RU2708631C1 - Способ комплектования резерва криоконсервированных эритроцитов на основании иммуногематологических критериев - Google Patents
Способ комплектования резерва криоконсервированных эритроцитов на основании иммуногематологических критериев Download PDFInfo
- Publication number
- RU2708631C1 RU2708631C1 RU2019109632A RU2019109632A RU2708631C1 RU 2708631 C1 RU2708631 C1 RU 2708631C1 RU 2019109632 A RU2019109632 A RU 2019109632A RU 2019109632 A RU2019109632 A RU 2019109632A RU 2708631 C1 RU2708631 C1 RU 2708631C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- cryopreserved
- erythrocyte
- phenotypes
- red blood
- immunohematological
- Prior art date
Links
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Pathology (AREA)
- Immunology (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Hematology (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Изобретение относится к области медицины. Способ комплектования резерва криоконсервированных эритроцитов на основании иммуногематологических критериев включает в себя типирование антигенов эритроцитов и отбор для криоконсервирования эритроцитсодержащих компонентов крови с определенными фенотипами, при комплектовании резерва используются эритроциты редких групп крови, а также с «универсальными» и наиболее востребованными в клинике фенотипами, причем иммуногематологическими критериями отбора для долгосрочного хранения являются фенотипы C+c-D-K-; D-E+e-K-; C+c-D+E-e+Cw-K-; C+c+D+E-e+Cw-K-; C-c+D+E+e-Cw-K-; C-c+D-E-e+Cw-K-; M-N+; S+s-; S-s+; Fy(a+b-); Fy(a-b+); Jk(a+b-); Jk(a-b+). 1 табл., 2 пр.
Description
Изобретение относится к области медицины, конкретно к способу комплектования резерва криоконсервированных эритроцитов на основании иммуногематологических критериев. Способ включает типирование антигенов эритроцитов доноров и выбор определенных фенотипов для создания запасов криоконсервированных эритроцитов. Способ обеспечивает проведение трансфузионной терапии реципиентам с редкой группой крови, имеющим ауто-, алло- или панагглютинирующие антиэритроцитарные антитела.
Изобретение относится к медицине, а именно к лабораторной диагностике, основанной на иммуногематологическом и генетическом методах определения критериев отбора эритроцитов для криоконсервирования с целью долгосрочного хранения.
Основной задачей банка криоконсервированных эритроцитов является обеспечение реципиентов фенотипипически совместимыми эритроцитсодержащими компонентами (ЭСК) для профилактики развития аллоиммунизации и предотвращения возникновения посттрансфузионных гемолитических осложнений [2, 5, 6]. Необходимость в использовании замороженных эритроцитов возникает у реципиентов с редкими группами крови, переливание эритроцитов которым без учета совместимости чревато развитием иммунизации; у пациентов с высоким риском развития посттрансфузионных гемолитических осложнений вследствие аллоиммунизации к антигенам эритроцитов; у больных, имеющих панагглютинирующие антитела, антитела с неустановленной специфичностью, а также получающих лекарственные препараты на основе моноклональных антител, реагирующих с эритроцитами [1, 3, 9]. Такие больные нуждаются в расширенном фенотипировании с определением антигенов систем АВО, Резус, Келл, MNS (М, N, S, s), Duffy (Fya, Fyb), Kidd (Jka, Jkb) и в подборе фенотипически совместимых донорских эритроцитов. Так как нативные эритроциты с необходимым фенотипом могут отсутствовать, а заготовка ЭСК от специально приглашенных доноров требует времени, использование криоконсервированных эритроцитов - выход из сложившейся ситуации [4, 7, 8].
Техническим результатом заявляемого изобретения является создание способа формирования банка криоконсервированных эритроцитов, что необходимо для обеспечения реципиентов совместимыми ЭСК, профилактики развития аллоиммунизации и предотвращения возникновения посттрансфузионного гемолитического осложнения.
Наиболее близким к предлагаемому изобретению является способ создания запасов ЭСК редких групп крови, то есть эритроцитов, не содержащих в фенотипе антигенов с высокой (более 90%) частотой встречаемости [8]. Однако имеющийся алгоритм не предусматривает формирования резерва эритроцитов с «универсальными» фенотипами и фенотипами с высокой востребованностью в клинике.
Для достижения указанного результата в соответствии с прототипом исследуют фенотипы эритроцитов доноров, выбирая те из них, которые не содержат антигенов с высокой частотой встречаемости, и проводят генотипирование доноров с данными фенотипами. Отличительной особенностью предлагаемого способа от уже имеющегося является обязательный отбор фенотипов с «универсальными» качествами, то есть совместимых как с гомозиготными, так и с гетерозиготными реципиентами.
В процессе проведения патентно-информационного поиска не выявлено источников, порочащих новизну предполагаемого изобретения.
Заявляемое изобретение разработано в лаборатории иммуногематологии ФГБУН КНИИГиПК ФМБА России в соответствии с планом научно-исследовательской работы.
Способ предусматривает следующие этапы:
1. На основании результатов стандартного иммуногематологического типирования антигенов систем Резус и Келл с выявляют доноров с фенотипами: C+c-D-, D-E+e-, K+K+. Затем выполняют их генотипирование. При подтверждении результата осуществляют криоконсервирование дозы эритроцитов. Доноры с O(I) группой крови приглашаются для повторных кроводач для формирования запаса соответствующих эритроцитов.
2. Создают ресурс эритроцитов, не содержащих в фенотипах каких-либо из антигенов: М, S, s, Fya, Fyb, Jka, Jkb. Так как подбор доноров по системам MNS, Duffy, Kidd не исключает подбора по АВО, Резус и Келл, то для расширенное типирование выполняют у доноров O(I) группы с фенотипами C+c-D+E-e+Cw-K-, C+c+D+E-e+Cw-K-, C-c+D+E+e-Cw-K-, С-c+D-E-e+Cw-K-. Эритроциты доноров типируют по антигенам MNS, Duffy, Kidd, P1PK, Lewis, Lutheran. На основании полученных результатов проводят селекцию M-N+; S+s-; S-s+; Fy(a+b-); Fy(a-b+); Jk(a+b-); Jk(a-b+) фенотипов. Запас криоконсервированных эритроцитов может использоваться при трансфузиях реципиентам, иммунизированным к указанным антигенам, или при фенотипическом подборе больным с панагглютинирующими антителами и пациентам, получающим лекарственные препараты на основе анти-CD38 моноклональных антител.
3. Эритроциты доноров O(I) группы с фенотипами C+c-D+E-e+Cw-K-, C-c+D+E+e-Cw-K-, C-c+D-E-e+Cw-K-, типированные по антигенам MNS, Duffy, Kidd, P1PK, Lewis, Lutheran, подвергаются криоконсервированию. Такие эритроциты переливаются при необходимости подбора доноров пациентам со специфическими антителами к антигенам систем P1PK, Lewis, Lutheran или при отсутствии нативных эритроцитов, совместимых по резус-фенотипу.
Алгоритм формирования банка криоконсервированных эритроцитов представлен в таблице 1.
Банк долгосрочного хранения эритроцитов создан в ФГБУН КНИИГиПК ФМБА России в июле 2011 г. Криоконсервированию подвергнуто 1364 терапевтические дозы эритроцитов (O(I) - 455, А(II) - 416, В(III) - 319, AB(IV) - 174); перелито в отделениях клиники - 514. Фенотипическая характеристика запаса криоконсервированных эритроцитов следующая: C+c-D-E-e+ (8 доз), C+c-D+E-e+Cw-K- (107), C-c+D+E+e-Cw-K- (22), C-c+D-E-e+Cw-K- (191), K+k- (6), M-N+ (8), S+s- (12), S-s+(27), Fy(a+b-) (12), Fy(a-b+) (22), Jk(a+b-) (11), Jk(a-b+) (15). Нежелательных реакций при трансфузиях криоконсервированных эритроцитов не зафиксировано. Адекватный прирост уровня эритроцитов наблюдался после 89,0% трансфузий криоконсервированных ЭСК.
Ниже приводятся клинические примеры, подтверждающие возможность использования заявляемого способа при проведении гемокомпонентной терапии пациентам с высоким риском развития посттрансфузионных гемолитических осложнений.
Пример 1.
Больной Ш., 67 лет, диагноз множественная миелома. Результаты иммуногематологического обследования: группа крови системы АВО: А(II); Резус: C+c-D+E-e+; Келл: K-k+; MNS: M+N-S+S+; Kidd: Jk(a-b+); Duffy: Fy(a-b+); выявлены антиэритроцитарные панагглютинирующие антитела; прямая проба Кумбса - положительная (+++). Наблюдаются клинические (одышка, утомляемость) и лабораторные признаки анемии (гемоглобин - 62 г/л), требующие проведения заместительной трансфузионной терапии. Для предотвращения гемолитического посттрансфузионного осложнения необходимо выполнить подбор донорских эритроцитов, совместимых с больным по фенотипу. Нативные эритроциты соответствующего фенотипа не найдены. Проведен поиск в банке криоконсервированных компонентов крови. Выполнены две трансфузии криоконсервированных ЭСК от доноров с фенотипами O(I); C+c-D+E-e+; K-k+; M+N-S+s-; Jk(a-b+); Fy(a-b+); и O(I); C+c-D+E-e+; K-k+; M+N-S-S+; Jk(a-b+); Fy(a-b+). Посттрансфузионный показатель гемоглобина - 87 г/л, неблагоприятных реакций не наблюдалось.
Пример 2.
Больной П., 58 лет, диагноз острый миелоцитарный лейкоз. Результаты иммуногематологического обследования: группа крови системы АВО: А(II); Резус: C+c+D+E-e+; Келл: K-k+; MNS: M-N+S+S+; Kidd: Jk(a-b+); Duffy: Fy(a-b+); выявлены антиэритроцитарные анти-М аллоантитела; прямая проба Кумбса - отрицательная. Наблюдающийся у больного анемический синдром (одышка, утомляемость, уровень гемоглобина - 68 г/л) требовал выполнения трансфузий ЭСК. Так как нативных ЭСК, не имеющих в фенотипе антигена М, не найдено, подбор проведен в банке криоконсервированных компонентов крови. Осуществлена трансфузия криоконсервированных ЭСК от донора с фенотипом O(I); C+c-D+E-e+; K-k+; M-N+S+s-; Jk(a-b+); Fy(a-b+). Достигнут клинико-лабораторный ответ на трансфузию, посттрансфузионные реакции и осложнения отсутствовали.
Список литературы
1. Бутина Е.В., Зайцева Г.А, Коряковцева Т.А., Максимов О.Д., Шерстнев Ф.С. Результаты скрининга и идентификации антиэритроцитарных антител у пациентов гематологической клиники // Трансфузиология. - 2018. - №1ю - С. 56-64.
2. Каландаров Р.С., Головкина Л.Л., Васильева М.Н., Стремоухова А.Г., Пушкина Т.Д., Атрощенко Г.В. и др. Генотипирование групп крови систем АВО и резус у пациентов после множественных гемотрансфузий // Онкогематология. - 2017. - Т. 12 (2). С. 70-79.
3. Минеева Н.В., Гавровская С.В., Бодрова Н.Н., Сысоева Е.А., Кробинец И.И., Поединенко И.В. Анализ сложнодиагноструемых вариантов антигена D при определении резус-принадлежности крови // Трансфузиология. - 2017. - Т. 18 (S1). С. 31-32.
4. Минеева Н.В., Пашкова И.А., Кробинец И.И., Гавровская С.В., Сысоева Е.А., Бодрова Н.Н. Оптимизация подбора совместимых пар «донор-реципиент»: роль скрининга антител и фенотипирования антигенов эритроцитов реципиентов при гемотрансфузиях // Трансфузиология. - 2015. - Т. 16 (2). С. 52-59.
5. Минеева Н.В., Гавровская С.В., Кробинец И.И., Бодрова Н.Н., Сысоева Е.А., Поединенко И.В. и др. Оценка вероятности подбора пар «донор-реципиент» с учетом фенотипа антигенов эритроцитов // Трансфузиология. - 2017. - Т. 18 (4). - С. 53-62.
6. Минеева Н.В., Пашкова И.А., Кробинец И.И., Сысоева Е.А. Аллосенсибилизация к антигенам эритроцитов (обзор литературы) // Онкогематология. - 2015. - Т. 10 (4). - С. 60-65.
7. Уйба В.В., Эйхлер О.В., Чечеткин А.В., Данильченко В.В. Развитие безвозмездного добровольного донорства крови и ее компонентов в Российской Федерации // Медицина Экстремальных ситуаций. - 2017. Т. 59(1). З. 8-13.
8. Shaz В.H., Hillyer C.D., Roshal M., Abrams C.S. Transfusion Medicine and Hemostasis: Clinical and Laboratory Aspects, 2rd ed. - Philadelphia, PA: Elsevier, 2013. - 986 pp.
9. Von Zabern I., F.F. Wagner, W.A. Flegel. Ten years Rhesus Immunization Registry // Vox Sanguinis. - 2010. - Vol. 99. - P. 1-55.
Claims (1)
- Способ комплектования резерва криоконсервированных эритроцитов на основании иммуногематологических критериев, включающий в себя типирование антигенов эритроцитов и отбор для криоконсервирования эритроцитсодержащих компонентов крови с определенными фенотипами, отличающийся тем, что при комплектовании резерва используются эритроциты редких групп крови, а также с «универсальными» и наиболее востребованными в клинике фенотипами, причем иммуногематологическими критериями отбора для долгосрочного хранения являются фенотипы C+c-D-K-; D-E+e-K-; C+c-D+E-e+Cw-K-; C+c+D+E-e+Cw-K-; C-c+D+E+e-Cw-K-; C-c+D-E-e+Cw-K-; M-N+; S+s-; S-s+; Fy(a+b-); Fy(a-b+); Jk(a+b-); Jk(a-b+).
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2019109632A RU2708631C1 (ru) | 2019-04-01 | 2019-04-01 | Способ комплектования резерва криоконсервированных эритроцитов на основании иммуногематологических критериев |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2019109632A RU2708631C1 (ru) | 2019-04-01 | 2019-04-01 | Способ комплектования резерва криоконсервированных эритроцитов на основании иммуногематологических критериев |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2708631C1 true RU2708631C1 (ru) | 2019-12-10 |
Family
ID=68836715
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2019109632A RU2708631C1 (ru) | 2019-04-01 | 2019-04-01 | Способ комплектования резерва криоконсервированных эритроцитов на основании иммуногематологических критериев |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2708631C1 (ru) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2790833C1 (ru) * | 2021-12-22 | 2023-02-28 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Российский научно-исследовательский институт гематологии и трансфузиологии Федерального медико-биологического агентства" (ФГБУ РосНИИГТ ФМБА России) | Способ определения антиэритроцитарных аллоантител у больных множественной миеломой |
-
2019
- 2019-04-01 RU RU2019109632A patent/RU2708631C1/ru not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (4)
Title |
---|
Н.Г.Филина и др. ИНДИВИДУАЛЬНЫЙ ПОДБОР КРОВИ ДОНОРА РЕЦИПИЕНТУ / ВЕСТНИК СЛУЖБЫ КРОВИ РОССИИ, 2010. N 1, стр. 13-16. * |
Р.С. Каландаров и др. Генотипирование групп крови систем ABO и резус у пациентов после множественных гемотрансфузий / Онкогематология, 2017, N 2, т.12, стр. 70-79. * |
Р.С. Каландаров и др. Генотипирование групп крови систем ABO и резус у пациентов после множественных гемотрансфузий / Онкогематология, 2017, N 2, т.12, стр. 70-79. Н.Г.Филина и др. ИНДИВИДУАЛЬНЫЙ ПОДБОР КРОВИ ДОНОРА РЕЦИПИЕНТУ / ВЕСТНИК СЛУЖБЫ КРОВИ РОССИИ, 2010. N 1, стр. 13-16. Т.В.Глазанова и др. ВЫРАБОТКА АЛЛОГЕННЫХ АНТИТЕЛ К АНТИГЕНАМ ЛЕЙКОЦИТОВ И ТРОМБОЦИТОВ (АНТИ-HLA И АНТИ-НРА) У БОЛЬНЫХ С ЗАБОЛЕВАНИЯ СИСТЕМЫ КРОВИ НА ФОНЕ ТРАНСФУЗИЙ КОМПОНЕНТОВ КРОВИ / Гематология и трансфузиология, 2015, т. 60, N 4, стр. 26-29. * |
Т.В.Глазанова и др. ВЫРАБОТКА АЛЛОГЕННЫХ АНТИТЕЛ К АНТИГЕНАМ ЛЕЙКОЦИТОВ И ТРОМБОЦИТОВ (АНТИ-HLA И АНТИ-НРА) У БОЛЬНЫХ С ЗАБОЛЕВАНИЯ СИСТЕМЫ КРОВИ НА ФОНЕ ТРАНСФУЗИЙ КОМПОНЕНТОВ КРОВИ / Гематология и трансфузиология, 2015, т. 60, N 4, стр. 26-29 * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2790833C1 (ru) * | 2021-12-22 | 2023-02-28 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Российский научно-исследовательский институт гематологии и трансфузиологии Федерального медико-биологического агентства" (ФГБУ РосНИИГТ ФМБА России) | Способ определения антиэритроцитарных аллоантител у больных множественной миеломой |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Schonewille et al. | Red blood cell alloantibodies after transfusion: factors influencing incidence and specificity | |
McPherson et al. | HLA alloimmunization is associated with RBC antibodies in multiply transfused patients with sickle cell disease | |
Thakral et al. | Red cell alloimmunization in a transfused patient population: a study from a tertiary care hospital in north India | |
Sachs et al. | TRALI after the transfusion of cross‐match‐positive granulocytes | |
Siransy Bogui et al. | Phenotypic profile of Rh and Kell blood group systems among blood donors in Cote d’Ivoire, West Africa | |
Nugroho et al. | Evaluation of donor workups and exclusions in a single‐center experience of living donor liver transplantation | |
Tian et al. | Haploidentical hematopoietic stem cell transplant in paroxysmal nocturnal hemoglobinuria | |
Tomac et al. | Haemolysis, pure red cell aplasia and red cell antibody formation associated with major and bidirectional ABO incompatible haematopoietic stem cell transplantation | |
Kurz et al. | Platelet‐reactive HLA antibodies associated with low posttransfusion platelet increments: a comparison between the monoclonal antibody‐specific immobilization of platelet antigens assay and the lymphocytotoxicity test | |
Somers et al. | Rapid induction of single donor chimerism after double umbilical cord blood transplantation preceded by reduced intensity conditioning: results of the HOVON 106 phase II study | |
Cid et al. | Matching for the D antigen in haematopoietic progenitor cell transplantation: definition and clinical outcomes | |
Cruz et al. | Prevalence of erythrocyte alloimmunization in polytransfused patients | |
Peña et al. | Anti‐HLA alloantibodies in surgical patients refractory to platelet transfusion | |
Cid et al. | Anti‐D alloimmunization after D‐mismatched allogeneic hematopoietic stem cell transplantation in patients with hematologic diseases | |
Bertani et al. | Response of steroid‐refractory chronic graft‐versus‐host disease to extracorporeal photopheresis correlates with the dose of CD3+ lymphocytes harvested during early treatment cycles | |
Akkök et al. | Immunohematologic issues in ABO-incompatible allogeneic hematopoietic stem cell transplantation | |
Matsui et al. | A case of Philadelphia chromosome‐positive acute lymphocytic leukaemia with type I CD36 deficiency | |
Sazama et al. | Practice parameter for the recognition, management, and prevention of adverse consequences of blood transfusion | |
RU2708631C1 (ru) | Способ комплектования резерва криоконсервированных эритроцитов на основании иммуногематологических критериев | |
Lo et al. | Platelet alloimmunization after long‐term red cell transfusion in transfusion‐dependent thalassemia patients | |
Hassan et al. | Rebound and overshoot of donor‐specific antibodies to human leukocyte antigens (HLA) during desensitization with plasma exchanges in hematopoietic progenitor cell transplantation: A case report | |
Subramaniyan et al. | Role of daratumumab in transfusion medicine: a must know entity | |
Papassavas et al. | A strategy of splitting individual high volume cord blood units into two half subunits prior to processing increases the recovery of cells and facilitates ex vivo expansion of the infused haematopoietic progenitor cells in adults | |
Keramati et al. | Red Blood Cells Alloimmunization and Autoimmunization in Multi-transfused Thalassemia Patients in South of Iran | |
Sumii et al. | Red blood cell depletion in small‐volume bone marrow processing using manipulation with third‐party red blood cells: A comparison of the performance of the COBE spectra and the spectra Optia systems |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20210402 |