RU2676431C1 - Способ моделирования лучевого цистита - Google Patents
Способ моделирования лучевого цистита Download PDFInfo
- Publication number
- RU2676431C1 RU2676431C1 RU2018106944A RU2018106944A RU2676431C1 RU 2676431 C1 RU2676431 C1 RU 2676431C1 RU 2018106944 A RU2018106944 A RU 2018106944A RU 2018106944 A RU2018106944 A RU 2018106944A RU 2676431 C1 RU2676431 C1 RU 2676431C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- irradiation
- field
- animal
- bladder
- dose
- Prior art date
Links
- 201000007608 radiation cystitis Diseases 0.000 title claims abstract description 22
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 15
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 claims abstract description 35
- 241000283973 Oryctolagus cuniculus Species 0.000 claims abstract description 22
- 206010002091 Anaesthesia Diseases 0.000 claims abstract description 6
- 230000037005 anaesthesia Effects 0.000 claims abstract description 6
- 210000000988 bone and bone Anatomy 0.000 claims abstract description 4
- 230000005855 radiation Effects 0.000 claims description 14
- 239000003814 drug Substances 0.000 abstract description 5
- 238000010171 animal model Methods 0.000 abstract description 3
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 abstract description 3
- 201000003146 cystitis Diseases 0.000 abstract description 3
- 229940079593 drug Drugs 0.000 abstract description 2
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract description 2
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract 1
- 210000003932 urinary bladder Anatomy 0.000 description 23
- 241000700159 Rattus Species 0.000 description 19
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 4
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 4
- 210000004877 mucosa Anatomy 0.000 description 4
- QAXBVGVYDCAVLV-UHFFFAOYSA-N tiletamine Chemical compound C=1C=CSC=1C1(NCC)CCCCC1=O QAXBVGVYDCAVLV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 4
- 210000000265 leukocyte Anatomy 0.000 description 3
- 210000002700 urine Anatomy 0.000 description 3
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- GDSCFOSHSOWNDL-UHFFFAOYSA-N Zolasepam Chemical compound N=1CC(=O)N(C)C(N(N=C2C)C)=C2C=1C1=CC=CC=C1F GDSCFOSHSOWNDL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 2
- 239000002872 contrast media Substances 0.000 description 2
- 230000034994 death Effects 0.000 description 2
- 231100000517 death Toxicity 0.000 description 2
- 210000003714 granulocyte Anatomy 0.000 description 2
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 2
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 2
- 238000001959 radiotherapy Methods 0.000 description 2
- 229960004523 tiletamine Drugs 0.000 description 2
- 229960001366 zolazepam Drugs 0.000 description 2
- 206010007882 Cellulitis Diseases 0.000 description 1
- 201000004624 Dermatitis Diseases 0.000 description 1
- 206010020565 Hyperaemia Diseases 0.000 description 1
- 206010030113 Oedema Diseases 0.000 description 1
- 208000008718 Pyuria Diseases 0.000 description 1
- 241000700157 Rattus norvegicus Species 0.000 description 1
- 208000025865 Ulcer Diseases 0.000 description 1
- 210000001015 abdomen Anatomy 0.000 description 1
- 210000000683 abdominal cavity Anatomy 0.000 description 1
- 210000003815 abdominal wall Anatomy 0.000 description 1
- NIXOWILDQLNWCW-UHFFFAOYSA-N acrylic acid group Chemical group C(C=C)(=O)O NIXOWILDQLNWCW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000027455 binding Effects 0.000 description 1
- 238000009739 binding Methods 0.000 description 1
- 230000036760 body temperature Effects 0.000 description 1
- 238000004364 calculation method Methods 0.000 description 1
- 238000012512 characterization method Methods 0.000 description 1
- 238000002591 computed tomography Methods 0.000 description 1
- 238000006073 displacement reaction Methods 0.000 description 1
- 230000005484 gravity Effects 0.000 description 1
- 244000144993 groups of animals Species 0.000 description 1
- 230000036732 histological change Effects 0.000 description 1
- 230000000544 hyperemic effect Effects 0.000 description 1
- 206010020718 hyperplasia Diseases 0.000 description 1
- 230000002390 hyperplastic effect Effects 0.000 description 1
- 230000001678 irradiating effect Effects 0.000 description 1
- 238000010172 mouse model Methods 0.000 description 1
- 238000002559 palpation Methods 0.000 description 1
- 210000004197 pelvis Anatomy 0.000 description 1
- 230000000144 pharmacologic effect Effects 0.000 description 1
- 230000035479 physiological effects, processes and functions Effects 0.000 description 1
- 230000002265 prevention Effects 0.000 description 1
- 230000002035 prolonged effect Effects 0.000 description 1
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 1
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 1
- 201000001474 proteinuria Diseases 0.000 description 1
- 230000003537 radioprotector Effects 0.000 description 1
- 238000011552 rat model Methods 0.000 description 1
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 1
- 238000001356 surgical procedure Methods 0.000 description 1
- 208000024891 symptom Diseases 0.000 description 1
- 231100000419 toxicity Toxicity 0.000 description 1
- 230000001988 toxicity Effects 0.000 description 1
- 210000001364 upper extremity Anatomy 0.000 description 1
- 210000000689 upper leg Anatomy 0.000 description 1
- 238000012800 visualization Methods 0.000 description 1
- 230000004580 weight loss Effects 0.000 description 1
Images
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G09—EDUCATION; CRYPTOGRAPHY; DISPLAY; ADVERTISING; SEALS
- G09B—EDUCATIONAL OR DEMONSTRATION APPLIANCES; APPLIANCES FOR TEACHING, OR COMMUNICATING WITH, THE BLIND, DEAF OR MUTE; MODELS; PLANETARIA; GLOBES; MAPS; DIAGRAMS
- G09B23/00—Models for scientific, medical, or mathematical purposes, e.g. full-sized devices for demonstration purposes
- G09B23/28—Models for scientific, medical, or mathematical purposes, e.g. full-sized devices for demonstration purposes for medicine
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61M—DEVICES FOR INTRODUCING MEDIA INTO, OR ONTO, THE BODY; DEVICES FOR TRANSDUCING BODY MEDIA OR FOR TAKING MEDIA FROM THE BODY; DEVICES FOR PRODUCING OR ENDING SLEEP OR STUPOR
- A61M19/00—Local anaesthesia; Hypothermia
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61N—ELECTROTHERAPY; MAGNETOTHERAPY; RADIATION THERAPY; ULTRASOUND THERAPY
- A61N5/00—Radiation therapy
- A61N5/01—Devices for producing movement of radiation source during therapy
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Anesthesiology (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Pathology (AREA)
- Hematology (AREA)
- Radiology & Medical Imaging (AREA)
- Medical Informatics (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Algebra (AREA)
- Computational Mathematics (AREA)
- Heart & Thoracic Surgery (AREA)
- Mathematical Analysis (AREA)
- Mathematical Optimization (AREA)
- Mathematical Physics (AREA)
- Pure & Applied Mathematics (AREA)
- Business, Economics & Management (AREA)
- Educational Administration (AREA)
- Educational Technology (AREA)
- Theoretical Computer Science (AREA)
- Radiation-Therapy Devices (AREA)
Abstract
Изобретение относится к радиобиологии и экспериментальной медицине и может быть использовано для моделирования лучевого цистита. Для этого осуществляют анестезию животного, формирование области облучения свинцовым окном, с последующим облучением мочевого пузыря на линейном ускорителе. При этом центрируют поле облучения на животном на столе линейного ускорителя по световому полю и анатомическим костным ориентирам. Осуществляют формирование поля размером 2,5 см в направлении право-лево и 2,3-4,0 см в направлении голова-хвост животного в проекции нижней трети мочевого пузыря. Сверху в области поля облучения устанавливают ткане-эквивалентный болюс толщиной 1 см. Устанавливают расстояние источник-поверхность, равное 100 см. Облучение осуществляют фотонами с граничной энергией квантов 6 МэВ. При создании модели на крысе облучение проводят одной фракцией в дозе 25 Гр. При создании модели на кролике облучение проводят 5 фракциями с разовой очаговой дозой 6 Гр до суммарной очаговой дозы 30 Гр. Способ обеспечивает создание модели радиоиндуцированного цистита без применения дополнительных страданий экспериментальным животным с целью проведения научных исследований, позволяющих с высокой степенью достоверности осуществлять доклинические исследования лекарственных препаратов для лечения лучевых циститов. 8 ил., 2 пр.
Description
Изобретение относится к медицине, радиобиологии, а именно к медицинской физике, радиотерапии, онкологии и урологии, и может быть использовано для моделирования лучевого цистита in vivo на крысах или кроликах.
Известен способ создания модели лучевого цистита, заключающийся в извлечении мочевого пузыря из брюшной полости живой крысы, облучении мочевого пузыря 2 Гр, и погружении его обратно в брюшную полость (Zabbarova I, Wipf Р, Birder L, Epperly M, De Groat W, Kanai A. University of Pittsburgh. Mouse model for characterization of radiation cystitis and its prevention using a new class of radioprotectors. https://www.ics.org/Abstracts/Publish/47/000268.pdf).
Однако, данный метод имеет ряд ограничений: его применение приводит к повышенному риску гибели крыс, не нужном страдании животного, а также изменению физиологии мочевого пузыря, как следствие оперативного вмешательства.
Известен способ создания модели лучевого цистита на мелких животных, заключающийся в подведении больших разовых доз до 40 Гр маленьким размером поля от 2.5×2.5 мм2 до 5×5 мм2 с визуализацией положения мочевого пузыря по ортогональным КТ снимкам на специальных радиационных установках типа: X-RAD 225Сх; Precision X-Ray, Inc; SARRP (радиационная исследовательская платформа для мелких животных на базе рентгеновского облучателя Gulmay). (J Urol. 2015 August; 194(2): 578-584. doi:10.1016/j.juro.2015.03.108).
Данный способ так же имеет ряд ограничений, а именно: указанные выше радиационные установки отсутствуют в исследовательских центрах в Российской Федерации. SARRP используется исключительно для облучения небольших животных, и условия создаваемые SARRP резко отличаются от условий облучения по физико-техническим параметрам излучения от применяемого для лечения пациентов на линейном ускорителе, используемом в клинической практике.
Наиболее близким является способ моделирования лучевого цистита, включающий анестезию животного, формирование области облучения свинцовым окном с последующим облучением мочевого пузыря (Histological Changes After Fractionated Whole or Partial Irradiation of the Rabbit Urinary Bladder.Markus Kohler, Christian Michel & Arthur Zimmermann http://www.tandfonline.eom/doi/abs/10.3109/02841869509093956). В данном способе кролики анестезировались и фиксировались в удерживающем устройстве. Свинцовое окно формировало область облучения, установленное при рентген-контроле. 4 группы животных получали 0, 33, 36, 39 Гр в 5 фракциях в течение 5 последовательных дней. Облучение проводилось рентгеновским излучением энергией 300 KB, расстояние источник-поверхность (РИП) 50 см, через 2 встречных поля интенсивность 0.8 Гр/мин.
Недостатками этого способа являются: использование рентгеновского излучения низкой энергии (300 КВ) с максимумом ионизации в воздухе, длительное облучение, во время которого необходимо полностью обездвижить и держать под наркозом животное. Все это может негативно сказываться на результатах, так как не исключается смещение облучаемых животных и появление тяжелых лучевых осложнений в окружающих тканях (язвенный дерматит, целлюлит и др.).
Задачей предлагаемого изобретения является устранение указанных недостатков, создание высокоэффективной модели лучевого цистита на крысах и кроликах за счет подведения необходимой дозы излучения и гарантированного создания модели радиоиндуцированного цистита со сроками развития от 1,5 до 2 месяцев для дальнейшего использования при тестировании фармакологических препаратов.
Для решения поставленной задачи, при моделировании лучевого цистита in vivo на животных, включающем анестезию животного, формирование области облучения свинцовым окном с последующим облучением мочевого пузыря на линейном ускорителе, предложено центрировать животное на столе линейного ускорителя по световому полю и анатомическим костным ориентирам. При этом осуществляют формирование поля размером 2,5 см в направлении право-лево, и 2,3 см - 4,0 см в направление голова-хвост животного в проекции нижней трети мочевого пузыря. В области поля облучения устанавливают тканеэквивалентный болюс толщиной 1 см, смещающий максимум ионизации дозы до 0,5 см в глубину на уровень мочевого пузыря животного, устанавливают расстояние источник-поверхность до равного 100 м. При этом облучение осуществляют фотонами с граничной энергией квантов 6 МэВ. Кроме того, при создании модели на крысе облучение проводилось одной фракцией в дозе 25 Гр, а при создании модели на кролике, облучение проводилось 5 фракциями с РОД 6 Гр до СОД 30 Гр.
Предлагаемая последовательность действий позволяет сократить время облучения более чем в 4 раза по сравнению с наиболее близким аналогом, что в свою очередь обеспечивает точность облучения и уменьшает токсичность лучевой терапии и наркоза. Использование стандартного линейного ускорителя позволяет получать модель в любом клиническом учреждении без необходимости закупать дорогостоящее, импортное, специализированное оборудование.
На фиг. 1 показана фиксация крысы на столе линейного ускорителя; на фиг. 2 - оконтуренный, контрастированный мочевой пузырь и трехмерная модель крысы; на фиг. 3 - фиксация кролика на столе линейного ускорителя; на фиг. 4 - 3D модель кролика с контрастным веществом в мочевом пузыре; фиг. 5 - мочевой пузырь кролика, слизистая нормальная; фиг. 6 - мочевой пузырь кролика, слизистая гиперплазирована и гиперемирована. Лучевой цистит; фиг. 7 - мочевой пузырь крысы, нормальная слизистая; фиг. 8 - мочевой пузырь крысы, отек и гиперемия слизистой, расширенные сосуды. Лучевой цистит.
По предлагаемому способу осуществлялось моделирование лучевого цистита на трех крысах и двух кроликах. Животным была проведена анестезия: Медитомедин 0,1% и Тилетамин + золазепам 50 мг в соотношении 2/1, в количестве 0,15-0,18 мл, кроликов препаратами Медитомедин 0,1% и Тилетамин + золазепам 50 мг в соотношении 2/1, в количестве 0,2-0,3 мл.
В области полей облучения шерстку животного выбривали, с запасом более 1 см от края полей. Затем, последовательно животные под анестезией позиционировались на пластине из акрила. Эта пластина устанавливалась на пластинчатый фантом из твердой воды. Укладка на спине: при этом задние и передние лапки растягивались специальными мягкими вязками из бинта и крепились к лечебному столу линейного ускорителя для однозначного положения.
Сверху животным на поле облучения устанавливали тканеэквивалентный болюс толщиной 1 см, смещающий максимум ионизации дозы на уровень залегания мочевого пузыря животного до 0,5 см.
Далее осуществляли формирование поля облучения: для крыс размером право-лево 2.5 см, голова-хвост 2.3-2.6 см, для кроликов формировали поле размером право-лево 2.5 см, голова-хвост 2.3-4 см, в зависимости от размера животного, на проекцию нижней трети мочевого пузыря (Фиг. 1, Фиг. 3).
Центрацию поля облучения осуществляли по границам светового поля головки линейного ускорителя и пальпаторно определенных анатомических костных ориентиров таза и бедренных костей. Расстояние источник-поверхность после этого устанавливали равным 100 см.
Затем формировали области облучения свинцовыми блоками, которые укладывали по краям поля облучения, тем самым формировали окно, гарантированно обеспечивая экранирование областей, лежащих выше и ниже поля в направлении голова-хвост.
Для обеспечения безопасности сосудов хвоста крыс, так как из него в дальнейшем забирали кровь для анализов, можно устанавливать дополнительный свинцовый блок на хвост.
Каждое животное облучали на линейном ускорителе электронов фотонами с граничной энергией квантов 6 МэВ, при этом крысы получали дозу 25 Гр в одной фракции, а кроликов облучали 5 последовательными фракциями с разовой очаговой дозой 6 Гр, до суммарной очаговой дозы 30 Гр.
Был получен лучевой цистит через 6-8 недель у всех животных (Фиг. 5, Фиг. 6, Фиг. 7, Фиг. 8), при этом летальных исходов не было, все животные были использованы в дальнейших исследованиях.
Вышеуказанные параметры подготовки модели были получены экспериментальным путем на 90 крысах и 32 кроликах.
Геометрические параметры облучения были установлены при определении объема и расположения мочевого пузыря животного путем исследования на компьютерном томографе Toshiba Aquillion при контрастном усилении с введением контрастного вещества непосредственно внутрь мочевого пузыря животного в положении лежа на спине. Исходя из полученных данных, была определена глубина залегания мочевого пузыря, которая составила 5-15 мм от передней брюшной стенки. Линейные размеры полей составили от 2.5×2.3 см для крысы до 2.5×4 см для кролика исходя из анализа полученных КТ изображений с учетом возможных погрешностей в укладке и вариаций в наполненности мочевого пузыря (Фиг. 2, Фиг. 4). В области полей облучения шерстку животного выбривали, с запасом более 1 см от края полей.
Расчет дозы был выполнен пользуясь системой дозиметрического планирования XiOCMS алгоритмом Clarkson на модели водного фантома, наиболее соответствующего плотности тканям живого организма. Расчетную точку доставки дозы задавали на глубину 1,5 см.
Контроль расчетной дозы был проведен на линейном ускорителе в водном фантоме IBAWP-1D дозиметром IBADOSE-1 ионизационными камерами среднего IBACC13 и малого IBACC01 объема. Данные ионизационные камеры имеют хорошее разрешение и подходят для измерений полей размерами меньше 3×3 см2. Полученные фактические, измеренные результаты совпали с рассчитанными на системе планирования с отклонениями +/- 1%.
Доставка дозы в мочевой пузырь животных осуществлялась на линейном ускорителе электронов с энергией фотонов 6 МэВ. Было установлено, что максимум ионизации дозы в этих условиях находится на глубине 1,5 см. Как известно, при облучении поля 10×10 см2 на глубине максимума ионизации дозы отпуск 100 мониторных единиц составляет дозу в 1 Гр. Как показали исследования, при мощности дозы 6 Гр/мин время облучения животных существенно сокращается.
Экспериментальные данные позволили установить оптимальные для получения модели лучевого цистита размеры полей облучения: для крыс право-лево 2.5 см, голова-хвост 2.3-2.6 см, для кроликов формировали поле размером право-лево 2.5 см, голова-хвост 2.3-4 см в зависимости от размера животного на проекцию нижней трети мочевого пузыря.
Пример 1.
Моделирование лучевого цистита было осуществлено с использованием предлагаемого способа на 18 кроликах линии «Калифорния», средним весом 2 кг, при этом еще 4 кролика были оставлены в группе контроля, однако все животные были введены в наркоз в одинаковой дозе для исключения влияния последнего. Облучение проводилось разовой очаговой дозой 6 Гр, один раз в сутки в течение 5 дней. При оценке результатов установлено, что через 6-8 недель после облучения у кроликов самцов и самок проявлялись симптомы лучевого цистита: тенденция к потере массы тела, тенденция к повышению ректальной температуры тела; тенденция к увеличению удельной плотности и снижению рН мочи, появление в моче белка и крови, увеличение в моче числа лейкоцитов; увеличение в крови абсолютного количества лейкоцитов и гранулоцитов. Произведена планировавшаяся программа исследований на всех облученных кроликах.
Пример 2.
По вышеописанной методике было осуществлено моделирование лучевого цистита с использованием 27 крыс породы "Вистар", при этом еще 3 крысы оставлены в контроле, однако все крысы были введены в наркоз в одинаковой дозе для исключения влияния последнего. Каждая крыса получала дозу 25 Гр в одной фракции.
Через 6-8 недель зафиксировано появление признаков постлучевого цистита в виде нарастания пиурии, микро-, а через 2 недели макрогематурии и протеинурии; увеличение в крови абсолютного количества лейкоцитов и гранулоцитов. Произведена планировавшаяся программа исследований на всех облученных крысах.
Использование способа позволяет создать модель лучевого цистита с целью проведения научных исследований, с высокой степенью достоверности позволяющих проводить доклинические исследования любых лекарственных препаратов для лечения лучевых циститов. Наряду с этим сокращаются расходы на приобретение и содержание лабораторных животных в связи с высоким процентом реализации экспериментального цистита при предлагаемых способом условиях. Кроме того, результат достигается без причинения дополнительных страданий экспериментальным животным.
Claims (1)
- Способ моделирования лучевого цистита, включающий анестезию животного, формирование области облучения свинцовым окном, с последующим облучением мочевого пузыря на линейном ускорителе, отличающийся тем, что центрируют поле облучения на животном на столе линейного ускорителя по световому полю и анатомическим костным ориентирам, осуществляют формирование поля размером 2,5 см в направлении право-лево и 2,3-4,0 см в направлении голова-хвост животного в проекции нижней трети мочевого пузыря, сверху в области поля облучения устанавливают ткане-эквивалентный болюс толщиной 1 см, устанавливают расстояние источник-поверхность, равное 100 см, при этом облучение осуществляют фотонами с граничной энергией квантов 6 МэВ, причем при создании модели на крысе облучение проводят одной фракцией в дозе 25 Гр, а при создании модели на кролике облучение проводят 5 фракциями с разовой очаговой дозой 6 Гр до суммарной очаговой дозы 30 Гр.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2018106944A RU2676431C1 (ru) | 2018-02-26 | 2018-02-26 | Способ моделирования лучевого цистита |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2018106944A RU2676431C1 (ru) | 2018-02-26 | 2018-02-26 | Способ моделирования лучевого цистита |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2676431C1 true RU2676431C1 (ru) | 2018-12-28 |
Family
ID=64958600
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2018106944A RU2676431C1 (ru) | 2018-02-26 | 2018-02-26 | Способ моделирования лучевого цистита |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2676431C1 (ru) |
Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6667296B1 (en) * | 1998-10-22 | 2003-12-23 | Peter J. Pommerville | Method for preventing and reducing radiation cystitis using hyaluronic acid |
| CN201453289U (zh) * | 2009-03-18 | 2010-05-12 | 中国医学科学院放射医学研究所 | 一种用于实验动物腹部局部照射的固定保护装置 |
| RU2534802C1 (ru) * | 2013-08-01 | 2014-12-10 | Александр Николаевич Гребенюк | Способ моделирования сочетанных радиационных поражений, включающих общее гамма-и местное бета-облучение |
-
2018
- 2018-02-26 RU RU2018106944A patent/RU2676431C1/ru active
Patent Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6667296B1 (en) * | 1998-10-22 | 2003-12-23 | Peter J. Pommerville | Method for preventing and reducing radiation cystitis using hyaluronic acid |
| CN201453289U (zh) * | 2009-03-18 | 2010-05-12 | 中国医学科学院放射医学研究所 | 一种用于实验动物腹部局部照射的固定保护装置 |
| RU2534802C1 (ru) * | 2013-08-01 | 2014-12-10 | Александр Николаевич Гребенюк | Способ моделирования сочетанных радиационных поражений, включающих общее гамма-и местное бета-облучение |
Non-Patent Citations (6)
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| JP6907177B2 (ja) | 軟組織を同時に画像化しながら等角放射線治療を送達するためのシステム | |
| Cho et al. | High dose–per-fraction irradiation of limited lung volumes using an image-guided, highly focused irradiator: simulating stereotactic body radiotherapy regimens in a small-animal model | |
| JP2017060782A (ja) | 医学的処置中のイメージガイダンスのためのシステムおよび方法 | |
| Zuro et al. | First multimodal, three-dimensional, image-guided total marrow irradiation model for preclinical bone marrow transplantation studies | |
| Hlavka et al. | Tumor bed radiotherapy in women following breast conserving surgery for breast cancer-safety margin with/without image guidance | |
| Shi et al. | A multimodality image guided precision radiation research platform: Integrating X-ray, bioluminescence, and fluorescence tomography with radiation therapy | |
| Bray et al. | Role of image guided radiation therapy in obese patients with gynecologic malignancies | |
| RU2676431C1 (ru) | Способ моделирования лучевого цистита | |
| Abdelhamid et al. | Feasibility of a Novel Sparse Orthogonal Collimator–Based Preclinical Total Marrow Irradiation for Enhanced Dosimetric Conformality | |
| Kunos et al. | Hematological toxicity after robotic stereotactic body radiosurgery for treatment of metastatic gynecologic malignancies | |
| WO2023069942A1 (en) | Methods of and apparatus for treatment with flash radiotherapy | |
| Johansen et al. | Contralateral breast doses following radiotherapy of the breast and regional lymph nodes: Measurements and treatment planning calculations | |
| Bahig et al. | Partial kilovoltage cone beam computed tomography, complete kilovoltage cone beam computed tomography, and electronic portal images for breast radiation therapy: A dose-comparison study | |
| Ślosarek et al. | Lung volume irradiation procedures in patients with pneumonia during COVID-19 infection–physical aspects of treatment planning and dosimetry | |
| Duman et al. | The effects of volumetric changes on radiation doses of the rectum and bladder during radiotherapy in patients with prostate cancer | |
| Santos et al. | Computational modelling of cervix radiation procedure using a virtual anthropomorphic phantom and the MCNPX code | |
| RU2816074C1 (ru) | Способ моделирования лучевого пульмонита в эксперименте | |
| Verhaegen et al. | Developing technologies for small animal radiotherapy | |
| Mayles | Total body irradiation | |
| Iqbal et al. | To analyse target volume variations during SIB-IMRT of squamous cell carcinoma of uterine cervix | |
| Santos et al. | Computational modelling of cervix uterus radiation procedure using a virtual anthropomorphic phantom and the MCNPX code | |
| Curtin | Supine vs. Prone Positioning for Breast Radiation | |
| Smithers | The Spatial Distribution of X rays and Total Energy Absorption | |
| Latifa et al. | Analysis of Radiation Dose Distribution and Organs at Risk in Breast Cancer Using Intensity Modulated Radiation Therapy Technique on A Linear Accelerator at RSUP Prof. Dr. IGNG Ngoerah | |
| Sudarsana | Luqyana Latifa, Ni Nyoman Ratini, I. Wayan Balik Sudarsana b, Ida Bagus Made Suryatika, I. Gusti Ayu Ratnawati, Anak Agung Ngurah Gunawan and Rozi Irhas b |