RU2692932C2 - BIOCATALYST FOR PRODUCING 11α-ACETOXYPROGESTERONE - Google Patents

BIOCATALYST FOR PRODUCING 11α-ACETOXYPROGESTERONE Download PDF

Info

Publication number
RU2692932C2
RU2692932C2 RU2017138536A RU2017138536A RU2692932C2 RU 2692932 C2 RU2692932 C2 RU 2692932C2 RU 2017138536 A RU2017138536 A RU 2017138536A RU 2017138536 A RU2017138536 A RU 2017138536A RU 2692932 C2 RU2692932 C2 RU 2692932C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
progesterone
hydroxyprogesterone
nidulans
acetoxyprogesterone
strain
Prior art date
Application number
RU2017138536A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2017138536A (en
RU2017138536A3 (en
Inventor
Татьяна Степановна Савинова
Ольга Сергеевна Савинова
Екатерина Александровна Вавилова
Дарья Владимировна Васина
Татьяна Владимировна Тяжелова
Татьяна Васильевна Федорова
Андрей Михайлович Чулкин
Павел Николаевич Сольев
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова" (МГУ)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова" (МГУ) filed Critical Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова" (МГУ)
Priority to RU2017138536A priority Critical patent/RU2692932C2/en
Publication of RU2017138536A publication Critical patent/RU2017138536A/en
Publication of RU2017138536A3 publication Critical patent/RU2017138536A3/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2692932C2 publication Critical patent/RU2692932C2/en

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P33/00Preparation of steroids
    • C12P33/06Hydroxylating
    • C12P33/08Hydroxylating at 11 position
    • C12P33/10Hydroxylating at 11 position at 11 alpha-position
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/56Compounds containing cyclopenta[a]hydrophenanthrene ring systems; Derivatives thereof, e.g. steroids
    • A61K31/57Compounds containing cyclopenta[a]hydrophenanthrene ring systems; Derivatives thereof, e.g. steroids substituted in position 17 beta by a chain of two carbon atoms, e.g. pregnane or progesterone
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14Fungi; Culture media therefor

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Steroid Compounds (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: invention refers to biotechnology and concerns strains of microorganisms able to perform biotransformation of progesterone. Described is a new ability of known micellial fungi strains, specifically, a strain of wild type Aspergillus nidulans F-1069 (synonym FGSC A4; ATCC 3863, 12996, 26451; CBS 112.46; NRRL 194) and its auxotroph Aspergillus nidulans 031 (argB-; pyrG-), transform a steroid substrate: not only convert progesterone into 11α-hydroxyprogesterone, but also acetylated formed 11α-hydroxyprogesterone. Said ability is confirmed both by physical and chemical analysis methods of structure of organic compounds (mass spectrometry of high resolution, NMR-spectroscopy 1H, 13C and 2D NMR) and counter chemical synthesis.
EFFECT: total selectivity 11α-hydroxylation reaches 99 %, and content of 11α-acetoxyprogesterone in the products mixture exceeds 47 %.
1 cl, 21 dwg, 2 tbl, 4 ex

Description

Область техникиTechnical field

Настоящее изобретение относится к области биотехнологии и касается применения известных штаммов мицелиальных грибов для гидроксилирования и ацетилирования стероидных соединений, в частности, соединений ряда прегнана (производных прогестерона) и может быть использовано в промышленной биотехнологии, а также в фармацевтической промышленности, для производства стероидных медицинских препаратов.The present invention relates to the field of biotechnology and relates to the application of known strains of filamentous fungi for hydroxylation and acetylation of steroid compounds, in particular compounds of several pregnan (derivatives of progesterone) and can be used in industrial biotechnology, as well as in the pharmaceutical industry, for the production of steroid medical drugs.

Уровень техникиThe level of technology

Введение гидроксильной группы в положение С11 стероидной молекулы имеет большое промышленное значение, так как не только обеспечивает изменение биологической активности исходной молекулы в желаемом направлении, но и создает возможность для дальнейшей модификации молекулы, например, введения атома галогена в положение С9, с целью создания фармакологически более активных производных. Осуществление 11(α/(β)-гидроксилирования стероидов микроорганизмами, особенно прогестерона, является экономически важным для производства кортикостероидов, так как одной из основных проблем их синтеза является введение кислородной функции в 11 положение, трудно осуществимое химическими методами. Так, например, химический синтез кортизона из желчных кислот включает -30 стадий и общий выход составляет несколько десятых долей процента [Л. Физер, М. Физер. Стероиды. Пер. с англ. Под ред. д.х.н. Н.Н Суворова и д.х.н. И.В. Торгова. М: Мир, 1964, с. 673]. Напротив, синтез ацетата кортизона из 11α-гидроксипрогестерона состоит из 10 стадий и общий выход достигает 14,6% [SU 106380, 1956].The introduction of a hydroxyl group in the C 11 position of the steroid molecule is of great industrial importance, since it not only provides a change in the biological activity of the parent molecule in the desired direction, but also creates an opportunity for further modification of the molecule, for example, introducing a halogen atom in the C 9 position pharmacologically more active derivatives. Implementation of 11 (α / (β) -hydroxylation of steroids by microorganisms, especially progesterone, is economically important for the production of corticosteroids, since one of the main problems of their synthesis is the introduction of oxygen function in the 11 position, which is difficult to implement by chemical methods. For example, chemical synthesis cortisone from bile acids includes -30 stages and the total yield is several tenths of a percent [L. Fizer, M. Fizer. Steroids. Translated from English. Edited by Dr. Kh.N.N. Suvorov and D.h. N.V.Torgovaya, Moscow: Mir, 1964, p. 673]. in the synthesis of cortisone acetate 11α-hydroxyprogesterone is composed of 10 stages and the overall yield reaches 14,6% [SU 106380, 1956].

Известно, что 11-гидроксилирование стероидов в одну стадию с высокой степенью селективности возможно только биотехнологически с применением ферментной системы микроорганизмов, в основном, мицелиальных грибов, одним из которых является родIt is known that 11-hydroxylation of steroids in one stage with a high degree of selectivity is possible only by biotechnology using the enzyme system of microorganisms, mainly filamentous fungi, one of which is the genus

Aspergillus. Однако этому роду присуща видовая специфичность трансформации стероидов ряда прегнана. Так, трансформация прогестерона у ряда видов (например, А. terreus [K.Yildirim, A.Uzuner, and E.Y. Gulcuoglu. Biotransformation of some steroids by Aspergillus terreus MRC 200365. Collect. Czech. Chem. Commun. 2010, Vol. 75(6), 665-673], A.tamarii [K.Yildirim, A.Uzuner and E.Y. Gulcuoglu. Baeyer-Villiger oxidation of some steroids by Aspergillus tamarii MRC 72400. Collect. Czech. Chem. Commun. 2011, Vol. 76(6), 743-754], A. versicolor [H.Y. Yang, H.L. Su, G. Du, G.J. Shen, J.X. Sun, and H.Y. Chen. Progesterone side-chain cleavage by Aspergillus versicolor. Advanced Materials Research. Advances in Chemical Engineering III. 2013.Vols. 781-784, 1164-1167; Abed Nosrat M. Side chain degradation of progesterone by Aspergillus versicolor 79. Pakistan Journal of Biochemistry, 1972, Vol. 5(1), 5-7], A. flavus [M.E. Mostafa, and A.A.Zohri. Progesterone side-chain degradation by some species of Aspergillus flavus group.Folia Microbiol (Praha). 2000; Vol. 45(3), 243-7]) может протекать не в направлении гидроксилирования, а в направлении элиминирования боковой прегнановой цепи с образованием соединений ряда андростана. Другие штаммы рода Aspergillus способны гидроксилировать прогестерон, вводя гидроксильную группу в различные положения молекулы, в том числе в 11α-положение. При этом направление гидроксилирования может существенно зависеть не только от видовой принадлежности штамма, но и от условий проведения трансформации.Aspergillus. However, this genus is inherent in the species specificity of transformation of steroids of the series pregnan. Thus, the transformation of progesterone in a number of species (for example, A. terreus [K. Yildirim, A. Uzuner, and EY Gulcuoglu. Biotransformation of some steroids by Aspergillus terreus MRC 200365. Collect. Czech. Chem. Commun. 2010, Vol. 75 ( 6), 665-673], A.tamarii [K.Yildirim, A.Uzuner and EY Gulcuoglu. Baeyer-Villiger oxidation of Aspergillus tamarii MRC 72400. Collect. Czech. Chem. Commun. 2011, Vol. 76 ( 6), 743-754], A. versicolor [HY Yang, HL Su, G. Du, GJ Shen, JX Sun, and HY Chen. Progesterone side-chain cleavage by Aspergillus versicolor. Advanced Materials Research. Advances in Chemical Engineering III 2013.Vols. 781-784, 1164-1167; Abed Nosrat M. Side chain degradation of progesterone by Aspergillus versicolor 79. Pakistan Journal of Biochemistry, 1972, Vol. 5 (1), 5-7], A. flavus [ ME Mostafa, AAZohri Progesterone side chain degradation of some species of Aspergillus flavus group.Folia Microbiol (Praha) 2000; Vol .45 (3), 243-7]) can proceed not in the direction of hydroxylation, but in the direction of elimination of the side of the pregnanic chain with the formation of compounds of the Androstane series. Other strains of the genus Aspergillus are able to hydroxylate progesterone by introducing a hydroxyl group into various positions of the molecule, including the 11α position. The direction of hydroxylation may significantly depend not only on the species of the strain, but also on the conditions of the transformation.

Биотрансформация прогестерона с образованием 11α-гидроксипрогестерона наиболее изучена с применением грибов Aspergillus ochraceus, селективность 11α-гидроксилирования у которых может достигать 90% и более [Т.К. Dutta, and Т.В. Samanta. Bioconversion of progesterone by the activated immobilized conidia of Aspergillus ochraceus TS. Curr. Microbiol. 1999; Vol. 39(6), 309-312; P.Somal, and C.L. Chopra. Microbial conversion of steroids. III: 11α-hydroxylation by fungal mycelium. Applied Microbiology and Biotechnology, 1985, Vol. 21(5), 267-269]. Штаммы A. ochraceus нашли применение в качестве промышленных культур.Biotransformation of progesterone with the formation of 11α-hydroxyprogesterone is the most studied using Aspergillus ochraceus fungi, the selectivity of 11α-hydroxylation in which can reach 90% or more [T.K. Dutta, and T.V. Samanta. Bioconversion of progesterone by the activated immobilized conidia of Aspergillus ochraceus TS. Curr. Microbiol. 1999; Vol. 39 (6), 309-312; P.Somal, and C.L. Chopra. Microbial conversion of steroids. III: 11α-hydroxylation by fungal mycelium. Applied Microbiology and Biotechnology, 1985, Vol. 21 (5), 267-269]. The strains of A. ochraceus have been used as industrial crops.

Мицеллиальный гриб Aspergillus nidulans является одной из наиболее известных эукариотических генетических систем и широко используется в качестве модельной системы для расшифровки биологии клеточного цикла, патогенности, лекарственной устойчивости, болезней человека, первичного и вторичного метаболизма других микроорганизмов. Несмотря на это, штаммы гриба A. nidulans как стероид-трансформирующие микроорганизмы мало изучены. Однако имеются сообщения, что этот вид обладает 11α-монооксигеназной активностью и способен трансформировать прогестерон с образованием преимущественно 11α-гидрокси-производного. Так, M.J. Henry и H.D. Sisler [M.J. Henry, and H.D. Sisler. Effects of sterol biosynthesis-inhibiting (SBI) fungicides on cytochrome P-450 oxygenations in fungi. Pesticide Biochemistry and Physiology, 1984, Vol. 22(3),262-275], изучая влияние фунгицидов, ингибирующих биосинтез эргостерина в грибах, на цитохором-Р450-зависимое гидроксилирование прогестерона, сообщили, что гриб A. nidulans (Eidam) Winter (штамм 003) гидроксилирует прогестерон при начальной концентрации 100 мкг/мл с образованием смеси, содержащей 11α-гидроксипрогестерон (50%), 6β-гидроксипрогестерон (5%), 6β,11α-дигидроксипрогестерон (14%) и неконвертированный прогестерон (31%). При этом лиазная активность (расщепление боковой цепи по связи С1720) у этого штамма не наблюдалась.The mycelial fungus Aspergillus nidulans is one of the most well-known eukaryotic genetic systems and is widely used as a model system for deciphering cell cycle biology, pathogenicity, drug resistance, human diseases, primary and secondary metabolism of other microorganisms. Despite this, the strains of the fungus A. nidulans as steroid-transforming microorganisms have been little studied. However, there are reports that this species has 11α-monooxygenase activity and is able to transform progesterone with the formation of predominantly 11α-hydroxy-derivative. So, MJ Henry and HD Sisler [MJ Henry, and HD Sisler. Effects of sterol biosynthesis-inhibiting (SBI) fungicides on cytochrome P-450 oxygenations in fungi. Pesticide Biochemistry and Physiology, 1984, Vol. 22 (3), 262-275], studying the effect of fungicides that inhibit ergosterol biosynthesis in fungi on cytochore-P450-dependent progesterone hydroxylation, reported that A. nidulans (Eidam) Winter fungus (strain 003) hydroxylates progesterone at an initial concentration of 100 µg / ml to form a mixture containing 11α-hydroxyprogesterone (50%), 6β-hydroxyprogesterone (5%), 6β, 11α-dihydroxyprogesterone (14%) and unconverted progesterone (31%). At the same time, lyase activity (splitting of the side chain by the C 17 –C 20 bond) was not observed in this strain.

Также известно, что культура гриба A. nidulans (из коллекции Центра культур лаборатории микробиологической химии, National Research Centre, Каир, местная среда обитания), обладая стероид-11α-гидроксилирующей активностью, может трансформировать прогестерон не только в 11α -гидроксипрогестерон, но и в 21-гидроксипрогестерон (он же 11-дезоксикортикостерон) [А.Н. El-Refai, and К.М. Ghanem. Some physiological relations of progesterone conversion by Aspergillus nidulans. Egyptian Journal of Microbiology, 1987, Vol. 22(2), 327-338; A.H. El-Refai, and K.M. Ghanem. Microbial response to steroids. Egyptian Journal of Microbiology, 1989, Vol. 23(1), 1-11]. Авторы вносили прогестерон в ростовую среду в растворе 96% этанола с финальной концентрацией растворителя 1%. Трансформацию прогестерона проводили с нагрузкой 1 г/л при температуре 30±2°С на качалке (200 об/мин, амплитуда 7 см) в течение 48 ч, при этом наблюдалось образование дигидроксилированного производного - 6β,11α-дигидроксипрогестерона. Был сделан вывод, что при значениях рН среды, близких к нейтральным, 6β-гидроксилирование является вторичным процессом и 6β,11α-дигидроксипрогестерон образуется из первично образованного 11α-гидроксипрогестерона [А.Н. El-Refai, and К.М. Ghanem. Some physiological relations of progesterone conversion by Aspergillus nidulans. Egyptian Journal of Microbiology, 1987, Vol. 22(2), 327-338].It is also known that the culture of the fungus A. nidulans (from the collection of the Crop Center for Microbiological Chemistry Laboratories, National Research Center, Cairo, local habitat), possessing steroid-11α-hydroxylation activity, can transform progesterone not only into 11α-hydroxyprogesterone, but also 21-hydroxyprogesterone (aka 11-deoxycorticosterone) [A.N. El-Refai, and KM Ghanem. Some physiological relations of progesterone conversion by Aspergillus nidulans. Egyptian Journal of Microbiology, 1987, Vol. 22 (2), 327-338; A.H. El-Refai, and K.M. Ghanem. Microbial response to steroids. Egyptian Journal of Microbiology, 1989, Vol. 23 (1), 1-11]. The authors applied progesterone to the growth medium in a solution of 96% ethanol with a final solvent concentration of 1%. Transformation of progesterone was performed with a load of 1 g / l at a temperature of 30 ± 2 ° C on a rocking chair (200 rpm, amplitude 7 cm) for 48 h, while the formation of a dihydroxylated derivative — 6β, 11α-dihydroxyprogesterone was observed. It was concluded that at pH values close to neutral, 6β-hydroxylation is a secondary process and 6β, 11α-dihydroxyprogesterone is formed from the initially formed 11α-hydroxyprogesterone [A.N. El-Refai, and KM Ghanem. Some physiological relations of progesterone conversion by Aspergillus nidulans. Egyptian Journal of Microbiology, 1987, Vol. 22 (2), 327-338].

Известно, что микроорганизмы способны ацетилировать стероидные вторичные спирты. Так, известна способность некоторых видов дрожжей и дрожжеподобных организмов {Saccharomyces fragilis, S. lactis, Candida pseudotropicalis и Torulopsis sphaerica) ацетилировать тестостерон [

Figure 00000001
, M.Tadra, and
Figure 00000002
. Microbial transformations of steroids XXIV. Separation of androstane 17-hydroxy-epimers. Folia Microbiol. 1964, Vol. 9(6), 380-382]. При этом авторы отметили, что ацетилирование происходит только с 17β-гидроксипроизводным, тогда как соответствующий 17α-эпимер остается нетронутым. В этих условиях не происходит ацетилирования молекулы стероида с гидроксигруппой в положениях 11α, 11β, 20β и 21. Однако информация о способности мицелиальных грибов, к которым относится род Aspergillus, ацетилировать стероидные спирты, в литературных источниках отсутствует.It is known that microorganisms are capable of acetylating steroid secondary alcohols. Thus, the ability of some species of yeast and yeast-like organisms {Saccharomyces fragilis, S. lactis, Candida pseudotropicalis and Torulopsis sphaerica) to tesyterone to be acetylated is known [
Figure 00000001
, M.Tadra, and
Figure 00000002
. Microbial transformations of steroids XXIV. Separation of androstane 17-hydroxy-epimers. Folia Microbiol. 1964 Vol. 9 (6), 380-382]. However, the authors noted that acetylation occurs only with 17β-hydroxy derivative, while the corresponding 17α-epimer remains intact. Under these conditions, acetylation of a steroid molecule with a hydroxy group at positions 11α, 11β, 20β, and 21 does not occur. However, information about the ability of filamentous fungi, which include the genus Aspergillus, to acetylate steroid alcohols, is absent in the literature.

Из уровня техники известно, что ацетилирование 11α-гидроксипрогестерона осуществляют химически, используя в качестве ацетилирующего агента уксусный ангидрид. Так, известным химическим методом [D.H. Peterson, Н.С. Murray, S.H. Eppstein, L.M. Reineke, A. Weintraub, P.D. Meister, and H.M. Leigh. Microbiological Transformations of Steroids. I. Introduction of Oxygen at Carbon-11 of Progesterone. J. Am. Chem. Soc, 1952, Vol. 74 (23), 5933-5936] получают 11α-ацетоксипрогестерон, ацетилируя 11α-гидроксипрогестерон (20 мг) действием уксусного ангидрида (0,6 мл) в среде пиридина (0,6 мл). Смесь выдерживают в течение 16 ч при комнатной температуре. По окончании реакции реакционную массу разбавляют 25 мл воды, выдерживают в течение 1 ч, охлаждают для начала кристаллизации. Кристаллы отделяют фильтрацией, промывают водой и сушат. Получают 16,1 мг 11α-ацетоксипрогестерона с т. пл. 176-177°С.It is known in the art that acetylation of 11α-hydroxyprogesterone is carried out chemically using acetic anhydride as the acetylating agent. Thus, the well-known chemical method [D.H. Peterson, N.S. Murray, S.H. Eppstein, L.M. Reineke, A. Weintraub, P.D. Meister, and H.M. Leigh. Microbiological Transformations of Steroids. I. Introduction of Oxygen at Carbon-11 of Progesterone. J. Am. Chem. Soc, 1952, Vol. 74 (23), 5933-5936], 11α-acetoxyprogesterone is obtained by acetylating 11α-hydroxyprogesterone (20 mg) by the action of acetic anhydride (0.6 ml) in pyridine (0.6 ml). The mixture was incubated for 16 hours at room temperature. Upon completion of the reaction, the reaction mass is diluted with 25 ml of water, incubated for 1 h, cooled to start crystallization. The crystals are separated by filtration, washed with water and dried. 16.1 mg of 11α-acetoxyprogesterone with m.p. 176-177 ° C.

Таким образом, из уровня техники следует, что образование 11α-ацетоксипрогестерона при трансформации прогестерона культурами мицеллиальных грибов вообще, в частности, рода Aspergillus, конкретно Aspergillus nidulans, ранее не наблюдалось.Thus, it follows from the prior art that the formation of 11α-acetoxyprogesterone during transformation of progesterone by cultures of micellar fungi in general, in particular, the genus Aspergillus, specifically Aspergillus nidulans, has not been previously observed.

11α-Гидроксипрогестерон (11α-гидроксипрегн-4-ен-3,20-дион, СAS №80-75-1) является физиологически активным производным прогестерона (прегн-4-ен-3, 20-диона, CAS №57-83-0) - нативного стероидного гормона, синтезируемого желтым телом яичника, корковым веществом (корой) надпочечников, семенными пузырьками и плацентой. Препараты на основе прогестерона применяются в качестве лекарственных средств в медицине и ветеринарии.11α-Hydroxyprogesterone (11α-hydroxypregn-4-ene-3,20-dione, CAS No. 80-75-1) is a physiologically active progesterone derivative (Pregn-4-en-3, 20-dione, CAS No. 57-83- 0) - a native steroid hormone synthesized by the corpus luteum of the ovary, the cortex (cortex) of the adrenal glands, the seminal vesicles and the placenta. Progesterone-based preparations are used as medicines in medicine and veterinary medicine.

11α-Гидроксипрогестерон, как и его 11β-эпимер, обладает ингибирующей активностью в отношении фермента 11β-гидроксистероид-дегидрогеназы, который окисляет 11-гидрокси-группу в 11-кето-группу, таким образом играя регулятивную роль в поддержании электролитного баланса [G.W. Souness, S.A. Latif, J.L.Laurenzo, D.J. Morris. 11 alpha- and 11 beta-hydroxyprogesterone, potent inhibitors of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase (isoforms 1 and 2), confer marked mineralocorticoid activity on corticosterone in the ADX rat. Endocrinology. 1995, Vol. 136(4), 1809-1812].11α-hydroxyprogesterone, like its 11β-epimer, has inhibitory activity against the enzyme 11β-hydroxysteroid dehydrogenase, which oxidizes the 11-hydroxy group to the 11-keto group, thus playing a regulatory role in maintaining electrolyte balance [G.W. Souness, S.A. Latif, J.L.Laurenzo, D.J. Morris. 11 alpha- and 11 beta-hydroxyprogesterone, potent inhibitors of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase (isoforms 1 and 2), confidential marked mineralocorticoid activity on corticosterone in the ADX rat. Endocrinology. 1995 Vol. 136 (4), 1809-1812].

11α-Ацетоксипрогестерон (11α-гидроксипрогестерона ацетат, CAS №2268-98-6) обладает физиологической активностью, является активным фармацевтическим ингредиентом и относится к средствам, снижающим риск преждевременных родов [http://www.imcopharma.cz/ru/api/11 -alfa-gidroksiprogesteron-acetat].11α-Acetoxyprogesterone (11α-hydroxyprogesterone acetate, CAS No. 2268-98-6) has a physiological activity, is an active pharmaceutical ingredient and refers to the means that reduce the risk of premature birth [http://www.imcopharma.cz/ru/api/11 -alfa-gidroksiprogesteron-acetat].

11α-Ацетоксипрогестерон и 11α-гидроксипрогестерон, являясь производными прогестерона, обладающими гестагенной активностью, могут быть использованы в комбинации с природными или синтетическими эстрогенами в качестве активного ингредиента как в препаратах для пероральной контрацепции, так и в препаратах для гормональной заместительной терапии женщин в постклимактерический период.11α-Acetoxyprogesterone and 11α-hydroxyprogesterone, being progesterone derivatives with progestogen activity, can be used in combination with natural or synthetic estrogens as an active ingredient in both oral contraceptive preparations and in post-menopausal women.

Кроме того, 11α-гидроксипрогестерон и его ацетат могут быть использованы не только в качестве прогестагенных средств, как указано выше, но и в качестве антиандрогенных агентов для снижения сальных выделений у пациентов, страдающих себореей, аллопецией и другими заболеваниями кожи, связанными с гиперандрогенизацией [RU 2432952, 2011], также известны косметические композиции для ухода за волосами и кожей головы, содержащие 11α-гидроксипрогестерон или 11α-ацетоксипрогестерон [DE 2757024, 1979], которые могут применяться для лечения выпадения волос, чрезмерной засаленности волос и кожи головы, вульгарных угрей и т.п.При этом отмечено, что у этих соединений при местном применении гормональные побочные эффекты отсутствуют.In addition, 11α-hydroxyprogesterone and its acetate can be used not only as progestogenic agents, as mentioned above, but also as antiandrogenic agents to reduce sebaceous secretions in patients with seborrhea, alopecia and other skin diseases associated with hyperandrogenization [RU 2432952, 2011], also known cosmetic compositions for hair and scalp, containing 11α-hydroxyprogesterone or 11α-acetoxyprogesterone [DE 2757024, 1979], which can be used to treat hair loss, is excessive oh greasy hair and scalp, acne vulgaris and t.p.Pri it noted that these compounds, when applied topically hormonal side effects are absent.

11α-Гидроксипрогестерон и 11α-ацетоксипрогестерон могут быть использованы как исходные продукты в синтезе других лекарственных средств для медицинского применения. Например, 11α-гидроксипрогестерон может быть использован в синтезе 11-кетопрогестерона (кетогестина, CAS №516-15-4), который далее превращают в кортизон или 11β-гидроксипрогестерон - предшественник нативного гидрокортизона - методами, известными из уровня техники. Химический метод перехода от 11α-гидроксипрогестерона к 11-кетопрогестерону с выходом более 90% и далее в 11β-гидроксипрогестерон описан в патенте [US 2015376225, 2015, примеры 1 и 7 соответственно]. Кроме того, 11α-гидроксипрогестерон может быть использован в качестве исходного соединения в синтезе перспективных аналогов нейростероидного анестетика альфаксолона [P.Y. Savechenkov, D.C. Chiara, R. Desai, A.T. Stern, X.Zhou, A.M. Ziemba, A.L. Szabo, Y.Zhang, J.B. Cohen, S.A. Forman, K.W. Miller, K.S. Bruzik. Synthesis and pharmacological evaluation of neurosteroid photoaffinity ligands. European Journal of Medicinal Chemistry. 2017. Vol. 136, P. 334-347].11α-hydroxyprogesterone and 11α-acetoxyprogesterone can be used as starting materials in the synthesis of other medicines for medical use. For example, 11α-hydroxyprogesterone can be used in the synthesis of 11-ketoprogesterone (ketogestin, CAS No. 516-15-4), which is further converted into cortisone or 11β-hydroxyprogesterone, the precursor of native hydrocortisone, by methods known from the prior art. The chemical method of transition from 11α-hydroxyprogesterone to 11-ketoprogesterone with a yield of more than 90% and further to 11β-hydroxyprogesterone is described in the patent [US 2015376225, 2015, examples 1 and 7, respectively]. In addition, 11α-hydroxyprogesterone can be used as a starting compound in the synthesis of promising analogues of the neurosteroid anesthetic alfaxolone [P.Y. Savechenkov, D.C. Chiara, R. Desai, A.T. Stern, X.Zhou, A.M. Ziemba, A.L. Szabo, Y.Zhang, J.B. Cohen, S.A. Forman, K.W. Miller, K.S. Bruzik. Synthesis and pharmacological evaluation of neurosteroid photoaffinity ligands. European Journal of Medicinal Chemistry. 2017. Vol. 136, p. 334-347].

Однако о применении грибов A. nidulans, обладающих стероид-11α-гидроксилирующей активностью и способных конвертировать прогестерон в 11α-гидроксипрогестерон, для получения 11α-ацетоксипрогестерона из уровня техники не известно.However, the use of fungi A. nidulans with steroid-11α-hydroxylation activity and able to convert progesterone to 11α-hydroxyprogesterone, to obtain 11α-acetoxyprogesterone in the prior art is not known.

Раскрытие изобретенияDISCLOSURE OF INVENTION

Технической проблемой, решаемой с помощью настоящего изобретения, является расширение номенклатуры микроорганизмов, способных проводить 11α-гидроксилирование прогестерона, а именно, применение известных штаммов аскомицета A. nidulans для 11Α-гидроксилирования прогестерона, а также расширение ассортимента методов ацетилирования вторичной гидроксильной группы при атоме С11 молекулы прогестерона, благодаря наличию способности штаммов по настоящему изобретению ацетилировать вторичную гидроксильную группу при атоме С11 молекулы прогестерона, как альтернативы химическому методу ацетилирования.The technical problem to be solved with the help of the present invention is the expansion of the range of microorganisms capable of conducting 11α-hydroxylation of progesterone, namely, the use of known strains of A. nidulans ascomycete for 11Α-hydroxylation of progesterone, as well as the expansion of the range of methods for acetylation of the secondary hydroxyl group at the C 11 atom progesterone molecules due to the ability of the strains of the present invention to acetylate the secondary hydroxyl group at the C 11 atom of the progesterone molecule as an alternative to the chemical method of acetylation.

Техническая проблема решалась путем использования следующих штаммов:The technical problem was solved by using the following strains:

1. Штамм дикого типа Aspergillus nidulans, депонированный во Всероссийской Коллекции Промышленных Микроорганизмов (ВКПМ) под регистрационным номером F-1069 (synonym FGSC А4; АТСС 3863, 12996, 26451; CBS 112.46; NRRL 194).1. Wild-type strain Aspergillus nidulans, deposited in the All-Russian Collection of Industrial Microorganisms (VKPM) under registration number F-1069 (synonym FGSC A4; ATCC 3863, 12996, 26451; CBS 112.46; NRRL 194).

2. Штамм A. nidulans 031 (argB-; pyrG-) (synonym FP-308.1) - ауксотроф штамма Aspergillus nidulans ВКПМ F-1069, несущий мутации argB2 и pyrG89 [U. Christensen, B.S. Gruben, S. Madrid, H. Mulder, I. Nikolaev, and R. P. de Vries. Unique Regulatory Mechanism for D-Galactose Utilization in Aspergillus nidulans. Appl Environ Microbiol. 2011, Vol. 77(19), 7084-7087].2. Strain A. nidulans 031 (argB - ; pyrG - ) (synonym FP-308.1) - auxotroph of the strain Aspergillus nidulans VKPM F-1069, carrying the mutations argB2 and pyrG89 [U. Christensen, BS Gruben, S. Madrid, H. Mulder, I. Nikolaev, and RP de Vries. Unique Regulatory Mechanism for D-Galactose Utilization in Aspergillus nidulans. Appl Environ Microbiol. 2011 Vol. 77 (19), 7084-7087].

Штамм A. nidulans ВКПМ F-1069Strain A. nidulans VKPM F-1069

Штамм A. nidulans ВКПМ F-1069 ранее для биотрасформации прогестерона не применялся, его стероид-11α-гидроксилирующая активность обнаружена впервые. Этот штамм впервые применен для биотрасформации прогестерона. Установлена способность этого штамма конвертировать прогестерон в 11α-гидроксипрогестерон и 11α-ацетоксипрогестерон.The A. nidulans VKPM F-1069 strain was not previously used for progesterone biotransformation, its steroid-11α-hydroxylation activity was detected for the first time. This strain was first used for progesterone biotraformation. The ability of this strain to convert progesterone to 11α-hydroxyprogesterone and 11α-acetoxyprogesterone has been established.

Штамм A. nidulans 031 (argB-: pyrG-)Strain A. nidulans 031 (argB - : pyrG - )

Штамм A. nidulans 031 (argB-; pyrG-) - ауксотроф штамма Aspergillus nidulans ВКПМ F-1069, несущий мутации argB2 (требующий аргинин) и pyrG89 (требующий уридин и урацил), ранее для биотрасформации прогестерона не применялся, его стероид-11α-гидроксилирующая активность обнаружена впервые. Этот штамм впервые применен для биотрасформации прогестерона. Установлена способность этого штамма конвертировать прогестерон в 11α-гидроксипрогестерон и 11α-ацетоксипрогестерон.The strain A. nidulans 031 (argB - ; pyrG - ) - auxotroph of the Aspergillus nidulans strain VKPM F-1069, carrying the argB2 (requiring arginine) and pyrG89 (requiring uridine and uracil) mutations, had not previously been used for progesterone biotransformation, it did not use its steroid-11, uterine-uracil, it did not use its steroid-11 for the progesterone, its steroid-11, uridine-uracil and uracil didn’t use the progesterone biotransformation. hydroxylation activity is detected for the first time. This strain was first used for progesterone biotraformation. The ability of this strain to convert progesterone to 11α-hydroxyprogesterone and 11α-acetoxyprogesterone has been established.

Было обнаружено, что наличие мутаций argB2 и pyrG89 у штамма A. nidulans ВКПМ F-1069 не изменяет его цитохром Р450-зависимую монооксигеназную способность и направление гидроксилирования молекулы прогестерона, а также не приводит к изменению его ацетилирующей способности - компонентный состав продуктов одинаков.It was found that the presence of argB2 and pyrG89 mutations in A. nidulans VKPM F-1069 strain does not alter its cytochrome P450-dependent monooxygenase ability and hydroxylation direction of the progesterone molecule, and does not alter its acetylating ability - the component composition of the products is the same.

Техническим результатом является биокаталитическое получение стероидных спиртов и их этерификация без применения химических методов. Получение 11α-ацетоксипрогестерона биотрансформацией прогестерона в одну стадию имеет преимущества перед известным из уровня техники двухстадийным процессом, включающим следующие этапы: 1) микробиологическое 11α-гидроксилирование прогестерона и 2) химическое ацетилирование вторичной 11α-гидроксильной группы. Биотехологическое 11α-гидроксилирование прогестерона и ацетилирование образованного 11α-гидроксипрогестерона с выделением или без выделения его из реакционной массы является экономически эффективным процессом, преимущества которого перед химическим методом ацетилирования состоят в следующем:The technical result is the biocatalytic production of steroid alcohols and their esterification without the use of chemical methods. Obtaining 11α-acetoxyprogesterone by biotransformation of progesterone in one stage has advantages over the two-stage process known from the prior art, including the following steps: 1) microbiological 11α-hydroxylation of progesterone and 2) chemical acetylation of the secondary 11α-hydroxyl group. Biotechnological 11α-hydroxylation of progesterone and acetylation of the formed 11α-hydroxyprogesterone, with or without isolation from the reaction mass, is a cost-effective process, the advantages of which over the chemical method of acetylation are as follows:

- процесс проводится без использования агрессивных химических реагентов, таких как уксусный ангидрид или хлорангидрид уксусной кислоты, без использования сильных минеральных кислот в качестве катализаторов ацетилирования, таких как 60% хлорная кислота;- the process is carried out without the use of aggressive chemical reagents, such as acetic anhydride or acetic acid chloride, without using strong mineral acids as acetylation catalysts, such as 60% perchloric acid;

-биокаталитическая этерификация 11α-гидроксипрогестерона является альтернативой химическому методу ацетилирования, является экологически более чистым и безопасным методом;-biocatalytic esterification of 11α-hydroxyprogesterone is an alternative to the chemical method of acetylation, it is an environmentally cleaner and safer method;

- биокаталитическое ацетилирование протекает регионаправленно без образования побочного продукта енолацетилирования Δ4-3-кетогруппы молекулы 11α-гидроксипрогестерона - 3, 11α-диацетоксипрегна-3,5-диен-20-она, содержание которого при использовании химического метода ацетилирования может сотавлять 20-30%, что существенно осложняет очистку целевого 11α-ацетоксипрогестерона и приводит к потерям его выхода.- biocatalytic acetylation proceeds regionally without the formation of a byproduct of enol acetylation of the Δ 4 -3-keto group of the 11α-hydroxyprogesterone molecule — 3, 11α-diacetoxypregna-3,5-diene-20-one, the content of which can be 20–30% when using the chemical method of acetylation , which significantly complicates the purification of the target 11α-acetoxyprogesterone and leads to a loss of its release.

Для достижения указанного выше технического результата по настоящему изобретению предлагается использовать известные штаммы Aspergillus nidulans в качестве биокатализаторов для биотехнологических процессов 11α-гидроксилирования и 11α-ацетоксилирования прогестерона, а также биокаталитической этерификации 11α-гидроксипрогестерона.To achieve the above technical result of the present invention, it is proposed to use known strains of Aspergillus nidulans as biocatalysts for biotechnological processes 11α-hydroxylation and 11α-acetoxylation of progesterone, as well as biocatalytic esterification of 11α-hydroxyprogesterone.

11α-Ацетоксипрогестерон при необходимости может быть гидролизован любым удобным способом с образованием 11α-гидроксипрогестерона, известным из уровня техники. Так, например, известен химический метод получения 11α-гидроксипрогестерона сольволизом 11α-ацетоксипрогестерона действием (бистрибутилолово)оксида [M.G. Perez, and M.S. Maier. Mild deprotection of steroid esters by bis(tributyltin)oxide. Tetrahedron Letters, 1995. Vol. 36(19), 3311-3314] или традиционным способом химического сольволиза в условиях основного катализа: в среде метанола в присутствии КОН [Т. Kubota, and F. Hayashi. Studies on A-norsteroids - VI. Directing effects of С11 substituents on the addition of osmium tetroxide to steroidal Δ1,4-3-ketones. Tetrahedron, 1967. Vol. 23, 995-1006].11α-Acetoxyprogesterone, if necessary, can be hydrolyzed in any convenient way with the formation of 11α-hydroxyprogesterone, known from the prior art. For example, a chemical method is known for producing 11α-hydroxyprogesterone by solvolysis of 11α-acetoxyprogesterone by the action of (bi-tributyltin) oxide [MG Perez, and MS Maier. Mild deprotection of steroid esters by bis (tributyltin) oxide. Tetrahedron Letters, 1995. Vol. 36 (19), 3311-3314] or the traditional method of chemical solvolysis under basic catalysis conditions: in methanol in the presence of KOH [T. Kubota, and F. Hayashi. Studies on A-norsteroids - VI. Directing effects of C 11 substituents of steroidal Δ 1,4 -3-ketones. Tetrahedron, 1967. Vol. 23, 995-1006].

Культуралыго-морфологические особенности заявляемых штаммов.Culture-morphological features of the claimed strains.

Штамм A. nidulans ВКПМ F1069Strain A. nidulans VKPM F1069

На агаризованной среде образует круглые колонии диаметром 30-35 мм через 7 суток роста. Поверхность ровная, выпуклая, пушистая. Текстура средней плотности. Край колоний плотный, ровный. Цвет колоний в зоне спороношения зеленовато-белый. Обратная сторона палево-коричневая. Эксудат отсутствует. Характеризуется интенсивным спороношением. Цвет спор зеленый.On agar medium forms round colonies with a diameter of 30-35 mm after 7 days of growth. The surface is flat, convex, fluffy. Medium density texture. The edge of the colonies tight, smooth. The color of the colonies in the area of sporulation greenish-white. The reverse side is pale brown. Exudate is absent. It is characterized by intense sporulation. The color of the dispute is green.

Штамм A. nidulans 031 (argB-: pyrG-)Strain A. nidulans 031 (argB - : pyrG - )

На агаризованной среде образует круглые колонии диаметром 30-35 мм через 10 суток роста (растет медленнее). Поверхность ровная, выпуклая, пушистая. Текстура средней плотности. Край колоний плотный, ровный. Цвет колоний в зоне спороношения зеленовато-белый. Обратная сторона палево-коричневая. Эксудат отсутствует. Характеризуется умеренным спороношением. Цвет спор зеленый.On agar medium forms round colonies with a diameter of 30-35 mm after 10 days of growth (grows slower). The surface is flat, convex, fluffy. Medium density texture. The edge of the colonies tight, smooth. The color of the colonies in the area of sporulation greenish-white. The reverse side is pale brown. Exudate is absent. It is characterized by moderate sporulation. The color of the dispute is green.

Основным свойством штаммов по настоящему изобретению является наличие стероид-11α-гидроксилирующей активности и способности конвертировать прогестерон в 11α-ацетоксипрогестерон, а также ацетилирующей активности и способности этерифицировать 11α-гидроксипрогестерон.The main property of the strains of the present invention is the presence of steroid-11α-hydroxylation activity and the ability to convert progesterone to 11α-acetoxyprogesterone, as well as acetylation activity and the ability to esterify 11α-hydroxyprogesterone.

На фиг. 1 представлена схема трансформации прогестерона известными штаммами A. nidulans ВКПМ F-1069 и A. nidulans 031 (argB-; pyrG-).FIG. 1 shows the progesterone transformation scheme by known strains of A. nidulans VKPM F-1069 and A. nidulans 031 (argB - ; pyrG - ).

Трансформация прогестерона протекает с первичным образованием 11α-гидроксипрогестерона. Процессы ацетилирования гидроксильной группы образованного 11α-гидроксипрогестерона и его 6β-гидроксилирования с образованием 6β,11α-дигидроксипрогестерона являются вторичными, конкурентными процессами трансформации, причем процесс биокаталитической этерификации имеет преимущества. Этот вывод подтвержден экспериментально. При продолжительности трансформации 14 ч штаммами A. nidulans ВКПМ F-1069 и A. nidulans 031 (argB-; pyrG-) в культуральной среде определено наличие только 11α-ацетоксипрогестерона и нетрансформированного исходного субстрата. Кроме того, используя 11α-гидроксипрогестерон вместо прогестерона в качестве исходного субстрата в аналогичных условиях трансформации штаммами A. nidulans ВКПМ F-1069 и A. nidulans 031 (argB-; pyrG-), было отмечено, что в течение 23 ч имеет место образование исключительно 11α-ацетоксипрогестерона.Transformation of progesterone proceeds with the initial formation of 11α-hydroxyprogesterone. The processes of acetylation of the hydroxyl group of the formed 11α-hydroxyprogesterone and its 6β-hydroxylation to form 6β, 11α-dihydroxyprogesterone are secondary, competitive transformation processes, and the process of biocatalytic esterification has advantages. This conclusion is confirmed experimentally. When the duration of transformation was 14 h, A. nidulans VKPM F-1069 and A. nidulans 031 (argB - ; pyrG - ) strains in the culture medium determined the presence of only 11α-acetoxyprogesterone and the untransformed initial substrate. In addition, using 11α-hydroxyprogesterone instead of progesterone as a starting substrate under similar transformation conditions with A. nidulans VKPM F-1069 and A. nidulans 031 strains (argB - ; pyrG - ), it was noted that within 23 hours 11α-acetoxyprogesterone.

Таким образом, сущность заявленного изобретения заключается в применении известных штаммов Aspergillus nidulans ВКПМ F-1069 и A. nidulans 031 (argB-; pyrG-) по новому назначению, а именно для 11α-гидроксилирования прогестерона и ацетилирования lla-гидроксипрогестерона с выделением или без выделения из культуральной жидкости.Thus, the essence of the claimed invention is the application of known strains of Aspergillus nidulans VKPM F-1069 and A. nidulans 031 (argB - ; pyrG - ) for a new purpose, namely for 11α-hydroxylation of progesterone and acetylation of lla-hydroxyprogesterone with or without isolation from the culture fluid.

Преимущества применения штаммов по настоящему изобретению состоят в способности конвертировать прогестерон в 11α-гидроксипрогестерон и ацетилировать гидроксильную группу в молекуле 11α-гидроксипрогестерона с образованием 11α-ацетоксипрогестерона как с выделением 11α-гидроксипрогестерона из культуральной среды, так и без выделения, in situ.The advantages of using the strains of the present invention are the ability to convert progesterone to 11α-hydroxyprogesterone and acetylate the hydroxyl group in the 11α-hydroxyprogesterone molecule with the formation of 11α-acetoxyprogesterone with the release of 11α-hydroxyprogesterone from the culture medium, and without isolation, in situ.

Краткое описание чертежейBrief Description of the Drawings

На фиг. 1 представлена схема трансформации прогестерона штаммами A. nidulans ВКПМ F-1069 и A. nidulans 031 (argB-; pyrG-).FIG. Figure 1 shows the progesterone transformation scheme by A. nidulans VKPM F-1069 and A. nidulans 031 strains (argB - ; pyrG - ).

На фиг. 2, 5 и 13 представлены хроматограммы хромато-масс-спектрометрического анализа 11α-гидроксипрогестерона, 11α-ацетоксипрогестерона и 6β, 11α-дигидроксипрогестерона соответственно.FIG. 2, 5, and 13 are chromatography-mass spectrometry analyzes of 11α-hydroxyprogesterone, 11α-acetoxyprogesterone, and 6β, 11α-dihydroxyprogesterone, respectively.

На фиг. 3 и 4 представлены 1Н ЯМР-спектры 11α-гидроксипрогестерона.FIG. 3 and 4 show 1 H NMR spectra of 11α-hydroxyprogesterone.

На фиг. 6-12 представлены 1Н ЯМР-, 13С ЯМР-, DEPT-ЯМР-, HSQC-ЯМР- и НМВС-ЯМР- спектры 11α-ацетоксипрогестерона.FIG. 6-12 are 1 H NMR, 13 C NMR, DEPT-NMR, HSQC-NMR and HMBC-NMR spectra of 11α-acetoxyprogesterone.

На фиг. 14-21 представлены 1Н-ЯМР-, 13С-ЯМР-, DEPT-ЯМР-, HSQC-ЯМР- и НМВС-ЯМР - спектры 6β,11α-дигидроксипрогестерона.FIG. 14-21 are 1 H-NMR, 13 C-NMR, DEPT-NMR, HSQC-NMR and HMBC-NMR spectra of 6β, 11α-dihydroxyprogesterone.

Осуществление изобретенияThe implementation of the invention

Штамм дикого типа Aspergillus nidulans ВКПМ F-1069 (synonym FGSC A4; АТСС 3863, 12996, 26451; CBS 112.46; NRRL 194) был получен из Всероссийской Коллекции Промышленных Микроорганизмов (ВКПМ).The wild-type strain Aspergillus nidulans VKPM F-1069 (synonym FGSC A4; ATCC 3863, 12996, 26451; CBS 112.46; NRRL 194) was obtained from the All-Russian Collection of Industrial Microorganisms (VKPM).

Прогестерон (I) (CAS №57-83-0, С21Н30О2), 11α-гидроксипрогестерон (II) (CAS №80-75-1, С21Н30О3) и 11α-ацетоксипрогестерон (С23Н32О4, M.w. 372.5 являются коммерчески доступными и могут быть приобретены, например, у компании Steraloids Inc. (USA) или у других производителей.Progesterone (I) (CAS No. 57-83-0, C 21 H 30 O 2 ), 11α-hydroxyprogesterone (II) (CAS No. 80-75-1, C 21 H 30 O 3 ) and 11α-acetoxyprogesterone (C 23 H 32 O 4 , Mw 372.5 are commercially available and can be purchased, for example, from Steraloids Inc. (USA) or from other manufacturers.

Неорганические соли были приобретены у компании Fluka (Germany). Дрожжевой экстракт и агар - Difco Becton Dickinson and company (Sparks, USA).Inorganic salts were purchased from Fluka (Germany). Yeast Extract and Agar - Difco Becton Dickinson and company (Sparks, USA).

Другие реагенты, растворители, и инертные газы являются коммерчески доступными, были приобретены у российских производителей.Other reagents, solvents, and inert gases are commercially available, were purchased from Russian manufacturers.

Для приготовления сред для культивирования и трансформации, водных растворов кислот, солей и щелочей использовали дистиллированную воду. Для промывки экстрактов в органических растворителях использовали питьевую водопроводную воду, если не оговорено особо.For the preparation of media for cultivation and transformation, aqueous solutions of acids, salts and alkalis used distilled water. Drinking tap water was used to rinse the extracts in organic solvents, unless otherwise noted.

Все процедуры, если не оговорено особо, осуществляли при комнатной температуре или температуре окружающей среды, то есть в диапазоне от 20 до 25°С.Для процессов, требующих более низкие температуры, чем комнатная, охлаждение обеспечивали холодной водопроводной водой (в диапазоне от 10 до 20°С), или смесью колотого льда и холодной воды (в диапазоне от 5 до 10°С), или смесью колотого льда и хлорида кальция (при температуре ниже 5°С).All procedures, unless otherwise specified, were carried out at room or ambient temperature, that is, in the range from 20 to 25 ° C. For processes requiring lower temperatures than room temperature, cooling was provided with cold tap water (in the range from 10 to 20 ° C), or a mixture of crushed ice and cold water (in the range from 5 to 10 ° C), or a mixture of crushed ice and calcium chloride (at a temperature below 5 ° C).

Культивирование микроорганизмов осуществляли на качалке New Brunswick™ Innova® 44/44R в термостатированном помещении при температуре 37°С (240-250 об/мин., амплитуда 5 см).The cultivation of microorganisms was carried out on a New Brunswick ™ Innova® 44 / 44R shaker in a thermostatically controlled room at 37 ° C (240–250 rpm, amplitude 5 cm).

Упаривание растворителей в вакууме осуществляли с использованием ротационного вакуумного испарителя Rotavapor

Figure 00000003
при остаточном давлении 0,35±0,05 кгс/см2 (35±5 кПа) и температуре воды в бане в диапазоне от 35-50°С в зависимости от природы упариваемого растворителя.Evaporation of solvents in vacuum was carried out using a Rotavapor rotary vacuum evaporator.
Figure 00000003
with a residual pressure of 0.35 ± 0.05 kgf / cm 2 (35 ± 5 kPa) and a water temperature in the bath in the range of 35-50 ° C, depending on the nature of the solvent evaporated.

Высушивание кристаллов продуктов до постоянного веса осуществляли при температуре 35-45°С при атмосферном давлении или с использованием вакуум-сушильного шкафа при остаточном давлении 0,35±0,05 кгс/см2 (35±5 кПа).Drying of product crystals to a constant weight was carried out at a temperature of 35-45 ° C at atmospheric pressure or using a vacuum drying cabinet at a residual pressure of 0.35 ± 0.05 kgf / cm 2 (35 ± 5 kPa).

Для определения рН промывных вод использовали универсальную индикаторную бумагу с диапазоном значений от 0 до 12 (Лахема, Чехия).To determine the pH of the wash water used universal indicator paper with a range of values from 0 to 12 (Lahema, Czech Republic).

Колоночную хроматографию осуществляли на колонке (16×650 мм), используя силикагель марки Silica gel 60 (0.040-0.063 mm) (Merck, Germany).Column chromatography was carried out on a column (16 × 650 mm) using silica gel of the brand Silica gel 60 (0.040-0.063 mm) (Merck, Germany).

Контроль за ходом элюирования осуществляли методом тонкослойной хроматографии (ТСХ), используя пластины Silica gel 60 F254 (Merck, Germany) и хроматографические системы растворителей: дихлорметан-ацетон 9:1 (v/v) или дихлорметан-ацетон 4:1 (v/v). Пластинки просматривали в УФ-свете при длине волны 254 нм, затем опрыскивали 1% раствором ванилина в 10% водном растворе НСlO4, проявляли при температуре 100-120°С.The control of the elution was carried out by thin layer chromatography (TLC) using Silica gel 60 F254 plates (Merck, Germany) and chromatographic solvent systems: dichloromethane-acetone 9: 1 (v / v) or dichloromethane-acetone 4: 1 (v / v ). The plates were viewed in UV light at a wavelength of 254 nm, then sprayed with a 1% solution of vanillin in a 10% aqueous solution of HClO4, developed at a temperature of 100-120 ° C.

Структуру и чистоту всех выделенных соединений подтверждали, по меньшей мере, одним из следующих методов: ТСХ (пластины для ТСХ Silica gel 60 F254 (Merck, Germany)), масс-спектрометрия, элементный анализ, ядерный магнитный резонанс (ЯМР), высокоэффективная жидкостная хроматография (ВЭЖХ).The structure and purity of all isolated compounds was confirmed by at least one of the following methods: TLC (plates for TLC Silica gel 60 F254 (Merck, Germany)), mass spectrometry, elemental analysis, nuclear magnetic resonance (NMR), high-performance liquid chromatography (HPLC).

Температуру плавления выделенных соединений определяли на приборе для определения точки плавления М-565

Figure 00000004
.The melting point of the isolated compounds was determined on a device for determining the melting point M-565
Figure 00000004
.

1Н- и 13С- ЯМР спектры были определены на спектрометре Bruker Avance-400 (Bruker BioSpin GmbH) с рабочей частотой 400 МГц и 100.6 МГц соответственно, используя дейтерированный хлороформ (99,8% D, Sigma-Aldrich), или дейтерированный диметилсульфоксид (99,9% D, Sigma-Aldrich) в качестве растворителя относительно тетраметилсилана (TMS NMR grade ≥99,9%, Sigma-Aldrich) в качестве внутреннего стандарта, в миллионных долях (м.д.). 1 H- and 13 C-NMR spectra were determined on a Bruker Avance-400 spectrometer (Bruker BioSpin GmbH) with an operating frequency of 400 MHz and 100.6 MHz, respectively, using deuterated chloroform (99.8% D, Sigma-Aldrich), or deuterated dimethyl sulfoxide (99.9% D, Sigma-Aldrich) as a solvent relative to tetramethylsilane (TMS NMR grade ≥99.9%, Sigma-Aldrich) as an internal standard, in ppm (ppm).

Масс-спектры высокого разрешения (HRMS) регистрировали на приборе Bruker Daltonics micrOTOF-Q II, используя электрораспылительную ионизацию (ESI). Измерения были получены в режиме положительных ионов со следующими параметрами: граничное напряжение капилляра 4500 В; диапазон масс от m/z 50 до 3000; внешняя калибровка (Electricpray Calibrant Solution, Fluka); давление распылителя 0,4 бар; скорость потока 3 мкл/мин; азот применяли в виде сухого газа (6 л/мин); температура интерфейса была установлена при 180°С. Образец вводили в камеру масс-спектрометра из системы HPLC Agilent 1260, снабженной колонкой Agilent Poroshell 120 ЕС-С18 (3.0×50 μm; 2,7 urn) и защитой, используя автосамплер. Образец вводили в растворе 50% ацетонитрила (квалификация LC-MS) в воде (ультрачистая вода MilliQ, Merck Millipore KGaA, Germany), и колонку элюировали смесью ацетонитрила (А) и воды (В) в градиенте концентраций со скоростью потока 400 мкл/мин в следующих параметрах градиента: 0-15% А в течение 6 мин, 15% -85% А в течение 1,5 мин, 85% -0% А в течение 0,1 мин, 0% А в течение 2,4 мин. Время удерживания было следующим: 11α-гидроксипрогестерон - 5,2 мин; прогестерон - 6,7 мин; 11α-ацетоксипрогестерон - 6,0 мин; 6β, 11α дигидроксипрогестерон - 4,2 мин.High-resolution mass spectra (HRMS) were recorded on a Bruker Daltonics micrOTOF-Q II instrument using electrospray ionization (ESI). The measurements were obtained in the positive ion mode with the following parameters: capillary boundary voltage of 4500 V; mass range from m / z 50 to 3000; external calibration (Electricpray Calibrant Solution, Fluka); sprayer pressure 0.4 bar; flow rate 3 μl / min; nitrogen was used as a dry gas (6 L / min); interface temperature was set at 180 ° C. The sample was introduced into the mass spectrometer chamber from an Agilent 1260 HPLC system equipped with an Agilent Poroshell 120 EC-C18 column (3.0 × 50 μm; 2.7 urn) and protection using an autosampler. The sample was injected in a solution of 50% acetonitrile (LC-MS qualification) in water (ultrapure water MilliQ, Merck Millipore KGaA, Germany), and the column was eluted with a mixture of acetonitrile (A) and water (B) in a concentration gradient with a flow rate of 400 μl / min in the following gradient parameters: 0-15% A for 6 minutes, 15% -85% A for 1.5 minutes, 85% -0% A for 0.1 minutes, 0% A for 2.4 minutes . The retention time was as follows: 11α-hydroxyprogesterone - 5.2 min; progesterone - 6.7 min; 11α-acetoxyprogesterone - 6.0 min; 6β, 11α dihydroxyprogesterone - 4.2 min.

Образование 11α-ацетоксипрогестерона в результате трансформации прогестерона или lla-гидроксипрогестерона культурами A. nidulans ВКПМ F-1069 и A. nidulans 031 (argB-; pyrG-) подтверждено данными спектров 1Н ЯМР, 13С ЯМР, 2DЯМР, хромато-масс-спектрометрии высокого разрешения. На фиг. №№5,6,7-14 и 16-21 приведены спектры и на фиг.№№4,7 и 15 - хроматограммы полученных соединений.The formation of 11α-acetoxyprogesterone as a result of the transformation of progesterone or lla-hydroxyprogesterone by the cultures of A. nidulans VKPM F-1069 and A. nidulans 031 (argB - ; pyrG - ) was confirmed by 1 H NMR, 13 C NMR, 2D NMR, and chromatography mass spectrometry high resolution. FIG. Nos. 5, 6, 7-14 and 16-21 shows the spectra and in Fig. Nos. 4.7 and 15 are chromatograms of the compounds obtained.

Для подтверждения образования 11α-ацетоксипрогестерона в процессе трансформации прогестерона или 11α-гидроксипрогестерона культурами A. nidulans 11α-ацетоксипрогестерон был получен химическим синтезом из 11α-гидроксипрогестерона с применением метода ацетилирования.To confirm the formation of 11α-acetoxyprogesterone during the transformation of progesterone or 11α-hydroxyprogesterone by cultures of A. nidulans 11α-acetoxyprogesterone was obtained by chemical synthesis from 11α-hydroxyprogesterone using the acetylation method.

При осуществлении изобретения помимо методов, подробно раскрытых в нижеследующих примерах, использовали хорошо известные специалистам методики, описанные в руководствах по молекулярной биологии и генетической инженерии [J. Sambrook, Т. Maniatis, and E.F. Fritsch. Molecular cloning a laboratory manual (Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, N.Y.; 1989; F.M. Ausubel, R. Brent, R.E. Kingston, D.D. Moore, J.G. Seidman, J.A. Smith, and K. Struhl. Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley and Sons, N.Y., 1997].In carrying out the invention, in addition to the methods described in detail in the following examples, the techniques described in the manuals on molecular biology and genetic engineering [J. Sambrook, T. Maniatis, and E.F. Fritsch. Molecular cloning a laboratory manual (Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, NY; 1989; FM Ausubel, R. Brent, RE Kingston, DD Moore, JG Seidman, JA Smith, and K. Struhl. Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley and Sons, NY, 1997].

Выходы 11α-гидроксипрогестерона и 11α-ацетоксипрогестерона, полученные биотрансформацией прогестерона и 11α-гидроксипрогестерона штаммами по настоящему изобретению и приведенные в примерах заявляемого изобретения, безусловно, ниже тех, которые необходимы для эффективного промышленного процесса. Однако примеры даны лишь для иллюстрации биокаталитической способности заявляемых штаммов конвертировать прогестерон не только в 11α-гидроксипрогестерон, но и в ацетат 11α-гидроксипрогестерона. Следует отметить, что указанная ацетилирующая способность выявлена впервые. Выходы могут быть значительно улучшены за счет оптимизации условий проведения биотрансформации с целью минимизации образования 6β, 11α-дигидроксипрогестерона и сдвига направления вторичной модификации 11α-гидроксипрогестерона в сторону ацетилирования. Известно, что состав продуктов зависит от состава среды, рН среды, возраста культуры, от индукции исходным субстратом или продуктом [А.Н. El-Refai, and K.M.Ghanem Some physiological relations of progesterone conversion by Aspergillus nidulans. Egyptian Journal of Microbiology, 1987. Vol. 22(2), 327-338]. Поэтому для снижения активности вторичного энзима 6β-гидроксилазы и уменьшения количества, образованного 6β, 11α-дигидроксипрогестерона необходимо оптимизировать параметры проведения процесса трансформации, например, значение рН среды, возраст культуры, способ внесения субстрата, состав среды для трансформации, температурный режим и другие, известные из уровня техники. Для примера в таблице 1 приведено влияние состава среды на конверсию прогестерона заявляемыми штаммами и на их 11α-монооксигенаазную активность (суммарно), а в таблице 2 - на относительную селективность образования 11α-гидроксипрогестерона и 11α-ацетоксипрогестерона, при прочих одинаковых условиях.The yields of 11α-hydroxyprogesterone and 11α-acetoxyprogesterone obtained by biotransformation of progesterone and 11α-hydroxyprogesterone by the strains of the present invention and given in the examples of the claimed invention are, of course, lower than those necessary for an effective industrial process. However, examples are given only to illustrate the biocatalytic ability of the claimed strains to convert progesterone not only into 11α-hydroxyprogesterone, but also into 11α-hydroxyprogesterone acetate. It should be noted that this acetylating ability was revealed for the first time. The yields can be significantly improved by optimizing the biotransformation conditions in order to minimize the formation of 6β, 11α-dihydroxyprogesterone and shift the direction of the secondary modification of 11α-hydroxyprogesterone towards acetylation. It is known that the composition of the products depends on the composition of the medium, the pH of the medium, the age of the culture, on the induction of the initial substrate or product [A.N. El-Refai, and K.M.Ghanem Some physiological relations of Astergillus nidulans. Egyptian Journal of Microbiology, 1987. Vol. 22 (2), 327-338]. Therefore, to reduce the activity of the secondary enzyme 6β-hydroxylase and reduce the amount formed by 6β, 11α-dihydroxyprogesterone, it is necessary to optimize the parameters of the transformation process, for example, the pH value of the medium, the age of the culture, the method of introducing the substrate, the composition of the medium for transformation, temperature, and other known from the level of technology. For example, Table 1 shows the effect of the composition of the medium on the conversion of progesterone by the claimed strains and on their 11α-monooxygenase activity (total), and in Table 2 on the relative selectivity of the formation of 11α-hydroxyprogesterone and 11α-acetoxyprogesterone, all other conditions being the same.

Для трансформации мы использовали 2 варианта сред следующего состава: 1 - среда СМ, использованная

Figure 00000005
et а1
Figure 00000006
Microbial transformations of steroids XXIV. Separation of androstane 17-hydroxy-epimers. Folia Microbiologica. 1964. Vol. 9(6), 380-382] для ацетилирования тестостерона дрожжами и описанная в статье А.Н. El-Refai и K.M.Ghanem [А.Н. El-Refai, and K.M. Ghanem. Some physiological relations of progesterone conversion by Aspergillus nidulans. Egyptian Journal of Microbiology, 1987. Vol. 22(2), 327-338] (среда II, рН 6,5), как наиболее благоприятная для конверсии прогестерона в 11α-гидрокси-производное культурой A. nidulans. Состав среды, г/л: глюкоза - 40; MgSO4 ×7Н2О - 1; КН2РО4 - 0,74; пептон -1; дрожжевой экстракт - 1; L-аспарагин - 0,7.For the transformation, we used 2 variants of the media of the following composition: 1 - SM medium, used
Figure 00000005
et a1
Figure 00000006
Microbial transformations of steroids XXIV. Separation of androstane 17-hydroxy-epimers. Folia Microbiologica. 1964. Vol. 9 (6), 380-382] for testosterone acetylation by yeast and described in the article of A.N. El-Refai and KMGhanem [A.N. El-Refai, and KM Ghanem. Some physiological relations of progesterone conversion by Aspergillus nidulans. Egyptian Journal of Microbiology, 1987. Vol. 22 (2), 327-338] (medium II, pH 6.5), as the most favorable for the conversion of progesterone to 11α-hydroxy-derived culture of A. nidulans. The composition of the medium, g / l: glucose - 40; MgSO 4 × 7H 2 O - 1; KN 2 PO 4 - 0.74; peptone -1; yeast extract - 1; L-asparagine - 0.7.

2 - минимальная синтетическая среда ММ. Состав среды, г/л: глюкоза - 20; MgS04×7Н2О2 - minimal synthetic medium MM. The composition of the medium, g / l: glucose - 20; MgS0 4 × 7H 2 O

- 0,52; КН2РО4 - 1,52; NaNO3 - 0,85; CuSO4×5Н2O - 0,13; СаСl2 - 0,11; KСl - 0,52, Н3 ВО3 -5×10-6; MnSO4×5Н2O - 1×10-3; ZnSO4×7Н2O - 0,8×10-3; Na2MoO4×4Н2O - 0,8×10-3; FeSO4×5H2О - 0,8×10-3; 0.5 М фосфатно-цитратный буфер (рН 6.6) - 200 мл/л.- 0,52; KN 2 PO 4 - 1.52; NaNO 3 - 0.85; CuSO 4 × 5H 2 O — 0.13; L 2 = 0.11; KCl - 0.52, H 3 BO 3 -5 × 10 -6 ; MnSO 4 × 5H 2 O - 1 × 10 -3 ; ZnSO 4 × 7H 2 O — 0.8 × 10 -3 ; Na 2 MoO 4 × 4H 2 O — 0.8 × 10 -3 ; FeSO 4 × 5H 2 O — 0.8 × 10 -3 ; 0.5 M phosphate-citrate buffer (pH 6.6) - 200 ml / l.

При культивировании штамма A. nidulans 031 (argB-; pyrG-) в среды ММ и СМ добавляли аргинин - 0,21 г/л, уридин - 1,1 г/л и урацил - 1,2 г/л.When A. nidulans 031 (argB - ; pyrG - ) was cultivated, arginine — 0.21 g / l, uridine — 1.1 g / l, and uracil — 1.2 g / l were added to the MM and CM media.

Известно, что минеральные соли, добавленные в среду для культивирования, в частности, CuSO4, могут быть ингибиторами стероид-С21-монооксигеназы (ЕС №1.14.99.10 [Springer Handbook of Enzymes, Vol. 27, Class 1. Oxidoreductases XII. EC 1.14.15-1.97. Second edition. Springer. 2006, p.302]). Однако результаты показывают, что на среде СМ образование 21-гидроксипрогестерона как продукта трансформации не наблюдается. Следует отметить, что 21-гидроксипрогестерон наряду с 11α-гидроксипрогестероном является одним из продуктов трансформации прогестерона в этой среде штаммом А. nidulans известным способом [А.Н. El-Refai, and K.M.Ghanem. Some physiological relations of progesterone conversion by Aspergillus nidulans. Egyptian Journal of Microbiology, 1987, Vol. 22(2), 327-338].It is known that the mineral salts added to the culture medium, in particular CuSO 4 , can be steroid-C21 monooxygenase inhibitors (EC No. 1.1.14.99.10 [Springer Handbook of Enzymes, Vol. 27, Class 1. Oxidoreductases XII. EC 1.14 .15-1.97. Second edition. Springer. 2006, p.302]). However, the results show that the formation of 21-hydroxyprogesterone as a transformation product is not observed on the SM medium. It should be noted that 21-hydroxyprogesterone along with 11α-hydroxyprogesterone is one of the products of progesterone transformation in this medium by A. nidulans strain in a known manner [A.N. El-Refai, and KMGhanem. Some physiological relations of progesterone conversion by Aspergillus nidulans. Egyptian Journal of Microbiology, 1987, Vol. 22 (2), 327-338].

Заявленное изобретение иллюстрируется следующими примерами.The claimed invention is illustrated by the following examples.

Пример 1. Общий метод биотрансформации прогестерона штаммами Aspergillus nidulans на средах ММ и СМ в течение 66 чExample 1. General method of biotransformation of progesterone by Aspergillus nidulans strains on MM and CM media for 66 h

Для получения споровой суспензии штаммы выращивали при температуре 37°С в течение 7-10 дней на агаризованной среде МПА (мальт-экстракт - 3 г/л, пептон -1 г/л, агар - 20 г/л). При культивировании штамма A. nidulans 031 (argB-; pyrG-) в среду добавляли аргинин - 0,21 г/л, уридин - 1,1 г/л и урацил - 1,2 г/л. Споровую суспензию высевали в качалочные колбы вместимостью 750 мл, содержащие по 100 мл ростовой среды (ММ или СМ), выращивали на качалке (240-250 об/мин, амплитуда 5 см) при температуре 37°С в течение 4 дней. Затем в ростовую среду вносили прогестерон в виде раствора в диметилсульфоксиде до финальной концентрации 1 г/л, при этом концентрация растворителя не превышала 6% (об.). Трансформацию проводили в течение 66 ч в тех же условиях, параллельно культивируя штаммы без прогестерона в качестве контроля. Каждый эксперимент выполняли в трех повторностях.To obtain a spore suspension, the strains were grown at 37 ° C for 7–10 days on MPA agar medium (malt extract — 3 g / l, peptone -1 g / l, agar — 20 g / l). When A. nidulans 031 (argB - ; pyrG - ) was cultivated , arginine was added to the medium - 0.21 g / l, uridine - 1.1 g / l and uracil - 1.2 g / l. The spore suspension was sown in 750 ml rocking flasks containing 100 ml growth medium (MM or CM), grown on a rocking chair (240-250 rpm, amplitude 5 cm) at 37 ° C for 4 days. Then, progesterone was introduced into the growth medium as a solution in dimethyl sulfoxide to a final concentration of 1 g / l, while the solvent concentration did not exceed 6% (vol.). Transformation was carried out for 66 h under the same conditions, parallelly cultivating the strains without progesterone as a control. Each experiment was performed in triplicate.

Для извлечения продуктов трансформации прогестерона по окончании инкубации мицелий отфильтровывали, промывали дихлорметаном на фильтре. Культуральную жидкость экстрагировали трижды порциями дихлорметана равного объема. Стероиды, адсорбированные на мицелии, извлекали ре-мацерацией (трижды), используя метанол и выдерживая без перемешивания в течение 4 ч. Метанол упаривали, остаток, содержащий воду, экстрагировали дихлорметаном трижды. Объединенные экстракты культуральной жидкости и мицелия промывали водой, сушили Na2SO4, осветляли активированным углем и упаривали до прекращения погона. Остаток растворяли в 5 мл смеси этилацетата и дихлорметана (1:2) и хроматографировали на колонке, используя 30-кратное количество силикагеля к весу остатка после упаривания (фиг. 2). В качестве элюэнта использовали смесь дихлорметана и ацетона (от 0 до 25 об.% ацетона), для контроля элюции использовали ТСХ. Хроматографическую чистоту соединений подтверждали с помощью ТСХ и ЯМР-спектроскопии.To extract progesterone transformation products at the end of incubation, the mycelium was filtered, washed with dichloromethane on the filter. The culture fluid was extracted three times with equal volumes of dichloromethane. Steroids adsorbed on the mycelium were recovered by re-maceration (three times) using methanol and kept without stirring for 4 hours. Methanol was evaporated, the residue containing water was extracted with dichloromethane three times. The combined extracts of the culture liquid and mycelium were washed with water, dried with Na 2 SO 4 , lightened with activated charcoal and evaporated until cessation stopped. The residue was dissolved in 5 ml of a mixture of ethyl acetate and dichloromethane (1: 2) and chromatographed on a column using a 30-fold amount of silica gel to the weight of the residue after evaporation (Fig. 2). A mixture of dichloromethane and acetone (from 0 to 25 vol.% Of acetone) was used as eluent, TLC was used to control the elution. Chromatographic purity of the compounds was confirmed by TLC and NMR spectroscopy.

Результаты биотрансформации прогестерона штаммами A. nidulans по настоящему изобретению приведены в таблицах 1 и 2.The results of progesterone biotransformation by A. nidulans strains of the present invention are shown in Tables 1 and 2.

Пример 2. Биотрансформация прогестерона штаммами A. nidulans в течение 14 чExample 2. Biotransformation of progesterone by A. nidulans strains for 14 h

Вариант 1. Споровую суспензию штамма A. nidulans ВКПМ F-1069 высевали в 4 качалочные колбы вместимостью 750 мл, содержащие по 100 мл среды ММ для культивирования, выращивали на качалке (240-250 об/мин, амплитуда 5 см) при температуре 37°С в течение 4 дней. Затем в ростовую среду вносили прогестерон в растворе диметилсульфоксида до финальной концентрации 1 г/л, при этом концентрация растворителя составляла 4% (об.). Трансформацию проводили в течение 14 ч в тех же условиях.Option 1. Spore suspension of the strain A. nidulans VKPM F-1069 were sown in 4 rocking flasks with a capacity of 750 ml, containing 100 ml of MM medium for cultivation, were grown on a rocking chair (240-250 rpm, amplitude 5 cm) at a temperature of 37 ° C for 4 days. Then progesterone was introduced into the growth medium in dimethyl sulfoxide solution to a final concentration of 1 g / l, while the solvent concentration was 4% (vol.). Transformation was carried out for 14 hours under the same conditions.

Для извлечения продуктов трансформации прогестерона по окончании инкубации мицелий отфильтровывали, промывали дихлорметаном на фильтре. Культуральную жидкость экстрагировали трижды порциями дихлорметана равного объема. Стероиды, адсорбированные на мицелии, извлекали ре-мацерацией (трижды), используя метанол и выдерживая без перемешивания в течение 4 ч. Метанол упаривали, остаток, содержащий воду, экстрагировали дихлорметаном трижды. Объединенные экстракты культуральной жидкости и мицелия промывали водой, сушили Na2SO4, осветляли активированным углем и упаривали до прекращения погона. Остаток растворяли в 5 мл смеси этилацетата и дихлорметана (1:2) и хроматографировали на колонке, используя 30-кратное количество силикагеля к весу остатка после упаривания. В качестве элюэнта использовали смесь дихлорметана и ацетона (от 0 до 25 об.% ацетона), для контроля элюции использовали ТСХ. Одинаковые по составу стероидов фракции элюата объединяли и упаривали досуха. Кристаллизующийся остаток растирали с эфиром, осадок отфильтровывали, сушили до постоянного веса в вакуум-сушильном шкафу. Хроматографическую чистоту соединений подтверждали с помощью ТСХ и ЯМР-спектроскопии.To extract progesterone transformation products at the end of incubation, the mycelium was filtered, washed with dichloromethane on the filter. The culture fluid was extracted three times with equal volumes of dichloromethane. Steroids adsorbed on the mycelium were recovered by re-maceration (three times) using methanol and kept without stirring for 4 hours. Methanol was evaporated, the residue containing water was extracted with dichloromethane three times. The combined extracts of the culture liquid and mycelium were washed with water, dried with Na 2 SO 4 , lightened with activated charcoal and evaporated until cessation stopped. The residue was dissolved in 5 ml of a mixture of ethyl acetate and dichloromethane (1: 2) and chromatographed on a column using a 30-fold amount of silica gel to the weight of the residue after evaporation. A mixture of dichloromethane and acetone (from 0 to 25 vol.% Of acetone) was used as eluent, TLC was used to control the elution. Fractions of the eluate of the same composition of steroids were combined and evaporated to dryness. The residue crystallized was triturated with ether, the precipitate was filtered off, dried to constant weight in a vacuum oven. Chromatographic purity of the compounds was confirmed by TLC and NMR spectroscopy.

Из 400 мг прогестерона, загруженного на трансформацию, получили 394 мг прогестерона (98,5%) и 3,8 мг 11α-ацетоксипрогестерона с выходом 0,8% на загруженный субстрат (53,5% на конвертированный субстрат). По данным ТСХ анализа другие продукты трансформации отсутствуют.Of the 400 mg of progesterone loaded on the transformation, 394 mg of progesterone (98.5%) and 3.8 mg of 11α-acetoxyprogesterone were obtained in a yield of 0.8% on the loaded substrate (53.5% on the converted substrate). According to TLC analysis, there are no other transformation products.

Вариант 2. Биотрансформацию прогестерона штаммом A. nidulans 031 (argB-; pyrG-) проводили в условиях варианта 1.Option 2. Progesterone biotransformation by A. nidulans 031 strain (argB - ; pyrG - ) was performed under conditions of option 1.

Из 400 мг прогестерона, загруженного на трансформацию, получили 390 мг прогестерона (97,5%) и 7,4 мг 11α-ацетоксипрогестерона с выходом 1,6% на загруженный субстрат (62,5% на конвертированный субстрат). По данным ТСХ анализа другие продукты трансформации отсутствуют.Of the 400 mg of progesterone loaded on the transformation, 390 mg of progesterone (97.5%) and 7.4 mg of 11α-acetoxyprogesterone were obtained with a yield of 1.6% per loaded substrate (62.5% per converted substrate). According to TLC analysis, there are no other transformation products.

Пример 3. Биокаталитическое ацетилирование 11α-гидроксипрогестерона штаммами A. nidulansExample 3. Biocatalytic acetylation of 11α-hydroxyprogesterone with A. nidulans strains

Вариант 1. Споровую суспензию штамма A. nidulans ВКПМ F-1069 высевали в 4 качалочные колбы вместимостью 750 мл, содержащие по 100 мл среды ММ для культивирования, выращивали на качалке (240-250 об/мин, амплитуда 5 см) при температуре 37°С в течение 4 дней. Затем в ростовую среду вносили 11α-гидроксипрогестерон в растворе диметилсульфоксида до финальной концентрации 0,5 г/л, при этом концентрация растворителя составляла 2% (об.). Трансформацию проводили в течение 23 ч в тех же условиях.Option 1. Spore suspension of the strain A. nidulans VKPM F-1069 were sown in 4 rocking flasks with a capacity of 750 ml, containing 100 ml of MM medium for cultivation, were grown on a rocking chair (240-250 rpm, amplitude 5 cm) at a temperature of 37 ° C for 4 days. Then, 11α-hydroxyprogesterone in dimethyl sulfoxide solution was added to the growth medium to a final concentration of 0.5 g / l, while the solvent concentration was 2% (vol.). Transformation was carried out for 23 hours under the same conditions.

Для извлечения продуктов трансформации 11α-гидроксипрогестерона по окончании инкубации мицелий отфильтровывали, промывали дихлорметаном на фильтре. Культуральную жидкость экстрагировали трижды порциями дихлорметана равного объема. Стероиды, адсорбированные на мицелии, извлекали ре-мацерацией (трижды), используя метанол и выдерживая без перемешивания в течение 4 ч. Метанол упаривали, остаток, содержащий воду, экстрагировали дихлорметаном трижды. Объединенные экстракты культуральной жидкости и мицелия промывали водой, сушили Na2SO4, осветляли активированным углем и упаривали до прекращения погона. Остаток растворяли в 5 мл смеси этилацетата и дихлорметана (1:2) и хроматографировали на колонке, используя 30-кратное количество силикагеля к весу остатка после упаривания. В качестве элюэнта использовали смесь дихлорметана и ацетона (от 0 до 20 об.% ацетона), для контроля элюции использовали ТСХ. Одинаковые по составу стероидов фракции элюата объединяли и упаривали досуха. Кристаллизующийся остаток растирали с эфиром, осадок отфильтровывали, сушили до постоянного веса в вакуум-сушильном шкафу. Хроматографическую чистоту соединений подтверждали с помощью ТСХ и ЯМР-спектроскопии.To extract the transformation products of 11α-hydroxyprogesterone at the end of the incubation, the mycelium was filtered, washed with dichloromethane on the filter. The culture fluid was extracted three times with equal volumes of dichloromethane. Steroids adsorbed on the mycelium were recovered by re-maceration (three times) using methanol and kept without stirring for 4 hours. Methanol was evaporated, the residue containing water was extracted with dichloromethane three times. The combined extracts of the culture liquid and mycelium were washed with water, dried with Na 2 SO 4 , lightened with activated charcoal and evaporated until cessation stopped. The residue was dissolved in 5 ml of a mixture of ethyl acetate and dichloromethane (1: 2) and chromatographed on a column using a 30-fold amount of silica gel to the weight of the residue after evaporation. A mixture of dichloromethane and acetone (from 0 to 20 vol.% Of acetone) was used as eluent, TLC was used to control the elution. Fractions of the eluate of the same composition of steroids were combined and evaporated to dryness. The residue crystallized was triturated with ether, the precipitate was filtered off, dried to constant weight in a vacuum oven. Chromatographic purity of the compounds was confirmed by TLC and NMR spectroscopy.

Из 200 мг 11α-гидроксипрогестерона, загруженного на трансформацию, получили 178 мг 11α-гидроксипрогестерона (88%) и 19,75 мг 11α-ацетоксипрогестерона с выходом 8,76% на загруженный субстрат (79,64% на конвертированный субстрат). По данным ТСХ анализа другие продукты трансформации отсутствуют.Out of 200 mg of 11α-hydroxyprogesterone loaded for transformation, 178 mg of 11α-hydroxyprogesterone (88%) and 19.75 mg of 11α-acetoxyprogesterone were obtained with a yield of 8.76% on the loaded substrate (79.64% on the converted substrate). According to TLC analysis, there are no other transformation products.

Вариант 2. Битрансформацию 11α-гидроксипрогестерона штаммом A. nidulans 031 (argB-, pyrG-) проводили в условиях варианта 1.Option 2. Bit transformation of 11α-hydroxyprogesterone with A. nidulans 031 strain (argB - , pyrG - ) was performed under conditions of variant 1.

Из 200 мг 11α-гидроксипрогестерона, загруженного на трансформацию, получили 170 мг 11α-гидроксипрогестерона (85%) и 31,6 мг 11α-ацетоксипрогестерона с выходом 14,02% на загруженный субстрат (93,45% на конвертированный субстрат). По данным ТСХ анализа другие продукты трансформации отсутствуют.Of the 200 mg of 11α-hydroxyprogesterone loaded on the transformation, 170 mg of 11α-hydroxyprogesterone (85%) and 31.6 mg of 11α-acetoxyprogesterone were obtained with a yield of 14.02% on the loaded substrate (93.45% on the converted substrate). According to TLC analysis, there are no other transformation products.

ЯМР-спектры полученных образцов 11α-ацетоксипрогестерона идентичны спектрам стандартного образца и спектрам образца, полученного химическим методом ацетилирования 11α-гидроксипрогестерона.The NMR spectra of the obtained samples of 11α-acetoxyprogesterone are identical to the spectra of the standard sample and the spectra of the sample obtained by the chemical method of acetylation of 11α-hydroxyprogesterone.

Пример 4. Получение 11α-ацетоксипрогестерона химическим методомExample 4. Obtaining 11α-acetoxyprogesterone by chemical method

К раствору 34 мг 11α-гидроксипрогестерона в 0,2 мл уксусного ангидрида добавили 1 каплю 60% хлорной кислоты. Реакционную массу выдерживали при комнатной температуре в течение 1 ч. По окончании реакции реакционную массу добавляли по каплям в 5 мл воды, содержащей 1 мл 25% раствора аммиака (рН ~7.5). Перемешивали 30 мин., затем реакционную массу экстрагировали дихлорметаном трижды, экстракт промыли водой до нейтральной реакции, упарили досуха. Получили 39 мг остатка, из которого препаративной хроматографией извлекли 27 мг 11α-ацетоксипрогестерона с выходом 70,45%. Т.пл. 173-174°С (лит.Т.пл. 176-177°С [D.H. Peterson, Н.С. Murray, S.H. Eppstein, L.M. Reineke, A. Weintraub, P.D. Meister, and H.M. Leigh. Microbiological Transformations of Steroids. I. Introduction of Oxygen at Carbon-11 of Progesterone. J. Am. Chem. Soc, 1952, Vol. 74 (23), 5933-5936]To a solution of 34 mg of 11α-hydroxyprogesterone in 0.2 ml of acetic anhydride was added 1 drop of 60% perchloric acid. The reaction mass was kept at room temperature for 1 hour. At the end of the reaction, the reaction mass was added dropwise to 5 ml of water containing 1 ml of 25% ammonia solution (pH ~ 7.5). Stirred for 30 minutes, then the reaction mass was extracted with dichloromethane three times, the extract was washed with water until neutral, evaporated to dryness. 39 mg of residue was obtained, from which 27 mg of 11α-acetoxyprogesterone was recovered by preparative chromatography in 70.45% yield. M.p. 173-174 ° C (lit. T.p. 176-177 ° C [DH Peterson, NS Murray, SH Eppstein, LM Reineke, A. Weintraub, PD Meister, and HM Leigh. Microbiological Transformations of Steroids. I Carbon-11 of Progesterone, J. Am. Chem. Soc., 1952, Vol. 74 (23), 5933-5936]

Характеристика продуктов биотрансформации 11α-Гидроксипрогестерон, полученный в условиях общего метода биотрансформации прогестерона штаммом Aspergillus nidulans ВКПМ F-1069 Т.пл. 164-166°С (лит.Т.пл. 164-165°С [K. Yildirim, and A. Kuru. Biotransformation of some steroids by Aspergillus candidus. Journal of Chemical Research, 2015. Vol. 39(9), 546-549]). M.w. 330.46.The characteristics of the products of biotransformation 11α-Hydroxyprogesterone, obtained in terms of the general method of biotransformation of progesterone by the strain Aspergillus nidulans VKPM F-1069 m. 164-166 ° C (lit. T.pl. 164-165 ° C [K. Yildirim, and A. Kuru. Biotransformation of some steroids by Aspergillus candidus. Journal of Chemical Research, 2015. Vol. 39 (9), 546 -549]). M.w. 330.46.

Масс-спектр высокого разрешения C21H30O3 (m/z): рассчитано для [М+Н]+331.2268, найдено 331.2264; рассчитано для [M+Na]+353.2087, найдено 353.2088.High resolution mass spectrum C 21 H 30 O 3 (m / z): calculated for [M + H] + 331.2268, found 331.2264; calculated for [M + Na] + 353.2087, found 353.2088.

1Н-ЯМР (400 МГц, CDCl3): 5.73 (с, 1Н СН-4), 4.04 (ддд (псевдо-дт), 1Н, 3J11,9=10.3 Гц, 3J11,12α 4.8 Гц, 3J11,12β 4.6 Гц, СН-11), 2.66 (дт, 1H, 2J, 13.7 Гц, 3J1β, 2 4.4 Гц, СН-1β), 2,55 (дд (псевдо-т), 1H, 3J17, 16α 8.7 Гц, 3J17, 16β 9.1 Гц, СН-17), 2.48-2.26 (м, 5Н, СН2-2 & СН2-6 & СН-12β), 2.22-2.10 (м, 1Н, СН-16β), 2.13 (с, 3Н, СН3-21), 2.02 (тд, 1H, 2J1a, 1b 13.7 Гц, 3J1α, 2, 4.5 Гц, СН-1α), 1.87-1.81 (м, 1H, СН-7β), 1.78-1.64 (м, 3Н, СН-8 & СН-15α & СН-16α), 1.58-1.47 (2Н (т, 1Н, 3J12α, 12β 11.3 Гц, СН-12α), 1.31 (с, 3Н, СН3-19), 1.29-1.20 (м, 2Н, СН-12α & СН-14), 1.14 (т, 1Н, 3J9, 8, 10.3 Гц, СН-9), 1.14-1.04 (2×ддд, 2Н, 3J7α, 7β 13.1 Гц, 3J7,6 13.0 Гц, 3J7α, 8 3.8 Гц, СН2-7α), 0.69 (с, 3Н, СН3-18) (фиг. 3). 1 H-NMR (400 MHz, CDCl 3 ): 5.73 (s, 1H CH-4), 4.04 (ddd (pseudo-dt), 1H, 3 J 11.9 = 10.3 Hz, 3 J 11.12 α 4.8 Hz, 3 J 11.12β 4.6 Hz, CH-11), 2.66 (dt, 1H, 2 J , 13.7 Hz, 3 J 1β, 2 4.4 Hz, CH-1β), 2.55 (dd (pseudo-t) , 1H, 3 J 17, 16α 8.7 Hz, 3 J 17, 16β 9.1 Hz, CH-17), 2.48-2.26 (m, 5H, CH 2 -2 & CH 2 -6 & CH-12β), 2.22-2.10 (m, 1H, CH-16β), 2.13 (s, 3H, CH 3 -21), 2.02 (td, 1H, 2 J 1a, 1b 13.7 Hz, 3 J 1α, 2 , 4.5 Hz, CH-1α), 1.87-1.81 (m, 1H, CH-7β), 1.78-1.64 (m, 3H, CH-8 & CH-15α & CH-16α), 1.58-1.47 (2H (t, 1H, 3 J 12α, 12β 11.3 Hz, CH-12α), 1.31 (s, 3H, CH 3 -19), 1.29-1.20 (m, 2H, CH-12α & CH-14), 1.14 (t, 1H, 3 J 9, 8 , 10.3 Hz , CH-9), 1.14-1.04 (2 × ddd, 2H, 3 J 7α, 7β 13.1 Hz, 3 J 7 , 6 13.0 Hz, 3 J 7α, 8 3.8 Hz, CH 2 -7α), 0.69 (s, 3H, CH 3 -18) (Fig. 3).

Спектры идентичны спектрам стандартного образца и образца, полученного в условиях общего метода биотрансформации прогестерона штаммом A. nidulans 031 (argB-; pyrG-).The spectra are identical to the spectra of the standard sample and the sample obtained under the conditions of the general method of biotransformation of progesterone by the strain A. nidulans 031 (argB - ; pyrG - ).

11α-Ацетоксипрогестерон. полученный в условиях общего метода биотрансформации прогестерона штаммом Aspergillus nidulans ВКПМ F-1069 Т.пл. 172-174°С (лит.Т.пл. 176-177°С [D.H. Peterson, Н.С.Murray, S.H. Eppstein, L.M. Reineke, A. Weintraub, P.D. Meister, and H.M. Leigh. Microbiological Transformations of Steroids. I. Introduction of Oxygen at Carbon-11 of Progesterone. J. Am. Chem. Soc, 1952, Vol. 74 (23), 5933-5936]. M.w. 372.5;11α-Acetoxyprogesterone. obtained in terms of the general method of biotransformation of progesterone by a strain of Aspergillus nidulans VKPM F-1069 So pl. 172-174 ° C (lit. T.pl. 176-177 ° C [DH Peterson, N.S. Murray, SH Eppstein, LM Reineke, A. Weintraub, PD Meister, and HM Leigh. Microbiological Transformations of Steroids. I .Program of Progesterone, J. Am. Chem. Soc., 1952, Vol. 74 (23), 5933-5936]. Mw 372.5;

Масс-спектр высокого разрешения C23H32O4 (m/z): рассчитано для [М+Н]+373.2373, найдено 373.2361; рассчитано для [M+Na]+395.2193, найдено 395.2183.High resolution mass spectrum C 23 H 32 O 4 (m / z): calculated for [M + H] + 373.2373, found 373.2361; calculated for [M + Na] + 395.2193, found 395.2183.

1Н-ЯМР (300 МГц, DMSO-d6): 5.67 (с, 1Н СН-4), 5.14 (дт, 1Н, 3J11, 9=10.6 Гц, 3J11, 10 5.0 Гц, СН-11), 2,62 (дд (псевдо-т), 1Н, 3J17, 16α 8.9 Гц, 3J17,16β 9.1 Гц, СН-17), 2.47-2.35 (м, 2Н, СН-2β & СН-6β),2.29-2.12 (м, 3Н, СН-6α & СН-12β & СН-2α), 2.10-1.96 (м, 1Н, СН-16β), 2.05 (с, 3Н, СН3-21), 2.01 (с, 3Н, СН3-23), 1.91-1.78 (м, 3Н, СН2-1 & СН-7α), 1.72-1.60 (м, 3Н, СН-16α & СН-15α & СН-8), 1.50 (т, 1Н, 3J12α, 12β 11.6 Гц, СН-12α), 1.44 (т, 1H, 3J9, 8 10.6 Гц, СН-9), 1.39-1.29 (ддд, 1Н, 3J14, 8 10.7 Гц, 3J14, 15β 6.4 Гц, 3J14, 15α 5.6 Гц, СН-14) 1.29 (уш.с, 4Н, СН3-19 & СН-15β), 1.17-1.00 (2×ддд, 2Н, 3J7α, 7β 12.6 Гц, 3J7,~3J7, 6β 12.2 Гц, 3J7α,8 3.1 Гц, СН2-7), 0.64 (с, 3Н, СН3-18). 1 H-NMR (300 MHz, DMSO-d 6 ): 5.67 (s, 1H CH-4), 5.14 (dt, 1H, 3 J 11, 9 = 10.6 Hz, 3 J 11, 10 5.0 Hz, CH-11 ), 2.62 (dd (pseudo-t), 1H, 3 J 17 , 16α 8.9 Hz, 3 J 17.16β 9.1 Hz, CH-17), 2.47-2.35 (m, 2H, CH-2β & CH- 6β), 2.29-2.12 (m, 3H, CH-6α & CH-12β & CH-2α), 2.10-1.96 (m, 1H, CH-16β), 2.05 (s, 3H, CH 3 -21), 2.01 (s, 3H, CH 3 -23), 1.91-1.78 (m, 3H, CH 2 -1 & CH-7α), 1.72-1.60 (m, 3H, CH-16α & CH-15α & CH-8), 1.50 (t, 1H, 3 J 12α, 12β 11.6 Hz, CH-12α), 1.44 (t, 1H, 3 J 9, 8 10.6 Hz, CH-9), 1.39-1.29 (ddd, 1H, 3 J 14, 8 10.7 Hz, 3 J 14, 15β 6.4 Hz, 3 J 14, 15α 5.6 Hz, CH-14) 1.29 (broad s, 4H, CH 3 -19 & CH-15β), 1.17-1.00 (2 × ddd, 2H, 3 J 7α, 7β 12.6 Hz, 3 J 7 , ~ 3 J 7, 6β 12.2 Hz, 3 J 7α, 8 3.1 Hz, CH 2 -7), 0.64 (s, 3H, CH 3 -18).

13С-ЯМР (300 МГц, DMSO-d6): 208.61 (с, СО-20), 199.40 (с, СО-3), 170.14 (с, С-5), 170.10 (с, СО-22) 124.48 (с, СН-4), 70.58 (с, СНОН-11), 62.30 (с, СН-17), 55.34 (с, СН-9), 54.39 (с, СН-14), 45.02 (с, СН2-12), 43.54 (с, С-13), 39.75 (с, С-10), 36.79 (с, СН2-1), 34.72 (с, СН-8) 34.19 (с, СН2-2), 33.03 (с, СH2-6), 31.67 (с, СН2-7), 31.37 (с, СН3-21) 30.92 (с, СН3-21), 24.16 (с, СH2-15), 22.96 (с, СН2-16), 22.02 (с, СН3-21), 18.20 (с, СН3-19), 14.24 (с, СН3-18). 13 C-NMR (300 MHz, DMSO-d 6 ): 208.61 (s, CO-20), 199.40 (s, CO-3), 170.14 (s, C-5), 170.10 (s, CO-22) 124.48 (s, CH-4), 70.58 (s, CHON-11), 62.30 (s, CH-17), 55.34 (s, CH-9), 54.39 (s, CH-14), 45.02 (s, CH 2 -12), 43.54 (s, C-13), 39.75 (s, C-10), 36.79 (s, CH 2 -1), 34.72 (s, CH-8) 34.19 (s, CH 2 -2), 33.03 (s, CH 2 -6), 31.67 (s, CH 2 -7), 31.37 (s, CH 3 -21) 30.92 (s, CH 3 -21), 24.16 (s, CH 2 -15), 22.96 (s, CH 2 -16), 22.02 (s, CH 3 -21), 18.20 (s, CH 3 -19), 14.24 (s, CH 3 -18).

Спектры идентичны спектрам стандартного образца, образца, полученного в условиях общего метода биотрансформации прогестерона штаммом A. nidulans 031 (argB-; pyrG-), а также спектрам образцов, полученных методом биокаталитического ацетилирования 11α-гидроксипрогестерона штаммом A. nidulans 031 (argB-; pyrG-) и химическим методом ацетилирования 11α-гидроксипрогестерона.The spectra are identical to the spectra of a standard sample, a sample obtained under the general method of biotransformation of progesterone with A. nidulans 031 strain (argB - ; pyrG - ), and also the spectra of samples obtained by biocatalytic acetylation of 11α-hydroxyprogesterone with A. nidulans 031 strain (argB - ; pyrG - ) and by the chemical method of acetylation of 11α-hydroxyprogesterone.

6β, 11α-Дигидроксипрогестерон, полученный в условиях общего метода биотрансформации прогестерона штаммом Aspergillus nidulans ВКПМ F-1069 Т.пл. 242-244°С (лит.т.пл. 244-246°С [Z. Habibi, M.Yousefi, Sh. Ghanian, M. Mohammadi, S. Ghasemi. Biotransformation of progesterone by Absidia griseolla var. igachii and Rhizomucor pusillus. Steroids, 2012, Vol. 77, p.1446-1449].M.w. 346.46;6β, 11α-Dihydroxyprogesterone, obtained under the general method of biotransformation of progesterone by the strain Aspergillus nidulans VKPM F-1069 m.p. 242-244 ° С (lit.t.pl. 244-246 ° С [Z. Habibi, M. Yousefi, Sh. Ghanian, M. Mohammadi, S. Ghasemi. Biotransformation of progesterone by Absidia griseolla var. Igachii and Rhizomucorus pusillus .Steroids, 2012, Vol. 77, p. 1446-1449] .Mw 346.46;

Масс-спектр высокого разрешения C23H32O4 (m/z): рассчитано для [М+Н]+373.2373, найдено 373.2361; рассчитано для [M+Na]+395.2193, найдено 395.2183.High resolution mass spectrum C 23 H 32 O 4 (m / z): calculated for [M + H] + 373.2373, found 373.2361; calculated for [M + Na] + 395.2193, found 395.2183.

1Н-ЯМР (300 МГц, DMSO-d6): 5.67 (с, 1Н СН-4), 5.14 (дт, 1H, 3J11, 9=10.6 Гц, 3J11, 10 5.0 Гц, СН-11), 2,62 (дд (псевдо-т), 1Н, 3J17, 16α 8.9 Гц, 3J17, 16β 9.1 Гц, СН-17), 2.47-2.35 (м, 2Н, СН-2β & СН-6β),2.29-2.12 (м, 3Н, СН-6α & СН-12β & СН-2α), 2.10-1.96 (м, 1H, СН-16β), 2.05 (с, 3Н, СН3-21), 2.01 (с, 3Н, СН3-23), 1.91-1.78 (м, 3Н, СН2-1 & СН-7α), 1.72-1.60 (м, 3Н, СН-16α & СН-15α & СН-8), 1.50 (т, 1H, 3J12α, 12β П.6 Гц, СН-12α), 1.44 (т, 1H, 3J9, 8 10.6 Гц, СН-9), 1.39-1.29 (ддд, 1Н, 3J14, 8 10.7 Гц, 3J14, 15β 6.4 Гц, 3J14, 15α 5.6 Гц, СН-14) 1.29 (уш.с, 4Н, СН3-19 & СН-15β), 1.17-1.00 (2×ддд, 2Н, 3J7a, 7β 12.6 Гц, 3J7, 6α~3J7, 6β 12.2 Гц, 3J7α, 8 3.1 Гц, СН2-7), 0.64 (с, 3Н, СН3-18). 1 H-NMR (300 MHz, DMSO-d 6 ): 5.67 (s, 1H CH-4), 5.14 (dt, 1H, 3 J 11 , 9 = 10.6 Hz, 3 J 11, 10 5.0 Hz, CH-11 ), 2.62 (dd (pseudo-t), 1H, 3 J 17, 16α 8.9 Hz, 3 J 17, 16β 9.1 Hz, CH-17), 2.47-2.35 (m, 2H, CH-2β & CH- 6β), 2.29-2.12 (m, 3H, CH-6α & CH-12β & CH-2α), 2.10-1.96 (m, 1H, CH-16β), 2.05 (s, 3H, CH 3 -21), 2.01 (s, 3H, CH 3 -23), 1.91-1.78 (m, 3H, CH 2 -1 & CH-7α), 1.72-1.60 (m, 3H, CH-16α & CH-15α & CH-8), 1.50 (t, 1H, 3 J 12α, 12β P.6 Hz, CH-12α), 1.44 (t, 1H, 3 J 9, 8 10.6 Hz, CH-9), 1.39-1.29 (ddd, 1H, 3 J 14, 8 10.7 Hz, 3 J 14, 15β 6.4 Hz, 3 J 14, 15α 5.6 Hz, CH-14) 1.29 (broad s, 4H, CH 3 -19 & CH-15β), 1.17-1.00 (2 × ddd, 2H, 3 J 7a, 7β 12.6 Hz, 3 J 7, 6α ~ 3 J 7, 6β 12.2 Hz, 3 J 7α, 8 3.1 Hz, CH 2 -7), 0.64 (s, 3H, CH 3 -18 ).

13С-ЯМР (300 МГц, DMSO-d6): 208.61 (с, СО-20), 199.40 (с, СО-3), 170.14 (с, С-5), 170.10 (с, СО-22) 124.48 (с, СН-4), 70.58 (с, СНОН-11), 62.30 (с, СН-17), 55.34 (с, СН-9), 54.39 (с, СН-14), 45.02 (с, СН2-12), 43.54 (с, С-13), 39.75 (с, С-10), 36.79 (с, СН2-1), 34.72 (с, СН-8) 34.19 (с, СН2-2), 33.03 (с, СН2-6), 31.67 (с, СН2-7), 31.37 (с, СН3-21) 30.92 (с, СН3-21), 24.16 (с, СН2-15), 22.96 (с, СН2-16), 22.02 (с, СН3-21), 18.20 (с, СН3-19), 14.24 (с, СН3-18). 13 C-NMR (300 MHz, DMSO-d 6 ): 208.61 (s, CO-20), 199.40 (s, CO-3), 170.14 (s, C-5), 170.10 (s, CO-22) 124.48 (s, CH-4), 70.58 (s, CHON-11), 62.30 (s, CH-17), 55.34 (s, CH-9), 54.39 (s, CH-14), 45.02 (s, CH 2 -12), 43.54 (s, C-13), 39.75 (s, C-10), 36.79 (s, CH 2 -1), 34.72 (s, CH-8) 34.19 (s, CH 2 -2), 33.03 (s, CH 2 -6), 31.67 (s, CH 2 -7), 31.37 (s, CH 3 -21) 30.92 (s, CH 3 -21), 24.16 (s, CH 2 -15), 22.96 (s, CH 2 -16), 22.02 (s, CH 3 -21), 18.20 (s, CH 3 -19), 14.24 (s, CH 3 -18).

Спектры идентичны спектрам образцов, полученных в условиях общего метода биотрансформации прогестерона штаммом A. nidulans 031 (argB-; pyrG-).The spectra are identical to the spectra of samples obtained under the conditions of the general method of biotransformation of progesterone by the strain A. nidulans 031 (argB - ; pyrG - ).

Figure 00000007
Figure 00000008
Figure 00000007
Figure 00000008

Таким образом, раскрыто применение грибов A. nidulans, обладающих стероид-11α-гидроксилирующей активностью и способных конвертировать прогестерон в 11α-гидроксипрогестерон, для получения 11α-ацетоксипрогестерона из уровня техники не известно. При этом этерификация 11α-гидроксипрогестерона грибом A. nidulans с образованием 11α-ацетоксипрогестерона является вторым этапом процесса трансформиции прогестерона и может быть осуществлена как с выделением, так и без выделения 11α-гидроксипрогестерона из культуральной жидкости, образованного на первом этапе биотрансформации.Thus, the use of A. nidulans fungi with steroid-11α-hydroxylation activity and capable of converting progesterone to 11α-hydroxyprogesterone to produce 11α-acetoxyprogesterone is not known in the prior art. At the same time, esterification of 11α-hydroxyprogesterone by the fungus A. nidulans with the formation of 11α-acetoxyprogesterone is the second stage of the progesterone transformation process and can be carried out with or without 11α-hydroxyprogesterone from the culture fluid formed in the first stage of biotransformation.

Claims (1)

Применение штамма Aspergillus nidulans, депонированного во Всероссийской Коллекции Промышленных Микроорганизмов (ВКПМ) под регистрационным номером F-1069 или штамма Aspergillus nidulans 031 (argB-; pyrG-), являющегося ауксотрофом штамма Aspergillus nidulans ВКПМ F-1069, несущего мутации argB2 и pyrG89, в качестве биокатализатора для получения 11α-ацетоксипрогестерона.The use of the Aspergillus nidulans strain deposited in the All-Russian Collection of Industrial Microorganisms (VKPM) under the registration number F-1069 or the Aspergillus nidulans 031 strain (argB - ; pyrG - ), which is an auxotroph of the Aspergillus nidulans strain VKPM F-1069, is not a member of the Russian Federation, and the reason for the Aspergillus nidulans strain of the Aspergillus nidulans 031 strain is as auxotrophic of Aspergillus nidulans 031 strain (Asg). as a biocatalyst for obtaining 11α-acetoxyprogesterone.
RU2017138536A 2017-11-07 2017-11-07 BIOCATALYST FOR PRODUCING 11α-ACETOXYPROGESTERONE RU2692932C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2017138536A RU2692932C2 (en) 2017-11-07 2017-11-07 BIOCATALYST FOR PRODUCING 11α-ACETOXYPROGESTERONE

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2017138536A RU2692932C2 (en) 2017-11-07 2017-11-07 BIOCATALYST FOR PRODUCING 11α-ACETOXYPROGESTERONE

Publications (3)

Publication Number Publication Date
RU2017138536A RU2017138536A (en) 2019-05-08
RU2017138536A3 RU2017138536A3 (en) 2019-05-08
RU2692932C2 true RU2692932C2 (en) 2019-06-28

Family

ID=66430123

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2017138536A RU2692932C2 (en) 2017-11-07 2017-11-07 BIOCATALYST FOR PRODUCING 11α-ACETOXYPROGESTERONE

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2692932C2 (en)

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2524617C2 (en) * 2007-02-06 2014-07-27 Коламбиа Лэборетериз (Бермуда) Лимитед Progesteron for treatment and prevention of spontaneous preterm birth

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2524617C2 (en) * 2007-02-06 2014-07-27 Коламбиа Лэборетериз (Бермуда) Лимитед Progesteron for treatment and prevention of spontaneous preterm birth

Non-Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
A.H. EI-RIFAI, K.M. CHANEM, Some physiological relations of progesterone conversion by Aspergillus nidulans, Egyptian journal of microbiology, 1987, v.22(2), p. 327-338. *
A.H. EI-RIFAI, K.M. CHANEM, Some physiological relations of progesterone conversion by Aspergillus nidulans, Egyptian journal of microbiology, 1987, v.22(2), p. 327-338. T.K. DUTTA, T.B. SAMANTA, Bioconversion of progesterone by the activated immobilized conidia of Aspergillus ochraceus TS, Current Microbilogy, 1999, v.39 (6), p. 309-312. M.J. HENRY, H.D. SISLER, Effects of sterol biosynthesis - inhibiting (SBI) fungicides on cytochrome P-450 oxygenations in fungi, Pesticide Biochemistry and physiology, 1984, v.22(3), p. 262-275. P.SOMAL, C.L. CHOPRA, Microbial conversion of steroids. III: 11a- hydroxylation by fungal mycelium, Applied Microbiology, 1985, v. 21(5), p. 267-269. *
M.J. HENRY, H.D. SISLER, Effects of sterol biosynthesis - inhibiting (SBI) fungicides on cytochrome P-450 oxygenations in fungi, Pesticide Biochemistry and physiology, 1984, v.22(3), p. 262-275. *
P.SOMAL, C.L. CHOPRA, Microbial conversion of steroids. III: 11a- hydroxylation by fungal mycelium, Applied Microbiology, 1985, v. 21(5), p. 267-269. *
T.K. DUTTA, T.B. SAMANTA, Bioconversion of progesterone by the activated immobilized conidia of Aspergillus ochraceus TS, Current Microbilogy, 1999, v.39 (6), p. 309-312. *

Also Published As

Publication number Publication date
RU2017138536A (en) 2019-05-08
RU2017138536A3 (en) 2019-05-08

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4435327A (en) 3β,7β,15α-Trihydroxy-5-androsten-17-one, its 3,15-dipivalate, and their preparation
Bartmańska et al. Steroids’ transformations in Penicillium notatum culture
Wilson et al. Steroid transformations with Fusarium oxysporum var. cubense and Colletotrichum musae
Savinova et al. Biotransformation of progesterone by Aspergillus nidulans VKPM F-1069 (wild type)
Wu et al. Efficient hydroxylation of functionalized steroids by Colletotrichum lini ST-1
US5834452A (en) 1- or 6-hydroxylated steroids
Faramarzi et al. Formation of hydroxysteroid derivatives from androst-4-en-3, 17-dione by the filamentous fungus Mucor racemosus
Faramarzi et al. Metabolism of androst-4-en-3, 17-dione by the filamentous fungus Neurospora crassa
Bartmańska et al. Transformation of steroids by Trichoderma hamatum
Brzezowska et al. Biotransformation XXXIX. Metabolism of testosterone, androstenedione, progesterone and testosterone derivatives in Absidia coerulea culture
GB2123833A (en) Steroid 1,2-dehydrogenation using dried microbial cells
RU2692932C2 (en) BIOCATALYST FOR PRODUCING 11α-ACETOXYPROGESTERONE
AKAO et al. 3β-Hydroxysterod Dehydrogenase of Ruminococcus sp. from Human Intestinal Bacteria
Lacroix et al. Microbial models of drug metabolism: microbial transformations of trimegestone®(RU27987), a 3-Keto-Δ4, 9 (10)-19-norsteroid drug
Zhang et al. Transformation of prednisolone to a 20β-hydroxy prednisolone compound by Streptomyces roseochromogenes TS79
Madyastha et al. Transformation of dehydroepiandrosterone and pregnenolone by Mucor piriformis
Huszcza et al. Transformations of testosterone and related steroids in Absidia glauca culture
HU194318B (en) Process for the delta 1-dehydrogenation of steroids in the presence of materials relieving from toxic kinds of oxygen
RU2677332C1 (en) Recombinant strain of filamentous fungus aspergillus nidulans and its use for progesterone 11α-hydroxylation and for acetylation of 11α-hydroxyprogesterone
IE42168B1 (en) New 1-hydroxy-steroids
Savinova et al. Biotransformation of progesterone by the ascomycete Aspergillus niger N402
RU2731712C2 (en) Microbiological method of producing 11α-acetoxyprogesterone
Ambrus et al. Microbial transformation of β-sitosterol and stigmasterol into 26-oxygenated derivatives
Dovbnya et al. Microbial side-chain degradation of ergosterol and its 3-substituted derivatives: a new route for obtaining of deltanoids
Madyastha et al. Transformation of 16-dehydroprogesterone and 17α-hydroxyprogesterone by Mucor piriformis