371/journal.pone.0142889. CHAPMAN D.A.G. et al., Comparison of the genome sequences of nonpathogenic and pathogenic African swine fever virus isolates, Journal of General Virology, 2008, T. 89. - N. 2, c. 397-408. GALLARDO C. et al. Attenuated and non-haemadsorbing (non-HAD) genotype II African swine fever virus (ASFV) isolated in Europe, Latvia 2017, Transboundary and emerging diseases, 2019, Т. 66, N 3. - c. 1399-1404. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
McKinley et al. Avian coronavirus infectious bronchitis attenuated live vaccines undergo selection of subpopulations and mutations following vaccination
RU2519210C2 (en) Vaccines containing genetic variants of canine parvovirus
Hinze New member of the herpesvirus group isolated from wild cottontail rabbits
Oğuzoğlu et al. A sheeppox virus outbreak in Central Turkey in 2003: isolation and identification of capripoxvirus ovis
RU2675535C1 (en) Achs/vniizzh/cv-1 strain of african swine fever, with decreased virulence for pigs, for virologic, diagnostic, molecular-genetic and surveillance studies
Oluwayelu et al. Isolation and preliminary characterization of chicken anemia virus from chickens in Nigeria
Leifer et al. Characterization of C-strain “Riems” TAV-epitope escape variants obtained through selective antibody pressure in cell culture
RU2760399C1 (en) Attenuated asfv/cv60/2020 strain of african swine fever virus of the asfarviridae family, genus asfivirus for the study of immunological reactions, molecular genetic analysis, genetic modification and creation of a prototype vaccine against asf
Radalj et al. Detection and molecular characterization of equine herpesviruses 1, 2, and 5 in horses in the Republic of Serbia
Yang et al. Biophysical characterization of Japanese encephalitis virus (KV1899) isolated from pigs in Korea
Muhsen et al. Biological properties of bovine viral diarrhea virus quasispecies detected in the RK13 cell line
Hewson et al. The presence of viral subpopulations in an infectious bronchitis virus vaccine with differing pathogenicity–a preliminary study
RU2708335C1 (en) Strain "privolzhsky" of a virus of nodular dermatitis in cattle dermatitis nodularis bovum, a genus capripoxvirus for manufacturing biopreparations for diagnostics and specific prevention of infectious dermatitis of bovine animals
Villarreal Diagnosis of infectious bronchitis: an overview of concepts and tools
Balyshev et al. Seroimmunological affiliation of African swine fever virus isolated in the Russian Federation
Abd Elgowad Khalil et al. Molecular and serological diagnosis of Orf virus from sheep and goats in Minufiya governorate, Egypt
RU2603255C9 (en) Strain a №2155/baikal/2013 of murrain virus aphtae epizooticae type a for control of antigenic and immunogenic activity and to produce biopreparations for diagnostics and specific prevention of murrain type a
RU2607791C1 (en) ATTENUATED STRAIN "MSC-2015 VNIIVViM" OF AFRICAN SWINE FEVER VIRUS SEROTYPE VIII FOR VIROLOGY AND MOLECULAR-GENETIC ANALYSIS
Badasara et al. Replacement of animal model for propagation of classical swine fever challenge virus by adaption in the PK-15 cell line
RU2801949C1 (en) Classical swine fever virus pestivirus strain "ck" for the manufacture of biological products for the specific prevention of classical swine fever
Radalj et al. The detection and phylogenetic analysis of equine herpesviruses 1, 4 and 5 identified in nasal swab samples of asymptomatic horses from Serbia and Bosnia and Herzegovina
RU2722868C1 (en) Antirabic inactivated emulsion culture vaccine for prophylactic immunization of domestic carnivores and farm animals
Fathy et al. Evaluation of bivalent inactivated infectious bronchitis viral vaccine prepared from local isolates
RU2821028C1 (en) Newcastle disease virus "vniizzh g7" strain for production of biopreparations for diagnosis and specific prevention of newcastle disease of birds
Mondal et al. Molecular characterization of a poxvirus isolated from an American flamingo (Phoeniconais ruber rubber)