RU2696074C1 - Trichoderma reesei mycelial fungus strain - producer of endoglucanase, xylanase and pectinase complex for production of protein additives based on cereal and legume raw material for use in fodder production - Google Patents

Trichoderma reesei mycelial fungus strain - producer of endoglucanase, xylanase and pectinase complex for production of protein additives based on cereal and legume raw material for use in fodder production Download PDF

Info

Publication number
RU2696074C1
RU2696074C1 RU2018140545A RU2018140545A RU2696074C1 RU 2696074 C1 RU2696074 C1 RU 2696074C1 RU 2018140545 A RU2018140545 A RU 2018140545A RU 2018140545 A RU2018140545 A RU 2018140545A RU 2696074 C1 RU2696074 C1 RU 2696074C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
strain
xylanase
production
producer
endoglucanase
Prior art date
Application number
RU2018140545A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Аркадий Пантелеймонович Синицын
Нина Васильевна Цурикова
Елена Викторовна Костылева
Анна Сергеевна Середа
Ирина Александровна Великорецкая
Татьяна Николаевна Веселкина
Лидия Ивановна Нефедова
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Федеральный исследовательский центр питания, биотехнологии и безопасности пищи
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Федеральный исследовательский центр питания, биотехнологии и безопасности пищи filed Critical Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Федеральный исследовательский центр питания, биотехнологии и безопасности пищи
Priority to RU2018140545A priority Critical patent/RU2696074C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2696074C1 publication Critical patent/RU2696074C1/en

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14Fungi; Culture media therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/24Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
    • C12N9/2402Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/24Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
    • C12N9/2402Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12N9/2405Glucanases
    • C12N9/2434Glucanases acting on beta-1,4-glucosidic bonds
    • C12N9/2437Cellulases (3.2.1.4; 3.2.1.74; 3.2.1.91; 3.2.1.150)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/24Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
    • C12N9/2402Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12N9/2477Hemicellulases not provided in a preceding group
    • C12N9/248Xylanases
    • C12N9/2482Endo-1,4-beta-xylanase (3.2.1.8)
    • C12R1/885
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y302/00Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
    • C12Y302/01Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12Y302/01004Cellulase (3.2.1.4), i.e. endo-1,4-beta-glucanase
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y302/00Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
    • C12Y302/01Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12Y302/01008Endo-1,4-beta-xylanase (3.2.1.8)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y302/00Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
    • C12Y302/01Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12Y302/01015Polygalacturonase (3.2.1.15)

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: invention relates to the field of biotechnology. Disclosed are a Trichoderma reesei VKM F-4789D strain, a method for producing a fodder complex enzyme preparation and a method for increasing the feed value of cereal and legume mixtures. Micellial fungus strain Trichoderma reesei VKM F-4789D is a producer of endoglucanase, xylanase and pectinase, which decompose non-starch polysaccharides.
EFFECT: invention is used to produce an enzyme preparation for destroying non-starch polysaccharides of cereal and legume raw material in fodder production for increasing feed value of rations and in production of protein fodder additives for farm animals, poultry and aquaculture.
3 cl, 5 tbl, 5 ex

Description

Изобретение относится к области биотехнологии и может быть использовано для разрушения некрахмальных полисахаридов (НКП) зернового и зернобобового сырья в кормопроизводстве для повышения кормовой ценности рационов и при получении белковых кормовых добавок для сельскохозяйственных животных, птицы и аквакультуры.The invention relates to the field of biotechnology and can be used to destroy non-starch polysaccharides (NCP) of grain and leguminous raw materials in feed production to increase the feed value of diets and to obtain protein feed additives for farm animals, poultry and aquaculture.

Одним из способов решения проблемы дефицита кормового белка является рациональное использование растительных белоксодержащих субстратов. Усвоению белка из растительных источников препятствует высокое содержание в растительных клеточных стенках НКП, оказывающих антипитательное действие на организм моногастричных животных, птицы, аквакультуры. НКП повышают вязкость перевариваемой массы, затрудняют гидролиз питательных компонентов и всасывание продуктов гидролиза стенками кишечника, образуют комплексы с белком, снижая его переваримость, способствуют развитию патогенной микрофлоры в кишечнике, изменяют физиологию и морфологию пищеварительного тракта [1]. В России злаковые культуры составляют основу рационов сельскохозяйственных животных. НКП злаковых культур представлены, главным образом, арабиноксиланами, целлюлозой и β-глюканами [2]. В состав большинства рационов в качестве дополнительных источников белка входят зернобобовые культуры, такие как соя, люпин, горох. Для зернобобовых культур характерно высокое содержание пектина, в оболочках преимущественно содержится целлюлоза, а в ряде культур арабиноксилан [3-5].One way to solve the problem of feed protein deficiency is the rational use of vegetable protein-containing substrates. The assimilation of protein from plant sources is hindered by the high content of NKP in plant cell walls, which have an anti-nutritional effect on the body of monogastric animals, birds, and aquaculture. NKP increase the viscosity of the digested mass, impede the hydrolysis of nutrients and the absorption of hydrolysis products by the intestinal walls, form complexes with the protein, reducing its digestibility, promote the development of pathogenic microflora in the intestine, alter the physiology and morphology of the digestive tract [1]. In Russia, cereals form the basis of the diets of farm animals. LCPs of cereals are mainly represented by arabinoxylans, cellulose and β-glucans [2]. Most diets include legumes, such as soy, lupine, and peas, as additional sources of protein. Legumes are characterized by a high pectin content, mainly cellulose is contained in the shells, and arabinoxylan in a number of crops [3-5].

С целью повышения кормовой ценности рационов на основе растительного сырья в кормопроизводстве широко используют ферментные препараты (ФП) карбогидраз, способных гидролизовать НКП. Применение ФП целлюлаз, гемицеллюлаз и пектиназ позволяет устранить антипитательные свойства водорастворимых НКП, разрушить матрикс клеточных стенок растений, что приводит к снижению вязкости перевариваемой массы, повышает доступность питательных компонентов для действия пищеварительных ферментов, высвобождает сахара, необходимые для роста молочнокислых бактерий, способствует нормализации микрофлоры кишечника, увеличивает энергетическую ценность и усвояемость кормов [1, 6]. Кроме того, высвобождается белок, который в растительном сырье находится в связанном состоянии с гемицеллюлозой и пектинами, повышается степень утилизации питательных компонентов корма [1]. В последние годы интенсивно развивается рынок кормов для аквакультуры. Наиболее актуальным вопросом при разработке технологий получения кормовых добавок для аквакультуры на основе растительного белоксодержащего сырья является повышение содержания белка за счет снижения количества НКП, что решается, в первую очередь, ферментативным гидролизом НКП с последующим отделением водорастворимых продуктов гидролиза [7].In order to increase the feed value of plant-based rations, fodder production widely uses enzyme preparations (FP) of carbohydras capable of hydrolyzing NCP. The use of AF cellulases, hemicellulases and pectinases eliminates the anti-nutritional properties of water-soluble NCPs, destroys the matrix of plant cell walls, which reduces the viscosity of the digested mass, increases the availability of nutrients for the action of digestive enzymes, releases sugars necessary for the growth of lactic acid bacteria, and helps to normalize intestinal microflora , increases the energy value and digestibility of feed [1, 6]. In addition, protein is released, which in plant raw materials is bound to hemicellulose and pectins, and the degree of utilization of nutrient components of the feed increases [1]. In recent years, the aquaculture feed market has been developing rapidly. The most pressing issue in the development of technologies for obtaining feed additives for aquaculture based on plant-based protein-containing raw materials is to increase the protein content by reducing the amount of NKP, which is solved, first of all, by enzymatic hydrolysis of NKP with subsequent separation of water-soluble hydrolysis products [7].

В связи с тем, что НКП растительного белоксодержащего сырья представлены целлюлозой, гемицеллюлозой и пектиновыми веществами, в кормопроизводстве активно используются комплексные ФП, содержащие в своем составе целлюлазы, ксиланазы и ферменты пектиназного комплекса. Как правило, ключевыми ферментами при кормовом применении ФП являются гидролазы эндодеполимеразного действия [8]. Эндоглюканаза (эндо-β-1,4-глюканаза, КМЦаза, КФ 3.2.1.4) гидролизует внутренние β-1,4-гликозидные связи, удаленные от концов полимерной цепи целлюлозы и β-1,4(1,3)-глюканов, что приводит к снижению степени полимеризации этих полисахаридов и снижению вязкости их водных растворов. Ксиланаза (эндо-1,4-β-ксиланаза, КФ 3.2.1.8) выполняет основную функцию при гидролизе арабиноксиланов зерновых и зернобобовых культур. Ксиланаза приводит не только к уменьшению степени полимеризации ксиланов и снижению их вязкости, но и к образованию ксилоолигосахаридов, обладающих пребиотическими свойствами [1, 9, 10]. К основным деполимеразам, участвующим в деградации пектиновых веществ, относятся: полигалактуроназы (ПГ) и полиметилгалактуроназы (ПМГ), катализирующие гидролитическое расщепление α-1,4-гликозидных связей в пектине и пектовой кислоте, соответственно, а также пектин/пектатлиазы, расщепляющие α-1,4-гликозидные связи в ходе реакции трансэлиминирования с образованием галактуронидов. ПГ и ПМГ бывают двух типов: эндодеполимеразного действия, катализирующие неупорядоченный гидролиз α-1,4-гликозидных связей в соответствующих субстратах с образованием олигогалактуронатов или метилированных/ацетилированных олигогалактуронатов, и экзодеполимеразного действия, катализирующие последовательный гидролиз соответствующих субстратов с образованием моногалактуронатов, в случае экзо-ПМГ метилированных/ацетилированных. В процессах переработки пектинсодержащего сырья наиболее широко используют полигалактуроназы и пектин/пектатлиазы, предпочтительно, эндодеполимеразного действия [11, 12].Due to the fact that NKP of plant protein-containing raw materials are represented by cellulose, hemicellulose and pectin substances, complex FPs containing cellulases, xylanases and pectinase enzymes are actively used in feed production. As a rule, endo-depolymerase action hydrolases are the key enzymes in the feed use of AF [8]. Endoglucanase (endo-β-1,4-glucanase, CMCase, EC 3.2.1.4) hydrolyzes internal β-1,4-glycosidic bonds removed from the ends of the polymer chain of cellulose and β-1,4 (1,3) -glucans, which leads to a decrease in the degree of polymerization of these polysaccharides and a decrease in the viscosity of their aqueous solutions. Xylanase (endo-1,4-β-xylanase, EC 3.2.1.8) performs the main function in the hydrolysis of arabinoxylans of grain and leguminous crops. Xylanase leads not only to a decrease in the degree of polymerization of xylans and a decrease in their viscosity, but also to the formation of xylo-oligosaccharides with prebiotic properties [1, 9, 10]. The main depolymerases involved in the degradation of pectin substances include: polygalacturonases (PG) and polymethylgalacturonases (PMG), catalyzing the hydrolytic cleavage of α-1,4-glycosidic bonds in pectin and pectic acid, respectively, as well as pectin / pectatliases that cleave α- 1,4-glycosidic bonds during the trans-elimination reaction to form galacturonides. PG and SGP are of two types: endodepolymerase action, catalyzing the disordered hydrolysis of α-1,4-glycosidic bonds in the corresponding substrates with the formation of oligogalacturonates or methylated / acetylated oligogalacturonates, and exodepolymerase action, catalyzing the sequential hydrolysis of the corresponding substrates to form monogonal PMG methylated / acetylated. In the processing of pectin-containing raw materials, polygalacturonases and pectin / pectatliases, preferably of endodepolymerase action, are most widely used [11, 12].

На рынке кормовых ферментов представлены следующие ФП, имеющие в составе ферменты целлюлолитического, гемицеллюлолитического и пектиназного действия:The following FPs are presented on the feed enzyme market, which contain enzymes of cellulolytic, hemicellulolytic and pectinase action:

- Фидбест VGPro - препарат, выпускаемый отечественным предприятием - ООО ПО Сиббиофарм, содержит в качестве основных компонентов ксиланазу, β-глюканазу, пектиназу и протеазу (http://www.sibbio.ru/catalog/ptitsevodstvo/fermentnyy-preparat-fidbest-vgrro/);- VGPro feedbest - a drug manufactured by a domestic enterprise - PO Sibbiofarm LLC, contains xylanase, β-glucanase, pectinase and protease as the main components (http://www.sibbio.ru/catalog/ptitsevodstvo/fermentnyy-preparat-fidbest-vgrro /);

- Фидбест VGPro G (ООО ПО Сиббиофарм) - новый мультиэнзимный ФП, содержащий ксиланазу, β-глюканазу, пектинлиазу, пектиназу и амилазу из грибных и бактериальных продуцентов (http://www.sibbio.ru/catalog/ptitsevodstvo/fidbest-vgpro-g-/);- Feedbest VGPro G (Sibbiopharm software LLC) - a new multi-enzyme AF containing xylanase, β-glucanase, pectin lyase, pectinase and amylase from fungal and bacterial producers (http://www.sibbio.ru/catalog/ptitsevodstvo/fidbest-vgpro- g- /);

- Юдозайм AF 831 производства компании VTR BioTech (Китай) стандартизируется по ксиланазной, α-амилазной, целлюлазной и пектиназной активности, а также дополнительно содержит галактозидазу, целлобиазу, протеазу [13];- Yudozyme AF 831 manufactured by VTR BioTech (China) is standardized for xylanase, α-amylase, cellulase and pectinase activity, and also additionally contains galactosidase, cellobiase, protease [13];

- Pectinex 5XL ("Novozymes A/S", Дания) содержит в качестве основных ферментов пектиназу, гемицеллюлазу, целлюлазу [14];- Pectinex 5XL (Novozymes A / S, Denmark) contains pectinase, hemicellulase, and cellulase as the main enzymes [14];

- Ладозим Респект Ультра (Концерн «Микробиопром», Россия) содержит активный комплекс целлюлаз и гемицеллюлаз при высоком уровне пектиназной активности [15].- Ladozim Respect Ultra (Concern Microbioprom, Russia) contains an active complex of cellulases and hemicellulases with a high level of pectinase activity [15].

Однако все подобные препараты получают смешиванием ферментов, произведенных разными продуцентами. Кроме того, присутствие протеолитических ферментов в ферментных комплексах в некоторых технологиях получения белковых кормовых добавок приводит к потерям белка на этапах удаления водорастворимых продуктов гидролиза НКП [15].However, all such preparations are obtained by mixing enzymes produced by different producers. In addition, the presence of proteolytic enzymes in enzyme complexes in some technologies for the preparation of protein feed additives leads to protein loss at the stages of removal of water-soluble products of NKP hydrolysis [15].

Основными промышленными продуцентами целлюлаз и гемицеллюлаз на сегодняшний момент являются мицелиальные грибы рода Trichoderma, а для производства ФП пектиназ в большинстве случаев используют грибы рода Aspergillus [16, 17]. Экономически целесообразно получать комплексные препараты с требуемым соотношением основных компонентов на основе одного штамма-продуцента. В ферментном комплексе продуцентов целлюлаз и гемицеллюлаз, в том числе, грибов рода Trichoderma, часто содержатся следовые количества пектиназ, недостаточные для эффективного гидролиза пектиновых веществ в зернобобовом сырье. Для продуцентов пектиназ, наоборот, характерно низкое содержание ксиланаз и эндоглюканаз, расщепляющих основные НКП зернового сырья.The main industrial producers of cellulases and hemicellulases at the moment are mycelial fungi of the genus Trichoderma, and for the production of AF pectinases, in most cases, fungi of the genus Aspergillus are used [16, 17]. It is economically feasible to obtain complex preparations with the required ratio of the main components based on a single producer strain. The enzyme complex of cellulase and hemicellulase producers, including fungi of the genus Trichoderma, often contains trace amounts of pectinases insufficient for the effective hydrolysis of pectin substances in leguminous raw materials. Pectinase producers, on the contrary, are characterized by a low content of xylanases and endoglucanases, which break down the main NKP of grain raw materials.

Так известны штаммы A. foetidus 379-К (ВКПМ F-962) и A.foetidus 379-К-5-1 (RCAM 01136) [18, 19] с активностью в культуральной жидкости (КЖ) при глубинном культивировании в колбах: β-глюканазы 6,5 и 13,3 ед/см3, целлюлазы (по КМЦ) - 2,6 и 6,1 ед/см3, эндополигалактуроназы - 2,01 и 3,7 ед/см3, соответственно. Препараты, получаемые на основе этих штаммов, предназначены для обработки пектинсодержащего сырья и микробной биомассы, при этом активность целлюлаз и гемицеллюлаз недостаточна для получения ФП, способных эффективно гидролизовать зерновое сырье.So known strains A. foetidus 379-K (VKPM F-962) and A.foetidus 379-K-5-1 (RCAM 01136) [18, 19] with activity in the culture fluid (QL) during deep cultivation in flasks: β β-glucanases 6.5 and 13.3 units / cm 3 , cellulases (according to CMC) - 2.6 and 6.1 units / cm 3 , endopolygalacturonases - 2.01 and 3.7 units / cm 3 , respectively. The preparations obtained on the basis of these strains are intended for the processing of pectin-containing raw materials and microbial biomass, while the activity of cellulases and hemicellulases is insufficient to produce AFs capable of effectively hydrolyzing grain raw materials.

Известен штамм Т. longibrachiatum ВКМ F-3865D [20] с активностью в КЖ при глубинном культивировании в колбах: целлюлаз (по КМЦ) - 8-14 ед/ см3, β-глюканазы - 80-105 ед/ см3, ксиланазы - 95-250 ед/ см3 и пектиназы - 9-11 ед/ см3. ФП на основе этого штамма предназначены, главным образом, для обработки целлюлозосодержащего растительного сырья, в частности, зерновых культур; активность пектиназы в штамме невысока.Known strain T. longibrachiatum VKM F-3865D [20] with activity in QOL during deep cultivation in flasks: cellulase (according to CMC) - 8-14 u / cm 3 , β-glucanase - 80-105 u / cm 3 , xylanase - 95-250 units / cm 3 and pectinases - 9-11 units / cm 3 . AF based on this strain are mainly intended for the processing of cellulose-containing plant materials, in particular, cereals; pectinase activity in the strain is low.

Известен штамм A. aculeatus ВКМ F-3766D - продуцент комплекса карбогидраз, содержащего ксиланазы, β-глюканазы, пектиназы и ксилоглюканазы [21]. Однако у штамма низкая активность по отношению к целлюлозе, являющейся одним из основных компонентов растительных клеточных стенок, что снижает эффективность получаемых на его основе препаратов при гидролизе зернового сырья.A known strain of A. aculeatus VKM F-3766D is a producer of a complex of carbohydrases containing xylanases, β-glucanases, pectinases and xyloglucanases [21]. However, the strain has low activity with respect to cellulose, which is one of the main components of plant cell walls, which reduces the effectiveness of the preparations obtained on its basis in the hydrolysis of grain raw materials.

Штамм A.foetidus ВKМ F 3890D [22] продуцирует в качестве основных ферментов кислую протеазу и полигалактуроназу, и в меньшем количестве ксиланазу, β-глюканазу, арабиназу, ксилоглюканазу и другие сопутствующие ферменты карбогидразного комплекса. Данное соотношение компонентов делает штамм перспективным для применения, главным образом, в пищевой отрасли. Для повышения кормовой ценности зернового сырья в ферментном комплексе штамма A. foetidus ВKМ F 3890D недостаточное содержание целлюлаз и гемицеллюлаз.The strain A.foetidus BKM F 3890D [22] produces acid protease and polygalacturonase as main enzymes, and in lesser amounts xylanase, β-glucanase, arabinase, xyloglucanase, and other concomitant carbohydrase complex enzymes. This ratio of components makes the strain promising for use mainly in the food industry. To increase the feed value of grain raw materials in the enzyme complex of the strain A. foetidus BKM F 3890D, insufficient cellulases and hemicellulases are present.

Известен мутантный штамм мицеллиального гриба: Т. longibrachiatum TW-14-220, депонированный в ВКМ под номером F-4642D, - продуцент комплекса ферментов эндоглюканаз, бета-глюканаз и ксиланаз, разрушающих НКП, отличающийся повышенной активностью по КМЦ, β-глюкану и ксилану, и уменьшенной активностью по микрокристаллической целлюлозе [23]. Однако данный продуцент не обладает способностью к биосинтезу ферментов пектолитического действия.Known mutant strain of micellar fungus: T. longibrachiatum TW-14-220, deposited in VKM under the number F-4642D, is a producer of the complex of enzymes endoglucanases, beta-glucanases and xylanases that destroy NKP, characterized by increased activity in CMC, β-glucan and xylan , and reduced microcrystalline cellulose activity [23]. However, this producer does not have the ability to biosynthesize enzymes with pectolytic action.

Таким образом, остается актуальной задача получить промышленный штамм - продуцент сбалансированного комплекса карбогидраз для эффективного гидролиза основных НКП в зерновом и зернобобовом сырье с целью повышения питательной ценности кормов.Thus, it remains an urgent task to obtain an industrial strain - a producer of a balanced complex of carbohydrases for the effective hydrolysis of basic NKP in grain and leguminous raw materials in order to increase the nutritional value of feed.

Технический результат заключается в получении нового штамма мицелиального гриба - продуцента сбалансированного ферментного комплекса карбогидраз эндодеполимеразного действия, обладающего высокой активностью эндоглюканазы, ксиланазы и пектиназ для применения в кормопроизводстве.The technical result consists in obtaining a new strain of mycelial fungus - a producer of a balanced enzyme complex of carbohydras of endodepolymerase action, which has high activity of endoglucanase, xylanase and pectinases for use in feed production.

Изобретение представляет собой новый штамм мицелиального гриба Trichoderma reesei K-4 - продуцента эндоглюканазы, ксиланазы и пектиназ. Штамм Т. reesei K-4 депонирован во ВКМ при Институте биохимии и физиологии микроорганизмов им. Г.К. Скрябина РАН под №ВКМ F-4789 D.The invention is a new strain of the mycelial fungus Trichoderma reesei K-4, a producer of endoglucanase, xylanase and pectinases. Strain T. reesei K-4 deposited in VKM at the Institute of Biochemistry and Physiology of Microorganisms named after G.K. Scriabin RAS under the number VKM F-4789 D.

Данный штамм может быть использован для обеспечения высокой эффективности обработки целлюлозо-, гемицеллюлозо- и пектинсодержащих субстратов, в том числе при гидролизе НКП зернового и зернобобового кормового сырья для сельскохозяйственных животных и птиц, а также аквакультуры.This strain can be used to ensure high processing efficiency of cellulose-, hemicellulose- and pectin-containing substrates, including the hydrolysis of NKP grain and leguminous feed materials for farm animals and birds, as well as aquaculture.

Изобретение касается также способа получения комплексного ФП с активностью эндоглюканазы, ксиланазы и пектиназ.The invention also relates to a method for producing complex AF with endoglucanase, xylanase and pectinase activity.

Способ получения ФП предусматривает глубинное культивирование штамма-продуцента Т reesei K-4 на соответствующей среде с последующим концентрированием КЖ и сушкой.The method for obtaining AF involves deep cultivation of the producer strain T reesei K-4 on an appropriate medium, followed by concentration of QOL and drying.

Еще одним аспектом изобретения является способ повышения кормовой ценности зерновых и зернобобовых кормовых смесей, предусматривающий обработку зерновых и зернобобовых кормовых смесей полученным на основе штамма Т. reesei K-4 ФП.Another aspect of the invention is a method of increasing the feed value of cereal and leguminous feed mixtures, comprising treating grain and leguminous feed mixtures obtained from the T. reesei K-4 AF strain.

Таким образом, изобретение обеспечивает получение комплексного ФП с высокой активностью эндоглюканазы, ксиланазы и пектиназ, применение которого позволит повысить кормовую ценность рационов на основе зернового и зернобобового сырья для сельскохозяйственных животных и птицы, а также получать белковые добавки с высоким содержанием сырого протеина из зернобобового сырья для животных, птицы и аквакультуры без использования растворителей, кислот и щелочей.Thus, the invention provides a complex AF with high activity of endoglucanase, xylanase and pectinases, the use of which will increase the feed value of diets based on grain and leguminous raw materials for farm animals and poultry, as well as to obtain protein supplements with a high content of crude protein from leguminous raw materials for animals, birds and aquaculture without the use of solvents, acids and alkalis.

Изобретение реализуется следующим образом.The invention is implemented as follows.

Штамм Т. reesei K-4 получают с помощью многоступенчатого мутагенеза и селекции из штамма Т. reesei ВСМ 18.2/КК (ВГНКИ28) - промышленного продуцента целлюлолитических и гемицеллюлолитических ферментов [24]. Для мутагенеза используют γ-излучение, которое обладает высокой проникающей способностью, вызывает ионизацию атомов и является мощным мутагенным фактором.The strain T. reesei K-4 is obtained using multistage mutagenesis and selection from the strain T. reesei BCM 18.2 / KK (VGNKI28), an industrial producer of cellulolytic and hemicellulolytic enzymes [24]. For mutagenesis using γ-radiation, which has a high penetrating ability, causes ionization of atoms and is a powerful mutagenic factor.

Методика мутагенеза. Штамм выращивают на агаризованной модифицированной среде SM,%: KН2РО4 - 0,2, глюкоза - 1,0, дрожжевой экстракт - 0,4, пептон - 0,6, солодовое сусло - 2,0, агар-агар - 2,0, в течение 7 сут при 30°С и 7 сут при комнатной температуре на свету. Споры гриба, выросшего на поверхности агаризованной среды, суспендируют в дистиллированной воде с добавлением Twin-80 (0,01%), фильтруют через стеклянный фильтр и подвергают мутагенной обработке на γ-установке камерного типа ГУТ-200 М в РНЦ «Курчатовский институт» (Россия). Доза облучения составляет от 1500 до 2500 Гр, время обработки - 4-8 ч, температура облучения спор - 20-23°С, среда облучения - воздух. Облученные споры высевают на чашки Петри с селективной средой.The technique of mutagenesis. The strain is grown on an agarized modified medium SM,%: KH 2 PO 4 - 0.2, glucose - 1.0, yeast extract - 0.4, peptone - 0.6, malt wort - 2.0, agar-agar - 2 , 0, for 7 days at 30 ° C and 7 days at room temperature in the light. The spores of the fungus grown on the surface of the agar medium are suspended in distilled water with the addition of Twin-80 (0.01%), filtered through a glass filter and mutagenized on a γ-chamber type GUT-200 M installation at the Kurchatov Institute ( Russia). The irradiation dose is from 1500 to 2500 Gy, the processing time is 4-8 hours, the irradiation temperature of the spores is 20-23 ° C, the irradiation medium is air. Irradiated spores are plated on Petri dishes with selective medium.

Хранение штамма. На агаризованной модифицированной среде SM при 4°С при обязательных пересевах не реже одного раза в течение 3-6 месяцев; в лиофилизированном состоянии спор с применением защитных сред.Strain storage. On an agarized modified SM medium at 4 ° C with mandatory reseeding at least once for 3-6 months; in a lyophilized state, spores using protective media.

Культурально-морфологические признаки штамма. При 30°С на модифицированной среде SM до начала споруляции колонии белые, прозрачные, плоские с гладкой поверхностью. В дальнейшем образование конидий (фиалоспор) происходит после индуцирования видимым светом, и на 3 сутки колонии приобретают зеленоватую окраску. Образования воздушного (объемного) мицелия не наблюдается. Мицелий септирован и сильно разветвлен. Через 5-6 сутки роста диаметр колоний около 40 мм, колонии плотные, компактные, концентрические, с неровными краями, наблюдается выделение в среду желтого пигмента. Конидиальная зона сформирована многочисленными компактными подушечками диаметром до 2-2,5 мм, изначально белого цвета, с возрастом - зеленого. Обратная сторона - светло-зеленовато-желтая.Cultural and morphological characteristics of the strain. At 30 ° C on a modified SM medium, before the sporulation, the colonies are white, transparent, flat with a smooth surface. Subsequently, the formation of conidia (phialospores) occurs after induction by visible light, and on day 3 the colonies acquire a greenish color. The formation of air (bulk) mycelium is not observed. The mycelium is septic and highly branched. After 5-6 days of growth, the diameter of the colonies is about 40 mm, the colonies are dense, compact, concentric, with uneven edges, yellow pigment is observed in the medium. The conidial zone is formed by numerous compact pads with a diameter of up to 2-2.5 mm, initially white in color, green with age. The reverse side is light greenish yellow.

Конидиеносцы неокрашенные, гладкостенные, формируются преимущественно на субстратном мицелии, главные ветви длинные и прямые, иногда извитые, до 4-5 мм шириной у основания, постепенно сужающиеся к вершине до 2 мкм ширины; боковые ветви образуются через неравные интервалы, обычно короткие, формируются под углом к вершине конидиеносцев. Фиалиды одиночные, булавовидные или широко бутыловидные, часто искривленные, размер - 5-10×2-3 мкм. Конидии одноклеточные, зеленоватые, гладкостенные, эллипсоидальные, 4-7×2,5-4 мкм, собраны в небольшие головки на вершинах фиалид.Conidiophores are unpainted, smooth-walled, formed mainly on the substrate mycelium, the main branches are long and straight, sometimes crimped, up to 4-5 mm wide at the base, gradually tapering to the apex to 2 microns wide; lateral branches form at unequal intervals, usually short, are formed at an angle to the apex of the conidiophores. The phialides are single, club-shaped or broadly bottle-shaped, often curved, size - 5-10 × 2-3 microns. Conidia are unicellular, greenish, smooth-walled, ellipsoidal, 4-7 × 2.5-4 microns, collected in small heads at the tops of the phialids.

При культивировании в глубинных условиях с использованием растворимых субстратов (глюкоза, фруктоза, лактоза) образуется рыхлый разветвленный мицелий со слабой пеллетизацией.When cultivated in deep conditions using soluble substrates (glucose, fructose, lactose), a loose branched mycelium with weak pelletization is formed.

Физиолого-биохимические признаки штамма. Мезофилен. Оптимальная температура роста мицелия 32°С (29-34°С), оптимум для образования целлюлаз 28°С (26-29°С), оптимум для образования ксиланаз - 32-34°С. Оптимальные значения рН роста и секреции целлюлаз 3,5-5,0. Оптимальные значения рН для секреции ксиланаз и полигалактуроназы 5,5-7,0. Рост мицелия наблюдается и при рН 2,5, но при этом происходит очень слабое образование целлюлаз и других карбогидраз.Physiological and biochemical characteristics of the strain. Mesophilen. The optimum mycelium growth temperature is 32 ° C (29-34 ° C), the optimum for cellulase formation is 28 ° C (26-29 ° C), and the optimum for xylanase formation is 32-34 ° C. The optimal pH of growth and secretion of cellulases is 3.5-5.0. The optimal pH for the secretion of xylanases and polygalacturonases 5.5-7.0. The growth of mycelium is also observed at pH 2.5, but there is a very weak formation of cellulases and other carbohydrases.

Резистентность к нистатину слабая. При поверхностном культивировании устойчив к концентрации до 0,5 мкг/см3, при концентрации 2,5 мкг/см3 рост полностью подавляется.Nystatin resistance is weak. During surface cultivation, it is resistant to a concentration of up to 0.5 μg / cm 3 ; at a concentration of 2.5 μg / cm 3, growth is completely inhibited.

Является прототрофом. Способен ассимилировать глюкозу, лактозу, глицерин, галактозу, ксилозу, D-маннит, маннозу, трегалозу, L- и D- арабинозу, сорбозу, сорбит, рибозу. Использует аммонийный и органический азот, очень плохо ассимилирует нитратную форму азота.It is a prototroph. It is able to assimilate glucose, lactose, glycerin, galactose, xylose, D-mannitol, mannose, trehalose, L- and D-arabinose, sorbose, sorbitol, ribose. Uses ammonium and organic nitrogen, assimilates the nitrate form of nitrogen very poorly.

Образует ферментные системы, позволяющие расти на соответствующих комплексных субстратах: целлюлозе, крахмале, ксилане, β-глюкане, пектине, ламинарине, лихенине, галактоманнане и хитине. Катаболитная репрессия биосинтеза карбогидраз практически отсутствует.It forms enzyme systems that allow it to grow on the corresponding complex substrates: cellulose, starch, xylan, β-glucan, pectin, laminarin, lichenin, galactomannan and chitin. The catabolite repression of the biosynthesis of carbohydrases is practically absent.

Отличие от исходного штамма. Полученный мутант Т. reesei K-4 по своим морфологическим признакам при росте на модифицированной среде SM отличается от исходного штамма Т. reesei ВСМ 18.2/КК (ВГНКИ28) повышенной интенсивностью спороношения, компактным, плотным мицелием, более быстрым ростом на твердых средах. Кроме того, отличается повышенной способностью при глубинном культивировании на жидких средах к биосинтезу КМЦ-азы, ксиланазы и пектиназы.Difference from the original strain. The mutant T. reesei K-4 obtained by its morphological characteristics when growing on a modified SM medium differs from the original T. reesei BCM 18.2 / KK strain (VGNKI28) by increased sporulation rate, compact, dense mycelium, and faster growth on solid media. In addition, it is distinguished by its enhanced ability, during deep cultivation on liquid media, to biosynthesis of CMC-ase, xylanase, and pectinase.

Патогенность. Данный вид мицелиального гриба относится к IV группе патогенности в соответствии с санитарно-эпидемиологическими правилами «Безопасность работы с микроорганизмами III-IV групп патогенности (опасности) и возбудителям паразитарных болезней» (СП 1.3.2322-08), утвержденными Постановлением Главного государственного санитарного врача РФ №4 от 28 января 2008 г. Pathogenicity. This type of mycelial fungus belongs to the IV group of pathogenicity in accordance with the sanitary and epidemiological rules “Safety of work with microorganisms of the III-IV pathogenicity (danger) groups and pathogens of parasitic diseases” (SP 1.3.2322-08), approved by the Decree of the Chief State Sanitary Doctor of the Russian Federation No 4 on January 28, 2008

Культивирование штамма Т. reesei K-4 проводят в аэробных условиях на питательной жидкой водной среде, содержащей один или несколько субстратов - источников углерода, являющихся индукторами биосинтеза ферментов. Штамм способен в соответствующих условиях проведения процесса культивирования с использованием растворимых субстратов, например лактозы, глюкозы, ксилозы, секретировать в КЖ комплекс ферментов - карбогидраз (целлюлаз, ксиланаз, пектиназ и сопутствующих ферментов).The cultivation of the strain T. reesei K-4 is carried out under aerobic conditions in a nutrient liquid aqueous medium containing one or more substrates - carbon sources, which are the inducers of enzyme biosynthesis. The strain is capable, under appropriate conditions of the cultivation process using soluble substrates, for example, lactose, glucose, xylose, to secrete a complex of enzymes - carbohydrases (cellulases, xylanases, pectinases and related enzymes) in the QOL.

Для определения активности целевых ферментов используют следующие субстраты: для эндоглюканазной (КМЦ-азной) активности - водорастворимую Na-соль карбоксиметилцеллюлозы (КМЦ), для ксиланазной активности (Ксил) - ксилан березы, для полигалактуроназной активности (ПГ) - К-соль полигалактуроновой кислоты, для активности пектинлиазы (ПЛ) - высокометоксилированный пектин. Реакцию гидролиза КМЦ и ксилана проводят в 0,1 М Na-ацетатном буфере, рН 5,0, при 50°С в течение 5 и 10 мин, соответственно, при концентрации полисахаридных субстратов в реакционной смеси 5 г/л. Гидролиз К-соли полигалактуроновой кислоты проводят при 50°С, рН 5,0, высокометоксилированного пектина - при 40°С, рН 5,0, в течение 15 мин. В качестве продуктов гидролиза Na-соли КМЦ, ксилана и К-соли полигалактуроновой кислоты определяют восстанавливающие сахара (ВС) методом Сомоджи-Нельсона. За единицу эндоглюканазной, ксиланазной и полигалактуроназной активностей принимают такое количество фермента, которое в течение 1 минуты в приведенных выше условиях гидролиза освобождает 1 мкмоль ВС эквивалентных 1 мкмолю глюкозы [25, 26]. За единицу пектинлиазной активности принимают количество фермента, которое при действии на пектин за 1 мин в приведенных выше условиях образует 1 мкмоль 4,5-ненасыщенных продуктов реакции, увеличивающих оптическую плотность реакционной смеси при 232 нм на 0,1 [26].The following substrates are used to determine the activity of the target enzymes: for endoglucanase (CMC-ase) activity - water-soluble Na-salt of carboxymethyl cellulose (CMC), for xylanase activity (Xyl) - birch xylan, for polygalacturonase activity (PG) - polygalacturonic acid K-salt, for pectin lyase (PL) activity, highly methoxylated pectin. The hydrolysis of CMC and xylan is carried out in 0.1 M Na-acetate buffer, pH 5.0, at 50 ° C for 5 and 10 minutes, respectively, at a concentration of polysaccharide substrates in the reaction mixture of 5 g / L. The hydrolysis of the K-salt of polygalacturonic acid is carried out at 50 ° C, pH 5.0, highly methoxylated pectin at 40 ° C, pH 5.0, for 15 minutes As products of hydrolysis of the Na salt of CMC, xylan and the K salt of polygalacturonic acid, reducing sugars (BC) are determined by the Somogy-Nelson method. A unit of endoglucanase, xylanase, and polygalacturonase activity is taken to be such an amount of enzyme that within 1 minute under the above hydrolysis conditions it releases 1 μmol of BC equivalent to 1 μmol of glucose [25, 26]. The unit of pectin lyase activity is taken as the amount of the enzyme, which, when applied to pectin for 1 min under the above conditions, forms 1 μmol of 4,5-unsaturated reaction products, increasing the optical density of the reaction mixture at 232 nm by 0.1 [26].

ФП, полученные с помощью предлагаемого штамма, могут быть использованы в виде КЖ, в виде жидких концентрированных препаратов, получаемых с помощью ультрафильтрации или упаривания КЖ, или в виде сухих препаратов, получаемых высушиванием или гранулированием.AF obtained using the proposed strain can be used in the form of QOL, in the form of concentrated liquid preparations obtained by ultrafiltration or evaporation of QOL, or in the form of dry preparations obtained by drying or granulation.

Возможность использования изобретения иллюстрируется примерами, которые не ограничивают объем и сущность притязаний, связанных с ними.The possibility of using the invention is illustrated by examples, which do not limit the scope and essence of the claims associated with them.

Пример 1.Example 1

Культивирование штамма Т. reesei K-4 ВКМ F-4789 D осуществляют в аэробных условиях в качалочных колбах Эрленмейера объемом 750 мл, содержащих 50 мл жидкой водной среды следующего состава, в г/л: аморфная целлюлоза - 10, лактоза - 20, солодовые ростки - 10, соевая шелуха - 10, дрожжевой экстракт - 10, (NH4)2SO4 - 6, KН2РО4 - 2, СаСl2 - 0,6, рН 6,0. Для получения посевного материала (инокулята) культуру гриба Т. reesei K-4 выращивают на модифицированном SM-arape при 30°С в течение 7 суток и далее при комнатной температуре на свету с течение 7 суток.The cultivation of the strain T. reesei K-4 VKM F-4789 D is carried out under aerobic conditions in 750 ml Erlenmeyer rocking flasks containing 50 ml of a liquid aqueous medium of the following composition, in g / l: amorphous cellulose - 10, lactose - 20, malt sprouts - 10, soy husk - 10, yeast extract - 10, (NH 4 ) 2 SO 4 - 6, KH 2 PO 4 - 2, CaCl 2 - 0.6, pH 6.0. To obtain inoculum (inoculum), T. reesei K-4 fungus culture was grown on modified SM-arape at 30 ° С for 7 days and then at room temperature in the light for 7 days.

Засев колб проводят 1 мл суспензии спор, смытых с агара водой, содержащей 0,1% Твина-80. Колбы инкубируют на качалке при 30°С и 250 об/мин в течение 120 часов.Inoculation of flasks is carried out with 1 ml of a suspension of spores washed with agar with water containing 0.1% Tween-80. The flasks are incubated on a shaker at 30 ° C and 250 rpm for 120 hours.

Активности нового штамма Т. reesei K-4 по КМЦ, ксилану, К-соли полигалактуроновой кислоты, высокометоксилированному пектину в КЖ составляют 390, 500, 150 и 100 ед/мл, соответственно. При культивировании исходного штамма Т. reesei ВСМ 18.2/КК в качалочных колбах в указанных выше условиях активности КМЦ-азная, ксиланазная, ПГ и ПЛ составляют 60, 70, 10 и 7 ед/мл, соответственно (Табл. 1).The activity of the new T. reesei K-4 strain for CMC, xylan, K-salt of polygalacturonic acid, and highly methoxylated pectin in QOL are 390, 500, 150, and 100 u / ml, respectively. When cultivating the initial strain of T. reesei BCM 18.2 / QA in rocking flasks under the above conditions, the activity of CMCase, xylanase, PG and PL is 60, 70, 10, and 7 units / ml, respectively (Table 1).

Figure 00000001
Figure 00000001

Figure 00000002
Figure 00000002

Пример 2. Проводят процесс культивирования штамма Т. reesei K-4 в лабораторных ферментерах КФ 104/3 с геометрическим объемом 3 л и рабочим объемом 1,35 л, оснащенных системами автоматического регулирования рН, рO2 и температуры, а также барботерами для подачи воздуха и 2-х ярусной мешалкой. Инокулят для засева ферментеров получают культивированием гриба в качалочных колбах (250 об./мин) при 30°С в течение 48 ч в среде следующего состава, %: глюкоза - 2,5, кукурузный экстракт (40% СВ) - 2, КН2РO4 - 0,5, водопроводная вода. Доза засева ферментеров инокулятом - 8%. Ферментацию проводят в течение 120 ч на среде следующего состава, %: лактоза 2,0, соевая шелуха - 1,0, солодовые ростки - 1,0, дрожжевой экстракт - 1,0, KН2РО4 - 0,2, (NH4)2SO4 - 0,6, СаСl2 - 0,06, пеногаситель Пропинол - 0,1, водопроводная вода. рН поддерживают на уровне 6,0-6,5. Ферментацию проводят при 30°С, при аэрации 1 объем воздуха на 1 объем среды в мин, поддерживая рO2 выше 30% за счет скорости перемешивания. Подпитку субстратами проводят в непрерывном режиме после 24 роста в течение 72 ч 30% водным раствором лактозы и ксилозы в соотношении 5:1. Объем подпитки - 0,5 л. Ферментация заканчивается через 96 часов.Example 2. The process of cultivation of the strain T. reesei K-4 in laboratory KF 104/3 fermenters with a geometric volume of 3 l and a working volume of 1.35 l, equipped with automatic control systems for pH, pO 2 and temperature, as well as air bubblers and 2-tier stirrer. The inoculum for inoculation of fermenters is obtained by culturing the fungus in rocking flasks (250 rpm) at 30 ° C for 48 hours in the following composition,%: glucose - 2.5, corn extract (40% CB) - 2, KH 2 PO 4 - 0.5, tap water. The dose of inoculum inoculation of fermenters is 8%. Fermentation is carried out for 120 h on a medium of the following composition,%: lactose 2.0, soybean husk 1.0, malt sprouts 1.0, yeast extract 1.0, KH 2 PO 4 0.2, (NH 4 ) 2 SO 4 - 0.6, CaCl 2 - 0.06, antifoam Propinol - 0.1, tap water. pH is maintained at a level of 6.0-6.5. Fermentation is carried out at 30 ° C, with aeration, 1 volume of air per 1 volume of medium per min, maintaining pO 2 above 30% due to the mixing speed. The substrates are fed continuously after 24 hours growth for 72 hours with a 30% aqueous solution of lactose and xylose in a ratio of 5: 1. The volume of recharge is 0.5 liters. Fermentation ends after 96 hours.

Активности КМЦ-азы, Ксил, ПГ и ПЛ в КЖ на 96 ч ферментации составляют 1170, 1500,450 и 220 ед/мл, соответственно.The activities of CMC-basics, Xyl, PG and PL in QOL for 96 hours of fermentation are 1170, 1500,450 and 220 u / ml, respectively.

При культивировании исходного штамма Т. reesei ВСМ 18.2/КК в лабораторном ферментере активности КМЦ-азы, Ксил, ПГ и ПЛ в КЖ на 96 ч культивирования в аналогичных условиях составляют 560, 1000, 29 и 15 ед/мл, соответственно.When cultivating the initial strain of T. reesei BCM 18.2 / KK in a laboratory fermenter, the activity of CMC-basics, Xyl, PG and PL in QOL for 96 hours of cultivation under similar conditions is 560, 1000, 29 and 15 units / ml, respectively.

Figure 00000003
Figure 00000003

Пример 3. Проводят процесс культивирования штаммов Т. reesei K-4 и Т. reesei ВСМ 18.2/КК в лабораторных ферментерах КФ 104/3 (по примеру 2). По окончании ферментации грибную биомассу удаляют путем центрифугирования (4000 об/мин в течение 20 мин на центрифуге Avanti JXN-26, «Beckman coulter», США), свободную от клеток КЖ концентрируют с помощью ультрафильтрации (с пределом отсечения 10 кДа), ультраконцентрат замораживают при температуре -70°С и сушат на лиофильной сушке Benchtop 2K ES («VirTis», США) или сушат на распылительной сушилке Buchi Mini Soray Dryer B-290 («Buchi»? Швейцария) с получением сухого ФП (который представляют собой желто-коричневый легко растворимый в водной среде порошок). ФП представляют собой желто-коричневый легко растворимый в водной среде порошок. Характеристики получаемых ФП представлены в таблице 3.Example 3. The process of culturing strains of T. reesei K-4 and T. reesei BCM 18.2 / KK in laboratory fermenters KF 104/3 is carried out (as in example 2). At the end of the fermentation, the fungal biomass is removed by centrifugation (4000 rpm for 20 min on an Avanti JXN-26 centrifuge, Beckman coulter, USA), free cell free QOLs are concentrated by ultrafiltration (with a cutoff limit of 10 kDa), the ultra-concentrate is frozen at a temperature of -70 ° C and dried on a Benchtop 2K ES freeze dryer (VirTis, USA) or dried on a Buchi Mini Soray Dryer B-290 spray dryer (Buchi? Switzerland) to obtain a dry AF (which is yellow brown powder, easily soluble in water). AFs are a tan powder readily soluble in an aqueous medium. The characteristics of the resulting AF are presented in table 3.

Figure 00000004
Figure 00000004

Figure 00000005
Figure 00000005

Из данных таблицы 3 очевидно, что в ФП на основе нового мутантного штамма обладают повышенной активностью ферментов целлюлолитического комплекса - эндоглюканазы и ксиланазы (220% и 160%, соответственно), а также высокой полигалактуроназной и пектинлиазной активностью (1300% и 1200%, соответственно, относительно исходного штамма).From the data in Table 3, it is obvious that in AFs based on a new mutant strain they have increased activity of cellulolytic complex enzymes - endoglucanase and xylanase (220% and 160%, respectively), as well as high polygalacturonase and pectinliase activity (1300% and 1200%, respectively, relative to the original strain).

Таким образом, предлагаемый штамм обладает способностью продуцировать одновременно высокую эндоглюканазную, ксиланазную и пектиназную активности, что создает возможность получения ФП со сбалансированным комплексом ферментов для эффективной переработки НКП злаков. Для культивирования нового штамма могут использоваться питательные среды, традиционно применяемые в промышленных технологиях получения такого рода технических ФП.Thus, the proposed strain has the ability to simultaneously produce high endoglucanase, xylanase and pectinase activity, which creates the possibility of obtaining AF with a balanced complex of enzymes for the efficient processing of NKP cereals. For the cultivation of a new strain can be used nutrient media, traditionally used in industrial technologies for obtaining this kind of technical AF.

Преимуществом нового комплексного ФП является синергический эффект воздействия специфичных ферментов комплекса на зерновые и зернобобовые смеси, который обеспечивает устранение антипитательных свойств водорастворимых НКП, эффективное разрушение матрикса клеточных стенок и повышение концентрации растворимых веществ, что приводит к улучшению реологических свойств кормов, увеличивает их энергетическую ценность и усвояемость.The advantage of the new complex AF is the synergistic effect of specific enzymes of the complex on grain and leguminous mixtures, which eliminates the anti-nutritional properties of water-soluble NCPs, effectively destroys the matrix of cell walls and increases the concentration of soluble substances, which improves the rheological properties of feeds, increases their energy value and digestibility .

Пример 4. Применение ФП на основе нового штамма для гидролиза зерновых смесей при получении кормов.Example 4. The use of AF based on a new strain for the hydrolysis of grain mixtures when receiving feed.

В качестве субстратов использовали смесь пшеничной (50%), и овсяной (50%) муки. Для ферментативной обработки использовали опытные образцы ФП на основе Т. reesei К-4, и образец ФП 18.2/КК, полученный на основе исходного штамма, характеристики которых приведены в примере 3. Гидролиз субстратов проводили в качалочных колбах объемом 750 мл при 40°С при 220 об/мин. Концентрация субстрата составляла 250 г/л, ФП вносили в дозировке 0,025 мг белка ФП/ г субстрата (сырья). Через 3 ч инкубирования в полученных гидролизатах измеряли вязкость с использованием вибрационного вискозиметра SV-10, A&D (Япония).A mixture of wheat (50%) and oat (50%) flour was used as substrates. For enzymatic treatment, experimental samples of AF based on T. reesei K-4 were used, and a sample of AF 18.2 / KK obtained on the basis of the initial strain, the characteristics of which are shown in Example 3. The hydrolysis of the substrates was carried out in 750 ml rocking flasks at 40 ° C at 220 rpm The concentration of the substrate was 250 g / l, AF was introduced at a dosage of 0.025 mg of protein AF / g of the substrate (raw material). After 3 hours of incubation, the viscosity was measured in the obtained hydrolysates using a SV-10 vibrating viscometer, A&D (Japan).

В табл. 4 представлены данные изменения вязкости зернового замеса под действием ФП Т. reesei.In the table. 4 presents data on changes in viscosity of grain kneading under the influence of AF T. reesei.

Figure 00000006
Figure 00000006

Видно, что обработка смеси пшеничной и овсяной муки новым комплексным ФП К-4, при внесении его в количестве 0,0025% от массы субстрата, способствует максимальному снижению вязкости смеси, что является весьма важным аспектом положительного «кормового» действия ферментов.It can be seen that treatment of a mixture of wheat and oat flour with a new complex AF K-4, when added in an amount of 0.0025% by weight of the substrate, contributes to a maximum decrease in the viscosity of the mixture, which is a very important aspect of the positive “feed” action of enzymes.

Пример 5. Применение ФП на основе нового штамма для гидролиза белоксодержащих смесей при получении кормов.Example 5. The use of AF based on a new strain for the hydrolysis of protein-containing mixtures when receiving feed.

В качестве субстрата использовали тестированный соевый шрот, экструдированный с использованием двухшнекового экструдера

Figure 00000007
(Германия) при температуре 120-130°С.The tested soybean meal extruded using a twin screw extruder was used as a substrate.
Figure 00000007
(Germany) at a temperature of 120-130 ° C.

В качестве ФП использовали:As AF used:

- комплексный ФП К-4 (характеристики приведены в примере 3);- integrated FP K-4 (characteristics are shown in example 3);

- Ладозим Респект Ультра («Микробиопром», РФ) с активностью КМЦ-азы - 350 ед/мл, Ксил - 240 ед/мл, ПГ - 340 ед/мл, содержанием белка - 30 мг/мл.- Ladozyme Respect Ultra (Microbioprom, RF) with CMCase activity - 350 units / ml, Xyl - 240 units / ml, PG - 340 units / ml, protein content - 30 mg / ml.

Комплексные ФП дозировали по активности КМЦ-азы из расчета 5 ед. на 1 г сырья. Гидролиз проводили в течение 5 ч при температуре 40°С при естественном рН водной суспензии экструдированного соевого шрота в диапазоне 6,0-6,2, при гидромодуле 1:6. Полученный гидролизат центрифугировали на ЦЛС-3 с ротором РУ 8-90 (фактор разделения 6000) в течение 20 мин, образовавшийся осадок высушивали до постоянной влажности и определяли содержание сырого протеина (по ГОСТ 13496.4-93). Контрольный вариант инкубировали в аналогичных условиях (5 ч, 40°С, 220 об/мин) без внесения ФП.Complex AFs were dosed according to the activity of CMC-basics at the rate of 5 units. per 1 g of raw materials. Hydrolysis was carried out for 5 h at a temperature of 40 ° C at a natural pH of an aqueous suspension of extruded soybean meal in the range of 6.0-6.2, with a water ratio of 1: 6. The resulting hydrolyzate was centrifuged on a TsLS-3 with a rotor RU 8-90 (separation factor 6000) for 20 minutes, the precipitate formed was dried to constant humidity and the crude protein content was determined (according to GOST 13496.4-93). The control variant was incubated under similar conditions (5 h, 40 ° C, 220 rpm) without AF.

Figure 00000008
Figure 00000008

Полученные данные показывают, что обработка белоксодержащего субстрата - соевого шрота, ФП К-4 обеспечивает максимальный выход сырого протеина в полученных продуктах, что свидетельствует об эффективности его применения для гидролиза НКП сои.The data obtained show that the processing of a protein-containing substrate - soybean meal, FP K-4 provides the maximum yield of crude protein in the resulting products, which indicates the effectiveness of its use for the hydrolysis of NKP soy.

Таким образом, предложенный способ создает возможность получения комплексных кормовых ферментных препаратов со сбалансированным составом, одновременно содержащий высокую активность эндоглюканазы, ксиланазы и пектиназы, использование которых приводит к повышению кормовой ценности рационов.Thus, the proposed method creates the possibility of obtaining complex feed enzyme preparations with a balanced composition, simultaneously containing high activity of endoglucanase, xylanase and pectinase, the use of which leads to an increase in the nutritional value of rations.

Список литературыBibliography

1. Bedford M.R. Enzymes in farm animal nutrition / M.R. Bedford, G.G. Partridge. - UK: CAB International, 2010. - 319 p.1. Bedford M.R. Enzymes in farm animal nutrition / M.R. Bedford, G.G. Partridge. - UK: CAB International, 2010 .-- 319 p.

2. Бутейкис Г. Ферменты - гарантия ощутимой выгоды сегодня и в будущем / Г. Бутейкис, Д. Блажинскас // Комбикорма. - 2012. - №6. - С. 105-106 3. Karr-Lilienthal L.K. Chemical and nutritional properties of soybean carbohydrates as related to nonruminants: A review / L.K. Karr-Lilienthal, C.T. Kadzere, C.M. Grieshop, G.C. Fahey Jr. // Livestock Production Science. - 2005. - V. 97(1).- P. 1-12.2. Buteykis G. Enzymes - a guarantee of tangible benefits today and in the future / G. Buteykis, D. Blazinskas // Compound feed. - 2012. - No. 6. - S. 105-106 3. Karr-Lilienthal L.K. Chemical and nutritional properties of soybean carbohydrates as related to nonruminants: A review / L.K. Karr-Lilienthal, C.T. Kadzere, C.M. Grieshop, G.C. Fahey jr. // Livestock Production Science. - 2005. - V. 97 (1) .- P. 1-12.

4.

Figure 00000009
B. Dietary Fibre Content in Lupine (Lupinus albus L.) and soybean (Glycine max L.) Seeds / B.
Figure 00000010
Z.
Figure 00000011
// Acta Vet Brno. - 2010. - V. 79(2). - P. 211-216four.
Figure 00000009
B. Dietary Fiber Content in Lupine (Lupinus albus L.) and soybean (Glycine max L.) Seeds / B.
Figure 00000010
Z.
Figure 00000011
// Acta Vet Brno. - 2010 .-- V. 79 (2). - P. 211-216

5. Забодалова Л.А. Применение ферментативного гидролиза в технологии белковых концентратов из люпина / Л.А. Забодалова, М.Л. Доморощенкова, Т.Ф. Демьяненко, Л.М. Кузнецова // Научный журнал НИУ ИТМО. Серия «Процессы и аппараты пищевых производств». - 2012. - №2.5. Zabodalova L.A. The use of enzymatic hydrolysis in the technology of protein concentrates from lupine / L.A. Zabodalova, M.L. Domoroschenkova, T.F. Demyanenko, L.M. Kuznetsova // Scientific journal NRU ITMO. Series "Processes and Food Production Equipment". - 2012. - No. 2.

6. Кононенко С.И. Ферментный препарат в кормлении свиней / С.И. Кононенко // Научный журнал КубГАУ. - 2012. - №78 (04). - С. 1-236. Kononenko S.I. Enzyme preparation in feeding pigs / S.I. Kononenko // Scientific journal KubSAU. - 2012. - No. 78 (04). - S. 1-23

7. Glencross B.D. Harvesting the Benefits of Grain in Aquaculture Feeds / B.D. Glencross Ed. - 13th February 2007, Fremantle, WA, Australia. - 102 p.7. Glencross B.D. Harvesting the Benefits of Grain in Aquaculture Feeds / B.D. Glencross Ed. - 13th February 2007, Fremantle, WA, Australia. - 102 p.

8. Синицын А.П. Ферментные новшества / А.П. Синицын, О.А. Синицына, О.Г. Короткова // Агробизнес. - 2016. - Т. 38, №4. - С. 88-928. Sinitsyn A.P. Enzymatic innovations / A.P. Sinitsyn, O.A. Sinitsyna, O.G. Korotkova // Agribusiness. - 2016. - T. 38, No. 4. - S. 88-92

9. Sajith S. An Overview on Fungal Cellulases with an Industrial Perspective / S. Sajith, P. Priji, S. Sreedevi, S. Benjamin // J Nutr Food Sci. - 2016. - V. 6. - P. 461.9. Sajith S. An Overview on Fungal Cellulases with an Industrial Perspective / S. Sajith, P. Priji, S. Sreedevi, S. Benjamin // J Nutr Food Sci. - 2016. - V. 6. - P. 461.

10. Walia A. Microbial xylanases and their industrial application in pulp and paper biobleaching: a review / A. Walia, S. Guleria, P. Mehta, A. Chauhan, J. Parkash // 3 Biotech. - 2017. - V. 7(1). - 11 p.10. Walia A. Microbial xylanases and their industrial application in pulp and paper biobleaching: a review / A. Walia, S. Guleria, P. Mehta, A. Chauhan, J. Parkash // 3 Biotech. - 2017 .-- V. 7 (1). - 11 p.

11. Tapre A. Pectinases: Enzymes for fruit processing industry / A. Tapre, R.K. Jain // International Food Research Journal. - 2014. - V. 21. - P. 447-53.11. Tapre A. Pectinases: Enzymes for fruit processing industry / A. Tapre, R.K. Jain // International Food Research Journal. - 2014. - V. 21. - P. 447-53.

12. Sieiro С Microbial Pectic Enzymes in the Food and Wine Industry // Food Industrial Processes - Methods and Equipment / С Sieiro, B.

Figure 00000012
, J.
Figure 00000013
A.F. Silva, T.G. Villa / Ed. Benjamin Valdez - InTech, 2012. - P. 201-218.12. Sieiro C Microbial Pectic Enzymes in the Food and Wine Industry // Food Industrial Processes - Methods and Equipment / C Sieiro, B.
Figure 00000012
, J.
Figure 00000013
AF Silva, TG Villa / Ed. Benjamin Valdez - InTech, 2012 .-- P. 201-218.

13. Манукян В.А. Эффективность ферментов Микротек и Юдозайм в комбикормах для бройлеров / В.А. Манукян, Е.Ю. Байковская, О.Б. Миронова, А.В. Силаева // Птица и птицепродукты. - 2016. - №1. - С. 34-37.13. Manukyan V.A. The effectiveness of Mikrotek and Yudozyme enzymes in feed for broilers / V.A. Manukyan, E.Yu. Baykovskaya, O.B. Mironova, A.V. Silaeva // Bird and poultry products. - 2016. - No. 1. - S. 34-37.

14. Кузнецов И.Н. Комплексная микробиологическая переработка послеспиртовой барды с получением белоксодержащего кормового продукта / И.Н. Кузнецов, Н.С. Ручай // Современные проблемы науки и образования. - 2013. - №3. URL: http://www.science-education.ru/109-9230 (дата обращения: 15.10.2018).14. Kuznetsov I.N. Integrated microbiological processing of post-alcohol distillery stillage with obtaining protein-containing feed product / I.N. Kuznetsov, N.S. Ruchey // Modern problems of science and education. - 2013. - No. 3. URL: http://www.science-education.ru/109-9230 (accessed: 10/15/2018).

15. Цурикова Н.В. Получение белковой добавки для аквакультуры на основе экструдированного соевого шрота с применением отечественных ферментных препаратов / Н.В. Цурикова, В.В. Скороход, А.П. Синицын // В сборнике: Стратегические направления развития АПК стран СНГ материалы XVI Международной научно-практической конференции: в трех томах. - 2017. - С. 295-29715. Tsurikova N.V. Obtaining protein additives for aquaculture based on extruded soybean meal using domestic enzyme preparations / N.V. Tsurikova, V.V. Skorohod, A.P. Sinitsyn // In the collection: Strategic directions for the development of agribusiness of the CIS countries materials of the XVI International scientific-practical conference: in three volumes. - 2017. - S. 295-297

16. Gusakov А.V. Alternatives to Trichoderma reesei in biofuel production / A.V. Gusakov // Trends in biotechnology. - 2011. - V. 29. - №. 9. - C. 419-25.16. Gusakov A.V. Alternatives to Trichoderma reesei in biofuel production / A.V. Gusakov // Trends in biotechnology. - 2011. - V. 29. - No. 9. - C. 419-25.

17. Deshmukh N. Production, Purification, Characterization and Comparison of Polygalacturonase from various strains of Aspergillus / N. Deshmukh, R. Talkal, K. Jha, G. Praveen, Ch. Singh, Prajapati // International Journal Of Scientific & Technology Research. - 2012. - Vol. 1, N 9. - P. 85-91.17. Deshmukh N. Production, Purification, Characterization and Comparison of Polygalacturonase from various strains of Aspergillus / N. Deshmukh, R. Talkal, K. Jha, G. Praveen, Ch. Singh, Prajapati // International Journal Of Scientific & Technology Research. - 2012. - Vol. 1, N 9. - P. 85-91.

18. Патент РФ 2393212. Штамм гриба Aspergillus foetidus 379-к - продуцент пектолитических ферментов. 2010.18. RF patent 2393212. The strain of the fungus Aspergillus foetidus 379-k is a producer of pectolytic enzymes. 2010.

19. Патент РФ 2549706 С1. Штамм гриба Aspergillus foetidus - продуцент комплекса пектиназ, β-глюканазы, ксиланазы, целлюлазы, хитиназы, маннаназы и протеазы для деструкции полимеров растительного и микробного сырья. 2015.19. RF patent 2549706 C1. The strain of the fungus Aspergillus foetidus is a producer of a complex of pectinases, β-glucanase, xylanase, cellulase, chitinase, mannanase and protease for the destruction of polymers of plant and microbial raw materials. 2015.

20. Патент РФ 2287571. Штамм мицелиального гриба Trichoderma longibrachiatum - продуцент комплекса карбогидраз, содержащего целлюлазы, бета-глюканазы, ксиланазы, маннаназы и пектиназы. 2006.20. RF patent 2287571. The strain of the mycelial fungus Trichoderma longibrachiatum is a producer of a complex of carbohydrases containing cellulases, beta-glucanase, xylanase, mannanase and pectinase. 2006.

21. Патент РФ 2303057. Штамм мицелиального гриба Aspergillus aculeatus - продуцент комплекса карбогидраз, содержащего ксиланазы, бета-глюканазы, пектиназы и ксилоглюканазы. 2007.21. RF patent 2303057. The strain of the mycelial fungus Aspergillus aculeatus is a producer of a complex of carbohydrases containing xylanases, beta-glucanases, pectinases and xyloglucanases. 2007.

22. Патент РФ 2323973 С1. Штамм мицелиального гриба Aspergillus foetidus ВКМ F-3890F, продуцента кислой протеазы и комплекса ферментов, содержащего пектиназу (полигалактуроназу), ксиланазы, б-глюканазу, арабиназу, галактаназу, ксилоглюканазу, сахаразу, α-L-арабинофуранозидазу, б-глюкозидазу и амилазу. 2008.22. RF patent 2323973 C1. The strain of the mycelial fungus Aspergillus foetidus VKM F-3890F, an acid protease producer and an enzyme complex containing pectinase (polygalacturonase), xylanase, b-glucanase, arabinase, galactanase, xyloglucanase, sucrose, α-L-arabinose bisuinose. 2008.

23. Патент РФ 2654564. Штамм мицелиального гриба Trichoderma longibrachiatum TW-14-220 - продуцент целлюлаз, бета-глюканаз и ксиланаз для кормопроизводства и способ получения кормового комплексного ферментного препарата. 2018.23. RF patent 2654564. The strain of the mycelial fungus Trichoderma longibrachiatum TW-14-220 is a producer of cellulases, beta-glucanases and xylanases for fodder production and a method for producing a feed complex enzyme preparation. 2018.

24. Патент РФ 2001949. Штамм гриба Trichoderma reesei - продуцент целлюлолитических ферментов. 1993.24. RF patent 2001949. The strain of the fungus Trichoderma reesei is a producer of cellulolytic enzymes. 1993.

25. Синицын А.П. Биоконверсия лигноцеллюлозных материалов / А.П. Синицын, А.В. Гусаков, В.А. Черноглазов. - М.: МГУ, 1995. - 144 с25. Sinitsyn A.P. Bioconversion of lignocellulosic materials / A.P. Sinitsyn, A.V. Gusakov, V.A. Chernoglazov. - M .: MSU, 1995 .-- 144 s

26. Collmer A. Assay methods for pectic enzymes / A. Collmer, J. Reid, M. Mount // Methods Enzymol. - 1988. - V. 161. - P. 329-335.26. Collmer A. Assay methods for pectic enzymes / A. Collmer, J. Reid, M. Mount // Methods Enzymol. - 1988. - V. 161. - P. 329-335.

Claims (3)

1. Штамм мицелиального гриба Trichoderma reesei K-4, депонированный во Всероссийской коллекции микроорганизмов при Институте биохимии и физиологии микроорганизмов им. Г.К. Скрябина РАН под № ВКМ F-4789D - продуцент эндоглюканазы, ксиланазы и пектиназ, разрушающих некрахмальные полисахариды.1. The strain of mycelial fungus Trichoderma reesei K-4, deposited in the All-Russian collection of microorganisms at the Institute of Biochemistry and Physiology of Microorganisms named after G.K. Scriabin RAS No. VKM F-4789D is a producer of endoglucanase, xylanase and pectinases that destroy non-starch polysaccharides. 2. Способ получения кормового комплексного ферментного препарата с активностью эндоглюканазы, ксиланазы и пектиназ, включающий культивирование штамма Trichoderma reesei K-4, депонированного во Всероссийской коллекции микроорганизмов при Институте биохимии и физиологии микроорганизмов им. Г.К. Скрябина РАН под № ВКМ F-4789D, по п. 1 с последующим концентрированием культуральной жидкости и сушкой.2. A method of obtaining a feed complex enzyme preparation with activity of endoglucanase, xylanase and pectinases, comprising cultivating a strain of Trichoderma reesei K-4, deposited in the All-Russian collection of microorganisms at the Institute of Biochemistry and Physiology of Microorganisms named after G.K. Scriabin RAS under the number VKM F-4789D, according to claim 1, followed by concentration of the culture fluid and drying. 3. Способ повышения кормовой ценности зерновых и зернобобовых кормовых смесей, заключающийся в обработке зерновых и зернобобовых кормовых смесей комплексным ферментным препаратом, полученным способом по п. 2.3. A method of increasing the feed value of grain and leguminous feed mixtures, which consists in processing grain and leguminous feed mixtures with a complex enzyme preparation obtained by the method according to p. 2.
RU2018140545A 2018-11-16 2018-11-16 Trichoderma reesei mycelial fungus strain - producer of endoglucanase, xylanase and pectinase complex for production of protein additives based on cereal and legume raw material for use in fodder production RU2696074C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2018140545A RU2696074C1 (en) 2018-11-16 2018-11-16 Trichoderma reesei mycelial fungus strain - producer of endoglucanase, xylanase and pectinase complex for production of protein additives based on cereal and legume raw material for use in fodder production

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2018140545A RU2696074C1 (en) 2018-11-16 2018-11-16 Trichoderma reesei mycelial fungus strain - producer of endoglucanase, xylanase and pectinase complex for production of protein additives based on cereal and legume raw material for use in fodder production

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2696074C1 true RU2696074C1 (en) 2019-07-30

Family

ID=67586989

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2018140545A RU2696074C1 (en) 2018-11-16 2018-11-16 Trichoderma reesei mycelial fungus strain - producer of endoglucanase, xylanase and pectinase complex for production of protein additives based on cereal and legume raw material for use in fodder production

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2696074C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2740318C1 (en) * 2020-03-26 2021-01-13 федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Казанский (Приволжский) федеральный университет" (ФГАОУ ВО КФУ) Trichoderma asperellum f-1395 strain - producer of hydrolytic complex

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2001949C1 (en) * 1991-12-19 1993-10-30 Синицын Аркадий Пантелеймонович Strain of fungus trichoderma reesei - a producer of cellulolytic enzymes
RU2287571C2 (en) * 2004-09-09 2006-11-20 ООО НПК "Фермтек" STRAIN OF MYCELIAL FUNGUS TRICHODERMA LONGIBRACHIATUM AS PRODUCER OF CARBOHYDRASES COMPLEX COMPRISING CELLULASES, β-GLUCANASES, XYLANASES, MANNANASES AND PECTINASES
AU2006326963B2 (en) * 2005-12-22 2012-03-29 Roal Oy Treatment of cellulosic material and enzymes useful therein
RU2494146C2 (en) * 2007-05-31 2013-09-27 Новозаймз, Инк. HOST CELL Trichoderma reesei TO PRODUCE CELLULOLYTIC PROTEIN COMPOSITION, CELLULOLYTIC PROTEIN COMPOSITION, METHODS OF ITS PRODUCTION AND APPLICATION
RU2529949C2 (en) * 2008-04-29 2014-10-10 ДАНИСКО ЮЭс ИНК. Enzyme composition, capable of efficient decomposition of cellulose material

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2001949C1 (en) * 1991-12-19 1993-10-30 Синицын Аркадий Пантелеймонович Strain of fungus trichoderma reesei - a producer of cellulolytic enzymes
RU2287571C2 (en) * 2004-09-09 2006-11-20 ООО НПК "Фермтек" STRAIN OF MYCELIAL FUNGUS TRICHODERMA LONGIBRACHIATUM AS PRODUCER OF CARBOHYDRASES COMPLEX COMPRISING CELLULASES, β-GLUCANASES, XYLANASES, MANNANASES AND PECTINASES
AU2006326963B2 (en) * 2005-12-22 2012-03-29 Roal Oy Treatment of cellulosic material and enzymes useful therein
RU2494146C2 (en) * 2007-05-31 2013-09-27 Новозаймз, Инк. HOST CELL Trichoderma reesei TO PRODUCE CELLULOLYTIC PROTEIN COMPOSITION, CELLULOLYTIC PROTEIN COMPOSITION, METHODS OF ITS PRODUCTION AND APPLICATION
RU2529949C2 (en) * 2008-04-29 2014-10-10 ДАНИСКО ЮЭс ИНК. Enzyme composition, capable of efficient decomposition of cellulose material

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2740318C1 (en) * 2020-03-26 2021-01-13 федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Казанский (Приволжский) федеральный университет" (ФГАОУ ВО КФУ) Trichoderma asperellum f-1395 strain - producer of hydrolytic complex

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Harris et al. Xylanases and its application in food industry: a review
Paloheimo et al. Xylanases and cellulases as feed additives.
Kadarmoidheen et al. Effect of cellulolytic fungi on the degradation of cellulosic agricultural wastes
CN107022493B (en) Aspergillus oryzae strain for high-yield feeding compound enzyme and application thereof
KR100513218B1 (en) Enzyme complex
Simões et al. Screening of culture condition for xylanase production by filamentous fungi
CN102174616A (en) Method for preparing feruloyl oligosaccharides by wheat bran fermentation
Iqbal et al. Media optimization for hyper-production of carboxymethyl cellulase using proximally analyzed agroindustrial residue with Trichoderma harzianum under SSF
RU2654564C1 (en) Strain of trichoderma longibrachiatum tw-14-220 filamentous fungus - producer of cellulases, beta-glucanases and xylanases for feed production and a method for obtaining a feed complex enzyme preparation
CN111549020B (en) Preparation of complex enzyme rich in acidic pectinase, strain and application thereof
Liu et al. Solid-state fermentation of ammoniated corn straw to animal feed by Pleurotus ostreatus Pl-5
RU2696074C1 (en) Trichoderma reesei mycelial fungus strain - producer of endoglucanase, xylanase and pectinase complex for production of protein additives based on cereal and legume raw material for use in fodder production
Nisa The production of fungal mannanase, cellulase and xylanase using palm kernel meal as a substrate
Simoes et al. Optimization of xylanase biosynthesis by Aspergillus japonicus isolated from a Caatinga area in the Brazilian state of Bahia
WO2018113431A1 (en) Multi-functional saccharomyces cerevisiae capable of degrading cellulose-producing prebiotic cello-oligosaccharide and secreting antimicrobial peptide
Edison et al. Microbial beta glucanase in agriculture
Oyedeji et al. Isolation and screening of xylanolytic fungi from soil of botanical garden: xylanase production from Aspergillus flavus and Trichoderma viride
Fadel et al. Clean production of xylanase from white corn flour by Aspergillus fumigates F-993 under solid state fermentation
KR101288314B1 (en) Penicillium sp. GDX01 strain producing cellulase and uses thereof
CN112300945B (en) Aspergillus niger solid-state fermentation complex enzyme preparation for feed production and preparation process thereof
Sinitsyn et al. Production of Industrial Enzymes Based on the Expression System of the Fungus Penicillium verruculosum
Kunamneni Cellulase in biomedical research
Patel et al. Study of cellulase by isolated fungal culture from natural resources and application in bio-ethanol production
RU2810538C2 (en) STRAIN OF PENICILLIUM VERRUCULOSUM PRODUCER OF PHYTASE AND ENDO-1,4-β-GLUCANASE II COMPLEX AND ENZYME PREPARATION BASED ON IT FOR USE AS ADDITIVE IN FEED
Asfamawi et al. Isolation, screening and identification of mannanase producer microorganisms.