RU2753955C1 - Method for modeling trophic purulent wounds in experiment - Google Patents

Method for modeling trophic purulent wounds in experiment Download PDF

Info

Publication number
RU2753955C1
RU2753955C1 RU2021101751A RU2021101751A RU2753955C1 RU 2753955 C1 RU2753955 C1 RU 2753955C1 RU 2021101751 A RU2021101751 A RU 2021101751A RU 2021101751 A RU2021101751 A RU 2021101751A RU 2753955 C1 RU2753955 C1 RU 2753955C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
wound
skin
diameter
fixed
disc
Prior art date
Application number
RU2021101751A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Александр Евгеньевич Зайцев
Олег Николаевич Асанов
Никита Игоревич Мясников
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное военное образовательное учреждение высшего образования "Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова" Министерства обороны Российской Федерации (ВМедА)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное военное образовательное учреждение высшего образования "Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова" Министерства обороны Российской Федерации (ВМедА) filed Critical Федеральное государственное бюджетное военное образовательное учреждение высшего образования "Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова" Министерства обороны Российской Федерации (ВМедА)
Priority to RU2021101751A priority Critical patent/RU2753955C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2753955C1 publication Critical patent/RU2753955C1/en

Links

Images

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61BDIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
    • A61B17/00Surgical instruments, devices or methods, e.g. tourniquets
    • GPHYSICS
    • G09EDUCATION; CRYPTOGRAPHY; DISPLAY; ADVERTISING; SEALS
    • G09BEDUCATIONAL OR DEMONSTRATION APPLIANCES; APPLIANCES FOR TEACHING, OR COMMUNICATING WITH, THE BLIND, DEAF OR MUTE; MODELS; PLANETARIA; GLOBES; MAPS; DIAGRAMS
    • G09B23/00Models for scientific, medical, or mathematical purposes, e.g. full-sized devices for demonstration purposes
    • G09B23/28Models for scientific, medical, or mathematical purposes, e.g. full-sized devices for demonstration purposes for medicine

Landscapes

  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medical Informatics (AREA)
  • Surgery (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Business, Economics & Management (AREA)
  • Theoretical Computer Science (AREA)
  • Mathematical Analysis (AREA)
  • Mathematical Optimization (AREA)
  • Mathematical Physics (AREA)
  • Pure & Applied Mathematics (AREA)
  • Algebra (AREA)
  • Educational Administration (AREA)
  • Educational Technology (AREA)
  • Computational Mathematics (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: invention relates to medicine, namely to experimental surgery. A wound defect with a diameter of 16 mm is created on the skin of the animal in the interscapular region, excising a full-thickness flap to the fascia. The edges of the wound are fixed with interrupted sutures to the edges of the central hole of a silicone disk 2 mm thick and 40 mm in diameter, in the center of which a round hole 24 mm in diameter is cut, so that the cut out part of the disk remains connected to the main part and serves as a cover. The outer edge of the silicone disc is fixed to the skin of the animal with interrupted sutures; a third row of sutures is applied around the disc through the skin, capturing an array of underlying soft tissues. At the bottom of the wound, the fascia is dissected with a diametrical incision, after which the soft tissues are crushed with a Kocher clamp. Bacteria capable of causing purulent inflammation are injected into the wound, a piece of gauze napkin 2x2 cm is placed on the formed defect, then the cover of the silicone disc is closed and fixed with a sterile plaster.
EFFECT: invention allows the formation of a trophic purulent wound of a given shape and area, followed by repeated reproduction of this model, provides protection of the wound from external influences during the experiment, which also affects the standardization of conditions.
1 cl, 5 dwg, 1 ex

Description

Изобретение относится к экспериментальной медицине и хирургии.The invention relates to experimental medicine and surgery.

В настоящее время существует большое количество экспериментальных моделей гнойных ран и трофических язв [Гуменюк С.Е., Гайворонская Т.В., Гуменюк А.С. и др. Моделирование раневого процесса в экспериментальной хирургии // Кубанский научный медицинский вестник. - 2019. - Т. 26. - № 2. - С. 18-25. https://doi.org/10.25207/1608-6228-2019-26-2-18-25]. В подавляющем большинстве предложенных способов не предусмотрена возможность формирования одинаковых по форме и размеру раневых дефектов. В результате многократного моделирования образцы ран получаются не идентичными, что не отвечает требованиям повторяемости эксперимента.Currently, there are a large number of experimental models of purulent wounds and trophic ulcers [Gumenyuk SE, Gaivoronskaya TV, Gumenyuk A.S. and other Modeling of the wound process in experimental surgery // Kuban scientific medical bulletin. - 2019. - T. 26. - No. 2. - S. 18-25. https://doi.org/10.25207/1608-6228-2019-26-2-18-25]. The overwhelming majority of the proposed methods do not provide for the possibility of forming wound defects of the same shape and size. As a result of repeated modeling, the wound samples are not identical, which does not meet the requirements for repeatability of the experiment.

Другим важным аспектом подобных моделей является защищенность экспериментального раневого дефекта от внешних воздействий [Сендрякова В.Н., Кокаева И.К., Трохов К.А. и др. Проблемы моделирования гнойной раны у крыс // Успехи современного естествознания. - 2013. - № 8. - С. 38-38]. Во многих методиках с этой целью применяются марлевые повязки или пластыри, которые недостаточно надежно фиксируются к коже и часто срываются самими животными в ходе исследования, что также отрицательно сказывается на стандартизации условий эксперимента.Another important aspect of such models is the protection of the experimental wound defect from external influences [VN Sendryakova, IK Kokaeva, KA Trokhov. and other Problems of modeling purulent wounds in rats // Advances in modern natural science. - 2013. - No. 8. - S. 38-38]. For this purpose, in many methods, gauze bandages or plasters are used, which are not sufficiently securely fixed to the skin and are often torn off by the animals themselves during the study, which also negatively affects the standardization of the experimental conditions.

Известен способ моделирования трофической раны в эксперименте (патент РФ № 2510083, 2013), при котором после обработки операционного поля в асептических условиях, у экспериментального животного иссекают кожу до поверхностной фасции в виде круга диаметром 20 мм, после чего для нарушения микроциркуляции по краям раны накладывают кисетный шов. С целью фиксации краев раны и предотвращения их сближения формируют кожно-фасциальные узловые швы [Патент РФ № 2510083, от 21.01.2013].There is a known method for modeling a trophic wound in an experiment (RF patent No. 2510083, 2013), in which, after processing the operating field under aseptic conditions, the experimental animal's skin is excised to the superficial fascia in the form of a circle with a diameter of 20 mm, after which, to disturb microcirculation along the edges of the wound, apply purse string suture. In order to fix the edges of the wound and prevent their convergence, form fascial cutaneous nodal sutures [RF Patent No. 2510083, dated 21.01.2013].

В другой предложенной модели (патент РФ № 2688460, 2019), после формирования дефекта аналогичным образом, по краям раны накладывают простой непрерывный обвивной кожно-фасциальный шов, который впоследствии затягивают до побледнения тканей [Патент РФ № 2688460, от 25.05.2018].In another proposed model (RF patent No. 2688460, 2019), after the formation of the defect in the same way, a simple continuous winding fascial skin suture is applied along the edges of the wound, which is subsequently tightened until the tissues turn pale [RF Patent No. 2688460, dated 05/25/2018].

Данные способы позволяют создать в раневом дефекте условия локальной гипоксии за счет нарушения микроциркуляции в тканях, что делает такие модели схожими с трофическими язвами [Кузин М.И., Костючонок Б.М. Раны и раневая инфекция. - М.: Медицина, 1990. С 91-92]. Однако наложение кисетных, узловых или непрерывных кожно-фациальных швов изменяет геометрию и заданную площадь кожного дефекта, который чаще всего становится неправильной формы.These methods make it possible to create conditions of local hypoxia in the wound defect due to the violation of microcirculation in the tissues, which makes such models similar to trophic ulcers [Kuzin MI, Kostyuchonok BM. Wounds and wound infection. - M .: Medicine, 1990. P 91-92]. However, the imposition of purse-string, nodal or continuous skin-facial sutures changes the geometry and the specified area of the skin defect, which most often becomes irregular in shape.

Поэтому недостатком прототипов является невозможность повторить идентичную по форме и площади модель в эксперименте. Также в указанных прототипах не предусмотрена полноценная защита раневых дефектов от непреднамеренного снятия повязок.Therefore, the disadvantage of prototypes is the impossibility of repeating a model identical in shape and area in an experiment. Also, these prototypes do not provide full protection of wound defects from unintentional removal of the bandages.

Задачей предлагаемого способа является разработка модели трофической гнойной раны, позволяющая создавать в экспериментальной серии одинаковые стандартные раневые дефекты, защищенные от внешних воздействий.The objective of the proposed method is to develop a model of a trophic purulent wound, which makes it possible to create in the experimental series the same standard wound defects protected from external influences.

Решение поставленной задачи обеспечивается тем, что в способе моделирования трофических гнойных ран в эксперименте на коже животного в межлопаточной области создают раневой дефект диаметром 16 мм, иссекая полнослойный лоскут до фасции, затем края раны фиксируют узловыми швами к краям центрального отверстия силиконового диска толщиной 2 мм и диаметром 40 мм, в центре которого вырезано круглое отверстие диаметром 24 мм, таким образом, чтобы выкраиваемая часть диска оставалась соединенной с основной частью и выполняла функцию крышки; затем наружный край приспособления фиксируют к коже животного узловыми швами до плотного прилегания, вокруг диска накладывают третий ряд швов через кожу с захватом массива подлежащих мягких тканей, затем на дне раны выполняют рассечение фасции диаметральным разрезом, после чего мягкие ткани раздавливают зажимом Кохера; затем в рану вводят бактерии, способные вызвать гнойное воспаление, на сформированный дефект укладывают фрагмент марлевой салфетки 2x2 см, затем закрывают и фиксируют крышку силиконового диска стерильным пластырем.The solution to this problem is ensured by the fact that in the method of modeling trophic purulent wounds in an experiment on the skin of an animal in the interscapular region, a wound defect with a diameter of 16 mm is created, excising a full-thickness flap to the fascia, then the edges of the wound are fixed with interrupted sutures to the edges of the central opening of a silicone disk with a thickness of 2 mm and with a diameter of 40 mm, in the center of which a round hole with a diameter of 24 mm is cut, so that the cut out part of the disk remains connected to the main part and serves as a cover; then the outer edge of the device is fixed to the skin of the animal with interrupted sutures until a snug fit, a third row of sutures is applied around the disc through the skin with the capture of an array of underlying soft tissues, then the fascia is dissected at the bottom of the wound with a diametrical incision, after which the soft tissues are crushed with a Kocher clamp; then bacteria capable of causing purulent inflammation are injected into the wound, a piece of gauze napkin 2x2 cm is placed on the formed defect, then the cover of the silicone disc is closed and fixed with a sterile plaster.

Предлагаемый способ формирования трофической гнойной раны поясняется подробным описанием, примером экспериментального исследования и иллюстрациями, на которых изображено:The proposed method for the formation of a trophic purulent wound is illustrated by a detailed description, an example of an experimental study and illustrations, which depict:

Фиг. 1. Этапы моделирования трофической гнойной раны в эксперименте (А - формирование кожного дефекта круглой формы; Б - внешний вид силиконового диска; В - подшивание краев раны к краю отверстия силиконового диска; Г - подшивание наружного края силиконового диска к коже и наложение дополнительных ишемизирующих швов).FIG. 1. Stages of modeling a trophic purulent wound in the experiment (A - the formation of a skin defect of a round shape; B - the appearance of the silicone disc; C - hemming the wound edges to the edge of the opening of the silicone disc; D - hemming the outer edge of the silicone disc to the skin and applying additional ischemic sutures ).

Фиг. 2. Вид экспериментальной трофической гнойной раны через 48 часов.FIG. 2. View of the experimental trophic purulent wound after 48 hours.

Фиг. 3. Цитологическая картина трофической гнойной раны в эксперименте через 48 часов. Окраска по Паппенгейму, увеличение х 400.FIG. 3. The cytological picture of a trophic purulent wound in the experiment after 48 hours. Pappenheim staining, magnification x 400.

Фиг. 4 Гистологическая картина трофической гнойной раны в эксперименте через 48 часов. Окраска толуидиновым синим, увеличение х 250.FIG. 4 The histological picture of a trophic purulent wound in the experiment after 48 hours. Toluidine blue staining, magnification x 250.

Фиг. 5 Трансмиссионная электронная микроскопия. Скопление микробных клеток в поверхностном слое трофической гнойной раны в эксперименте через 48 часов. Увеличение х 23000.FIG. 5 Transmission electron microscopy. The accumulation of microbial cells in the surface layer of a trophic purulent wound in the experiment after 48 hours. Magnification x 23000.

Для решения поставленной задачи из термостойкого силикона подготавливают пластинку в форме диска толщиной 2 мм и диаметром 40 мм. В центре вырезают круглое отверстие диаметром 24 мм, таким образом, чтобы выкраиваемая часть диска оставалась соединенной с основной частью и выполняла функцию крышки (фиг. 1).To solve this problem, a disc-shaped plate with a thickness of 2 mm and a diameter of 40 mm is prepared from heat-resistant silicone. A round hole with a diameter of 24 mm is cut out in the center, so that the cut out part of the disk remains connected to the main part and serves as a cover (Fig. 1).

После подготовки животного (например, крысы) к эксперименту, на коже в межлопаточной области создают раневой дефект диаметром 16 мм, иссекая полнослойный лоскут до фасции. Края раны фиксируют узловыми швами к краям центрального отверстия силиконового диска. Наружный край приспособления фиксируют к коже животного узловыми швами до плотного прилегания. Вокруг диска накладывают третий ряд швов через кожу с захватом массива подлежащих мягких тканей, для создания дополнительной локальной ишемии (фиг. 1). На дне раны выполняют рассечение фасции диаметральным разрезом, после чего мягкие ткани раздавливают зажимом Кохера. Далее, с учетом условий эксперимента, в рану вводят определенное количество бактерий способных вызвать гнойное воспаление. На сформированный дефект укладывают фрагмент марлевой салфетки 2x2 см, затем закрывают и фиксируют крышку силиконового диска стерильным пластырем.After preparing the animal (for example, a rat) for the experiment, a wound defect with a diameter of 16 mm is created on the skin in the interscapular region, excising a full-thickness flap to the fascia. The edges of the wound are fixed with interrupted sutures to the edges of the central opening of the silicone disc. The outer edge of the device is fixed to the animal's skin with interrupted sutures until snug. Around the disc, a third row of sutures is applied through the skin with the capture of an array of underlying soft tissues to create additional local ischemia (Fig. 1). At the bottom of the wound, the fascia is dissected with a diametrical incision, after which the soft tissues are crushed with a Kocher clamp. Further, taking into account the experimental conditions, a certain amount of bacteria capable of causing purulent inflammation is injected into the wound. A piece of gauze napkin 2x2 cm is placed on the formed defect, then the cover of the silicone disk is closed and fixed with a sterile plaster.

Таким образом, благодаря разности диаметров дефекта и центрального отверстия диска, края раны равномерно растягиваются, что позволяет создать заданную площадь и форму, а также вызвать ишемию тканей вследствие натяжения. Крышка силиконового диска обеспечивает защиту раны от внешних воздействий.Thus, due to the difference between the diameters of the defect and the central opening of the disc, the edges of the wound are evenly stretched, which makes it possible to create a given area and shape, as well as cause tissue ischemia due to tension. A silicone disc cover protects the wound from external influences.

Данный способ моделирования трофических гнойных ран может быть применен с различными вариациями. Изменяя габариты силиконового диска и раневого дефекта, а также, подбирая другие области на коже опытного животного, можно создавать аналоги различных клинических ситуаций.This method of modeling trophic purulent wounds can be applied with various variations. By changing the dimensions of the silicone disc and the wound defect, as well as by selecting other areas on the skin of the experimental animal, it is possible to create analogs of various clinical situations.

В ходе эксперимента, используя соотношение размеров отверстия диска и раны, можно высчитывать их площадь и определять скорость заживления.In the course of the experiment, using the ratio of the size of the opening of the disc and the wound, it is possible to calculate their area and determine the rate of healing.

Искусственное ограничение раневого дефекта, создаваемое за счет подшитых краев и крышки силиконового диска, не только защищает модель от воздействия внешних условий, но и позволяет выдерживать необходимую экспозицию различных веществ и препаратов при введении их в рану.Artificial limitation of the wound defect, created by the hemmed edges and the cover of the silicone disc, not only protects the model from the effects of external conditions, but also allows it to withstand the necessary exposure of various substances and preparations when they are introduced into the wound.

Время формирования одного образца данной экспериментальной модели в среднем составляет 20 минут.The formation time of one sample of this experimental model is on average 20 minutes.

Пример экспериментального исследованияAn example of a pilot study

Нелинейная белая крыса, самец, масса 205 г. После введения в наркоз по одной из методик (Кетамин 5% 0,1-0,2 мг/кг в/м; Реланиум 0,5% 0,1-0,2 мг/кг в/м; Дроперидол 0,25% 0,15-0,2 мг/кг в/м) животное фиксировано спинкой кверху. В межлопаточной области выбрит участок размером 6x4 см. В этом месте спиртовым маркером на коже нанесен контур круглой раны, диаметром 16 мм. В асептических условиях после обработки операционного поля раствором антисептика, произведено иссечение полнослойного лоскута до фасции по ранее нанесенным контурам. Выполнено моделирование раны по предложенному способу. В сформированный дефект мягких тканей внесена суточная культура St. aureus (25923) в количестве 2,5x107 КОЕ. После этого животное возвращено в клетку со свободным доступом к еде и пище.Nonlinear white rat, male, weight 205 g. After anesthesia using one of the methods (Ketamine 5% 0.1-0.2 mg / kg IM; Relanium 0.5% 0.1-0.2 mg / kg i / m; Droperidol 0.25% 0.15-0.2 mg / kg i / m) the animal is fixed with its back up. In the interscapular region, a 6x4 cm area is shaved. In this place, an outline of a round wound with a diameter of 16 mm is drawn on the skin with an alcohol marker. In aseptic conditions, after processing the operating field with an antiseptic solution, a full-thickness flap was excised to the fascia along the previously applied contours. The wound was simulated according to the proposed method. A daily culture of St. aureus (25923) in the amount of 2.5x10 7 CFU. After that, the animal is returned to the cage with free access to food and nutrition.

Через 48 часов произошло формирование трофической гнойной раны круглой формы, диаметром 24 мм. Края раневого дефекта отечные, бледно-розового цвета. Дно раны покрыто желтоватым гнойно-фибринозным налетом с характерным запахом (фиг. 2). Выполнен посев, мазок-отпечаток раневой поверхности, после чего осуществлен забор фрагмента тканей из центра раны для морфологического анализа.After 48 hours the formation of a trophic purulent wound of a round shape with a diameter of 24 mm occurred. The edges of the wound defect are edematous, pale pink in color. The bottom of the wound is covered with a yellowish purulent-fibrinous bloom with a characteristic odor (Fig. 2). Sowing, smear-imprint of the wound surface was performed, after which a tissue fragment was taken from the center of the wound for morphological analysis.

По данным микробиологического исследования экспериментальной раны микрофлора была представлена St. aureus в количестве 107 КОЕ/мл. Цитологическая картина соответствовала некротическому типу с преобладанием сегментоядерных нейтрофилов и скоплением детрита на фоне грамположительных кокков (фиг. 3). При гистологическом исследовании биоптата (фиг. 4) и трансмиссионной электронной микроскопии (фиг. 5) наблюдался отек и воспалительная реакция в тканях с поверхностным слоем нежизнеспособных клеток и скоплением микробов, заключенных в биопленку.According to the microbiological study of the experimental wound, the microflora was presented to St. aureus in the amount of 10 7 CFU / ml. The cytological picture corresponded to the necrotic type with the predominance of segmented neutrophils and the accumulation of detritus against the background of gram-positive cocci (Fig. 3). Histological examination of the biopsy specimen (Fig. 4) and transmission electron microscopy (Fig. 5) showed edema and an inflammatory reaction in tissues with a surface layer of non-viable cells and an accumulation of microbes enclosed in a biofilm.

Указанная внешняя характеристика раны, а также данные микробиологического, цитологического и морфологического исследований соответствовали I фазе раневого процесса. Невозможность контракции фиксированных краев раневого дефекта, а также создание локальной ишемии тканей препятствовали нормальному заживлению и делали модель схожей с традиционной трофической язвой.The specified external characteristics of the wound, as well as the data of microbiological, cytological and morphological studies corresponded to phase I of the wound process. The impossibility of contraction of the fixed edges of the wound defect, as well as the creation of local tissue ischemia, prevented normal healing and made the model similar to a traditional trophic ulcer.

Предложенным способом была выполнена экспериментальная модель трофической гнойной раны у 80 крыс. У всех лабораторных животных наблюдались одинаковые по форме и площади гнойные трофические раны, что свидетельствует о достижении заданной цели. Нежелательных системных и местных явлений у животных в ходе наблюдения за экспериментом не возникало.The proposed method was used to carry out an experimental model of a trophic purulent wound in 80 rats. In all laboratory animals, purulent trophic wounds of the same shape and area were observed, which indicates the achievement of the set goal. There were no undesirable systemic and local phenomena in animals during the observation of the experiment.

Claims (1)

Способ моделирования трофических гнойных ран в эксперименте, отличающийся тем, что на коже животного в межлопаточной области создают раневой дефект диаметром 16 мм, иссекая полнослойный лоскут до фасции, затем края раны фиксируют узловыми швами к краям центрального отверстия силиконового диска толщиной 2 мм и диаметром 40 мм, в центре которого вырезано круглое отверстие диаметром 24 мм, таким образом, чтобы выкраиваемая часть диска оставалась соединенной с основной частью и выполняла функцию крышки; затем наружный край силиконового диска фиксируют к коже животного узловыми швами, вокруг диска накладывают третий ряд швов через кожу с захватом массива подлежащих мягких тканей, затем на дне раны выполняют рассечение фасции диаметральным разрезом, после чего мягкие ткани раздавливают зажимом Кохера; затем в рану вводят бактерии, способные вызвать гнойное воспаление, на сформированный дефект укладывают фрагмент марлевой салфетки 2×2 см, затем закрывают и фиксируют крышку силиконового диска стерильным пластырем.A method for modeling trophic purulent wounds in an experiment, characterized in that a wound defect with a diameter of 16 mm is created on the skin of an animal in the interscapular region, excising a full-thickness flap to the fascia, then the edges of the wound are fixed with interrupted sutures to the edges of the central hole of a silicone disk 2 mm thick and 40 mm in diameter , in the center of which a round hole with a diameter of 24 mm is cut, so that the cut out part of the disk remains connected to the main part and serves as a cover; then the outer edge of the silicone disc is fixed to the skin of the animal with interrupted sutures, a third row of sutures is applied around the disc through the skin with the capture of an array of underlying soft tissues, then at the bottom of the wound, the fascia is dissected with a diametrical incision, after which the soft tissues are crushed with a Kocher clamp; then bacteria capable of causing purulent inflammation are injected into the wound, a piece of gauze napkin 2 × 2 cm is placed on the formed defect, then the cover of the silicone disc is closed and fixed with a sterile plaster.
RU2021101751A 2021-01-26 2021-01-26 Method for modeling trophic purulent wounds in experiment RU2753955C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2021101751A RU2753955C1 (en) 2021-01-26 2021-01-26 Method for modeling trophic purulent wounds in experiment

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2021101751A RU2753955C1 (en) 2021-01-26 2021-01-26 Method for modeling trophic purulent wounds in experiment

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2753955C1 true RU2753955C1 (en) 2021-08-24

Family

ID=77460502

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2021101751A RU2753955C1 (en) 2021-01-26 2021-01-26 Method for modeling trophic purulent wounds in experiment

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2753955C1 (en)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB2416909B (en) * 2004-07-31 2009-02-18 Bradford Teaching Hospitals Nh Wound simulation device
RU2431890C1 (en) * 2010-04-09 2011-10-20 Учреждение Российской академии медицинских наук Научный центр реконструктивной и восстановительной хирургии Сибирского отделения РАМН (НЦРВХ СО РАМН) Method of modelling infected skin wound
RU2510083C1 (en) * 2013-01-21 2014-03-20 Радик Медыхатович Зинатуллин Method for simulating trophic wound in experiment

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB2416909B (en) * 2004-07-31 2009-02-18 Bradford Teaching Hospitals Nh Wound simulation device
RU2431890C1 (en) * 2010-04-09 2011-10-20 Учреждение Российской академии медицинских наук Научный центр реконструктивной и восстановительной хирургии Сибирского отделения РАМН (НЦРВХ СО РАМН) Method of modelling infected skin wound
RU2510083C1 (en) * 2013-01-21 2014-03-20 Радик Медыхатович Зинатуллин Method for simulating trophic wound in experiment

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
AYMAN GRADA et al. Research techniques made simple: animal models of wound healing, Journal of Investigative Dermatology (2018) 138, 2095-2105. *
ГУМЕНЮК С.Е. и др. Моделирование раневого процесса в экспериментальной хирургии, Кубанский научный медицинский вестник. 2019; 26(2): 18-25. *
ГУМЕНЮК С.Е. и др. Моделирование раневого процесса в экспериментальной хирургии, Кубанский научный медицинский вестник. 2019; 26(2): 18-25. AYMAN GRADA et al. Research techniques made simple: animal models of wound healing, Journal of Investigative Dermatology (2018) 138, 2095-2105. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Lorenz et al. The fetal fibroblast: the effector cell of scarless fetal skin repair
Insausti et al. Amniotic membrane induces epithelialization in massive posttraumatic wounds
Izumi et al. Intraoral grafting of tissue-engineered human oral mucosa
DE69233558T2 (en) Keratinocyte-derived granules for use as a wound healing agent
Tarameshloo et al. Aloe vera gel and thyroid hormone cream may improve wound healing in Wistar rats
Sevimli-Gür et al. In vitro growth stimulatory and in vivo wound healing studies on cycloartane-type saponins of Astragalus genus
Takagi et al. Fabrication of human oral mucosal epithelial cell sheets for treatment of esophageal ulceration by endoscopic submucosal dissection
Barski et al. Repair of a vesico-vaginal fistula with amniotic membrane–step 1 of the IDEAL recommendations of surgical innovation
US20150268254A1 (en) Sebocyte cell culturing and methods of use
El-Hadidy et al. Role of epidermal stem cells in repair of partial-thickness burn injury after using Moist Exposed Burn Ointment (MEBO®) histological and immunohistochemical study
RU2753955C1 (en) Method for modeling trophic purulent wounds in experiment
Kim et al. Application of a collagen patch derived from duck feet in acute tympanic membrane perforation
RU2510083C1 (en) Method for simulating trophic wound in experiment
RU2321898C1 (en) Method for modeling infected wound of soft tissues
Buchanan et al. Pilot study: fibrin sealant in anal fistula model
Kumari et al. Spider web ointment: A traditional based approach in cutaneous wound healing
Sumiyoshi et al. External administration of moon jellyfish collagen solution accelerates physiological wound healing and improves delayed wound closure in diabetic model mice
Li et al. Quality evaluation of meshed split-thickness skin grafts stored at 4 C in isotonic solutions and nutrient media by cell cultures
Zimmer et al. Effect of extracts from the Chinese and European mole cricket on wound epithelialization and neovascularization: in vivo studies in the hairless mouse ear wound model
RU2483700C1 (en) Method of tympanoplasty in case of chronic otitis media with application of support auto-cartilaginous plate
Jørgensen et al. Epithelial‐to‐mesenchymal transition and keratinocyte differentiation in equine experimental body and limb wounds healing by second intention
Yaguchi et al. Middle ear mucosa regeneration by grafting of artificial mucosa
Borgstein et al. Ear packing after ear surgery: is it really necessary?
RU2729370C1 (en) Method of closing defect of fertilized egg when creating experimental model
Hensler et al. Establishment and initial characterization of a simple 3D wound healing model