RU2757114C1 - METHOD FOR OBTAINING A LINE OF HUMANISED MICE, TRANSGENIC BY hACE2 - Google Patents
METHOD FOR OBTAINING A LINE OF HUMANISED MICE, TRANSGENIC BY hACE2 Download PDFInfo
- Publication number
- RU2757114C1 RU2757114C1 RU2020126062A RU2020126062A RU2757114C1 RU 2757114 C1 RU2757114 C1 RU 2757114C1 RU 2020126062 A RU2020126062 A RU 2020126062A RU 2020126062 A RU2020126062 A RU 2020126062A RU 2757114 C1 RU2757114 C1 RU 2757114C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- hace2
- vector
- mice
- expression
- gene
- Prior art date
Links
Images
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01K—ANIMAL HUSBANDRY; CARE OF BIRDS, FISHES, INSECTS; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
- A01K67/00—Rearing or breeding animals, not otherwise provided for; New breeds of animals
- A01K67/027—New breeds of vertebrates
- A01K67/0275—Genetically modified vertebrates, e.g. transgenic
- A01K67/0278—Humanized animals, e.g. knockin
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
- C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
- C12N15/85—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
- C12N15/8509—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells for producing genetically modified animals, e.g. transgenic
Abstract
Description
Область техникиTechnology area
Изобретение относится к областям молекулярных биотехнологии и медицины и касается гуманизированной линии мышей, несущей человеческий ген hACE2. Изобретение может быть использовано для тестирования вакцин против COVID-19, а также для детального изучения механизмов проникновения вируса SARS-CoV-2.The invention relates to the fields of molecular biotechnology and medicine and relates to a humanized mouse strain carrying the human hACE2 gene. The invention can be used for testing vaccines against COVID-19, as well as for a detailed study of the mechanisms of penetration of the SARS-CoV-2 virus.
Работа выполнена при финансовой поддержке Министерства Науки и Высшего образования Российской Федерации в рамках Соглашения №075-15-2019-1661 от 31.10.2019.This work was financially supported by the Ministry of Science and Higher Education of the Russian Federation within the framework of Agreement No. 075-15-2019-1661 of October 31, 2019.
Уровень техникиState of the art
Пандемия COVID-19, вызванная вирусом SARS-CoV-2, началась в конце 2019 года и продолжает уносить жизни, нанося беспрецедентный для последних десятилетий ущерб мировой экономике. Даже если распространение вируса удастся остановить другими методами, риск возникновения новой вспышки будет сохраняться до тех пор, пока не будет создана вакцина против COVID-19.The COVID-19 pandemic caused by the SARS-CoV-2 virus began in late 2019 and continues to claim lives, causing damage to the global economy unprecedented in decades. Even if the spread of the virus can be stopped by other methods, the risk of a new outbreak will remain until the COVID-19 vaccine is developed.
Создание вакцины, однако, осложняется дефицитом адекватных животных моделей для тестирования. Тестирования на приматах подходят только для финальных этапов тестирования: они требуют специальных условий и дороги. Обычные мыши не могут использоваться для тестирования вакцин, поскольку вирус не способен инфицировать клетки мышей дикого типа. Для проникновения в клетки человека SARS-CoV-2 использует поверхностные белки АСЕ2, в норме катализирующие гидролиз ангиотензина II, приводящий к снижению артериального давления. Гомология человеческого и мышиного АСЕ2 недостаточна для проникновения вируса в мышиные клетки. Исходя из этого, можно предположить, что трансгенная мышь, экспрессирующая человеческий АСЕ2, будет адекватной моделью для ранних этапов разработки вакцин против COVID-19.Vaccine development, however, is complicated by the lack of adequate animal models for testing. Testing on primates is only suitable for the final stages of testing: they require special conditions and are expensive. Conventional mice cannot be used to test vaccines because the virus is unable to infect cells from wild-type mice. To penetrate human cells, SARS-CoV-2 uses surface proteins ACE2, which normally catalyze the hydrolysis of angiotensin II, leading to a decrease in blood pressure. The homology of human and murine ACE2 is insufficient for virus penetration into murine cells. Based on this, it can be assumed that a transgenic mouse expressing human ACE2 will be an adequate model for the early stages of the development of vaccines against COVID-19.
Известны трансгенные мыши (Linlin Bao, Wei Deng, Baoying Huang, Hong Gao et al, The Pathogenicity of 2019 Novel Coronavirus in hACE2 Transgenic Mice, Nature, 2020 May 7), конститутивно экспрессирующие hACE2 во всех тканях. Было показано, что вирус SARS-CoV-2 проникает в клетки таких мышей, и у них обнаруживаются симптомы COVID-19, вплоть до интерстициальной пневмонии с летальным исходом. Однако, такие мыши как модель заболевания COVID-19 имеют существенный недостаток: белок АСЕ2 присутствует у людей не во всех типах клеток, и это может в значительной мере определять характер протекания заболевания. В работе не проводилось гистологического исследования тканей кроме легких. Известны также трансгенные мыши (Paul В. МсСгау Jr., Lecia Pewe, Christine Wohlford-Lenane et al, Lethal Infection of K18-hACE2 Mice Infected with Severe Acute Respiratory Syndrome Coronavirus, Journal of Virology, 2007 Jan; 81(2):813-21), в которых экспрессия гена hACE2 находится под контролем промотора К18 (кератин 18), экспрессирующегося на высоком уровне в легкий, эпителии бронхов, а также в печени, поджелудочной железе, предстательной железе, щитовидной железе и кардиомиоцитах. До сих пор не было опубликовано работ по исследованию инфекции SARS-CoV-2 с использованием этой линии мышей, однако, ряд ее недостатков был обнаружен еще во время исследования инфекции SARS-CoV. Во-первых, после заражения вирусом у трансгенных животных наблюдалась 100% летальность, а продолжительность жизни зависела, в основном, от числа встроившихся копий конструкции и составляла несколько дней. Во-вторых, у подопытных животных наблюдалась экспрессия гена hACE2 и, соответственно, воспалительный процесс в головном мозге, что нетипично для инфекции у человека. В-третьих, короткий промежуток времени между инфекцией и смертью делает затруднительным исследование вакцин на данной мышиной модели, так как этого времени может быть недостаточно для активации клеток памяти.Transgenic mice are known (Linlin Bao, Wei Deng, Baoying Huang, Hong Gao et al, The Pathogenicity of 2019 Novel Coronavirus in hACE2 Transgenic Mice, Nature, 2020 May 7), constitutively expressing hACE2 in all tissues. The SARS-CoV-2 virus has been shown to enter the cells of these mice, and they show symptoms of COVID-19, up to fatal interstitial pneumonia. However, such mice as a model of COVID-19 disease have a significant drawback: the ACE2 protein is not present in all types of cells in humans, and this can largely determine the nature of the course of the disease. In the work, no histological examination of tissues other than the lungs was carried out. Transgenic mice are also known (Paul B. McChau Jr., Lecia Pewe, Christine Wohlford-Lenane et al, Lethal Infection of K18-hACE2 Mice Infected with Severe Acute Respiratory Syndrome Coronavirus, Journal of Virology, 2007 Jan; 81 (2): 813 -21), in which the expression of the hACE2 gene is under the control of the K18 promoter (keratin 18), which is expressed at a high level in the lung, bronchial epithelium, as well as in the liver, pancreas, prostate gland, thyroid gland, and cardiomyocytes. Until now, no work has been published on the study of SARS-CoV-2 infection using this strain of mice, however, a number of its drawbacks were discovered during the study of SARS-CoV infection. First, after infection with the virus, 100% lethality was observed in transgenic animals, and the lifespan depended mainly on the number of embedded copies of the construct and was several days. Secondly, the experimental animals showed the expression of the hACE2 gene and, accordingly, the inflammatory process in the brain, which is atypical for infection in humans. Third, the short time interval between infection and death makes it difficult to study vaccines in this mouse model, since this time may not be enough to activate memory cells.
Кроме того, к недостаткам всех моделей с конститутивной экспрессией гена hACE2 можно отнести его экспрессию на этапе эмбрионального развития, что может приводить к непредсказуемым последствиям. Преимуществом животных с индуцируемой экспрессией гена КАСЕ2 также является их лучший профиль безопасности по сравнению с животными с конститутивной экспрессией: до проведения индукции животные не могут быть носителями вируса и не требуют особых условий содержания.In addition, the disadvantages of all models with constitutive expression of the hACE2 gene include its expression at the stage of embryonic development, which can lead to unpredictable consequences. The advantage of animals with inducible expression of the KACE2 gene is also their better safety profile compared to animals with constitutive expression: before induction, animals cannot be carriers of the virus and do not require special housing conditions.
Раскрытие сущности изобретенияDisclosure of the essence of the invention
В данном изобретении индуцируемая экспрессия гена hACE2 обеспечивается использованием вектора NIF. Вектор NIF предназначен для случайного встраивания экспрессионной кассеты в геном животного. Он обладает рядом элементов для обеспечения эффективной экспрессии трансгена. Димер инсулятора HS4 обеспечивает независимость экспрессии трансгена от состояния хроматина в месте встраивания, препятствуя распространению репрессивного хроматина на встроившуюся конструкцию. Вектор также содержит эффективные терминаторы транскрипции, присутствие которых увеличивает уровень экспрессии трансгена, предотвращая подавление экспрессии путем РНК-интерференции (RU 2525712 C2). Наиболее важной для нас, однако, составной частью вектора NIF является STOP-кассета, фланкированная LoxP-сайтами, расположенная между конститутивным С AG-промотором и открытой рамкой считывания гена hACE2. Наличие STOP-кассеты делает экспрессию трансгена невозможной. STOP-кассета, однако, может быть удалена благодаря Cre-рекомбинации. Система LoxP/Cre-рекомбиназа происходит из бактериофага Р1. Последовательность ДНК, расположенная между двумя LoxP сайтами, может быть удалена при появлении в клетке белка Cre-рекомбиназы. Существуют линии трансгенных мышей, в клетках которых может происходить доксициклин-зависимая экспрессия Cre-рекомбиназы. Экспрессия Cre-рекомбиназы может происходить как во всех тканях организма, так и носить благодаря специфическим промоторам тканеспецифичный характер. После скрещивания трансгенных мышей, трансгенез которых осуществлялся с использованием вектора NIF, с трансгенными мышами, экспрессирующими Cre-рекомбиназу, возможна активация экспрессии трансгена, содержащегося в векторе NIF во всем организме или тканеспецифично путем доксициклиновой активации экспрессии Cre-рекомбиназы..In the present invention, the inducible expression of the hACE2 gene is provided using the NIF vector. The NIF vector is designed to randomly insert an expression cassette into the genome of an animal. It possesses a number of elements to ensure efficient expression of the transgene. The insulator dimer HS4 ensures the independence of transgene expression from the chromatin state at the insertion site, preventing the spread of repressive chromatin to the inserted construct. The vector also contains effective transcription terminators, the presence of which increases the level of transgene expression, preventing suppression of expression by RNA interference (RU 2525712 C2). However, the most important component of the NIF vector for us is the STOP cassette flanked by LoxP sites located between the constitutive C AG promoter and the open reading frame of the hACE2 gene. The presence of a STOP cassette makes the expression of the transgene impossible. The STOP cassette, however, can be removed due to Cre recombination. The LoxP / Cre recombinase system is derived from the P1 bacteriophage. The DNA sequence located between the two LoxP sites can be deleted when the Cre recombinase protein appears in the cell. There are lines of transgenic mice in whose cells doxycycline-dependent expression of Cre recombinase can occur. Expression of Cre-recombinase can occur both in all tissues of the body and be tissue-specific due to specific promoters. After crossing transgenic mice, transgenesis of which was carried out using the NIF vector, with transgenic mice expressing Cre recombinase, it is possible to activate the expression of the transgene contained in the NIF vector in the whole body or tissue-specific by doxycycline activation of Cre recombinase expression.
Задачей заявляемого изобретения является создание линии генетически модифицированных мышей, содержащих в своем геноме ген hACE2 в составе вектора NIF, позволяющего активировать экспрессию трансгена с помощью Cre-рекомбиназы.The objective of the claimed invention is to create a line of genetically modified mice containing in their genome the hACE2 gene as part of the NIF vector, allowing to activate the expression of the transgene using Cre-recombinase.
Задача решается тем, что получена новая линия генетически модифицированных мышей, содержащих в геноме конструкцию NIF-hACE2, для чего:The problem is solved by the fact that a new line of genetically modified mice has been obtained containing the NIF-hACE2 construct in the genome, for which:
1. Был получен линеаризованный вектор NIF, характеризующийся размером 11000 пар нуклеотидов, и способностью активировать экспрессию трансгена в ответ на воздействие Cre-рекомбиназы, в который по сайтам узнавания эндонуклеаз рестрикции BshTI - MluI вставлен фрагмент размером 2418 пары нуклеотидов SEQ ID NO: 1, содержащий полноразмерную кДНК hACE2.1. A linearized NIF vector was obtained, characterized by a size of 11000 base pairs, and the ability to activate the expression of a transgene in response to the action of Cre-recombinase, into which a fragment of 2418 base pairs of SEQ ID NO: 1 containing full length hACE2 cDNA.
2. Был разработан способ получения линеаризованного вектора NIF, характеризующийся следующими стадиями:2. Was developed a method for obtaining a linearized vector NIF, characterized by the following stages:
а) Клонирование открытой рамки считывания гена МСЕ2 в плазмиду NIF по сайтам рестрикции MluI и BshTIa) Cloning the open reading frame of the MCE2 gene into the NIF plasmid at the MluI and BshTI restriction sites
б) Получение линеаризованного вектора NIF из кольцевой плазмиды путем рестрикции эндонуклеазой PvuI с удалением части бактериального остова длиной 1000 пар нуклеотидов.b) Obtaining a linearized NIF vector from a circular plasmid by restriction with endonuclease PvuI with removal of a part of the
3. Способ получения линии мышей, трансгенных по hACE2, характеризующийся следующими стадиями:3. A method of obtaining a line of mice transgenic for hACE2, characterized by the following stages:
а) микроинъекция линеаризованного вектора NIF из п. 1 в пронуклеус оплодотворенной яйцеклетки мыши гибрида F1(CBA×C57BL/6);a) microinjection of the linearized NIF vector from item 1 into the pronucleus of a fertilized egg of a mouse hybrid F 1 (CBA × C57BL / 6);
б) выявление жизнеспособных зигот;b) identification of viable zygotes;
в) пересадка выживших зигот из пункта (б) псевдобеременным самкам-реципиентам, имеющим копулятивную пробку после ссаживания с вазэктомированными самцами;c) transplantation of surviving zygotes from point (b) to pseudopregnant female recipients with a copulative plug after transplantation with vasectomized males;
г) получение новорожденных мышей на 19 день после пересадки зигот из пункта (в);d) obtaining newborn mice on day 19 after transplantation of zygotes from point (c);
д) проведение анализа наличия вектора NIF по п. 1 через 8-14 дней после рождения мышей (г), используя последовательности SEQ ID NO: 2 и SEQ ID NO: 3;e) analyzing the presence of the NIF vector according to claim 1 8-14 days after birth of mice (d) using the sequences SEQ ID NO: 2 and SEQ ID NO: 3;
е) отбор мышей, несущих вектор NIF по п. 1;e) selecting mice carrying the NIF vector according to claim 1;
ж) проведение скрещивания мышей из пункта (е) с мышами дикого типа для получения гетерозигот, несущих вектор NIF, содержащий трансген.g) crossing mice from point (e) with wild-type mice to obtain heterozygotes carrying the NIF vector containing the transgene.
з) проведение скрещивания гетерозиготных мышей из пункта (ж) для получения гомозиготных мышей и итоговой линии мышей, трансгенных по гену hACE2.h) crossing heterozygous mice from point (g) to obtain homozygous mice and the final line of mice transgenic for the hACE2 gene.
Технический результат изобретения: разработан способ получения линии трансгенных мышей, экспрессирующих ген hACE2 после воздействия Cre-рекомбиназы.EFFECT: developed a method for producing a line of transgenic mice expressing the hACE2 gene after exposure to Cre-recombinase.
Изобретение иллюстрируется фигурой и перечнем использованных последовательностей.The invention is illustrated in the figure and sequence listing.
Краткое описание чертежейBrief Description of Drawings
На фигуре представлена схема вектора NIF. Перед сайтом, предназначенным для клонирования гена интереса, расположена STOP-кассета, фланкированная LoxP-сайтами. До рекомбинации ген находится в выключенном состоянии. Тканеспецифичная активация Cre-рекомбиназы позволяет тканеспецифично активировать экспрессию целевого гена.The figure shows a diagram of a NIF vector. In front of the site for cloning the gene of interest, there is a STOP cassette flanked by LoxP sites. Before recombination, the gene is turned off. Tissue-specific activation of Cre-recombinase allows tissue-specific activation of the expression of the target gene.
Осуществление изобретенияImplementation of the invention
Способ осуществляется следующим образом:The method is carried out as follows:
1. Получение генетических конструкций. кДНК гена hACE2 получали на основе суммарной мРНК, полученной из материала биопсии почки человека, гомогенизированной на гомогенизаторе Precellys 24 и выделенной набором QIAGEN RNeasy Mini Kit.. Обратную транскрипцию осуществляли с использованием обратной транскриптазы Superscript II (Invitrogen) и неспецифического праймера d(T)i6 (SEQ ID NO: 4). Предварительную амплификацию кодирующей последовательности hACE2 осуществляли с использованием праймеров hACE_5_fwd (SEQ ID NO: 5) и hACE_3_rev (SEQ ID NO: 6) ДНК полимеразой Q5 (NEB). Амплификацию гена hACE2 осуществляли с использованием праймеров hACE2-F-BshTI (SEQ ID NO: 7) и hACE2-R-MluI (SEQ ID N0:8) и полимеразы Phire (Thermofisher Scientific). Амплифицированный фрагмент подвергали разрезанию эндонуклеазами рестрикции MluI-FD и BshTI-FD (Thermofisher Scientific) и лигировали в вектор, обработанный теми же рестриктазами. Лигазную смесь трансформировали в компетентные клетки DH5a, колонии скринировали, наращивали в ночной культуре, плазмидную ДНК из них выделяли и проверяли с помощью рестриктного анализа. Два образца секвенировали и проверяли, полностью ли последовательность соответствует предсказанной (SEQ ID NO: 1). Одну полностью проверенную плазмиду линеаризовали с использованием эндонуклеазы рестрикции PvuI, очищали в агарозном геле и выделяли с помощью набора QIAquick Gel Extraction Kit (Qiagen), и разводили до концентрации используемой при микроинъекциях - 1нг/мкл.1. Obtaining genetic constructs. cDNA of the hACE2 gene was obtained on the basis of total mRNA obtained from human kidney biopsy material homogenized on a Precellys 24 homogenizer and isolated with the QIAGEN RNeasy Mini Kit .. Reverse transcription was performed using Superscript II reverse transcriptase (Invitrogen) and d (T) i6 primer (SEQ ID NO: 4). Pre-amplification of the hACE2 coding sequence was performed using the primers hACE_5_fwd (SEQ ID NO: 5) and hACE_3_rev (SEQ ID NO: 6) with DNA polymerase Q5 (NEB). The hACE2 gene was amplified using the hACE2-F-BshTI (SEQ ID NO: 7) and hACE2-R-MluI (SEQ ID NO: 8) primers and Phire polymerase (Thermofisher Scientific). The amplified fragment was cut with restriction endonucleases MluI-FD and BshTI-FD (Thermofisher Scientific) and ligated into a vector treated with the same restriction enzymes. The ligation mixture was transformed into competent DH5a cells, colonies were screened, grown in overnight culture, plasmid DNA was isolated from them and checked by restriction analysis. Two samples were sequenced and checked if the sequence was exactly as predicted (SEQ ID NO: 1). One fully tested plasmid was linearized using restriction endonuclease PvuI, purified in agarose gel and isolated using a QIAquick Gel Extraction Kit (Qiagen), and diluted to a microinjection concentration of 1ng / μL.
2. Получение яйцеклеток мышей. Яйцеклетки для микроинъекции получали методом индукции суперовуляции. Для этого неполовозрелым самкам гибридам Fi(CBA×C57BL/6) весом 12-13 г внутрибрюшинно вводили 8 ед. гонадотропина сыворотки жеребых кобыл (ГСЖК) и через 48 час - 8 ед. хорионического гонадотропина человека (ХгЧ). После такой обработки самок ссаживали с самцами-производителями Fi(CBA×C57BL/6). Факт спаривания констатировали на следующее утро по наличию копулятивной пробки.2. Obtaining mouse eggs. Eggs for microinjection were obtained by the method of induction of superovulation. For this, immature females F i hybrids (CBA × C57BL / 6) weighing 12-13 g were injected intraperitoneally with 8 units. gonadotropin of the serum of pregnant mares (PMSG) and after 48 hours - 8 units. human chorionic gonadotropin (HCG). After this treatment, the females were bred with male F i (CBA x C57BL / 6). The fact of mating was ascertained the next morning by the presence of a copulatory plug.
Схема индукции суперовуляции: 12:00 - ГСЖК, через 48 часов - ХгЧ. В 17:00 этого же дня - подсадка к самцам-производителям. Отбор доноров производили на следующий день в 9:00. Световой режим в виварии был установлен с 7:00 до 19:00.Superovulation induction scheme: 12:00 - PMSG, after 48 hours - HCG. At 17:00 on the same day - replanting to sire males. Donors were selected the next day at 9:00. The light regime in the vivarium was set from 7:00 to 19:00.
Отобранных самок-доноров умерщвляли, извлекали яйцеводы, затем вымывали яйцеклетки в среде HEPES-KSOM с добавлением гиалуронидазы. Процедуру проводили под бинокуляром (Zeiss Stemi DV4) с увеличением в 32 раза. Для вымывания яйцеклеток использовали стеклянные капилляры с внутренним диаметром примерно 100 мкм, изготовленные на пуллере Narishige PC-10 (Япония) и микрокузнице Narishige MF-900 (Япония).The selected donor females were sacrificed, the oviducts were removed, then the oocytes were washed out in HEPES-KSOM medium supplemented with hyaluronidase. The procedure was performed under a binocular microscope (Zeiss Stemi DV4) with a 32-fold magnification. To wash out the eggs, glass capillaries with an inner diameter of about 100 μm were used, made on a Narishige PC-10 puller (Japan) and a Narishige MF-900 micro forge (Japan).
3. Микроинъекции. Полученные зиготы культивировали в течение двух часов при t=37°C и 5% СО2 в капле среды KSOM под минеральным маслом (Sigma, США), затем помещали в микроинъекционную камеру. Микроинъекции проводили в среде HEPES-KSOM под микроскопом Zeiss Axiovert 200М при увеличении в 400-600 раз, используя микроманипуляторы Narishige. Для изготовления игл для микроинъекций использовали пуллер Sutter instrument Со Р-97 (США), для изготовления удерживающей пипетки использовали пуллер Narishige PC-10 и микрокузницу Narishige MF-900.3. Microinjection. The resulting zygotes were cultured for two hours at t = 37 ° C and 5% CO 2 in a drop of KSOM medium under mineral oil (Sigma, USA), then placed in a microinjection chamber. Microinjections were performed in a HEPES-KSOM medium under a Zeiss Axiovert 200M microscope at a magnification of 400-600 times using Narishige micromanipulators. A Sutter instrument Co P-97 (USA) puller was used for the manufacture of microinjection needles; a Narishige PC-10 puller and a Narishige MF-900 micro forge were used for the manufacture of a holding pipette.
После окончания микроинъекций выжившие зиготы переносили в каплю среды KSOM под минеральное масло (Sigma) и культивировали в течение 1 часа для выявления жизнеспособных эмбрионов.After the end of microinjections, the surviving zygotes were transferred into a drop of KSOM medium under mineral oil (Sigma) and cultured for 1 hour to identify viable embryos.
4. Получение самок-реципиентов. Самок-реципиентов яйцеклеток получали следующим образом: половозрелых самок F1(CBA×C57BL/6) весом не менее 24 г ссаживали с вазэктомированными самцами той же линии. Через 18 часов псевдобеременных реципиентов отбирали по наличию копулятивных пробок. Выжившие после микроинъекции зиготы трансплантировали в яйцеводы псевдобеременной самки. Одной псевдобеременной самке пересаживали 6-10 эмбрионов. Операцию проводили под наркозом (смесь золетила и рометара, вводился внутрибрюшинно).4. Getting female recipients. Female recipient oocytes prepared as follows: adult female F 1 (CBA × C57BL / 6) weighing at least 24 g vazektomirovannymi chafing with males of the same line. After 18 hours, pseudopregnant recipients were selected for the presence of copulatory plugs. The zygotes that survived after microinjection were transplanted into the oviducts of a pseudopregnant female. 6-10 embryos were transferred to one pseudopregnant female. The operation was performed under general anesthesia (a mixture of zoletil and rometar was administered intraperitoneally).
5. Операция вазэктомирования. Операцию вазэктомирования проводили заранее под наркозом (смесь золетила и рометара, вводился внутрибрюшинно). Через надрез в коже и брюшной стенке вытягивали из брюшной полости семенник, придатки семенника и семявыносящий проток, после чего раскаленным пинцетом разрушали семявыносящий проток. Органы возвращали в брюшную полость, и повторяли всю процедуру на другом семявыносящем протоке. На завершающем этапе на брюшную стенку и на кожу накладывали швы с последующей антисептической обработкой операционного поля.5. Operation of vasectomy. The vasectomy operation was performed in advance under general anesthesia (a mixture of zoletil and rometar was injected intraperitoneally). Through an incision in the skin and abdominal wall, the testis, epididymis and vas deferens were pulled out of the abdominal cavity, after which the vas deferens was destroyed with red-hot forceps. The organs were returned to the abdominal cavity, and the entire procedure was repeated on the other vas deferens. At the final stage, sutures were applied to the abdominal wall and the skin, followed by antiseptic treatment of the operating field.
6. Получение новорожденных мышей. На 19 день после пересадки микроинъецированных эмбрионов реципиента умерщвляли путем цервикальной дислокации и проводили кесарево сечение, после чего выживших детенышей помещали к заранее подготовленной кормилице. Через 8-14 дней после рождения у мышат брали образец ткани, выделяли ДНК и анализировали наличие трансгена методом ПЦР.6. Obtaining newborn mice. On day 19 after the transfer of microinjected embryos, the recipient was sacrificed by cervical dislocation and a caesarean section was performed, after which the surviving pups were placed in a pre-prepared nurse. 8-14 days after birth, a tissue sample was taken from the mice, DNA was isolated, and the presence of the transgene was analyzed by PCR.
7. Анализ наличия трансгена в геноме мышей методом ПЦР. ДНК для ПЦР выделяли из тканей по стандартному протоколу. Амплификацию фрагментов ДНК проводили с помощью набора GenPak™ PCR Core (Isogene) в присутствии 10 пМ праймеров hACE-screen-forv (SEQ ID N0:2) и hACE-screen-rev (SEQ ID NO: 3) в следующих режимах: денатурация 95°С - 3 мин; далее следовало 35 циклов: 95°С - 40 сек, 58°С - 40 сек; 72°С - 40 сек; и последний синтез 72°С - 2 мин. Кроме того, проводили ПЦР с парой праймеров к STOP-кассете (StopC rt F, SEQ ID NO: 9 и StopC rt R, SEQ ID NO: 10) для повышения надежности результата.7. Analysis of the presence of a transgene in the genome of mice by PCR. DNA for PCR was isolated from tissues according to a standard protocol. Amplification of DNA fragments was performed using the GenPak ™ PCR Core kit (Isogene) in the presence of 10 pM hACE-screen-forv (SEQ ID NO: 2) and hACE-screen-rev (SEQ ID NO: 3) primers in the following modes: denaturation 95 ° С - 3 min; then 35 cycles followed: 95 ° С - 40 sec, 58 ° С - 40 sec; 72 ° С - 40 sec; and the last synthesis 72 ° C - 2 min. In addition, PCR was performed with a pair of primers to the STOP cassette (StopC rt F, SEQ ID NO: 9 and StopC rt R, SEQ ID NO: 10) to improve the reliability of the result.
Перечень последовательностейSequence listing
<110> Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт<110> Federal State Budgetary Institution of Science Institute
биологии гена Российской академии наук (Institute of Gene Biologygene biology of the Russian Academy of Sciences (Institute of Gene Biology
Russian Academy of Sciences)Russian Academy of Sciences)
<120> Способ получения линии гуманизированных мышей, трансгенных по hACE2 <120> Method for obtaining a humanized mouse strain, transgenic for hACE2
<160> 10<160> 10
<210> 1<210> 1
<211> 2418<211> 2418
<212> последовательность гена hACE2 ДНК<212> hACE2 DNA gene sequence
<213> H.sapiens<213> H.sapiens
<400> 1<400> 1
atg tca agc tct tcc tgg ctc ctt ctc agc ctt gtt gct gta act gct gct cag tcc acc 60atg tca agc tct tcc tgg ctc ctt ctc agc ctt gtt gct gta act gct gct cag tcc acc 60
att gag gaa cag gcc aag aca ttt ttg gac aag ttt aac cac gaa gcc gaa gac ctg ttc 120att gag gaa cag gcc aag aca ttt ttg gac aag ttt aac cac gaa gcc gaa gac ctg ttc 120
tat caa agt tca ctt gct tct tgg aat tat aac acc aat att act gaa gag aat gtc caa 180tat caa agt tca ctt gct tct tgg aat tat aac acc aat att act gaa gag aat gtc caa 180
aac atg aat aat gct ggg gac aaa tgg tct gcc ttt tta aag gaa cag tcc aca ctt gcc 240aac atg aat aat gct ggg gac aaa tgg tct gcc ttt tta aag gaa cag tcc aca ctt gcc 240
caa atg tat cca cta caa gaa att cag aat ctc aca gtc aag ctt cag ctg cag gct ctt 300caa atg tat cca cta caa gaa att cag aat ctc aca gtc aag ctt cag ctg cag gct ctt 300
cag caa aat ggg tct tca gtg ctc tca gaa gac aag agc aaa cgg ttg aac aca att cta 360cag caa aat ggg tct tca gtg ctc tca gaa gac aag agc aaa cgg ttg aac aca att cta 360
aat aca atg agc acc atc tac agt act gga aaa gtt tgt aac cca gat aat cca caa gaa 420aat aca atg agc acc atc tac agt act gga aaa gtt tgt aac cca gat aat cca caa gaa 420
tgc tta tta ctt gaa cca ggt ttg aat gaa ata atg gca aac agt tta gac tac aat gag 480tgc tta tta ctt gaa cca ggt ttg aat gaa ata atg gca aac agt tta gac tac aat gag 480
agg ctc tgg gct tgg gaa agc tgg aga tct gag gtc ggc aag cag ctg agg cca tta tat 540agg ctc tgg gct tgg gaa agc tgg aga tct gag gtc ggc aag cag ctg agg cca tta tat 540
gaa gag tat gtg gtc ttg aaa aat gag atg gca aga gca aat cat tat gag gac tat ggg 600gaa gag tat gtg gtc ttg aaa aat gag atg gca aga gca aat cat tat gag gac tat ggg 600
gat tat tgg aga gga gac tat gaa gta aat ggg gta gat ggc tat gac tac agc cgc ggc 660gat tat tgg aga gga gac tat gaa gta aat ggg gta gat ggc tat gac tac agc cgc ggc 660
cag ttg att gaa gat gtg gaa cat acc ttt gaa gag att aaa cca tta tat gaa cat ctt 720cag ttg att gaa gat gtg gaa cat acc ttt gaa gag att aaa cca tta tat gaa cat ctt 720
cat gcc tat gtg agg gca aag ttg atg aat gcc tat cct tcc tat atc agt cca att gga 780cat gcc tat gtg agg gca aag ttg atg aat gcc tat cct tcc tat atc agt cca att gga 780
tgc ctc cct gct cat ttg ctt ggt gat atg tgg ggt aga ttt tgg aca aat ctg tac tct 840tgc ctc cct gct cat ttg ctt ggt gat atg tgg ggt aga ttt tgg aca aat ctg tac tct 840
ttg aca gtt ccc ttt gga cag aaa cca aac ata gat gtt act gat gca atg gtg gac cag 900ttg aca gtt ccc ttt gga cag aaa cca aac ata gat gtt act gat gca atg gtg gac cag 900
gcc tgg gat gca cag aga ata ttc aag gag gcc gag aag ttc ttt gta tct gtt ggt ctt 960gcc tgg gat gca cag aga ata ttc aag gag gcc gag aag ttc ttt gta tct gtt ggt ctt 960
cct aat atg act caa gga ttc tgg gaa aat tcc atg cta acg gac cca gga aat gtt cag 1020cct aat atg act caa gga ttc tgg gaa aat tcc atg cta acg gac cca gga aat gtt cag 1020
aaa gca gtc tgc cat ccc aca gct tgg gac ctg ggg aag ggc gac ttc agg atc ctt atg 1080aaa gca gtc tgc cat ccc aca gct tgg gac ctg ggg aag ggc gac ttc agg atc ctt atg 1080
tgc aca aag gtg aca atg gac gac ttc ctg aca gct cat cat gag atg ggg cat atc cag 1140tgc aca aag gtg aca atg gac gac ttc ctg aca gct cat cat gag atg ggg cat atc cag 1140
tat gat atg gca tat gct gca caa cct ttt ctg cta aga aat gga gct aat gaa gga ttc 1200tat gat atg gca tat gct gca caa cct ttt ctg cta aga aat gga gct aat gaa gga ttc 1200
cat gaa gct gtt ggg gaa atc atg tca ctt tct gca gcc aca cct aag cat tta aaa tcc 1260cat gaa gct gtt ggg gaa atc atg tca ctt tct gca gcc aca cct aag cat tta aaa tcc 1260
att ggt ctt ctg tca ccc gat ttt caa gaa gac aat gaa aca gaa ata aac ttc ctg ctc 1320att ggt ctt ctg tca ccc gat ttt caa gaa gac aat gaa aca gaa ata aac ttc ctg ctc 1320
aaa caa gca ctc acg att gtt ggg act ctg cca ttt act tac atg tta gag aag tgg agg 1380aaa caa gca ctc acg att gtt ggg act ctg cca ttt act tac atg tta gag aag tgg agg 1380
tgg atg gtc ttt aaa ggg gaa att ccc aaa gac cag tgg atg aaa aag tgg tgg gag atg 1440tgg atg gtc ttt aaa ggg gaa att ccc aaa gac cag tgg atg aaa aag tgg tgg gag atg 1440
aag cga gag ata gtt ggg gtg gtg gaa cct gtg ccc cat gat gaa aca tac tgt gac ccc 1500aag cga gag ata gtt ggg gtg gtg gaa cct gtg ccc cat gat gaa aca tac tgt gac ccc 1500
gca tct ctg ttc cat gtt tct aat gat tac tca ttc att cga tat tac aca agg acc ctt 1560gca tct ctg ttc cat gtt tct aat gat tac tca ttc att cga tat tac aca agg acc ctt 1560
tac caa ttc cag ttt caa gaa gca ctt tgt caa gca gct aaa cat gaa ggc cct ctg cac 1620tac caa ttc cag ttt caa gaa gca ctt tgt caa gca gct aaa cat gaa ggc cct ctg cac 1620
aaa tgt gac atc tca aac tct aca gaa gct gga cag aaa ctg ttc aat atg ctg agg ctt 1680aaa tgt gac atc tca aac tct aca gaa gct gga cag aaa ctg ttc aat atg ctg agg ctt 1680
gga aaa tca gaa ccc tgg acc cta gca ttg gaa aat gtt gta gga gca aag aac atg aat 1740gga aaa tca gaa ccc tgg acc cta gca ttg gaa aat gtt gta gga gca aag aac atg aat 1740
gta agg cca ctg ctc aac tac ttt gag ccc tta ttt acc tgg ctg aaa gac cag aac aag 1800gta agg cca ctg ctc aac tac ttt gag ccc tta ttt acc tgg ctg aaa gac cag aac aag 1800
aat tct ttt gtg gga tgg agt acc gac tgg agt cca tat gca gac caa agc atc aaa gtg 1860aat tct ttt gtg gga tgg agt acc gac tgg agt cca tat gca gac caa agc atc aaa gtg 1860
agg ata agc cta aaa tca gct ctt gga gat aaa gca tat gaa tgg aac gac aat gaa atg 1920agg ata agc cta aaa tca gct ctt gga gat aaa gca tat gaa tgg aac gac aat gaa atg 1920
tac ctg ttc cga tca tct gtt gca tat gct atg agg cag tac ttt tta aaa gta aaa aat 1980tac ctg ttc cga tca tct gtt gca tat gct atg agg cag tac ttt tta aaa gta aaa aat 1980
cag atg att ctt ttt ggg gag gag gat gtg cga gtg gct aat ttg aaa cca aga atc tcc 2040cag atg att ctt ttt ggg gag gag gat gtg cga gtg gct aat ttg aaa cca aga atc tcc 2040
ttt aat ttc ttt gtc act gca cct aaa aat gtg tct gat atc att cct aga act gaa gtt 2100ttt aat ttc ttt gtc act gca cct aaa aat gtg tct gat atc att cct aga act gaa gtt 2100
gaa aag gcc atc agg atg tcc cgg agc cgt atc aat gat gct ttc cgt ctg aat gac aac 2160gaa aag gcc atc agg atg tcc cgg agc cgt atc aat gat gct ttc cgt ctg aat gac aac 2160
agc cta gag ttt ctg ggg ata cag cca aca ctt gga cct cct aac cag ccc cct gtt tcc 2220agc cta gag ttt ctg ggg ata cag cca aca ctt gga cct cct aac cag ccc cct gtt tcc 2220
ata tgg ctg att gtt ttt gga gtt gtg atg gga gtg ata gtg gtt ggc att gtc atc ctg 2280ata tgg ctg att gtt ttt gga gtt gtg atg gga gtg ata gtg gtt ggc att gtc atc ctg 2280
atc ttc act ggg atc aga gat cgg aag aag aaa aat aaa gca aga agt gga gaa aat cct 2340atc ttc act ggg atc aga gat cgg aag aag aaa aat aaa gca aga agt gga gaa aat cct 2340
tat gcc tcc atc gat att agc aaa gga gaa aat aat cca gga ttc caa aac act gat gat 2400tat gcc tcc atc gat att agc aaa gga gaa aat aat cca gga ttc caa aac act gat gat 2400
gtt cag acc tcc ttt tag 2418gtt cag acc tcc ttt tag 2418
<210> 2<210> 2
<211> 19<211> 19
<212> ДНК<212> DNA
<213> artifficial sequence<213> artifficial sequence
<220> прямой праймер<220> direct primer
<223> hACE-screen-forv праймер для поиска трансгенных мышей<223> hACE-screen-forv primer for finding transgenic mice
<400> 2<400> 2
ctggacccta gcattggaa 19ctggacccta gcattggaa 19
<210> 3<210> 3
<211> 20<211> 20
<212> ДНК<212> DNA
<213> artifficial sequence<213> artifficial sequence
<220> обратный праймер<220> reverse primer
<223> hACE-screen-rev праймер для поиска трансгенных мышей<223> hACE-screen-rev primer for finding transgenic mice
<400> 3<400> 3
gaaacagggg gctggttagg 20gaaacagggg gctggttagg 20
<210> 4<210> 4
<211> 22<211> 22
<212> ДНК<212> DNA
<213> artifficial sequence<213> artifficial sequence
<220> обратный праймер<220> reverse primer
<223> d(T)16 праймер для синтеза кДНК гена hACE2 методом обратной<223> d (T) 16 primer for the synthesis of cDNA of the hACE2 gene by the method of reverse
транскрипцииtranscriptions
<400> 4<400> 4
tttttttttt tttttt 16tttttttttt tttttt 16
<210> 5<210> 5
<211> 27<211> 27
<212> ДНК<212> DNA
<213> artifficial sequence<213> artifficial sequence
<220> прямой праймер<220> direct primer
<223> hACE_5_fwd праймер для предварительной амплификации открытой рамки<223> hACE_5_fwd primer for open frame preamplification
считывания гена hACE2hACE2 gene read
<400> 5<400> 5
agtctaggga aagtcattca gtggatg 27agtctaggga aagtcattca gtggatg 27
<210> 6<210> 6
<211> 25<211> 25
<212> ДНК<212> DNA
<213> artifficial sequence<213> artifficial sequence
<220> обратный праймер<220> reverse primer
<223> hACE_3_rev праймер для предварительной амплификации открытой рамки<223> hACE_3_rev primer for open frame preamplification
считывания гена hACE2hACE2 gene read
<400> 6<400> 6
aatgaagatg ctctctcctt ggcca 25aatgaagatg ctctctcctt ggcca 25
<210> 7<210> 7
<211> 29<211> 29
<212> ДНК<212> DNA
<213> artifficial sequence<213> artifficial sequence
<220> прямой праймер<220> direct primer
<223> hACE2-F-BshTI праймер для амплификации открытой рамки считывания<223> hACE2-F-BshTI open reading frame amplification primer
гена hACE2 и внесения рестриктного сайта BshTI для переноса в вектор NIFthe hACE2 gene and the introduction of the BshTI restriction site for transfer into the NIF vector
<400> 7<400> 7
attaaccggt atgtcaagct cttcctggc 29attaaccggt atgtcaagct cttcctggc 29
<210> 8<210> 8
<211> 33<211> 33
<212> ДНК<212> DNA
<213> artifficial sequence<213> artifficial sequence
<220> обратный праймер<220> reverse primer
<223> hACE2-R-MluI праймер для амплификации открытой рамки считывания<223> hACE2-R-MluI open reading frame amplification primer
гена hACE2 и внесения рестриктного сайта MluI для переноса в вектор NIFthe hACE2 gene and the introduction of the MluI restriction site for transfer into the NIF vector
<400> 8<400> 8
attaacgcgt ctaaaaggag gtctgaacat cat 33attaacgcgt ctaaaaggag gtctgaacat cat 33
<210> 9<210> 9
<211> 20<211> 20
<212> ДНК<212> DNA
<213> artifficial sequence<213> artifficial sequence
<220> прямой праймер<220> direct primer
<223> StopC rt F праймер к STOP-кассете для поиска трансгенных мышей<223> StopC rt F primer for the STOP cassette for the search for transgenic mice
<400> 9<400> 9
accgttgttt ccaccgaaga 20accgttgttt ccaccgaaga 20
<210> 10<210> 10
<211> 20<211> 20
<212> ДНК<212> DNA
<213> artifficial sequence<213> artifficial sequence
<220> обратный праймер<220> reverse primer
<223> StopC rt R праймер к STOP-кассете для поиска трансгенных мышей<223> StopC rt R primer for the STOP cassette for the search for transgenic mice
<400> 10<400> 10
caataacaac aacggcggct 20caataacaac aacggcggct 20
Claims (12)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2020126062A RU2757114C1 (en) | 2020-08-05 | 2020-08-05 | METHOD FOR OBTAINING A LINE OF HUMANISED MICE, TRANSGENIC BY hACE2 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2020126062A RU2757114C1 (en) | 2020-08-05 | 2020-08-05 | METHOD FOR OBTAINING A LINE OF HUMANISED MICE, TRANSGENIC BY hACE2 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2757114C1 true RU2757114C1 (en) | 2021-10-11 |
Family
ID=78286305
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2020126062A RU2757114C1 (en) | 2020-08-05 | 2020-08-05 | METHOD FOR OBTAINING A LINE OF HUMANISED MICE, TRANSGENIC BY hACE2 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2757114C1 (en) |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2266002C2 (en) * | 1998-01-08 | 2005-12-20 | Дайити Фармасьютикал Ко., Лтд. | Method for obtaining animal being distinct against a man with a certain mutated gene, method for testing substance to be applied for treating alzheimer's disease (variants), plasmid (variants), method for obtaining primary cell culture or subcultivated cell |
-
2020
- 2020-08-05 RU RU2020126062A patent/RU2757114C1/en active
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2266002C2 (en) * | 1998-01-08 | 2005-12-20 | Дайити Фармасьютикал Ко., Лтд. | Method for obtaining animal being distinct against a man with a certain mutated gene, method for testing substance to be applied for treating alzheimer's disease (variants), plasmid (variants), method for obtaining primary cell culture or subcultivated cell |
Non-Patent Citations (4)
Title |
---|
KALLUNKI T., et al. How to choose the right inducible gene expression system for mammalian studies?, Cells, August 2019, 8(8), 796, pp.1-16. * |
KIM H., Mouse Cre-LoxP system: general principles to determine tissue-specific roles of target genes, Lab Anim Res., 2018, 34(4), pp.147-159. * |
TSENG Ch., et al. Severe acute respiratory syndrome coronavirus infection of mice transgenic for the human angiotensin-converting enzyme 2 virus receptor, Journal of Virology, 2007, 81(3), pp.1162-1173. * |
TSENG Ch., et al. Severe acute respiratory syndrome coronavirus infection of mice transgenic for the human angiotensin-converting enzyme 2 virus receptor, Journal of Virology, 2007, 81(3), pp.1162-1173. KALLUNKI T., et al. How to choose the right inducible gene expression system for mammalian studies?, Cells, August 2019, 8(8), 796, pp.1-16. KIM H., Mouse Cre-LoxP system: general principles to determine tissue-specific roles of target genes, Lab Anim Res., 2018, 34(4), pp.147-159. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JP6446360B2 (en) | Production of FMDV resistant livestock by allelic replacement | |
US11160260B2 (en) | Methods for protecting porcine fetuses from infection with porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV) | |
US9187764B2 (en) | Controllable on-off method for fish reproduction | |
US11051496B2 (en) | Urokinase-type plasminogen activator transgenic mouse | |
JP6282591B2 (en) | Gene knock-in non-human animal | |
KR101235297B1 (en) | Method for preparing transgenic earthworm using germ plasm reproductive ability of earthworm, transgenic earthworm prepared thereby, and process for producing recombinant protein from body fluid of transgenic earthworm | |
JP2011229456A (en) | Creation of hemophilia a model pig | |
RU2757114C1 (en) | METHOD FOR OBTAINING A LINE OF HUMANISED MICE, TRANSGENIC BY hACE2 | |
KR20180128386A (en) | Manipulation of humanized kidney by genetic complementarity | |
RU2768048C1 (en) | METHOD FOR OBTAINING A MOUSE MODEL FOR STUDYING LESCH-NYHAN SYNDROME BY INTRODUCING A DELETION OF P.Val8del INTO THE Hprtl GENE | |
JP4845073B2 (en) | Method for producing reconstructed fertilized egg and method for producing transgenic embryo using the same | |
US20220192163A1 (en) | Hemophilia b rat model | |
CN107937439B (en) | Application of gene and construction method of animal model | |
US20100005535A1 (en) | Compositions And Methods For Generating Transgenic Animals | |
JP4354404B2 (en) | Porcine uroplakin II promoter and useful protein production method using the promoter | |
BR112020021066A2 (en) | method to protect a swine fetus from infection with the swine respiratory and reproductive syndrome virus (prrsv) | |
RU2764650C1 (en) | METHOD FOR OBTAINING A LINE OF HUMANIZED MICE CONTAINING 3974insT INSERTION IN THE mGrin2a GENE (MICE GLUTAMATE [NMDA] RECEPTOR SUBUNIT EPSILON-1), LEADING TO PREMATURE TERMINATION OF TRANSLATION OF THE grin2a PROTEIN | |
KR102594009B1 (en) | Preparing method of transgenic germ cell and transgenic animal using the same | |
JP2005143428A (en) | Utilization of dna encoding kynurenine oxidase gene of silkworm | |
Pinkert | Genetic engineering of farm mammals | |
JP6855066B2 (en) | Transgenic animals of non-human mammals that express human EGFR in a lung-specific manner | |
WO2018207736A1 (en) | Method for introducing polynucleotide to male germ cell or sertoli cell | |
Wells | Conference XI | |
JP2007082446A (en) | Transgenic animal, method for producing the same and nucleic acid therefor | |
CN117042600A (en) | Anti-influenza a animals with edited ANP32 gene |