RU2708458C2 - Method for labeling activated lymphocytes in vitro with a complex compound - Google Patents

Method for labeling activated lymphocytes in vitro with a complex compound Download PDF

Info

Publication number
RU2708458C2
RU2708458C2 RU2019128656A RU2019128656A RU2708458C2 RU 2708458 C2 RU2708458 C2 RU 2708458C2 RU 2019128656 A RU2019128656 A RU 2019128656A RU 2019128656 A RU2019128656 A RU 2019128656A RU 2708458 C2 RU2708458 C2 RU 2708458C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
labeled
lymphocytes
cell
cells
labeling
Prior art date
Application number
RU2019128656A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2019128656A (en
RU2019128656A3 (en
Inventor
Николай Васильевич Михайловский
Елена Вячеславовна Абакушина
Юлия Витальевна Гельм
Ольга Николаевна Спиченкова
Михаил Александрович Сигов
Герман Анатольевич Давыдов
Сергей Анатольевич Иванов
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр радиологии" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "НМИЦ радиологии" Минздрава России)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр радиологии" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "НМИЦ радиологии" Минздрава России) filed Critical Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр радиологии" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "НМИЦ радиологии" Минздрава России)
Priority to RU2019128656A priority Critical patent/RU2708458C2/en
Publication of RU2019128656A publication Critical patent/RU2019128656A/en
Publication of RU2019128656A3 publication Critical patent/RU2019128656A3/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2708458C2 publication Critical patent/RU2708458C2/en

Links

Images

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/12Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
    • A61K35/14Blood; Artificial blood
    • A61K35/17Lymphocytes; B-cells; T-cells; Natural killer cells; Interferon-activated or cytokine-activated lymphocytes
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K51/00Preparations containing radioactive substances for use in therapy or testing in vivo
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/531Production of immunochemical test materials
    • G01N33/532Production of labelled immunochemicals

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Optics & Photonics (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: invention refers to medicine, namely to a method for labeling activated lymphocytes in vitro with a complex compound. Method involves incubation of activated lymphocytes with RFP 99mTc-THEOXYM in amount of 2 ml with activity of 350–500 MBq, with periodic shaking during 20 minutes, after incubation, in a test tube with cell mass phosphate-salt buffer is added and total volume is increased to 10 ml, then test tube is centrifuged for 5–6 minutes at 1,500–2,000 rpm, after that supernatant fluid is completely removed, labeled 99mTc-theoxyme cell conglomerate is resuspended in 1 ml of a phosphate-salt buffer. Viability of labeled activated lymphocytes in vitro by the disclosed method remains higher than 95 %.
EFFECT: ready cell preparation may be administered intraperitoneally paravertebrally at the level of vanes or in the lumbar region and examined pathways of labeled cell migration in vivo by SPECT/CT.
1 cl, 3 dwg, 1 ex

Description

Изобретение относится к области медицины, а именно к онкоиммунологии и радионуклидной диагностике, и может найти применение для мониторинга распределения клеток при проведении клеточной иммунотерапии онкологическим больным. Способ мечения может являться универсальным для различных видов активированных аутологичных и аллогенных клеток (цитотоксических Т-лимфоцитов, натуральных киллеров (NK) и дендритных клеток).The invention relates to medicine, namely to oncoimmunology and radionuclide diagnostics, and can find application for monitoring cell distribution during cell immunotherapy for cancer patients. The labeling method can be universal for various types of activated autologous and allogeneic cells (cytotoxic T-lymphocytes, natural killer cells (NK) and dendritic cells).

За последние десятилетия существенный прогресс достигнут в области иммунотерапии, разработаны многочисленные иммунотерапевтические стратегии, продемонстрировавшие свою безопасность и эффективность в ряде клинических испытаний. Иммунотерапия в настоящее время включает такие направления: создание ингибиторов контрольных точек, естественные антитела и конъюгированные с химиопрепаратами или радиоактивными частицами, противоопухолевые вакцины, а также адоптивную клеточную терапию. Наиболее перспективным направлением является метод использования клеток-эффекторов врожденного иммунитета, в частности NK и Т-лимфоцитов, противоопухолевый потенциал которых усиливают с помощью культивирования in vitro в присутствии цитокинов. Данный метод разработан [1] и успешно внедрен в клиническую практику [2], он показал относительно высокую терапевтическую эффективность в комплексном подходе. Однако на сегодняшний момент нет единого мнения о ключевых составляющих такой терапии, и по-прежнему возникают вопросы: куда, каким образом, и какое количество клеток необходимо вводить пациенту для того, чтобы такая терапия увенчалась объективным успехом. Также не изучались пути миграции активированных лимфоцитов человека при внутрикожном введении.Over the past decades, significant progress has been made in the field of immunotherapy, numerous immunotherapeutic strategies have been developed that have demonstrated their safety and effectiveness in a number of clinical trials. Immunotherapy currently includes the following areas: creation of control point inhibitors, natural antibodies and conjugated with chemotherapeutic drugs or radioactive particles, antitumor vaccines, as well as adaptive cell therapy. The most promising area is the use of innate immunity effect cells, in particular NK and T-lymphocytes, the antitumor potential of which is enhanced by in vitro cultivation in the presence of cytokines. This method was developed [1] and successfully implemented in clinical practice [2]; it showed relatively high therapeutic efficacy in an integrated approach. However, at present there is no consensus on the key components of such therapy, and questions still arise: where, how, and how many cells must be introduced to the patient in order for such therapy to be an objective success. Also, migration routes of activated human lymphocytes with intradermal administration have not been studied.

Известны способы топической диагностики воспалительных заболеваний сердца (RU 2136218 C1, RU 2244515 С1), в основе которых лежит один и тот же принцип внутривенного введения аутолеикоцитов, меченных 99mTс-гексаметиленпропиленаминоксимом.Known methods for the topical diagnosis of inflammatory heart diseases (RU 2136218 C1, RU 2244515 C1), which are based on the same principle of intravenous administration of autoleukocytes labeled with 99m Tc-hexamethylene propyleneaminoxime.

Однако в известных способах отсутствует контроль качества эффективности мечения клеток аутологичных лиейкоцитов.However, in the known methods there is no quality control of the efficiency of labeling cells of autologous leukocytes.

Известен способ выявления очагов воспаления с помощью полиорганной сцинтиграфии (RU 2648877 С1), в основе которого лежит применение аутолейкоцитов, меченых 99mТс-теоксимом или 99mТс-церетеком для внутривенного введения пациенту.A known method for identifying foci of inflammation using multiple organ scintigraphy (RU 2648877 C1), which is based on the use of autoleukocytes labeled with 99m Tc-teoksimom or 99m Tc-tseretekom for intravenous administration to the patient.

Недостатком способа является использование пакетов типа Гемакон, что затрудняет или даже делает невозможным полное отделение клеточной массы от надосадка, содержащего свободный РФП, что может повлиять на достоверность результатов в ходе проведения ОФЭКТ-исследования.The disadvantage of this method is the use of Gemacon-type packets, which makes it difficult or even impossible to completely separate the cell mass from the supernatant containing free radiopharmaceutical, which may affect the reliability of the results during SPECT studies.

Известен способ оценки функционального состояния селезенки (RU 2152168 С1). Проводят динамическую гамма-сцинтиграфию с меченными 99ТС эритроцитами, поврежденными нагреванием. Определяют время наступления максимальной активности γ-излучения в области селезенки (Тmах), селезеночно-печеночный индекс (СПИ). Секвестрационную функцию селезенки оценивают по кривой активность - время. Количество функционирующей красной пульпы селезенки устанавливают по СПИ. При Тmах, равном 90±30 мин, и СПИ, равном 94%, секвестрационную функцию красной пульпы оценивают нормальной.A known method for assessing the functional state of the spleen (RU 2152168 C1). A dynamic gamma scintigraphy is carried out with 99 TC labeled red blood cells damaged by heat. Determine the time of onset of maximum activity of γ-radiation in the spleen (T max ), splenic-hepatic index (SPI). Sequestration function of the spleen is evaluated by the activity-time curve. The amount of functioning red pulp of the spleen is determined by STI. When T max equal to 90 ± 30 min, and the IPI equal to 94%, sequestration function of the red pulp is estimated normal.

Известен также способ диагностики очаговых поражений селезенки (RU 2190959 С2). Проводят радионуклидное исследование с использованием меченных 99mТс и поврежденных нагреванием эритроцитов. Используют радиофармпрепарат радиоактивностью 20 mCi. Через 2,5 ч после его введения проводят однофотонную эмиссионную компьютерную томографию и при регистрации дефектов накопления или очагов гиперфиксации радиофармпрепарата на SPECT-срезах определяют очаговые поражения селезенки.There is also known a method for the diagnosis of focal lesions of the spleen (RU 2190959 C2). A radionuclide study is carried out using 99m Tc labeled and heat-damaged red blood cells. A radiopharmaceutical with a radioactivity of 20 mCi is used. 2.5 hours after its administration, single-photon emission computed tomography is performed, and focal lesions of the spleen are determined when registration of defects in accumulation or foci of hyperfixation of the radiopharmaceutical on SPECT sections.

Однако в известных способах является некорректный прием мечения клеток: внутривенное введение транспортного вещества без радионуклида, с последующим забором крови и инкубацией с радионуклидом последней, что может отразиться на достоверности результатов ОФЭКТ-исследования.However, in the known methods, the labeling of cells is incorrect: intravenous administration of a transport substance without a radionuclide, followed by blood sampling and incubation with the radionuclide, which may affect the reliability of the SPECT study.

Прототипом предлагаемого технического решения является способ метки мононуклеарных клеток красного костного мозга с помощью 99mТС-эксаметазима (RU 2343933 С1). Клеточную суспензию инкубируют с 4 мл 99mТс-эксаметазима в течение 10 минут при комнатной температуре, с последующей отмывкой, центрифугированием в течение 5 минут при 150g, после чего собирают надосадок, ресуспензируют его, для получения меченных 99mТс-эксаметазимом мононуклеарных клеток красного костного мозга, при этом инкубирование проводят с 1500-2000 мБк 99mТс-эксаметазима, отмывку проводят 10 мл изотонического раствора натрия хлорида, а ресуспензирование в 10 мл изотонического раствора натрия хлорида.The prototype of the proposed technical solution is a method for labeling mononuclear cells of red bone marrow using 99m TC-examethasime (RU 2343933 C1). The cell suspension is incubated with 4 ml of 99m Tc-examethasime for 10 minutes at room temperature, followed by washing, centrifugation for 5 minutes at 150g, after which the supernatant is collected and resuspended to obtain 99m Tc-examethasime-labeled red bone marrow mononuclear cells while incubation is carried out with 1500-2000 mBq 99m Tc-examethasime, washing is carried out with 10 ml of isotonic sodium chloride solution, and resuspension in 10 ml of isotonic sodium chloride solution.

Недостатком данного способа является использование РФП с большой удельной активностью, что экономически нецелесообразно, поскольку клетки имеют конечную насыщаемость препаратом и увеличение активности никак не влияет на это свойство; также все действия по отмывке и ресуспендированию клеточной массы проводились с использованием физиологического раствора, что негативно сказывается на функциональной активности клеток.The disadvantage of this method is the use of radiopharmaceuticals with high specific activity, which is not economically feasible, since the cells have a finite saturation with the drug and an increase in activity does not affect this property; also, all actions to wash and resuspend the cell mass were carried out using physiological saline, which negatively affects the functional activity of cells.

Техническим результатом предлагаемого изобретения является получение меченой РФП культуры активированных лимфоцитов с высокими показателями жизнеспособности и эффективности мечения клеток.The technical result of the invention is the production of radiolabeled activated lymphocyte culture with high viability and efficiency of cell labeling.

Технический результат достигается тем, что также как и в известном способе проводят мечение активированных клеток in vitro.The technical result is achieved by the fact that, as in the known method, they carry out the labeling of activated cells in vitro.

Особенностью заявляемого способа является то, что инкубирование клеток проводят 99mТс-теоксимом в объеме 1,5-2 мл, активностью 350-500 МБк, с периодическим встряхиванием клеточной суспензии в течение 20 минут, затем к меченой клеточной субстанции добавляют фосфатно-солевой буфер в объеме 7-10 мл и центрифугируют в течение 6 минут при 2000 оборотов/минуту на центрифуге с бакетным ротором, отбирают надосадок, содержащий свободный 99mТс-теоксим, полученный клеточный конгломерат ресуспендируют в 1 мл фосфатно-солевого буфера, далее определяют с помощью раствора трипанового синего жизнеспособность меченых лимфоцитов в камере Горяева, оценивают качество мечения путем измерения активности полученной клеточной массы с помощью радиометра и получением сцинтиграммы пробирки с меченой клеточной массой. Причем мечению подвергают аутологичные или аллогенные лимфоциты и дендритные клетки.A feature of the proposed method is that the cells are incubated with 99m Tc-teoxim in a volume of 1.5-2 ml, an activity of 350-500 MBq, with periodic shaking of the cell suspension for 20 minutes, then phosphate-buffered saline is added to the labeled cell substance volume of 7-10 ml and centrifuged for 6 minutes at 2000 revolutions / min with a centrifuge rotor baketnym is withdrawn supernatant containing a free 99m Tc-teoksim derived cell conglomeration resuspended in 1 ml of phosphate-buffered saline, is then determined using astvora trypan blue viability of labeled lymphocytes in the Goryaev chamber tagging evaluated quality by measuring the activity of a cell mass obtained by the radiometer and give scintigrams tubes labeled cell mass. Moreover, autologous or allogeneic lymphocytes and dendritic cells are labeled.

Изобретение поясняется подробным описанием, клиническим примером и иллюстрациями, на которых изображено:The invention is illustrated by a detailed description, clinical example and illustrations, which depict:

Фиг. 1 - Пробирка с мечеными лимфоцитами: А - осажденные меченые лимфоциты; Б - сцинтиграмма меченой клеточной массы;FIG. 1 - Test tube with labeled lymphocytes: A - precipitated labeled lymphocytes; B - scintigram of labeled cell mass;

Фиг. 2 - Сцинтиграфия тела пациента К.: В - места введения меченого клеточного препарата, Г - лимфоциты из места введения мигрировали в правый подмышечный лимфоузел, Д - аллергическая проба с применением чистого РФП 99mТс-теоксимом;FIG. 2 - Patient body scintigraphy K.: B - the injection site of the labeled cell preparation, G - lymphocytes from the injection site migrated to the right axillary lymph node, D - allergic test using pure radiopharmaceutical 99m Tc-teoxime;

Фиг. 3 - ОФЭКТ/КТ исследование путей миграции активированных меченых 99mТс-теоксимом лимфоцитов пациента К.: Г - меченые активированные лимфоциты мигрировали в правый подмышечный лимфоузел.FIG. 3 - SPECT / CT study of migration pathways of activated K. 99m -labeled Tc-teoxim lymphocytes of patient K.: D - labeled activated lymphocytes migrated to the right axillary lymph node.

Способ осуществляют следующим образом.The method is as follows.

В стерильных условиях ламинарного бокса пипеткой собирают из культуральных флаконов необходимое для введения пациенту количество активированных лимфоцитов (5-30*106 клеток/мл), помещают в стерильную пробирку с коническим дном. Активированные лимфоциты осаждают центрифугированием, после чего пипеткой удаляют надосадочную жидкость и ресуспендируют клетки в объеме 1 мл.Under sterile conditions of a laminar box, the amount of activated lymphocytes necessary for administration to a patient (5-30 * 10 6 cells / ml) is collected from culture bottles with a pipette, and placed in a sterile tube with a conical bottom. Activated lymphocytes are precipitated by centrifugation, after which the supernatant is removed with a pipette and the cells are resuspended in a volume of 1 ml.

1. Элюат в объеме 2 мл активностью 350-500 МБк, полученный из генератора технеция 99mТс, в асептических условиях вносят с помощью шприца во флакон с ТЕОКСИМом, содержимое флакона перемешивают встряхиванием до полного растворения препарата.1. An eluate in a volume of 2 ml with an activity of 350-500 MBq, obtained from a 99m Tc technetium generator, is introduced under aseptic conditions into the TEOXIM bottle using a syringe, the contents of the bottle are mixed by shaking until the drug is completely dissolved.

2. К клеточной суспензии стерильным шприцем вносят 99mТс-ТЕОКСИМ. Затем инкубируют лимфоциты (с периодическим встряхиванием) в течение 20 минут.2. A 99m Tc-TEOXIM is introduced into the cell suspension with a sterile syringe. Then the lymphocytes are incubated (with periodic shaking) for 20 minutes.

3. После инкубирования, в пробирку с клеточной массой вносят фосфатно-солевой буфер, доводят общий объем до 10 мл. Затем устанавливают пробирку в центрифугу с бакетным ротором и центрифугируют в течение 5-6 минут при 1500-2000 об/мин., после чего полностью удаляют надосадочную жидкость.3. After incubation, phosphate-buffered saline is added to the test tube with cell mass, and the total volume is adjusted to 10 ml. Then the tube is installed in a centrifuge with a bucket rotor and centrifuged for 5-6 minutes at 1500-2000 rpm, after which the supernatant is completely removed.

4. Меченый 99mТс-теоксимом клеточный конгломерат респуспендируют в 1 мл фосфатно-солевого буфера.4. 99m Tc-teoxim-labeled cell conglomerate is suspended in 1 ml of phosphate buffered saline.

5. Определяют с помощью раствора трипанового синего жизнеспособность меченых лимфоцитов в камере Горяева или на автоматическом счетчике клеток.5. Determine with the help of a trypan blue solution the vitality of labeled lymphocytes in the Goryaev chamber or on an automatic cell counter.

6. Измеряют активность полученной клеточной массы в радиометре.6. Measure the activity of the obtained cell mass in a radiometer.

7. Получают сцинтиграфическое изображение пробирки с меченой клеточной массой (Фиг. 1).7. Receive a scintigraphic image of the tube with labeled cell mass (Fig. 1).

Клинический пример.Clinical example.

Пациентка К., 1965 пр., диагноз: рак левой молочной железы (T3N0M1), полученное ранее лечение: хирургическое, ПХТ. Поступила в отделение клинической иммунологии МРНЦ. им. А.Ф. Цыба для проведения адоптивной клеточной иммунотерапии.Patient K., 1965 ave., Diagnosis: cancer of the left breast (T3N0M1), previous treatment: surgical, PCT. She entered the Department of Clinical Immunology of the MRRC. them. A.F. Adaptive cell immunotherapy.

Для выделения популяции мононуклеарных клеток использовали периферическую кровь, полученную в результате пункции локтевой вены. Выделенные лимфоциты культивировали в течение 3 дней в среде с добавлением ИЛ-2, ИЛ-15. После завершения процесса культивирования получили активированные лимфоциты в количестве 10 млн. клеток. Затем к полученной клеточной массе добавляли 99mТс-ТЕОКСИМ объемом 2 мл и активностью 350 МБк, инкубировали в течение 20 мин. После инкубирования, в пробирку с клеточной массой вносили фосфатно-солевой буфер, доводя общий объем до 10 мл, центрифугировали в течение 6 минут при 2000 об/мин в центрифуге с бакетным ротором. Далее полностью удаляли надосадочную жидкость со свободным РФП. Клетки ресуспендировали в 1 мл. фосфатно-солевого буфера. С помощью красителя трипанового синего в камере Горяева определяли жизнеспособность клеток, которая составила 96,4%. Измеряли активность клеточной массы при помощи радиометра РИС-А1 «Дозкалибратора» - 29,0 МБк. Активированные лимфоциты, меченые 99mТс-теоксимом, вводили пациентке внутрикожно паравертебрально на уровне лопаток, используя инсулиновый шприц.To isolate a population of mononuclear cells, peripheral blood obtained by puncture of the ulnar vein was used. Isolated lymphocytes were cultured for 3 days in a medium supplemented with IL-2, IL-15. After completion of the cultivation process, activated lymphocytes in the amount of 10 million cells were obtained. Then, 99m Tc-TEOXIM with a volume of 2 ml and an activity of 350 MBq was added to the obtained cell mass, incubated for 20 min. After incubation, phosphate-buffered saline was added to the test tube with cell mass, bringing the total volume to 10 ml, centrifuged for 6 minutes at 2000 rpm in a centrifuge with a bucket rotor. Then, the supernatant with free radiopharmaceutical was completely removed. Cells were resuspended in 1 ml. phosphate buffered saline. Using the trypan blue dye in the Goryaev chamber, cell viability was determined, which amounted to 96.4%. The cell mass activity was measured using a RIS-A1 “Dose Calibrator” radiometer - 29.0 MBq. Activated lymphocytes labeled with 99m Tc-teoxim were injected intracutaneously to the patient paravertebrally at the level of the scapula using an insulin syringe.

За 5 дней до введения меченых активированных лимфоцитов пациентке в те же места внутрикожно вводили свободный 99mТс-ТЕОКСИМ, на сцинтиграммах наблюдали гипернакопление препарата лишь в местах его введения, а также физиологическое накопление (почки, мочевой пузырь, желудок).5 days before the introduction of the labeled activated lymphocytes, the patient was injected intracutaneously with the free 99m Tc-TEOXIM in the same places, on the scintigrams the accumulation of the drug was observed only at the injection sites, as well as physiological accumulation (kidneys, bladder, stomach).

Визуализацию путей миграции меченых активированных лимфоцитов проводили сразу после введения и через 4 часа после введения клеток на совмещенной системе ОФЭКТ/КТ Discovery NM/CT 670. Анализ изображений показал, что меченые 99mТс-теоксимом активированные лимфоциты из места введения мигрировали в правый подмышечный лимфоузел (Фиг. 2 и Фиг. 3).The migration pathways of labeled activated lymphocytes were visualized immediately after administration and 4 hours after cells were introduced on a SPECT / CT combined Discovery NM / CT 670 system. Image analysis showed that 99m Tc-texim-labeled activated lymphocytes from the injection site migrated to the right axillary lymph node ( Fig. 2 and Fig. 3).

Использование предложенного способа в клинике позволяет получать меченые 99mТс-теоксимом активированные лимфоциты и затем изучать их миграцию in vivo посредством ОФЭКТ/КТ при проведении адоптивной клеточной иммунотерапии. Показатель жизнеспособности меченой культуры при таком способе мечения составляет не менее 95%, а методы инструментальной верификации эффективности мечения (измерение активности собственно меченной клеточной массы и ее сцинтиграфия) указывают на то, что именно клетки захватили 99mТс-теоксим, и в свободной форме РФП в полученном клеточном препарате на содержится, что важно для исключения ложноположительных результатов ОФЭКТ-исследования. Способ апробирован на пяти пациентах с различными нозологическими формами онкологической патологии. При анализе была отмечена общая для всех клинических случаев закономерность - меченые активированные лимфоциты из мест введения направленно мигрировали в лимфоузлы, часть из которых расположена рядом с областью основной онкологической патологии. Этот факт означает, что достигнута основная цель адоптивной клеточной биотерапии - активация специфического противоопухолевого ответа иммунной системы.Using the proposed method in a clinic allows one to obtain activated lymphocytes labeled with 99m Tc-teoxim and then study their migration in vivo by SPECT / CT during adaptive cell immunotherapy. The labeled culture viability index with this labeling method is at least 95%, and the methods for instrumental verification of labeling efficiency (measuring the activity of the actual labeled cell mass and its scintigraphy) indicate that it was the cells that captured 99m Tc-teoxime, and in the free form of the radiopharmaceutical the obtained cell preparation does not contain, which is important for the exclusion of false positive results of SPECT studies. The method was tested on five patients with various nosological forms of oncological pathology. In the analysis, a regularity was observed for all clinical cases - labeled activated lymphocytes from the injection sites directed to the lymph nodes, some of which are located near the area of the main oncological pathology. This fact means that the main goal of adoptive cell biotherapy is achieved - the activation of a specific antitumor response of the immune system.

Claims (2)

1. Способ мечения активированных лимфоцитов in vitro комплексным соединением, включающий мечение активированных клеток in vitro, отличающийся тем, что из культуральных флаконов собирают необходимое для введения пациенту количество активированных лимфоцитов 5-30*106 клеток/мл и помещают в стерильную пробирку, активированные лимфоциты осаждают центрифугированием, после чего надосадочную жидкость удаляют и ресуспендируют клетки в объеме 1 мл, далее элюат в объеме 2 мл активностью 350-500 МБк, полученный из генератора технеция 99mTc, вносят с помощью шприца во флакон с ТЕОКСИМом и перемешивают встряхиванием до полного растворения препарата, далее к клеточной суспензии вносят 99mTc-ТЕОКСИМ и затем лимфоциты инкубируют с периодическим встряхиванием в течение 20 минут, после инкубирования, в пробирку с клеточной массой вносят фосфатно-солевой буфер и доводят общий объем до 10 мл, затем пробирку центрифугируют в течение 5-6 минут при 1500-2000 об/мин, после чего надосадочную жидкость полностью удаляют, меченый 99mTc-теоксимом клеточный конгломерат ресуспендируют в 1 мл фосфатно-солевого буфера и с помощью раствора трипанового синего определяют жизнеспособность меченых лимфоцитов в камере Горяева или на автоматическом счетчике клеток, измеряют активность полученной клеточной массы в радиометре и получают сцинтиграфическое изображение пробирки с меченой клеточной массой.1. The method of labeling activated lymphocytes in vitro with a complex compound, including the labeling of activated cells in vitro, characterized in that 5-30 * 10 6 cells / ml, necessary for administration to the patient, are collected from culture bottles and placed into a sterile tube, activated lymphocytes precipitated by centrifugation, after which the supernatant was removed and the cells were resuspended in a volume of 1 ml, then an eluate in a volume of 2 ml with an activity of 350-500 MBq obtained from a 99m Tc technetium generator was introduced using a syringe TSA in a vial with TEOXIM and mix by shaking until the drug is completely dissolved, then 99m Tc-TEOXIM is added to the cell suspension and then the lymphocytes are incubated with periodic shaking for 20 minutes, after incubation, phosphate-buffered saline is added to the tube with cell mass and the total is adjusted volume up to 10 ml, then the tube is centrifuged for 5-6 minutes at 1500-2000 rpm, after which the supernatant is completely removed, 99m Tc-toxime-labeled cell conglomerate is resuspended in 1 ml of phosphate-buffered saline and Using a trypan blue solution, the viability of labeled lymphocytes is determined in the Goryaev chamber or on an automatic cell counter, the activity of the obtained cell mass is measured in a radiometer, and a scintigraphic image of the tube with labeled cell mass is obtained. 2. Способ по п. 1, отличающийся тем, что проводят мечение аутологичных или аллогенных лимфоцитов и дендритных клеток.2. The method according to p. 1, characterized in that they carry out the labeling of autologous or allogeneic lymphocytes and dendritic cells.
RU2019128656A 2019-09-12 2019-09-12 Method for labeling activated lymphocytes in vitro with a complex compound RU2708458C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019128656A RU2708458C2 (en) 2019-09-12 2019-09-12 Method for labeling activated lymphocytes in vitro with a complex compound

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019128656A RU2708458C2 (en) 2019-09-12 2019-09-12 Method for labeling activated lymphocytes in vitro with a complex compound

Publications (3)

Publication Number Publication Date
RU2019128656A RU2019128656A (en) 2019-11-05
RU2019128656A3 RU2019128656A3 (en) 2019-11-05
RU2708458C2 true RU2708458C2 (en) 2019-12-09

Family

ID=68500285

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2019128656A RU2708458C2 (en) 2019-09-12 2019-09-12 Method for labeling activated lymphocytes in vitro with a complex compound

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2708458C2 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2809526C2 (en) * 2022-06-02 2023-12-12 федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Московский государственный медико-стоматологический университет имени А.И. Евдокимова" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО МГМСУ им. А.И. Евдокимова Минздрава России) Method of quantitative assessment of degree of cellular preparation retention within target organ when intraorgan administration using radionuclide method

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5723102A (en) * 1986-12-10 1998-03-03 Cis Bio International Process for the preparation of an organ-specific substance labeled with technetium-99m
RU2136218C1 (en) * 1998-07-08 1999-09-10 Фадеев Николай Петрович Method of topical diagnosis of heart inflammatory diseases
RU2343933C1 (en) * 2007-05-28 2009-01-20 Государственное учреждение "Научно-исследовательский институт кардиологии Томского научного центра Сибирского отделения Российской академии медицинских наук", ГУ НИИ кардиологии ТНЦ СО РАМН METHOD OF LABEL OF MONONUCLEAR CELLS OF RED BONE MARROW WITH HELP OF 99mTc-EXAMETAZIME
RU2648877C1 (en) * 2017-06-26 2018-03-28 Государственное бюджетное учреждение здравоохранения города Москвы Научно-исследовательский институт скорой помощи имени Н.В. Склифосовского Департамента здравоохранения г. Москвы Method for inflammation foci identification by the method of poly-organic scintigraphy

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5723102A (en) * 1986-12-10 1998-03-03 Cis Bio International Process for the preparation of an organ-specific substance labeled with technetium-99m
RU2136218C1 (en) * 1998-07-08 1999-09-10 Фадеев Николай Петрович Method of topical diagnosis of heart inflammatory diseases
RU2343933C1 (en) * 2007-05-28 2009-01-20 Государственное учреждение "Научно-исследовательский институт кардиологии Томского научного центра Сибирского отделения Российской академии медицинских наук", ГУ НИИ кардиологии ТНЦ СО РАМН METHOD OF LABEL OF MONONUCLEAR CELLS OF RED BONE MARROW WITH HELP OF 99mTc-EXAMETAZIME
RU2648877C1 (en) * 2017-06-26 2018-03-28 Государственное бюджетное учреждение здравоохранения города Москвы Научно-исследовательский институт скорой помощи имени Н.В. Склифосовского Департамента здравоохранения г. Москвы Method for inflammation foci identification by the method of poly-organic scintigraphy

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2809526C2 (en) * 2022-06-02 2023-12-12 федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Московский государственный медико-стоматологический университет имени А.И. Евдокимова" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО МГМСУ им. А.И. Евдокимова Минздрава России) Method of quantitative assessment of degree of cellular preparation retention within target organ when intraorgan administration using radionuclide method

Also Published As

Publication number Publication date
RU2019128656A (en) 2019-11-05
RU2019128656A3 (en) 2019-11-05

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4935223A (en) Labeled cells for use in imaging
Srinivas et al. Imaging of cellular therapies
Datz et al. Effect of chronicity of infection on the sensitivity of the In-111-labeled leukocyte scan
Buck et al. Chemokine receptor–directed imaging and therapy
Caveliers et al. In vivo visualization of^ sup 111^ In labeled CD133+ peripheral blood stem cells after intracoronary administration in patients with chronic ischemic heart disease
Yilmaz et al. Comparison of FDG and FDG-labeled leukocytes PET/CT in diagnosis of infection
Fan et al. 68Ga-labeled 3PRGD2 for dual PET and Cerenkov luminescence imaging of orthotopic human Glioblastoma
RU2702294C1 (en) Method for radionuclide diagnosing operable breast cancer with overexpression of her2/neu
Zeltchan et al. Study of potential utility of new radiopharmaceuticals based on technetium-99m labeled derivative of glucose
RU2708458C2 (en) Method for labeling activated lymphocytes in vitro with a complex compound
Pawelski et al. SPECT-and PET-based approaches for noninvasive diagnosis of acute renal allograft rejection
RU2648877C1 (en) Method for inflammation foci identification by the method of poly-organic scintigraphy
Eriksson et al. Distribution of adoptively transferred porcine T-lymphoblasts tracked by 18F-2-fluoro-2-deoxy-d-glucose and position emission tomography
US10561379B2 (en) In vivo positron emission tomography-based perfusion/blood pool imaging using labeled erythrocytes
RU2657761C1 (en) Method of tumor diagnosis
Athanasios Notopoulos et al. The diagnostic performance of 99mTc-HMPAO radiolabeled leucocytes scintigraphy in the investigations of infection. A single center experience
RU2708088C2 (en) Using radiopharmaceutical composition using labelled autologous leukocytes to visualize local radiation lesions by single-photon emission tomography
CN116715805B (en) Multifunctional gel microsphere rich in bisphosphonic acid groups and preparation method and application thereof
Charron et al. 99 m Tc antigranulocyte monoclonal antibody imaging for the detection and assessment of inflammatory bowel disease newly diagnosed by colonoscopy in children
RU2800706C1 (en) METHOD OF PRODUCING A REAGENT BASED ON ALUMINUM COLLOID FORMS FOR MANUFACTURING TECHNETIUM-99m LABELED RADIOPHARMACEUTICAL PREPARATION AND A METHOD OF MANUFACTURING TECHNETIUM-99m LABELED RADIOPHARMACEUTICAL PREPARATION
Das et al. 170Tm-EDTMP: A prospective alternative of 89SrCl2 for theranostic treatment of metastatic bone pain
RU2809526C2 (en) Method of quantitative assessment of degree of cellular preparation retention within target organ when intraorgan administration using radionuclide method
RU2343933C1 (en) METHOD OF LABEL OF MONONUCLEAR CELLS OF RED BONE MARROW WITH HELP OF 99mTc-EXAMETAZIME
Shah et al. Preclinical Evaluation of 99 m Tc-Ethambutol, an Alternative Tuberculosis Diagnostic Tool
Kitson et al. Preface