RU2681109C1 - Method of stimulation of reparative processes in the implantation of superlight polypropylene endoprotesis into the abdominal wall - Google Patents
Method of stimulation of reparative processes in the implantation of superlight polypropylene endoprotesis into the abdominal wall Download PDFInfo
- Publication number
- RU2681109C1 RU2681109C1 RU2018112721A RU2018112721A RU2681109C1 RU 2681109 C1 RU2681109 C1 RU 2681109C1 RU 2018112721 A RU2018112721 A RU 2018112721A RU 2018112721 A RU2018112721 A RU 2018112721A RU 2681109 C1 RU2681109 C1 RU 2681109C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- endoprosthesis
- abdominal wall
- autoplasma
- platelets
- implantation
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 34
- 210000003815 abdominal wall Anatomy 0.000 title claims abstract description 19
- 238000002513 implantation Methods 0.000 title claims abstract description 16
- 230000008569 process Effects 0.000 title claims abstract description 13
- 239000004743 Polypropylene Substances 0.000 title claims description 10
- -1 polypropylene Polymers 0.000 title claims description 10
- 229920001155 polypropylene Polymers 0.000 title claims description 10
- 230000000638 stimulation Effects 0.000 title description 3
- 206010019909 Hernia Diseases 0.000 claims abstract description 3
- 230000004936 stimulating effect Effects 0.000 claims description 3
- 239000004033 plastic Substances 0.000 claims 1
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 abstract description 20
- 210000002808 connective tissue Anatomy 0.000 abstract description 10
- 239000002775 capsule Substances 0.000 abstract description 9
- 239000003814 drug Substances 0.000 abstract description 6
- 206010061218 Inflammation Diseases 0.000 abstract description 2
- 230000008859 change Effects 0.000 abstract description 2
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract description 2
- 230000004054 inflammatory process Effects 0.000 abstract description 2
- 230000005226 mechanical processes and functions Effects 0.000 abstract description 2
- 230000002062 proliferating effect Effects 0.000 abstract description 2
- 230000008439 repair process Effects 0.000 abstract description 2
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract 1
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 19
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 12
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 10
- 210000002381 plasma Anatomy 0.000 description 10
- 241000283973 Oryctolagus cuniculus Species 0.000 description 8
- 239000000835 fiber Substances 0.000 description 7
- 239000000463 material Substances 0.000 description 7
- 210000003491 skin Anatomy 0.000 description 7
- WZUVPPKBWHMQCE-UHFFFAOYSA-N Haematoxylin Chemical compound C12=CC(O)=C(O)C=C2CC2(O)C1C1=CC=C(O)C(O)=C1OC2 WZUVPPKBWHMQCE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 6
- 206010033675 panniculitis Diseases 0.000 description 6
- 210000004304 subcutaneous tissue Anatomy 0.000 description 6
- 206010052428 Wound Diseases 0.000 description 5
- 208000027418 Wounds and injury Diseases 0.000 description 5
- 238000010171 animal model Methods 0.000 description 5
- 235000019441 ethanol Nutrition 0.000 description 5
- 210000002950 fibroblast Anatomy 0.000 description 4
- 238000001000 micrograph Methods 0.000 description 4
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 4
- 210000003462 vein Anatomy 0.000 description 4
- LFHSNLRTGGKKRT-UHFFFAOYSA-N 3-iodopyran-2-one Chemical compound IC1=CC=COC1=O LFHSNLRTGGKKRT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- UXVMQQNJUSDDNG-UHFFFAOYSA-L Calcium chloride Chemical compound [Cl-].[Cl-].[Ca+2] UXVMQQNJUSDDNG-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 3
- 102000008186 Collagen Human genes 0.000 description 3
- 108010035532 Collagen Proteins 0.000 description 3
- 210000001015 abdomen Anatomy 0.000 description 3
- 230000001154 acute effect Effects 0.000 description 3
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 3
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 3
- 239000001110 calcium chloride Substances 0.000 description 3
- 229910001628 calcium chloride Inorganic materials 0.000 description 3
- 238000000576 coating method Methods 0.000 description 3
- 229920001436 collagen Polymers 0.000 description 3
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 3
- YQGOJNYOYNNSMM-UHFFFAOYSA-N eosin Chemical compound [Na+].OC(=O)C1=CC=CC=C1C1=C2C=C(Br)C(=O)C(Br)=C2OC2=C(Br)C(O)=C(Br)C=C21 YQGOJNYOYNNSMM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 238000002695 general anesthesia Methods 0.000 description 3
- 239000003102 growth factor Substances 0.000 description 3
- 230000023597 hemostasis Effects 0.000 description 3
- 210000004061 pubic symphysis Anatomy 0.000 description 3
- 210000001139 rectus abdominis Anatomy 0.000 description 3
- 238000001356 surgical procedure Methods 0.000 description 3
- 210000002417 xiphoid bone Anatomy 0.000 description 3
- 102000004506 Blood Proteins Human genes 0.000 description 2
- 108010017384 Blood Proteins Proteins 0.000 description 2
- 241000700112 Chinchilla Species 0.000 description 2
- WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N Formaldehyde Chemical compound O=C WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 206010052779 Transplant rejections Diseases 0.000 description 2
- 230000002421 anti-septic effect Effects 0.000 description 2
- 229940064004 antiseptic throat preparations Drugs 0.000 description 2
- 238000004500 asepsis Methods 0.000 description 2
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 2
- 239000011248 coating agent Substances 0.000 description 2
- 210000004207 dermis Anatomy 0.000 description 2
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 2
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 2
- 210000000630 fibrocyte Anatomy 0.000 description 2
- 230000035876 healing Effects 0.000 description 2
- 230000036541 health Effects 0.000 description 2
- 239000007943 implant Substances 0.000 description 2
- 210000003205 muscle Anatomy 0.000 description 2
- 210000004623 platelet-rich plasma Anatomy 0.000 description 2
- 230000008929 regeneration Effects 0.000 description 2
- 238000011069 regeneration method Methods 0.000 description 2
- 238000011160 research Methods 0.000 description 2
- 239000013049 sediment Substances 0.000 description 2
- 239000001509 sodium citrate Substances 0.000 description 2
- NLJMYIDDQXHKNR-UHFFFAOYSA-K sodium citrate Chemical compound O.O.[Na+].[Na+].[Na+].[O-]C(=O)CC(O)(CC([O-])=O)C([O-])=O NLJMYIDDQXHKNR-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 2
- 238000005303 weighing Methods 0.000 description 2
- 210000002268 wool Anatomy 0.000 description 2
- 206010002091 Anaesthesia Diseases 0.000 description 1
- BHPQYMZQTOCNFJ-UHFFFAOYSA-N Calcium cation Chemical compound [Ca+2] BHPQYMZQTOCNFJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- KRKNYBCHXYNGOX-UHFFFAOYSA-K Citrate Chemical compound [O-]C(=O)CC(O)(CC([O-])=O)C([O-])=O KRKNYBCHXYNGOX-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 1
- 241000698776 Duma Species 0.000 description 1
- 208000033809 Suppuration Diseases 0.000 description 1
- 208000035091 Ventral Hernia Diseases 0.000 description 1
- 230000037005 anaesthesia Effects 0.000 description 1
- 230000003872 anastomosis Effects 0.000 description 1
- 230000033115 angiogenesis Effects 0.000 description 1
- 239000012620 biological material Substances 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 230000037396 body weight Effects 0.000 description 1
- 229910001424 calcium ion Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000012292 cell migration Effects 0.000 description 1
- 230000004663 cell proliferation Effects 0.000 description 1
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 1
- 230000035605 chemotaxis Effects 0.000 description 1
- 230000005786 degenerative changes Effects 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 1
- 230000004069 differentiation Effects 0.000 description 1
- 210000002615 epidermis Anatomy 0.000 description 1
- 125000001495 ethyl group Chemical group [H]C([H])([H])C([H])([H])* 0.000 description 1
- 230000003328 fibroblastic effect Effects 0.000 description 1
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 1
- 230000035784 germination Effects 0.000 description 1
- 239000008187 granular material Substances 0.000 description 1
- 238000011327 histological measurement Methods 0.000 description 1
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 1
- 238000012544 monitoring process Methods 0.000 description 1
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 description 1
- 230000007935 neutral effect Effects 0.000 description 1
- 239000012188 paraffin wax Substances 0.000 description 1
- 238000006116 polymerization reaction Methods 0.000 description 1
- 229920001184 polypeptide Polymers 0.000 description 1
- 230000002980 postoperative effect Effects 0.000 description 1
- 230000002265 prevention Effects 0.000 description 1
- 102000004196 processed proteins & peptides Human genes 0.000 description 1
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 description 1
- 230000035755 proliferation Effects 0.000 description 1
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 1
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 1
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 1
- 238000010561 standard procedure Methods 0.000 description 1
Images
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61B—DIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
- A61B17/00—Surgical instruments, devices or methods, e.g. tourniquets
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K35/00—Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
- A61K35/12—Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
- A61K35/14—Blood; Artificial blood
- A61K35/16—Blood plasma; Blood serum
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/40—Composite materials, i.e. containing one material dispersed in a matrix of the same or different material
- A61L27/44—Composite materials, i.e. containing one material dispersed in a matrix of the same or different material having a macromolecular matrix
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Public Health (AREA)
- Hematology (AREA)
- Surgery (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Developmental Biology & Embryology (AREA)
- Dermatology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Virology (AREA)
- Immunology (AREA)
- Composite Materials (AREA)
- Materials Engineering (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Oral & Maxillofacial Surgery (AREA)
- Transplantation (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Heart & Thoracic Surgery (AREA)
- Medical Informatics (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Prostheses (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к медицине, а именно к герниологии, и может быть использовано при лечении вентральных грыж.The invention relates to medicine, namely to herniology, and can be used in the treatment of ventral hernias.
Наиболее близким к предложенному способу является способ пластики грыж передней брюшной стенки легким сетчатым материалом (диаметр нити 0,09 мм) с белково-тромбоцитарным покрытием (заявка на патент РФ №2011129719). Данный способ предполагает использование методики покрытия сетчатых материалов белково-тромбоцитарной оболочкой. Цитратную кровь центрифугировали при 2000 об./мин. Полимеризация белков плазмы осуществлялась под воздействием ионов кальция. К полученной плазме добавляли 10% раствор кальция хлорида в соотношении 4 капли на 1 мл. Плазму размещали в стерильную емкость из расчета 0,5-1,0 мл на 1 см2 сетчатого эндопротеза, после этого сетчатый эндопротез пропитывался плазмой, обогащенной тромбоцитами. Покрытая белком сетка помещалась в рану. Связанные с белком плазмы тромбоциты дегранулировали и выделяли факторы роста, стимулирующие процессы регенерации. Через 6-7 дней после имплантации сетка прорастала молодой рыхлой соединительной тканью, а через 2 недели в сетчатом эндопротезе начинала формироваться зрелая соединительная ткань. Основной целью данного способа являлось укрепление легкого сетчатого эндопротеза за счет прорастания его соединительной тканью.Closest to the proposed method is a method of plasticizing hernias of the anterior abdominal wall with a light mesh material (filament diameter 0.09 mm) with a protein-platelet coating (RF patent application No. 2011129719). This method involves the use of techniques for coating mesh materials with a protein-platelet membrane. Citrate blood was centrifuged at 2000 rpm. The polymerization of plasma proteins was carried out under the influence of calcium ions. To the resulting plasma was added a 10% solution of calcium chloride in a ratio of 4 drops per 1 ml. Plasma was placed in a sterile container at the rate of 0.5-1.0 ml per 1 cm 2 of the mesh endoprosthesis, after which the mesh endoprosthesis was impregnated with plasma enriched with platelets. A protein-coated net was placed in the wound. Platelets bound to plasma protein degranulate and secrete growth factors that stimulate regeneration processes. 6-7 days after implantation, the mesh sprouted with young loose connective tissue, and 2 weeks later, mature connective tissue began to form in the mesh endoprosthesis. The main purpose of this method was to strengthen the light mesh endoprosthesis due to the germination of its connective tissue.
Недостатком данного способа является то, что вышеописанная методика белково-тромбоцитарных покрытий легких сетчатых материалов используется только для укрепления структуры эндопротеза, но не стимулирует репаративные процессы в дегенеративно-измененных тканях в месте имплантации эндопротеза, что замедляет процессы его вживления в брюшную стенку и может способствовать отторжению имплантата. Особенно это важно при имплантации сверхлегких эндопротезов (диаметр нити 0,07 мм), которые при выраженных дегенеративных изменениях брюшной стенки легко отторгаются.The disadvantage of this method is that the above method of protein-platelet coatings of light mesh materials is used only to strengthen the structure of the endoprosthesis, but does not stimulate reparative processes in degeneratively altered tissues at the site of implantation of the endoprosthesis, which slows down the process of its implantation into the abdominal wall and can contribute to rejection implant. This is especially important when implanting ultralight endoprostheses (filament diameter 0.07 mm), which, with pronounced degenerative changes in the abdominal wall, are easily rejected.
Технический результат изобретения - разработать способ стимуляции репаративных процессов в месте аллогерниопластики, позволяющий ускорить процесс вживления и предупредить отторжение трансплантата из тканей брюшной стенки.The technical result of the invention is to develop a method of stimulation of reparative processes in the place of alloernioplasty, which allows to accelerate the implantation process and to prevent graft rejection from the tissues of the abdominal wall.
Технический результат заключается в стимуляции репаративных процессов введением в зону имплантации эндопротеза аутоплазмы, обогащенной тромбоцитами, которые играют ключевую роль как промежуточное звено в процессе заживления поврежденной ткани посредством возможности выделять из своих α-гранул факторы роста. Факторы роста - это естественные полипептиды, обладающие широким спектром биологического локального воздействия на основные звенья регенераторного процесса: хемотаксис, клеточную пролиферацию, миграцию клеток, дифференцировку, реструктуризацию и ангиогенез.The technical result consists in stimulating reparative processes by introducing into the implantation zone an autoplasm enriched in platelets that play a key role as an intermediate in the healing of damaged tissue by the ability to isolate growth factors from their α-granules. Growth factors are natural polypeptides that have a wide range of biological local effects on the main parts of the regenerative process: chemotaxis, cell proliferation, cell migration, differentiation, restructuring, and angiogenesis.
Технический результат достигается тем, что при имплантации сверхлегкого (диаметр нити 0,07 мм) полипропиленового эндопротеза в ткани брюшной стенки в место его имплантации вводили обогащенную тромбоцитами аутоплазму, из расчета 0,5 мл плазмы на 1 см2 эндопротеза (Фиг. 1). Кроме этого, на 3 сутки в зону имплантации эндопротеза дополнительно вводили обогащенную тромбоцитами аутоплазму, из того же расчета (Фиг. 2). Введение обогащенной тромбоцитами плазмы проводили в места, где наиболее часто возникает нагноение и отторжение трансплантата. Повторное введение обогащенной тромбоцитами аутоплазмы способствует быстрому протеканию стадии экссудации и наступлению стадии пролиферации, а также дальнейшей стимуляции репаративных процессов, что ведет к предупреждению отторжению эндопротеза из тканей брюшной стенки.The technical result is achieved by the fact that during the implantation of an ultralight (filament diameter 0.07 mm) polypropylene endoprosthesis in the tissue of the abdominal wall, an autoplasma enriched with platelets was introduced into the site of its implantation, at the rate of 0.5 ml of plasma per 1 cm 2 of the endoprosthesis (Fig. 1). In addition, on day 3, an autoplasma enriched with platelets was additionally introduced into the endoprosthesis implantation zone, from the same calculation (Fig. 2). Platelet-rich plasma was administered to places where suppuration and graft rejection most often occurred. Repeated administration of platelet-rich autoplasma promotes the rapid occurrence of the exudation stage and the onset of the proliferation stage, as well as further stimulation of reparative processes, which leads to the prevention of rejection of the endoprosthesis from the tissues of the abdominal wall.
Изобретение поясняется фигурами:The invention is illustrated by the figures:
Фиг. 1. Введение аутоплазмы, обогащенной тромбоцитами, в область имплантации эндопротеза.FIG. 1. Introduction of autoplasma enriched with platelets into the implantation area of the endoprosthesis.
Фиг. 2. Повторное введение по истечении 3-х суток аутоплазмы, обогащенной тромбоцитами, в область имплантации эндопротеза.FIG. 2. Re-introduction after 3 days of autoplasma enriched with platelets in the implantation area of the endoprosthesis.
Фиг. 3. Микрофотография тканей, окружающих нити эндопротеза на 7-е сутки эксперимента без использования аутоплазмы обогащенной тромбоцитами. Окрашено по Ван-Гизонну. Ув. х400FIG. 3. A micrograph of the tissues surrounding the endoprosthesis threads on the 7th day of the experiment without the use of autoplasma enriched with platelets. Painted by Van Giesonn. SW x400
Фиг. 4. Микрофотография тканей, окружающих нити эндопротеза на 7-е сутки эксперимента, с использованием обогащенной тромбоцитами аутоплазмы. Окрашено по Ван-Гизонну. Ув. Х400.FIG. 4. Micrograph of tissues surrounding the endoprosthesis threads on the 7th day of the experiment, using autoplasma enriched with platelets. Painted by Van Giesonn. SW X400.
Фиг. 5. Микрофотография тканей, окружающих нити эндопротеза на 10-е сутки эксперимента без использования аутоплазмы, обогащенной тромбоцитами. Окрашено гематоксилином и эозином. Ув. х200.FIG. 5. Micrograph of tissues surrounding the threads of the endoprosthesis on the 10th day of the experiment without the use of autoplasma enriched with platelets. Stained with hematoxylin and eosin. SW x200.
Фиг. 6. Микрофотография тканей, окружающих нити эндопротеза на 10-е сутки эксперимента с использование аутоплазмы, обогащенной тромбоцитами. Окрашено гематоксилином и эозином. Ув. х200.FIG. 6. Micrograph of tissues surrounding the threads of the endoprosthesis on the 10th day of the experiment using autoplasma enriched with platelets. Stained with hematoxylin and eosin. SW x200.
СПОСОБ ОСУЩЕСТВЛЯЕТСЯ СЛЕДУЮЩИМ ОБРАЗОМThe method is carried out as follows.
Способ стимуляции репаративных процессов в брюшной стенке выполняли на 50 кроликах - самцах породы «Шиншилла», массой 2500 г, без внешних признаков заболевания после двухнедельного карантина в условиях вивария Курского государственного медицинского университета.A method of stimulating reparative processes in the abdominal wall was performed on 50 rabbits — chinchilla males, weighing 2500 g, without external signs of the disease after two weeks of quarantine in the vivarium of the Kursk State Medical University.
Все эксперименты были выполнены с соблюдением правил асептики и антисептики. Перед операцией готовили аутоплазму, обогащенную тромбоцитами, по следующей методике: после удаления шерсти и обработки 70% раствором этилового спирта, из вены уха кролика аспирировали в стерильную вакуумную пробирку с 3,8% цитратом натрия (1:9) 5 мл крови. Выполняли однократное центрифугирование при 1500 оборотах в минуту в течение 15 минут. Шприцем с длинной иглой проводили забор осадка в объеме 3-х мл подготовленной плазмы, в которую добавляли 10% раствор хлорида кальция в объеме 0,1 мл для активации тромбоцитов. Под общим наркозом (внутривенно вводили препарат «Золетил 50» в дозе 5 мг/кг массы) выполняли фиксацию животного на спине с разведенными конечностями, двукратно обрабатывали операционное поле 1% раствором йодопирона и однократно - 95% раствором этилового спирта. Затем отграничивали операционное поле с 4-х сторон стерильным бельем, выполняли срединный разрез кожи, подкожной клетчатки длиной 7 см по белой линии живота отступив от мечевидного отростка 1-2 см в направлении к лобковому симфизу. Тупым и острым путем выполняли освобождение апоневроза прямых мышц живота на 4 см в стороны от срединного разреза. Лабораторному животному в асептических условиях, надапоневротически, по методике «on-lay» имплантировали полипропиленовый сетчатый сверхлегкий эндопротез» (диаметр нити 0,07 мм) размерами 3×2 см на апоневроз прямых мышц передней брюшной стенки. Фиксацию эндопротеза выполняли непрерывным швом полипропиленовой мононитью 3/0. После имплантации в ткани передней брюшной стенки вводили (в области 4 углов и по центру) под сетчатый эндопротез аутоплазму, обогащенную тромбоцитами, в объеме 0,5 мл (плазмы) на 1 см2 (сетчатого эндопротеза). Гемостаз проводили по ходу операции. По окончанию оперативного вмешательства отдельными узловыми швами ушивали кожу и подкожную клетчатку.All experiments were performed in compliance with the rules of asepsis and antiseptics. Before the operation, an autoplasma enriched with platelets was prepared according to the following procedure: after removing wool and treating with 70% ethyl alcohol, 5 ml of blood was aspirated from a rabbit's ear vein into a sterile vacuum tube with 3.8% sodium citrate (1: 9). A single centrifugation was performed at 1500 rpm for 15 minutes. Using a syringe with a long needle, a sediment was taken in a volume of 3 ml of prepared plasma, to which a 10% solution of calcium chloride in a volume of 0.1 ml was added to activate platelets. Under general anesthesia (the drug “Zoletil 50” was administered intravenously at a dose of 5 mg / kg body weight), the animal was fixed on the back with diluted limbs, the surgical field was treated twice with 1% iodopyrone solution and once with 95% ethyl alcohol. Then, the surgical field was separated from 4 sides with sterile linen, a midline incision was made of the skin, subcutaneous tissue 7 cm long along the white line of the abdomen, departing from the xiphoid process 1-2 cm in the direction of the pubic symphysis. In a blunt and acute way, aponeurosis of the rectus abdominis was released 4 cm to the side of the midline incision. An aseptic laboratory animal was injected with an on-lay polypropylene mesh ultralight endoprosthesis ”(thread diameter 0.07 mm) 3 × 2 cm in size on an aponeurosis of the rectus anterior muscle using an on-lay technique. The endoprosthesis was fixed by continuous suture with 3/0 polypropylene monofilament. After implantation, an autoplasma enriched with platelets in a volume of 0.5 ml (plasma) per 1 cm 2 (mesh endoprosthesis) was introduced into the tissue of the anterior abdominal wall (in the region of 4 angles and in the center) under a mesh endoprosthesis. Hemostasis was performed during the operation. At the end of the surgery, the skin and subcutaneous tissue were sutured with separate interrupted sutures.
По истечении 3-х суток после операции у кролика повторно выполняли забор крови из вены уха, по изложенной выше методике получали обогащенную тромбоцитами аутоплазму и повторно вводили ее в ткани передней брюшной стенки под имплантированный сетчатый эндопротез (в области 4 углов и по центру), в объеме 0,5 мл (плазмы) на 1 см2 (сетчатого эндопротеза).After 3 days after the operation, the rabbit was repeatedly sampled from the ear vein, the autoplasma enriched with platelets was obtained according to the above procedure, and it was reintroduced into the tissues of the anterior abdominal wall under the implanted mesh endoprosthesis (in the area of 4 angles and in the center), a volume of 0.5 ml (plasma) per 1 cm 2 (mesh endoprosthesis).
ПРИМЕР КОНКРЕТНОГО ВЫПОЛНЕНИЯEXAMPLE OF SPECIFIC PERFORMANCE
Экспериментальное исследование, проведенное в центральной научно-исследовательской лаборатории ФГБОУ ВО «Курский государственный медицинский университет» Минздрава России, было выполнено на 100 кроликах-самцах порода «Шиншилла», массой 2500 г, в возрасте от 1 до 1,5 лет. Выбор кроликов в качестве экспериментальных животных был обусловлен возможностью экстраполяции данных о реактивных изменениях тканей, окружающих эндопротез в условиях использования плазмы, обогащенной тромбоцитами.An experimental study conducted at the central research laboratory of the Kursk State Medical University of the Ministry of Health of the Russian Federation was performed on 100 male rabbits of the Chinchilla breed, weighing 2500 g, aged 1 to 1.5 years. The choice of rabbits as experimental animals was due to the possibility of extrapolating data on reactive changes in the tissues surrounding the endoprosthesis under conditions of using platelet-rich plasma.
Животных отбирали в эксперимент без внешних признаков заболевания после двухнедельного карантина в условиях вивария Курского государственного медицинского университета.Animals were selected in the experiment without external signs of the disease after two weeks of quarantine in the vivarium of the Kursk State Medical University.
Все манипуляции с лабораторными животными осуществляли в соответствии с принципами биоэтики, правилами лабораторной практики (GLP) и соответствовали международным рекомендациям (этическому кодексу) по проведению медико-биологических исследований с использованием животных (1985 г.), с соблюдением принципов, изложенных в законе «О защите животных от жестокого обращения» гл. V, ст. 104679 - ГД от 01.12.1999 г., и согласно приказу Минздрава России от 19.06.2003 г. №267 «Об утверждении правил лабораторной практики».All manipulations with laboratory animals were carried out in accordance with the principles of bioethics, laboratory practice rules (GLP) and in accordance with international recommendations (code of ethics) for biomedical research using animals (1985), in compliance with the principles set forth in the law “On protection of animals from cruel treatment "ch. V, Art. 104679 - State Duma from 12/01/1999, and according to the order of the Ministry of Health of Russia dated 06/19/2003 No. 267 "On approval of the rules of laboratory practice."
Экспериментальные животные были разделены на две группы (по 50 животных в каждой): животным 1-й группы (контрольной) имплантировали сверхлегкий эндопротез без введения в рану обогащенной тромбоцитами аутоплазмы, во 2-й (опытной) группе - с введением в рану обогащенной тромбоцитами аутоплазмы в асептических условиях по методике «on-lay».The experimental animals were divided into two groups (50 animals each): the animals of the 1st group (control) were implanted with an ultralight endoprosthesis without introducing autoplasma enriched with platelets into the wound, and in the 2nd (experimental) group with the introduction of autoplasma enriched with platelets into the wound in aseptic conditions according to the on-lay technique.
Все эксперименты были выполнены с соблюдением правил асептики и антисептики. Животным в 1 группе (контрольной) под общим наркозом (внутривенно вводили препарат «Золетил 50» в дозе 5 мг/кг массы) выполняли фиксацию животного на спине с разведенными конечностями, двукратно обрабатывали операционное поле 1% раствором йодопирона и однократно - 95% раствором этилового спирта. Затем отграничивали операционное поле с 4-х сторон стерильным бельем, выполняли срединный разрез кожи, подкожной клетчатки длиной 7 см по белой линии живота отступив от мечевидного отростка 1-2 см в направлении к лобковому симфизу. Тупым и острым путем выполняли освобождение апоневроза прямых мышц живота на 4 см в стороны от срединного разреза. Животным после выполненной манипуляции надапоневротически, по методике «on-lay» имплантировали сетчатый полипропиленовый эндопротезы (диаметр нити 0,07 мм) размерами 3×2 см. Фиксацию сетчатого эндопротеза выполняли непрерывным швом полипропиленовой мононитью 3/0. Гемостаз проводили по ходу операции. После завершения оперативного вмешательства, отдельными узловыми швами ушивали кожу и подкожную клетчатка.All experiments were performed in compliance with the rules of asepsis and antiseptics. The animals in group 1 (control) under general anesthesia (the drug Zoletil 50 was administered intravenously at a dose of 5 mg / kg weight), the animal was fixed on the back with diluted extremities, the surgical field was treated twice with 1% iodopyrone solution and once with 95% ethyl solution alcohol. Then, the surgical field was separated from 4 sides with sterile linen, a midline incision was made of the skin, subcutaneous tissue 7 cm long along the white line of the abdomen, departing from the xiphoid process 1-2 cm in the direction of the pubic symphysis. In a blunt and acute way, aponeurosis of the rectus abdominis was released 4 cm to the side of the midline incision. After the performed manipulation, the animals were implanted neaponeuroticly using the on-lay method, they implanted mesh polypropylene endoprostheses (thread diameter 0.07 mm) with dimensions 3 × 2 cm. The mesh endoprosthesis was fixed with a continuous suture of 3/0 polypropylene monofilament. Hemostasis was performed during the operation. After completion of the surgery, the skin and subcutaneous tissue were sutured with separate nodal sutures.
Животным во 2-й группе (опытной) перед операцией готовили аутоплазму, обогащенную тромбоцитами, по следующей методике: после удаления шерсти и обработки 70% раствором этилового спирта, из вены уха кролика аспирировали в стерильную вакуумную пробирку с 3,8% цитратом натрия (1:9) 5 мл крови. Выполняли однократное центрифугирование при 1500 оборотах в минуту в течение 15 минут. Шприцем с длинной иглой проводили забор осадка в объеме 3-х мл подготовленной плазмы, в которую добавляли 10% раствор хлорида кальция в объеме 0,1 мл для активации тромбоцитов. Под общим наркозом (внутривенно вводили препарат «Золетил 50» в дозе 5 мг/кг массы). Выполняли фиксацию животного на спине с разведенными конечностями, двукратно обрабатывали операционное поле 1% раствором йодопирона и однократно - 95% раствором этилового спирта. Затем отграничивали операционное поле с 4-х сторон стерильным бельем, выполняли срединный разрез кожи, подкожной клетчатки длиной 7 см по белой линии живота отступив от мечевидного отростка 1-2 см в направлении к лобковому симфизу. Тупым и острым путем выполняли освобождение апоневроза прямых мышц живота на 4 см в стороны от срединного разреза. Лабораторному животному в асептических условиях, надапоневротически, по методике «on-lay» имплантировали полипропиленовый сетчатый сверхлегкий эндопротез (диаметр нити 0,07 мм) размерами 3×2 см на апоневроз прямых мышц передней брюшной стенки. Фиксацию эндопротеза выполняли непрерывным швом полипропиленовой мононитью 3/0. После имплантации в ткани передней брюшной стенки вводили (в области 4 углов и по центру) под сетчатый эндопротез аутоплазму, обогащенную тромбоцитами, в объеме 0,5 мл (плазмы) на 1 см2 (сетчатого эндопротеза). Гемостаз проводили по ходу операции. По окончанию оперативного вмешательства отдельными узловыми швами ушивали кожу и подкожную клетчатку. По истечении 3-х суток после операции у кролика повторно выполняли забор крови из вены уха, по изложенной выше методике получали обогащенную тромбоцитами аутоплазму и повторно вводили ее в ткани передней брюшной стенки под имплантированный сетчатый эндопротез (в области 4 углов и по центру), в объеме 0,5 мл (плазмы) на 1 см2 (сетчатого эндопротеза).The animals in the 2nd group (experimental) before the operation were prepared with an autoplasma enriched with platelets according to the following method: after removing wool and treatment with 70% ethanol solution, the rabbit’s ear veins were aspirated into a sterile vacuum tube with 3.8% sodium citrate (1 : 9) 5 ml of blood. A single centrifugation was performed at 1500 rpm for 15 minutes. Using a syringe with a long needle, a sediment was taken in a volume of 3 ml of prepared plasma, to which a 10% solution of calcium chloride in a volume of 0.1 ml was added to activate platelets. Under general anesthesia (the drug “Zoletil 50” was administered intravenously at a dose of 5 mg / kg weight). The animal was fixed on the back with diluted limbs, the surgical field was treated twice with a 1% iodopyrone solution and once with a 95% ethyl alcohol solution. Then, the surgical field was separated from 4 sides with sterile linen, a midline incision was made of the skin, subcutaneous tissue 7 cm long along the white line of the abdomen, departing from the xiphoid process 1-2 cm in the direction of the pubic symphysis. In a blunt and acute way, aponeurosis of the rectus abdominis was released 4 cm to the side of the midline incision. An aseptic laboratory animal was injected neuronadone using the on-lay method to implant a polypropylene mesh ultralight prosthesis (thread diameter 0.07 mm) 3 × 2 cm in size for aponeurosis of the rectus anterior muscle of the anterior abdominal wall. The endoprosthesis was fixed by continuous suture with 3/0 polypropylene monofilament. After implantation, an autoplasma enriched with platelets in a volume of 0.5 ml (plasma) per 1 cm 2 (mesh endoprosthesis) was introduced into the tissue of the anterior abdominal wall (in the region of 4 angles and in the center) under a mesh endoprosthesis. Hemostasis was performed during the operation. At the end of the surgery, the skin and subcutaneous tissue were sutured with separate interrupted sutures. After 3 days after the operation, the rabbit was repeatedly sampled from the ear vein, the autoplasma enriched with platelets was obtained according to the above procedure, and it was reintroduced into the tissues of the anterior abdominal wall under the implanted mesh endoprosthesis (in the area of 4 angles and in the center), a volume of 0.5 ml (plasma) per 1 cm 2 (mesh endoprosthesis).
На протяжении всего эксперимента проводили динамическое наблюдение за общим состоянием животных и заживлением послеоперационных ран. Из эксперимента животных выводили на 7 и 10 сутки после операции, путем передозировки средств для наркоза.Throughout the experiment, dynamic monitoring of the general condition of the animals and the healing of postoperative wounds was carried out. From the experiment, the animals were removed on the 7th and 10th days after the operation, by overdosing on anesthesia.
После выведения животных из эксперимента в указанные сроки проводили забор материала для морфологических исследований (изучение реакции тканей, окружающих эндопротез).After the animals were withdrawn from the experiment, the material was taken for morphological studies at a specified time (studying the reaction of tissues surrounding the endoprosthesis).
Для гистологического измерения реактивных изменений тканей, окружающих имплантированный эндопротез, иссекали единым блоком участок передней брюшной стенки кролика размерами 2×2 см, включая материал эндопротеза. Извлеченные фрагменты биологического материала растягивали на пластинах плотного картона для предупреждения их деформации во время фиксации, а затем, полностью погружали в 10% раствор забуференного нейтрального формалина на 2 недели с обязательной заменой раствора на 2-е сутки фиксации. После фиксации, из взятого блока иссекали кусочки размерами 1×1 см, включающие обязательно материал эндопротеза и заливали в парафин по стандартной методике. Далее, из одной части материала изготовляли гистологические срезы, толщиной 5-7 мкм и окрашивали гематоксилином и эозином.For histological measurement of reactive changes in the tissues surrounding the implanted endoprosthesis, a section of the rabbit anterior abdominal wall 2 × 2 cm in size was excised with a single block, including the material of the endoprosthesis. The extracted fragments of biological material were stretched on the plates of thick cardboard to prevent their deformation during fixation, and then completely immersed in a 10% solution of buffered neutral formalin for 2 weeks with the obligatory replacement of the solution on the 2nd day of fixation. After fixation, pieces 1 × 1 cm in size were excised from the taken block, including necessarily the endoprosthesis material and poured into paraffin according to the standard method. Further, histological sections 5–7 µm thick were made from one part of the material and stained with hematoxylin and eosin.
Изучение гистологических препаратов сверхлегкого эндопротеза (толщина нити 0,07 мм) на 7-е сутки исследования у животных в 1-й группе (контрольной) без применения обогащенной тромбоцитами аутоплазмы выявило, что вокруг нитей эндопротеза визуализируются тонкие, новообразованные коллагеновые волокна. Нити эндопротеза окружены слоем фибробластов, крупных размеров. Их форма варьирует от кубической до призматической, При этом, в большинстве случаев, фибробласты располагаются в два ряда. Между нитей эндопротеза новообразованная соединительная ткань не зрелая. Она образована хаотично переплетающимися тонкими волокнами (Фиг. 3).The study of histological preparations of an ultralight endoprosthesis (thread thickness 0.07 mm) on the 7th day of the study in animals in the 1st group (control) without using platelet-rich autoplasma revealed that thin, newly formed collagen fibers are visualized around the endoprosthesis threads. The threads of the endoprosthesis are surrounded by a layer of fibroblasts, large sizes. Their shape varies from cubic to prismatic. In this case, in most cases, fibroblasts are arranged in two rows. Between the threads of the endoprosthesis, the newly formed connective tissue is not mature. It is formed by randomly interwoven thin fibers (Fig. 3).
Изучение гистологических препаратов на 7-е сутки во 2-й группе (опытной) сочетанного использования эндопротеза сверхлегкий (толщина нити 0,07 мм) и обогащенной тромбоцитами аутоплазмы выявлено, что процесс образования перипротезной капсулы находится на более поздней стадии развития. С внутренней стороны эндопротеза наблюдается широкая зона, содержащая зрелые коллагеновые волокна, расположенные, пока еще, не плотно и хаотично. С наружной стороны эндопротеза, также, происходит упорядочивание и структуризация волокон соединительной ткани. Плотность клеток высокая, в поле зрения преобладают клетки фибробластического ряда (Фиг. 4).The study of histological preparations on the 7th day in the 2nd group (experimental) of the combined use of an ultralight endoprosthesis (thread thickness 0.07 mm) and autoplasma enriched with platelets revealed that the process of formation of the periprosthetic capsule is at a later stage of development. On the inside of the endoprosthesis, a wide zone is observed containing mature collagen fibers located, as yet, not densely and randomly. From the outside of the endoprosthesis, the ordering and structuring of connective tissue fibers also occurs. The cell density is high, fibroblastic cells predominate in the field of view (Fig. 4).
При изучении гистологических препаратов сверхлегкого эндопротеза в 1-й группе (контрольной) без применения обогащенной тромбоцитами аутоплазмы на 10-е сутки эксперимента осмотр раны выявил полную регенерацию кожного покрова. Эпидермис и подлежащая дерма восстановлены полностью. Сосочковый и сетчатый слои дермы без особенностей. Над апоневрозом визуализируются поперечно срезанные полипропиленовые эндопротезы, окруженные незрелой соединительнотканной капсулой, с хорошо визуализируемым разделением на внутренний и наружный слои. Во внутреннем, клеточном слое капсулы находятся единичные фибробласты мелких размеров и большое количество вытянутых, уплощенной формы фиброцитов (Фиг. 5).When studying histological preparations of an ultralight endoprosthesis in the 1st group (control) without using platelet-enriched autoplasma on the 10th day of the experiment, examination of the wound revealed complete regeneration of the skin. The epidermis and underlying dermis are fully restored. Papillary and reticular dermis without features. Above the aponeurosis, cross-cut polypropylene endoprostheses are visualized, surrounded by an immature connective tissue capsule, with a well-visualized separation into the inner and outer layers. In the inner cell layer of the capsule are single fibroblasts of small sizes and a large number of elongated, flattened forms of fibrocytes (Fig. 5).
При изучении гистологических препаратов сверхлегкого эндопротеза во 2-й группе (опытной) с применения обогащенной тромбоцитами аутоплазмы качественные структурные изменения перипротезной ткани начинаю визуализироваться на 10-е сутки эксперимента. Наблюдается толстая, хорошо сформированная перипротезная капсула, зрелые соединительнотканные волокна которой располагаются плотно, компактно и параллельно друг другу. Межволоконные промежутки слабо выражены, угол анастомоза между волокнами маленький. В перипротезной капсуле хорошо визуализируется подразделение на слои: внутренний клеточный и наружный волокнистый. Во внутреннем клеточном слое плотность клеток выше, чем в группе наблюдений без применения аутоплазмы обогащенной тромбоцитами. В поле зрения, в наружном слое капсулы на фоне преобладания волокнистого компонента визуализируются фиброциты. Во внутреннем слое капсулы преобладают клетки фибробластического ряда. Между нитей эндопротеза, также определяются зрелые коллагеновые волокна (Фиг. 6).When studying histological preparations of an ultralight endoprosthesis in the 2nd group (experimental) using platelet-rich autoplasma, qualitative structural changes in the periprosthetic tissue begin to be visualized on the 10th day of the experiment. A thick, well-formed periprosthetic capsule is observed, the mature connective tissue fibers of which are located densely, compactly and parallel to each other. The interfiber spaces are weakly expressed, the angle of the anastomosis between the fibers is small. In the periprosthetic capsule, the division into layers is well visualized: the inner cell and the outer fibrous. In the inner cell layer, the cell density is higher than in the observation group without the use of autoplasma enriched with platelets. In the field of view, in the outer layer of the capsule, against the background of the predominance of the fibrous component, fibrocytes are visualized. In the inner layer of the capsule, fibroblast cells predominate. Between the threads of the endoprosthesis, mature collagen fibers are also determined (Fig. 6).
Таким образом, у животных во 2-й группе (опытной) исследования при использовании обогащенной тромбоцитами аутоплазмы выявленная картина реактивных изменений соединительной ткани свидетельствует о более быстро протекающих стадиях воспаления, их смене и наступлении в более ранние сроки пролиферативных процессов. Сформированная перипротезная капсула, состоящая из волокнистой соединительной ткани, образует прочный каркас и выполняет механическую функцию, обеспечивая, при этом, тесную связь с окружающими тканями.Thus, in animals in the 2nd group (experimental) study using autoplasma enriched with platelets, the revealed pattern of reactive changes in the connective tissue indicates faster stages of inflammation, their change and the onset of proliferative processes earlier. The formed periprosthetic capsule, consisting of fibrous connective tissue, forms a strong frame and performs a mechanical function, while providing a close connection with surrounding tissues.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2018112721A RU2681109C1 (en) | 2018-04-09 | 2018-04-09 | Method of stimulation of reparative processes in the implantation of superlight polypropylene endoprotesis into the abdominal wall |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2018112721A RU2681109C1 (en) | 2018-04-09 | 2018-04-09 | Method of stimulation of reparative processes in the implantation of superlight polypropylene endoprotesis into the abdominal wall |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2681109C1 true RU2681109C1 (en) | 2019-03-04 |
Family
ID=65632673
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2018112721A RU2681109C1 (en) | 2018-04-09 | 2018-04-09 | Method of stimulation of reparative processes in the implantation of superlight polypropylene endoprotesis into the abdominal wall |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2681109C1 (en) |
Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2223045C1 (en) * | 2002-04-24 | 2004-02-10 | Самарский государственный медицинский университет | Method for combined closure of anterior abdominal wall defect |
| RU2456942C1 (en) * | 2010-12-27 | 2012-07-27 | Иван Васильевич Крайник | Method of hernioplasty |
-
2018
- 2018-04-09 RU RU2018112721A patent/RU2681109C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2223045C1 (en) * | 2002-04-24 | 2004-02-10 | Самарский государственный медицинский университет | Method for combined closure of anterior abdominal wall defect |
| RU2456942C1 (en) * | 2010-12-27 | 2012-07-27 | Иван Васильевич Крайник | Method of hernioplasty |
Non-Patent Citations (5)
| Title |
|---|
| KHALED ABOUELNASR Enhancement of abdominal wall defect repair using allogenic platelet-rich plasma with commercial polyester/cotton fabric (Damour) in a canine model. J Vet Med Sci. 2017 Jul; 79(7), Р. 1301-1309. * |
| POPPAS D.P. et al. Hy drogel coated mesh decreases tissue reaction resulting from polypropylene mesh implant: implication in hernia repair. Hernia. 2016, V. 20 (4), P. 623-632. * |
| АНУРОВ М. В. др. Сравнение результатов пластики грыжевого дефекта стандартными и легкими сетчатыми эндопротезами с одинаковым трикотажным переплетением. Бюл. эксперим. биологии и медицины. 2010, Т. 150 (10), С. 433-439. * |
| БОГДАН В.Г. и др. Способы пластики обширных дефектов передней брюшной стенки с аутотрансплантацией мезенхимальных стволовых клеток из жировой ткани у пациентов с послеоперационными грыжами (первые клинические наблюдения). Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2012, Т. XIV(4), С.80-88. * |
| БОГДАН В.Г. и др. Способы пластики обширных дефектов передней брюшной стенки с аутотрансплантацией мезенхимальных стволовых клеток из жировой ткани у пациентов с послеоперационными грыжами (первые клинические наблюдения). Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2012, Т. XIV(4), С.80-88. АНУРОВ М. В. др. Сравнение результатов пластики грыжевого дефекта стандартными и легкими сетчатыми эндопротезами с одинаковым трикотажным переплетением. Бюл. эксперим. биологии и медицины. 2010, Т. 150 (10), С. 433-439. KHALED ABOUELNASR Enhancement of abdominal wall defect repair using allogenic platelet-rich plasma with commercial polyester/cotton fabric (Damour) in a canine model. J Vet Med Sci. 2017 Jul; 79(7), Р. 1301-1309. POPPAS D.P. et al. Hy drogel coated mesh decreases tissue reaction resulting from polypropylene mesh implant: implication in hernia repair. Hernia. 2016, V. 20 (4), P. 623-632. * |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Bayat et al. | Experimental wound healing using microamperage electrical stimulation in rabbits | |
| Yen et al. | Novel electrospun poly (ε-caprolactone)/type I collagen nanofiber conduits for repair of peripheral nerve injury | |
| Chang et al. | The effects of low-intensity ultrasound on peripheral nerve regeneration in poly (DL-lactic acid-co-glycolic acid) conduits seeded with Schwann cells | |
| JPH01256967A (en) | Injectionable soft tissue prosthesis taken from peluis | |
| Dahlin | Prevention of macrophage invasion impairs regeneration in nerve grafts | |
| US20210393396A1 (en) | Dermal layer for grafting having improved graft survival rate and method for producing same | |
| CN102970972B (en) | Nitrocarboxylic acid is used for the treatment of, diagnose and prevent the purposes of aggressive healing pattern | |
| KR102597594B1 (en) | A composition for bio transplanting of organoid | |
| DE69923290T2 (en) | BIOLOGICALLY COMPATIBLE STRUCTURE, INCLUDING MEANS OF INCREASED FIBROVASCULAR INGESTION | |
| CN104056258A (en) | Composition for promoting physiologically regulative regeneration of damaged tissue as well as preparation method and use thereof | |
| CN112494729B (en) | Drug-containing tissue graft and preparation method and application thereof | |
| RU2681109C1 (en) | Method of stimulation of reparative processes in the implantation of superlight polypropylene endoprotesis into the abdominal wall | |
| Lopiz et al. | Repair of rotator cuff injuries using different composites | |
| WO2023143335A1 (en) | Hydrophilic electrostatic spinning implant for inducing regeneration of skin tissues | |
| CN103705910A (en) | Ziconotide injection hypodermic implant and preparation method thereof | |
| CN114832156B (en) | Novel medical and cosmetic shaping filler modified L-polylactic acid gel | |
| RU2613417C1 (en) | Method of reinforcing cornea albugo in experiment | |
| Karabulut et al. | Tissue reaction to urogynecologic meshes: effect of steroid soaking in two different mesh models | |
| Walker et al. | THE EFFECTS OF AN ANTIHISTAMINE (PROMETHAZINE) ON THE REACTION OF TENDONS TO TRAUMA–A HISTOLOGICAL STUDY | |
| Zhou et al. | Effects of hydrogel-fiber on cystic cavity after spinal cord injury | |
| Ivanov et al. | Comparative tissue morphology in using prostheses from polypropylene and polytetrafluoretilen | |
| RU2578818C1 (en) | Method for simulating osteomyelitis | |
| RU2753136C1 (en) | Method for autodermoplasty with split-thickness graft for restoration of skin after burns | |
| Reed | Synthesis and Performance Testing of ECM Fiber Scaffolds | |
| Artashyan et al. | Reparative osteogenesis with the participation of connective tissue autograft |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20200410 |