RU2667466C1 - Peptide compound, restoring function of respiratory bodies and inflammable immunomodulating action - Google Patents

Peptide compound, restoring function of respiratory bodies and inflammable immunomodulating action Download PDF

Info

Publication number
RU2667466C1
RU2667466C1 RU2017141210A RU2017141210A RU2667466C1 RU 2667466 C1 RU2667466 C1 RU 2667466C1 RU 2017141210 A RU2017141210 A RU 2017141210A RU 2017141210 A RU2017141210 A RU 2017141210A RU 2667466 C1 RU2667466 C1 RU 2667466C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
leu
asp
glu
ala
tetrapeptide
Prior art date
Application number
RU2017141210A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Ленар Васильевич Козлов
Виталий Карпович Осипович
Original Assignee
Общество с ограниченной ответственностью "МЕДИНВЕСТ"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Общество с ограниченной ответственностью "МЕДИНВЕСТ" filed Critical Общество с ограниченной ответственностью "МЕДИНВЕСТ"
Priority to RU2017141210A priority Critical patent/RU2667466C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2667466C1 publication Critical patent/RU2667466C1/en

Links

Images

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/04Peptides having up to 20 amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • A61K38/07Tetrapeptides
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P11/00Drugs for disorders of the respiratory system

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Pulmonology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Abstract

FIELD: medicine; pharmaceuticals.SUBSTANCE: group of inventions relates to medicine and concerns the tetrapeptide alanyl-glutamyl-aspartyl-leucine amide of the general formula Ala-Glu-Asp-Leu-NH. Group of inventions also relates to the use of said tetrapeptide for restoring respiratory function and immunocorrection; pharmacological agent of a peptide nature restoring respiratory function and having an immunomodulatory effect, comprising an active peptide agent and a pharmaceutically acceptable carrier.EFFECT: group of inventions provides a complex restorative effect on the function of the respiratory system, including immunocorrection.3 cl, 6 dwg, 9 tbl, 9 ex

Description

Изобретение относится к медицине, в частности, к лекарственным средствам, и может быть использовано как средство, восстанавливающее функцию органов дыхания и одновременно обладающее иммуномодулирующим действием. The invention relates to medicine, in particular to medicines, and can be used as a means of restoring the function of the respiratory system and at the same time having an immunomodulating effect.

В настоящее время наблюдается тенденция к росту заболеваний органов дыхания, в частности неспецифических заболеваний легких, которые занимают по распространенности третье место в мире, среди которых хроническая обструктивная болезнь легких (ХОБЛ) – крайне распространенное заболевание, являющееся одной из основных причин нетрудоспособности, инвалидности, значительно снижающее качество жизни пациентов и занимающее четвертое место среди причин смерти в промышленно развитых странах. Причем актуальность этой проблемы возрастает с каждым днем: если за последние десятилетие общая смертность и смертность от сердечно–сосудистых заболеваний снижается, то смертность от ХОБЛ выросла на 28% (Айсанов З.Р., Кокосов А.Н., Овчаренко С.И.,Хмелькова Н.Г., Цой А.Н., Чучалин А.Г., Шмелев Е.И. Хронические обструктивные болезни легких. Федеральная программа// РМЖ; 2001; 1: 9–33; Болезни органов дыхания: Руководство для врачей: в 4т. Под общей ред. Н.Р. Палеева. Т.1. Общая пульмонология. М.: Медицина, 1989). Точно определить распространенность ХОБЛ затруднительно в связи с существовавшей многие годы терминологической неопределенностью. По данным некоторых исследований, этот показатель колеблется от 10% до 30%. В США ХОБЛ страдает около 14 млн. человек, в Великобритании – 900 тыс. человек, в России – 11 млн. (Дворецкий Л.И. Инфекция и хроническая обструктивная болезнь легких //Consilium Medicum. 2001; 3 (12): 587-595). По данным Всемирной организации здравоохранения отмечается тенденция к неуклонному росту смертности от данного вида патологии (NHLBI/WHO Workshop Summary: Global strategy for the diagnosis, management and prevention of Chronic Obstructive Pulmonary Disease. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2001; Vol. 163: 1256-1270; хроническая обструктивная болезнь легких /Под ред. А. Г. Чучалина. - М.: Министерство здравоохранения, РФ Научно-исследовательский институт пульмонологии МЗ РФ, 1998).Currently, there is an upward trend in respiratory diseases, in particular non-specific lung diseases, which occupy the third place in the world in prevalence, among which chronic obstructive pulmonary disease (COPD) is an extremely common disease, which is one of the main causes of disability, disability, significantly reducing the quality of life of patients and taking the fourth place among the causes of death in industrialized countries. Moreover, the relevance of this problem is increasing every day: if over the past decade the overall mortality and mortality from cardiovascular diseases has been decreasing, then mortality from COPD has increased by 28% (Aisanov Z.R., Kokosov A.N., Ovcharenko S.I. , Khmelkova N.G., Tsoi A.N., Chuchalin A.G., Shmelev E.I. Chronic obstructive pulmonary diseases.Federal program // Breast Cancer; 2001; 1: 9–33; Respiratory Diseases: A Manual for Doctors : in 4 t. Under the general editorship of NR Paleev. T.1. General pulmonology. M: Medicine, 1989). It is difficult to accurately determine the prevalence of COPD due to terminological uncertainty that has existed for many years. According to some studies, this indicator ranges from 10% to 30%. In the United States, COPD affects about 14 million people, in the UK - 900 thousand people, in Russia - 11 million (Dvoretsky L.I. Infection and chronic obstructive pulmonary disease // Consilium Medicum. 2001; 3 (12): 587- 595). According to the World Health Organization, there is a trend towards a steady increase in mortality from this type of pathology (NHLBI / WHO Workshop Summary: Global strategy for the diagnosis, management and prevention of Chronic Obstructive Pulmonary Disease. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2001; Vol. 163: 1256-1270; chronic obstructive pulmonary disease / Edited by A. G. Chuchalin. - M.: Ministry of Health, Russian Federation Research Institute of Pulmonology, Ministry of Health of the Russian Federation, 1998).

Термин ХОБЛ появился около 30 лет назад и объединил заболевания, характеризующиеся медленно, но неуклонно прогрессирующей необратимой бронхиальной обструкцией с нарастающими явлениями хронической дыхательной недостаточности. В группу ХОБЛ входят хронический обструктивный бронхит, эмфизема легких, бронхиальная астма тяжелого течения, а в США и Великобритании также муковисцидоз, облитерирующий бронхиолит и бронхоэктатическая болезнь (Болезни органов дыхания: Руководство для врачей: в 4т. Под общей ред. Н.Р. Палеева. Т.1. Общая пульмонология. М.: Медицина, 1989). The term COPD appeared about 30 years ago and combines diseases characterized by a slowly but steadily progressing irreversible bronchial obstruction with increasing symptoms of chronic respiratory failure. The COPD group includes chronic obstructive bronchitis, pulmonary emphysema, severe bronchial asthma, and cystic fibrosis obliterating bronchiolitis and bronchiectasis in the USA and Great Britain (Diseases of the respiratory system: Manual for doctors: in 4 t. Under the general editorship of N.R. Paleev T. 1. General pulmonology.M .: Medicine, 1989).

Лечение этой патологии представляет сложную задачу. При обострении ХОБЛ ведущий этиологический фактор – инфекционный. Основными бактериальными патогенами являются H. influenzae, M. catarrhalis (значительно чаще в зимнее время года), S. Pneumoniae, Str. Aureus, а также Enterobactericae и P. аeruginosa. Важно помнить и о роли вирусов при инфекционных обострениях ХОБЛ (до 30% случаев), среди которых превалируют риновирусы, и значительно реже выявляются вирусы гриппа А и В (Seemungal T, Donaldson GC, Breuer J, Jhonston I S, Jeffries DJ, Wedzicha JA. Rinoviruses are associated with exacerbations of COPD. Eur Resp J. 1998; 12 (Suppl. 28): 298). The treatment of this pathology is a difficult task. With exacerbation of COPD, the leading etiological factor is infectious. The main bacterial pathogens are H. influenzae, M. catarrhalis (much more often in the winter season), S. Pneumoniae, Str. Aureus, as well as Enterobactericae and P. aeruginosa. It is important to remember the role of viruses in infectious exacerbations of COPD (up to 30% of cases), among which rhinoviruses prevail, and influenza A and B viruses are detected much less frequently (Seemungal T, Donaldson GC, Breuer J, Jhonston IS, Jeffries DJ, Wedzicha JA. Rinoviruses are associated with exacerbations of COPD. Eur Resp J. 1998; 12 (Suppl. 28): 298).

При лечении ХОБЛ необходим комплексный подход. Из лекарственных препаратов бронходилататоры составляют базисную терапию, поскольку именно бронхиальная обструкция играет первостепенную роль в патогенезе ХОБЛ Barnes PJ. Bronchodilators: basic pharmacology. In Calverley P, Pride N, eds. Chronic obstructive pulmonary disease. London: Chapman and Hall, 1995; 391–417). Хотя при ХОБЛ имеет место необратимая бронхообструкция, применение бронхолитиков позволяет уменьшить выраженность одышки и других симптомов ХОБЛ приблизительно у 40% больных и увеличить толерантность к физической нагрузке. В соответствии с рекомендациями GOLD выбор той или иной группы бронхолитиков (М–холинолитики, b2–агонисты и метилксантины) и их комбинаций производится для каждого конкретного пациента индивидуально, в зависимости от тяжести заболевания и особенностей его прогрессирования, характера ответа на лечение и риска побочных эффектов, а также доступности лекарственных средств. При неэффективности максимальных доз бронходилататоров применяется глюкокортикостероидная терапия, улучшающая бронхиальную проходимость у 10–30% пациентов и требующая проведения пробного лечения перед назначением на длительный прием. A comprehensive approach is needed in the treatment of COPD. Of the drugs, bronchodilators constitute the basic therapy, since it is bronchial obstruction that plays a paramount role in the pathogenesis of COPD Barnes PJ. Bronchodilators: basic pharmacology. In Calverley P, Pride N, eds. Chronic obstructive pulmonary disease. London: Chapman and Hall, 1995; 391-417). Although irreversible bronchial obstruction occurs in COPD, the use of bronchodilators can reduce the severity of shortness of breath and other symptoms of COPD in approximately 40% of patients and increase exercise tolerance. In accordance with the GOLD recommendations, the choice of a particular group of bronchodilators (M-anticholinergics, b2-agonists and methylxanthines) and their combinations is made individually for each individual patient, depending on the severity of the disease and the characteristics of its progression, the nature of the response to treatment and the risk of side effects as well as the availability of medicines. If the maximum doses of bronchodilators are ineffective, glucocorticosteroid therapy is used, which improves bronchial patency in 10-30% of patients and requires trial treatment before prescribing for long-term use.

Антибактериальная терапия проводится исключительно в период обострения ХОБЛ. В последнее время на первый план выступает ежегодная профилактическая вакцинация всех больных ХОБЛ противогриппозной вакциной, снижающая показатели смертности больных примерно на 50%, позволяющая уменьшить число обострений заболевания, их продолжительность и тяжесть течения, а значит, улучшить показатели бронхиальной проходимости, уменьшить число дней нетрудоспособности и улучшить качество жизни пациентов (Цой А.Н., Архипов В.В. Доказательная фармакотерапия хронической обструктивной болезни легких// Consilium Medicum. 2002; 04 (09): 486-492.;Дворецкий Л.И. Инфекция и хроническая обструктивная болезнь легких //Consilium Medicum. 2001; 3 (12): 587-595).Antibacterial therapy is carried out exclusively during an exacerbation of COPD. Recently, annual preventive vaccination of all patients with COPD with influenza vaccine has come to the forefront, reducing the mortality rate of patients by about 50%, which can reduce the number of exacerbations of the disease, their duration and severity, and therefore, improve bronchial patency, reduce the number of days of disability and improve the quality of life of patients (Tsoi A.N., Arkhipov V.V. Evidence-based pharmacotherapy of chronic obstructive pulmonary disease // Consilium Medicum. 2002; 04 (09): 486-492.; Butler L I.I. Infection and chronic obstructive pulmonary disease // Consilium Medicum. 2001; 3 (12): 587-595).

Для лечения ХОБЛ также широко используются муколитические средства, основной терапевтический эффект которых заключается в непосредственном разжижении патологически вязкого секрета посредством изменения состава и количества гликопротеина слизи, который секретируют клетки эпителиальной выстилки дыхательных путей. Цель муколитической терапии – уменьшение кашля и облегчение отхождения мокроты. Mucolytic agents are also widely used for the treatment of COPD, the main therapeutic effect of which is to directly dilute the pathologically viscous secretion by changing the composition and amount of mucus glycoprotein, which is secreted by the cells of the epithelial lining of the respiratory tract. The goal of mucolytic therapy is to reduce coughing and facilitate sputum discharge.

Известен препарат полипептидной природы (патент РФ №1681426 на изобретение "Способ получения средства, восстанавливающего дыхательную функцию легких", 1989, МПК А 61К35/24), полученный из органического сырья (трахеи животных).A known preparation of a polypeptide nature (RF patent No. 1681426 for the invention "A method for producing a means of restoring the respiratory function of the lungs", 1989, IPC A 61K35 / 24), obtained from organic raw materials (animal trachea).

Известно пептидное соединение, восстанавливающее функцию органов дыхания (патент RU2255757, МПК A61K 38/00, опубл. 10.07.2005 г.), представляющее собой тетрапептид аланил-глутамил-аспартил-лейцин общей формулы Ala-Glu-Asp-Leu [SEQ ID NO:1], обладающий биологической активностью, проявляющейся в восстановлении функции органов дыхания. Известно также фармакологическое средство пептидной природы, восстанавливающее функцию органов дыхания, содержащее активный пептидный агент и фармацевтически приемлемый носитель, в качестве активного пептидного агента использовано эффективное количество тетрапептида Ala-Glu-Asp-Leu [SEQ ID NO:1]. Известное соединение обладает близкой биологической активностью и является наиболее близким аналогом по химической структуре к заявляемому пептиду (следует отметить, что заявляемое новое пептидное соединение - тетрапептид Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 структурных аналогов не имеет).Known peptide compound that restores the function of the respiratory system (patent RU2255757, IPC A61K 38/00, publ. 07/10/2005), which is an alanyl-glutamyl-aspartyl-leucine tetrapeptide of the general formula Ala-Glu-Asp-Leu [SEQ ID NO : 1], with biological activity, manifested in the restoration of respiratory function. Also known is a peptidic pharmacological agent that restores respiratory function, contains an active peptide agent and a pharmaceutically acceptable carrier, an effective amount of Ala-Glu-Asp-Leu tetrapeptide is used as the active peptide agent [SEQ ID NO: 1]. The known compound has similar biological activity and is the closest analogue in chemical structure to the claimed peptide (it should be noted that the claimed new peptide compound - the tetrapeptide Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 has no structural analogues).

Возможность использования известного соединения в качестве основы лекарственных средств для лечения и профилактики ряда пульмонологических заболеваний и восстановления функции органов дыхания ограничивается целым рядом его недостатков: быстрой биодеградацией прототипа в крови и тканях организма; слабой биодоступностью прототипа при его пероральном приеме; низкой биологической активностью прототипа. Кроме этого, известное соединение не обладает выраженными иммуномодулирующими свойствами.The possibility of using the known compound as the basis of drugs for the treatment and prevention of a number of pulmonological diseases and the restoration of respiratory function is limited by a number of its disadvantages: rapid biodegradation of the prototype in the blood and body tissues; poor bioavailability of the prototype when taken orally; low biological activity of the prototype. In addition, the known compound does not have pronounced immunomodulatory properties.

Задача изобретения - получение нового биологически активного соединения пептидной природы, эффективно восстанавливающего функцию органов дыхания и обладающего иммуномодулирующими свойствами.The objective of the invention is to obtain a new biologically active compound of peptide nature, effectively restoring the function of the respiratory system and having immunomodulating properties.

Технический результат от заявляемого изобретения - комплексное восстановительное действие на функцию органов дыхания, включая иммуномокоррекцию.The technical result of the claimed invention is a comprehensive restorative effect on the function of the respiratory system, including immunomodulation.

Технический результат достигается тетрапептидом аланил-глутамил-аспартил-лейцин амид общей формулы Ala-Glu-Asp-Leu-NH2.The technical result is achieved by the tetrapeptide alanyl-glutamyl-aspartyl-leucine amide of the general formula Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 .

Технический результат достигается также применением тетрапептида аланил-глутамил-аспартил-лейцин амид общей формулы Ala-Glu-Asp-Leu-NH2, для восстановления функции органов дыхания и иммунокоррекции.The technical result is also achieved by the use of the tetrapeptide alanyl-glutamyl-aspartyl-leucine amide of the general formula Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 to restore respiratory function and immunocorrection.

Технический результат достигается также фармакологическим средством пептидной природы, восстанавливающим функцию органов дыхания и обладающим иммуномодулирующим действием, содержащим активный пептидный агент и фармацевтически приемлемый носитель. В отличие от прототипа в качестве активного пептидного агента содержит эффективное количество тетрапептида Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 в дозе 0,01-1000 мкг/кг массы тела.The technical result is also achieved by a pharmacological agent of a peptide nature, restoring the function of the respiratory system and having an immunomodulating effect, containing an active peptide agent and a pharmaceutically acceptable carrier. In contrast to the prototype, the active peptide agent contains an effective amount of the tetrapeptide Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 in a dose of 0.01-1000 μg / kg body weight.

Возможность объективного проявления технического результата при использовании изобретения подтверждена достоверными данными, приведенными в примерах, содержащих сведения экспериментального характера, полученные по методикам, принятым в данной области.The possibility of an objective manifestation of a technical result when using the invention is confirmed by reliable data given in the examples containing experimental information obtained by the methods adopted in this field.

Сущность изобретения поясняют иллюстрации.The invention is illustrated by illustrations.

Фиг. 1. Структурная формула заявляемого тетрапептида H-Ala-Glu-Asp-Leu-NH2;FIG. 1. The structural formula of the claimed tetrapeptide H-Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 ;

Фиг. 2. Схема синтеза тетрапептида Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 в растворе с помощью метода смешанных ангидридов;FIG. 2. Scheme for the synthesis of the tetrapeptide Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 in solution using the mixed anhydride method;

Фиг.3. Кинетика биодеградации тетрапептидов [3 H] Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 и [3 H] Ala-Glu-Asp-Leu в плазме крыс, обработанной гепарином;Figure 3. Kinetics of tetrapeptide biodegradation [3 H] Ala-Glu-Asp-Leu-NH2and [3 H] Ala-Glu-Asp-Leu in rat plasma treated with heparin;

Фиг.4. Фармакокинетические кривые тетрапептидов Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 и Ala-Glu-Asp-Leu в плазме крыс после внутривенного введения тетрапептидов в дозе 15 мг/кг; Figure 4. Pharmacokinetic curves of Ala-Glu-Asp-Leu-NH tetrapeptides2and Ala-Glu-Asp-Leu in rat plasma after intravenous administration of tetrapeptides at a dose of 15 mg / kg;

Фиг.5. Фармакокинетические кривые тетрапептидов Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 и Ala-Glu-Asp-Leu в плазме крыс после перорального введения тетрапептидов в дозе 50 мг/кг; Figure 5. Pharmacokinetic curves of Ala-Glu-Asp-Leu-NH tetrapeptides2and Ala-Glu-Asp-Leu in rat plasma after oral administration of tetrapeptides at a dose of 50 mg / kg;

Фиг.6. Принципиальная схема экспериментальной установки для моделирования ХОБЛ с помощью окуривания экспериментальных животных сигаретным дымом. На фиг.6 показано: 1 - Выхлопная труба; 2 - Кабина для животных; 3 - Распределительное устройство; 4 - Чистый воздух; 5- Всасывающий насос; 6 - Клапан №1; 7 - Клапан №2; 8 - Сигарета; 9 - Электронный блок. 6. Schematic diagram of an experimental setup for modeling COPD by fumigating experimental animals with cigarette smoke. Figure 6 shows: 1 - exhaust pipe; 2 - Cabin for animals; 3 - Switchgear; 4 - Clean air; 5- Suction pump; 6 - Valve No. 1; 7 - Valve No. 2; 8 - a cigarette; 9 - Electronic unit.

Тетрапептид Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 может быть получен любыми известными способами, как с помощью различных методов синтеза в растворе, так и с использованием различных методов твердофазного синтеза. В качестве примера приведено получение этого тетрапептида в растворе с помощью метода смешанных ангидридов (фиг.2). The tetrapeptide Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 can be obtained by any known method, both using various methods of synthesis in solution, and using various methods of solid-phase synthesis. An example is the preparation of this tetrapeptide in solution using the mixed anhydride method (FIG. 2).

1. Название соединения: L-аланил-L-глутамил-L-аспартил-L-лейцин-амид1. Name of compound: L-alanyl-L-glutamyl-L-aspartyl-L-leucine amide

2. Структурная формула тетрапептида H-Ala-Glu-Asp-Leu- NH2 приведена на фиг.1.2. The structural formula of the tetrapeptide H-Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 shown in figure 1.

3. Брутто-формула без противоиона: C18H31N5O8 3. Gross formula without counterion: C 18 H 31 N 5 O 8

4. Молекулярный вес без противоиона: 445,484. Molecular weight without counterion: 445.48

В описании синтеза использованы следующие сокращения:The following abbreviations are used in the description of the synthesis:

Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 - L-аланил-L-глутамил-L-аспартил-L-лейцин амидAla-Glu-Asp-Leu-NH 2 - L-Alanyl-L-Glutamyl-L-Aspartyl-L-Leucine Amide

Boc-Glu(OBzl)-OH x ДЦГА- дициклогексиламиновая соль N-карботретбутилокси-γ-(О-бензил)-глутаминовой кислоты;Boc-Glu (OBzl) -OH x DCCA-dicyclohexylamine salt of N-carbotretbutyloxy-γ- (O-benzyl) glutamic acid;

Boc-Glu(OBzl)-OH- N-карботретбутилокси-γ-(О-бензил)-глутаминовая кислота;Boc-Glu (OBzl) -OH- N-carbotretbutyloxy-γ- (O-benzyl) -glutamic acid;

Boc-Asp(OBzl)-OH - N- карбокситретбутилокси-β-(О-бензил)-аспарагиновая кислота; Boc-Asp (OBzl) -OH - N-carboxytet-butyloxy-β- (O-benzyl) aspartic acid;

Leu-NH2xHCl - гидрохлорид лейцин амида;Leu-NH 2 xHCl - leucine amide hydrochloride;

Boc-Asp(OBzl)-Leu-NH2 - N- карбокситретбутилокси-β-(О-бензил)-аспартил-лейцин амид;Boc-Asp (OBzl) -Leu-NH 2 -N-carboxytetbutyloxy-β- (O-benzyl) aspartyl-leucine amide;

Asp(OBzl)-Leu-NH2 * CF3COOH - β-(О-бензил)-аспартил-лейцин амид трифторацетат; Asp (OBzl) -Leu-NH 2 * CF 3 COOH - β- (O-benzyl) aspartyl-leucine amide trifluoroacetate;

Boc-Glu(OBzl)-Asp(OBzl)-Leu-NH2- N-карботретбутилокси-γ-(О-бензил)-глутамил-β-(О-бензил)-аспартил-лейцин амид;Boc-Glu (OBzl) -Asp (OBzl) -Leu-NH 2 —N-carbotretbutyloxy-γ- (O-benzyl) -glutamyl-β- (O-benzyl) -partyl-leucine amide;

Glu(OBzl)-Asp(OBzl)-Leu-NH2*CF3COOH - γ-(О-бензил)-глутамил-β-(О-бензил)-аспартил-лейцин амид трифторацетат;Glu (OBzl) -Asp (OBzl) -Leu-NH 2 * CF 3 COOH - γ- (O-benzyl) -glutamyl-β- (O-benzyl) -partyl-leucine amide trifluoroacetate;

Z-Ala-OH- карбобензокси-аланин;Z-Ala-OH-carbobenzoxy-alanine;

Z-Ala-Glu(OBzl)-Asp(OBzl)-Leu-NH2 - карбобензокси-аланил-γ-(О-бензил)-глутамил-β-(О-бензил)-аспартил-лейцин амид;
NMM - N-метилморфолин;
Z-Ala-Glu (OBzl) -Asp (OBzl) -Leu-NH 2 - carbobenzoxy-alanyl-γ- (O-benzyl) -glutamyl-β- (O-benzyl) -partyl-leucine amide;
NMM is N-methylmorpholine;

ТФУ- трифторуксусная кислота;TFA-trifluoroacetic acid;

Pd/C - палладий на угле;Pd / C - palladium on carbon;

DCC - дициклогексилкарбодиимид;DCC - dicyclohexylcarbodiimide;

HOBt-гидроксибензотриазол;HOBt-hydroxybenzotriazole;

IBCF- изобутилхлорформиат;IBCF-isobutylchloroformate;

ДЦГА-дициклогексиламин;DCCA-dicyclohexylamine;

ДМФА-диметилформамид;DMF-dimethylformamide;

ИПС-изопропиловый спирт.IPA isopropyl alcohol.

Синтез Boc -Asp (OBzl)-Leu-NH2.Synthesis of Boc-Asp (OBzl) -Leu-NH 2 .

Растворяем 2,16 г (0,00667 Моля) Boc-Asp(OBzl)-OH в 10,0 мл ДМФА, охлаждаем до -25 оС и добавляем 0,89 мл (0,935 г, 0,00669 Моль) 98 % IBCF. После достижение температуры -25 оС начинаем прикапывать при перемешивании в течение 15-20 мин 0,74 мл (0,0,68 г, 0,00682Моль) NMM, поддерживая температуру не выше -20 оС. Выдерживаем реакционную массу 20 мин при температуре -20 оС, затем охлаждаем до температуры до -40 оС. После чего добавляем 1,14 г (0,0068 Моль) Leu-NH2xHCl, суспендированного в 7,5 мл ДМФА, охлажденного до -10 оС. После чего добавляем 0,82 мл (0,75 г, 0,734 Моль) NMM. Охлаждаем реакционную массу до -20 оС. Выдерживаем при этой температуре 90 мин. Медленно поднимаем температуру реакционной массы до комнатной. Затем оставляем реакционную массу на ночь. Упариваем на роторном испарителе при остаточном давлении не выше 3 мм.рт.ст. и температуре в бане не выше +42 оС до окончания отгонки растворителя. Остаток растворяем в 30 мл этилацетата комнатной температуре (около +20 оС). Полученный раствор при комнатной температуре промываем по 7,5 мл водой, 3 % раствором лимонной кислоты, а затем еще два раза водой. Отгоняем этилацетат на роторном испарителе при остаточном давлении не выше 40 мм.рт.ст. и температуре в бане не выше +42 оС до окончания отгонки растворителя. Остаток затираем в смеси гексана (15 мл) с диэтиловым эфиром (1,5 мл) при комнатной температуре. Осадок фильтруем, промываем его дважды по 7,5 мл гексаном при комнатной температуре. Полученный осадок сушим в конвекционном сушильном шкафу при температуре не выше +40 оС до постоянной массы. Выход соединения Boc -Asp (OBzl)-Leu-NH2 - 2,32 г (96 %). Dissolve 2.16 g (0.00667 Mol) Boc-Asp (OBzl) -OH in 10.0 ml of DMF, cooled to -25 ° C and add 0.89 ml (0.935 g, 0.00669 moles) of 98% IBCF . After achieving a temperature of -25 C start dropwise with stirring over 15-20 min 0.74 ml (0,0,68 g, 0,00682Mol) NMM, maintaining the temperature not higher than -20 ° C. We maintain the reaction mixture 20 minutes at -20 ° C, then cooled to -40 ° C whereupon 1.14 g (0.0068 Mol) Leu-NH 2 xHCl, suspended in 7.5 ml of DMF, cooled to -10 ° C. Then add 0.82 ml (0.75 g, 0.734 mol) of NMM. Cool the reaction mixture to -20 ° C maintained at this temperature for 90 minutes. Slowly raise the temperature of the reaction mass to room temperature. Then leave the reaction mass overnight. We evaporate on a rotary evaporator with a residual pressure of not higher than 3 mm Hg. and the temperature in the bath is not higher than +42 о С until the end of solvent distillation. The residue is dissolved in 30 ml of ethyl acetate at room temperature (about +20 about C). The resulting solution at room temperature is washed with 7.5 ml of water, 3% citric acid solution, and then two more times with water. We distill off ethyl acetate on a rotary evaporator at a residual pressure of no higher than 40 mm Hg. and the temperature in the bath is not higher than +42 о С until the end of solvent distillation. The residue is overwritten in a mixture of hexane (15 ml) with diethyl ether (1.5 ml) at room temperature. Filter the precipitate, wash it twice with 7.5 ml of hexane at room temperature. The resulting precipitate dry them in a convection oven at a temperature not higher than 40 ° C to constant weight. The yield of Boc-Asp (OBzl) -Leu-NH 2 was 2.32 g (96%).

Синтез Boc-Glu(OBzl)-Asp(OBzl)-Leu-NH2 Synthesis of Boc-Glu (OBzl) -Asp (OBzl) -Leu-NH 2

К 1,87 г (0,0043Моль) Boc-Glu(OBzl)-Asp(OBzl)-Leu-NH2 при охлаждении на ледяной бане добавляем 6,75 мл охлажденной до +5 оС трифторуксусной кислоты. Перемешиваем до растворения, убираем ледяную баню, выдерживаем дополнительно еще 30 минут. Упариваем на роторном испарителе при остаточном давлении не более 20 мм.рт.ст. и температуре в бане не выше +40 оС до окончания отгонки трифторуксусной кислоты, соупариваем 2 раза по 7.5 мл бензола в тех же условиях. Остаток растворяем в 9 мл ДМФА , охлаждаем полученный раствор до -12 оС. После чего добавляем NMM (0.4-0,7 мл) до рН=7,3-7,5. Добавление NMM осуществляют непосредственно перед добавлением этого раствора к раствору смешанного ангидрида из Z-Glu(OBzl)-OH и IBCF.To 1.87 g (0,0043Mol) Boc-Glu (OBzl) -Asp (OBzl) -Leu-NH 2 under cooling in an ice bath add 6.75 ml cooled to 5 ° C with trifluoroacetic acid. Stir until dissolved, remove the ice bath, incubate an additional 30 minutes. We evaporate on a rotary evaporator with a residual pressure of not more than 20 mm Hg. and the temperature in the bath is not higher than +40 о С until the end of trifluoroacetic acid distillation, we evaporate 2 times 7.5 ml of benzene under the same conditions. The residue was dissolved in 9 ml of DMF, cool the resulting solution to -12 ° C. Then add NMM (0.4-0,7 mL) until pH = 7.3-7.5. Adding NMM is carried out immediately before adding this solution to a solution of mixed anhydride from Z-Glu (OBzl) -OH and IBCF.

К охлажденной до + 5- +10 оС суспензии Boc-Glu(OBzl)-OH х ДЦГА 2,47 г (0,00476 Моль) в 30 мл этилацетата добавляем 12 мл охлажденного до + 5- +10 оС раствора 20 % лимонной кислота (24 г моногидрата лимонной кислоты) до рН=4-5 , перемешиваем полученную смесь 5 минут, отделяем органический слой, водный слой подкисляем 30 % раствором серной кислотой комнатной температуры до рН=3 и экстрагируем дважды по 7.5 мл этилацетатом комнатной температуры. Промываем объединенный экстракт дважды по 4.5 мл 3 % раствором лимонной кислотой и дважды по 4.5 мл водой (температура воды и раствора лимонной кислоты комнатная). Упариваем этилацетат на роторном испарителе при остаточном давлении не выше 40 мм.рт.ст. и температуре в бане не выше +40 оС до окончания отгонки растворителя. Остаток соупариваем с 7.5 мл ДМФА для удаления воды на роторном испарителя при остаточном давлении не выше 3 мм.рт.ст. и температуре в бане не выше +40 оС до окончания отгонки растворителя. Вес полученного масла 1,92 г. Выход продукта 95 % (0,00377 Моль, 1.52 г Boc-Glu(OBzl)-OH).To the cooled +10 to + 5 ° C slurry Boc-Glu (OBzl) -OH DCHA x 2.47 g (0.00476 mol) in 30 ml of ethyl acetate were added 12 ml cooled to 10 + 5 C a 20% solution citric acid (24 g of citric acid monohydrate) to pH = 4-5, mix the resulting mixture for 5 minutes, separate the organic layer, acidify the aqueous layer with a 30% solution of sulfuric acid at room temperature to pH = 3 and extract twice with 7.5 ml of ethyl acetate at room temperature. We wash the combined extract twice with 4.5 ml of 3% solution of citric acid and twice with 4.5 ml of water (water temperature and room citric acid solution). Evaporate ethyl acetate on a rotary evaporator at a residual pressure of not higher than 40 mm Hg. and the temperature in the bath is not higher than +40 о С until the end of solvent distillation. The residue is evaporated with 7.5 ml of DMF to remove water on a rotary evaporator at a residual pressure of no higher than 3 mm Hg. and the temperature in the bath is not higher than +40 о С until the end of solvent distillation. The weight of the obtained oil was 1.92 g. Product yield 95% (0.00377 mol, 1.52 g Boc-Glu (OBzl) -OH).

Растворяем полученное масло 1,92 г (0,00452 Моль, 1.52 г Boc-Glu(OBzl)-OH) в 9 мл ДМФА , охлаждаем до - 30 оС и одной порцией добавляем 0,59 мл (6,17 г, 0,00452 Моль) 98 % IBCF. Температуру в реакционной массе поддерживаем в пределах от - 18 оС до - 20 оС. Выдерживаем 20 мин при температуре - 20 оС. Охлаждаем до температуры от - 35 оС до - 40 оС. Затем добавляем раствор Asp(OBzl)-Leu-NH2, полученного из 1,87 г (0,0043 Моль) Boc-Asp(OBzl)-Leu-NH2 и растворенного в 9 мл ДМФА, охлажденного до -20 оС, к которому затем добавляют 0,4-0,7 мл NMM, до достижения рН 7,3-7,5. При этом температура повышается до -15 оС. Реакционную смесь вновь охлаждают до температуры -20 оС. При этой температуре перемешиваем в течение 90 мин. Медленно поднимаем температуру до комнатной и оставляем на ночь. Упариваем на роторном испарителе при остаточном давлении не выше 3 мм.рт.ст. и температуре в бане не выше + 40 оС. Остаток растворяем в 2,4 мл этилацетата комнатной температуры. Затем промываем этилацетатный раствор по 4.5 мл: водой, 3 % раствором лимонной кислоты еще два раза водой. Температура воды и раствора лимонной кислоты - комнатная. Отгоняем этилацетат на роторном испарителе при остаточном давлении не выше 40 мм.рт.ст. и температуре в бане не выше + 40 оС до окончания отгонки растворителя. Остаток растворяем в 30 мл ИПС при температуре + 65-75 оС и оставляем полученный раствор для кристаллизации при комнатной температуре. Осадок фильтруем, промываем его на фильтре два раза 7.5 мл ИПС комнатной температуры, два раза 7.5 мл гексана комнатной температуры. Промытый осадок сушим в конвенционном сушильном шкафу при температуре не выше + 40 оС до постоянной массы. Выход соединения Boc-Glu(OBzl)-Asp(OBzl)-Leu-NH2 - 2,54 г (90 %). Dissolve the resulting oil 1.92 g (0.00452 Mol, 1.52 g of Boc-Glu (OBzl) -OH) in 9 ml of DMF, cooled to - 30 ° C and added in one portion 0.59 mL (6.17 g, 0 , 00452 mol) 98% IBCF. The temperature of the reaction mass is kept at between - 18 C to - 20 ° C was kept for 20 minutes at - 20 ° C is cooled to a temperature of - 35 C to - 40 C. Then add a solution of Asp (OBzl) - Leu-NH 2, prepared from 1.87 g (0.0043 Mol) Boc-Asp (OBzl) -Leu -NH 2, and dissolved in 9 ml of DMF, cooled to -20 ° C, to which was then added 0.4- 0.7 ml NMM, until a pH of 7.3-7.5 is reached. The temperature rises to -15 ° C. The reaction mixture was recooled to -20 ° C. At this temperature, stirred for 90 min. Slowly raise the temperature to room temperature and leave overnight. We evaporate on a rotary evaporator with a residual pressure of not higher than 3 mm Hg. and bath temperature not exceeding + 40 ° C. The residue is dissolved in 2.4 ml ethyl acetate at room temperature. Then we wash the ethyl acetate solution in 4.5 ml: water, 3% citric acid solution two more times with water. The temperature of the water and citric acid solution is room temperature. We distill off ethyl acetate on a rotary evaporator at a residual pressure of no higher than 40 mm Hg. and bath temperature not exceeding + 40 ° C to distill off the solvent closure. The residue was dissolved in 30 ml of IPA at a temperature of + 65-75 ° C and the resulting solution was subject to crystallization at room temperature. We filter the precipitate, wash it on the filter two times with 7.5 ml of isopropyl alcohol at room temperature, twice with 7.5 ml of hexane at room temperature. Dry the washed precipitate in conventional oven at a temperature not higher than + 40 ° C to constant weight. The yield of the Boc-Glu (OBzl) -Asp (OBzl) -Leu-NH 2 compound was 2.54 g (90%).

Синтез Z-Ala-Glu(OBzl)-Asp(OBzl)-Leu-NH2.Synthesis of Z-Ala-Glu (OBzl) -Asp (OBzl) -Leu-NH 2 .

К 2.828 г (0,0043Моль) Boc-Glu(OBzl)-Asp(OBzl)-Leu -NH2 при охлаждении ледяной бане добавляем 5,4 мл охлажденной до +5 оС ТФУ. Перемешиваем до растворения, убираем ледяную баню. Выдерживаем еще 30 минут. Упариваем полученный раствор на роторном испарителе при остаточном давлении не более 20 мм.рт.ст. и температуре в бане не выше + 40 оС до окончания отгонки ТФУ. Соупариваем два раза по 7.5 мл бензола в тех же условиях. Остаток растворяем в 9 мл ДМФА , охлаждаем полученный раствор до температуры - 12-15 оС, добавляем NMM (0,4-0,6 мл) до рН =7,3-7,5. NMM добавление к этому раствору осуществляем непосредственно перед добавлением к этому раствору раствора смешанного ангидрида из Z-Ala-OH и IBCF.To a 2.828 g (0,0043Mol) Boc-Glu (OBzl) -Asp (OBzl) -Leu -NH 2 under cooling with ice bath, add 5.4 mL, cooled to +5 C. TFA. Stir until dissolved, remove the ice bath. We stand for another 30 minutes. We evaporate the resulting solution on a rotary evaporator at a residual pressure of not more than 20 mm Hg. and the temperature in the bath is not higher than + 40 о С until the end of the distillation of TFU. We evaporate twice 7.5 ml of benzene under the same conditions. The residue was dissolved in 9 ml of DMF, cool the resulting solution to a temperature of - 12-15 C, add NMM (0,4-0,6 ml) until pH = 7.3-7.5. NMM addition to this solution is carried out immediately before the addition of a mixed anhydride solution from Z-Ala-OH and IBCF to this solution.

Растворяем 1,009 г (0,00452 Моль) Z-Ala-OH в 7.2 мл ДМФА. Охлаждаем до температуры - 30 оС. И одной порцией в этот раствор при перемешивании добавляем 0,59 мл (0,62 г, 0,00452 Моль) 98 % IBCF. Затем при перемешивании добавляем 0,49 мл (0,46 г, 0, 00452 Моль) NMM. Температуру при добавлении поддерживаем от - 18 оС до - 20 оС. Выдерживаем полученную реакционную семь при температуре - 20 оС в течение 20 мин. Охлаждаем раствор до температуры от - 35 оС до - 40 оС. Затем к реакционной смеси добавляем раствор Glu(OBzl)-Asp(OBzl)-Leu-NH2, полученный из 2,828 г (0,0043 Моль) Glu(OBzl)-Asp(OBzl)-Leu-NH2 и растворенного в ДМФА , охлажденного до - 20 оС, к которому затем добавленного 0,4-0,6 мл NMM для достижения рН=7,3-7,5. Температура поднимается до - 15 оС. Реакционную смесь охлаждаем до температуры - 20 оС. Выдерживаем при этой температуры при перемешивании 90 мин. После чего медленно поднимаем температуру до комнатной и оставляем на ночь. Dissolve 1.009 g (0.00452 mol) of Z-Ala-OH in 7.2 ml of DMF. Cooled to - 30 ° C and in one portion to this solution was added with stirring 0.59 ml (0.62 g, 0.00452 moles) of 98% IBCF. Then with stirring, add 0.49 ml (0.46 g, 0, 00452 mol) of NMM. The temperature when added support from - 18 C to - 20 ° C. We maintain the reaction at a temperature of seven - 20 ° C for 20 min. The solution is cooled to a temperature of - 35 C to - 40 C. To the reaction mixture add Glu (OBzl) solution -Asp (OBzl) -Leu-NH 2 obtained from 2.828 g (0.0043 Mol) Glu (OBzl) -Asp (OBzl) -Leu-NH 2 dissolved in DMF and cooled to - 20 ° C, to which is then added 0.4-0.6 ml NMM to achieve a pH = 7.3-7.5. The temperature is raised to - 15 C. The reaction mixture was cooled to - 20 ° C maintained at that temperature with stirring for 90 minutes. Then slowly raise the temperature to room temperature and leave overnight.

Упариваем на роторном испарителе при остаточном давлении не выше 3 мм.рт.ст. и температуре в бане не выше + 40 оС до полного удаления растворителя. Остаток растворяем в 24 мл этилацетата комнатной температуры. Полученный раствор промываем по 4.5 мл: водой, 3 % раствором лимонной кислоты, водой два раза, 3 % раствором лимонной кислоты. Отгоняем этилацетат на роторном испарителе при остаточном давлении не выше 40 мм.рт.ст. и температуре в бане не выше + 40 оС до окончания отгонки растворителя. Остаток растворяем в 30 мл ИПС при температуре + 65-75 оС и оставляем кристаллизоваться при комнатной температуре. Полученный осадок фильтруем, дважды промывают по 7.5 мл ИПС комнатной температуры, дважды 7.5 мл гексаном комнатной температуры. Промытый осадок сушим в конвекционном сушильном шкафу при температуре не а + 40 оС до постоянной массы. Выход соединения Z-Ala-Glu(OBzl)-Asp(OBzl)-Leu-NH2 - 2,72 г (83 %). We evaporate on a rotary evaporator with a residual pressure of not higher than 3 mm Hg. and bath temperature not exceeding + 40 ° C to completely remove the solvent. The residue is dissolved in 24 ml of ethyl acetate at room temperature. The resulting solution is washed with 4.5 ml: water, 3% citric acid solution, water twice, 3% citric acid solution. We distill off ethyl acetate on a rotary evaporator at a residual pressure of no higher than 40 mm Hg. and bath temperature not exceeding + 40 ° C to distill off the solvent closure. The residue was dissolved in 30 ml of IPA at a temperature of + 65-75 ° C and left to crystallize at room temperature. The precipitate is filtered, washed twice with 7.5 ml of IPA at room temperature, twice with 7.5 ml of hexane at room temperature. The washed precipitate dry them in a convection oven at a temperature and + 40 ° C to constant weight. The yield of Z-Ala-Glu (OBzl) -Asp (OBzl) -Leu-NH 2 compound was 2.72 g (83%).

Синтез Ala-Glu-Asp-Leu-NH2.Synthesis of Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 .

Растворяем 7.5 г (0.00987 Моль) Z-Ala-Glu(OBzl)-Asp(OBzl)-Leu-NH2 в минимальном количестве ДМФА (ориентировочно в 18 мл) при + 40 оС. К полученному раствору добавляем 18 мл уксусной кислоты. К полученному раствору добавляем 1,2 г 5 % палладия на угле (Sigma-Aldrich 205680 SPEC), суспендированного в 4,5 мл воды , и сразу начинаем пропускать интенсивный ток газообразного водорода. Проводим гидрирование реакционной массы при температуре + 40-42 оС. Во время гидрирования возможно выделение из реакционной массы осадка. Поэтому сначала (через 1-2 часа после начала процесса гидрирования) добавляем 7.5-15 мл смеси 1:1 уксусной кислоты и ДМФА, а затем через 10-15 часов при повторном выпадении осадка добавляем 7.5-9 мл воды. Процесс гидрирования провидится в течение 18-20 часов. После окончания гидрирования отфильтровываем палладий на угле. Уголь промываем два -три раза уксусной кислотой , а затем два-три раза теплой водой (с температурой + 40-50 оС).Dissolve 7.5 g (0.00987 Mol) Z-Ala-Glu (OBzl ) -Asp (OBzl) -Leu-NH 2 in a minimum quantity of DMF (approximately 18 ml) at + 40 ° C. To the resulting solution add 18 ml of acetic acid. To the resulting solution we add 1.2 g of 5% palladium on carbon (Sigma-Aldrich 205680 SPEC) suspended in 4.5 ml of water, and immediately begin to pass an intense stream of hydrogen gas. Hydrogenated reaction mass at a temperature of + 40-42 ° C during the hydrogenation reaction can be released from the sludge mass. Therefore, first (1-2 hours after the start of the hydrogenation process), we add 7.5-15 ml of a 1: 1 mixture of acetic acid and DMF, and then after 10-15 hours we add 7.5-9 ml of water after repeated precipitation. The hydrogenation process is performed within 18-20 hours. After the end of hydrogenation, we filter out palladium on charcoal. Coal is washed two or three times with acetic acid, and then two or three times with warm water (with a temperature of + 40-50 ° C).

Фильтрат и промывки упариваем раздельно. Фильтрат и объединенные промывки упариваем на роторном испарителе при температуре не выше +42 оС при остаточном давлении вначале 20 мм.рт.ст. , а затем при остаточном давлении 5 мм.рт.ст. Упаривание осуществляют примерно на 2/3 от исходного раствора. После чего кубовые остатки образовавшиеся от упаривания фильтрата и промывки объединяют вместе. К полученному общему кубовому остатку добавляют 30 мл ИПС комнатной температуры и тщательно перемешивают в течение 2-5 минут до образования кристаллов. Образовавшиеся кристаллы быстро фильтруют под пленкой. Кристаллы на фильтре промывают три раза по 15 мл ИПС комнатной температуры, затем два раза промывают по 15 мл гексаном комнатной температуры и сушат под вакуумом на роторном испарителе при остаточном давлении 20 мм.рт.ст. и температуре в бане не выше +40 оС до постоянного веса. Выход соединения Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 4.17 г (95%).Evaporate the filtrate and washings separately. The filtrate and the combined washes are evaporated on a rotary evaporator at a temperature of no higher than +42 о С at a residual pressure of 20 mm Hg at the beginning. and then at a residual pressure of 5 mm Hg. Evaporation is carried out approximately 2/3 of the initial solution. After that, the still bottoms formed from evaporation of the filtrate and washing are combined together. To the resulting bottom residue, add 30 ml of IPA at room temperature and mix thoroughly for 2-5 minutes until crystals form. The resulting crystals are quickly filtered under a film. The crystals on the filter are washed three times with 15 ml of IPA at room temperature, then washed twice with 15 ml of hexane at room temperature and dried under vacuum on a rotary evaporator at a residual pressure of 20 mm Hg. and the temperature in the bath is not higher than + 40 о С to constant weight. The yield of Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 compound was 4.17 g (95%).

Для пояснения сущности изобретения приведены примеры.To clarify the invention are examples.

Пример 1. Изучение общетоксического действия тетрапептида Ala-Glu-Asp-Leu-NH2. Example 1. The study of the general toxic effect of the tetrapeptide Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2.

Общетоксическое действие тетрапептида Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 исследовали в соответствии с требованиями Руководства по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ”/ Под редакцией член-корреспондента, профессора Р.У. Хабриева - 2 изд., перераб. и доп.- М.: ОАО "Издательство "Медицина", 2005: 823.The general toxic effect of the tetrapeptide Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 was studied in accordance with the requirements of the Guidelines for the experimental (preclinical) study of new pharmacological substances ”/ Edited by Corresponding Member, Professor R.U. Khabrieva - 2nd ed., Revised. and add. - M.: Publishing House "Medicine", 2005: 823.

Исследование общетоксического действия тетрапептида Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 осуществлялось в два этапа: а) изучение "острой токсичности"; б) изучение "хронической" токсичности.The study of the general toxic effect of the tetrapeptide Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 was carried out in two stages: a) the study of "acute toxicity"; b) the study of "chronic" toxicity.

Эти исследования проводили на мышах линии SHR обоего пола в возрасте 2-2,5 месяцев и массой тела 18-22 г, и на крысах линии Wistar обоего пола в возрасте 2-4 месяцев и массой тела 150-240 г. These studies were performed on SHR mice of both sexes aged 2-2.5 months and weighing 18-22 g, and on Wistar rats of both sexes aged 2-4 months and weighing 150-240 g.

При однократном внутримышечном и внутрижелудочном введении тетрапептида мышам линии SHR обоего пола (по 35-140 мкг/мышь) и крысам линии Wistar обоего пола (по 350-1400 мкг/крысу) токсический эффект препарата не был обнаружен. Расчет токсической дозы показал, что для данного тетрапептида значение ЛД 50 составляет 1587 мг/кг при однократном внутрижелудочном введении и 1111 мг/кг при многократном внутрижелудочном введении в течение 24 дней ежедневно. Расчет кумуляции составил 0,70. Это указывает на отсутствие привыкания организма к данному тетрапептиду. Необходимо отметить, что ЛД 50 превышает предполагаемую терапевтическую дозу для перорального применения в 225000 раз.With a single intramuscular and intragastric administration of the tetrapeptide to SHR mice of both sexes (35-140 μg / mouse) and Wistar rats of both sexes (350-1400 μg / rat), the toxic effect of the drug was not detected. The calculation of the toxic dose showed that for this tetrapeptide, the LD 50 value is 1587 mg / kg for a single intragastric administration and 1111 mg / kg for a multiple intragastric administration for 24 days daily. The cumulation calculation was 0.70. This indicates a lack of addiction to this tetrapeptide. It should be noted that LD 50 exceeds the estimated therapeutic dose for oral administration by 225,000 times.

Пример 2. Изучение биотрансформации и времени жизни тетрапептидов Ala-Glu-Asp-Leu и Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 в плазме крови крысы. Example 2. The study of biotransformation and lifetime of tetrapeptides Ala-Glu-Asp-Leu and Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 in rat plasma.

Для исследования биотрансформации тетрапептидов Ala-Glu-Asp-Leu и Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 применялась ВЭЖХ продуктов взаимодействия [3 H] Ala-Glu-Asp-Leu и [3 H] Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 с плазмой крови крыс, предварительно обработанной гепарином. Использовались меченные тритием эти тетрапептиды с молярной радиоактивностью 55 и 65 Ки/мМоль. При выполнении ВЭЖХ применялись последовательно соединенные УФ-детектор и проточный детектор радиоактивности. Хроматографию проводили на колонке , заполненной сорбентом с обращённой фазой С18, размером частиц 5 мкм (Luna 5u C18(2) 100A. В качестве подвижной фазы использовалась смесь ацетонитрила и 0,05 М раствора однозамещённого фосфата калия с рН 3 в соотношении 1:9.To study the biotransformation of tetrapeptides Ala-Glu-Asp-Leu and Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 , HPLC of the products of [ 3 H] Ala-Glu-Asp-Leu and [ 3 H] Ala-Glu-Asp-Leu- NH 2 with rat blood plasma pretreated with heparin. Tritium-labeled these tetrapeptides with molar radioactivity of 55 and 65 Ci / mmol were used. When performing HPLC, a UV detector and a flow detector of radioactivity were used in series. Chromatography was performed on a column filled with a sorbent with a reversed phase C 18 , particle size 5 μm (Luna 5u C18 (2) 100 A. A mixture of acetonitrile and a 0.05 M solution of monosubstituted potassium phosphate with a pH of 3 in a ratio of 1: 9 was used as the mobile phase .

Для идентификации пептидных фрагментов, которые могут образовываться при биотрансформации в плазме крови крыс этих двух тетрапептидов [3 H] Ala-Glu-Asp-Leu и [3 H] Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 были синтезированы 2-3 членные пептидные фрагменты, образующиеся при различных путях биодеградации с C и N конца пептидной цепи. Для определения кинетики биодеградации использовалась исходная концентрация этих тетрапептидов 7.0 мкМоль в гепариновой плазме крови крысы. To identify the peptide fragments that can be formed during biotransformation in the blood plasma of rats of these two [ 3 H] Ala-Glu-Asp-Leu and [ 3 H] Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 tetrapeptides, 2-3 membered peptide fragments formed during various biodegradation pathways with the C and N ends of the peptide chain. To determine the kinetics of biodegradation, we used the initial concentration of these tetrapeptides of 7.0 μmol in rat heparin plasma.

Результаты выполненных исследований показали, что гидролиз тетрапептидов [3 H] Ala-Glu-Asp-Leu и [3 H] Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 в гепариновой плазме крови крыс под действием пептидаз происходил по двум разным схемам. Гидролиз тетрапептида [3 H] Ala-Glu-Asp-Leu происходил под действием диаминопептидаз, имеющихся в плазме крови крыс, с N- конца пептидной цепи. В то время как, гидролиз [3 H] Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 происходил под действием дикарбоксипептидаз с С- конца пептидной цепи. Кроме этого было достоверно показано, что тетрапептид [3 H] Ala-Glu-Asp-Leu-NH2, по сравнению с тетрапептидом [3 H] Ala-Glu-Asp-Leu , обладает более высокой устойчивостью к гидролизу в гепариновой плазме крови крыс. The results of the studies showed that the hydrolysis of [ 3 H] Ala-Glu-Asp-Leu tetrapeptides and [ 3 H] Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 tetrapeptides in rat heparin plasma under the action of peptidases occurred according to two different schemes. Hydrolysis of the tetrapeptide [ 3 H] Ala-Glu-Asp-Leu occurred under the action of diaminopeptidases present in rat plasma from the N-terminus of the peptide chain. At the same time, hydrolysis of [ 3 H] Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 occurred under the action of dicarboxypeptidases from the C-terminus of the peptide chain. In addition, it was reliably shown that the tetrapeptide [ 3 H] Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 , in comparison with the tetrapeptide [ 3 H] Ala-Glu-Asp-Leu, has a higher resistance to hydrolysis in rat heparin plasma .

Изменение концентрации тетрапептидов в гепариновой крови крыс во времени показано на фиг.3. Период полудеградации для тетрапептида [3 H] Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 равнялся 18 минут. В то время аналогичный показатель для тетрапептида [3 H] Ala-Glu-Asp-Leu был равен 3 минуты. The change in the concentration of tetrapeptides in rat heparin blood over time is shown in FIG. 3. The half-degradation period for the tetrapeptide [ 3 H] Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 was 18 minutes. At that time, the same indicator for the tetrapeptide [ 3 H] Ala-Glu-Asp-Leu was 3 minutes.

Пример 3. Изучение фармакокинетики тетрапептидов Ala-Glu-Asp-Leu и Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 в плазме крови крыс при пероральном и внутривенном способах введения.Example 3. The study of the pharmacokinetics of tetrapeptides Ala-Glu-Asp-Leu and Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 in the blood plasma of rats with oral and intravenous routes of administration.

Для изучения фармакокинетики тетрапептидов Ala-Glu-Asp-Leu и Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 в плазме крови крыс была разработана высокоспецифичная и высокочувствительная методика их количественного определения с применением высокоэффективной жидкостной хроматографии в сочетании с тандемным масс-спектрометрическим детектором (API 3200 Q Trap, Applied Biosystems/MDS SCIEX, США). Детектирование целевых соединений проводили методом ионизации электроспрей (ESI) в режиме регистрации положительных ионов, образующихся из этих тетрапептидов. Хроматографическое разделение осуществляли на колонке Zorbax Extend C18, 3.5 мкм, 50×4.6 мм (Agilent, США) в градиентном режиме элюирования (скорость потока 1 мл/мин, общее время анализа 3.5 мин). Подвижная фаза состояла из ацетонитрила и воды, содержащих 0.1% муравьиной кислоты. В этих условиях время удерживания тетрапептидов Ala-Glu-Asp-Leu и Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 составило соответственно 0.95±0.01 мин и 0.65±0.01 мин. To study the pharmacokinetics of Ala-Glu-Asp-Leu and Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 tetrapeptides in rat blood plasma, a highly specific and highly sensitive method for their quantification was developed using high performance liquid chromatography in combination with a tandem mass spectrometric detector (API 3200 Q Trap, Applied Biosystems / MDS SCIEX, USA). The target compounds were detected by electrospray ionization (ESI) in the mode of registration of positive ions formed from these tetrapeptides. Chromatographic separation was carried out on a Zorbax Extend C18 column, 3.5 μm, 50 × 4.6 mm (Agilent, USA) in the gradient elution mode (flow rate 1 ml / min, total analysis time 3.5 min). The mobile phase consisted of acetonitrile and water containing 0.1% formic acid. Under these conditions, the retention times of Ala-Glu-Asp-Leu and Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 tetrapeptides were 0.95 ± 0.01 min and 0.65 ± 0.01 min, respectively.

Извлечение тетрапептидов из плазмы крови крыс проводили методом твердо-фазной экстракции (ТФЭ) в экстракционных платах Oasis HLB, 30 μm (30 mg) (Waters, Ирландия). Предел количественного определения (Lower Limit of Quantification – LLOQ) в плазме крови крысы тетрапептидов Ala-Glu-Asp-Leu и Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 составило соответственно составлял 70 нг/мл и 80 нг/мл , при соотношении сигнал/ шум >6. Градуировочные графики для этих тетрапептидов имели линейную зависимость (r = 0.9976 и 0.9899 1/x weighting фактор) в диапазоне концентраций 75÷10000 нг тетрапептида/ мл плазмы. Эти исследования проводили на крысах самцах линии Wistar обоего пола в возрасте 2-4 месяцев и массой тела 150-240 г. Extraction of tetrapeptides from rat plasma was carried out by solid phase extraction (TFE) in Oasis HLB, 30 μm (30 mg) extraction boards (Waters, Ireland). The limit of the quantitative determination (Lower Limit of Quantification - LLOQ) in the blood plasma of rat Ala-Glu-Asp-Leu and Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 tetrapeptides was 70 ng / ml and 80 ng / ml, respectively, with a signal ratio / noise> 6. Calibration plots for these tetrapeptides had a linear relationship (r = 0.9976 and 0.9899 1 / x weighting factor) in the concentration range of 75 ÷ 10,000 ng tetrapeptide / ml plasma. These studies were performed on male Wistar rats of both sexes aged 2-4 months and weighing 150-240 g.

Исследование фармакокинетики двух этих тетрапепдидов при пероральном и внутривенном способах введения проводили на 20 крысах самцах Wistar, разделенных на следующие равные по количеству животных группы: The study of the pharmacokinetics of these two tetrapeptides by oral and intravenous routes of administration was carried out on 20 Wistar male rats, divided into the following groups of equal number of animals:

Группа №1. Пяти крысам перорально (с помощью внутрижелудочного зонда) вводили тетрапептид Ala-Glu-Asp-Leu в дозе 50 мг/кг; Group number 1. Five rats were orally (using an intragastric tube) administered with Ala-Glu-Asp-Leu tetrapeptide at a dose of 50 mg / kg;

Группа №2. Пяти крысам внутривенно в хвостовую латеральную вену тетрапептид Ala-Glu-Asp-Leu в дозе 5 мг/кг;Group number 2. Five rats intravenously into the tail lateral vein of the tetrapeptide Ala-Glu-Asp-Leu at a dose of 5 mg / kg;

Группа №3. Пяти крысам перорально (с помощью внутрижелудочного зонда) вводили тетрапептид Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 в дозе 50 мг/кг; Group number 3. Five rats were administered orally (using an intragastric tube) with a dose of 50 mg / kg Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 tetrapeptide;

Группа №4. Пяти крысам внутривенно в хвостовую латеральную вену тетрапептид Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 в дозе 5 мг/кг;Group number 4. Five rats intravenously into the tail lateral vein, the tetrapeptide Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 at a dose of 5 mg / kg;

Во всех четырех группах использовались для введения стерильные растворы тетрапептидов. Для приготовления этих растворов применялись стерильный физиологический раствор.In all four groups, sterile solutions of tetrapeptides were used for administration. Sterile saline was used to prepare these solutions.

Используемые дозы каждого препарата были значительно выше предполагаемых фармакологически эффективных доз тетрапептидов, применяемых для лечения экспериментальных патологических процессов у крыс. Пробы крови отбирали декапитацией животных. Кровь собирали в пробирки, содержащие ЭДТА, через 5, 10, 15, 20 и 30 мин после перорального и внутривенного введения. Плазму крови отделяли центрифугированием при 10000 об/мин в течение 15 мин и сразу подвергали обработке для проведения ВЭЖХ-МС анализа.The doses of each drug used were significantly higher than the estimated pharmacologically effective doses of tetrapeptides used to treat experimental pathological processes in rats. Blood samples were taken by decapitation of animals. Blood was collected in tubes containing EDTA 5, 10, 15, 20 and 30 minutes after oral and intravenous administration. Blood plasma was separated by centrifugation at 10,000 rpm for 15 min and immediately subjected to processing for HPLC-MS analysis.

На фиг. 4 в графическом виде приведены данные по изменению концентрации этих исследованных тетрапептидов в крови крыс при внутривенном введении этих субстанций.In FIG. 4 graphically shows data on the change in the concentration of these investigated tetrapeptides in the blood of rats with the intravenous administration of these substances.

На фиг.5 в графическом виде приведены данные по изменению концентрации тетрапептидов в крови крыс при пероральном введении этих субстанций введении этих субстанций.Figure 5 graphically shows the data on the change in the concentration of tetrapeptides in the blood of rats with the oral administration of these substances, the introduction of these substances.

Полученные экспериментальные данные по изменению концентраций этих двух тетрапептидов при пероральном и внутривенных способах введения были обработаны методами математической статистик для получения следующих фармакокинетических параметров: The experimental data obtained on the change in the concentrations of these two tetrapeptides with oral and intravenous methods of administration were processed by mathematical statistics to obtain the following pharmacokinetic parameters:

AUC 0→∞ (мкг/мл х мин) - площадь под графиком " концентрация лекарственного вещества — время», рассчитывается от момента введения до бесконечности";AUC 0 → ∞ (μg / ml x min) - the area under the graph "drug concentration - time", calculated from the time of administration to infinity ";

MRT (мин) — среднее время пребывания лекарственного вещества в организме; MRT (min) is the average residence time of a drug substance in the body;

К эл (мин -1) — константа скорости элиминации, параметр, характеризующий скорость выведения препарата из организма после перорального или внутривенного введения;To el (min -1 ) is the elimination rate constant, a parameter that characterizes the rate of elimination of the drug from the body after oral or intravenous administration;

К аб (мин -1) — константа скорости абсорбции, параметр, характеризующий скорость абсорбции препарата в организм после перорального введения;To ab (min -1 ) is the absorption rate constant, a parameter that characterizes the rate of absorption of the drug into the body after oral administration;

Vss (мл) – стационарный объем распределения вещества; V ss (ml) is the stationary volume of the distribution of the substance;

Cl (мл/мин) – общий клиренс – объем плазмы, который очищается от препарата в единицу времени; Cl (ml / min) - total clearance - the amount of plasma that is purified from the drug per unit time;

T1/2 (мин) — период, за который выводится половина введённой (или всосавшейся) дозы лекарственного вещества; T 1/2 (min) - the period for which half of the administered (or absorbed) dose of the drug substance is excreted;

Численные значения этих фармакокинетических параметров приведены в таблице 1.The numerical values of these pharmacokinetic parameters are shown in table 1.

Таблица 1. Table 1.

Фармакокинетические параметры для тетрапептидов Ala-Glu-Asp-Leu и Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 при пероральном и внутривенном способах введения Pharmacokinetic parameters for tetrapeptides Ala-Glu-Asp-Leu and Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 for oral and intravenous routes of administration

Обозначение параметраParameter designation Ala-Glu-Asp-LeuAla-Glu-Asp-Leu Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 Внутривенный способ введения,
Доза 15 мг/кг
Intravenous route of administration
Dose 15 mg / kg
Пероральный способ введения
Доза 50 мг/кг
Oral route of administration
Dose 50 mg / kg
Внутривенный способ введения
Доза 15 мг/кг
Intravenous route of administration
Dose 15 mg / kg
Пероральный способ введения
Доза 50 мг/кг
Oral route of administration
Dose 50 mg / kg
AUC 0→∞ , мкг/мл х минAUC 0 → ∞ , μg / ml x min 23,723.7 21,621.6 33,533.5 31,031,0 К эл, мин -1K el , min -1 0,1190.119 0,1370.137 0,0750,075 0,0950,095 К аб, мин -1K ab , min -1 -- 0,0890,089 -- 0,0990,099 Vss, млV ss , ml 3526035260 100603100603 3516135161 478688478688 T1/2 ,мин T 1/2 min 5,795.79 5,035.03 8,178.17 10,4710.47 Cl , мл/мин Cl, ml / min 42144214 46224622 29812981 31543154

Как видно из представленных в таблице 1 данных:As can be seen from the data presented in table 1:

а) При пероральном способе введения такой параметр как Каб для нового тетрапептида Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 выше , чем для аналогичный параметр для тетрапептида Ala-Glu-Asp-Leu. Это указывает на то, что новый тетрапептид Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 по сравнению с взятым прототипом, лучше усваивается через желудочно -кишечный тракт, т.е. количество этого нового тетрапептида , попадающего в системный кровоток, выше. a) With the oral route of administration, a parameter such as K ab for the new Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 tetrapeptide is higher than for a similar parameter for the Ala-Glu-Asp-Leu tetrapeptide. This indicates that the new tetrapeptide Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 compared with the prototype taken is better absorbed through the gastrointestinal tract, i.e. the amount of this new tetrapeptide that enters the systemic circulation is higher.

б) При пероральном и внутривенном способах введения параметр Кэл для нового тетрапептида Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 существенного ниже, чем указанный параметр для тетрапептида Ala-Glu-Asp-Leu, т.е. этот новый тетрапептид подвергается заметно более слабой биотрансформации в организме. b) For oral and intravenous routes of administration, the parameter K el for the new Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 tetrapeptide is significantly lower than the specified parameter for the Ala-Glu-Asp-Leu tetrapeptide, i.e. this new tetrapeptide undergoes a markedly weaker biotransformation in the body.

в) При пероральном и внутривенном способах введения Cl для нового тетрапептида Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 существенного ниже, чем указанный параметр для тетрапептида Ala-Glu-Asp-Leu. Это также указывает на то, что этот новый тетрапептид подвергается заметно более слабой биотрансформации в организме.c) With the oral and intravenous methods of administering Cl for the new Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 tetrapeptide, it is significantly lower than the indicated parameter for the Ala-Glu-Asp-Leu tetrapeptide. This also indicates that this new tetrapeptide undergoes a markedly weaker biotransformation in the body.

Пример 4. Исследование противоспалительной активности тетрапептидов на модели экспериментальной бронхопневмонии, вызванной введением скипидара в бронхи крыс. Example 4. The study of the anti-inflammatory activity of tetrapeptides in a model of experimental bronchopneumonia caused by the introduction of turpentine in the bronchi of rats.

Исследование противоспалительной активности тетрапептидов на модели экспериментальной бронхопневмонии, вызванной введением скипидара в бронхи крыс, проводили на крысах самцах линии Wistar в возрасте 2-4 месяцев и массой тела 150-240 г. The study of the anti-inflammatory activity of tetrapeptides in a model of experimental bronchopneumonia caused by the administration of turpentine in rat bronchi was carried out on male Wistar rats aged 2-4 months and weighing 150-240 g.

Исследования были выполнены на 60 крысах самцах. Все животные были разделены на следующие три равные по количеству животных группы (по 15 крыс самцов в каждой группе): Studies were performed on 60 male rats. All animals were divided into the following three groups, equal in number of animals (15 male rats in each group):

Группа № 1. (Интактная группа). Животные, не подвергшиеся введению скипидара, с дополнительным введением физиологического раствора. Group No. 1. (Intact group). Animals not exposed to turpentine, with additional administration of saline.

Группа №2 ( Контрольная группа). Животные с моделированным острым бронхолегочным воспалением с дополнительным внутрибрюшинным введением физиологического раствора. Group No. 2 (Control group). Animals with simulated acute bronchopulmonary inflammation with additional intraperitoneal administration of saline.

Группа №3. Животные с моделированным острым бронхолегочным воспалением с последующим внутрибрюшинны м введением тетрапептид Ala-Glu-Asp-Leu в дозе 30 мг/кг;Group number 3. Animals with simulated acute bronchopulmonary inflammation followed by intraperitoneal administration of Ala-Glu-Asp-Leu tetrapeptide at a dose of 30 mg / kg;

Группа №4. Животные с моделированным острым бронхолегочным воспалением с последующим внутрибрюшинном введением тетрапептид Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 в дозе 30 мг/кг. Group number 4. Animals with simulated acute bronchopulmonary inflammation followed by intraperitoneal administration of the tetrapeptide Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 at a dose of 30 mg / kg

Острое бронхолегочное воспаление (бронхопневмонию) у крыс моделировали способом, подробно описанном в работе (Зарубина И.В., Мокренко Е.В., Болехан А.В., Шабанов П.Д. Противоспалительная и иммуномодулирующая активность метапрота, трекрезана и полиоксидония и их комбинации при экспериментальном бронхолегочном воспалении у крыс// Вестник Смоленской государственной медицинской академии. 2016; 15 (1): 5-13).Acute bronchopulmonary inflammation (bronchopneumonia) in rats was modeled by the method described in detail in the work (Zarubina I.V., Mokrenko E.V., Bolekhan A.V., Shabanov P.D.Anti-inflammatory and immunomodulating activity of metaprot, trekrezan and polyoxidonium and their combinations in experimental bronchopulmonary inflammation in rats // Bulletin of the Smolensk State Medical Academy. 2016; 15 (1): 5-13).

Крысы из группы № 1 не подвергались в ходе исследования какому либо хирургическому воздействию. Rats from group No. 1 were not exposed to any surgical exposure during the study.

Каждой крысе из групп № 2, 3 и 4 под эфирным наркозом хирургическим путем обнажали трахею и уколом в просвет между двумя хрящевыми полукольцами иглой диаметром 0,8 мм вводили 0,1 мл живичного скипидара (по ГОСТ 1571-82). Разрез на шее ушивали. Затем сразу после операции и далее каждый день на протяжении 5 дней животным из групп № 1 и № 2 внутрибрюшинно вводили стерильный физиологический раствор; а животным из группы № 3 и № 4 внутрибрюшинно вводили стерильный раствор, содержащий соответственно тетрапетиды Ala-Glu-Asp-Leu и Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 . На пятые сутки исследования определяли число выживших животных. В таблице 2 представлены данные по количеству выживших животных в каждой из четырех групп на 5 сутки проведения исследования. После чего животных декапитировали и отделяли легкие животных. Легкие хранили в жидком азоте. После чего ткань измельчали, гомогенизировали и проводили определение биохимических показателей, характеризующих энергетический обмен клеток легочных тканей животных: Each rat from groups 2, 3, and 4 under ether anesthesia was surgically exposed to the trachea and an injection into the lumen between two cartilaginous half rings with a 0.8 mm diameter needle, 0.1 ml of turpentine was injected (according to GOST 1571-82). A cut on the neck was sutured. Then immediately after the operation and then every day for 5 days, animals from groups No. 1 and No. 2 were injected intraperitoneally with sterile saline; and the animals from group No. 3 and No. 4 were injected intraperitoneally with a sterile solution containing Ala-Glu-Asp-Leu and Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 tetrapetides, respectively. On the fifth day of the study, the number of surviving animals was determined. Table 2 presents data on the number of surviving animals in each of the four groups on the 5th day of the study. Then the animals were decapitated and the lungs of the animals were separated. The lungs were stored in liquid nitrogen. After that, the tissue was crushed, homogenized, and biochemical parameters characterizing the energy metabolism of animal lung tissue cells were determined:

а) Содержание молочной кислоты (Лактат);a) Lactic acid content (Lactate);

б) Содержание пирувата;b) The content of pyruvate;

в) Содержание аденозинтрифосфорной, аденозиндифосфорной и аденозинмонофосфорной кислот; c) The content of adenosine triphosphoric, adenosine diphosphoric and adenosine monophosphoric acids;

г) содержание малонового диальдегида; g) the content of malondialdehyde;

д) Содержание диеновых конъюгатов.d) The content of diene conjugates.

Таблица 2. Table 2.

Влияние введения тетрапептидов на выживаемость крыс при моделировании острого бронхолегочного воспаления.The effect of the introduction of tetrapeptides on the survival of rats in modeling acute bronchopulmonary inflammation.

Номер группыGroup number Количество животных взятых для исследования, штукThe number of animals taken for research, pieces Количество выживших животных на 5 сутки исследования, штукThe number of surviving animals on the 5th day of the study, pieces Доля выживших животных на 5 сутки исследований, % The share of surviving animals on the 5th day of research,% Группа № 1. (Интактная группа)Group No. 1. (Intact group) 15fifteen 14fourteen 93,093.0 Группа №2
(Контрольная группа. Бронхолегочное воспаление)
Group No. 2
(Control group. Bronchopulmonary inflammation)
15fifteen 55 30,030,0
Группа №3 (Бронхолегочное воспаление и введение Ala-Glu-Asp-Leu)Group No. 3 (Bronchopulmonary inflammation and administration of Ala-Glu-Asp-Leu) 15fifteen 99 60,060.0 Группа №3 (Бронхолегочное воспаление и введение Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 )Group No. 3 (Bronchopulmonary inflammation and administration of Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 ) 15fifteen 1212 80,080.0

Как видно из представленных в таблице 2 экспериментальных данных, введение в течение 5 дней крысам с острым бронхолегочным воспалением тетрапептидов заметно увеличивает выживаемость животных. Однако, новый тетрапептид Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 более эффективно увеличивает выживаемость животных, чем взятый для сравнения прототип. As can be seen from the experimental data presented in Table 2, the administration of tetrapeptides to rats with acute bronchopulmonary inflammation significantly increases animal survival for 5 days. However, the new Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 tetrapeptide more effectively enhances animal survival than the prototype taken for comparison.

Таблица 3. Table 3.

Влияние тетрапептидов на метаболические процессы в легких крыс при моделировании острого бронхолегочного воспаления.The effect of tetrapeptides on metabolic processes in the lungs of rats in modeling acute bronchopulmonary inflammation.

ПоказателиIndicators Группы животныхGroups of animals Группа № 1. (Интактная группа)Group No. 1. (Intact group) Группа №2 (Контрольная группа)
Бронхолегочное воспаление
Group No. 2 (Control group)
Bronchopulmonary inflammation
Группа №3
Бронхолегочное воспаление и введение Ala-Glu-Asp-Leu
Group number 3
Bronchopulmonary inflammation and administration of Ala-Glu-Asp-Leu
Группа №4 Бронхолегочное воспаление и введение Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 )Group No. 4 Bronchopulmonary inflammation and administration of Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 )
Лактат, мкМоль/г тканиLactate, μmol / g of tissue 3,06 ± 0,143.06 ± 0.14 7,66 ±0,127.66 ± 0.12 5,17 ±0,165.17 ± 0.16 3,88 ±0,11 *3.88 ± 0.11 * Пируват, мкМоль/г тканиPyruvate, μmol / g of tissue 0,29 ±0,030.29 ± 0.03 0,06 ±0,030.06 ± 0.03 0,16 ± 0,040.16 ± 0.04 0,22 ±0,05 *0.22 ± 0.05 * Соотношение Лактат/пируватLactate / pyruvate ratio 10,610.6 127,7127.7 32,332.3 17,617.6 АТФ, мкМоль/г тканиATP, μmol / g of tissue 2,84 ± 0,082.84 ± 0.08 1,35 ± 0,071.35 ± 0.07 1,88 ±0,06 *1.88 ± 0.06 * 2,55 ± 0,06 *2.55 ± 0.06 * АДФ, мкМоль/г тканиADP, μmol / g of tissue 0,75 ±0,070.75 ± 0.07 1,29 ±0,061.29 ± 0.06 0,95 ±0,07 *0.95 ± 0.07 * 0,81 ±0,05 *0.81 ± 0.05 * АМФ, мкМоль/г тканиAMP, μmol / g of tissue 0,44 ±0,050.44 ± 0.05 0,87 ±0,040.87 ± 0.04 0,65 ±0,08 *0.65 ± 0.08 * 0,51 ±0,09 *0.51 ± 0.09 * Энергетический заряд, усл. ед. Energy charge, conv. units 0,7980.798 0,5680.568 0,6770.677 0,8090.809 Малоновый диальдегид, нМоль/г тканиMalondialdehyde, nMol / g of tissue 4,52 ± 0,35 4.52 ± 0.35 9,14 ± 0,419.14 ± 0.41 7,52 ± 0,52 7.52 ± 0.52 5,92 ± 0,48 *5.92 ± 0.48 * Диеновые конъюгаты, нМоль/г тканиDiene conjugates, nmol / g of tissue 27,1±2,827.1 ± 2.8 57,6 ±4,9 57.6 ± 4.9 38,8 ±5,238.8 ± 5.2 31,1±3,8 *31.1 ± 3.8 *

* Примечание. * р < 0,05 в сравнении с Группой № 2. * Note. * p <0.05 compared with Group No. 2.

Расчетной величиной, объединяющей три компонента адениловой системы в единую формулу и позволяющей судить о направленности обменных процессов в ткани/крови, может служить такой параметр как энергетический заряд адениловой системы.The calculated value that combines the three components of the adenyl system into a single formula and allows us to judge the direction of metabolic processes in the tissue / blood can be such a parameter as the energy charge of the adenyl system.

Величину энергетического заряда адениловой системы (в условных единицах) рассчитывали по формуле: (АТФ + 0,5АДФ)/(АТФ + АДФ + АМФ) (Atkinson DE, Walton GM . Adenosine triphosphate conservation in metabolic regulation. Rat liver citrate cleavage enzyme// J. Biol. Chem. 1967, 242: 3239–3241).The energy charge of the adenyl system (in arbitrary units) was calculated by the formula: (ATP + 0.5 ADP) / (ATP + ADP + AMP) (Atkinson DE, Walton GM. Adenosine triphosphate conservation in metabolic regulation. Rat liver citrate cleavage enzyme // J. Biol. Chem. 1967, 242: 3239–3241).

Для большинства здоровых, нормально функционирующих клеток этот параметр находится в диапазоне 0,80-0,95. Уменьшение параметра меньше 0,8 свидетельствует об ухудшении энергообеспечения клеток организма. Когда эта величина становится ниже 0,5, клетки погибают. For most healthy, normally functioning cells, this parameter is in the range of 0.80-0.95. A decrease in the parameter below 0.8 indicates a deterioration in the energy supply of body cells. When this value drops below 0.5, the cells die.

Из представленных в таблице 3 численных значений этого параметра в группах крыс можно сделать следующие выводы:From the numerical values of this parameter presented in Table 3 in rat groups, the following conclusions can be drawn:

а) В группе № 2 (Контрольная группа животных с бронхолегочном воспалением) значение этого параметра почти на 40 % меньше, чем значение аналогичного параметра в группе № 1 (Интактные животные);a) In group No. 2 (Control group of animals with bronchopulmonary inflammation), the value of this parameter is almost 40% less than the value of the same parameter in group No. 1 (Intact animals);

б) После введения тетрапептидов значения этих параметров (Группы № 3 и № 4) заметно увеличивается по сравнению с значением параметра в Группе № 2;b) After the introduction of tetrapeptides, the values of these parameters (Groups No. 3 and No. 4) noticeably increase in comparison with the parameter value in Group No. 2;

в) В группе № 4 (Бронхолегочное воспаление и введение Ala-Glu-Asp-Leu-NH2) значение этого параметра почти на 19 % больше, чем значение аналогичного параметра в группе № 3 (Бронхолегочное воспаление и введение Ala-Glu-Asp-Leu). Т.е. введение нового тетрапептида Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 значительно более эффективно нормализует энергетическое состояние клеток по сравнению с введением пептида, взятого за прототип. c) In group No. 4 (Bronchopulmonary inflammation and administration of Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 ), the value of this parameter is almost 19% higher than the value of the same parameter in group No. 3 (Bronchopulmonary inflammation and administration of Ala-Glu-Asp- Leu). Those. the introduction of the new tetrapeptide Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 significantly more effectively normalizes the energy state of cells compared to the introduction of the peptide taken as a prototype.

Пример 5. Модель хронической обструкционной болезни легких (ХОБЛ), индуцированной сигаретным дымом у крыс.Example 5. A model of chronic obstructive pulmonary disease (COPD) induced by cigarette smoke in rats.

Хроническую обструкционную болезнь легких (ХОБЛ) у крыс моделировали способом (с некоторыми изменениями), описанном в работе (Rodrigo de las and others . A new experimental model of cigarette smoke-induced emphysema in Wistar rats// J Bras Pneumol. 2014; 40(1): 46-54).Chronic obstructive pulmonary disease (COPD) in rats was modeled using the method (with some modifications) described in (Rodrigo de las and others. A new experimental model of cigarette smoke-induced emphysema in Wistar rats // J Bras Pneumol. 2014; 40 ( 1): 46-54).

Всего для исследований было взято 48 самцов крыс Wistar массой 400-450 грамм. Все животные были разделены на восемь равных по количеству животных (в каждой группе по 6 крыс ) групп: A total of 48 male Wistar rats weighing 400-450 grams were taken for research. All animals were divided into eight equal in number of animals (in each group of 6 rats) groups:

1) Группа № 1 - интактные животные; 1) Group No. 1 - intact animals;

2) Группа № 2 - животные с индуцированной ХОБЛ и не получавшие какого-либо лечения (негативный контроль); 2) Group No. 2 - animals with induced COPD and not receiving any treatment (negative control);

3) Группа № 3 - животные с индуцированной ХОБЛ и дополнительно получавшие внутрижелудочно дозу 50 мкг/кг нового тетрапептида; 3) Group No. 3 - animals with induced COPD and additionally received an intragastric dose of 50 μg / kg of the new tetrapeptide;

4) Группа № 4 - животные с индуцированной ХОБЛ и дополнительно получавшие внутрижелудочно дозу 500 мкг/кг нового тетрапептида; 4) Group No. 4 - animals with induced COPD and additionally received an intragastric dose of 500 μg / kg of a new tetrapeptide;

5) Группа № 5 - животные с индуцированной ХОБЛ и дополнительно получавшие внутрижелудочно дозу 5000 мкг/кг нового тетрапептида;5) Group No. 5 - animals with induced COPD and additionally received an intragastric dose of 5000 μg / kg of the new tetrapeptide;

6) Группа № 6 - животные с индуцированной ХОБЛ и дополнительно получавшие внутривенно дозу 1 мкг/кг нового тетрапептида;6) Group No. 6 - animals with induced COPD and additionally received an intravenous dose of 1 μg / kg of a new tetrapeptide;

7) Группа № 7- животные с индуцированной ХОБЛ и дополнительно получавшие внутривенно дозу 10 мкг/кг нового тетрапептида;7) Group No. 7 - animals with induced COPD and additionally received an intravenous dose of 10 μg / kg of the new tetrapeptide;

8) Группа № 8 - животные с индуцированной ХОБЛ и дополнительно получавшие внутривенно дозу 100 мкг/кг нового тетрапептида. 8) Group No. 8 - animals with induced COPD and additionally received an intravenous dose of 100 μg / kg of the new tetrapeptide.

В качестве нового исследуемого пептида в группах №№ 3-8 использовался тетрапептид Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 .Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 tetrapeptide was used as a new test peptide in groups Nos. 3-8.

Индукция ХОБЛ выполнялась путем окуривания экспериментальных животных (кроме группы интактных крыс) сигаретным дымом с помощью специального оборудования. Принципиальная схема этого оборудования показана на фиг. 6. The induction of COPD was performed by fumigating experimental animals (except for a group of intact rats) with cigarette smoke using special equipment. A schematic diagram of this equipment is shown in FIG. 6.

Система размещения животных состоит из четырех металлических кабинок (24 см х 17 см х 15 см), закрытых сверху сеткой. В каждой кабинке размещаются по 3 крысы. Металлические кабинки симметрично размещаются в герметичном, прозрачном, полимерный боксе (70 см х 70 см х 20 см). В исследовании используется 2 экспериментальной установки. В одной из этих экспериментальных установок размещаются животные для окуривания сигаретным дымом. В другой установке размещаются животные из группы интактных крыс, которые не подвергались воздействию сигаретного дыма. Экспериментальные установки размещаются в различных лабораторных помещениях. В лабораторных помещениях поддерживалась температура воздуха в пределах 20-25 О С и относительная влажность 60-70 %. Экспериментальная установка состоит из внешнего держателя сигареты, который подключен гибким шлангом к динамическому всасывающему насосу. Всасывающий насос создает отрицательное давление, что заставляет чистый воздух из лабораторных помещений проходит через зажженную сигарету с образованием сигаретного дыма, который затем поступает по шлангу в полимерный бокс. Всасывающий насос запрограммирован на чередование периодов подачи сигаретного дыма и периодов подачи чистого воздуха (для предотвращения асфиксии у экспериментальных животных) в полимерный бокс.The animal accommodation system consists of four metal booths (24 cm x 17 cm x 15 cm), closed with a grid on top. Each booth accommodates 3 rats. Metal cabins are symmetrically placed in an airtight, transparent, polymer box (70 cm x 70 cm x 20 cm). The study uses 2 experimental facilities. In one of these experimental installations animals are placed for fumigation with cigarette smoke. In another installation housed animals from the group of intact rats that were not exposed to cigarette smoke. Experimental facilities are located in various laboratory facilities. In laboratory premises maintained temperature within 20-25 ° C and relative humidity 60-70%. The experimental setup consists of an external cigarette holder, which is connected by a flexible hose to a dynamic suction pump. The suction pump creates negative pressure, which causes clean air from the laboratory to pass through a lit cigarette to form cigarette smoke, which then flows through a hose into the polymer box. The suction pump is programmed to alternate periods of supply of cigarette smoke and periods of supply of clean air (to prevent asphyxiation in experimental animals) in the polymer box.

В сутки выполнялись пять периодов воздействия сигаретного дыма на экспериментальных животных (кроме животных из группы интактных крыс) примерно через равные промежутки времени. Длительность такого каждого периода воздействия сигаретного дыма составляла 1 час. В течение этого часа животные подвергались воздействию дыма, образующегося от 4 сигарет. В течение этого часа окуривания сигаретным дымом осуществлялось в течение 15 минут, затем в течение 5 минут подавал чистый комнатный воздух (во избежание гипоксии у животных). После чего цикл подача сигаретного дыма - подача свежего воздуха повторялся. 15 минутный период окуривания животных сигаретным дымом в свою очередь состоял из следующих циклов: 15 секунд подача сигаретного дыма и 15 минут - прекращение подачи сигаретного дыма. Таким образом, в течение 1 суток животные (кроме крыс из интактной группы) подвергались воздействию сигаретного дыма , образующегося от сжигания 20 сигарет. Five periods of exposure to cigarette smoke on experimental animals (except animals from the group of intact rats) were performed at approximately equal intervals of time per day. The duration of each period of exposure to cigarette smoke was 1 hour. During this hour, animals were exposed to smoke from 4 cigarettes. During this hour, fumigation with cigarette smoke was carried out for 15 minutes, then within 5 minutes clean air was supplied (to avoid hypoxia in animals). After that, the cycle of supplying cigarette smoke - supply of fresh air was repeated. The 15 minute period of animal fumigation with cigarette smoke, in turn, consisted of the following cycles: 15 seconds supply of cigarette smoke and 15 minutes - stop the supply of cigarette smoke. Thus, within 1 day, animals (except rats from the intact group) were exposed to cigarette smoke generated from the burning of 20 cigarettes.

Концентрация угарного газа (монооксида углерода), также содержащегося в сигаретном дыме, в полимерный боксе определялась с помощью портативного газового детектора "GasAlert Micro 5" (производство компании "Honeywell Analytics Distribution Inc "). В течение 1 часового периода воздействия сигаретного дыма на животных концентрация этого газа в полимерном боксе изменялась в пределах 300-500 ррм. В ходе эксперимента для окуривания использовались сигареты "Прима" со следующим содержанием в 1 сигарете смолы и никотина - 16 мг и 1,2 мг, соответственно. С учетом объема полимерного бокса, содержания смолы в каждой сигарете, используемого в течение одних суток количества сигарет, длительность и количество периодов воздействие сигаретного дыма на экспериментальные животные, среднего объема вентиляции легкого у крыс , каждое животное (кроме крыс из интактной группы) в течение одних суток получало дозу смолы, равную 80 мг/кг. The concentration of carbon monoxide (carbon monoxide) also contained in cigarette smoke in a polymer box was determined using a GasAlert Micro 5 portable gas detector (manufactured by Honeywell Analytics Distribution Inc). During the 1 hour period of exposure to cigarette smoke in animals, the concentration of this gas in the polymer box varied within 300-500 ppm. During the experiment, "Prima" cigarettes were used for fumigation with the following content of tar and nicotine in 1 cigarette - 16 mg and 1.2 mg, respectively. Taking into account the volume of the polymer box, the tar content in each cigarette, the number of cigarettes used during one day, the duration and number of periods the exposure of experimental animals to cigarette smoke, the average lung ventilation volume in rats, each animal (except for rats from the intact group) for one days received a dose of resin equal to 80 mg / kg

В таблице 4 приведена схема эксперимента на крысах самцах линии Wistar.Table 4 shows the experimental design for male rats of the Wistar strain.

Таблица 4. Table 4.

Схема эксперимента на крысах самцах линии Wistar на модели хронической обструкционной болезни легких (ХОБЛ), индуцированной сигаретным дымом.Design of an experiment on male Wistar rats in a model of chronic obstructive pulmonary disease (COPD) induced by cigarette smoke.

Номер группыGroup number № 1Number 1 № 2Number 2 № 3Number 3 № 4Number 4 № 5Number 5 № 6Number 6 № 7Number 7 № 8Number 8 Количество животных в группе, штукThe number of animals in the group, pieces 66 66 66 66 66 66 66 66 Путь введения препаратаRoute of administration НетNo НетNo Вн/ж *Ext / F * Вн/ж *Ext / F * Вн/ж *Ext / F * Вн/в **Vn / v ** Вн/в **Vn / v ** Вн/в **Vn / v ** Продолжительность индукции ХОБЛ, день Duration of COPD induction, day НетNo 2424 24 24 2424 2424 2424 2424 2424 Срок начала введения препарата от начала индукции ХОБЛ, деньDuration of drug administration from the beginning of COPD induction, day НетNo НетNo 1010 1010 1010 1010 1010 1010 Длительность введения препарата, день Duration of drug administration, day НетNo НетNo 14fourteen 14fourteen 14fourteen 14fourteen 14fourteen 14fourteen Доза вводимого препарата, мкг/кгThe dose of the drug, mcg / kg НетNo НетNo 50fifty 500500 50005000 1one 1010 100one hundred

Примечание: * внутрижелудочный способ введения препарат; ** -внутривенный способ введения препарат. Note: * intragastric route of administration of the drug; ** -Intravenous route of administration of the drug.

На первом этапе исследования животные из групп №№ 2-8 подвергались окуриванию сигаретным дымом по методике, описанной выше, в течение 10 дней. At the first stage of the study, animals from groups No. 2-8 were fumigated with cigarette smoke according to the method described above, for 10 days.

На втором этапе исследования животные их групп №№ 2-8 дополнительно подвергались окуриванию сигаретным дымом еще в течение 14 дней. При этом животные из группы № 2 не получали дополнительно внутривенно или внутрижелудочно новый тетрапептид. Животные из групп №№ 3-5 дополнительно внутрежелудочно вводили новый тетрапептид в указанных в таблице 4 дозах. Животные из групп №№ 6-8 дополнительно внутривенно вводили новый тетрапептид в указанных в таблице 4 дозах.At the second stage of the study, animals of their groups No. 2-8 were additionally fumigated with cigarette smoke for another 14 days. However, animals from group No. 2 did not receive additional intravenous or intragastric new tetrapeptide. Animals from groups No. 3-5 were additionally intragastrically administered a new tetrapeptide in the doses indicated in Table 4. Animals from groups No. 6-8 additionally administered a new tetrapeptide at the doses indicated in Table 4.

Во всех группах №№ 3-8 использовались для введения стерильные растворы тетрапептида. Для приготовления этих растворов применялись стерильный физиологический раствор.In all groups nos. 3–8, sterile tetrapeptide solutions were used for administration. Sterile saline was used to prepare these solutions.

Объем введения составлял 500 мкл на крысу при внутрижелудочном введении (группы №№ 3-5) и 10 мкл на крысу при внутривенном введении (группы № 6-8). The volume of administration was 500 μl per rat with intragastric administration (groups No. 3-5) and 10 μl per rat with intravenous administration (groups 6-8).

На первом и втором этапе исследования интактные животные из группы № 1 не подвергались окуриванию сигаретным дымом, а также не подвергались введению нового тетрапептида. At the first and second stage of the study, intact animals from group No. 1 were not fumigated with cigarette smoke, nor were they exposed to the introduction of a new tetrapeptide.

На 28 день проведения эксперимента у животных из всех групп выполнялись морфометрические исследования препаратов легочной такни (Пример № 7), а также исследования клеточного состава бронхоальвеолярного лаважа (Пример № 8). On the 28th day of the experiment, animals from all groups performed morphometric studies of pulmonary preparations (Example No. 7), as well as studies of the cellular composition of bronchoalveolar lavage (Example No. 8).

Пример 6. Морфометрические исследования препаратов легочной ткани крыс на модели ХОБЛ, индуцированной сигаретным дымом. Example 6. Morphometric studies of preparations of rat lung tissue on a COPD model induced by cigarette smoke.

Морфометрические исследования препаратов легочной ткани крыс на модели ХОБЛ, индуцированной сигаретным дымом, проводили для всех восьми экспериментальных групп животных. Morphometric studies of rat lung tissue preparations on a COPD model induced by cigarette smoke were performed for all eight experimental groups of animals.

Для этих исследований использовались по 3 - 4 животных в каждой группе. For these studies, 3-4 animals were used in each group.

Перед исследованием животные подвергались общей анестезии с помощью комбинированного препарата "Золетил® 50 " (производства компании "Virbac Sante Animale") (Доза 7 мг/кг). Before the study, the animals were subjected to general anesthesia using the combined preparation "Zoetil ® 50" (manufactured by Virbac Sante Animale) (Dose 7 mg / kg).

Легкие расправлялись введением через трахею 10%-ного раствора нейтрального формалина. Проводили стандартную фиксацию тканей в растворе формалина и обезвоживания в этиловом спирте с возрастающей концентрацией (70–96 %). После чего образцы легочной ткани заливались в парафин. Из парафиновых блоков изготавливались гистологические срезы толщиной 5–7 мкм и окрашивались гематоксилином и эозином и по Ван-Гизону.The lungs were straightened by the introduction of a 10% solution of neutral formalin through the trachea. Conducted standard tissue fixation in formalin solution and dehydration in ethanol with increasing concentration (70–96%). After that, lung tissue samples were poured into paraffin. Histological sections 5–7 μm thick were made from paraffin blocks and stained with hematoxylin and eosin and according to Van Gieson.

Гистологические срезы фотографировались с помощью микроскопа Nicon и цифровой фотокамеры Progres CF USB.Морфометрический анализ осуществлялся с помощью аппаратно-программного комплекса Видео-Тест-Морфология 5.2. Каждый препарат фотографировался с увеличением в 4, 20 и 40 раз. При увеличении в 4 раза проводилась оценка стенки бронхов: измерялись площади бронха, клеточного инфильтрата, просвета бронха и суммарная площадь других компонентов стенки бронха (слизистая и мышечная оболочки, соединительная ткань). Измерения осуществлялись с помощью программ ручной обработки путем выделения указанных структур и автоматического определения их площади (мм2) и периметра (мм). Полученные данные использовались для расчета площадей инфильтрата. Histological sections were photographed using a Nicon microscope and a Progres CF USB digital camera. Morphometric analysis was performed using the Video-Test-Morphology 5.2 hardware-software complex. Each drug was photographed with an increase of 4, 20 and 40 times. With a 4-fold increase, the bronchial wall was evaluated: the areas of the bronchus, cell infiltrate, bronchial lumen and the total area of other components of the bronchial wall (mucous and muscle membranes, connective tissue) were measured. The measurements were carried out using manual processing programs by highlighting the indicated structures and automatically determining their area (mm 2 ) and perimeter (mm). The data obtained were used to calculate the areas of infiltrate.

Толщина мышечного слоя стенки бронха оценивалась при 20-кратном увеличении (шаг измерений 10 мкм). С помощью программ ручной обработки производилось 10-20 последовательных измерений каждого препарата. Толщина межальвеолярных перегородок (мкм) и площадь альвеол (мкм2) определялись при 40-кратном увеличении. В каждом препарате с помощью программ ручной обработки осуществлялось 10-20 последовательных измерений толщины межальвеолярных перегородок. В программе автоматических измерений путем бинаризации выделялся просвет альвеол и определялась их площадь. The thickness of the muscle layer of the bronchial wall was evaluated at a 20-fold increase (measurement step 10 μm). Using manual processing programs, 10–20 consecutive measurements of each preparation were performed. The thickness of the interalveolar septa (μm) and the area of the alveoli (μm 2 ) were determined at a 40-fold increase. In each preparation, using manual processing programs, 10–20 consecutive measurements of the thickness of the interalveolar septa were carried out. In the program of automatic measurements by binarization, the lumen of the alveoli was allocated and their area was determined.

Статистический анализ полученных экспериментальных данных выполнялся с помощью программного обеспечения "Статистика 6.0". Проверка нормальности распределения экспериментальных данных была выполнена с помощью критерия Шапиро-Уилка. Статистически значимые различия между средними значениями в каждой экспериментальной выборке определялись при 0,05 уровне значимости. Средние значения и стандартные ошибки в определении среднего значения для всех экспериментальных данных по результатам морфологических исследований для этих групп животных приведены ниже в таблице 5.Statistical analysis of the obtained experimental data was performed using the software "Statistics 6.0". The verification of the normality of the distribution of experimental data was performed using the Shapiro-Wilk test. Statistically significant differences between the mean values in each experimental sample were determined at a 0.05 significance level. The average values and standard errors in determining the average value for all experimental data according to the results of morphological studies for these groups of animals are shown below in table 5.

Таблица 5. Table 5.

Результаты морфометрических исследований препаратов легочной ткани крыс Results of morphometric studies of rat lung tissue preparations

ПоказателиIndicators Интактная группаIntact group Негативный контрольNegative control Вн/ж
50 мкг/кг
Ext / w
50 mcg / kg
Вн/ж
500 мкг/кг
Ext / w
500 mcg / kg
Вн/ж
5000 мкг/кг
Ext / w
5000 mcg / kg
Вн/в
1 мкг/кг
In / in
1 mcg / kg
Вн/в
10 мкг/кг
In / in
10 mcg / kg
Вн/в
100 мкг/кг
In / in
100 mcg / kg
Площадь инфильтрата, %Area of infiltrate,% 11,5±0,5511.5 ± 0.55 22,04±0,62 (*)22.04 ± 0.62 (*) 19,8±0,38 (*)19.8 ± 0.38 (*) 16,06±0,45
(*), (**)
16.06 ± 0.45
(*), (**)
15,2±0,60 (*), (**)15.2 ± 0.60 (*), (**) 20,4±0,65 (*) 20.4 ± 0.65 (*) 18,64±0,55 (*), (**)18.64 ± 0.55 (*), (**) 14,6±0,14 , (**)14.6 ± 0.14, (**)
Толщина мышечной оболочки стенки бронха, ммThe thickness of the muscle membrane of the wall of the bronchus, mm 8,9±0,408.9 ± 0.40 15,6±0,33
(*)
15.6 ± 0.33
(*)
14,2±0,25
(*)
14.2 ± 0.25
(*)
13,2±0,30
(*), (**)
13.2 ± 0.30
(*), (**)
11,4±0,45 (*), (**)11.4 ± 0.45 (*), (**) 15,3±0,55 (*) 15.3 ± 0.55 (*) 12,4±0,38 (*), (**)12.4 ± 0.38 (*), (**) 9,8±0,43
(**)
9.8 ± 0.43
(**)
Толщина межальвеолярных перегородок, ммThe thickness of the interalveolar septum, mm 3,95±0,253.95 ± 0.25 4,98±0,22
(*)
4.98 ± 0.22
(*)
4,80±0,24
(*)
4.80 ± 0.24
(*)
4,65±0,11
(*)
4.65 ± 0.11
(*)
4,35±0,18
(*),(**)
4.35 ± 0.18
(*), (**)
4,75±0,18
(*)
4.75 ± 0.18
(*)
4,58±0,22
(*)
4.58 ± 0.22
(*)
4,11±0,08
(**)
4.11 ± 0.08
(**)
Площадь просвета альвеол, мкм2Alveolar lumen area, μm2 398,4±32,0398.4 ± 32.0 489,5±28,2 (*)489.5 ± 28.2 (*) 480,7±38,0 (*) 480.7 ± 38.0 (*) 470,5±48,0 (**)470.5 ± 48.0 (**) 430,4±45,0 (*),(**)430.4 ± 45.0 (*), (**) 481,8±45,0 (*) 481.8 ± 45.0 (*) 467,7± 42,0
(*)
467.7 ± 42.0
(*)
419,4±38,0 , (*), (**)419.4 ± 38.0, (*), (**)

Примечание : (*) - различия статистически значимы по критерию Стьюдента (при р<0,05) по сравнению с интактными животными;Note: (*) - the differences are statistically significant by the Student criterion (at p <0.05) compared with intact animals;

(**) - различия статистически значимы по критерию Стьюдента (при р<0,05) по сравнению с животными негативного контроля.  (**) - the differences are statistically significant by Student's criterion (at p <0.05) compared with animals of negative control.

Как видно из представленных в таблице 5 данных, в легких животных из группы № 2 (негативный контроль) по сравнению с тканями легкими от интактных животных из группы № 1 отмечалось достоверное увеличение толщины мышечной оболочки бронхиальной стенки, утолщение межальвеолярных перегородок, а также значительное увеличение процента площади, занимаемой клеточным инфильтратом. Отмечалась также увеличение площади просвета альвеол.As can be seen from the data presented in table 5, in the lungs of animals from group No. 2 (negative control) compared with lung tissues from intact animals from group No. 1, there was a significant increase in the thickness of the muscular membrane of the bronchial wall, thickening of the interalveolar septa, and a significant increase in the percentage area occupied by cellular infiltrate. An increase in the lumen area of the alveoli was also noted.

При внутрижелудочном и внутривенном введении нового тетрапептида в различных дозах животным в группах № 3-8 прослеживается тенденция на улучшение всех морфометрических показателей по сравнению с аналогичными показателями у животных из группы № 2 (негативный контроль). В некоторых случаях улучшение этих показателей у животных в группах № 3-8 носят статистически достоверный характер по сравнению показателями у животных из группы № 2 (негативный контроль).With intragastric and intravenous administration of a new tetrapeptide in various doses to animals in groups No. 3-8, there is a tendency to improve all morphometric indicators compared with similar indicators in animals from group No. 2 (negative control). In some cases, the improvement of these indicators in animals in groups No. 3-8 are statistically significant compared with indicators in animals from group No. 2 (negative control).

Однако эти показатели в большинстве случаях у животных в группах № 3-8 не достигали интактных значений. However, these indicators in most cases in animals in groups No. 3-8 did not reach intact values.

Следовательно, новый тетрапептид оказывает специфическое фармакологическое действие, которое проявляется в тенденции по нормализации и уменьшению патологических процессов, возникающих в бронхолегочных структурах животных при длительном воздействии сигаретного дыма. Therefore, the new tetrapeptide has a specific pharmacological effect, which manifests itself in a tendency to normalize and reduce the pathological processes that occur in the bronchopulmonary structures of animals with prolonged exposure to cigarette smoke.

Пример 7. Исследование клеточного состава бронхоальвеолярного лаважа крыс на модели ХОБЛ, индуцированной сигаретным дымом. Example 7. The study of the cellular composition of bronchoalveolar lavage of rats on a COPD model induced by cigarette smoke.

Определение клеточного состава бронхоальвеолярного лаважа (БАЛ) крыс на модели ХОБЛ, индуцированной сигаретным дымом, проводили для всех восьми экспериментальных групп животных. The cell composition of rat bronchoalveolar lavage (BAL) was determined on a COPD model induced by cigarette smoke for all eight experimental groups of animals.

Для забора БАЛ использовались по 3 - 4 животных в каждой группе. For the collection of BAL, 3-4 animals were used in each group.

Перед забором бронхоальвеолярного лаважа (БАЛ) животные подвергались общей анестезии с помощью комбинированного препарата "Золетил® 50 " (производства компании "Virbac Sante Animale") (Доза 7 мг/кг). Before sampling bronchoalveolar lavage (BAL), the animals were subjected to general anesthesia using the combined preparation "Zoletil ® 50" (manufactured by Virbac Sante Animale) (Dose 7 mg / kg).

У животного обнажали внутригрудную трахею средним разрезом и делали разрез между кольцами трахеи. Затем вводили шприц с 5 мл физиологического раствора. Физиологический раствор вначале медленно, постепенно выдавливали из шприца, а затем его постепенно отбирали в шприц. После забора БАЛ шприц отсоединяли и полученную таким образом жидкость переносили в силиконизированные пробирки на 5 мл. Клеточный состав БАЛ исследовали с помощью автоматического ветеринарного гематологического анализатора BE-2800 Vet (производство компании "Mindray"). В составе БАЛ каждого животного были определены содержания следующих клеток: лимфоциты, макрофаги, эозинофилы, сегментоядерные нейтрофилы и сегментоядерные нейтрофилы.In the animal, the intrathoracic trachea was exposed with a middle incision and an incision was made between the tracheal rings. Then a syringe was introduced with 5 ml of physiological saline. Saline solution was initially slowly, gradually squeezed out of the syringe, and then it was gradually taken into the syringe. After collecting BAL, the syringe was disconnected and the liquid thus obtained was transferred into 5 ml siliconized tubes. The BAL cell composition was examined using a BE-2800 Vet automatic veterinary hematology analyzer (manufactured by Mindray). The contents of the following cells were determined in the BAL of each animal: lymphocytes, macrophages, eosinophils, segmented neutrophils and segmented neutrophils.

Статистический анализ полученных экспериментальных данных выполнялся с помощью программного обеспечения "Статистика 6.0". Проверка нормальности распределения экспериментальных данных была выполнена с помощью критерия Шапиро-Уилка. Статистически значимые различия между средними значениями в каждой экспериментальной выборке определялись при 0,05 уровне значимости.Statistical analysis of the obtained experimental data was performed using the software "Statistics 6.0". The verification of the normality of the distribution of experimental data was performed using the Shapiro-Wilk test. Statistically significant differences between the mean values in each experimental sample were determined at a 0.05 significance level.

Средние значения и стандартные ошибки в определении среднего значения для всех экспериментальных данных по клеточному состава БАЛ для этих групп животных приведены ниже в таблице 6.The average values and standard errors in determining the average value for all experimental data on the cellular composition of BAL for these groups of animals are shown below in table 6.

Таблица 6. Table 6.

Клеточный состав БАЛ экспериментальных животных в абсолютных значениях. The cell composition of BAL experimental animals in absolute terms.

Показатели клеточного состава БАЛ, * 10 9Indicators of the cellular composition of BAL, * 10 9 / l Интактная группаIntact group Негативный контрольNegative control Вн/ж
50 мкг/кг
Ext / w
50 mcg / kg
Вн/ж
500 мкг/кг
Ext / w
500 mcg / kg
Вн/ж
5000 мкг/кг
Ext / w
5000 mcg / kg
Вн/в
1 мкг/кг
In / in
1 mcg / kg
Вн/в
10 мкг/кг
In / in
10 mcg / kg
Вн/в
100 мкг/кг
In / in
100 mcg / kg
ЛимфоцитыLymphocytes 0,39±0,110.39 ± 0.11 1,34±0,15 (*)1.34 ± 0.15 (*) 1,15±0,18 (*)1.15 ± 0.18 (*) 1,06±0,16 (*)1.06 ± 0.16 (*) 0,87±0,15 (*)0.87 ± 0.15 (*) 0,95±0,12 (*), (**)0.95 ± 0.12 (*), (**) 0,64±0,15 (*), (**)0.64 ± 0.15 (*), (**) 0,58±0,14 , (**)0.58 ± 0.14, (**) МакрофагиMacrophages 0,034±0,0090.034 ± 0.009 0,32±0,01 (*)0.32 ± 0.01 (*) 0,21±0,006 (*) , (**)0.21 ± 0.006 (*), (**) 0,16±0,008 (*), (**)0.16 ± 0.008 (*), (**) 0,12±0,01 (*), (**)0.12 ± 0.01 (*), (**) 0,25±0,009 (*), (**)0.25 ± 0.009 (*), (**) 0,21±0,01 (*), (**)0.21 ± 0.01 (*), (**) 0,09±0,007 (*), (**)0.09 ± 0.007 (*), (**) ЭозинофилыEosinophils 0,014±0,0050.014 ± 0.005 0,033±0,0070.033 ± 0.007 0,025±0,0060.025 ± 0.006 0,022±0,007 (*)0.022 ± 0.007 (*) 0,019±0,010.019 ± 0.01 0,024±0,0050.024 ± 0.005 0,022±0,0060.022 ± 0.006 0,018±0,0070.018 ± 0.007 Сегментоядерные нейтрофилыSegmented neutrophils 0,28±0,070.28 ± 0.07 1,31±0,18 (*)1.31 ± 0.18 (*) 0,65±0,08 (*), (**)0.65 ± 0.08 (*), (**) 0,48±0,09 , (**)0.48 ± 0.09, (**) 0,39±0,05 , (**)0.39 ± 0.05, (**) 0,84±0,11 (*), (**)0.84 ± 0.11 (*), (**) 0,55± 0,06
(**)
0.55 ± 0.06
(**)
0,38±0,08 , (**)0.38 ± 0.08, (**)
Палочкоядерные нейтрофилыStab neutrophils 0,008±0,0040.008 ± 0.004 0,042±0,008 (*)0.042 ± 0.008 (*) 0,030±0,009 (*)0.030 ± 0.009 (*) 0,028±0,012 (*)0.028 ± 0.012 (*) 0,016±0,007 , (**)0.016 ± 0.007, (**) 0,025±0,01 (*), (**)0.025 ± 0.01 (*), (**) 0,015±0,006 , (**)0.015 ± 0.006, (**) 0,012±0,005 (**)0.012 ± 0.005 (**) Общий цитозCommon cytosis 0,73±0,190.73 ± 0.19 3,16±0,36 (*)3.16 ± 0.36 (*) 2,07±0,28 (*), (**)2.07 ± 0.28 (*), (**) 1,75±0,27 (*), (**)1.75 ± 0.27 (*), (**) 1.42±0.23 (*), (**)1.42 ± 0.23 (*), (**) 2.10±0.25 (*), (**)2.10 ± 0.25 (*), (**) 1.44±0.23 (*), (**)1.44 ± 0.23 (*), (**) 1.08±0.25 (*), (**)1.08 ± 0.25 (*), (**)

Примечание : (*) - различия статистически значимы по критерию Стьюдента (при р<0,05) по сравнению с интактными животными;Note: (*) - the differences are statistically significant by the Student criterion (at p <0.05) compared with intact animals;

(**) - различия статистически значимы по критерию Стьюдента (при р<0,05) по сравнению с животными негативного контроля.  (**) - the differences are statistically significant by Student's criterion (at p <0.05) compared with animals of negative control.

Как видно из представленных в таблице 6 данных, у животных в группе негативного контроля по сравнению с животными из интактной группы заметно изменяется клеточный состав БАЛ - происходит статистически значимое увеличение содержания: лимфоцитов, макрофагов и обеих разновидностей нейтрофилов. Кроме этого, отмечается статически значимое увеличение и общего цитоза БАЛ. Такой клеточный состав БАЛ свидетельствует о наличие воспаления бронхов у животных из группы негативного контроля. As can be seen from the data presented in table 6, in the animals in the negative control group, compared with animals from the intact group, the cellular composition of BAL is noticeably changed - there is a statistically significant increase in the content of: lymphocytes, macrophages and both types of neutrophils. In addition, there is a statistically significant increase in total cytosis of BAL. Such a cellular composition of BAL indicates the presence of bronchial inflammation in animals from the negative control group.

Похожая картина, свидетельствующая о наличие воспалительных процессов, наблюдается и в других экспериментальных группах животных с ХОБЛ, но получавших дополнительно тетрапептид. Однако степень выраженности воспалительных процессов в этих группах животных заметно слабее. Это особенно видно при сравнении относительных значений клеточного состава БАЛ для в различных группах животных по отношению к аналогичным значениям клеточного состава БАЛ в интактной группе животных, приведенных в таблице 7 . A similar picture, indicating the presence of inflammatory processes, is observed in other experimental groups of animals with COPD, but who received an additional tetrapeptide. However, the severity of inflammatory processes in these groups of animals is noticeably weaker. This is especially evident when comparing the relative values of the BAL cell composition for various animal groups with respect to the similar values of the BAL cell composition in the intact group of animals shown in Table 7.

Таблица 7. Table 7.

Клеточный состав БАЛ экспериментальных животных в относительных значениях по отношению к соответствующим значениям в интактной группе The cellular composition of BAL experimental animals in relative values relative to the corresponding values in the intact group

Показатели клеточного состава БАЛ, в % Indicators of the cellular composition of BAL, in% Интактная группаIntact group Негативный контрольNegative control Вн/ж
50 мкг/кг
Ext / w
50 mcg / kg
Вн/ж
500 мкг/кг
Ext / w
500 mcg / kg
Вн/ж
5000 мкг/кг
Ext / w
5000 mcg / kg
Вн/в
1 мкг/кг
In / in
1 mcg / kg
Вн/в
10 мкг/кг
In / in
10 mcg / kg
Вн/в
100 мкг/кг
In / in
100 mcg / kg
ЛимфоцитыLymphocytes 100 %
(0,39±0,11)
one hundred %
(0.39 ± 0.11)
243243 195195 172172 123123 143143 6464 4949
МакрофагиMacrophages 100 %
(0,034±0,009)
one hundred %
(0,034 ± 0,009)
841841 517517 370370 252252 635635 517517 7676
ЭозинофилыEosinophils 100 %
(0,014±0,005)
one hundred %
(0.014 ± 0.005)
136136 7878 5757 3636 7171 5757 2828
Сегментоядерные нейтрофилыSegmented neutrophils 100 %
(0,28±0,07)
one hundred %
(0.28 ± 0.07)
368368 132132 7171 3939 200200 9696 3636
Палочкоядерные нейтрофилыStab neutrophils 100 %
(0,008±0,004)
one hundred %
(0.008 ± 0.004)
425425 275275 250250 160160 213213 8888 50fifty
Общий цитозCommon cytosis 100 %
(0,73±0,19)
one hundred %
(0.73 ± 0.19)
333333 184184 140140 9494 188188 9797 4545

В таблице 7 приведены относительные значения клеточного состава БАЛ в различных группах животных по отношению к аналогичным значениям клеточного состава БАЛ в интактной группе животных. Показатели клеточного состава БАЛ в интактной группе животных взяты за 100 % . Table 7 shows the relative values of the BAL cell composition in various groups of animals with respect to the similar values of the BAL cell composition in the intact group of animals. The cellular composition of BAL in the intact group of animals was taken as 100%.

Следовательно, новый тетрапептид оказывает специфическое фармакологическое действие, которое проявляется как в снижении воспалительного процесса в слизистых оболочках бронхов животных , а также в тенденции по нормализации клеточного состава бронхоальвеолярного лаважа этих животных. Therefore, the new tetrapeptide has a specific pharmacological effect, which manifests itself as a decrease in the inflammatory process in the mucous membranes of the bronchi of animals, as well as a tendency to normalize the cellular composition of bronchoalveolar lavage of these animals.

Кроме этого, как видно из представленных в таблицах 6 и 7 экспериментальных данных с увеличением дозы вводимого тетрапептида (как при внутрижелудочном так и при внутривенном способах введения) наблюдается достаточно выраженная тенденция к снижению воспалительных процессов в слизистых оболочках бронхов в группах животных с ХОБЛ, получавших дополнительно новый тетрапептид. In addition, as can be seen from the experimental data presented in tables 6 and 7, with an increase in the dose of the tetrapeptide administered (both with intragastric and intravenous methods of administration), there is a fairly pronounced tendency to a decrease in inflammatory processes in the bronchial mucous membranes in groups of animals with COPD who received additional new tetrapeptide.

Пример 8. Влияние тетрапептида Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 на рост эксплантатов органотипической культуры легких крыс.Example 8. The effect of the tetrapeptide Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 on the growth of explants of organotypic rat lung culture.

Для определения влияния тетрапептида Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 на рост эксплантатов органотипической культуры легких крыс использовались методика , изложенная в работе (Аль-Шакри С.Х., Чалисова Н.И., Закуцкий А.Н., Боровец С.Ю. Влияние аминокислот и их метаболитов на развитие органотипической культуры семенников у крыс// Нефрология. 2007; 11 (2): 86-92).To determine the effect of the tetrapeptide Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 on the growth of explants of organotypic culture of rat lungs, the technique described in (Al-Shakri S.Kh., Chalisova N.I., Zakutsky A.N., Borovets S .U. Effect of amino acids and their metabolites on the development of organotypic testis culture in rats // Nephrology. 2007; 11 (2): 86-92).

Свежие ткани крыс самцов линии Вистар в возрасте 3-4 месяцев разделяли на мелкие фрагменты величиной около 1 мм3. Полученные таким образом кусочки легкого крыс (эксплантанты) использовались для приготовления образцов опытной группы и образцов контрольной группы. Для приготовления образцов опытной и контрольной групп кусочки легкого крыс размещали в чашке Петри с коллагеновым покрытием (примерно 10-15 эксплантов) в 1 чашке Петри, а затем добавляли для проведения культивирования по 15 мл питательной среды. Fresh tissues of rats of Wistar male rats at the age of 3-4 months were divided into small fragments of about 1 mm 3 . Thus obtained pieces of lungs of rats (explants) were used to prepare samples of the experimental group and samples of the control group. To prepare samples of the experimental and control groups, pieces of rat lungs were placed in a collagen-coated Petri dish (approximately 10-15 explants) in 1 Petri dish, and then 15 ml of culture medium were added for cultivation.

Состав используемой питательной среды (из расчет на 100 мл ): раствор Хенкса - 41 мл; среда Игла -30 мл, фетальная сыворотка теленка - 25 мл, водный раствор 20 % глюкозы -1 мл, инсулин -2,5 мл (100 ЕД) и гентамицин 0,5 мл (20 мг). Для исследований использовалась питательная среда, значение рН которой изменялась в диапазоне 7.2-7.4.The composition of the nutrient medium used (based on 100 ml): Hanks solution - 41 ml; Medium Needle -30 ml, fetal calf serum - 25 ml, aqueous solution of 20% glucose -1 ml, insulin -2.5 ml (100 PIECES) and gentamicin 0.5 ml (20 mg). A culture medium was used for research, the pH of which varied in the range 7.2–7.4.

В опытной группе исследуемый раствор нового тетрапептида добавляли в чашки Петри к смеси экспланта и питательной среды среду в различных количествах, так чтобы концентрации этого соединения в культурной среде изменялись в диапазоне 0,01-10 нг/мл культуральной среды. Объем добавляемого раствора тетрапептида в чашки Петри равнялся 15 мкл. In the experimental group, the test solution of the new tetrapeptide was added to Petri dishes to the mixture of the explant and culture medium in various amounts, so that the concentration of this compound in the culture medium varied in the range of 0.01-10 ng / ml of culture medium. The volume of the added tetrapeptide solution in Petri dishes was 15 μl.

В контрольной группе питательной среде с эксплантами вместо раствора тетрапептида в чашки Петри добавляли 15 мкл физиологического раствора. После чего содержимое чашек Петри из опытной группы (с эксплантами, питательной средой и раствором тетрапептида) и контрольной группы (с эксплантами, питательной средой и с физиологическим раствором) культивировались в лабораторном CO 2- инкубаторе при строгом соблюдении температурного (36,5±0,25 OC) режима в газовой среде с содержанием 5 % углекислого газа при относительной влажности 95±5 %. In the control group with explant culture medium, instead of the tetrapeptide solution, 15 μl of physiological saline was added to Petri dishes. After that, the contents of Petri dishes from the experimental group (with explants, nutrient medium and tetrapeptide solution) and the control group (with explants, nutrient medium and physiological saline) were cultured in a laboratory CO 2 incubator with strict observance of temperature (36.5 ± 0, 25 O C) mode in a gaseous environment with a content of 5% carbon dioxide at a relative humidity of 95 ± 5%.

Наблюдение за изменением клеточных структур в чашках Петри проводилось с использованием микроскопа  OLYMPUS CKX41 с установленным цифровым модулем визуализации VIDI-CAM. Обработка полученных изображений выполнялась с помощью программы IMAG PRO INSIGHT. В эксплантах контрольной и опытной групп после 3 суток культивирования наблюдались две зоны: центральная и периферическая. Центральная зона (с большей оптической плотностью) представляет собой клетки легкого крыс, исходно размещенные на коллагеновом покрытии. Периферическая зона (зона роста) образуется клетками, которые мигрируют из исходных тканей эксплантов, а затем пролифелируют на коллагеновом покрытии. Observation of changes in cell structures in Petri dishes was carried out using an OLYMPUS CKX41 microscope with a VIDI-CAM digital imaging module installed. Processing of the obtained images was carried out using the IMAG PRO INSIGHT program. After 3 days of cultivation, two zones were observed in the explants of the control and experimental groups: central and peripheral. The central zone (with a higher optical density) represents rat lung cells originally placed on a collagen coating. The peripheral zone (growth zone) is formed by cells that migrate from the source tissues of the explants, and then proliferate on the collagen coating.

Для количественной оценки роста клеток экспланта определялся параметр "Индекс площади (ИП)", выраженный в условных единицах и рассчитываемый по следующей формуле:  To quantify the growth of explant cells, the parameter "Area Index (PI)" was determined, expressed in arbitrary units and calculated by the following formula:

ИП= (Площадь всего экспланта)/(Площадь центральной зоны экспланта).PI = (The area of the entire explant) / (The area of the central zone of the explant).

Для обработки полученных результатов измерения ИП использовались методы математической свастики. Рассчитывали значения индексов площадей для эксплантов из контрольной (ИПкон) и опытной (ИП опыт) групп. В качестве показателя, отражающего раствора нового тетрапептида на рост эксплантов органотипической культуры легких крыс , использовали выраженное в процентах отношение ИПопыт/ИПкон.To process the obtained IP measurement results, mathematical swastika methods were used. The area indices for the explants from the control (IPcon) and experimental (IP experience) groups were calculated. As an indicator, reflecting the solution of the new tetrapeptide on the growth of explants of organotypic culture of the lungs of rats, the percentage of experience / IPcon was used.

В таблице 8 приведены значения ИПопыт/ИПкон при изменении концентрации нового тетрапептида 0,7-10 мкг/мл культуральной среды.Table 8 shows the IPper / IPcon values with a change in the concentration of the new tetrapeptide 0.7-10 μg / ml of culture medium.

Таблица 8. Table 8.

Влияние различных концентраций тетрапептида Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 в культуральной среде на рост эксплантатов органотипической культуры легких крыс.The effect of various concentrations of the tetrapeptide Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 in the culture medium on the growth of explants of organotypic culture of rat lungs.

Наименование показателя, Name of indicator Концентрация тетрапептида Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 в культуральной среде, нг/млThe concentration of the tetrapeptide Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 in the culture medium, ng / ml 0,010.01 0,50.5 2,52,5 5,05,0 10,010.0 ИПопыт/ИПкон, % Experience / IPcon,% 33 19,0 *19.0 * 37,0 *37.0 * 45,0 *45.0 * 55,0 *55.0 *

Примечание : * -статистически значимые отличия по сравнению с контролем при р<0,05.Note: * statistically significant differences compared with the control at p <0.05.

Результаты эксперимента приведены в таблице 8, из которой следует, что тетрапептид Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 достоверно стимулирует рост эксплантатов органотипической культуры легких крыс в широком диапазоне концентраций от 0,5 до 10,0 нг/мл.The experimental results are shown in table 8, from which it follows that the tetrapeptide Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 significantly stimulates the growth of explants of organotypic culture of rat lungs in a wide range of concentrations from 0.5 to 10.0 ng / ml.

Таким образом, применение тетрапептида Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 при непосредственном воздействии на органотипическую культуру тканей легкий крыс способствует ускоренному обновлению клеточной популяции этих тканей.Thus, the use of the tetrapeptide Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 with a direct effect on the organotypic tissue culture of lung rats promotes accelerated renewal of the cell population of these tissues.

Пример 9. Влияние тетрапептидов Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 и Ala-Glu-Asp-Leu на формирование иммунного ответа на тимусзависимый антиген. Example 9. The effect of tetrapeptides Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 and Ala-Glu-Asp-Leu on the formation of an immune response to a thymus-dependent antigen.

Исследование тетрапептидов Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 и Ala-Glu-Asp-Leu на формирование иммунного ответа на тимусзависимый антиген, проводили на самцах мышей линии СBA и массой тела 20-30 г. The study of tetrapeptides Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 and Ala-Glu-Asp-Leu on the formation of an immune response to a thymus-dependent antigen was performed on male CBA mice and weighing 20-30 g.

Исследования были выполнены на 28 животных. Все животные были разделены на следующие 7 равные по количеству животных группы (по 4 животных в каждой группе): Studies were performed on 28 animals. All animals were divided into the following 7 equal groups of animals (4 animals in each group):

Группа № 1. (Контрольная группа). Животные, подвергшиеся иммунизации, с дополнительным введением физиологического раствора. Group No. 1. (Control group). Immunized animals with additional saline.

Группа № 2. Животные, подвергшиеся иммунизации с дополнительным внутримышечным введением тетрапептида Ala-Glu-Asp-Leu в дозе 0,1 мкг/кг;Group No. 2. Animals immunized with additional intramuscular injection of the tetrapeptide Ala-Glu-Asp-Leu at a dose of 0.1 μg / kg;

Группа № 3. Животные, подвергшиеся иммунизации с дополнительным внутримышечным введением тетрапептида Ala-Glu-Asp-Leu в дозе 10 мкг/кг;Group No. 3. Animals immunized with additional intramuscular injection of the tetrapeptide Ala-Glu-Asp-Leu at a dose of 10 μg / kg;

Группа № 4. Животные, подвергшиеся иммунизации с дополнительным внутримышечным введением тетрапептида Ala-Glu-Asp-Leu в дозе 1000 мкг/кг;Group No. 4. Animals immunized with additional intramuscular injection of the tetrapeptide Ala-Glu-Asp-Leu at a dose of 1000 μg / kg;

Группа № 5. Животные, подвергшиеся иммунизации с дополнительным внутримышечным введением тетрапептида Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 в дозе 0,1 мкг/кг;Group No. 5. Animals immunized with additional intramuscular injection of the tetrapeptide Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 at a dose of 0.1 μg / kg;

Группа № 6. Животные, подвергшиеся иммунизации с дополнительным внутримышечным введением тетрапептида Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 в дозе 10 мкг/кг;Group No. 6. Animals immunized with additional intramuscular injection of the tetrapeptide Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 at a dose of 10 μg / kg;

Группа № 7. Животные, подвергшиеся иммунизации с дополнительным внутримышечным введением тетрапептида Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 в дозе 1000 мкг/кг.Group No. 7. Animals immunized with additional intramuscular injection of the tetrapeptide Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 at a dose of 1000 μg / kg

Животным из опытных групп №№ 2-7 за 6 суток до проведения иммунизации ежедневно внутримышечно вводили растворы исследуемых пептидов в количестве 0,1 мл на одно животное. Для введения использовались стерильные растворы тетрапептидов. Для приготовления этих растворов применялись стерильный физиологический раствор.The animals from the experimental groups No. 2-7 6 days before immunization were injected intramuscularly daily with solutions of the studied peptides in an amount of 0.1 ml per animal. For administration, sterile tetrapeptide solutions were used. Sterile saline was used to prepare these solutions.

Животным из контрольной группы в течение этих 6 суток (группа № 1) вводили стерильный изотонический раствор хлорида натрия.Animals from the control group during these 6 days (group No. 1) were injected with a sterile isotonic sodium chloride solution.

Иммунизацию животного проводили путем однократного внутривенного введения 0, 05 мл взвеси эритроцитов барана в стерильном физиологическом растворе (доза 5·107 эритроцитов барана/мышь). The animal was immunized by a single intravenous administration of 0.05 ml of a suspension of sheep erythrocytes in sterile physiological saline (dose of 5 · 10 7 sheep erythrocytes / mouse).

На 5-е сутки после иммунизации кровь для получения сыворотки и определения значений титров гемагглютининов (ГМА) получали от животных путем декапитации.  Затем животных подвергались эвтаназии с помощью цервикальной дислокации. После чего извлекали селезенки и готовили клеточную суспензию органа для количественного определения антителобразующих клеток (АОК) с помощью метода Ерне и Нордина.On the 5th day after immunization, blood was obtained from animals by decapitation to obtain serum and determine the values of hemagglutinin titers (GMA). Then the animals were euthanized using cervical dislocation. After that, the spleens were removed and a cell suspension of the organ was prepared for the quantitative determination of antibody-forming cells (AOK) using the method of Erne and Nordin.

Полученные экспериментальные данные (численные значения АОК и ГМА) подвергались статистической обработке с помощью программного обеспечения "Статистика 6.0". Проверка нормальности распределения экспериментальных данных была выполнена с помощью критерия Шапиро-Уилка. Статистически значимые различия между средними значениями в каждой экспериментальной выборке определялись при 0,05 уровне значимости. Средние значения и стандартные ошибки в определении среднего значения для всех экспериментальных данных титров ГМА и АОК для всех групп животных приведены ниже в таблице 9.The obtained experimental data (numerical values of AOK and GMA) were subjected to statistical processing using the software "Statistics 6.0". The verification of the normality of the distribution of experimental data was performed using the Shapiro-Wilk test. Statistically significant differences between the mean values in each experimental sample were determined at a 0.05 significance level. The average values and standard errors in determining the average value for all experimental data on titers of GMA and AOK for all groups of animals are shown below in table 9.

Таблица 9. Table 9.

Влияние тетрапептидов Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 и Ala-Glu-Asp-Leu на иммунный ответ у мышей линии СВАThe effect of tetrapeptides Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 and Ala-Glu-Asp-Leu on the immune response in CBA mice

Номер группыGroup number Используемый тетрапептидUsed tetrapeptide Доза, мкг/кгDose, mcg / kg Показатели иммунного ответаImmune Response Титры ГМА, log 2 GMA titers, log 2 Количество АОК на 10 6 клеток селезенкиThe number of AOK per 10 6 cells of the spleen 1one Контрольная группаControl group -/-- / - 7,9 ±0,57.9 ± 0.5 135,1±8,2135.1 ± 8.2 22 Ala-Glu-Asp-Leu Ala-Glu-Asp-Leu 0,10.1 8,1±0,38.1 ± 0.3 138,1±20,2138.1 ± 20.2 33 Ala-Glu-Asp-Leu Ala-Glu-Asp-Leu 10,010.0 8,6±0,48.6 ± 0.4 142,6±18,2142.6 ± 18.2 4four Ala-Glu-Asp-Leu Ala-Glu-Asp-Leu 1000,01000,0 8,7±0,68.7 ± 0.6 143,2±14,5143.2 ± 14.5 55 Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 0,10.1 8,9±0,3 * 8.9 ± 0.3 * 206,4±18,5 *206.4 ± 18.5 * 66 Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 10,010.0 12,4±0,5 *12.4 ± 0.5 * 458,4±41,3 *458.4 ± 41.3 * 77 Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 1000,01000,0 14,8±0,6 *14.8 ± 0.6 * 472,5±31,2 *472.5 ± 31.2 *

Примечание: * отмечены достоверные различия с контролем (p<0,05). Note: * significant differences with control were noted (p <0.05).

Использованные сокращения: ГМА - гемагглютинины, АОК - антителобразующие клетки.Abbreviations used: GMA - hemagglutinins, AOK - antibody-forming cells.

Как следует из представленных в таблице 9 данных, применение нового тетрапептида Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 приводит к существенному увеличению количество антителобразующих спленоцитов (АОК) и антиэритроцитарных анти-тел (ГМА). Достоверные отличия с контролем в группе, где применяли новый тетрапептида Ala-Glu-Asp-Leu-NH2, отмечены уже при введении субстанции в дозе 0,1 мкг/кг. У животных, которым вводили тетрапептида Ala-Glu-Asp-Leu, эффекты по увеличению количеств АОК и ГМА выражены очень слабо. Эти результаты указывают на то, что в отличие от прототипа (тетрапептида Ala-Glu-Asp-Leu ) новый тетрапептид (Ala-Glu-Asp-Leu-NH2) обладает ярко выраженной иммуномодулирующей активностью. As follows from the data presented in table 9, the use of the new tetrapeptide Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 leads to a significant increase in the number of antibody-forming splenocytes (AOKs) and anti-erythrocyte antibodies (GMA). Significant differences with the control in the group where the new Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 tetrapeptide was used were already noted when the substance was administered at a dose of 0.1 μg / kg. In animals that were injected with the Ala-Glu-Asp-Leu tetrapeptide, the effects of increasing the amounts of AOA and GMA are very weak. These results indicate that, in contrast to the prototype (Ala-Glu-Asp-Leu tetrapeptide), the new tetrapeptide (Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 ) has a pronounced immunomodulating activity.

Таким образом, заявляемое пептидное соединение оказывает комплексное восстановительное действие на функцию органов дыхания, включая иммуномокоррекцию.Thus, the claimed peptide compound has a comprehensive restorative effect on the function of the respiratory system, including immunomodulation.

Claims (3)

1. Тетрапептид аланил-глутамил-аспартил-лейцин амид общей формулы Ala-Glu-Asp-Leu-NH2.1. The tetrapeptide alanyl-glutamyl-aspartyl-leucine amide of the general formula Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 . 2. Применение тетрапептида аланил-глутамил-аспартил-лейцин амид общей формулы Ala-Glu-Asp-Leu-NH2, для восстановления функции органов дыхания и иммунокоррекции.2. The use of the tetrapeptide alanyl-glutamyl-aspartyl-leucine amide of the general formula Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 to restore respiratory function and immunocorrection. 3. Фармакологическое средство пептидной природы, восстанавливающее функцию органов дыхания и обладающее иммуномодулирующим действием, содержащее активный пептидный агент и фармацевтически приемлемый носитель, отличающееся тем, что в качестве активного пептидного агента содержит эффективное количество тетрапептида Ala-Glu-Asp-Leu-NH2 в дозе 0,01-1000 мкг/кг массы тела.3. Pharmacological agent of a peptide nature, restoring the function of the respiratory system and having an immunomodulating effect, containing an active peptide agent and a pharmaceutically acceptable carrier, characterized in that as an active peptide agent contains an effective amount of a tetrapeptide Ala-Glu-Asp-Leu-NH 2 in a dose 0.01-1000 mcg / kg body weight.
RU2017141210A 2017-11-27 2017-11-27 Peptide compound, restoring function of respiratory bodies and inflammable immunomodulating action RU2667466C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2017141210A RU2667466C1 (en) 2017-11-27 2017-11-27 Peptide compound, restoring function of respiratory bodies and inflammable immunomodulating action

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2017141210A RU2667466C1 (en) 2017-11-27 2017-11-27 Peptide compound, restoring function of respiratory bodies and inflammable immunomodulating action

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2667466C1 true RU2667466C1 (en) 2018-09-19

Family

ID=63580517

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2017141210A RU2667466C1 (en) 2017-11-27 2017-11-27 Peptide compound, restoring function of respiratory bodies and inflammable immunomodulating action

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2667466C1 (en)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4794103A (en) * 1986-01-10 1988-12-27 Alfio Bertolini Pharmaceutical compositions containing peptides of the cholecystokinin-cerulein group for the therapy of shock conditions and of respiratory and cardiocirculatory insufficiencies
RU2255757C1 (en) * 2004-06-22 2005-07-10 Санкт-Петербургская Общественная Организация "Санкт-Петербургский Институт Биорегуляции И Геронтологии Сзо Рамн" Peptide compound recovering function of respiratory organs
WO2007118901A2 (en) * 2006-04-18 2007-10-25 The Provost, Fellows And Scholars Of The College Of The Holy And Undivided Trinity Of Queen Elizabeth Near Dublin Tracheal cytotoxin (tct) and related compounds for suppressing immune responses

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4794103A (en) * 1986-01-10 1988-12-27 Alfio Bertolini Pharmaceutical compositions containing peptides of the cholecystokinin-cerulein group for the therapy of shock conditions and of respiratory and cardiocirculatory insufficiencies
RU2255757C1 (en) * 2004-06-22 2005-07-10 Санкт-Петербургская Общественная Организация "Санкт-Петербургский Институт Биорегуляции И Геронтологии Сзо Рамн" Peptide compound recovering function of respiratory organs
WO2007118901A2 (en) * 2006-04-18 2007-10-25 The Provost, Fellows And Scholars Of The College Of The Holy And Undivided Trinity Of Queen Elizabeth Near Dublin Tracheal cytotoxin (tct) and related compounds for suppressing immune responses

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
KHAVINSON VK., et al., Short Peptides Regulate Gene Expression.Bull Exp Biol Med. 2016 Dec;162(2):288-292. Epub 2016 Dec 1. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP3902406B2 (en) Tetrapeptide showing anti-aging effect, pharmacological substance based on the peptide, and use thereof
US11680082B2 (en) Conjugates of montelukast and peptides
KR20080027191A (en) New benzoxazole derivative, process for the preparation thereof and pharmaceutical composition comprising the same
EP2968475A2 (en) Acth for treatment of acute respiratory distress syndrome
CN101534813A (en) Methods of enhancing mucosal hydration and mucosal clearance by treatment with sodium channel blockers and osmolytes
CA2949328C (en) Low substituted polymyxins and compositions thereof
RU2667466C1 (en) Peptide compound, restoring function of respiratory bodies and inflammable immunomodulating action
UA92387C2 (en) Peptide exhibiting stress protective action, pharmaceutical composition based thereon and use thereof
EP2965765B1 (en) Use of adelmidrol in the treatment of epithelial dysfunctions
CN101678069A (en) Treatment of allergic disease with immunomodulator compounds
WO2021110061A1 (en) Peptides and their use in the treatment of inflammation
US20210122800A1 (en) Pro-drug peptide with improved pharmaceutical properties
EP4056183A1 (en) Use of phosphodiesterase 5 inhibitor in preparation of medicament for resisting fibrotic diseases
WO2018138400A2 (en) Method for producing extracts enriched with sulfoxide-free organosulfur compounds, s-alkenyl-l-cysteine and s-alkyl-l-cysteine, from plant raw materials, and uses thereof in the treatment of inflammatory diseases
CN105324377B (en) The treatment of lung disorder and other illnesss
RU2767532C1 (en) Peptide having bronchoprotective action, pharmaceutical composition based thereon and method for use thereof
RU2781968C1 (en) Biomedical cell product based on mammalian mesenchymal stromal cells and hexapeptide
WO2020249139A1 (en) Potassium salt crystal form b of phosphodiesterase type 5 inhibitor, and preparation method and use therefor
US7625870B2 (en) Peptide substance restoring respiratory organs function
KR101453060B1 (en) Pharmaceutical composition for improving and treating nasal inflammatory diseases containing honeybee venom
EP3311829B1 (en) Calcium binding compounds based on gamma-carboxy glutamate
CN117562915A (en) Application of adenosine derivative in preparing medicament for preventing, relieving or treating fibrosis diseases
JP2021536467A (en) Methods and compositions for the treatment of asthma or Parkinson&#39;s disease
Şennur et al. Effects of ethanol induced gastric lesions in sialoadenectomized rat: An ultrastructural study

Legal Events

Date Code Title Description
PD4A Correction of name of patent owner
PD4A Correction of name of patent owner