RU2678122C1 - Method for producing reproductive products of mussels mytilus galloprovincialis lam - Google Patents
Method for producing reproductive products of mussels mytilus galloprovincialis lam Download PDFInfo
- Publication number
- RU2678122C1 RU2678122C1 RU2017136662A RU2017136662A RU2678122C1 RU 2678122 C1 RU2678122 C1 RU 2678122C1 RU 2017136662 A RU2017136662 A RU 2017136662A RU 2017136662 A RU2017136662 A RU 2017136662A RU 2678122 C1 RU2678122 C1 RU 2678122C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- mussels
- spawning
- rpm
- eggs
- speed
- Prior art date
Links
- 241000237536 Mytilus edulis Species 0.000 title claims abstract description 37
- 235000020638 mussel Nutrition 0.000 title claims abstract description 36
- 230000001850 reproductive effect Effects 0.000 title claims abstract description 21
- 241001147138 Mytilus galloprovincialis Species 0.000 title claims abstract description 10
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 title claims abstract description 9
- 235000013601 eggs Nutrition 0.000 claims abstract description 24
- 230000000638 stimulation Effects 0.000 claims abstract description 8
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 claims abstract description 4
- 239000013535 sea water Substances 0.000 claims description 13
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 claims description 11
- 238000000746 purification Methods 0.000 claims description 11
- 238000004062 sedimentation Methods 0.000 claims description 4
- 238000000034 method Methods 0.000 abstract description 9
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract description 2
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract 1
- 239000000047 product Substances 0.000 description 20
- 241000237852 Mollusca Species 0.000 description 11
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 11
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 10
- 210000004602 germ cell Anatomy 0.000 description 9
- 239000012535 impurity Substances 0.000 description 8
- 230000001568 sexual effect Effects 0.000 description 6
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 5
- 230000008021 deposition Effects 0.000 description 5
- 210000003608 fece Anatomy 0.000 description 5
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 5
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 5
- 239000000463 material Substances 0.000 description 4
- 210000005132 reproductive cell Anatomy 0.000 description 4
- 239000013049 sediment Substances 0.000 description 3
- 239000013543 active substance Substances 0.000 description 2
- 238000006065 biodegradation reaction Methods 0.000 description 2
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 description 2
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 2
- 230000007613 environmental effect Effects 0.000 description 2
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 2
- 210000002149 gonad Anatomy 0.000 description 2
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 2
- PFNFFQXMRSDOHW-UHFFFAOYSA-N spermine Chemical compound NCCCNCCCCNCCCN PFNFFQXMRSDOHW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 210000002784 stomach Anatomy 0.000 description 2
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 2
- 241000237519 Bivalvia Species 0.000 description 1
- 241000237525 Mytilidae Species 0.000 description 1
- 235000021466 carotenoid Nutrition 0.000 description 1
- 150000001747 carotenoids Chemical class 0.000 description 1
- 210000000170 cell membrane Anatomy 0.000 description 1
- 238000004140 cleaning Methods 0.000 description 1
- 239000012141 concentrate Substances 0.000 description 1
- 239000006071 cream Substances 0.000 description 1
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 1
- 230000002550 fecal effect Effects 0.000 description 1
- 230000035558 fertility Effects 0.000 description 1
- 230000002496 gastric effect Effects 0.000 description 1
- 230000035784 germination Effects 0.000 description 1
- 238000009776 industrial production Methods 0.000 description 1
- 150000002632 lipids Chemical class 0.000 description 1
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 description 1
- 210000000633 nuclear envelope Anatomy 0.000 description 1
- 239000008188 pellet Substances 0.000 description 1
- 239000011148 porous material Substances 0.000 description 1
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 1
- 239000002994 raw material Substances 0.000 description 1
- 230000001932 seasonal effect Effects 0.000 description 1
- 229940063675 spermine Drugs 0.000 description 1
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 1
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
- A01K61/00—Culture of aquatic animals
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
- Y02A40/00—Adaptation technologies in agriculture, forestry, livestock or agroalimentary production
- Y02A40/80—Adaptation technologies in agriculture, forestry, livestock or agroalimentary production in fisheries management
- Y02A40/81—Aquaculture, e.g. of fish
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Environmental Sciences (AREA)
- Marine Sciences & Fisheries (AREA)
- Zoology (AREA)
- Animal Husbandry (AREA)
- Biodiversity & Conservation Biology (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Farming Of Fish And Shellfish (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к биотехнологии и конхиокультуре и предназначено для повышения эффективности работы морских ферм, а также может быть применено для биохимических и физиологических исследований половых продуктов мидий М. galloprovincialis Lam. в период нереста с целью получения биологически активных веществ, используемых в отечественной медицине и фармацевтическом производстве.The invention relates to biotechnology and conhioculture and is intended to increase the efficiency of marine farms, and can also be used for biochemical and physiological studies of the reproductive products of mussels M. galloprovincialis Lam. during the spawning period in order to obtain biologically active substances used in domestic medicine and pharmaceutical production.
Ранее отмечалось [1], что экономическая и экологическая эффективность работы морских ферм зависит от плодовитости выращиваемых моллюсков и качества посадочного материала. Успешность размножения культивируемых мидий обеспечивается не только количеством, но и качеством половых продуктов, которое может быть оценено по морфологическим, биохимическим и физиологическим показателям сперматозоидов и яйцеклеток [2, 3]. Однако решение этой задачи осложняется трудностью сбора необходимого материала и получения чистых суспензий половых клеток, поэтому количественный сбор и качественная очистка половых клеток от примесей представляют большой практический интерес.It was previously noted [1] that the economic and environmental performance of marine farms depends on the fecundity of farmed mollusks and the quality of planting material. The reproductive success of cultivated mussels is ensured not only by the quantity, but also by the quality of the reproductive products, which can be estimated by the morphological, biochemical, and physiological parameters of sperm and eggs [2, 3]. However, the solution to this problem is complicated by the difficulty of collecting the necessary material and obtaining pure suspensions of germ cells, therefore, the quantitative collection and qualitative purification of germ cells from impurities are of great practical interest.
Известный способ отбора половых продуктов мидий [8] заключается в сборе яйцеклеток на сите с размером ячеи 56 мкм. Но используя сито или газ невозможно собрать необходимое количество половых продуктов поскольку, если размеры яйцеклеток колеблются в диапазоне 50-80 мкм, то средний размер спермиев составляет 5 мкм, т.е. применение сита для сбора половых клеток самцов нецелесообразно. Недостатком является и то, что невозможно качественно, без примесей, получить суспензию половых клеток моллюсков.A known method for selecting the reproductive products of mussels [8] is to collect eggs on a sieve with a mesh size of 56 μm. But using a sieve or gas, it is impossible to collect the required amount of reproductive products because, if the size of the eggs varies in the range of 50-80 microns, the average sperm size is 5 microns, i.e. the use of sieves for collecting germ cells of males is impractical. The disadvantage is that it is impossible to qualitatively, without impurities, to obtain a suspension of sex cells of mollusks.
Наиболее близким к заявляемому является способ отбора половых продуктов мидий [1], в котором осуществляют отбор мидий в морской среде, подготовку их к нересту, для чего очищают створки мидий и содержимое желудков. Затем проводят температурную стимуляцию нереста. От момента стимуляции начало нереста самцов происходит через 15 мин., у самок - через 20-30 мин. После нереста выполняют осаждение половых клеток и очищение полученных осадков от морской воды и биоотложений. Для этого используют многократное центрифугирование половых продуктов со скоростью 3000-3500 об./мин., при которой половые клетки хорошо концентрируются. Яйцеклетки, осевшие на дно емкости, отделяют от пробы воды и центрифугируют со скоростью 3000 об./мин. Суспензию сперматозоидов, активность которых сохраняется до 2 суток, поступают следующим образом. Вначале центрифугируют 2-3 раза по 10 мин. до получения прозрачного раствора над осадком. Затем надосадочную жидкость удаляют, осадок растворяют в небольшом количестве фильтрованной морской воды и переносят в другие пробирки, оставляя на дне 0,1-0,2 мл пробы, содержащей посторонние примеси. При центрифугировании на дно пробирки вместе с половыми клетками оседают примеси биоотложений моллюсков. Для получения чистой пробы половых продуктов суспензию клеток 4 раза переносят в чистые пробирки, оставляя на дне 0,05-0,1 мл пробы, содержащей примеси, и вновь центрифугируют при 3000 об./мин. На заключительном этапе воду над осадком максимально удаляют. Недостатком способа является то, что большое количество половых продуктов теряется при осаждении и очистке и затруднительно получить на выходе достаточное количество половых клетки даже в условиях промышленного производства.Closest to the claimed one is a method for selecting mussel sex products [1], in which mussels are selected in the marine environment, prepared for spawning, for which mussels and gastric contents are cleaned. Then carry out temperature stimulation of spawning. From the moment of stimulation, the beginning of spawning of males occurs after 15 minutes, in females - after 20-30 minutes. After spawning, germination of the germ cells and purification of the resulting sediments from sea water and biodegradation are performed. To do this, use multiple centrifugation of the reproductive products at a speed of 3000-3500 rpm./min., In which the reproductive cells are well concentrated. The eggs that settle to the bottom of the container are separated from the water sample and centrifuged at a speed of 3000 rpm. A suspension of sperm, the activity of which persists for up to 2 days, proceed as follows. First, centrifuged 2-3 times for 10 minutes. until a clear solution is obtained over the precipitate. Then the supernatant is removed, the precipitate is dissolved in a small amount of filtered seawater and transferred to other tubes, leaving 0.1-0.2 ml of the sample containing impurities at the bottom. When centrifuged at the bottom of the tube, along with the reproductive cells, impurities of mollusk biodegradation settle. To obtain a pure sample of reproductive products, the cell suspension is transferred 4 times to clean tubes, leaving 0.05-0.1 ml of the sample containing impurities at the bottom and centrifuged again at 3000 rpm. At the final stage, water above the sediment is removed as much as possible. The disadvantage of this method is that a large number of reproductive products is lost during deposition and purification and it is difficult to obtain a sufficient amount of reproductive cells at the output, even in industrial production.
Задачей изобретения «Способ получения половых продуктов мидии Mytilus galloprovincialis Lam.» является увеличение количества отбираемых половых клеток, а также получение чистых суспензий сперматозоидов и яйцеклеток черноморских мидий.The objective of the invention "A method for producing sexual products of mussel Mytilus galloprovincialis Lam." Is to increase the number of sex cells taken, as well as obtaining pure suspensions of sperm and egg cells of the Black Sea mussels.
Техническим результатом изобретения является количественный отбор чистых половых продуктов мидий: яйцеклеток и сперматозоидов, что повышает эффективность биохимических и физиологических исследований для мидийных ферм. Кроме того, количественный отбор чистых половых продуктов мидий позволяет использовать их как сырье для получения биологически активных веществ, используемых в отечественной медицине и фармацевтическом производстве.The technical result of the invention is the quantitative selection of pure sex products of mussels: eggs and sperm, which increases the effectiveness of biochemical and physiological studies for mussel farms. In addition, the quantitative selection of pure sex products of mussels allows them to be used as raw materials for the production of biologically active substances used in domestic medicine and pharmaceutical production.
Технический результат изобретения достигается тем, что в способе отбора половых продуктов мидии Mytilus galloprovincialis выполняют сбор мидий, подготовку к нересту и температурную стимуляцию нереста, предусматривающую помещение отдельных экземпляров мидий в емкости с фильтрованной водой температурой 18-20°С с поддержанием температуры в течение нереста, а также осаждение половых продуктов и их очищение от биоотложений и морской воды. Для осаждения и очищения половые продукты четырежды центрифугируют со скоростью 3000 об./мин., каждый раз помещая в чистые пробирки. Для яйцеклеток проводят центрифугирование со скоростью 3000 об./мин., а для сперматозоидов центрифугирование проводят 3 раза по 10 мин со скоростью 3500 об./мин. и один раз со скоростью 3000 об./мин. Дополнительно водится новая операция количественного отбора половых продуктов после нереста мидий, для чего яйцеклетки пропускают дважды через газ-сито с диаметром ячей 112 мкм и 56 мкм соответственно, а сперматозоиды пропускают дважды через газ-сито с диаметром ячеи 56 мкм.The technical result of the invention is achieved by the fact that in the method of selection of reproductive products of mussels Mytilus galloprovincialis, mussels are collected, prepared for spawning and temperature stimulation of spawning, which involves the placement of individual specimens of mussels in a container with filtered water at a temperature of 18-20 ° C with maintaining the temperature during spawning as well as the deposition of reproductive products and their purification from biological deposition and sea water. For sedimentation and purification, the reproductive products are centrifuged four times at a speed of 3000 rpm./min., Each time placed in clean tubes. For eggs, centrifugation is carried out at a speed of 3000 rpm., And for spermatozoa, centrifugation is carried out 3 times for 10 minutes at a speed of 3500 rpm. and once at a speed of 3000 rpm. Additionally, a new operation is carried out for the quantitative selection of sexual products after spawning of mussels, for which the eggs are passed twice through a gas sieve with a mesh diameter of 112 μm and 56 μm, respectively, and sperm cells are passed twice through a gas sieve with a mesh diameter of 56 μm.
Общими операциями с прототипом являются подготовка мидий к нересту, температурная стимуляция и осаждение половых продуктов путем многократного центрифугирования со скоростью 3000-3500 об./мин, а также очищение от примесей и биоотложений 4-кратным центрифугированием.General operations with the prototype are the preparation of mussels for spawning, temperature stimulation and sedimentation of sexual products by repeated centrifugation at a speed of 3000-3500 rpm./min, as well as purification from impurities and biological deposition by 4-fold centrifugation.
Новым по сравнению с прототипом является дополнительная операция количественного отбора половых продуктов, которую проводят перед осаждением и очищением яйцеклеток и сперматозоидов, позволяющая сконцентрировать яйцеклетки на сите, отчистить материал от фекалий и получить максимальное количество половых клеток при массовом нересте черноморских мидий. Новым является повышение качества очистки, т.к. очищение сперматозоидов проводят в два этапа, когда пробу трижды центрифугируют со скоростью 3500 об./мин. по 10 мин, а затем со скоростью 3000 об./мин.New in comparison with the prototype is an additional operation of quantitative selection of sexual products, which is carried out before deposition and purification of eggs and spermatozoa, which allows you to concentrate the eggs on a sieve, cleanse material from feces and obtain the maximum number of germ cells during mass spawning of Black Sea mussels. New is improving the quality of cleaning, as sperm purification is carried out in two stages, when the sample is centrifuged three times at a speed of 3500 rpm. 10 minutes, and then at a speed of 3000 rpm.
Пример реализации способа.An example implementation of the method.
Подготовка к нересту. Отбор проб мидий проводили в феврале и апреле. Моллюсков с длиной створки от 5 до 7 см в возрасте 2-х лет отбирали с фермы, расположенной в б. Ласпи, с глубины 2 м. Пол и стадию зрелости гонад моллюсков определяли по 6-ти бальной шкале на мазке гонад с помощью микроскопа МБИ-6 [5]. Нерест моллюсков, проходящих 5-ю стадию репродуктивного цикла, вызывали по методике температурной стимуляции нереста [4]. Всего проанализировано 109 моллюсков.Preparation for spawning. Mussels were sampled in February and April. Mollusks with a leaf length of 5 to 7 cm at the age of 2 years were selected from a farm located in b. Laspi, from a depth of 2 m. The sex and maturity stage of mollusk gonads was determined on a 6-point scale on a gonad smear using an MBI-6 microscope [5]. Spawning of mollusks passing the 5th stage of the reproductive cycle was caused by the method of temperature stimulation of spawning [4]. A total of 109 mollusks were analyzed.
После извлечения из морской воды мидий очищали от обрастаний и тщательно промывали фильтрованной морской водой. Моллюсков выдерживали в фильтрованной морской воде в течение 12 часов (с полной сменой воды через 6 часов) для освобождения желудков от содержимого. В весенне-зимний период температура морской воды, в среднем, составляла 10-12°С, в осенний - 20°С.При этом, во время осеннего нереста, моллюсков, после освобождения желудков от содержимого, помещали на 2 часа в холодильник при температуре 5°С.After extraction from sea water, the mussels were cleaned of fouling and washed thoroughly with filtered sea water. The mollusks were kept in filtered seawater for 12 hours (with a complete change of water after 6 hours) to release the stomachs from their contents. In the spring-winter period, the temperature of sea water, on average, was 10-12 ° C, in the autumn - 20 ° C. At the same time, during the autumn spawning, the mollusks, after releasing the stomachs from their contents, were placed for 2 hours in a refrigerator at a temperature 5 ° C.
Нерест. Для стимуляции нереста мидий рассаживали по 1 экз. в пластмассовые стаканы емкостью 0,5 л с фильтрованной водой (tводы=18-20°С), поддерживая выбранную температуру в течение эксперимента. В течение нереста выделяемые моллюсками фекалии удаляли из сосудов при помощи дозатора. У самцов начало нереста отмечалось через 15 мин. от момента стимуляции, у самок - через 20-30 мин. Общая продолжительность нереста в условиях эксперимента составляла в среднем 4-6 часов. Выметанные яйцеклетки сразу оседали на дно, образовывая желто-оранжевый осадок, подвижные сперматозоиды оставались во взвешенном состоянии, образуя суспензию бело-кремового цвета. Чтобы исключить попадание в пробы гермафродитных особей, осуществляли контроль однородности полученных проб на мазке суспензии ПП под микроскопом. По окончании эксперимента мидий извлекали из стаканов и возвращали на мидийную ферму.Spawning. To stimulate spawning, mussels were planted in 1 copy. in plastic beakers 0.5 liters with filtered water (t water = 18-20 ° C) while maintaining the temperature selected for the experiment. During spawning, feces secreted by the mollusks were removed from the vessels using a dispenser. In males, the beginning of spawning was noted after 15 minutes. from the moment of stimulation, in females - after 20-30 minutes. The total duration of spawning under experimental conditions averaged 4-6 hours. Swollen eggs immediately sank to the bottom, forming a yellow-orange precipitate, motile spermatozoa remained in suspension, forming a suspension of white-cream color. To exclude hermaphroditic specimens from entering the samples, we monitored the uniformity of the obtained samples on a smear of the PP suspension under a microscope. At the end of the experiment, the mussels were removed from the glasses and returned to the mussel farm.
Количественный отбор яйцеклеток и сперматозоидов мидий. Для количественного отбора половых клеток, их отбирали на сито и промывали фильтрованной морской водой. Морскую воду фильтровали через ядерные мембраны с диаметром пор 1 мкм. Суспензию яйцеклеток переносили в чистый стакан, объемом 0,5 литров содержащий 200 мл фильтрованной воды. Для первой промывки использовали газ с диаметром ячеи 112 мкм, пропуская через него яйцеклетки в стакан с фильтрованной водой, при этом фекалии оставались на газе. На втором этапе яйцеклетки промывали через газ диаметром ячеи 56 мкм, яйцеклетки с небольшим количеством воды оставались на сите, далее их переносили в центрифужные пробирки (V=15 мл). Суспензию сперматозоидов дважды промывали фильтрованной морской водой объемом 200 мл, пропуская через газ диаметром ячеи 56 мкм. Фекалии оставались на сите, а спермин переходили в чистую воду. Затем половые клетки переносили в центрифужные стаканы (V=200 мл).Quantitative selection of eggs and sperm of mussels. For quantitative selection of germ cells, they were selected on a sieve and washed with filtered seawater. Sea water was filtered through nuclear membranes with a pore diameter of 1 μm. The egg suspension was transferred into a clean glass, 0.5 liter containing 200 ml of filtered water. For the first washing, a gas with a mesh diameter of 112 μm was used, passing the eggs through it into a glass with filtered water, while the feces remained on the gas. At the second stage, the eggs were washed through a gas with a mesh diameter of 56 μm, the eggs with a small amount of water remained on a sieve, then they were transferred to centrifuge tubes (V = 15 ml). The sperm suspension was washed twice with filtered seawater with a volume of 200 ml, passing through a gas with a mesh diameter of 56 μm. The feces remained on the sieve, and spermine passed into clean water. Then the germ cells were transferred to centrifuge glasses (V = 200 ml).
Осаждение половых клеток, очищение от морской воды и фекальных пеллет.Precipitation of germ cells, purification from sea water and fecal pellets.
Для получения чистого материала применяли многократное центрифугирование. Яйцеклетки центрифугировали при скорости 3000 об./мин., вследствие чего половые клетки хорошо концентрировались, оболочка клеток не разрушалась и содержимое не переходило в раствор.To obtain pure material used multiple centrifugation. The eggs were centrifuged at a speed of 3000 rpm./min., As a result of which the germ cells were well concentrated, the cell membrane was not destroyed, and the contents did not pass into solution.
Скорости центрифугирования установлены авторами экспериментально, путем многократного исследования состава проб под микроскопом.The centrifugation rates were established by the authors experimentally, by repeatedly studying the composition of samples under a microscope.
Поскольку сперматозоиды довольно подвижны и практически не оседают на дно сосуда, всю суспензию, полученную за время нереста, центрифугировали в стаканах (V=200 мл) при скорости 3500 об./мин. 3 раза по 10 минут до получения прозрачного раствора над осадком. Надосадочную жидкость удаляли, осадок суспензировали в небольшом количестве фильтрованной морской воды и переносили в пробирки (V=15 мл), оставляя на дне 0,1-0,2 мл пробы, содержащей посторонние примеси и вновь центрифугировали при 3000 об./мин.Since the spermatozoa are quite mobile and practically do not settle to the bottom of the vessel, the entire suspension obtained during spawning was centrifuged in glasses (V = 200 ml) at a speed of 3500 rpm. 3 times for 10 minutes until a clear solution is obtained over the precipitate. The supernatant was removed, the precipitate was suspended in a small amount of filtered seawater and transferred to test tubes (V = 15 ml), leaving 0.1-0.2 ml of the sample containing impurities at the bottom and centrifuged again at 3000 rpm.
При центрифугировании на дно пробирки вместе с половыми клетками оседали примеси фекалий моллюсков. Для получения чистых проб ПП суспензии клеток 4 раза переносили в чистые пробирки, оставляя на дне 0,05 -0,1 мл пробы, содержащей примеси. На заключительном этапе воду над осадком ПП максимально удаляли при помощи дозатора. В результате получали чистые однородные пробы живых клеток - сперматозоидов и яйцеклеток.During centrifugation at the bottom of the tube, admixtures of mollusk feces settled together with the reproductive cells. To obtain pure PP samples, cell suspensions were transferred 4 times to clean tubes, leaving 0.05-0.1 ml of the sample containing impurities at the bottom. At the final stage, the water above the PP sediment was maximally removed with the help of a dispenser. As a result, pure homogeneous samples of living cells — sperm and ova — were obtained.
Масса половых продуктов, полученных от одной самки, достигала 360 мг сухого веса, у самцов - 70 мг сухого веса. Заявляемое изобретение было апробировано при выполнении исследований биохимического состава сперматозоидов и яйцеклеток мидий [1, 6, 7].The mass of sexual products obtained from one female reached 360 mg of dry weight, in males - 70 mg of dry weight. The claimed invention was tested in studies of the biochemical composition of spermatozoa and mussel eggs [1, 6, 7].
Литературные источники, принятые во внимание:Literary sources taken into account:
1. Караванцева Н.В., Поспелова Н.В., Бобко Н.И., Нехорошев М.В. Методика отбора половых продуктов мидии Mytilus galloprovincialis Lam. Системы контроля окружающей среды. - Севастополь, 2012. - Вып. 17. - С. 184-187.1. Karavanseva N.V., Pospelova N.V., Bobko N.I., Nekhoroshev M.V. Methods of selection of reproductive products of mussel Mytilus galloprovincialis Lam. Environmental control systems. - Sevastopol, 2012. - Issue. 17. - S. 184-187.
2. Пиркова А.В. Размножение мидии Mytilus galloprovincialis Lam. и элементы биотехнологии ее культивирования: автореф. дисс. на соискание учен, степени канд. биол. наук: спец. 03.00.18 «Гидробиология» / А.В. Пиркова. - Севастополь, 1994. - 25 с.2. Pirkova A.V. Reproduction of mussel Mytilus galloprovincialis Lam. and elements of biotechnology of its cultivation: author. diss. for the degree of Cand. biol. Sciences: special. 03.00.18 "Hydrobiology" / A.V. Pirkova. - Sevastopol, 1994 .-- 25 p.
3. Cosson J., Groison A. - L., Suquet M. et al. Studying sperm motility in marine fish: an overview on the state of the art // J. Appl. Ichthyol. - 2008. - No 24. - P. 460-486.3. Cosson J., Groison A. - L., Suquet M. et al. Studying sperm motility in marine fish: an overview on the state of the art // J. Appl. Ichthyol. - 2008 .-- No. 24.- P. 460-486.
4. Newel R., Thompson R. Reduced clearance rates associated with spawning in the mussel, Mytilus edulis (L) (Bivalvia, Mytilidae) / R. Newel, R. Thompson // Mar. Biol. Lett. - 1984. - Vol. 5, №1. - P. 21-23.4. Newel R., Thompson R. Reduced clearance rates associated with spawning in the mussel, Mytilus edulis (L) (Bivalvia, Mytilidae) / R. Newel, R. Thompson // Mar. Biol. Lett. - 1984. - Vol. 5, No. 1. - P. 21-23.
5. Пиркова A.B., Столбова H.T., Ладыгина Л.В. Сезонная динамика нереста мидии Mytilus galloprovincialis Lam. в иловых поселениях разных районах Черного моря // Гидробиол. журн. - 1994. - 30, №2. - С.22 - 27.5. Pirkova A.B., Stolbova H.T., Ladygina L.V. Seasonal dynamics of spawning of mussel Mytilus galloprovincialis Lam. in silt settlements of different regions of the Black Sea // Gidrobiol. journal - 1994. - 30, No. 2. - S. 22 - 27.
6. Караванцева Н.В. Половая структура мидий Mytilus galloprovincialis (Lam.) обитающих у берегов Крыма // Экология моря. -2009. - Вып. 77. - С. 57-61.6. Karavanseva N.V. Sexual structure of mussels Mytilus galloprovincialis (Lam.) Living off the coast of Crimea // Ecology of the Sea. -2009. - Vol. 77. - S. 57-61.
7. Иванов В.К, Караванцева Н.В., Нехорошев М.В. Содержание липидов и каротиноидов в выметанных половых продуктах черноморской Mytilus galloprovincialis Lam. // Мор. экол. журн. - 2009. - Т. 4, №1. - С. 84.7. Ivanov V.K., Karavantseva N.V., Nekhoroshev M.V. The content of lipids and carotenoids in the swept out sex products of the Black Sea Mytilus galloprovincialis Lam. // Mor. eco-friendly. journal - 2009. - T. 4, No. 1. - S. 84.
8. Холодов В.И. Выращивание мидий и устриц в Черном море /В.И. Холодов, А.В. Пиркова., Л.В Ладыгина / под ред. В.Н. Еремеева // Национальная академия наук Украины, Институт биологии южных морей им. А.О. Ковалевского. - Севастополь. - 2010. - 424 с.8. Kholodov V.I. Cultivation of mussels and oysters in the Black Sea / V.I. Kholodov, A.V. Pirkova., L.V. Ladygina / ed. V.N. Eremeeva // National Academy of Sciences of Ukraine, Institute of Biology of the South Seas named after A.O. Kovalevsky. - Sevastopol. - 2010 .-- 424 p.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2017136662A RU2678122C1 (en) | 2017-10-17 | 2017-10-17 | Method for producing reproductive products of mussels mytilus galloprovincialis lam |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2017136662A RU2678122C1 (en) | 2017-10-17 | 2017-10-17 | Method for producing reproductive products of mussels mytilus galloprovincialis lam |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2678122C1 true RU2678122C1 (en) | 2019-01-23 |
Family
ID=65085110
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2017136662A RU2678122C1 (en) | 2017-10-17 | 2017-10-17 | Method for producing reproductive products of mussels mytilus galloprovincialis lam |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2678122C1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2743060C1 (en) * | 2020-06-22 | 2021-02-15 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Федеральный исследовательский центр "Институт биологии южных морей имени А.О. Ковалевского РАН" (ФИЦ ИнБЮМ) | Method of producing a functional product from mytilus galloprovincialis mussels |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
SU1083991A1 (en) * | 1982-07-02 | 1984-04-07 | Тихоокеанский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии | Method of obtaining reproductive products of bivalve mollusks |
SU1161045A1 (en) * | 1983-09-14 | 1985-06-15 | Азовский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства | Method of growing mediterranean mydia |
RU2548116C1 (en) * | 2014-10-30 | 2015-04-10 | Институт биологии южных морей им. А.О. Ковалевского | Production of mytillus galloprovincialis mussel spat for growing in black sea |
-
2017
- 2017-10-17 RU RU2017136662A patent/RU2678122C1/en active
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
SU1083991A1 (en) * | 1982-07-02 | 1984-04-07 | Тихоокеанский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии | Method of obtaining reproductive products of bivalve mollusks |
SU1161045A1 (en) * | 1983-09-14 | 1985-06-15 | Азовский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства | Method of growing mediterranean mydia |
RU2548116C1 (en) * | 2014-10-30 | 2015-04-10 | Институт биологии южных морей им. А.О. Ковалевского | Production of mytillus galloprovincialis mussel spat for growing in black sea |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2743060C1 (en) * | 2020-06-22 | 2021-02-15 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Федеральный исследовательский центр "Институт биологии южных морей имени А.О. Ковалевского РАН" (ФИЦ ИнБЮМ) | Method of producing a functional product from mytilus galloprovincialis mussels |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Tang et al. | Lethal effects of Northwest Atlantic Ocean isolates of the dinoflagellate, Scrippsiella trochoidea, on Eastern oyster (Crassostrea virginica) and Northern quahog (Mercenaria mercenaria) larvae | |
Satta et al. | Dinoflagellate cysts in recent sediments from two semi-enclosed areas of the Western Mediterranean Sea subject to high human impact | |
Sogard et al. | Diel variation in immigration of fishes and decapod crustaceans to artificial seagrass habitat | |
Mariani et al. | Larval bloom of the oviparous sponge Cliona viridis: coupling of larval abundance and adult distribution | |
van der Meeren et al. | Copepod production in a saltwater pond system: a reliable method for achievement of natural prey in start-feeding of marine fish larvae | |
Le Pennec et al. | The pelagic life of the pectinid Pecten maximus—a review | |
Laabir et al. | Viability, growth and toxicity of Alexandrium catenella and Alexandrium minutum (Dinophyceae) following ingestion and gut passage in the oyster Crassostrea gigas | |
Rahman et al. | Analysis of the seasonal impact of three marine bivalves on seston particles in water column | |
Toh et al. | Coral larval rearing in Singapore: observations on spawning timing, larval development and settlement of two common scleractinian coral species | |
Peterson et al. | Associations between Mesodinium rubrum and cryptophyte algae in the Columbia River estuary | |
RU2678122C1 (en) | Method for producing reproductive products of mussels mytilus galloprovincialis lam | |
Shefy et al. | Stylophora pistillata—A model colonial species in basic and applied studies | |
Alongi | Extraction of protists in aquatic sediments via density gradient centrifugation | |
Folino-Rorem et al. | Effects of artificial filamentous substrate on zebra mussel (Dreissena polymorpha) settlement | |
Lough et al. | Early embryonic stages of Adula californiensis (Pelecypoda: Mytilidae) and the effect of temperature and salinity on developmental rate | |
Ramon-Mateu et al. | Studying ctenophora WBR using Mnemiopsis leidyi | |
Smol et al. | The culturing of some harpacticoid copepods from brackish water. | |
Paterson et al. | Effect of different growing techniques and substrate types on the growth and survival of the clams Tapes dorsatus (Lamarck) and Katelysia rhytiphora (Lamy) | |
Ogane et al. | First application of PDMPO to examine silicification in polycystine Radiolaria | |
RU2614644C1 (en) | Method of intensive cohort cultivation of acartia (sea calanoid copepods) | |
JP6618232B1 (en) | A method of selectively precipitating floating larvae of bivalves in seawater | |
JP4915760B2 (en) | Non-mature monoalgal culture, method for producing the same, and algal body in which the same was grown | |
Leys et al. | The Physiology of Sponge Behavior | |
Parvez et al. | Studies on the ontogenic development of a high-valued tropical sea urchin, Tripneustes gratilla (Linnaeus, 1758) for seed production and commercial aquaculture | |
Harcotă et al. | Culture Techniques for Acartia clausi from the Romanian Black Sea coastal waters |