RU2721123C1 - Recombinant pseudo-adenoviral particle strain expressing the chlamydia trachomatis chimeric gene mbl-ct666, a method for preparing it, an immunogenic composition for protection against human urogenital chlamydiosis - Google Patents
Recombinant pseudo-adenoviral particle strain expressing the chlamydia trachomatis chimeric gene mbl-ct666, a method for preparing it, an immunogenic composition for protection against human urogenital chlamydiosis Download PDFInfo
- Publication number
- RU2721123C1 RU2721123C1 RU2019130449A RU2019130449A RU2721123C1 RU 2721123 C1 RU2721123 C1 RU 2721123C1 RU 2019130449 A RU2019130449 A RU 2019130449A RU 2019130449 A RU2019130449 A RU 2019130449A RU 2721123 C1 RU2721123 C1 RU 2721123C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- mbl
- chlamydia trachomatis
- chimeric gene
- strain
- adenovirus
- Prior art date
Links
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N7/00—Viruses; Bacteriophages; Compositions thereof; Preparation or purification thereof
Abstract
Description
Область техникиTechnical field
Изобретение относится к биотехнологии и медицине и касается штамма рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы, экспрессирующей химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis после его введения в организм субъекта. Предложенный штамм рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы, экспрессирующей химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis, может применяться в качестве иммуногенного компонента для изготовления вакцин с целью профилактики урогенитальной хламидийной инфекции, вызванной Chlamydia trachomatis. The invention relates to biotechnology and medicine, and relates to a strain of a recombinant pseudo-adenoviral particle expressing the chimeric gene MBL-CT666 of Chlamydia trachomatis after its introduction into the body of the subject. The proposed strain of a recombinant pseudo-adenovirus particle expressing the chlamydia trachomatis MBL-CT666 chimeric gene can be used as an immunogenic component for the manufacture of vaccines for the prevention of urogenital chlamydial infection caused by Chlamydia trachomatis .
Предшествующий уровень техникиState of the art
Хламидийная инфекция - самое распространенное бактериальное инфекционное заболевание, передаваемое половым путем. По данным Всемирной организации здравоохранения ежегодно в мире диагностируется более 100 миллионов новых случаев заболевания, заболеваемость продолжает расти даже в развитых странах и составляет более 500 случаев заболевания на 100 тысяч населения в год (WHO "Initiative for Vaccine Research (IVR), Sexually Transmitted Diseases." 2012.). В группе риска, 14-25 лет, заболеваемость достигает 11%. Существующая статистика не отражает истинного положения, т.к. до 90% у женщин и до 50% у мужчин хламидийная инфекция протекает бессимптомно. Такие случаи не диагностируются, не лечатся, но способствуют распространению инфекции.Chlamydia infection is the most common bacterial sexually transmitted infection. According to the World Health Organization, more than 100 million new cases of the disease are diagnosed annually in the world, the incidence continues to grow even in developed countries and amounts to more than 500 cases of the disease per 100 thousand people per year (WHO "Initiative for Vaccine Research (IVR), Sexually Transmitted Diseases. "2012.). In the risk group, 14-25 years old, the incidence reaches 11%. Existing statistics do not reflect the true situation, because up to 90% in women and up to 50% in men, chlamydial infection is asymptomatic. Such cases are not diagnosed, not treated, but contribute to the spread of infection.
Особенно тяжелые осложнения и последствия хламидии способны вызывать у женщин. Так, восходящее течение инфекции приводит к развитию воспалительных заболеваний органов малого таза, развитию бесплодия, на фоне воспаления возрастает риск патологии беременности (Haggerty C.L. et al. Risk of sequelae after Chlamydia trachomatis genital infection in women // J. Infect. Dis. 2010. V. 201. №2. P. 134-155; Кисина В.И., Колиева Г.Л. Урогенитальный хламидиоз // Гинекология. 2003. Т. 5. №2. С. 82-86.). Especially severe complications and consequences of chlamydia can cause in women. Thus, the ascending course of infection leads to the development of inflammatory diseases of the pelvic organs, the development of infertility, against the background of inflammation, the risk of pregnancy pathology increases (Haggerty CL et al. Risk of sequelae after Chlamydia trachomatis genital infection in women // J. Infect. Dis. 2010. V. 201. No. 2. P. 134-155; Kisina V.I., Kolieva G.L. Urogenital chlamydia // Gynecology. 2003. V. 5. No. 2. P. 82-86.).
Научно-обоснованным методом профилактики хламидиоза является вакцинация. Согласно литературным данным, при моделировании ситуации установлено, что эффективная вакцинация позволила бы устранить эпидемию хламидиоза в течение 20 лет, а частично эффективная - может снизить заболеваемость, как у мужчин, так и у женщин. Также отмечено, что экономически более эффективной была бы вакцинация только женщин (Gray R.T., Beagley K.W., Timms P., Wilson D.P. Modeling the impact of potential vaccines on epidemics of sexually transmitted Chlamydia trachomatis infection // J. Infect. Dis. 2009. №199. Р. 1680-8.).A scientifically based method for the prevention of chlamydia is vaccination. According to published data, when modeling the situation, it was found that effective vaccination would eliminate the chlamydia epidemic within 20 years, and partially effective could reduce the incidence in both men and women. It is also noted that vaccination of only women would be more cost-effective (Gray RT, Beagley KW, Timms P., Wilson DP Modeling the impact of potential vaccines on epidemics of sexually transmitted Chlamydia trachomatis infection // J. Infect. Dis. 2009. No. 199.R. 1680-8.).
К настоящему времени не зарегистрировано ни одной коммерческой вакцины, направленной на профилактику и лечение заболеваний, вызываемых С. trachomatis. Сложности в создании вакцины объясняются особенностями иммунного ответа при хламидийной инфекции. Считают, что создание эффективной вакцины против хламидийной инфекции предполагает формирование ответа специфических Т-хелперов первого типа (Th1), способных эффективно достигать мест локализации патогена в тканях и органах, и способствовать формированию специфических системных и локальных антител [Beagley K.W., Timms P. Chlamydia trachomatis infection: incidence, health costs and prospects for vaccine development // J Reprod Immunol. 2000. V. 48. №1. P. 47-68.].To date, not a single commercial vaccine aimed at the prevention and treatment of diseases caused by C. trachomatis has been registered. The difficulties in creating the vaccine are explained by the characteristics of the immune response in chlamydial infections. It is believed that the creation of an effective vaccine against chlamydial infection involves the formation of a response of specific T-helpers of the first type (Th1), which can efficiently reach the pathogen localization sites in tissues and organs, and contribute to the formation of specific systemic and local antibodies [Beagley KW, Timms P. Chlamydia trachomatis infection: incidence, health costs and prospects for vaccine development // J Reprod Immunol. 2000. V. 48. No. 1. P. 47-68.].
Таким образом, из-за особенностей иммунопатогенеза хламидийной инфекции и возникающих из-за этого сложностей в создании высокоэффективных вакцин, получение с помощью современных подходов штаммов и иммуногенных композиций, позволяющих решить существующие проблемы по созданию противохламидийных препаратов, являются актуальной проблемой. Thus, due to the peculiarities of the immunopathogenesis of chlamydial infection and the difficulties that arise because of this, the development of highly effective vaccines, obtaining strains and immunogenic compositions using modern approaches that allow solving the existing problems of creating antichlamydia drugs are an urgent problem.
В настоящее время в качестве противохламидийных композиций преобладают разработки на основе белка наружной мембраны (MOMP) C. trachomatis. MOMP индуцирует протективный клеточный и антительный ответ (Farris, 2010), необходимый для элиминации хламидий. Было показано, что иммунизация MOMP индуцировала протективный ответ, подавляющий инфекцию и патологию в исследованиях на животных, включая исследования на мышах, морских свинках, свиньях, коалах и приматах (Berry, 2004; Skelding, 2006; Sun, 2009; Andrew, 2011; Cheng, 2011b; Schautteet, 2011; Kollipara, 2012; Schautteet, 2012). Следует отметить, что, несмотря на свою высокую иммуногенность MOMP обладает высокой вариабельностью в зависимости от серовара C. trachomatis, что затрудняет разработку универсальной вакцины на его основе (Zhang, 1989; Ramsey, 2009; Mossman, 2008).Currently, the outer membrane protein (MOMP) of C. trachomatis prevails as antichlamydia compositions. MOMP induces a protective cellular and antibody response (Farris, 2010), necessary to eliminate chlamydia. MOMP immunization has been shown to induce a protective response that suppresses infection and pathology in animal studies, including studies in mice, guinea pigs, pigs, koalas and primates (Berry, 2004; Skelding, 2006; Sun, 2009; Andrew, 2011; Cheng , 2011b; Schautteet, 2011; Kollipara, 2012; Schautteet, 2012). It should be noted that, despite its high immunogenicity, MOMP is highly variable depending on the serovar C. trachomatis, which makes it difficult to develop a universal vaccine based on it (Zhang, 1989; Ramsey, 2009; Mossman, 2008).
Кроме MOMP, одним из основных вакцинных кандидатов является высокоиммуногенный белок наружной мембраны, OmcB (наружный мембранный белок B). OmcB C. trachomatis является одним из основных адгезинов, обеспечивающих специфическую адгезию хламидий на мембране эукариотической клетки (Moelleken, 2008). OmcB является иммунодоминантным белком и вызывает выраженный иммунный ответ как у человека, так и у животных. Благодаря тому, что этот белок хорошо представлен в составе клеточной стенки и обладает иммуногенными свойствами OmcB служит эффективной мишенью при серодиагностике и рассматриватся в качестве перспективного целевого гена при создании субъединичных вакцин (Fadel, 2007; Hou, 2012).In addition to MOMP, one of the main vaccine candidates is the highly immunogenic outer membrane protein, OmcB (outer membrane protein B). OmcB C. trachomatis is one of the main adhesins providing specific adhesion of chlamydia to the membrane of a eukaryotic cell (Moelleken, 2008). OmcB is an immunodominant protein and causes a pronounced immune response in both humans and animals. Due to the fact that this protein is well represented in the composition of the cell wall and possesses immunogenic properties, OmcB serves as an effective target for serodiagnosis and is considered as a promising target gene for creating subunit vaccines (Fadel, 2007; Hou, 2012).
Белок CPAF - протеаза с протеасомо-подобной активностью также изучается в качестве вакцинного препарата. Использование рекомбинантного белка CPAF в сочетании с IL-12 в качестве адъюванта снижало бактериальную нагрузку в генитальном тракте и приводило к быстрой элиминации C. trachomatis по сравнению с контрольной группой животных. Более того, у животных, иммунизацированных rCPAF+IL-12, наблюдали подавление развития гидросальпинкса и патологии маточных труб (Murthy, 2009; Zhong, 2001).Protein CPAF - a protease with proteasome-like activity is also being studied as a vaccine preparation. The use of recombinant CPAF protein in combination with IL-12 as an adjuvant reduced the bacterial load in the genital tract and led to the rapid elimination of C. trachomatis compared to the control group of animals. Moreover, in animals immunized with rCPAF + IL-12, suppression of the development of hydrosalpinx and tubal pathology was observed (Murthy, 2009; Zhong, 2001).
Таким образом, белки наружной мембраны хламидий и секретируемые белки представляются хорошими кандидатами в создании вакцин, способных индуцировать протективный иммунитет. Однако стало очевидным, что субъединичные вакцины обладают недостаточной иммуногенностью и, как следствие, использование таких вакцин подразумевает необходимость многократной вакцинации и применения адъювантов.Thus, chlamydial outer membrane proteins and secreted proteins appear to be good candidates for vaccines capable of inducing protective immunity. However, it became apparent that subunit vaccines lack immunogenicity and, as a result, the use of such vaccines implies the need for multiple vaccinations and the use of adjuvants.
Известно техническое решение по патенту EP2976355A1. Действующим веществом описанной противохламидийной вакцины является рекомбинантный белок CTH522, состоящий из сегментов основного хламидийного белка наружной мембраны (MOMP), включающего иммуногенные повторы фрагментов аминокислотных последовательностей от четырех сероваров C. trachomatis (D, E, F и G). Рекомбинантый белок CTH522 получен методами генной инженерии и для приготовления препарата наращивается с использованием E.coli. Known technical solution according to patent EP2976355A1. The active ingredient of the described antichlamydia vaccine is the recombinant protein CTH522, consisting of segments of the main chlamydial protein of the outer membrane (MOMP), including immunogenic repeats of fragments of amino acid sequences from four C. trachomatis serovars (D, E, F and G). Recombinant protein CTH522 was obtained by genetic engineering methods and for the preparation of the drug is grown using E. coli.
В 2019 году были обнародованы данные об успешном проведении 1 фазы клинических испытаний кандидатной вакцины. (S. Abraham, H. Juel et.al. Safety and immunogenicity of the chlamydia vaccine candidate CTH522 adjuvanted with CAF01 liposomes or aluminium hydroxide: a first-in-human, randomised, double-blind, placebo-controlled, phase 1 trial // Published online August 12, 2019 http://dx.doi.org/10.1016/S1473-3099(19)30279-8).In 2019, data were published on the success of the first phase of clinical trials of the candidate vaccine. (S. Abraham, H. Juel et.al. Safety and immunogenicity of the chlamydia vaccine candidate CTH522 adjuvanted with CAF01 liposomes or aluminum hydroxide: a first-in-human, randomized, double-blind, placebo-controlled,
Данное техническое решение, описываемое в патенте EP2976355A1 и статье, рассматривается авторами и заявителем как наиболее близкий аналог. This technical solution, described in patent EP2976355A1 and the article, is considered by the authors and the applicant as the closest analogue.
Хотя аналог, содержащий в качестве действующего вещества рекомбинантный белок CTH522, по результатам исследований вызывал образование достаточного противохламидийного иммунного ответа и обладал хорошей переносимостью у людей, у данного технического решения присутствуют значительные недостатки: Although the analogue containing the active ingredient CTH522 recombinant protein, according to the results of the studies, it caused the formation of a sufficient antichlamydial immune response and was well tolerated in humans, this technical solution has significant disadvantages:
- рекомбинантный белок CTH522 в качестве действующего вещества вакцины, требовал для усиления иммунного ответа введение в её состав адъюванта, которым служили либо CAF01, либо гидроксид алюминия. Введение адъювантов сказывается на увеличении производственных затрат и вызывает реактогенность в месте внутримышечной инъекции;- the recombinant protein CTH522 as the active substance of the vaccine, required the introduction of an adjuvant, which served either CAF01 or aluminum hydroxide, to strengthen the immune response. The introduction of adjuvants affects the increase in production costs and causes reactogenicity at the site of intramuscular injection;
- для создания напряженного иммунитета к C. trachomatis вакцина, содержащая рекомбинантный белок CTH522 в качестве действующего вещества, вводится людям в общей сложности 5 раз - вначале введение осуществляют три раза посредством внутримышечной инъекции, после чего проводят два интраназальных введения препаратом без адъюванта. Предложенная схема очень сложна, длительна и трудоемка к практическому исполнению;- to create a tense immunity to C. trachomatis, a vaccine containing recombinant CTH522 protein as an active substance is administered to people a total of 5 times - first, administration is carried out three times by intramuscular injection, after which two intranasal administration of the drug without adjuvant is carried out. The proposed scheme is very complex, lengthy and time-consuming to practical implementation;
- необходимость поддержания нативной конформации антигена MOMP в составе вакцины создает значительные технологические трудности и делает процесс производства такой вакцины избыточно дорогостоящим (Sun, 2009; Schautteet, 2012).- the need to maintain the native conformation of the MOMP antigen in the composition of the vaccine creates significant technological difficulties and makes the production process of such a vaccine unnecessarily expensive (Sun, 2009; Schautteet, 2012).
Кроме того, данный антиген является вариабельным, что также существенно ограничивает эффективность иммунного ответа на него в отношении различных серотипов C. trachomatis (Zhang Y.X. et al. Protective monoclonal antibodies to Chlamydia trachomatis serovar- and serogroup-specific major outer membrane protein determinants. // Infect Immun. 1989.V. 57. №2. P. 636-8; Ramsey, 2009; Mossman D. et al. Genotyping of urogenital Chlamydia trachomatis in Regional New South Wales, Australia. Sex Transm Dis. 2008. 35: 614-616).In addition, this antigen is variable, which also significantly limits the effectiveness of the immune response against various serotypes of C. trachomatis (Zhang YX et al. Protective monoclonal antibodies to Chlamydia trachomatis serovar- and serogroup-specific major outer membrane protein determinants. // Infect Immun. 1989.V. 57. No. 2. P. 636-8; Ramsey, 2009; Mossman D. et al. Genotyping of urogenital Chlamydia trachomatis in Regional New South Wales, Australia. Sex Transm Dis. 2008. 35: 614 -616).
Раскрытие изобретенияDisclosure of invention
Задача настоящего изобретения направлена на получение действующего вещества иммуногенной композиции против урогенитального хламидиоза человека - штамма рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы, который может быть использован для создания иммуногенной композиции без использования адьювантов, эффективной для однократного введения в качестве праймирующего компонента противохламидийной вакцины человеку, за счет того, что антиген нарабатывается непосредственно в клетках организма человека и обладающей широким спектром действия в отношении различных серотипов C. Trachomatis.The objective of the present invention is directed to obtaining the active substance of an immunogenic composition against human urogenital chlamydia - a strain of a recombinant pseudo-adenovirus particle, which can be used to create an immunogenic composition without the use of adjuvants, effective for a single administration as a priming component of an antichlamydia vaccine to a person, due to the fact that the antigen it is produced directly in the cells of the human body and has a wide spectrum of action in relation to various serotypes of C. Trachomatis.
Технический результат достигается за счет того, что получен штамм рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы, экспрессирующий химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis, несущий в составе экспрессирующей констурукции нуклеотидную последовательность SEQ ID NO: 1 химерного гена MBL-CT666 Chlamydia trachomatis, который после введения в организм субъекта продуцирует химерный белок MBL-CT666 Chlamydia trachomatis в виде аминокислотной последовательности SEQ ID NO: 2, индуцирующий защиту от урогенитального хламидиоза человека.The technical result is achieved due to the fact that a strain of a recombinant pseudo-adenovirus particle is obtained that expresses the chlamydia trachomatis MBL-CT666 chimeric gene, which contains the nucleotide sequence SEQ ID NO: 1 of the Chlamydia trachomatis MBL-CT666 chimeric gene, which, after introduction into the subject, is produced Chlamydia trachomatis chimeric protein MBL-CT666 in the form of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2, which induces protection against human urogenital chlamydia.
Способ получения штамма рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы, экспрессирующий химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis заключается в том, что штамм получают путем гомологичной рекомбинации в клетках E.coli штамма BJ5183 между плазмидой pShuttle-CMV (#240007 , pShuttle-CMV vector, Agilent, US, несущей кассету с химерным геном MBL-CT666 Chlamydia trachomatis, переклонированном из плазмиды pAL2-T, и ДНК аденовируса человека 5 серотипа с делецией в области E1 и Е3 генома аденовируса, причем сборку рекомбинантных псевдоаденовирусных наночастиц проводят в клетках линии HEK293, Human embryonic kidney 293, после трансфекции рекомбинантной ДНК pAd-MBL-CT666, при этом в результате конструирования экспрессирующая кассета содержит CMV-промотор цитомегаловируса человека, целевой ген - химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis, пА-сигнал полиаденилирования и находится в области делеции E1 генома аденовируса, при этом используют полимеразную цепную реакцию со специфическими праймерами:A method for producing a recombinant pseudo-adenovirus particle strain expressing the chlamydia trachomatis MBL-CT666 chimeric gene is that the strain is obtained by homologous recombination in E. coli cells of strain BJ5183 between pShuttle-CMV plasmid (# 240007, pShuttle-CMV vector, Agilent, US, Agilent, US, carrying a cassette with the chlamydia trachomatis MBL-CT666 chimeric gene , cloned from the pAL2-T plasmid and
на гексон аденовируса:on adenovirus hexon:
ADH01 ACTACAAYATTGGCTACCAGG;ADH01 ACTACAAYATTGGCTACCAGG;
ADH02 CAAAACATAAAGAAGKGTGGGC.ADH02 CAAAACATAAAGAAGKGTGGGC.
на химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis:for the chimeric gene MBL-CT666 of Chlamydia trachomatis:
CT666-For CAAGGACTGAGAGGCTTGCA;CT666-For CAAGGACTGAGAGGCTTGCA;
CT666-Rev TCTCGGTGTTCACAGCTGTC.CT666-Rev TCTCGGTGTTCACAGCTGTC.
Получена иммуногенная композиция, содержащая штамм рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы, экспрессирующий химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis для применения в количестве не менее 2×108-БОЕ/мл, при этом она содержит фармацевтически приемлемый буферный раствор до 0,5-1,0 мл, объем дозы составляет 0,5-1,0 мл во флаконе.An immunogenic composition is obtained containing a recombinant pseudo-adenovirus particle strain expressing the chimeric gene MBL-CT666Chlamydia trachomatisfor application in an amount of at least 2 × 108-BOU / ml, while it contains a pharmaceutically acceptable buffer solution up to 0.5-1.0 ml, the dose volume is 0.5-1.0 ml in a bottle.
Заявлено применение иммуногенной композиции, содержащей штамм рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы, экспрессирующий химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis по в качестве прайм-компонента вакцины против хламидиоза для защиты от урогенитального хламидиоза человека.The use of an immunogenic composition containing a recombinant pseudo-adenovirus particle strain expressing the chlamydia trachomatis po MBL-CT666 chimeric gene as a prime component of the chlamydia vaccine to protect against human urogenital chlamydia is claimed.
Описание фигурDescription of figures
На фигуре 1 In the figure 1
представлена нуклеотидная последовательность химерного гена MBL-CT666 Chlamydia trachomatis длиной 717 п.о. (пар оснований), модифицированная для усиленной экспрессии в клетках человека, обозначенная SEQ ID NO: 1.presents the nucleotide sequence of the chimeric gene MBL-CT666 Chlamydia trachomatis with a length of 717 bp (base pairs), modified for enhanced expression in human cells, designated SEQ ID NO: 1.
На фигуре 2 In figure 2
представлена аминокислотная последовательность химерного гена MBL-CT666 Chlamydia trachomatis, обозначенная SEQ ID NO: 2.The amino acid sequence of the chlamydia trachomatis MBL-CT666 chimeric gene is shown as SEQ ID NO: 2.
На фигуре 3 In figure 3
изображена схема штамма рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущей химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis, полученного на основе аденовирусного генома человека 5 серотипа со вставкой экспрессионной кассеты, несущей химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis в месте делеции гена Е1 (ΔE1). ΔE3 - удаленный ген E3.The scheme of a recombinant pseudo-adenovirus particle strain based on the
Экспрессионная кассета содержит:Expression cassette contains:
CMV-промотор цитомегаловируса человека, CMV promoter of human cytomegalovirus,
пА-сигнал полиаденилирования, PA signal polyadenylation,
Ген C. trachomatis (CT666), C. trachomatis gene (CT666),
Глицин - сериновый спейсерGlycine - Serine Spacer
Ген маннозо-связывающего лектина Mus musculus (MBL).Mus musculus mannose-binding lectin gene (MBL).
На фигуре 4 In figure 4
представлены результаты определения подлинности созданного штамма рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущей химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis методом ПЦР. На треках полиакриламидного геля изображены: ПЦР на аденовирусный геном (гексон аденовируса): 1 - отрицательный контроль; 2 - положительный контроль; 3 - образец препарата штамма рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущей химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis. ПЦР на химерный ген (MBL-CT666): 5 - отрицательный контроль; 6 - положительный контроль; 7 - образец препарата штамма рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущей химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis; М - маркер молекулярного веса.The results of determining the authenticity of the created strain of a recombinant pseudo-adenoviral particle based on the
Детекция осуществлялась с помощью пары специфических праймеров. Detection was carried out using a pair of specific primers.
- AdH01 / AdH02 на гексон аденовируса (величина амплифицируемого фрагмента 440 п.н.);- AdH01 / AdH02 per adenovirus hexon (magnitude of the amplified fragment 440 bp);
- CT666-for / CT666-rev на химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis (величина амплифицируемого фрагмента 478 п.н.).- CT666-for / CT666-rev for the chlamydia trachomatis MBL-CT666 chimeric gene (magnitude of the amplified fragment 478 bp).
Наличие генома штамма рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы на основе генома аденовируса человека 5 серотипа и целевой химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis подтверждается визуализацией в виде полос молекулярным весом 440 п.н. и 478 п.н., соответственно. Аналогичные полосы присутствуют на треках положительного контроля и отсутствуют на треках отрицательного контроля.The presence of the genome of the recombinant pseudo-adenovirus particle strain based on the
На фигуре 5 In figure 5
представлены результаты анализа экспрессии химерного белка Chlamydia trachomatis методом иммуноблоттинга. Анализ проведен в денатурирующих условиях, в культуре клеток НЕК293 после заражения штаммом рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущих химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis, в реакции со специфическими антителами к белку CdSf Chlamydia trachomatis (специфичность антител подтверждена на треке 1 связыванием с рекомбинантным белком CdSf Chlamydia trachomatis молекулярной массой около 10 кДа). На иммунореплике присутствует зона специфического взаимодействия белков с молекулярной массой около 24 кДа с кроличьими антителами на треке 2, при этом связывание с отрицательным контрольным образцом отсутствует на треке 3. The results of the analysis of the expression of the chimeric Chlamydia trachomatis protein by immunoblotting are presented. The analysis was performed under denaturing conditions in a HEK293 cell culture after infection with a recombinant pseudo-adenovirus particle strain based on the
На треках блотта расположены: On the blot tracks are located:
1 - Положительный контроль - рекомбинантный белок rMBL-CT666 C. trachomatis, стандарт СОП.1 - Positive control - recombinant protein rMBL-CT666 C. trachomatis , standard SOP.
2 - Опытный образец, клетки НЕК293 зараженные штаммом рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущих химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis, образец прогрет при 100°С в присутствии ДТТ.2 - A test sample, HEK293 cells infected with a strain of recombinant pseudo-adenovirus particles based on the
3 - Отрицательный контроль, клетки НЕК293 незараженные штаммом рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущих химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis. 3 - Negative control, HEK293 cells uninfected with a recombinant pseudo-adenovirus particle strain based on the
Маркером молекулярного веса служили белковые цветные маркеры молекулярных масс PageRuler™ 10-200 кДа («ThermoScientific», США).The molecular weight marker was protein color markers of molecular weights PageRuler ™ 10-200 kDa (ThermoScientific, USA).
На фигуре 6 In figure 6
изображены результаты оценки специфических антител класса IgG к антигену CdsF на 14 день (А) и 28 день (Б) после интраназальной иммунизации опытной группы мышей иммуногенной композицией, содержащей штамм рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущих химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis (Ad-MBL-CT666). Контролями служили группы мышей которым вводили аденовирусный вектор без вставки (Ad-null) и физиологический раствор (ОК).depicts the results of the evaluation of specific IgG antibodies to CdsF antigen on day 14 (A) and day 28 (B) after intranasal immunization of the experimental group of mice with an immunogenic composition containing a recombinant pseudo-adenovirus particle strain based on the
На фигуре 7 In the figure 7
отображены результаты оценки методом ИФА специфических антител класса IgG изотипов IgG2a (А) и IgG1 (Б) к антигену CdsF (СТ666) C. trachomatis в сыворотках крови иммунизированных мышей по схеме «прайм-буст» (Ad-MBL-CT666+rMBL-CT666). Сыворотки крови от иммунизированных по схеме «прайм-буст» мышей были получены на 14 день после бустирования.EIA evaluation of specific IgG antibodies of the IgG2a (A) and IgG1 (B) isotypes against the CdsF (CT666) antigen of C. trachomatis in the blood serum of immunized mice according to the prime boost scheme (Ad-MBL-CT666 + rMBL-CT666 ) Blood serum from a prime boost immunized mice was obtained on day 14 after boosting.
Праймирующим компонентом противохламидийной вакцины служила иммуногенная композиция, содержащая штамм рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущих химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis (Ad-MBL-CT666), бустирующим - рекомбинантный белок rMBL-CT666 Chlamydia trachomatis с MPLA (monophosphoryl lipid A, монофосфорил липид А). Контролями служили группы мышей которым вводили аденовирусный вектор без вставки (Ad-null) и физиологический раствор (ОК).Priming component protivohlamidiynoy vaccine served immunogenic composition comprising a strain of recombinant psevdoadenovirusnyh based particles of
На фигуре 8 In figure 8
изображены результаты определения количества Т-лимфоцитов, продуцирующих ИФγ, методом ELISPOT in vitro.The results of determining the number of T-lymphocytes producing IFγ by ELISPOT in vitro are shown.
Первой группе мышей вводили праймирующий компонент противохламидийной вакцины, которым служила иммуногенная композиция, содержащая штамм рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущих химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis, бустирующий компонент - рекомбинантный белок rMBL-CT666 Chlamydia trachomatis с MPLA. Контролями служили группы мышей которым вводили аденовирусный вектор без вставки (Ad-null) и физиологический раствор (ОК). Представлены три варианта постановки опыта: без стимуляции антигеном, со стимуляцией рекомбинантным белком CdsF и со стимуляцией Chlamydia trachomatis. The first group of mice was injected with the priming component of the anti-chlamydia vaccine, which was an immunogenic composition containing a recombinant pseudo-adenovirus particle strain based on the
На фигуре 9 In figure 9
представлены результаты оценки пролиферации Т-клеток, полученных от мышей, вакцинированных по схеме «прайм-буст» в ответ на стимуляцию антигеном CdsF или С. trachomatis. presents the results of evaluating the proliferation of T cells obtained from mice vaccinated according to the “prime boost” scheme in response to stimulation with the CdsF or C. trachomatis antigen.
А - Пролиферация Аг-специфических CD4+ Т-клеток в ответ на CdsF;A - Proliferation of Ag-specific CD4 + T cells in response to CdsF;
Б - Пролиферация Аг-специфических CD4+ Т-клеток в ответ на C. trachomatis;B - Proliferation of Ag-specific CD4 + T cells in response to C. trachomatis;
В - Пролиферация Аг-специфических CD8+ Т-клеток в ответ на CdsF;B - Proliferation of Ag-specific CD8 + T cells in response to CdsF;
Г - Пролиферация Аг-специфических CD8+ Т-клеток в ответ на C. Trachomatis.D - Proliferation of Ag-specific CD8 + T cells in response to C. Trachomatis.
На фигуре 10 In figure 10
отображены патологические изменения в матке и яичниках, оцененные методом прямой визуализации. Вводимые вещества группам мышей:displayed pathological changes in the uterus and ovaries, evaluated by direct visualization. Introduced substances to groups of mice:
А. Ad-MBL-CT666+rMBL-CT666 (праймирующий компонент противохламидийной вакцины, которым служила иммуногенная композиция, содержащая штамм рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущих химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis, бустирующий компонент - рекомбинантный белок rMBL-CT666 Chlamydia trachomatis с MPLA);A. Ad-MBL-CT666 + rMBL-CT666 (the priming component of the anti-chlamydia vaccine, which was an immunogenic composition containing a recombinant pseudo-adenovirus particle strain based on the
Б. Ad-null (отрицательный контроль)B. Ad-null (negative control)
В. C. trachomatis (положительный контроль). B. C. trachomatis (positive control).
На фигуре 11 In figure 11
представлены результаты оценки подавления хламидийной инфекции в нижних отделах урогенитального тракта после заражения C. trachomatis. А. на 3 день (*p ≤ 0,05); Б. на 6 день (*p ≤ 0,05); В. на 9 день (*p ≤ 0,001); Г. на 15 день (*p ≤ 0,001); Д. на 20 день (*p ≤ 0,001).The results of evaluating the suppression of chlamydial infection in the lower parts of the urogenital tract after infection with C. trachomatis are presented. A. on day 3 (* p ≤ 0.05); B. on day 6 (* p ≤ 0.05); B. on day 9 (* p ≤ 0.001); G. on day 15 (* p ≤ 0.001); D. on day 20 (* p ≤ 0.001).
Реализация изобретения.The implementation of the invention.
Перспективным в качестве антигена для противохламидийных вакцин является структурный белок CdsF (СТ666) системы секреции третьего типа (ССТТ) Chlamydia trachomatis, являющегося доминирующим фактором патогенности. Являясь основным белком инжектосомы третьей транспортной системы хламидий, белок CdsF концентрируется на внешней мембране хламидийных элементарных телец (ЭТ) и ретикулярных телец (РТ) и формирует поверхностную структуру, обозначаемую как «игла» (Dai W., Li Z. Conserved type III secretion system exerts important roles in Chlamydia trachomatis // Int J Clin Exp Pathol. 2014. Vol. 7(9). P. 5404-5414.). Во время контакта с эукариотической клеткой происходит полимеризация белка CdsF и, как следствие, активация (сборка) инжектосомы. Формирование иммунного ответа против этого ключевого компонента ССТТ хламидий представляется крайне перспективным. Будучи структурным белком ССТТ, CdsF экспрессирован на мембране хламидий на всех стадиях развития патогена, в том числе, как при острой, так и при хронической инфекциях. Кроме этого, хламидийный белок «иглы» CdsF ССТТ содержит остатки цистеина, которые являются уникальными для белков «иглы» ССТТ (Betts H.J. et al. Bioinformatic and biochemical evidence for the identification of the type III secretion system needle protein of Chlamydia trachomatis // J. Bacteriol. 2008. V. 190, P. 1680-1690). Дисульфидные связи в полимеризованной «игле» ССТТ связаны со степенью окисления оболочки хламидий и стадиями развития патогена (Betts H.J. and Fields K.A. The Chlamydial Type III Secretion Mechanism: Reveiling Cracks in a Tough Nut // Front Microbiol. 2010. V. 1. P. 114). Дисульфидные связи, обнаруженные у CdsF, локализованного у элементарных телец (ЭТ), участвовуют в функционировании секреторного аппарата хламидий. A promising antigen for antichlamydia vaccines is the structural protein CdsF (CT666) of the third type secretion system (CCT) of Chlamydia trachomatis , which is the dominant pathogenicity factor. Being the main injectosome protein of the third chlamydial transport system, CdsF protein concentrates on the outer membrane of chlamydial elementary bodies (ETs) and reticular bodies (PTs) and forms a surface structure, designated as a “needle” (Dai W., Li Z. Conserved type III secretion system exerts important roles in Chlamydia trachomatis // Int J Clin Exp Pathol. 2014. Vol. 7 (9). P. 5404-5414.). During contact with a eukaryotic cell, the CdsF protein polymerizes and, as a result, the injection (assembly) of the injectosome. The formation of an immune response against this key component of CCT chlamydia seems extremely promising. Being a structural protein of CCTT, CdsF is expressed on the chlamydial membrane at all stages of the development of the pathogen, including both in acute and chronic infections. In addition, the CdsF CCTT “needle” chlamydial protein contains cysteine residues that are unique to the CCTT “needle” proteins (Betts HJ et al. Bioinformatic and biochemical evidence for the identification of the type III secretion system needle protein of Chlamydia trachomatis // J Bacteriol. 2008. V. 190, P. 1680-1690). Disulfide bonds in the polymerized “needle” of CCTT are associated with the oxidation state of the chlamydial membrane and the stages of pathogen development (Betts HJ and Fields KA The Chlamydial Type III Secretion Mechanism: Reveiling Cracks in a Tough Nut // Front Microbiol. 2010. V. 1. P. 114). Disulfide bonds found in CdsF localized in elementary bodies (ETs) are involved in the functioning of the chlamydial secretory apparatus.
Ввиду консервативности структур системы ССТТ у всех представителей рода Chlamydia, белок CdsF, введенный в качестве антигена вакцины, или иммуногенной композиции, будет индуцировать иммунитет широкого спектра действия (Зигангирова Н.А., Заякин Е.С. и др. Создание ингибиторов системы секреции типа III C. trachomatis, подавляющих развитие острой и хронической хламидийной инфекции // Acta naturae, T.4, №2(13), 2012, стр. 90-100).Due to the conservatism of the structures of the CCT system in all representatives of the genus Chlamydia, the CdsF protein introduced as a vaccine antigen or immunogenic composition will induce broad-spectrum immunity (Zigangirova N.A., Zayakin E.S. et al. Development of inhibitors of type secretion system III C. trachomatis, inhibiting the development of acute and chronic chlamydial infection // Acta naturae, T.4, No. 2 (13), 2012, pp. 90-100).
Совокупность указанных данных делает белок CdsF (СТ666 Chlamydia trachomatis) обусловленно примененимым в качестве антигена для иммуногенных композиций против урогенитального хламидиоза.The combination of these data makes the CdsF protein (CT666 Chlamydia trachomatis ) conditionally used as an antigen for immunogenic compositions against urogenital chlamydia.
Поскольку антигены, обладающие наибольшим протективным потенциалом, не всегда являются высокоиммуногенными, разработка эффективных и безопасных систем доставки, разрешенных в клинической практике, является крайне актуальной задачей. Since antigens with the greatest protective potential are not always highly immunogenic, the development of effective and safe delivery systems that are permitted in clinical practice is an extremely urgent task.
Вирусные векторы являются перспективным подходом к разработке эффективных и безопасных систем доставки. Из них наиболее широко используемыми и изученными являются аденовирусы. Вакцины на основе таких векторов в настоящее время прошли или проходят клинические исследования.Viral vectors are a promising approach to developing effective and safe delivery systems. Of these, the most widely used and studied are adenoviruses. Vaccines based on such vectors are currently undergoing or are undergoing clinical trials.
Применение аденовирусных векторов в качестве платформы для создания вакцин и иммуногенных композиций против хламидийной инфекции обусловлено тем, что иммунизация такими препаратами эффективно активируют цитотоксические Т-лимфоциты, что особенно важно при вакцинации против внутриклеточных патогенов. К тому же, их особенностью является способность доставлять антиген через слизистые оболочки, что является значимым против инфекций, передающихся половым путем (ИППП). [Schagena F.H.E. et al. Immune responses against adenoviral vectors and their transgene products: a review of strategies for evasion, Critical Reviews. // Oncology/Hematology. 2004. V. 50. №1. P. 51-70. ] The use of adenoviral vectors as a platform for creating vaccines and immunogenic compositions against chlamydial infection is due to the fact that immunization with such drugs effectively activate cytotoxic T-lymphocytes, which is especially important when vaccinating against intracellular pathogens. In addition, their feature is the ability to deliver antigen through the mucous membranes, which is significant against sexually transmitted infections (STIs). [Schagena F.H.E. et al. Immune responses against adenoviral vectors and their transgene products: a review of strategies for evasion, Critical Reviews. // Oncology / Hematology. 2004. V. 50. No. 1. P. 51-70. ]
Они обладают рядом преимуществ. Рекомбинантные аденовирусные векторы являются репликативно - дефектными и не способны вызывать заболевания. Безопасность аденовирусов человека пятого серотипа с делетированными Е1 и Е3 областями генома подтверждается клиническими испытаниями различных вакцинных и терапевтических препаратов на их основе. Они не требуют многократных дополнительных введений, так как экспрессия целевого антигена происходит непосредственно в организме иммунизированного субъекта. Также важным при урогенитальном хламидиозе является то, что при проведении интраназальной иммунизации рекомбинантными аденовирусными векторами индуцируется образование мукозального иммунного ответа, в том числе, на слизистых оболочках полового тракта. They have several advantages. Recombinant adenoviral vectors are replicatively defective and not capable of causing disease. The safety of human adenoviruses of the fifth serotype with deleted E1 and E3 regions of the genome is confirmed by clinical trials of various vaccine and therapeutic drugs based on them. They do not require multiple additional introductions, since the expression of the target antigen occurs directly in the body of the immunized subject. It is also important for urogenital chlamydia that the intranasal immunization with recombinant adenovirus vectors induces the formation of a mucosal immune response, including on the mucous membranes of the genital tract.
Рекомбинантные аденовирусные векторы по сравнению с рекомбинантными белками, получаемыми в культуре эукариотов, более дешевы и высокоиммуногенны, так как их небольшая доза позволяет продуцировать в организме значительные количества белка. Разработаны быстрые и гибкие технологии получения рекомбинантных аденовирусных векторов, позволяющие реализовывать на одной технологической линии масштабное производство различных кандидатных вакцин на их основе. Recombinant adenoviral vectors, compared with recombinant proteins obtained in eukaryotic culture, are cheaper and highly immunogenic, since their small dose allows significant amounts of protein to be produced in the body. Fast and flexible technologies for the production of recombinant adenoviral vectors have been developed, which allow the large-scale production of various candidate vaccines based on them to be implemented on one technological line.
Примеры осуществления заявленного изобретения Examples of the claimed invention
Примеры приведены для более подробной иллюстрации настоящего изобретения и не ограничивают объем изобретения: Examples are provided to illustrate the present invention in more detail and do not limit the scope of the invention:
Пример 1. Example 1
Создание химерного гена MBL-CT666 Chlamydia trachomatis.The creation of the chimeric gene MBL-CT666 Chlamydia trachomatis .
Пример 2. Example 2
Конструирование штамма рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы, экспрессирующей химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis. Construction of a strain of a recombinant pseudo-adenovirus particle expressing the chlamydia trachomatis MBL-CT666 chimeric gene .
Пример 3. Example 3
Изучение экспрессии химерного гена MBL-CT666 Chlamydia trachomatis штаммом рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущей химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis. The study of the expression of the chlamydia trachomatis MBL-CT666 chimeric gene of the recombinant pseudo-adenovirus particle strain based on the
Пример 4. Example 4
Получение иммуногенной композиции, содержащей штамм рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущей химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis.Obtaining an immunogenic composition containing a strain of a recombinant pseudo-adenovirus particle based on the
Пример 5. Example 5
Изучение иммуногенных свойств штамма рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущей химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis.Study of the immunogenic properties of a recombinant pseudo-adenovirus particle strain based on the
Пример 6. Example 6
Иммуногенные свойства вакцины против урогенитального хламидиоза, содержащей штамм рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущей химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis в качестве прайм-компонента.Immunogenic properties of the urogenital chlamydia vaccine containing the recombinant pseudo-adenovirus particle strain based on the
Пример 7. Example 7
Протективные свойства вакцины против урогенитального хламидиоза, содержащей штамм рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущей химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis в качестве прайм-компонента.The protective properties of the urogenital chlamydia vaccine containing a recombinant pseudo-adenovirus particle strain based on the
Пример 1. Example 1
Создание химерного гена MBL-CT666 Chlamydia trachomatis The creation of the chimeric gene MBL-CT666 Chlamydia trachomatis
В данном примере рассмотрен процесс получения химерного гена MBL-CT666 Chlamydia trachomatis методом in silico, необходимого для дальнейшего встраивания в рекомбинантную псевдоаденовирусную частицу в качестве целевого антигена, способную индуцировать при введении в организм специфические гуморальный и клеточный иммунитет к Chlamydia trachomatis. This example describes the process of obtaining the chlamydia trachomatis MBL-CT666 chimeric gene by the in silico method, which is necessary for further incorporation into the recombinant pseudo-adenovirus particle as a target antigen capable of inducing specific humoral and cellular immunity to Chlamydia trachomatis when introduced into the body.
Для этого in silico была разработана уникальная последовательность химерного гена MBL-CT666 Chlamydia trachomatis SEQ ID NO: 1, состоящего из нескольких частей:For this, a unique sequence of the chimeric gene MBL-CT666 of Chlamydia trachomatis SEQ ID NO: 1 , consisting of several parts, was developed in silico :
1) Сайт Bsu15I (ATCGAT) и метилированный XbaI (TCTAGA); 1) Bsu15I site (ATCGAT) and methylated XbaI (TCTAGA);
2) 133 N-концевых аминокислоты маннозо-связывающего лектина (MBL) (аминокислотная последовательность № P11226 взятые из открытой базы данных последовательностей белков UniProtKB, нуклеотидная - NCBI ID CAA33462.1). Данный коллагеновый домен олигомеризует (восьмиугольники шести тримерных субъединиц) антиген для усиления иммуногенных свойств химерного белка Chlamydia trachomatis, а также помогает секретировать его из клетки. 2) 133 N-terminal amino acids of mannose binding lectin (MBL) (amino acid sequence No. P11226 taken from the UniProtKB open protein sequence database, nucleotide — NCBI ID CAA33462.1). This collagen domain oligomerizes (octagons of six trimeric subunits) an antigen to enhance the immunogenic properties of the Chlamydia trachomatis chimeric protein, and also helps to secrete it from the cell.
3) Спейсер (гибкий глицин-сериновый). Служит для разделения двух функциональных доменов и, следовательно, правильного фолдинга белка.3) Spacer (flexible glycine-serine). Serves to separate the two functional domains and, therefore, the correct folding of the protein.
4) Сайт рестрикции BcuI (ACTAGT); 4) BcuI restriction site (ACTAGT);
5) Собственно антиген CT666 Chlamydia trachomatis (аминокислотная последовательность по № O84673 взята из открытой базы данных UniProtKB). Работу проводили с кодирующей ее нуклеотидной последовательностью;5) Actually CT666 antigen of Chlamydia trachomatis (amino acid sequence according to No. O84673 taken from the UniProtKB open database). The work was carried out with the nucleotide sequence encoding it;
6) Стоп - кодон - TAA;6) Stop - codon - TAA;
7) Сайт рестрикции XbaI (TCTAGA).7) XbaI restriction site (TCTAGA).
Для улучшения в дальнейшем экспрессии химерного гена MBL-CT666 Chlamydia trachomatis рекомбинантными псевдоаденовирусными частицами, сначала была взята нуклеотидная последовательность, состоящая из 7 составных частей, указанных выше, кодоны которой модифицировали для усиленной экспрессии в клетках Homo sapiens, с сохранением сайта BcuI (ACTAGT).To improve the further expression of the Chlamydia trachomatis MBL-CT666 chimeric gene by recombinant pseudo-adenovirus particles, the nucleotide sequence consisting of 7 parts mentioned above was first taken, the codons of which were modified for enhanced expression in Homo sapiens cells, preserving the BcuI site (ACTAGT).
Таким образом, в результате конструирования была получена нуклеотидная последовательность химерного гена MBL-CT666 Chlamydia trachomatis длиной 717 п.о. (пар оснований), модифицированная для усиленной экспрессии в клетках человека, обозначенная SEQ ID NO: 1 (Фигура 1). Продуцируемый штаммом рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы химерный белок MBL-CT666 Chlamydia trachomatis имеет аминокислотную последовательность SEQ ID NO: 2 (Фигура 2).Thus, as a result of construction, the nucleotide sequence of the chimeric gene MBL-CT666 of Chlamydia trachomatis with a length of 717 bp was obtained. (bp), modified for enhanced expression in human cells, designated SEQ ID NO: 1 (Figure 1). The chlamydia trachomatis MBL-CT666 chimeric protein produced by the recombinant pseudo-adenovirus particle strain has the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 (Figure 2).
Далее нуклеотидная последовательность SEQ ID NO: 1 модифицированного химерного гена MBL-CT666 Chlamydia trachomatis была синтезирована химически и получена в составе плазмиды pAL2-T (Евроген, РФ) и применялась при конструировании штамма. Next, the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 1 of the modified chlamydia trachomatis MBL-CT666 chimeric gene was chemically synthesized and obtained using the plasmid pAL2-T (Eurogen, RF) and was used to construct the strain.
В результате, с помощью метода in silica была разработана нуклеотидная последовательность SEQ ID NO: 1 (кодирующая аминокислотную последовательность SEQ ID NO: 2) химерного гена MBL-CT666 Chlamydia trachomatis, которая была необходима для встраивания в рекомбинантную псевдоаденовирусную частицу в качестве целевого гена, для получения заявленного штамма рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущей химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis. As a result, the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 1 (coding for the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2) of the Chlamydia trachomatis MBL-CT666 chimeric gene, which was necessary for incorporation into the recombinant pseudo-adenovirus particle as the target gene, was developed using the in silica method. obtaining the claimed strain of a recombinant pseudo-adenovirus particle based on the
Пример 2. Example 2
Конструирование штамма рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы, экспрессирующей химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis Construction of a strain of a recombinant pseudo-adenovirus particle expressing the chlamydia trachomatis MBL-CT666 chimeric gene
В примере рассмотрен процесс конструирования рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы (РПАН), со вставкой химерного гена MBL-CT666 Chlamydia trachomatis в области делеции E1 генома аденовируса человека 5 серотипа. The example describes the process of constructing a recombinant pseudo-adenovirus particle (RPAN), with the insertion of the chlamydia trachomatis MBL-CT666 chimeric gene in the region of the E1 deletion of the
Количественную оценку (титр) полученных в работе рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц определяли методом бляшкообразования на клеточной линии 293-HEK (клетки почки эмбриона человека, human embryo kidney), оценка титра велась по БОЕ (бляшкообразующие единицы).A quantitative assessment (titer) of recombinant pseudo-adenovirus particles obtained in the work was determined by plaque formation on the 293-HEK cell line (human embryo kidney cells, human embryo kidney), titer was assessed by PFU (plaque-forming units).
Процесс получения штамма рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущей химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis состоял из нескольких основных этапов, суть которых известна специалисту данной области, основывался на общеизвестных методиках (например, Sambrook J. et al., Molecular cloning: a laboratory manual, 3rd ed., Russell, 2001, том 1, 2, 3 - Молекулярное клонирование - лабораторное руководство) и поэтому в данном примере подробно не рассматривается, указывая лишь на самые основные этапы. The process of obtaining a recombinant pseudo-adenovirus particle strain based on the
Штамм был получен путем гомологичной рекомбинации в клетках E.coli штамма BJ5183 (например, #200154, Skygen, РФ) между плазмидой pShuttle-CMV (#240007 (pShuttle-CMV vector, Agilent, US) несущей кассету с химерным геном MBL-CT666 Chlamydia trachomatis (переклонированном из плазмиды pAL2-T), и ДНК аденовируса человека 5 серотипа с делецией в области E1 и Е3 генома аденовируса. Сборка рекомбинантных псевдоаденовирусных наночастиц проводилась в клетках линии HEK293 (Human embryonic kidney 293) после трансфекции рекомбинантной ДНК pAd-MBL-CT666. Трансфекцию проводили реагентом Lipofectamin (Invitrogen, США) согласно прилагаемому руководству в 24-луночном планшете на клетках линии HEK293 с 90%-ной конфлюэнтностью. Схема полученной конструкции изображена на фигуре 3. В результате конструирования экспрессирующая кассета содержала CMV-промотор цитомегаловируса человека, целевой ген - химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis, пА-сигнал полиаденилирования и находилась в области делеции E1 генома аденовируса.The strain was obtained by homologous recombination in E. coli cells of strain BJ5183 (e.g., # 200154, Skygen, RF) between the pShuttle-CMV plasmid (# 240007 (pShuttle-CMV vector, Agilent, US) carrying the Chlamydia chimeric gene MBL-CT666 trachomatis (cloned from pAL2-T plasmid) and human
Через десять суток после трансфекции наблюдали цитопатическое действие (ЦПД) вируса. Полученные вирусные образцы, в виде суспензии заражённых клеток с титром 108 БОЕ/мл, хранили при температуре минус 70°С в среде для культивирования DMEM (Invitrogen, кат. №52100-047, США) с 10% эмбриональной бычьей сыворотки (Hy Clone, кат. № SV30160.03, Великобритания). В таком виде штамм рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущей химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis был депонирован.Ten days after transfection, the cytopathic effect of the virus was observed. The resulting viral samples, in the form of a suspension of infected cells with a titer of 10 8 PFU / ml, were stored at a temperature of minus 70 ° C in a DMEM cultivation medium (Invitrogen, Cat. No. 52100-047, USA) with 10% fetal bovine serum (Hy Clone Cat. No. SV30160.03, UK). As such, a strain of a recombinant pseudo-adenovirus particle based on the
Получение штамма рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущей химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis, было подтверждено результатами ПЦР со специфическими праймерами (представлен на фигуре 4).The preparation of a recombinant pseudo-adenovirus particle strain based on the
Использовали пару праймеров на гексон аденовируса:Used a pair of primers for adenovirus hexon:
ADH01 ACTACAAYATTGGCTACCAGG;ADH01 ACTACAAYATTGGCTACCAGG;
ADH02 CAAAACATAAAGAAGKGTGGGC.ADH02 CAAAACATAAAGAAGKGTGGGC.
Пара праймеров на химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis: A pair of primers for the chimeric gene MBL-CT666 Chlamydia trachomatis:
CT666-For CAAGGACTGAGAGGCTTGCA;CT666-For CAAGGACTGAGAGGCTTGCA;
CT666-Rev TCTCGGTGTTCACAGCTGTC.CT666-Rev TCTCGGTGTTCACAGCTGTC.
Полученный штамм рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущей химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis (Ad-MBL-CT666) зарегистрирован в Государственной коллекции микроорганизмов при ФГБУ «НИЦ эпидемиологии и микробиологии имени Н.Ф. Гамалеи» (Музей генно-инженерно-модифицированных микроорганизмов) под №22. Штамм продуцирует химерный белок MBL-CT666 Chlamydia trachomatis в клетках организма субъекта.The resulting strain of a recombinant pseudo-adenovirus particle based on the
Таким образом, был создан штамм рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущей химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis.Thus, a recombinant pseudo-adenovirus particle strain was created based on the
Пример 3. Example 3
Изучение экспрессии химерного гена MBL-CT666 Chlamydia trachomatis штаммом рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущей химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis Study of the expression of the chlamydia trachomatis MBL-CT666 chimeric gene of a recombinant pseudo-adenovirus particle strain based on the
В данном примере методом in vitro показана способность экспрессировать химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis созданным по изобретению штаммом рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущих химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis. In this example, the method shown in vitro ability to express chimeric gene MBL-CT666 Chlamydia trachomatis strain created by the inventive recombinant psevdoadenovirusnyh based particles of
Анализ экспрессии целевого химерного белка Chlamydia trachomatis проводили методом электрофореза с иммуноблоттингом. С этой целью клетки линии НЕК 293 заражали штаммом рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущих химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis. На 1-е сутки клетки снимали пипетированием, суспензию ц\ф при 3000 об\мин 10 мин. К осадку добавляли лизирующий буфер в соотношении 2:1, встряхивали на льду в течении 50 минут. Затем ц\ф при 10000 об\мин 10 минут при +4°С, и супернатант использовали для анализа. Аналогично обрабатывали клетки, незараженные аденовирусом, далее использовали образец в качестве отрицательного контроля. The analysis of the expression of the target chimeric Chlamydia trachomatis protein was performed by immunoblotting electrophoresis. To this end, HEK 293 cells were infected with a strain of recombinant pseudo-adenovirus particles based on the
К каждой отобранной пробе, к отрицательному контролю, и положительному контролю перед проведением электрофореза добавляли 1:1 по объему буфер для образца (для приготовления буфера смешивают 2,5 мл 0,5М Tris-HCl, pH 6,8; 4 мл 10%-ного раствора SDS в воде; 310 мг дитиотреитола; 2 мл глицерина; 32 мкл 0,5 М Na-соли ЭДТА в воде (рН 6,8), 75 мкл 2,5%-ного раствора бромфенолового синего в воде, либо использовали коммерческий буфер) и инкубировали при температуре 95°С в течение 5 мин. После инкубации использовали полученные образцы для нанесения в кармашки концентрирующего ПААГ. Электрофорез проводили в течение 40 мин при постоянной силе тока 20 мА, с применением электродного буфера следующего состава: 25 мМ Tris; 0,25 М глицин; 0,1%-ный SDS, pH не доводить.To each sample taken, to a negative control and a positive control, electrophoresis was supplemented with a 1: 1 by volume buffer for the sample (to prepare a buffer, mix 2.5 ml 0.5 M Tris-HCl, pH 6.8; 4
После проведения электрофореза переносили белки из геля на нитроцеллюлозную мембрану Hybond-C extra посредством электроблоттинга в направлении, перпендикулярном направлению разделения белков. Когда бромфеноловый синий (краситель) достигал границы с буфером, гель вынимали из стекол, отделяли концентрирующий от разделяющего, разделяющий гель (помечали угол) переносили в дистиллированную воду на 5-10 мин.After electrophoresis, the proteins were transferred from the gel to the Hybond-C extra nitrocellulose membrane by electro-blotting in the direction perpendicular to the direction of protein separation. When the bromophenol blue (dye) reached the border with the buffer, the gel was removed from the glasses, the concentrating gel was separated from the separating gel (the angle was marked) and transferred to distilled water for 5-10 minutes.
Вырезанные заранее по размеру разделяющего геля фильтры (6 листов фильтровальной бумаги Whatman 3mm) и нитроцеллюлозную мембрану Hybond-C extra вымачивали не менее 10 мин в буфере для переноса (5,81 г Трис(гидроксиметил)-аминометана, 2,93 г глицина, 0,375 г SDS, 20% этилового спирта на 1 л дистиллированной воды).Filters pre-cut to the size of the gel separator (6 sheets of Whatman 3mm filter paper) and Hybond-C extra nitrocellulose membrane were soaked for at least 10 min in transfer buffer (5.81 g Tris (hydroxymethyl) aminomethane, 2.93 g glycine, 0.375 g SDS, 20% ethyl alcohol per 1 liter of distilled water).
Нитроцеллюлозную мембрану (помечали угол, совмещали с меченым углом на ПААГ), листы Whatman 3 mm и разделяющий ПАГ собирали стопкой (3 листа фильтровальной бумаги, нитроцеллюлоза, гель, 3 листа фильтровальной бумаги) в электроблотнице Trans-Blot SD semi-dry Transfer Cell (Bio-Rad), прокатывали валиком для удаления пузырьков воздуха и проводили электроперенос белков в течение 15 мин при напряжении не более 15. Мембрану помещали в буфер для блокирования участков неспецифической сорбции белка (0,5 мг/мл яичный альбумин (ЯА) в - 1×TBS-TW буфере) и инкубировали в течение ночи на шейкере при температуре 4°С, или 1 час при 37 С. Состав 10×TBS-TW буфера: 1,5 М NaCl; 0,5%Tween-20; 100 мМ Трис-HCl, рН 7,5.The nitrocellulose membrane (the angle was marked, combined with the labeled angle on the PAG),
Мембрану инкубировали на шейкере при комнатной температуре в течение часа с раствором антисыворотки (первичных антител) в разведении 1:2500 в TBS-TW с 0,5 мг/мл БСА. После инкубации мембрану промывали 3 раза по 10 мин в 1×TBS-TW буфере, перекладывали в чистую квадратную чашку Петри и инкубировали на шейкере при комнатной температуре в течение часа с антителами, коньюгированными с пероксидазой хрена (Sigma) в разведении 1:5000. Затем мембрану отмывали в 1×TBS-TW буфере 3 раза по 10 мин. Далее мембрану окрашивали хемилюминисцентным красителем ECL Prime Western Blotting Detection Reagent согласно протоколу и сканировали на приборе Amersham Imager 600, GE.The membrane was incubated on a shaker at room temperature for an hour with a solution of antiserum (primary antibodies) at a dilution of 1: 2500 in TBS-TW with 0.5 mg / ml BSA. After incubation, the membrane was washed 3 times for 10 min in 1 × TBS-TW buffer, transferred to a clean square Petri dish and incubated on a shaker at room temperature for 1 hour with antibodies conjugated to horseradish peroxidase (Sigma) at a dilution of 1: 5000. The membrane was then washed in 1 × TBS-
При анализе иммуноблоттингом первичные антитела сыворотки должны выявлять рекомбинантный белок положительного контроля, окрашивать специфическим химерный белок MBL-CT666 Chlamydia trachomatis, и не окрашивать отрицательный контроль. When immunoblot analysis is performed, primary serum antibodies should detect the recombinant positive control protein, stain with the specific chlamydia trachomatis MBL-CT666 chimeric protein, and not stain the negative control.
На фигуре 5 представлены результаты оценки экспрессии химерного гена MBL-CT666 Chlamydia trachomatis методом электрофореза с иммуноблоттингом.The figure 5 presents the results of evaluating the expression of the chimeric gene MBL-CT666 Chlamydia trachomatis by electrophoresis with immunoblotting.
По результатам анализа очевидно, что специфический сигнал связывания с белком Chlamydia trachomatis около 24 кДа (расчетная молекулярная масса равна 23742.76 Да) присутствует в треке 2, содержащим образец зараженных клеток в денатурирующих условиях. В отрицательном контроле сигнала не наблюдается. Данный факт свидетельствует о наличии экспрессии химерного гена MBL-CT666 Chlamydia trachomatis in vitro. Положительный контроль на треке 1 указывает на специфичность проведенной реакции по наличию связывания антител с рекомбинантным белком CdSf Chlamydia trachomatis. According to the results of the analysis, it is obvious that a specific signal of binding to the Chlamydia trachomatis protein of about 24 kDa (calculated molecular weight is 23742.76 Da) is present in
Таким образом, было показано, что созданный по изобретению штамм рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущих химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis, способен продуцировать соответствующий химерный белок MBL-CT666 Chlamydia trachomatis. Thus, it was shown that the inventive strain of recombinant pseudo-adenovirus particles based on the
Задача по получению штамма рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, экспрессирующего химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis выполнена.The task of obtaining a strain of recombinant pseudo-adenovirus particles based on the
Пример 4.Example 4
Получение иммуногенной композиции, содержащей штамм рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущей химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis. Obtaining an immunogenic composition containing a strain of a recombinant pseudo-adenovirus particle based on the
Для проведения экспериментов по изучению иммуногенности и протективных свойств требовалось дальнейшее наращивание штамма рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц и получение иммуногенной композиции на его основе.To conduct experiments on the study of immunogenicity and protective properties, a further increase in the strain of recombinant pseudo-adenoviral particles and the preparation of an immunogenic composition based on it were required.
Для этого штамм рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущих химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis, для введения субъекту с целью формирования иммунитета против урогенитального хламидиоза, рекомбинантные псевдоаденовирусные частицы наращивали, многостадийно очищали и формулировали приемлемым буферным раствором до получения эффективных концентраций. Детально данный процесс описан в известных источниках. For this, a strain of recombinant pseudo-adenovirus particles based on the human
В сущности своей процесс культивирования включал наращивание клеточной суспензии НЕК293 до концентрации 2×106кл/мл (24-48 часов) и засев штаммом (с титром не менее 108 БОЕ/мл, 5-10 БОЕ/клетку) с последующим выращиванием 36-60 часов до конечной концентрации не менее 2×108-БОЕ/мл, в количестве, не менее 3×1010ф.ч./мл. In essence, the cultivation process included the growth of a HEK293 cell suspension to a concentration of 2 × 10 6 cells / ml (24-48 hours) and inoculation with a strain (with a titer of at least 10 8 PFU / ml, 5-10 PFU / cell) with subsequent cultivation 36 -60 hours to a final concentration of at least 2 × 10 8 -PFU / ml, in an amount of at least 3 × 10 10 f.p./ml.
Для стерилизации полученный препарат фильтровали через систему фильтров с размером пор 0,22 мкМ и разбавляли стерильным фармацевтическим приемлемым буферным раствором, например: 10 mM TrisHCl, 75 mM NaCl, 1 mM MgCl2, 5% сахароза, 0,05% полисорбат 80, 0,5% этанол, 100 мкм ЭДТА, pH 8.0, до получения активного компонента с учетом требуемой конечной активности не менее 2×108-БОЕ/мл рекомбинантных аденовирусных частиц. Полученный объем препарата разливали по флаконам по 0,5 мл. For sterilization, the resulting preparation was filtered through a filter system with a pore size of 0.22 μM and diluted with a sterile pharmaceutical acceptable buffer solution, for example: 10 mM TrisHCl, 75 mM NaCl, 1 mM MgCl2, 5% sucrose, 0.05
Таким образом, поставленная задача по получению иммуногенной композиции, содержащей штамм рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущих химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis по изобретению была выполнена. Thus, the task of obtaining an immunogenic composition containing a strain of recombinant pseudo-adenovirus particles based on the genome of the
Возможно получение иммуногенной композиции, содержащей на дозу 0,5 мл:It is possible to obtain an immunogenic composition containing a dose of 0.5 ml:
- штамм рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущих химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis не менее 1×108 БОЕ;- a strain of recombinant pseudo-adenovirus particles based on the
- фармацевтически приемлемый буферный раствор - до 0,5 мл.- pharmaceutically acceptable buffer solution - up to 0.5 ml.
Полученную по изобретению иммуногенную композицию, содержащую в качестве действующего вещества штамм рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц со вставкой химерного гена MBL-CT666 Chlamydia trachomatis, использовали для дальнейших экспериментов по изучению характеристик штамма. The immunogenic composition obtained according to the invention, containing the recombinant pseudo-adenovirus particles strain with the insert of the chlamydia trachomatis MBL-CT666 chimeric gene as the active substance, was used for further experiments to study the characteristics of the strain.
Пример 5. Example 5
Изучение иммуногенных свойств штамма рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущей химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis Study of the immunogenic properties of a strain of a recombinant pseudo-adenovirus particle based on the
В данном примере оценка иммуногенных созданного штамма рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущих химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis проводилась путем определения его способности к индукции специфических антител в составе иммуногенной композиции.In this example, the immunogenicity of the created strain of recombinant pseudo-adenovirus particles based on the
Специфические антитела класса IgG к антигену CdsF определяли методом ИФА (как было описано ранее). Мыши были иммунизированы интраназально 50 мкл иммуногенной композицией, содержащей штамм рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущих химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis в дозе 2×108 БОЕ на мл. Сыворотки крови получали на 14 и 28 день после иммунизации. В качестве контролей использовали сыворотки крови от мышей иммунизированных и/н аденовирусным вектором, не несущим вставки (Ad-null) и сыворотки от мышей, которым вводили физиологический раствор (отрицательный контроль). Результаты представлены на фигуре 6. Specific IgG antibodies to the CdsF antigen were determined by ELISA (as described previously). Mice were immunized intranasally with 50 μl of an immunogenic composition containing a recombinant pseudo-adenovirus particle strain based on the
Было показано, что на 28 день после иммунизации созданной по изобретению композицией, и через 14, и через 28 дней определялись специфические антитела класса IgG, что указывает на наличие иммуногенных свойств у штамма рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущих химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis к специфическому возбудителю урогенитального хламидиоза Chlamydia trachomatis. It was shown that on the 28th day after immunization with the composition created according to the invention, specific antibodies of the IgG class were determined after 14 and 28 days, which indicates the presence of immunogenic properties in the strain of recombinant pseudo-adenovirus particles based on the
Таким образом, задача по получению штамма рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущих химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis, выполнена.Thus, the task of obtaining a strain of recombinant pseudo-adenovirus particles based on the genome of the
Пример 6. Example 6
Иммуногенные свойства вакцины против урогенитального хламидиоза, содержащей штамм рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущей химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis в качестве прайм-компонентаImmunogenic properties of the urogenital chlamydia vaccine containing a recombinant pseudo-adenovirus particle strain based on the
В данном примере оценивалась возможность применения полученного по изобретению штамма рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущих химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis в качестве компонента противохламидийной вакцины. Указанная вакцина должна состоять из двух компонентов в разных флаконах - прайм-компонента и буст-компонента, которые вводятся однократно через определенный промежуток времени, по очереди, для осуществления так называемой прайм-буст иммунизации для получения протективного иммунитета. Композиция на основе штамма по изобретению применялась в качестве компонента для праймирующей иммунизации, затем проводилось бустирование компонентом на основе рекомбинантного белка CdsF. Изучался индуцируемый вакциной гуморальный (специфические антитела класса IgG1 и IgG2a) и Т-клеточный иммунный ответ.In this example, the possibility of using the recombinant pseudo-adenovirus particle strain obtained according to the invention based on the
Интраназальную иммунизацию праймирующим компонентом, содержащим штамм рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущих химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis в дозе 2×108 БОЕ/мл проводили на линии мышей DBA/2 самках, весом 14-16 г. (10 мышей/группу) однократно. Через две недели после иммунизации проводили подкожное бустирование белком rMBL-CT666 в дозе 10 мкг/мышь в сочетании с MPLA. В качестве контрольных использовались группы мышей, получавшие (интраназально) рекомбинантный аденовирус человека пятого серотипа, не несущий трансгена - Ad-null и физиологический раствор NaCl.Intranasal immunization with a priming component containing a recombinant pseudo adenovirus particle strain based on the
1) Специфические антитела класса IgG1 и IgG2a. 1) Class specific antibodiesIgG1andIgG2a.
Определяли методом непрямого иммуноферментного анализа (ИФА). Для этих целей использовали сыворотки, полученные на 14 день после «прайм-буст» иммунизации мышей. Determined by indirect enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). For these purposes, we used the serum obtained on the 14th day after the prime boost immunization of mice.
ИФА проводили общепринятым методом. В качестве антигена применяли рекомбинантный белок rMBL-CT666 C. trachomatis. Полученные сыворотки от иммунизированных мышей титровали в разведениях 1:100, 1:200, 1:400, 1:800. Для определения специфических антител класса IgG (IgG1, IgG2a) в качестве конъюгата использовали кроличьи моноклональные антимышиные антитела класса IgG1 и IgG2a («Sigma-Aldrich», США) в разведении 1:10000, меченные пероксидазой хрена, в качестве субстрата - тетраметилбензидин (ТМБ) («Biolegend», США). Учет реакции проводили при длине волны 450 нм. Результаты представлены на фигуре 7.ELISA was performed by the conventional method. The recombinant protein rMBL-CT666 of C. trachomatis was used as antigen. The obtained sera from immunized mice were titrated in dilutions of 1: 100, 1: 200, 1: 400, 1: 800. To determine specific antibodies of the IgG class (IgG1, IgG2a), rabbit monoclonal anti-mouse antibodies of the IgG1 and IgG2a class (Sigma-Aldrich, USA) at a dilution of 1: 10,000 labeled with horseradish peroxidase and tetramethylbenzidine (TM) were used as conjugate. (Biolegend, USA). The reaction was taken into account at a wavelength of 450 nm. The results are presented in figure 7.
В результате исследования была показана продукция специфических антител изотипов IgG: IgG2a и IgG1 в ответ на однократную иммунизацию композицией, содержащей штамм рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущих химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis с однократным бустированием rMBL-CT666. При разведении 1:800 была показана достоверная разница между группой животных иммунированных по схеме «прайм - буст» компонентами вакцины (Ad-MBL-CT666+rMBL-CT666) (OD~0,5155, p<0,05) и контролями Ad-null и ОК (OD~0,188, OD~0,0985). При этом наиболее выраженно наблюдалась продукция антител изотипа IgG2a, который опосредует эффекторные функции, включая антитело-зависимую клеточно-опосредованную цитотоксичность (ADCC), что способствует ранней элиминации хламидийной инфекции из организма. Кроме того, ADCC связан с улучшенной презентацией химерного гена MBL-CT666 Chlamydia trachomatis, способной усиливать ответы CD4 + T-клеток. Антитела изотипа IgG1 также были индуцированы в ответ на иммунизацию (OD~0,4515, при разведении 1:100), однако их уровень не отличался достоверно от уровня антител контрольных групп Ad-null и ОК (OD~0,23675, OD~0,2685). Кроме этого, соотношение IgG2a к IgG1 было > 1, что указывает на дифференцировку иммунного ответа в сторону Тх1 - типа и соответственно, преимущественно развитие клеточного иммунитета. Эти данные говорят об иммуногенности противохламидийной вакцины, в качестве прайм-компонента включающей иммуногенную композицию, содержащую штамм рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущих химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis, а также указывает на наличие протективной активности в отношении хламидийной инфекции. As a result of the study, the production of specific antibodies of IgG isotypes: IgG2a and IgG1 was shown in response to a single immunization with a composition containing a recombinant pseudo-adenovirus particle strain based on the
2). Определение количества Т-лимфоцитов, продуцирующих ИФγ, методом ELISPOT in vitro. 2). Determination of the number of T-lymphocytes producing IFγ by ELISPOT in vitro.
Количество ИФγ-продуцирующих клеток в селезенке и лимфатических узлах вакцинированных и контрольных мышей определяли с помощью метода ELISPOT.The number of IFγ-producing cells in the spleen and lymph nodes of vaccinated and control mice was determined using the ELISPOT method.
Для оценки клеточного иммунного ответа методом ELISPOT получали суспензию клеток селезенок и лимфатических узлов от мышей иммунизированных праймирующим компонентом вакцины, содержащим штамм рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущих химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis и бустирующим компонентам (rMBL-CT666) на 14 день после бустирования. Клетки стимулировали антигеном CdsF и C. trachomatis серовар D. В качестве контроля использовали клетки селезенки и лимфатических узлов от мышей иммунизированных интраназально пустым аденовирусом Ad-null, интактных мышей, и не стимулированные клетки (Фигура 8). To assess the cellular immune response by ELISPOT, a suspension of spleen cells and lymph nodes was obtained from mice immunized with the priming component of the vaccine containing the recombinant pseudo-adenovirus particles strain based on the
Иммобилизованные моноклональные антитела к ИФγ (Anti-Mouse IFN-γ 250x Capture Antibody, Ready-Set-Go!,eBioscience, San Diego, CA), разведенные в стерильном буфере (ELISA/ELISPOT Coating Buffer), вносили в лунки 96-луночного плейта (Millipore, MAIPS4510, США) в объеме 100 мкл/лунку и инкубировали в течение 18-20 часов при 4°С. По окончании периода инкубации содержимое лунок удаляли и промывали 2 раза стерильным буфером (ELISA/ELISPOT Coating Buffer). Далее вносили по 200 мкл/лунку культуральной среды RPMI, содержащей 5% FCS, инкубировали при 37°С. Через 1 час удаляли из лунок среду, вносили в них исследуемые клетки в дуплетах в концентрации 2×105/лунку с антигеном (10 мкг/мл) или без него и инкубировали в термостате 24 часа при 37°С в 5% СО2. Плейты отмывали 5 раз фосфатным буфером (ELISA/ELISPOT Coating Buffer) по 200 мкл/лунку, один раз дистиллированной водой, вносили по 100 мкл биотинилированных проявляющих антител (Biotin anti-mouse IFN-γ (250х), Biolegend) в Assay Diluent буфере и инкубировали 2 часа при температуре 2-8°С. По окончании периода инкубации плейты отмывали 6 раз фосфатным буфером и добавляли конъюгат стрептавидин AP (Streptavidin-Alkaline Phosphatase Conjugate, Affymetrix), разведенный в фосфатном буфере до концентрации 1:1000, по 100 мкл/лунку и инкубировали в течение 1 часа при комнатной температуре. По окончании инкубации лунки отмывали 3 раза по 100 мкл фосфатным буфером и еще 3 раза дистиллированной водой. Далее добавляли субстрат BCIP®/NBT Liquid Substrate System (Sigma) Через 5-60 минут реакцию останавливали водой и высушивали плейты. Количество пятен в лунках подсчитывали с помощью ELISPOT AID ELISpot Reader (Autoimmun Diagnostika GmbH, Strassberg, Germany). Immobilized monoclonal antibodies to IFγ (Anti-Mouse IFN-γ 250x Capture Antibody, Ready-Set-Go!, EBioscience, San Diego, CA), diluted in sterile buffer (ELISA / ELISPOT Coating Buffer), were added to the wells of a 96-well plate (Millipore, MAIPS4510, USA) in a volume of 100 μl / well and incubated for 18-20 hours at 4 ° C. At the end of the incubation period, the contents of the wells were removed and washed 2 times with sterile buffer (ELISA / ELISPOT Coating Buffer). Then, 200 μl / well of RPMI culture medium containing 5% FCS was added, incubated at 37 ° C. After 1 hour, the medium was removed from the wells, the studied cells were introduced into them in doublets at a concentration of 2 × 10 5 / well with or without antigen (10 μg / ml) and incubated for 24 hours at 37 ° C in 5% CO 2 . The plates were washed 5 times with phosphate buffer (ELISA / ELISPOT Coating Buffer) at 200 μl / well, once with distilled water, 100 μl of biotinylated developing antibodies (Biotin anti-mouse IFN-γ (250x), Biolegend) in Assay Diluent buffer and incubated for 2 hours at a temperature of 2-8 ° C. At the end of the incubation period, the plates were washed 6 times with phosphate buffer and streptavidin AP conjugate (Streptavidin-Alkaline Phosphatase Conjugate, Affymetrix) diluted in phosphate buffer at a concentration of 1: 1000, 100 μl / well, was added and incubated for 1 hour at room temperature. After incubation, the wells were washed 3 times with 100 μl of phosphate buffer and another 3 times with distilled water. Next, a BCIP® / NBT Liquid Substrate System (Sigma) substrate was added. After 5-60 minutes, the reaction was stopped with water and the plates were dried. The number of spots in the wells was counted using an ELISPOT AID ELISpot Reader (Autoimmun Diagnostika GmbH, Strassberg, Germany).
Методом ELISPOT была продемонстрирована индукция Т-клеточного иммунного ответа, продуцирующего ИФγ - ключевого компонента протективного иммунного ответа при хламидийной инфекции. The ELISPOT method was used to demonstrate the induction of a T-cell immune response that produces IFγ, a key component of a protective immune response in chlamydial infections.
3). Изучение клеточной пролиферации методом проточной цитометрии.3). The study of cell proliferation by flow cytometry.
Полученные суспензии спленоцитов и клеток лимфатических узлов от вакцинированных и контрольных мышей на 30 день после иммунизации, метили CFSE и инкубировали в присутствие антигена rMBL-CT666 или C. trachomatis в течение 48 часов. Пролиферацию клеток анализировали с помощью проточной цитометрии на приборе FACSCALIBUR (BD, США), используя программу BD CellQuest™ Pro (Bioline) (Фигура 9).The resulting suspensions of splenocytes and lymph node cells from vaccinated and control mice on
Как показано на фигуре 9 CD4+ Т-клетки, полученные от группы мышей иммунизированных по схеме «прайм-буст» имели статистически значимое увеличение субпопуляций, прошедшей 4 и 5 деление в ответ на антиген CdsF и прошедшей 4 деление в ответ на стимуляцию C. trachomatis (p<0,5). При этом CD4+ Т-клетки, полученные от мышей, которым вводили Ad-null и интактных мышей, не имели увеличения субпопуляций, пролиферующих в ответ на антиген CdsF в течение всех 5 стадий деления. As shown in figure 9, CD4 + T cells obtained from a group of prime boost immunized mice had a statistically significant increase in subpopulations that passed 4 and 5 divisions in response to CdsF antigen and passed 4 divisions in response to stimulation of C. trachomatis ( p <0.5). In this case, CD4 + T cells obtained from mice injected with Ad-null and intact mice did not have an increase in the subpopulations proliferating in response to the CdsF antigen during all 5 stages of division.
CD8+ Т-клетки, полученные от мышей иммунизированных Ad-MBL-CT666 с бустированием rMBL-CT666 так же имели статистически значимое увеличение субпопуляций, прошедшей 3 деление в ответ на антиген CdsF (Рис. Хв) (p<0,5), и 3 и 4 деление в ответ на стимуляцию C. trachomatis (Рис.Хв). CD8+ Т-клетки, полученные от контрольных мышей, как и CD4+ Т-клетки, не имели увеличения субпопуляций, пролиферующих в ответ на антиген или C. trachomatis. CD8 + T cells obtained from mice immunized with Ad-MBL-CT666 boosted with rMBL-CT666 also had a statistically significant increase in the subpopulations that underwent 3 divisions in response to the CdsF antigen (Fig. Xb) (p <0.5), and 3 and 4 division in response to stimulation of C. trachomatis (Fig. Xb). CD8 + T cells obtained from control mice, like CD4 + T cells, did not have an increase in subpopulations proliferating in response to antigen or C. trachomatis .
Таким образом, в данном исследовании была продемонстрирована способность изучаемого вакцинного препарата индуцировать специфический ответ CD4+ и CD8+ Т-клеток в реакции пролиферации и подтверждена иммуногенность данного препарата. Thus, in this study, the ability of the studied vaccine preparation to induce a specific response of CD4 + and CD8 + T cells in the proliferation reaction was demonstrated and the immunogenicity of this drug was confirmed.
Таким образом, была показана возможность использования в составе противохламидийной вакцины в качестве прайм-компонента иммуногенной композиции, содержащей штамм рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущих химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis.Thus, the possibility of using the anti- Chlamydia vaccine as a prime component of an immunogenic composition containing a recombinant pseudo-adenovirus particle strain based on the
Пример 7.Example 7
Протективные свойства вакцины против урогенитального хламидиоза, содержащей штамм рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущей химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis в качестве прайм-компонента.The protective properties of the urogenital chlamydia vaccine containing a recombinant pseudo-adenovirus particle strain based on the
Было проведено изучение эффективности (протективности) вакцины против урогенитальной хламидийной инфекции, представляющую в качестве прайм-компонента иммуногенную композицию со штаммом рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущих химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis.A study was conducted of the efficacy (effectiveness) of the vaccine against urogenital chlamydial infection, representing, as a prime component, an immunogenic composition with a recombinant pseudo-adenovirus particle strain based on the
Вакцину вводили по схеме, описанной в примере 6.The vaccine was administered according to the scheme described in example 6.
1) Оценка в реакции нейтрализации.1) Assessment in the neutralization reaction.
К важнейшим изучаемым иммунным реакциям in vitro относят реакцию нейтрализации. Оценку нейтрализующей активности антител в сыворотках крови, полученных от мышей, иммунизированных Ad-MBL-CT666 с бустированием rMBL-CT666 оценивали с помощью реакции нейтрализации.The most important studied in vitro immune responses include the neutralization reaction. Assessment of the neutralizing activity of antibodies in serum obtained from mice immunized with Ad-MBL-CT666 with rMBL-CT666 boosting was evaluated using a neutralization reaction.
Сыворотки крови мышей, полученные через 14 дней после бустирования, инкубировали с C. trachomatis и оценивали их нейтрализующий эффект в культуре клеток in vitro. В качестве контроля инфекции использовали C. trachomatis серовар D в дозе 105 ВОЕ/мл (с инкубацией при 37°С и без t). Для постановки реакции нейтрализации использовали клетки линии McCoy. Полученные сыворотки от иммунизированных животных инкубировали с C. trachomatis в различных разведениях (1:32; 1:64; 1:128; 1:256) в течение 20 минут при t=37°С в термостате. Затем клетки заражали прединкубированными образцами хламидий и центрифугировали при 2000 об/мин, t=25°С в течение 60 мин. Инкубацию проводили в атмосфере CO2 при температуре 37°С в течении 48 часов. Количественную оценку эффекта нейтрализации хламидийных включений в культуре клеток McCoy проводили методом иммунофлуоресценции после окрашивания хламидийных включений видоспецифическими моноклональными антителами, меченными ФИТЦ. Mouse sera obtained 14 days after boosting were incubated with C. trachomatis and their neutralizing effect was evaluated in an in vitro cell culture. As a control of infection, C. trachomatis serovar D was used at a dose of 10 5 VOU / ml (with incubation at 37 ° C and without t). For the neutralization reaction, McCoy cells were used. The obtained sera from immunized animals were incubated with C. trachomatis in various dilutions (1:32; 1:64; 1: 128; 1: 256) for 20 minutes at t = 37 ° C in an incubator. Then, the cells were infected with pre-incubated chlamydia samples and centrifuged at 2000 rpm, t = 25 ° C for 60 min. Incubation was carried out in a CO2 atmosphere at a temperature of 37 ° C for 48 hours. A quantitative assessment of the effect of neutralization of chlamydial inclusions in the McCoy cell culture was performed by immunofluorescence method after staining of chlamydial inclusions with species-specific FITC-labeled monoclonal antibodies.
Для подсчета хламидийных включения образующих единиц (ВОЕ) под микроскопом использовали стандартную формулу (Scidmore M.A., 2005). Результаты исследования представлены в таблице 1.To calculate the chlamydial inclusion of forming units (BOE) under the microscope, the standard formula was used (Scidmore M.A., 2005). The results of the study are presented in table 1.
Таблица 1 - Оценка нейтрализующей активности антител, полученных от мышей, иммунизированных Ad-MBL-CT666 c последующим бустированием rMBL-CT666 в культуре клеток, зараженных C. trachomatis.Table 1 - Assessment of the neutralizing activity of antibodies obtained from mice immunized with Ad-MBL-CT666 followed by boosting of rMBL-CT666 in a cell culture infected with C. trachomatis.
Было показано, что иммунизация Ad-MBL-CT666 c последующим бустированием rMBL-CT666, приводила к продукции специфических антител, обладающих нейтрализующей активностью в отношении C. trachomatis инфекции in vitro (Таблица 1). Титр антител, вызывающих 50% нейтрализацию инфекции, составил 1:256. Immunization with Ad-MBL-CT666 followed by boosting rMBL-CT666 was shown to produce specific antibodies with neutralizing activity against C. trachomatis infection in vitro (Table 1). The antibody titer causing 50% neutralization of the infection was 1: 256.
2) Оценка патологии репродуктивных органов методом прямой визуализации2) Assessment of the pathology of the reproductive organs by direct visualization
Оценку патологии репродуктивных органов проводили после заражения C. trachomatis, у иммунизированных животных. Для визуальной оценки патологии органов репродуктивного тракта мышей были сделаны фотографии. Патологию оценивали методом прямой визуализации, оценивая наличие гидросальпинкса и гиперемии органов верхних отделов урогенитального тракта. Evaluation of the pathology of the reproductive organs was carried out after infection with C. trachomatis in immunized animals. Photographs were taken to visually assess the pathology of the reproductive tract of mice. Pathology was assessed by direct visualization, assessing the presence of hydrosalpinx and hyperemia of the organs of the upper parts of the urogenital tract.
На 30 сутки после заражения C. trachomatis патологические изменения оценивали визуально. Для этого мышей забивали, проводили вскрытие и изъятие репродуктивных органов (матки, яичников). Были сделаны макроснимки органов и сравнительный анализ патологических изменений между экспериментальной и контрольными группами животных (фиг. 10А, Б, В).On
При аутопсии яичников и матки в группе животных, иммунизированных комбинированной вакциной, содержащей Ad-MBL-CT666 и rMBL-CT666, не было выявлено патологических изменений, таких как гидросальпинкс, не наблюдалось гиперемии маточных труб и спаечных процессов (фиг. 10А).Autopsy of the ovaries and uterus in the group of animals immunized with a combination vaccine containing Ad-MBL-CT666 and rMBL-CT666 revealed no pathological changes, such as hydrosalpinx, and there was no hyperemia of the fallopian tubes and adhesions (Fig. 10A).
У неиммунизированных мышей и получавшим пустой аденовирус (Ad-null), зараженных C. trachomatis, патология репродуктивных органов была ярко выражена, в особенности в виде гидросальпинкса, характерного при поражении хламидийной инфекцией, также регистрировали наличие серозно-геморрагического экссудата в небольшом количестве и сильную гиперемия маточных рогов, яичников (фиг. 10Б, В).In non-immunized mice and treated with empty adenovirus infected with C. trachomatis, the pathology of the reproductive organs was pronounced, especially in the form of hydrosalpinx, characteristic of a chlamydial infection, the presence of serous hemorrhagic exudate in small quantities and severe hyperemia were also recorded uterine horns, ovaries (Fig. 10B, C).
3) Оценка подавления инфекции, вызванной C. trachomatis в нижних отделах урогенитального тракта.3) Evaluation of the suppression of infection caused by C. trachomatis in the lower parts of the urogenital tract.
Для оценки накопления инфекции в нижних отделах урогенитального тракта, у мышей после заражения C. trachomatis отбирали вагинальные смывы с 3 по 21 день. Хламидийную инфекцию в смывах определяли с помощью культурального метода исследования (Таблица 2, Фигура 11А, Б, В, Г, Д).To assess the accumulation of infection in the lower parts of the urogenital tract, vaginal swabs from 3 to 21 days were selected from mice after infection with C. trachomatis. Chlamydial infection in the swabs was determined using the cultural method of research (Table 2, Figure 11A, B, C, D, D).
Таблица 2. Определение количества зараженных мышей в исследуемых группах. Table 2. Determination of the number of infected mice in the study groups.
Изучение динамики развития инфекции в нижних отделах урогенитального тракта показало, что иммунизация Ad-MBL-CT666 с бустированием rMBL-CT666 приводила к значительному подавлению хламидийной инфекции к 15 дню, а на 20 сутки после заражения (Фигура 11) инфекция была обнаружена только у одной иммунизированной мыши, в то время как в контрольной группе инфекция выявлялась в 104 ВОЕ/мл у 10 из 10 мышей. A study of the dynamics of the development of infection in the lower parts of the urogenital tract showed that immunization with Ad-MBL-CT666 with rMBL-CT666 boosting led to a significant suppression of chlamydial infection by
Таким образом, была показана возможность использования иммуногенной композиции, содержащей штамм рекомбинантных псевдоаденовирусных частиц на основе генома аденовируса человека 5 серотипа, несущих химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis в качестве прайм-компонента противохламидийной вакцины с целью индукции протективного иммунного ответа против урогенитального хламидиоза. Thus, the possibility of using an immunogenic composition containing a strain of recombinant pseudo-adenovirus particles based on the
Все приведенные примеры подтверждают, что задача, поставленная в данном изобретении, а именно, получение действующего вещества иммуногенной композиции против урогенитального хламидиоза человека - штамма рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы, который может быть использован для создания иммуногенной композиции без использования адьювантов, эффективной для однократного введения в качестве праймирующего компонента противохламидийной вакцины человеку, за счет того, что антиген нарабатывается непосредственно в клетках организма человека и обладающей широким спектром действия в отношении различных серотипов C. Trachomatis, выполнена.All these examples confirm that the task of this invention, namely, the preparation of the active substance of an immunogenic composition against human urogenital chlamydia, a strain of a recombinant pseudo-adenovirus particle, which can be used to create an immunogenic composition without the use of adjuvants, is effective for a single administration as a prime component of the antichlamydia vaccine to humans, due to the fact that the antigen is produced directly in the cells of the human body and has a wide spectrum of action against various serotypes of C. Trachomatis, performed.
Промышленная применимостьIndustrial applicability
Предложенный штамм рекомбинантной псевдоаденовирусной частицы, экспрессирующей химерный ген MBL-CT666 Chlamydia trachomatis, может применяться в качестве иммуногенного компонента для изготовления вакцин с целью профилактики урогенитальной хламидийной инфекции, вызванной Chlamydia trachomatis.The proposed strain of the recombinant pseudo-adenovirus particle expressing the chlamydia trachomatis MBL-CT666 chimeric gene can be used as an immunogenic component for the manufacture of vaccines for the prevention of urogenital chlamydial infection caused by Chlamydia trachomatis .
Claims (10)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2019130449A RU2721123C1 (en) | 2019-09-26 | 2019-09-26 | Recombinant pseudo-adenoviral particle strain expressing the chlamydia trachomatis chimeric gene mbl-ct666, a method for preparing it, an immunogenic composition for protection against human urogenital chlamydiosis |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2019130449A RU2721123C1 (en) | 2019-09-26 | 2019-09-26 | Recombinant pseudo-adenoviral particle strain expressing the chlamydia trachomatis chimeric gene mbl-ct666, a method for preparing it, an immunogenic composition for protection against human urogenital chlamydiosis |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2721123C1 true RU2721123C1 (en) | 2020-05-18 |
Family
ID=70735262
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2019130449A RU2721123C1 (en) | 2019-09-26 | 2019-09-26 | Recombinant pseudo-adenoviral particle strain expressing the chlamydia trachomatis chimeric gene mbl-ct666, a method for preparing it, an immunogenic composition for protection against human urogenital chlamydiosis |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2721123C1 (en) |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP2976355A1 (en) * | 2013-03-18 | 2016-01-27 | Statens Serum Institut | Vaccines against chlamydia sp. |
RU2676768C2 (en) * | 2016-05-12 | 2019-01-11 | федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н.Ф. Гамалеи" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Chlamydial vaccine and method for its preparation |
-
2019
- 2019-09-26 RU RU2019130449A patent/RU2721123C1/en active
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP2976355A1 (en) * | 2013-03-18 | 2016-01-27 | Statens Serum Institut | Vaccines against chlamydia sp. |
RU2676768C2 (en) * | 2016-05-12 | 2019-01-11 | федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н.Ф. Гамалеи" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Chlamydial vaccine and method for its preparation |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
TARAH H., et al., Detection of ureaplasma DNA in endotracheal samples is associated with bronchopulmonary dysplasia after adjustment formultiple risk factors, Pediatric research, vol. 61, N 5, 2007, p.578-583. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
de la Maza et al. | Update on Chlamydia trachomatis vaccinology | |
JP5024830B2 (en) | Use of Chlamydia trachomatis antigen for vaccines and diagnosis | |
US20210205433A1 (en) | Vaccines against Chlamydia sp. | |
US20090098165A1 (en) | Methods and compositions for immunization against chlamydial infection and disease | |
JP2008520550A5 (en) | ||
Schautteet et al. | Protection of pigs against Chlamydia trachomatis challenge by administration of a MOMP-based DNA vaccine in the vaginal mucosa | |
Yu et al. | Evaluation of a multisubunit recombinant polymorphic membrane protein and major outer membrane protein T cell vaccine against Chlamydia muridarum genital infection in three strains of mice | |
Yang et al. | Cross-protective efficacy of dendritic cells targeting conserved influenza virus antigen expressed by Lactobacillus plantarum | |
JP2016106117A (en) | Chlamydia antigens and uses thereof | |
JP2023106591A (en) | Cancer treatment utilizing pre-existing microbial immunity | |
JP4653934B2 (en) | Bacteriophage mediated immunization methods | |
US10918712B2 (en) | Passive transfer of immunity using recombinant herpes simplex virus 2 (HSV-2) vaccine vectors | |
RU2721123C1 (en) | Recombinant pseudo-adenoviral particle strain expressing the chlamydia trachomatis chimeric gene mbl-ct666, a method for preparing it, an immunogenic composition for protection against human urogenital chlamydiosis | |
Zhou et al. | MOMP and MIP DNA-loaded bacterial ghosts reduce the severity of lung lesions in mice after Chlamydia psittaci respiratory tract infection | |
RU2676768C2 (en) | Chlamydial vaccine and method for its preparation | |
Russi et al. | Heterologous prime-boost vaccination based on Polymorphic protein D protects against intravaginal Chlamydia trachomatis infection in mice | |
US11406695B2 (en) | Recombinant expression of Chlamydia MOMP antigen | |
EP4032545A1 (en) | Immunogenic composition and vaccine containing chlamydia ssp. surface antigens and its use | |
KR20160069204A (en) | immune inducing agent including Human Cathelicidin LL-37, oral vaccine including of the same, and immune inducing system using of the same | |
Poston | T-cell Dependent and independent mechanisms of chlamydial eradication and control | |
Shillova | Per-oral Inoculation with Live or Killed Chlamydia muridarum Protects against a Chlamydia muridarum Per-vaginal Challenge | |
Weissenbacher et al. | Immunology of genital tract infections | |
Brown | The role of Th1/Th17 balance in vaccination against Chlamydia infection. | |
Li et al. | Targeted multi-subunit vaccination approach to evaluate cross-serovar protection against genital Chlamydial infection |