RU2646488C2 - Means for selective effect on biofilm formation by microorganisms - Google Patents

Means for selective effect on biofilm formation by microorganisms Download PDF

Info

Publication number
RU2646488C2
RU2646488C2 RU2016116177A RU2016116177A RU2646488C2 RU 2646488 C2 RU2646488 C2 RU 2646488C2 RU 2016116177 A RU2016116177 A RU 2016116177A RU 2016116177 A RU2016116177 A RU 2016116177A RU 2646488 C2 RU2646488 C2 RU 2646488C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
biofilm
biofilm formation
miliacin
microorganisms
bacteria
Prior art date
Application number
RU2016116177A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2016116177A (en
Inventor
Олег Валерьевич Бухарин
Борис Александрович Фролов
Ирина Николаевна Чайникова
Наталья Борисовна Перунова
Елена Валерьевна Иванова
Юлия Владимировна Филиппова
Таисия Александровна Бондаренко
Оксана Игоревна Сидорова
Татьяна Владимировна Панфилова
Алла Дмитриевна Железнова
Юлия Александровна Сарычева
Original Assignee
Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Оренбургский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ГБОУ ВПО ОрГМУ Минздрава России)
Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза Уральского отделения Российской академии наук (ИКВС УрО РАН)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Оренбургский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ГБОУ ВПО ОрГМУ Минздрава России), Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза Уральского отделения Российской академии наук (ИКВС УрО РАН) filed Critical Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Оренбургский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ГБОУ ВПО ОрГМУ Минздрава России)
Priority to RU2016116177A priority Critical patent/RU2646488C2/en
Publication of RU2016116177A publication Critical patent/RU2016116177A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2646488C2 publication Critical patent/RU2646488C2/en

Links

Images

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/56Compounds containing cyclopenta[a]hydrophenanthrene ring systems; Derivatives thereof, e.g. steroids
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K2121/00Preparations for use in therapy
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: triterpenoid milyacin is used as a means for selective influence on biofilm formation by microorganisms, which reduces biofilm formation by pathogens - Salmonella typhimurium, Salmonella enteritidis and opportunistic Pseudomonas aeruginosa, Klebsiella pneumoniae, Staphylococcus aureus bacteria and at the same time preserves biofilm formation by normoflora - lactobacilli - Lactobacillus plantarum, Lactobacillus fermentum, Lactobacillus acidophilus and bifidobacteria - Bifidobacterium bifidum, Bifidobacterium adolescentis.
EFFECT: application of the invention provides a herbal remedy for effective prevention and treatment of infectious and pyoinflammatory diseases caused by biofilm-forming pathogenic and opportunistic bacteria.
9 dwg, 6 tbl, 1 ex

Description

Изобретение относится к медицине, а именно к медицинской микробиологии и инфектологии, и может найти практическое применение в качестве средства растительного происхождения для профилактики и лечения заболеваний, вызванных биопленкообразующими микроорганизмами.The invention relates to medicine, namely to medical microbiology and infectology, and can find practical application as a means of plant origin for the prevention and treatment of diseases caused by biofilm forming microorganisms.

Существование большинства видов бактерий в природе происходит не в виде свободноживущих (планктонных) клеток, а путем организации ими специфических образований - биопленок: сообществ микробных клеток, прикрепленных к поверхности или друг к другу и заключенных в матрикс синтезированных ими внеклеточных полимерных веществ (Donlan R.M., Costerton J.W., 2002; Mulcahy R. et al., 2014). Особое значение имеет образование биопленок патогенными бактериями. Известно, что 80% всех инфекционных заболеваний, свыше 60% всех внутрибольничных инфекций вызываются микроорганизмами, находящимися в биопленках (Pintucci J.P. et al., 2010; Сидоренко С.В., 2012). С наличием биопленок связывают течение длительно рецидивирующих хронических инфекционных заболеваний, трудно поддающихся стандартной терапии: эндокардиты, лор-патология, заболевания мочевыделительной системы, болезни полости рта, зубов и десен и др. (Pintucci J.P. et al., 2010; Smith A. et al., 2011; Романова Ю.М., Гинцбург А.Л., 2011).The existence of most types of bacteria in nature does not occur in the form of free-living (planktonic) cells, but through the organization of specific formations - biofilms: communities of microbial cells attached to the surface or to each other and enclosed in a matrix of extracellular polymeric substances synthesized by them (Donlan RM, Costerton JW, 2002; Mulcahy R. et al., 2014). Of particular importance is the formation of biofilms by pathogenic bacteria. It is known that 80% of all infectious diseases, over 60% of all nosocomial infections are caused by microorganisms located in biofilms (Pintucci J.P. et al., 2010; Sidorenko S.V., 2012). The presence of biofilms is associated with long-term recurrent chronic infectious diseases that are difficult to respond to standard therapy: endocarditis, ENT pathology, diseases of the urinary system, diseases of the oral cavity, teeth and gums, etc. (Pintucci JP et al., 2010; Smith A. et al ., 2011; Romanova Yu.M., Gunzburg A.L., 2011).

Важное прикладное значение имеет вопрос об образовании биопленок на абиотических поверхностях медицинского оборудования, включая контактные линзы, катетеры, протезные устройства, имплантанты, стенты, внутриматочные контрацептивы, трубки для интубации и пр. (Романова Ю.М. с соавт., 2011; Kostakioti М. et al., 2013). Очевидно, что микроорганизмы, фиксированные на поверхностях этого оборудования, представляют реальную угрозу заражения пациентов и могут служить причиной инфекционных осложнений при проведении медицинских мероприятий.The issue of the formation of biofilms on the abiotic surfaces of medical equipment, including contact lenses, catheters, prosthetic devices, implants, stents, intrauterine devices, tubes for intubation, etc. (Romanova Yu.M. et al., 2011; Kostakioti M . et al., 2013). Obviously, microorganisms fixed on the surfaces of this equipment pose a real threat of infection for patients and can cause infectious complications during medical events.

Патогенность микрофлоры, находящейся в биопленоке, во многом обусловлена следующими факторами: возрастанием резистентности к неблагоприятным факторам среды и механизмам иммунной защиты человека, значительным снижением чувствительности к антибиотикам за счет ограничения проникновения химиопрепаратов через экзополисахаридный матрикс; снижением метаболизма и скорости деления бактерий в биопленках (Hoiby N. et al., 2010); существованием в популяции биопленочных бактерий клеток-персистеров, обладающих абсолютной устойчивостью к химиопрепаратам (Льюис К., 2005). Указанные факторы обусловливают необходимость использовать для борьбы с инфекцией химиопрепараты в дозах, существенно (в 10-1000 раз) превышающих минимальные бактериостатические концентрации (МБК) для планктонных культур (Мошкевич И.Р., 2007; Чеботарь И.В. с соавт., 2012; Sadovskaya I. et al., 2010).The pathogenicity of the microflora in the biofilm is largely due to the following factors: an increase in resistance to adverse environmental factors and human immune defense mechanisms, a significant decrease in sensitivity to antibiotics due to the restriction of the penetration of chemotherapeutic drugs through the exopolysaccharide matrix; a decrease in metabolism and the rate of division of bacteria in biofilms (Hoiby N. et al., 2010); the existence of persistent cells in a population of biofilm bacteria with absolute resistance to chemotherapy (Lewis K., 2005). These factors necessitate the use of chemotherapeutic agents in the fight against infection at doses significantly (10-1000 times) higher than the minimum bacteriostatic concentrations (MBC) for planktonic cultures (Moshkevich I.R., 2007; Chebotar I.V. et al., 2012 ; Sadovskaya I. et al., 2010).

Отдельную задачу для практической медицины представляет создание средств с избирательным влиянием на биопленкообразование только возбудителей заболеваний микробной этиологии, поскольку современные используемые антибиопленочные средства при применении одновременно подавляют образование биопленок не только у патогенных и условно-патогенных микроорганизмов, но и у представителей нормального микробиоценоза (эубиоза) различных биотопов человека. Формирование в процессе жизнедеятельности нормальной микрофлоры биопленок обеспечивает им выполнение важнейшей защитной функции - противодействие заселению слизистых болезнетворными микроорганизмами, а также защищает саму нормофлору от неблагоприятных воздействий окружающей среды (антибиотики, другие химиопрепараты, стрессорные факторы и т.д.).A separate task for practical medicine is the creation of agents with a selective effect on the biofilm formation of only pathogens of microbial etiology, since the modern antibiotic agents used simultaneously suppress the formation of biofilms not only in pathogenic and conditionally pathogenic microorganisms, but also in representatives of normal microbiocenosis (eubiosis) of various human biotopes. The formation of normal microflora of biofilms during the life process ensures them the fulfillment of the most important protective function - counteracting the colonization of mucous membranes with pathogens, and also protects the normoflora itself from adverse environmental influences (antibiotics, other chemotherapy drugs, stress factors, etc.).

Таким образом, очевидно, что разработка средств, способных снижать биопленкообразование патогенными и условно-патогенными микроорганизмами и не подавлять биопленкообразование у представителей нормофлоры, имеет важное прикладное значение для повышения эффективности профилактики и лечения бактериальных инфекций.Thus, it is obvious that the development of agents that can reduce biofilm formation by pathogenic and conditionally pathogenic microorganisms and not suppress biofilm formation in representatives of normal flora is of great practical importance for increasing the effectiveness of prevention and treatment of bacterial infections.

Уровень техникиState of the art

Интенсивная разработка проблемы борьбы с заболеваниями микробной этиологии, вызываемыми возбудителями, способными образовывать биопленки на биотических и абиотических поверхностях, базируется на представлениях об этапах формирования микробных биопленок и составляющих их механизмах. В соответствии с этими представлениями подходы, предупреждающие или лимитирующие образование биопленок, включают средства и способы, направленные на ограничение прикрепления микробных клеток к поверхностям (адгезии), нарушение созревания биопленок (роста бактериальной популяции и формирование внеклеточного матрикса), а также на дезинтеграцию уже сформированных биопленок.The intensive development of the problem of combating diseases of microbial etiology caused by pathogens capable of forming biofilms on biotic and abiotic surfaces is based on ideas about the stages of the formation of microbial biofilms and their mechanisms. In accordance with these ideas, approaches that prevent or limit the formation of biofilms include means and methods aimed at limiting the attachment of microbial cells to surfaces (adhesion), impaired maturation of biofilms (growth of the bacterial population and the formation of extracellular matrix), as well as the disintegration of already formed biofilms .

Адгезия рассматривается как ключевой момент в образовании биопленки (Klemm P., Vejborg R.M., 2010; Маянский А.Н., Чеботарь И.В., 2012; Ерошенко Д.В., 2015). В ее реализации со стороны бактерий участвуют как минимум две группы адгезивных факторов, связанных с органеллами клетки, - пили и пилиподобные клубкообразные отростки (кэрли) и адгезивные молекулы нефимбриальной природы (экзополисахариды и другие соединения). Для ингибирования указанных факторов используют бициклические 2-пиридины (Pinkner J.S. et al., 2006), ионы Zn2+ (Hancock et. al., 2010), полимерные гексаны: альфа-метил-галактозиды и альфа-метил-фукоцид, связывающие лектиноподобные молекулы (Chemani С. et al., 2009); туникамицин (Thomas R., Brooks Т., 2004); аминокислоты - лейцин, триптофан, митионин, тирозин, заменяющие в пептидогликане концевую аминокислоту - D-аланин (Kolodkin-Gall, 2010).Adhesion is considered as a key moment in biofilm formation (Klemm P., Vejborg RM, 2010; Mayansky A.N., Chebotar I.V., 2012; Eroshenko D.V., 2015). At least two groups of adhesive factors associated with cell organelles are involved in its implementation on the part of bacteria - drank and saw-like glomerular processes (curls) and adhesive molecules of a non-fimbrial nature (exopolysaccharides and other compounds). To inhibit these factors, bicyclic 2-pyridines (Pinkner JS et al., 2006), Zn 2+ ions (Hancock et. Al., 2010), polymer hexanes: alpha-methyl-galactosides and alpha-methyl-fucocid binding lectin-like ones are used molecules (Chemani C. et al., 2009); tunicamycin (Thomas R., Brooks T., 2004); amino acids - leucine, tryptophan, mitionine, tyrosine, which replace the terminal amino acid in peptidoglycan - D-alanine (Kolodkin-Gall, 2010).

Альтернативный подход включает средства и методы, направленные на изменения свойств субстрата, на котором происходит образование биопленки: обработка биогенных субстратов (эпителиальные клетки воздухоносных путей) нейроминидазой, сиаловыми кислотами и N-ацетилглюкозамином (Ramphal R., Arora S.K., 2001); обработка абиогенных поверхностей, меняющая их гидрофобность или заряд хелатированием двухвалентными катионами металлов (Banin Е. et al., 2006), гидрофобными агентами - р-нитрофенолом, а также покрытие их полисахаридами - декстраном, декстран-сульфатом, гепарином (Thomas R., Brooks Т., 2004) или белковой пленкой с молекулами, несущими положительный заряд (Vejborg R.M., Klemm P., 2008).An alternative approach includes tools and methods aimed at changing the properties of the substrate on which the biofilm is formed: treatment of biogenic substrates (epithelial cells of the airways) with neurominidase, sialic acids and N-acetylglucosamine (Ramphal R., Arora S.K., 2001); treatment of abiogenic surfaces, changing their hydrophobicity or charge by chelation with divalent metal cations (Banin E. et al., 2006), hydrophobic agents - p-nitrophenol, as well as coating them with polysaccharides - dextran, dextran sulfate, heparin (Thomas R., Brooks T., 2004) or a protein film with molecules carrying a positive charge (Vejborg RM, Klemm P., 2008).

Важнейшей структурой бактериальной биопленки как естественной формы существования бактерий в окружающей среде и в организме хозяина является внеклеточный матрикс, составляющий 65-95% массы биопленки (Романова Ю.М., Гинцбург А.Л., 2011). Основными компонентами последнего служат полисахариды, белки и нуклеиновые кислоты. Исходя из этого очевидно, что все факторы, негативно влияющие на компоненты матрикса, будут предотвращать развитие биопленочного процесса или разрушать готовую биопленку (Чеботарь И.В., 2012). Этой способностью обладают альгинатлиазы Pseudomonas aeruginosa (Степанова Т.А. и соавт., 2010; Alkawash М.А. et al., 2005); протеазы, ДНК-азы (Терентьева Н.А. с соавт., 2015; Nijland R. et al., 2010; Gilan I., Sivan A., 2013), а также комбинации ферментов (Landini P. et. al., 2010); дисперсии В-гликозидгидролаза, деградирующая поли-N-ацетилглюкозамин (Kaplan J.B., 2010); N-ацетилцистеин (Zhao Т., Liu Y., 2010), снижающий продукцию матриксных полисахаридов.The most important structure of a bacterial biofilm as a natural form of the existence of bacteria in the environment and in the host organism is the extracellular matrix, which makes up 65-95% of the biofilm mass (Romanova Yu.M., Gintsburg A.L., 2011). The main components of the latter are polysaccharides, proteins and nucleic acids. Based on this, it is obvious that all factors that negatively affect the components of the matrix will prevent the development of the biofilm process or destroy the finished biofilm (Chebotar I.V., 2012). Pseudomonas aeruginosa alginate lyases possess this ability (Stepanova T.A. et al., 2010; Alkawash M.A. et al., 2005); proteases, DNAase (Terentyeva N.A. et al., 2015; Nijland R. et al., 2010; Gilan I., Sivan A., 2013), as well as combinations of enzymes (Landini P. et. al., 2010); dispersion of B-glycoside hydrolase degrading poly-N-acetylglucosamine (Kaplan J.B., 2010); N-acetylcysteine (Zhao T., Liu Y., 2010), which reduces the production of matrix polysaccharides.

Угнетение продукции компонентов биопленочного матрикса может быть достигнуто путем воздействия на систему кворум-сенсиса (QS), объединяющую сигнальные молекулы (медиаторы, аутоиндукторы, феромоны) общения между микробными клетками. Блокада QS-медиаторов может быть достигнута с помощью макролидных антибиотиков, используемых в суббактериостатических концентрациях (Nalca Y. et al., 2006), и при использовании галогенезироованных аналогов антраловой кислоты (Lesic В. et al., 2007), интерферирующих с секрецией QS-аутоиндукторов. Существенно, что среди множества QS-ингибиторов (Sintim Н.О. et al., 2010) видное место занимают природные метаболиты, полученные из экстрактов различных растений: чеснока, винограда, соевых бобов и др. (Nazzaro F. et al., 2013; Маркова Ю.А., 2014).The inhibition of the production of components of the biofilm matrix can be achieved by acting on the quorum-sense system (QS), which combines signaling molecules (mediators, autoinductors, pheromones) of communication between microbial cells. Blockade of QS-mediators can be achieved using macrolide antibiotics used in sub-bacteriostatic concentrations (Nalca Y. et al., 2006) and using halogenated analogs of anthralic acid (Lesic B. et al., 2007) interfering with QS- secretion autoinductors. It is significant that among the many QS inhibitors (Sintim N.O. et al., 2010), a prominent place is occupied by natural metabolites obtained from extracts of various plants: garlic, grapes, soybeans, etc. (Nazzaro F. et al., 2013 ; Markova Yu.A., 2014).

Подавление биопленкообразования может быть также достигнуто путем ингибирования жизнедеятельности самих бактерий с помощью микробных метаболитов: батумина (Бухарин О.В. и др., 2012); антибиотиков из группы макролидов (Карпов О.И. и соавт., 2005; Tre-Hardym М. et al., 2010).The suppression of biofilm formation can also be achieved by inhibiting the vital activity of the bacteria themselves with the help of microbial metabolites: batumin (Bukharin O.V. et al., 2012); antibiotics from the macrolide group (Karpov O.I. et al., 2005; Tre-Hardym M. et al., 2010).

Наконец, для разрушения уже сформированной биопленки используются физические методы воздействия, в частности эффективной оказалась ее обработка ультразвуком при лечении хронического риносинусита (Karosi Т. et al., 2013).Finally, physical methods of exposure are used to destroy the already formed biofilm, in particular, its treatment with ultrasound has proven effective in the treatment of chronic rhinosinusitis (Karosi T. et al., 2013).

Наиболее близким аналогом по теме данной заявки является работа - соединения триазола для лечения образования биопленок – Патент RU №2478385). Соединения триазола в комбинации, включающей (а) 4-[3,5-бис(2-гидроксифенил)-[1,2,4]триазол-1-ил]бензойную кислоту или ее фармацевтически приемлемую соль и (б) антибиотик, выбранный из группы, включающей гентамицин, амикацин, тобрамицин, ципрофлоксацин, левофлоксацин, цефразидим, цефепим, цефпиром, пиперациллин, тикарциллин, меропенем, имипенем, полимиксин В, колистин и азреонам, предупреждают образование биопленок, формируемых P. aeruginosa, у пациентов с муковисцедозом и при лечении хронической инфекции, вызванной P. aeruginosa.The closest analogue to the topic of this application is work - triazole compounds for the treatment of biofilm formation - Patent RU No. 2478385). Triazole compounds in combination comprising (a) 4- [3,5-bis (2-hydroxyphenyl) - [1,2,4] triazol-1-yl] benzoic acid or a pharmaceutically acceptable salt thereof and (b) an antibiotic selected from the group consisting of gentamicin, amikacin, tobramycin, ciprofloxacin, levofloxacin, cefrazidime, cefepime, cefpirome, piperacillin, ticarcillin, meropenem, imipenem, polymyxin B, colistin and azreone, prevent the formation of biofilms from patients formed by aer treating chronic P. aeruginosa infection.

Недостатком использования соединений триазола для лечения образования биопленок является узкий спектр применения, ограничиваемый воздействием на биопленки, образуемые только P. aeruginos.The disadvantage of using triazole compounds for the treatment of biofilm formation is a narrow range of applications, limited by the effect on biofilms formed only by P. aeruginos.

В качестве прототипа выбрано использование альгинатных олигомеров в борьбе с биопленками – Патент RU №2527894. Альгинатный олигомер молекулярной массой менее 20000 Д, содержащий по меньшей мере 70% G - остатков, используется для изготовления лекарственного средства для профилактики и борьбы с биопленкой, в том числе с биопленочной инфекцией в клинике (у пациентов с ранами, травмами, ожогами, респираторными инфекциями, инфекций ротовой полости), и для очистки и обеззараживания биотических и абиотических поверхностей посредством действия на внеклеточную полимерную матрицу любых микроорганизмов (грамположительные, грамотрицательные бактерии, грибы). Использование альгинатного олигомера возможно в сочетании с различными антимикробными агентами и деструкторами биопленок.The use of alginate oligomers in the fight against biofilms was selected as a prototype - Patent RU No. 2527894. An alginate oligomer with a molecular weight of less than 20,000 D, containing at least 70% G - residues, is used for the manufacture of a medicine for the prevention and control of biofilm, including biofilm infection in the clinic (in patients with wounds, injuries, burns, respiratory infections infections of the oral cavity), and for cleaning and disinfecting biotic and abiotic surfaces by acting on the extracellular polymer matrix of any microorganisms (gram-positive, gram-negative bacteria, fungi). The use of alginate oligomer is possible in combination with various antimicrobial agents and biofilm destructors.

Недостатком использования альгинатных олигомеров в борьбе с биопленками является разрушение/подавление биопленок любых микроорганизмов посредством влияния на внеклеточный матрикс. Подобный эффект воздействия альгинатных олигомеров не исключает подавления или разрушения биопленок микроорганизмов, относящихся к нормальной микрофлоре, что может существенно снижать колонизационную резистентность слизистых различных биотопов человека и повышать риск заселения биотопов возбудителями инфекционных и гнойно-воспалительных заболеваний.The disadvantage of using alginate oligomers in the fight against biofilms is the destruction / suppression of biofilms of any microorganisms by influencing the extracellular matrix. A similar effect of exposure to alginate oligomers does not exclude the suppression or destruction of biofilms of microorganisms related to normal microflora, which can significantly reduce the colonization resistance of mucous membranes of various human biotopes and increase the risk of colonization of biotopes by pathogens of infectious and purulent-inflammatory diseases.

Задачей изобретения является расширение арсенала средств для борьбы с биопленкообразованием у патогенных и условно-патогенных микроорганизмов.The objective of the invention is to expand the arsenal of tools to combat biofilm formation in pathogenic and conditionally pathogenic microorganisms.

Раскрытие изобретенияDisclosure of invention

Указанная задача решается применением тритерпеноида милиацина в качестве средства для селективного влияния на биопленкообразование микроорганизмами, снижающего биопленкообразование патогенными - Salmonella typhimurium, Salmonella enteritidis и условно-патогенными - Pseudomonas aeruginosa, Klebsiella pneumoniae, Staphylococcus aureus бактериями и одновременно сохраняющего биопленкообразование нормофлорой - лактобактериями, например Lactobacillus plantarum, Lactobacillus fermentum, Lactobacillus acidophilus и бифидобактериями, например Bifidobacterium bifidum, Bifidobacterium adolescentis.This problem is solved by the use of triterpenoid miliacin as a means for the selective influence on biofilm formation by microorganisms, which reduces biofilm formation by pathogenic Salmonella typhimurium, Salmonella enteritidis and conditionally pathogenic Pseudomonas aeruginosa, Klebsiella bacterobacterium lactobacillus acylactobacterium baclorectomy , Lactobacillus fermentum, Lactobacillus acidophilus and bifidobacteria, e.g. Bifidobacterium bifidum, Bifidobacterium adolescentis.

Технический результат, обеспечиваемый изобретением, заключается в создании нового растительного средства для эффективной профилактики и лечения инфекционных и гнойно-воспалительных заболеваний, вызванных биопленкообразующими патогенными и условно-патогенными бактериями, например сальмонеллами, клебсиеллами, псвдомонадами, золотистым стафилококком, которое снижает у них способность к биопленкообразованию с одновременным сохранением биопленкообразования нормальной микрофлорой человека, например бифидобактериями и лактобактериями, являющимися ведущим звеном в формировании колонизационной резистентности организма человека, обеспечивающей защиту слизистых различных биотопов человека от болезнетворных микроорганизмов.The technical result provided by the invention is to create a new herbal remedy for the effective prevention and treatment of infectious and purulent-inflammatory diseases caused by biofilm-forming pathogenic and conditionally pathogenic bacteria, for example, salmonella, Klebsiella, psvdomonada, Staphylococcus aureus, which reduces their ability to biofilm formation while preserving biofilm formation by normal human microflora, for example bifidobacteria and lactobacilli E, which are the driving member in the formation of colonization resistance of a human body that protects the mucous various human habitats from pathogenic microorganisms.

При оценке существующих подходов к снижению биопленокообразования у микроорганизмов обращает внимание необходимость соблюдения как минимум двух условий, обеспечивающих эффективность этих подходов. Во-первых, комплексность воздействия на микрофлору биопленки, включая антиадгезивные, антивирулентные, диспергирующие, бактерицидные или бактериостатические эффекты (Маянский А.Н., Чеботарь И.В., 2012; Чеботарь И.В. с соавт., 2012). Во-вторых, безвредность используемых средств и методов для организма. На сегодняшний день указанным условием в наибольшей степени соответствуют вещества природного, в частности растительного происхождения. Их существенным достоинством является низкая (в большинстве случаев) токсичность, а также возможность комбинированного влияния на биопленкообразование, включая воздействие на QS-систему бактерий (Nazaro F. et al., 2013), способность к адгезии (Wojnicz D. et al., 2012), поверхностные свойства и подвижность клеток (Lemos М. et al., 2014), а также экспрессию генов, регулирующих биопленочный процесс (Wojnicz D. et al., 2012).When assessing existing approaches to reducing biofilm formation in microorganisms, attention is drawn to the need to observe at least two conditions ensuring the effectiveness of these approaches. Firstly, the complexity of the impact on the microflora of biofilms, including anti-adhesive, anti-virulent, dispersing, bactericidal or bacteriostatic effects (Mayansky A.N., Chebotar I.V., 2012; Chebotar I.V. et al., 2012). Secondly, the harmlessness of the means and methods used for the body. To date, this condition is most consistent with substances of natural, in particular plant origin. Their significant advantage is low (in most cases) toxicity, as well as the possibility of a combined effect on biofilm formation, including exposure to the QS system of bacteria (Nazaro F. et al., 2013), and their ability to adhere (Wojnicz D. et al., 2012 ), surface properties and cell motility (Lemos M. et al., 2014), as well as the expression of genes that regulate the biofilm process (Wojnicz D. et al., 2012).

Из этих продуктов к числу наиболее известных относятся терпеноиды (изопреноиды), представляющие собой самый многочисленный класс низкомолекулярных соединений, молекулы которых построены из разветвленных С5 единиц (Лукнер М., 1979; Гудвин Т., Мерцер Э., 1986). Присущие как эукариотным, так и прокариотным организмам, терпеноидные (изопреноидные) структуры выполняют важнейшие функции, участвуя в процессах фотосинтеза (в составе каротиноидов, хлорофиллов, пластихинона), дыхания (убихинон), гормональной регуляции (стеролы), регуляции роста и развития (в составе цитокинов, пренилированных белков), в защите от патогенов и передаче сигнальной информации - Ras-белки, в везикулярном транспорте внутри клеток - Rab-белки (Тренин А.С., 2013). У бактерий изопреноиды включены также в состав липидного переносчика, необходимого для синтеза клеточной стенки (Тренин А.С., 2013). Для продукции терпеноидов необходимо образование изопентилпирофосфата, которое может протекать по двум альтернативным вариантам: через меволонатный путь (Пасешниченко В.А., 1998), присущий эукариотам и большинству грамположительных кокков и через немеволонатный, т.н. пируват-глицеральдегидфосфатный путь (Ершов Ю.В., 2005; 2007), выявленный у подавляющего большинства грамотрицательных микроорганизмов. Для растений, продуцирующих большую часть известных сегодня изопреноидов, характерно наличие обоих путей биосинтеза изопентилпирофосфата и многие из этих продуктов имеют смешанное происхождение. (Ltittgen Н. et al., 2000).Of these products, the most famous are terpenoids (isoprenoids), which are the most numerous class of low molecular weight compounds whose molecules are built from branched C5 units (M. Luckner, 1979; T. Goodwin, E. Mercer, 1986). Inherent in both eukaryotic and prokaryotic organisms, terpenoid (isoprenoid) structures perform the most important functions by participating in the processes of photosynthesis (as part of carotenoids, chlorophylls, plastiquinone), respiration (ubiquinone), hormonal regulation (sterols), growth and development regulation (as part of cytokines, prenylated proteins), in protection against pathogens and signaling information - Ras proteins, in vesicular transport inside cells - Rab proteins (Trenin A.S., 2013). In bacteria, isoprenoids are also included in the lipid carrier necessary for the synthesis of the cell wall (Trenin A.S., 2013). The production of terpenoids requires the formation of isopentyl pyrophosphate, which can proceed according to two alternative options: through the mevolonate pathway (Paseshnichenko V.A., 1998), inherent in eukaryotes and most gram-positive cocci, and through non-mevolonate, the so-called pyruvate-glyceraldehyde phosphate pathway (Ershov Yu.V., 2005; 2007), detected in the vast majority of gram-negative microorganisms. For plants that produce most of the isoprenoids known today, both biosynthesis pathways of isopentyl pyrophosphate are characteristic and many of these products are of mixed origin. (Ltittgen H. et al., 2000).

Среди терпеноидов растительного происхождения объектом глубокого изучения являются тритерпены в связи с обнаруженными у них многообразными биологическими свойствами, используемыми в медицине, включая противовоспалительный, иммуномодулирующий, антибластомный, антигипергликемический и другие эффекты. Влияние тритерпеноидов на процесс биопленкообразования изучено недостаточно, а отдельные работы, посвященные данной проблеме, неоднозначны. В частности, по данным Raja A.F. et al. (2011) пентациклический тритерпеноид: ацетил-11-кето-6-босвеллиновая кислота, выделенный из африканского растения Boswellia, в дозах 16-128 мкг/мл ингибировал образование биопленки S. mutans и Actinomyces visiosus. Аналогичный эффект подавления биопленкообразования штаммами S. mutans и S. mitis наблюдали Evaristo F.F.V. (2014), используя тритерпен 3β, 6β, 16β-тригидроксилупен, полученный из листьев кустарника Combretum leprosum Mart., произрастающего в Бразилии. Эффективная концентрация препарата составляла 7,8 мкг/мл, что соответствовало его минимальным ростингибирующим (7,8 мкг/мл) и бактерицидным (15,6 мкг/мл) концентрациям. При этом подавление биопленкообразования не проявлялось в отношении грамотрицательных бактерий - P. aerugenosa и Klebsiella oxytoca, что подтверждало ранее полученные данные для пентациклических тритерпеноидов, выделенных из африканских растений Combretaceae (Katerere D.R. et al., 2003). Противоположные результаты были получены в работе Awolola G.V. et al. (2014), изучавших антибактериальную и антипленочную активность флавоноидов и тритерпеноидов, полученных из экстракта листьев африканского фикуса Sansilarica Moraccae. Анализ этой активности у трех идентифицированных тритерпеноидов не только не выявил в их присутствии угнетения биопленкообразования штаммами грамположительных (S. aureus) и грамотрицательных (Е.coli) микроорганизмов, но, напротив, демонстрировал в отношении одного из них (люпеол-ацетата) статистически значимое повышение адгезии для всех исследуемых штаммов бактерий во всех тестируемых концентрациях (2-15 мг/мл).Among terpenoids of plant origin, the subject of deep study is triterpenes in connection with the diverse biological properties found in them that are used in medicine, including anti-inflammatory, immunomodulating, anti-blastoma, antihyperglycemic and other effects. The influence of triterpenoids on the biofilm formation process has not been studied enough, and some works devoted to this problem are ambiguous. In particular, according to Raja A.F. et al. (2011) pentacyclic triterpenoid: acetyl-11-keto-6-boswellic acid isolated from the African Boswellia plant, in doses of 16-128 μg / ml, inhibited the formation of S. mutans and Actinomyces visiosus biofilms. Evaristo F.F.V. observed a similar effect of suppressing biofilm formation by strains of S. mutans and S. mitis. (2014) using triterpene 3β, 6β, 16β-trihydroxylupen obtained from the leaves of the shrub Combretum leprosum Mart., Growing in Brazil. The effective concentration of the drug was 7.8 μg / ml, which corresponded to its minimum growth inhibiting (7.8 μg / ml) and bactericidal (15.6 μg / ml) concentrations. At the same time, the suppression of biofilm formation did not appear in relation to gram-negative bacteria, P. aerugenosa and Klebsiella oxytoca, which confirmed the previously obtained data for pentacyclic triterpenoids isolated from African plants Combretaceae (Katerere D.R. et al., 2003). Opposite results were obtained by Awolola G.V. et al. (2014), who studied the antibacterial and anti-film activity of flavonoids and triterpenoids obtained from the leaves extract of African ficus Sansilarica Moraccae. The analysis of this activity in the three identified triterpenoids not only did not reveal inhibition of biofilm formation by strains of gram-positive (S. aureus) and gram-negative (E. coli) microorganisms in their presence, but, on the contrary, showed a statistically significant increase in relation to one of them (luteol acetate) adhesion for all studied bacterial strains in all tested concentrations (2-15 mg / ml).

К числу тритерпеноидов, нашедших практическое применение в медицине, относится и милиацин, входящий в состав просяного масла (Олифсон Л.Е. с соавт., 1991). Ранее было показано, что применение милиацина снижает бактериальную обсемененность внутренних органов при экспериментальной сальмонеллезной инфекции и повышает выживаемость зараженных животных (Фролов Б.А. с соавт., 2013). В этой связи закономерным является интерес к исследованию способности милиацина влиять на биологические свойства микроорганизмов, колонизирующих различные биотопы организма человека, в том числе и на способность их формировать биопленку, в которой значительно возрастает устойчивость микроорганизмов к антибиотикам и факторам иммунной защиты человека.Among the triterpenoids that have found practical application in medicine, is miliacin, which is part of millet oil (Olifson L.E. et al., 1991). It was previously shown that the use of miliacin reduces the bacterial contamination of internal organs during experimental salmonella infection and increases the survival of infected animals (B. Frolov et al., 2013). In this regard, it is natural to be interested in studying the ability of miliacin to influence the biological properties of microorganisms that colonize various biotopes of the human body, including the ability to form a biofilm in which the microorganisms' resistance to antibiotics and human immune defense factors significantly increases.

Новизной предлагаемого изобретения является новое свойство растительного тритерпеноида милиацина селективно влиять на биопленкообразование микроорганизмов, снижая биопленкообразование у патогенных (Salmonella typhimurium, Salmonella enteritidis) и условно-патогенных (Pseudomonas aeruginosa, Klebsiella pneumoniae, Staphylococcus aureus) бактерий и одновременно сохраняя биопленкообразование у бактерий нормофлоры - лактобактерий и бифидобактерий, которое было обнаружено нами путем ряда экспериментов и его нельзя было предсказать заранее.The novelty of the present invention is a new property of the plant triterpenoid miliacin to selectively affect the biofilm formation of microorganisms, reducing biofilm formation in pathogenic (Salmonella typhimurium, Salmonella enteritidis) and opportunistic (Pseudomonas aeruginosa, and bacterium bacterium bacteria) and bifidobacteria, which was discovered by us through a series of experiments and could not be predicted in advance.

Предложенное средство 3-(3-метокси-А-олеанен (милиацин) относится к группе природных пентациклических тритерпеноидов, содержится в просяном масле и представляет собой вещество белого цвета с температурой плавления 285-286°С. Он оптически активен, нерастворим в воде, слаборастворим в этиловом спирте, диэтиловом эфире, ацетоне, хорошо растворим в хлороформе. Милиацин обладает хорошей переносимостью в диапазоне доз от 2 до 1000 мг/кг. ЛД50 этого соединения больше 1000 мг/кг (Олифсон Л.Е. с соавт., 1991), что свидетельствует об отсутствии у него токсических свойств. Химическая структура пентациклического тритерпеноида - милиацина (3-(3-метокси-Д,8-олеанена) представлена (фиг. 1).The proposed tool 3- (3-methoxy-A-oleanen (mylacin) belongs to the group of natural pentacyclic triterpenoids, is contained in millet oil and is a white substance with a melting point of 285-286 ° C. It is optically active, insoluble in water, slightly soluble in ethyl alcohol, diethyl ether, acetone, it is soluble in chloroform. Miliacin has good tolerance in the dose range from 2 to 1000 mg / kg. LD50 of this compound is more than 1000 mg / kg (Olifson L.E. et al., 1991), which indicates the absence of toxic The chemical structure of the pentacyclic triterpenoid - miliacin (3- (3-methoxy-D , 8- oleanene) is presented (Fig. 1).

Описание экспериментаExperiment description

В качестве объекта исследования были использованы клинические штаммы патогенных бактерий: Salmonella серовар Enteritidis (S. enteritidis) (28 культур), Salmonella серовар Typhimurium (S. typhimurium) (24 штамма), изолированные от больных гастроинтестинальной формой сальмонеллеза. Кроме того, использовались клинические штаммы условно-патогенных бактерий: Klebsiella pneumonia (K. pneumoniae) (8 культур) и Pseudomonas aeruginosa (P. aeruginosa) (8 изолятов), выделенные от пациентов с дисбиозом кишечника II-III степени, 8 клинических штаммов Staphylococcus aureus (S. aureus), выделенных от больных с гнойно-воспалительными заболеваниями. Также в работе были использованы пробиотические культуры микроорганизмов - представители нормальной микрофлоры человека: Lactobacillus plantarum №900811 (Государственная коллекции патогенных микроорганизмов ФГБУ «НЦЭСМП» Минздрава России), Lactobacillus fermentum 90Т-С4 (ГИСК им. Л.А. Тарасевича), Lactobacillus acidophilus №42 (Государственная коллекция микроорганизмов нормальной микрофлоры ФБУН МНИИЭМ им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора), Lactobacillus acidophilus NK1 (ГНИИ «Генетика»), Lactobacillus acidophilus 100аш (ГНИИ «Генетика»), Bifidobacterium bifidum №791 (№ AC-1247 в коллекции промышленных микроорганизмов ГНЦ РФ ФГУП ГосНИИ Генетики и селекции промышленных микроорганизмов), Bifidobacterium adolescentis МС-42 (ГИСК им. Л.А. Тарасевича), Bifidobacterium bifidum 1 (№900791 в Государственной коллекции патогенных микроорганизмов ФГБУ «НЦЭСМП» Минздрава России).The clinical strains of pathogenic bacteria were used as an object of study: Salmonella serovar Enteritidis (S. enteritidis) (28 cultures), Salmonella serovar Typhimurium (S. typhimurium) (24 strains) isolated from patients with gastrointestinal form of salmonellosis. In addition, clinical strains of opportunistic bacteria were used: Klebsiella pneumonia (K. pneumoniae) (8 cultures) and Pseudomonas aeruginosa (P. aeruginosa) (8 isolates) isolated from patients with intestinal dysbiosis of the II-III degree, 8 clinical strains of Staphylococcus aureus (S. aureus) isolated from patients with purulent-inflammatory diseases. Also in the work were used probiotic cultures of microorganisms - representatives of normal human microflora: Lactobacillus plantarum No. 900811 (State collection of pathogenic microorganisms FSBI "NTsESMP" of the Ministry of Health of Russia), Lactobacillus fermentum 90T-C4 (GISK named after L.A. Tarasevich), Lactobusillusophis 42 (State collection of microorganisms of normal microflora FBUN MNIIEM named after GN Gabrichevsky Rospotrebnadzor), Lactobacillus acidophilus NK 1 (GNII Genetika), Lactobacillus acidophilus 100ash (GNII Genetika), Bifidobacterium bifidum No. 471 (No. 791) collections of industrial microorganisms zm State Research Center of the Russian Federation Federal State Unitary Enterprise Research Institute of Genetics and Breeding of Industrial Microorganisms), Bifidobacterium adolescentis MS-42 (GISK named after L. Tarasevich), Bifidobacterium bifidum 1 (No. 900791 in the State Collection of Pathogenic Microorganisms of FSBI "NTsESMP" of the Ministry of Health of Russia).

Антибактериальную активность милиацина исследовали методом серийных разведений с применением 96-луночных плоскодонных полистироловых планшетов, предварительно заполненных суспензией (100 мкл) суточных агаровых культур микроорганизмов в концентрации 1×106 КОЕ/мл. Для каждой исследуемой культуры бактерий использовались три группы лунок: опытные - с добавлением 100 мкл милиацина; контрольные - с добавлением 100 мкл растворителя для милиацина (твин-21 на физрастворе) и лунки группы сравнения - с добавлением 100 мкл физраствора. Конечные концентрации милиацина в опытных лунках составляли от 400 мкг/мл до 0,049 мкг/мл; конечные концентрации растворителя соответственно от 1,6×10-8 до 0,2×10-12 моль. Диапазон концентраций тритерпеноида определялся с учетом его расчетного содержания в крови животных (50 мкг/мл) при использовании в дозе 2 мг/кг, оказывавшей протективный эффект при экспериментальной инфекции (Фролов Б.А. и соавт., 2013). Учет результатов проводили после 24-часовой инкубации культур (37°С), оценивая минимальную подавляющую концентрацию милиацина (МПК), определяемую путем сравнения спектрофотометрических показателей оптической плотности исследуемых проб при длине волны 540 нм. Результаты выражали в единицах оптической плотности (ед. ОП).The antibacterial activity of miliacin was studied by serial dilution using 96-well flat-bottomed polystyrene plates pre-filled with a suspension (100 μl) of daily agar cultures of microorganisms at a concentration of 1 × 10 6 CFU / ml. For each studied bacterial culture, three groups of wells were used: experimental - with the addition of 100 μl of miliacin; control - with the addition of 100 μl of solvent for miliacin (tween-21 in saline) and the wells of the comparison group - with the addition of 100 μl of saline. Final concentrations of miliacin in the test wells ranged from 400 μg / ml to 0.049 μg / ml; final solvent concentrations, respectively, from 1.6 × 10 −8 to 0.2 × 10 −12 mol. The range of triterpenoid concentrations was determined taking into account its calculated content in the blood of animals (50 μg / ml) when used at a dose of 2 mg / kg, which had a protective effect in experimental infection (B. Frolov et al., 2013). The results were taken into account after 24-hour incubation of cultures (37 ° C), evaluating the minimum inhibitory concentration of miliacin (MIC), determined by comparing spectrophotometric indicators of the optical density of the studied samples at a wavelength of 540 nm. The results were expressed in units of optical density (OD units).

Изучение биопленкообразования проводилось с использованием двух подходов: спектрофотометрической регистрации биопленочной массы, оцениваемой по интенсивности поглощения ею красителя - кристалл-виолета (O'Toole G., 2000) и с помощью атомно-силовой микроскопии. При реализации первого подхода применялись 96-луночные стерильные плоскодонные планшеты, в лунки которых одномоментно вносилось по 135 мкл суспензии суточной агаровой культуры бактерий в концентрации 0,5×106 КОЕ/мл и 15 мкл милиацина (опыт) или 15 мкл растворителя (контроль). Конечные концентрации милиацина в лунках составляли 50 и 100 мкг/мл, растворителя 2×10-9 и 4×10-9 моль. В качестве проб сравнения использовались бактериальные культуры (135 мкл), к которым добавляли 15 мкл физраствора. Все пробы инкубировались 24-48 часов статически при 37°С. Для культивирования облигатно-анаэробных бактерий (бифидобактерии) использовали CO2-инкубатор (BINDER, Германия). Учет биопленкообразования проводили через 24-48 часов инкубации проб при 37°С. Для учета биопленкообразования после удаления планктонных (свободноплавающих) клеток микроорганизмов трехкратной промывкой лунок дистиллированной водой (200 мкл) и подсушивания планшетов на воздухе (30 мин) осуществлялось окрашивание сформированных биопленок внесением в лунки 1%-ного раствора кристалл-виолета (45 мин при комнатной температуре). Отмывание свободного красителя выполняли трехкратной обработкой лунок дистиллированной водой, а экстракцию фиксированного в биопленках красителя проводили добавлением к пробам 200 мкл 96%-ного этанола. Интенсивность окрашивания последнего, соответствующую степени биопленкобразования, определяли на спектрофотометре (Биотек, США) при длине волны 540 нм. Биопленкообразование выражали в условных единицах, рассчитывая коэффициент биопленкообразования (КБПО):Biofilm formation was studied using two approaches: spectrophotometric registration of biofilm mass, estimated by the intensity of its absorption of the dye - crystal-violet (O'Toole G., 2000) and using atomic force microscopy. When implementing the first approach, 96-well sterile flat-bottomed plates were used, in the wells of which 135 μl of a suspension of daily agar culture of bacteria at a concentration of 0.5 × 10 6 CFU / ml and 15 μl of miacin (experiment) or 15 μl of solvent (control) were simultaneously introduced . Final concentrations of miliacin in the wells were 50 and 100 μg / ml, solvent 2 × 10 -9 and 4 × 10 -9 mol. Bacterial cultures (135 μl) were used as comparison samples, to which 15 μl of saline was added. All samples were incubated for 24-48 hours statically at 37 ° C. For cultivation of obligate-anaerobic bacteria (bifidobacteria), a CO 2 incubator (BINDER, Germany) was used. Accounting for biofilm formation was carried out after 24-48 hours of incubation of samples at 37 ° C. To take into account biofilm formation after removing planktonic (free-floating) microorganism cells by washing the wells three times with distilled water (200 μl) and drying the plates in air (30 min), the formed biofilms were stained by adding 1% crystal-violet solution to the wells (45 min at room temperature ) The free dye was washed by three times treatment of the wells with distilled water, and the dye fixed in biofilms was extracted by adding 200 μl of 96% ethanol to the samples. The staining intensity of the latter, corresponding to the degree of biofilm formation, was determined on a spectrophotometer (Biotek, USA) at a wavelength of 540 nm. Biofilm formation was expressed in arbitrary units, calculating the biofilm formation coefficient (KBPO):

Figure 00000001
,
Figure 00000001
,

где ОДк - оптическая плотность изучаемой культуры (для опытных, контрольных проб и проб групп сравнения, а ОДб - оптическая плотность питательного бульона без культур микроорганизмов.where ODK is the optical density of the studied culture (for experimental, control samples and samples of comparison groups, and ODB is the optical density of the nutrient broth without cultures of microorganisms.

Для проведения атомно-силовой микроскопии (АСМ) выполнялась подготовка образцов биопленки на поверхности скола слюды суточными бульонными культурами отдельных штаммов микроорганизмов, находящимися в стационарной фазе развития в присутствии милиацина (50 мкг/мл), растворителя (2×10-9 моль) или без их добавления. Время формирования биопленки составляло 24 часа при 37°С для факультативных анаэробов, а для бифидобактерий - 48 часов при 37°С в СО2-инкубаторе. Полученные образцы биопленок опытных, контрольных проб, а также проб группы сравнения исследовали методом АСМ в контактном режиме с использованием сканирующего зондового микроскопа SMM - 2000 (ЗАО «ПРОТОН МИЭТ», Россия). В процессе сканирования использовали кантилеверы MSCT-AUNM («Park Scientific Instruments», США) с жесткостью балки 0,05 Н/м и радиусом порядка 10 нм. Количественный морфометрический анализ полученных изображений проводили путем оценки размеров бактериальных клеток, площади и толщины биопленки, определяемых не менее чем в 50 сканах для каждой биокультуры с использованием штатного программного обеспечения микроскопа.For atomic force microscopy (AFM), biofilm samples were prepared on the mica cleaved surface by daily broth cultures of individual microorganism strains in the stationary phase of development in the presence of miliacin (50 μg / ml), solvent (2 × 10 -9 mol) or without add them. The biofilm formation time was 24 hours at 37 ° C for facultative anaerobes, and for bifidobacteria, 48 hours at 37 ° C in a CO 2 incubator. The obtained biofilm samples of experimental and control samples, as well as samples from the comparison group, were studied by the AFM method in contact mode using a SMM - 2000 scanning probe microscope (CJSC PROTON MIET, Russia). In the process of scanning, MSCT-AUNM cantilevers (Park Scientific Instruments, USA) with a beam stiffness of 0.05 N / m and a radius of about 10 nm were used. Quantitative morphometric analysis of the obtained images was carried out by assessing the size of bacterial cells, the area and thickness of the biofilm, determined in at least 50 scans for each bioculture using standard microscope software.

Статистическую обработку полученных данных осуществляли методами вариационной статистики из пакета прикладных программ Microsoft Excel и Statistica 10 с оценкой различий между средними величинами по t-критерию Стьюдента. Статистические результаты выражали в виде медианы (Me), нижних (Q25) и верхних (Q75) квартилей. Уровни статистической значимости различий определяли с помощью непараметрического критерия Манна-Уитни.Statistical processing of the obtained data was carried out by methods of variation statistics from the package of application programs Microsoft Excel and Statistica 10 with the assessment of the differences between the average values by the t-student criterion. Statistical results were expressed as median (Me), lower (Q25) and upper (Q75) quartiles. Levels of statistical significance of differences were determined using the non-parametric Mann-Whitney test.

Результатыresults

Обобщенные значения влияния милиацина на рост патогенных и условно-патогенных исследуемых культур микроорганизмов представлены на фиг. 2. Результаты значений (средняя величина и ошибка средней, М±m) выражены в единицах оптической плотности (ед.ОП). Установлено, что ни милиацин, ни растворитель во всех исследуемых концентрациях не влияли на рост изученных видов патогенных и условно-патогенных бактерий (см. фиг. 2). Милиацин также не влиял рост пробиотических штаммов лактобактерий и бифидобактерий - представителей нормофлоры человека. Значения оптической плотности в пробах сравнения для лактобактерий и бифидобактерий составляли соответственно 1,433±0,08 ед.ОП и 1,891±0,11 ед.ОП; в опытных и конторольных пробах их колебания составляли соответственно от 1,214±0,06 ед.ОП до 1,414±0,09 ед.ОП для лактобактерий и от 1,714±0,16 ед.ОП до 1,902±0,13 ед.ОП для штаммов бифидобактерий.The generalized values of the effect of miliacin on the growth of pathogenic and conditionally pathogenic studied cultures of microorganisms are presented in FIG. 2. The results of the values (average value and average error, M ± m) are expressed in units of optical density (OD units). It was found that neither miliacin, nor solvent in all the studied concentrations did not affect the growth of the studied species of pathogenic and conditionally pathogenic bacteria (see Fig. 2). Miliacin was also not affected by the growth of probiotic strains of lactobacilli and bifidobacteria - representatives of human normoflora. The optical density values in the comparison samples for lactobacilli and bifidobacteria were 1.433 ± 0.08 OD units and 1.891 ± 0.11 OD units, respectively; in experimental and control samples, their fluctuations were, respectively, from 1.214 ± 0.06 OD units to 1.414 ± 0.09 OD units for lactobacilli and from 1.714 ± 0.16 OD units to 1.902 ± 0.13 OD units for strains bifidobacteria.

Результаты исследования влияния милиацина в концентрации 50 мкг/мл и 100 мкг/мл на биопленкообразование различными видами микроорганизмов, верифицируемое окраской биопленочной массы кристалл-виолетом, представлены на фиг. 3. Как видно на фиг. 3, исследуемые культуры бактерий проявляли различную чувствительность к действию милиацина. В частности, для S. typhimurium подавление биопленочного процесса при концентрации милиацина 50 мкг/мл отмечалось в 83,3% случаев. При увеличении дозы фитостерола до 100 мкг/мл этот показатель достигал 100%. Меньшая частота выявления ингибирующего влияния милиацина на биопленкообразование обнаруживалась в отношении культур S. enteritidis, при тестировании которых эффект ингибирования регистрировался в пределах 50-64,3% при дозах милиацина соответственно 100 мкг/мл и 50 мкг/мл. Что касается культур K. pneumoniae, S. aureus и P. aeruginosa, то они демонстрировали высокую чувствительность к действию милиацина, применявшегося в обеих концентрациях. В противоположность этому устойчивость к действию милиацина проявляли культуры пробиотических штаммов лакто- и бифидобактерий.The results of a study of the effect of miliacin at a concentration of 50 μg / ml and 100 μg / ml on biofilm formation by various types of microorganisms, verified by crystal-violet color of the biofilm, are presented in FIG. 3. As seen in FIG. 3, the studied bacterial cultures showed different sensitivity to the action of miliacin. In particular, for S. typhimurium, the suppression of the biofilm process at a concentration of miliacin of 50 μg / ml was observed in 83.3% of cases. With an increase in the dose of phytosterol to 100 μg / ml, this indicator reached 100%. A lower frequency of detection of the inhibitory effect of miliacin on biofilm formation was found in relation to cultures of S. enteritidis, during testing of which the inhibition effect was recorded in the range of 50-64.3% at doses of miliacin respectively 100 μg / ml and 50 μg / ml As for the cultures of K. pneumoniae, S. aureus, and P. aeruginosa, they showed high sensitivity to the action of miliacin, which was used in both concentrations. In contrast, cultures of probiotic strains of lactobacilli and bifidobacteria showed resistance to miliacin.

Результаты оценки выраженности ингибирования биопленкообразования, представленные коэффициентом биопленкообразования (КБПО) и выраженные в виде медианы (Me), нижних (Q25) и верхних (Q75) квартилей, приводятся на фиг. 4, где *р<0,05 по отношению к контролю; р<0,05 по отношению к группе сравнения. Результаты значений выражены в условных единицах. Анализ полученных результатов позволил выделить 3 момента. Первый из них заключается в том, что использование растворителя в концентрациях 4×10-9 моль и 2×10-9 моль несколько уменьшало показатель биопленкообразования культур S. typhimurium в пределах от 17,6% до 31,4%; S. Enteritidis - от 4,1% до 15,2% и K. Pneumoniae - от 7,2% до 14,2% по отношению к тем же культурам, выращенным с добавлением физраствора (группа сравнения). Эти результаты соответствуют ранее полученным данным о способности детергентов снижать биопленкообразование бактерий без влияния на рост планктонных клеток (Bridgett М. et al., 1992; Chang Y. et al., 2012). Вместе с тем, диапазон отмеченных колебаний находился в пределах значений, установленных для показателей группы сравнения, что не позволяло сделать вывод о статистической значимости выявленных различий и соответственно об ингибирующем влиянии используемых доз растворителя на биопленочный процесс.The results of assessing the severity of biofilm inhibition, represented by the biofilm coefficient (CBPO) and expressed as the median (Me), lower (Q 25 ) and upper (Q 75 ) quartiles, are shown in FIG. 4, where * p <0.05 with respect to the control; p <0.05 with respect to the comparison group. The results of the values are expressed in arbitrary units. The analysis of the results allowed to highlight 3 points. The first of these is that the use of a solvent in concentrations of 4 × 10 -9 mol and 2 × 10 -9 mol slightly decreased the biofilm formation of S. typhimurium cultures in the range from 17.6% to 31.4%; S. Enteritidis - from 4.1% to 15.2% and K. Pneumoniae - from 7.2% to 14.2% in relation to the same cultures grown with the addition of saline (comparison group). These results correspond to previously obtained data on the ability of detergents to reduce the biofilm formation of bacteria without affecting the growth of plankton cells (M. Bridgett et al., 1992; Chang Y. et al., 2012). At the same time, the range of the noted fluctuations was within the values established for the indicators of the comparison group, which did not allow us to conclude that the differences were statistically significant and, accordingly, the inhibitory effect of the used doses of the solvent on the biofilm process.

Во-вторых, милиацин, добавляемый в среду культивирования (опыт), обеспечивал выраженное подавление биопленкообразования, что проявлялось существенным снижением КБПО, оцениваемого по редукции интенсивности поглощения кристалл-виолета (в условных единицах) в культурах опытных проб по отношению как к контрольным культурам, так и к культурам группы сравнения. Для S. typhimurium это снижение по отношению к контролю составляло от 48,7% (при дозе милиацина 100 мкг/мл) до 52,8% (при дозе милиацина 50 мкг/мл), а по отношению к группе сравнения - 57,7% и 67,6% соответственно. Для S. enteritidis интенсивность снижения КБПО по отношению к контролю колебалось от 34,8% (при дозе милиацина 100 мкг/мл) до 16,9% (при дозе милиацина 50 мкг/мл), а по отношению к группе сравнения - 37,4% и 29,5%-, соответственно. Для K. pneumoniae выраженность редукции КБПО при указанных концентрациях милиацина была равна 67,4% и 47,2%, а по отношению к группе сравнения - 72% и 47,3% соответственно. Для P. aeruginosa показатели снижения биопленкообразования составляли: 64,6% и 60,9% по отношению к контролю; 60,6% и 55,6% по отношению к группе сравнения. Для S. aureus интенсивность снижения КБПО по отношению к контролю колебалось от 55,9% (при дозе милиацина 100 мкг/мл) до 52,7% (при дозе милиацина 50 мкг/мл), а по отношению к группе сравнения - 55,9% и 47,4% соответственно.Secondly, miliacin added to the cultivation medium (experiment) provided a pronounced suppression of biofilm formation, which was manifested by a significant decrease in CBPO, estimated by the reduction in the intensity of crystal-violet absorption (in arbitrary units) in the cultures of the experimental samples in relation to both control cultures and and to the cultures of the comparison group. For S. typhimurium, this decrease with respect to the control ranged from 48.7% (with a dose of miliacin 100 μg / ml) to 52.8% (with a dose of miliacin 50 μg / ml), and with respect to the comparison group - 57.7 % and 67.6%, respectively. For S. enteritidis, the intensity of CBPO reduction relative to the control ranged from 34.8% (at a dose of miliacin 100 μg / ml) to 16.9% (at a dose of miliacin 50 μg / ml), and in relation to the comparison group - 37, 4% and 29.5% -, respectively. For K. pneumoniae, the severity of KBPO reduction at the indicated concentrations of miliacin was 67.4% and 47.2%, and in relation to the comparison group, 72% and 47.3%, respectively. For P. aeruginosa, biofilm reduction indicators were: 64.6% and 60.9% with respect to the control; 60.6% and 55.6% in relation to the comparison group. For S. aureus, the intensity of CBPO reduction relative to the control ranged from 55.9% (at a dose of miliacin 100 μg / ml) to 52.7% (at a dose of miliacin 50 μg / ml), and in relation to the comparison group - 55 9% and 47.4%, respectively.

Сопоставление указанных количественных параметров позволяет выделить третий момент, характеризующий неодинаковую чувствительность различных видов микроорганизмов к действию милиацина. В соответствии с полученными результатами максимальную чувствительность демонстрировали культуры P. aeruginosa и K. pneumonia, а минимальную S. enteritidis.Comparison of the indicated quantitative parameters allows us to highlight the third point characterizing the uneven sensitivity of various types of microorganisms to the action of miliacin. In accordance with the results obtained, the maximum sensitivity was demonstrated by P. aeruginosa and K. pneumonia cultures, and the minimum S. enteritidis cultures.

Результаты этих исследований были дополнены наблюдениями над биопленкообразованием отдельными культурами микроорганизмов с использованием атомно-силовой микроскопии (АСМ), позволяющей не только визуализировать процесс, но и провести морфометрическую оценку самой биопленки, а также формирующих ее бактерий при использовании милиацина в концентрации 50 мкг/мл. Данная концентрация тритерпеноида была выбрана с учетом его расчетного содержания в крови животных (50 мкг/мл) при использовании в дозе 2 мг/кг, оказывавшей протективный эффект при экспериментальной инфекции (Фролов Б.А. и соавт., 2013).The results of these studies were supplemented by observations of biofilm formation of individual cultures of microorganisms using atomic force microscopy (AFM), which allows not only to visualize the process, but also to conduct a morphometric assessment of the biofilm itself, as well as the bacteria forming it, using mylacin at a concentration of 50 μg / ml. This concentration of triterpenoid was selected taking into account its calculated content in the blood of animals (50 μg / ml) when used at a dose of 2 mg / kg, which had a protective effect in experimental infection (Frolov B.A. et al., 2013).

Результаты исследования влияния милиацина на биопленкообразование клинического штамма S. typhimurium 15 с использованием АСМ представлены на фиг. 5. Как следует из фиг. 5, отражающей сравнительные особенности биопленки чистой культуры бактерий клинического штамма S. typhimurium 15 (5.1), культуры этих же бактерий в присутствии растворителя (5.2) или милиацина (5.3) в концентрации 50 мкг/мл, тритерпеноид отчетливо подавлял формирование биопленки, что проявлялось ее уменьшением при двух- (А) и трехмерном (Б) изображении. Ингибирующее влияние милиацина на биопленкообразование подтверждалось также результатами морфометрического анализа (Таблица 1), характеризующего снижение высоты биопленки без изменений размеров самих микробных клеток (* - р<0,05 снижение БПО по сравнению с чистой культурой бактерий, - р<0,05 снижение БПО по сравнению с культурой с растворителем). Из данных таблицы 1 и изображений АСМ следует, что милиацин не влиял на размеры бактериальных клеток S. thyphimurium 15, входящих в биопленку, но снижал высоту биопленки, что подтверждается визуально на изображениях АСМ.The results of a study of the effect of miliacin on the biofilm formation of a clinical strain of S. typhimurium 15 using AFM are presented in FIG. 5. As follows from FIG. 5, reflecting the comparative features of the biofilm of a pure bacterial culture of the clinical strain S. typhimurium 15 (5.1), the culture of the same bacteria in the presence of a solvent (5.2) or miliacin (5.3) at a concentration of 50 μg / ml, the triterpenoid clearly suppressed the formation of the biofilm, which manifested itself reduction in two- (A) and three-dimensional (B) image. The inhibitory effect of miliacin on biofilm formation was also confirmed by the results of morphometric analysis (Table 1), which characterizes a decrease in the height of the biofilm without changing the size of the microbial cells themselves (* - p <0.05 decrease in BPO compared to a pure culture of bacteria, - p <0.05 decrease BPO versus solvent culture). From the data of Table 1 and AFM images, it follows that mylacin did not affect the size of the bacterial cells of S. thyphimurium 15 included in the biofilm, but reduced the height of the biofilm, which is confirmed visually on AFM images.

Figure 00000002
Figure 00000002

Результаты исследования влияния милиацина на биопленкообразование клинического штамма K. pneumoniae 278 с использованием АСМ представлены на фиг. 6. Фиг. 6 демонстрирует данные АСМ о выраженном ингибирующем эффекте милиацина на БПО клиническим штаммом K. pneumoniae 278 (чистая культура бактерий клинического штамма K. pneumoniae 278 (6.1)), культура этих же бактерий в присутствии растворителя (6.2) или милиацина (6.3), выразившимся в значительном снижении биопленкообразования (6.3). Эффект влияния милиацина проявлялся в снижении биопленки при двух- (А) и трехмерном (Б) изображении. Существенно, что сравнительная морфометрия длины и толщины микробных клеток K. pneumoniae 278 (см. Таблицу 2) не выявила различий этих показателей в исследуемых образцах контрольных культур и культур групп сравнения (* - р<0,05 снижение БПО по сравнению с чистой культурой бактерий, - снижение БПО р<0,05 по сравнению с культурой с растворителем). Из данных таблицы и изображений АСМ следует, что милиацин подавил образование биопленки K. pneumoniae 278.The results of a study of the effect of miliacin on the biofilm formation of the clinical strain K. pneumoniae 278 using AFM are presented in FIG. 6. FIG. Figure 6 shows AFM data on the marked inhibitory effect of miliacin on BPO by the clinical strain K. pneumoniae 278 (a pure culture of bacteria of the clinical strain K. pneumoniae 278 (6.1)), the culture of the same bacteria in the presence of a solvent (6.2) or miliacin (6.3), expressed in a significant decrease in biofilm formation (6.3). The effect of miliacin was manifested in a decrease in biofilm in two- (A) and three-dimensional (B) images. It is significant that comparative morphometry of the length and thickness of K. pneumoniae 278 microbial cells (see Table 2) did not reveal differences in these parameters in the studied samples of control cultures and cultures of the comparison groups (* - p <0.05 decrease in BPO compared to a pure bacterial culture , - decrease in BPO p <0.05 compared with a culture with a solvent). From the data in the table and the AFM images, it follows that miliacin suppressed the formation of the K. pneumoniae 278 biofilm.

Figure 00000003
Figure 00000003

Результаты исследования с использованием АСМ влияния милиацина на биопленкообразование клинического штамма P. aeruginosa 23 представлены на фиг. 7. Как следует из фиг. 7, отражающей сравнительные особенности биопленки чистой культуры бактерий клинического штамма P. aeruginosa 23 (7.1), культуры тех же бактерий в присутствии растворителя (7.2) или милиацина (7.3) в концентрации 50 мкг/мл, тритерпеноид отчетливо подавлял формирование биопленки, что проявлялось ее уменьшением при двух- (А) и трехмерном (Б) изображении. Ингибирующее влияние милиацина на биопленкообразование подтверждалось также результатами морфометрического анализа (Таблица 3), характеризующего снижение высоты биопленки без изменений размеров самих микробных клеток P. aeruginosa 23 (* - р<0,05 снижение БПО по сравнению с чистой культурой бактерий, - р<0,05 снижение БПО по сравнению с культурой с растворителем).The results of a study using AFM of the effect of miliacin on the biofilm formation of the clinical strain P. aeruginosa 23 are presented in FIG. 7. As follows from FIG. 7, which reflects the comparative features of a biofilm of a pure bacterial culture of the clinical strain P. aeruginosa 23 (7.1), a culture of the same bacteria in the presence of a solvent (7.2) or miliacin (7.3) at a concentration of 50 μg / ml, the triterpenoid clearly suppressed the formation of the biofilm, which manifested itself reduction in two- (A) and three-dimensional (B) image. The inhibitory effect of miliacin on biofilm formation was also confirmed by the results of morphometric analysis (Table 3), characterizing a decrease in the height of the biofilm without changing the size of the microbial cells of P. aeruginosa 23 (* - p <0.05 decrease in BPO compared to a pure bacterial culture, - p < 0.05 decrease in BPO compared to culture with solvent).

Figure 00000004
Figure 00000004

Данное обстоятельство ингибирующего влияния милиацина на биопленкообразование штаммами S. typhimurium 15, P. aeruginosa 23, характеризующегося снижением высоты биопленки без изменений размеров самих микробных клеток, свидетельствует в пользу того, что наблюдаемое снижение высоты биопленки обусловлено не изменением морфологии микроорганизмов, а нарушением самого процесса биопленкообразования, вплоть до его подавления, что и было выявлено в отношении штамма K. pneumoniae 278.This circumstance of the inhibitory effect of miliacin on biofilm formation by strains of S. typhimurium 15, P. aeruginosa 23, characterized by a decrease in the height of the biofilm without changing the size of the microbial cells themselves, suggests that the observed decrease in the height of the biofilm is not due to a change in the morphology of microorganisms, but a violation of the biofilm formation process itself , up to its suppression, which was revealed in relation to the strain K. pneumoniae 278.

Исследование с использованием АСМ влияния милиацина на биопленкообразование клинического штамма S. aureus 19. Фигура 8 демонстрирует данные АСМ об ингибирующем эффекте милиацина на БПО клиническим штаммом S. aureus 19 (чистая культура бактерий клинического штамма S. aureus (8.1), культура этих же бактерий в присутствии растворителя (8.2) или милиацина (8.3), выразившимся в снижении биопленкообразования (8.3). Эффект влияния милиацина проявлялся в снижении биопленки при двух- (А) и трехмерном (Б) изображении. Существенно, что сравнительная морфометрия диаметра микробных клеток S. aureus 19 (см. Таблицу 4) не выявила различий этих показателей в исследуемых образцах контрольных культур и культур групп сравнения (* - р<0,05 снижение БПО по сравнению с чистой культурой бактерий, - снижение БПО р<0,05 по сравнению с культурой с растворителем).Study using AFM of the effect of miliacin on biofilm formation of the clinical strain of S. aureus 19. Figure 8 shows the AFM data on the inhibitory effect of miliacin on BPO by the clinical strain of S. aureus 19 (pure bacterial culture of the clinical strain of S. aureus (8.1), the culture of these bacteria in the presence of a solvent (8.2) or miliacin (8.3), which manifested itself in a decrease in biofilm formation (8.3). The effect of the effect of miliacin was manifested in a decrease in biofilm in two- (A) and three-dimensional (B) images. It is essential that the comparative diameter morphometry ikrobnyh cells of S. aureus 19 (. See Table 4) revealed no differences in these parameters in the samples of control cultures and cultures of the comparison groups (* - p <0.05 decrease BPO as compared with a pure culture of bacteria, - BPO decrease p <0 , 05 compared with a culture with a solvent).

Figure 00000005
Figure 00000005

Исследование с использованием АСМ влияния милиацина на биопленкообразование эталонным штаммом Bifidobacterium bifidum 791. В отличие от патогенных и условно-патогенных бактерий биопленка, образованная пробиотическим штаммом бифидобактерий, являющихся представителями нормофлоры толстого кишечника человека, при культивировании в присутствии милиацина (см. фиг. 9.3) полностью сохраняла разветвленное строение без существенных различий с биопленкой, образованной культурой этих же бактерий в присутствии растворителя (фиг. 9.2) или чистой культурой (фиг. 9.1), как в двухмерном (А), так и в трехмерном (Б) изображениях. Морфометрические характеристики бактериальных клеток и высоты биопленки В. bifidum 791 также не различались между собой (Таблица 5), что подтверждает представленные выше данные об отсутствии влияния милиацина на этот вид бактерий (фиг. 9.3).The AFM study of the effect of miliacin on biofilm formation by the reference strain of Bifidobacterium bifidum 791. Unlike pathogenic and conditionally pathogenic bacteria, the biofilm formed by the probiotic strain of bifidobacteria, which are representative of the normal colon of the human intestine, when cultured in the presence of miliacin (see Fig. 3). retained a branched structure without significant differences with the biofilm formed by the culture of the same bacteria in the presence of a solvent (Fig. 9.2) or a pure culture (Fig. 9.1), both in two-dimensional (A) and three-dimensional (B) images. The morphometric characteristics of bacterial cells and the height of the B. bifidum 791 biofilm also did not differ (Table 5), which confirms the above data on the absence of the effect of miliacin on this type of bacteria (Fig. 9.3).

Figure 00000006
Figure 00000006

Результаты экспериментальных исследований, проведенные в отношении влияния милиацина на способность к биопленкообразованию патогенного штамма - сальмонеллы и представителя нормальной микробиоты кишечника - штамма бифидобактерий, выделенных от больного с гастроинтестинальной формой сальмонеллеза, приведены в примере.The results of experimental studies conducted in relation to the effect of miliacin on the biofilm formation ability of a pathogenic strain - salmonella and a representative of the normal intestinal microbiota - a strain of bifidobacteria isolated from a patient with gastrointestinal form of salmonellosis, are shown in the example.

Пример. Исследование выраженности влияния милицина (см. фиг. 1) на биопленкообразование клинических штаммов S. thyphimurium К-1 и В. bifidum-5.Example. The study of the severity of the effect of militicin (see Fig. 1) on the biofilm formation of clinical strains of S. thyphimurium K-1 and B. bifidum-5.

От обследуемого К. с гастроинтестинальной формой сальмонеллеза из фекалий были выделены штаммы S. thyphimurium К-1 и В. Bifidum-5. Биопленкообразование (БПО) изучали с помощью определения способности микроорганизмов к адгезии на поверхности 96-луночного плоскодонного полистиролового стерильного планшета (О'Toole G., 2000). На Шедлер-агаре (BBL, США) при инкубировании в термостате (37°С) была получена суточная культура S. thyphimurium К-1 и на этой же питательной среде при культивировании в СО2-инкубаторе (BINDER, Германия) в течении 48 часов была получена культура В. bifidum-5. Из обеих культур бактерий готовили суспензию в концентрации 1×106 КОЕ/мл. Милиацин растворяли в растворителе твин-21 и доводили физраствором до концентрации 500 мкг/мл и 1000 мкг/мл. Для каждой исследуемой культуры бактерий использовались три группы лунок: опытные - с добавлением 15 мкл милиацина; контрольные - с добавлением 15 мкл растворителя для милиацина (твин 21 на физрастворе) и лунки группы сравнения - с добавлением 15 мкл физраствора. Исследования были выполнены в трех дублях. В лунки 96-луночных стерильных полистироловых планшетов одномоментно вносили по 135 мкл суспензии суточной агаровой культуры сальмонелл и бифидобактерий в концентрации 0,5×106 КОЕ/мл и 15 мкл милиацина (опыт) или 15 мкл растворителя (контроль). Конечные концентрации милиацина в лунках составляли 50 и 100 мкг/мл, растворителя 2×10-9 и 4×10-9 моль. В качестве проб сравнения использовались бактериальные культуры штаммов сальмонелл и бифидобактерий (135 мкл), к которым добавляли 15 мкл физраствора. Пробы с сальмонеллами инкубировались 24 часа при 37°С, пробы с бифидобактериями - 48 часов в CO2-инкубатор (BINDER, Германия) при 37°С. Учет БПО проводили через 24 часа для проб с сальмонеллами и через 48 часов для проб с бифидобактериями. Для этого после удаления планктонных (свободноплавающих) клеток микроорганизмов трехкратной промывкой лунок дистиллированной водой (200 мкл) и подсушивания планшетов на воздухе (30 мин) осуществлялось окрашивание сформированных биопленок внесением в лунки 1%-ного раствора кристалл-виолета (45 мин при комнатной температуре). Отмывание свободного красителя выполняли трехкратной обработкой лунок дистиллированной водой (200 мкл), а экстракцию фиксированного в биопленках красителя проводили добавлением к пробам 200 мкл 96%-ного этанола. Интенсивность окрашивания последнего, соответствующую степени биопленкообразования, определяли на спектрофотометре (Биотек, США) при длине волны 540 нм. На основании результатов измерений оптической плотности исследуемых проб определялся коэффициент биопленкообразования (КБПО):

Figure 00000007
,From the examined K. with a gastrointestinal form of salmonellosis, feces of S. thyphimurium K-1 and B. Bifidum-5 were isolated from feces. Biofilm formation (BPO) was studied by determining the ability of microorganisms to adhere to the surface of a 96-well flat-bottomed polystyrene sterile plate (O'Toole G., 2000). On a Shedler agar (BBL, USA), a 24-hour culture of S. thyphimurium K-1 was obtained by incubation in a thermostat (37 ° С) and on the same nutrient medium when cultured in a CO 2 incubator (BINDER, Germany) for 48 hours B. bifidum-5 culture was obtained. A suspension of 1 × 10 6 CFU / ml was prepared from both bacterial cultures. Milyacin was dissolved in Tween-21 solvent and adjusted with saline to a concentration of 500 μg / ml and 1000 μg / ml. For each studied bacterial culture, three groups of wells were used: experimental - with the addition of 15 μl of miliacin; control - with the addition of 15 μl of solvent for miliacin (tween 21 in saline) and the wells of the comparison group - with the addition of 15 μl of saline. Studies were performed in three takes. 135 μl of a suspension of daily agar culture of salmonella and bifidobacteria at a concentration of 0.5 × 10 6 CFU / ml and 15 μl of miliacin (experiment) or 15 μl of solvent (control) were simultaneously added to the wells of 96-well sterile polystyrene plates. Final concentrations of miliacin in the wells were 50 and 100 μg / ml, solvent 2 × 10 -9 and 4 × 10 -9 mol. Bacterial cultures of Salmonella and Bifidobacteria strains (135 μl) were used as comparison samples, to which 15 μl of saline was added. Samples with salmonella were incubated 24 hours at 37 ° C, samples with bifidobacteria - 48 hours in a CO 2 incubator (BINDER, Germany) at 37 ° C. BPO accounting was carried out after 24 hours for samples with salmonella and after 48 hours for samples with bifidobacteria. To do this, after removing planktonic (free-floating) microorganism cells by washing the wells three times with distilled water (200 μl) and drying the plates in air (30 min), the formed biofilms were stained by adding 1% crystal-violet solution to the wells (45 min at room temperature) . The free dye was washed by three times treatment of the wells with distilled water (200 μl), and extraction of the dye fixed in biofilms was carried out by adding 200 μl of 96% ethanol to the samples. The staining intensity of the latter, corresponding to the degree of biofilm formation, was determined on a spectrophotometer (Biotek, USA) at a wavelength of 540 nm. Based on the results of measurements of the optical density of the studied samples, the biofilm formation coefficient (KBPO) was determined:
Figure 00000007
,

где ОДк - оптическая плотность изучаемой культуры (для опытных, контрольных проб и проб групп сравнения, а ОДб - оптическая плотность питательного бульона с незасеянной культурой микроорганизмов. Полученные результаты в виде средней и ошибкой средней (М±м) по обоим штаммам представлены ниже (Таблица 6), (* - р<0,05 снижение БПО по сравнению с чистой культурой бактерий, - р<0,05 снижение БПО по сравнению с культурой с растворителем). Представленные в Таблице 6 результаты экспериментального исследованиявлияния милиацина в концентрации 100 и 50 мкг/мл на БПО патогенного штамма S. typhimurium К-1 и штамма В. bifidum-5, относящегося к нормофлоре толстого кишечника, выделенных от больного К. с гастроинтестинальной формой сальмонеллеза, показали существенное снижение БПО у штамма сальмонелл и отсутствие воздействия тритерпеноида на БПО у представителя нормофлоры - культуры бифидобактерий. Полученные результаты свидетельствуют о наличии у милиацина способности снижать биопленкообразование у патогенных бактерий (сальмонеллы) и при этом не влиять на биопленкообразование у нормофлоры (бифидобактерий).

Figure 00000008
where ODK is the optical density of the studied culture (for experimental, control samples and samples of comparison groups, and ODB is the optical density of the nutrient broth with an un seeded culture of microorganisms. The results obtained in the form of average and average error (M ± m) for both strains are presented below (Table 6), (* - p <0.05 decrease in BPO compared to a pure culture of bacteria, - p <0.05 decrease in BPO compared to a culture with solvent). The results of an experimental study of the effects of miliacin at a concentration of 100 and 50 are presented in Table 6. mcg / ml on BPO of the pathogenic strain S. typhimurium K-1 and strain B. bifidum-5 belonging to the normal flora of the large intestine isolated from patient K. with a gastrointestinal form of salmonellosis showed a significant decrease in BPO in the salmonella strain and the absence of the effect of triterpenoid on BPO in a representative of normoflora - cultures of bifidobacteria. The obtained results indicate the presence of miliacin ability to reduce biofilm formation in pathogenic bacteria (salmonella) and at the same time not to influence biofilm formation in normoflora (bifidobacterium ).
Figure 00000008

Проведенные экспериментальные исследования подтверждают расширение арсенала известных средств, снижающих биопленкообразование у микроорганизмов. Экспериментально установлено, что тритерпеноид растительного происхождения милиацин проявляет антибиопленочный эффект в отношении отдельных видов патогенных и условно-патогенных грамотрицательных (сальмонеллы, клебсиеллы, псевдомонады) и грамположительных (золотистый стафилококк) бактерий. Такая активность не связана с изменением морфологии клеток и их жизнеспособностью, поскольку используемые концентрации милиацина (50 и 100 мкг/мл) не подавляли рост бактерий. Механизмы угнетения милиацином биопленкообразования вероятнее всего связаны со стероидной структурой тритерпеноида. Такая структура позволяет ему встраиваться в клеточные мембраны и, таким образом, уменьшать их текучесть. Кроме того, она обеспечивает милиацину возможность связывания неполярных групп на поверхности бактерий, снижая их адгезивные свойства. Отсутствие чувствительности к милиацину со стороны отдельных изолятов S. enteritidis соответствует представлениям об особенностях адгезивной активности и, в частности, такого существенного ее механизма, как гидрофобность, отличающаяся варьированием в широких пределах у разных штаммов бактерий даже среди диссоциантов одного типа (Демаков В.А. с соавт., 2010).The conducted experimental studies confirm the expansion of the arsenal of known agents that reduce biofilm formation in microorganisms. It has been experimentally established that the plant-derived triterpenoid miliacin exhibits an antibiotic effect against certain types of pathogenic and conditionally pathogenic gram-negative (salmonella, klebsiella, pseudomonas) and gram-positive (Staphylococcus aureus) bacteria. Such activity is not associated with a change in the morphology of cells and their viability, since the used concentrations of miliacin (50 and 100 μg / ml) did not inhibit bacterial growth. Mechanisms of inhibition of biofilm formation by miliacin are most likely associated with the steroid structure of triterpenoid. This structure allows it to integrate into cell membranes and, thus, reduce their fluidity. In addition, it provides miliacin with the ability to bind non-polar groups on the surface of bacteria, reducing their adhesive properties. The lack of sensitivity to miliacin on the part of individual S. enteritidis isolates corresponds to the idea of the peculiarities of adhesive activity and, in particular, its essential mechanism, hydrophobicity, which varies widely among different bacterial strains even among dissociants of the same type (Demakov V.A. et al., 2010).

Отдельный вопрос связан с устойчивостью к милиацину процесса биопленкообразования пробиотическими штаммами лакто- и бифидобактерий - представителями нормофлоры. Механизм такой устойчивости может быть связан со строением клеточной стенки указанных бактерий, отличающейся высоким содержанием тейхоевых кислот - мощного фактора неспецифической адгезии бактериальных клеток к биогенным и абиогенным субстратам, а также с формированием лактобактериями и бифидобактериями более выраженной, по сравнению с исследуемыми патогенными и условно-патогенными микроорганизмами биопленки, что подтверждается нашими экспериментальными данными (Таблица 5, фиг. 9.1, фиг. 9.2, фиг. 9.3), а также результатами ранее проведенных исследований (Бухарин О.В., Перунова Н.Б., 2014). Образование представителями нормофлоры биопленок в различных биотопах человека является одним из важных моментов их адаптации и рассматривается как фактор, обеспечивающий ей селективные преимущества перед условно-патогенной и патогенной микрофлорой. Кроме того, образование биопленок нормофлорой является механизмом, с помощью которого происходит приживление нормальной микробиоты в определенном биотопе организма человека с последующим участием ее в элиминации болезнетворных микроорганизмов.A separate issue is related to the biofilm formation resistance to miliacin by probiotic strains of lactobacilli and bifidobacteria - representatives of normoflora. The mechanism of such resistance can be associated with the structure of the cell wall of these bacteria, which is characterized by a high content of teichoic acids - a powerful factor in the non-specific adhesion of bacterial cells to biogenic and abiogenic substrates, as well as with the formation of lactobacilli and bifidobacteria more pronounced compared with the studied pathogenic and conditionally pathogenic microorganisms of the biofilm, which is confirmed by our experimental data (Table 5, Fig. 9.1, Fig. 9.2, Fig. 9.3), as well as the results previously carried out s Studies (Bukharin OV, Perunova NB 2014). The formation of normoflora by representatives of biofilms in various human biotopes is one of the important points of their adaptation and is considered as a factor providing it with selective advantages over conditionally pathogenic and pathogenic microflora. In addition, the formation of biofilms by normoflora is a mechanism by which the engraftment of a normal microbiota takes place in a particular biotope of the human body with its subsequent participation in the elimination of pathogens.

Обнаруженная нами особенность действия милиацина в отношении патогенных, условно-патогенных микроорганизмов и нормофлоры - снижать способность к биопленкообразованию у болезнетворных бактерий при одновременном сохранении данного свойства у нормофлоры, может иметь важное практическое значение, поскольку использование антибиопленочных средств, обладающих избирательностью действия, по сравнению с другими средствами, используемыми для подавления биопленкообразования и не обладающими таким селективным эффектом, исключает развитие негативных влияний данных средств на нормальную микрофлору человека. Выявленное новое свойство тритерпеноида милиацина характеризует его способность ограничивать колонизацию биотопов патогенной (сальмонеллы) и условно-патогенной (псевдомонады, клебсиеллы, золотистый стафилококк) флорой с сохранением биопленкообразования у нормофлоры, участвующей в формировании защитного барьера против возбудителей инфекционных и гнойно-воспалительных заболеваний, что может повысить эффективность методов профилактики и лечения болезней бактериальной природы.The peculiarity of the action of miliacin with respect to pathogenic, conditionally pathogenic microorganisms and normoflora that we found to reduce the ability to biofilm formation in pathogenic bacteria while preserving this property in normoflora can be of great practical importance, since the use of antibiofilms with selective action compared to other means used to suppress biofilm formation and not possessing such a selective effect excludes the development of n negative impact of the data means the normal microflora of the human. The revealed new property of triterpenoid miliacin characterizes its ability to limit the colonization of biotopes of pathogenic (salmonella) and conditionally pathogenic (pseudomonads, Klebsiella, Staphylococcus aureus) flora with the preservation of biofilm formation in normoflora, which is involved in the formation of a protective barrier against pathogenic and inflammatory pathogens, which can increase the effectiveness of methods for the prevention and treatment of diseases of a bacterial nature.

Список литературыBibliography

1. Бухарин, О.В. Микросимбиоценоз. / О.В. Бухарин, Н.Б. Перунова // Екатеринбург. - 2014. - 260 с.1. Bukharin, O.V. Microsymbiocenosis. / O.V. Bukharin, N.B. Perunova // Ekaterinburg. - 2014 .-- 260 s.

2. Бухарин, О.В. Влияние антистафилококкового антибиотика батумина на биопленкообразование микроорганизмов / О.В. Бухарин [и др.] // Журн. микробиол. - 2012. - №2. - С. 8-12.2. Bukharin, O.V. The effect of Batumin antistaphylococcal antibiotic on the biofilm formation of microorganisms / O.V. Bukharin [et al.] // Journal. microbiol. - 2012. - No. 2. - S. 8-12.

3. Гудвин, Т. Введение в биохимию растений / Т. Гудвин, Э. Мерцер // М.: Мир, 1986. - Т. 2. - С. 42-106.3. Goodwin, T. Introduction to plant biochemistry / T. Goodwin, E. Mercer // M .: Mir, 1986. - T. 2. - P. 42-106.

4. Демаков, В.А. Гидрофобные свойства и пленкообразующая способность штаммов рода Pseudomonas, изолированных из разных экологических ниш / В.А. Демаков [и др.] // Вестник Пермского университета. - 2010. - Вып. 1(1). - С. 55-58.4. Demakov, V.A. Hydrophobic properties and film-forming ability of strains of the genus Pseudomonas isolated from different ecological niches / V.A. Demakov [et al.] // Bulletin of Perm University. - 2010. - Issue. 1 (1). - S. 55-58.

5. Ерошенко, Д.В. Влияние факторов внешней среды на первые этапы образования биопленок бактериями Staphylococcus epidermidis: Автореф. дисс. канд. биол. наук. Пермь, 2015. - 23 с.5. Eroshenko, D.V. Influence of environmental factors on the first stages of biofilm formation by bacteria Staphylococcus epidermidis: Abstract. diss. Cand. biol. sciences. Perm, 2015 .-- 23 p.

6. Ершов, Ю.В. Метилэритритолфосфатный (немевалонатный) путь биосинтеза изопреноидов / Ю.В. Ершов // Успехи биологической химии. - 2005. - Т. 45. - С. 307-354.6. Ershov, Yu.V. Methyl erythritol phosphate (non-malonate) pathway of isoprenoid biosynthesis / Yu.V. Ershov // Successes in biological chemistry. - 2005. - T. 45. - S. 307-354.

7. Ершов, Ю.В. 2-С-метилэритритолфосфатный путь биосинтеза изопреноидов как мишень при поиске новых антибиотиков, гербицидов и иммуномодуляторов / Ю.В. Ершов // Прикл. Биохим. и Микробиол. - 2007. - Т. 43. - №2. - С. 133-157.7. Ershov, Yu.V. 2-С-Methyl erythritol phosphate pathway of isoprenoid biosynthesis as a target in the search for new antibiotics, herbicides and immunomodulators / Yu.V. Ershov // Prikl. Biochem. and microbiol. - 2007. - T. 43. - No. 2. - S. 133-157.

8. Карпов, О.И. Макролиды: новая парадигма-фармакодинамика / иммуномодуляция / О.И. Карпов [и др.] // Клиническая фармакология и терапия. - 2005. - Т. 14(5). - С. 20-23.8. Karpov, O.I. Macrolides: a new paradigm-pharmacodynamics / immunomodulation / O.I. Karpov [et al.] // Clinical Pharmacology and Therapy. - 2005 .-- T. 14 (5). - S. 20-23.

9. Лукнер, М. Вторичный обмен у микроорганизмов, растений и животных / М. Лукнер // М.: Мир. - 1979. - С. 194-252.9. Luckner, M. Secondary metabolism in microorganisms, plants and animals / M. Luckner // M.: Mir. - 1979. - S. 194-252.

10. Льюис, К. Персистирующие клетки и загадка выживания биопленок / Льюис К. // Биохимия. - 2005. - Т. 70. - С. 327-336.10. Lewis, K. Persistent cells and the mystery of the survival of biofilms / Lewis K. // Biochemistry. - 2005. - T. 70. - S. 327-336.

11. Маркова, Ю.А. Растительные метаболиты как регуляторы развития микробных биопленок / Ю.А. Маркова // Вестник ОГУ. - 2014. - №13(124). - С. 59-65.11. Markova, Yu.A. Plant metabolites as regulators of the development of microbial biofilms / Yu.A. Markova // Bulletin of the OSU. - 2014. - No. 13 (124). - S. 59-65.

12. Маянский, А.Н. Стратегия управления бактериальным биопленочным процессом / А.Н. Маянский, И.В. Чеботарь // Журнал инфектологии. - 2012. - Т. 4. - №3. - С. 5-1512. Mayansky, A.N. The management strategy of the bacterial biofilm process / A.N. Mayansky, I.V. Chebotar // Journal of Infectology. - 2012. - T. 4. - No. 3. - S. 5-15

13. Мошкевич, И.Р. Микробные биопленки при смешанных инфекциях: Автореф. дисс. канд. мед. наук. Санкт-Петербург, 2007. - 22 с.13. Moshkevich, I.R. Microbial biofilms in mixed infections: Abstract. diss. Cand. honey. sciences. St. Petersburg, 2007 .-- 22 p.

14. Олифсон, Л.Е. Химическая природа и биологическая активность милиацина / Л.Е. Олифсон [и др.] // Вопросы питания. - 1991. - №2. - С. 57-59.14. Olifson, L.E. Chemical nature and biological activity of miliacin / L.E. Olifson [et al.] // Food Issues. - 1991. - No. 2. - S. 57-59.

15. Пасешниченко, В.А. Новый альтернативный путь биосинтеза изопре-ноидов у эубактерий и растений / В.А Пасешниченко // Биохимия. - 1998. - Т. 63. - Вып. 2. - С. 171-182.15. Paseshnichenko, V.A. A new alternative way of biosynthesis of isoprenoids in eubacteria and plants / V.A. Paseshnichenko // Biochemistry. - 1998. - T. 63. - Vol. 2. - S. 171-182.

16. Патент №2478385 (RU).16. Patent No. 2478385 (RU).

17. Патент №2527894 (RU).17. Patent No. 2527894 (RU).

18. Романова, Ю.М. Гинцбург А.Л. Бактериальные биопленки как естественная форма существования бактерий в окружающей среде и организме хозяина / Ю.М. Романова, А.Л. Гинцбург // Журн. микробиол. - 2011. - №3. - С. 99-109.18. Romanova, Yu.M. Gunzburg A.L. Bacterial biofilms as a natural form of the existence of bacteria in the environment and the host organism / Yu.M. Romanova, A.L. Gunzburg // Journal. microbiol. - 2011. - No. 3. - S. 99-109.

19. Романова, Ю.М. Биопленки патогенных бактерий и их роль в хронизации инфекционного процесса. Поиск средств борьбы с биопленками / Ю.М. Романова [и др.] // Вестник Российской АМН. - .2011. - №10. - С. 31-39.19. Romanova, Yu.M. Biofilms of pathogenic bacteria and their role in the chronicity of the infectious process. Search for means of combating biofilms / Yu.M. Romanova [et al.] // Bulletin of the Russian Academy of Medical Sciences. - .2011. - No. 10. - S. 31-39.

20. Сидоренко, С.В. Роль бактериальных биопленок в патологии человека / С.В. Сидоренко // Инфекции в хирургии.- 2012. - №3. - С. 16-20.20. Sidorenko, S.V. The role of bacterial biofilms in human pathology / S.V. Sidorenko // Infections in surgery. - 2012. - No. 3. - S. 16-20.

21. Степанова, Т.В. Разработка средств борьбы с биопленками: изучение воздействия полисахаридных лиаз на матрикс биопленок, образуемых Pseudomonas aeruginosa и Borkholderia cenocepica / Т.В. Степанова [и др.] // Лаборатория. - 2010. - №1. - С. 44-49.21. Stepanova, T.V. Development of biofilm control agents: study of the effect of polysaccharide lyases on the biofilm matrix formed by Pseudomonas aeruginosa and Borkholderia cenocepica / T.V. Stepanova [et al.] // Laboratory. - 2010. - No. 1. - S. 44-49.

22. Терентьева, Н.А. Характеристика образования, ингибирования и разрушения биопленок Yersinia pseudotuberculosis, формирующихся на абиотических поверхностях / Н.А. Тереньева [и др.] // Ж. Микробиол. - 2015. - №3. - С. 72-78.22. Terentyev, N.A. Characterization of the formation, inhibition and destruction of Yersinia pseudotuberculosis biofilms forming on abiotic surfaces / N.A. Tereneva [et al.] // J. Microbiol. - 2015. - No. 3. - S. 72-78.

23. Тренин, А.С. Микробные метаболиты - ингибиторы биосинтеза стеролов, их химическое разнообразие и особенности механизма действия / А.С.Тренин // Биоорганическая химия. - 2013. - №39(6). - С. 633-657.23. Trenin, A.S. Microbial metabolites - inhibitors of sterol biosynthesis, their chemical diversity and features of the mechanism of action / A.S. Trenin // Bioorganic chemistry. - 2013. - No. 39 (6). - S. 633-657.

24. Фролов, Б.А. Защитный эффект милиацина при экспериментальной сальмонеллезной инфекции / Б.А. Фролов [и др.] // ЖМЭИ. - 2013. - №6. - С. 3-8.24. Frolov, B.A. The protective effect of miliacin in experimental salmonella infection / B.A. Frolov [et al.] // ZhMEI. - 2013. - No. 6. - S. 3-8.

25. Чеботарь, И.В. Антибиотикорезистентность биопленочных бактерий / И.В. Чеботарь [и др.] // Клин, микробиол. антимикроб, химиотер. - 2012. - №14. - С. 51-58.25. Chebotar, I.V. Antibiotic resistance of biofilm bacteria / I.V. Chebotar [et al.] // Wedge, microbiol. antimicrobial, chemotherapy. - 2012. - No. 14. - S. 51-58.

26. Чеботарь, И.В. Механизмы антибиопленочного иммунитета / И.В. Чеботарь// Вестник РАМН. - 2012. - №12. - С. 22-29.26. Chebotar, I.V. Mechanisms of antibiotic film immunity / I.V. Chebotar // Vestnik RAMS. - 2012. - No. 12. - S. 22-29.

27. Alkawash, М.А. Alginate lyase enhances antibiotic killing of mucoid Pseudomonas aeruginosa in biofilms / M.A. Alkawash [et al.] // APMIS. - 2006. - V. 114(2). - P. 131-138.27. Alkawash, M.A. Alginate lyase enhances antibiotic killing of mucoid Pseudomonas aeruginosa in biofilms / M.A. Alkawash [et al.] // APMIS. - 2006 .-- V. 114 (2). - P. 131-138.

28. Awolola, G.V. Antibacterial and anti-biofilm activity of flavonoids and triterpenes isolated from the extracts of Ficus sansibarica Warb. subsp. sansibarica (Moraceae) extracts / G.V. Awolola [et al.] // Afr J Tradit Complement Altern Med. - 2014. - V. 11(3). - P. 124-131.28. Awolola, G.V. Antibacterial and anti-biofilm activity of flavonoids and triterpenes isolated from the extracts of Ficus sansibarica Warb. subsp. sansibarica (Moraceae) extracts / G.V. Awolola [et al.] // Afr J Tradit Complement Altern Med. - 2014 .-- V. 11 (3). - P. 124-131.

29. Banin, E. Chelator-induced dispersal and killing of Pseudomonas aeruginosa cells in a biofilm / E. Banin [et al.] // Appl Environ Microbiol. - 2006. - 72(3). - P. 2064-2069.29. Banin, E. Chelator-induced dispersal and killing of Pseudomonas aeruginosa cells in a biofilm / E. Banin [et al.] // Appl Environ Microbiol. - 2006 .-- 72 (3). - P. 2064-2069.

30. Bridgett, M.J. Control of staphylococcal adhesion to polystyrene surfaces by polymer surface modification with surfactants / M.J. Bridgett [et al] // Biomaterials. - 1992. - V. 13. - P. 411-416.30. Bridgett, M.J. Control of staphylococcal adhesion to polystyrene surfaces by polymer surface modification with surfactants / M.J. Bridgett [et al] // Biomaterials. - 1992. - V. 13. - P. 411-416.

31. Chang, Y. Low concentration of ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) affects biofilm formation of Listeria monocytogenes by inhibiting its initial adherence / Y. Chang [et al] // Food Microbiol. - 2012. - V. 29. - №1. - P. 10-17.31. Chang, Y. Low concentration of ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) affects biofilm formation of Listeria monocytogenes by inhibiting its initial adherence / Y. Chang [et al] // Food Microbiol. - 2012. - V. 29. - No. 1. - P. 10-17.

32. Chemani, С.Role of LecA and LecB lectins in Pseudomonas aeruginosa-induced lung injury and effect of carbohydrate ligands / C. Chemani [et al.] // Infect Immun. - 2009. - V. 77 (5). - P. 2065-2075.32. Chemani, C. Role of LecA and LecB lectins in Pseudomonas aeruginosa-induced lung injury and effect of carbohydrate ligands / C. Chemani [et al.] // Infect Immun. - 2009 .-- V. 77 (5). - P. 2065-2075.

33. Donlan, R.M. Biofilms: survival mechanisms of clinically relevant microorganisms / R.M. Donlan, J.W. Costerton // Clin Microbiol Rev. - 2002. - V.15(2). - P. 167-193.33. Donlan, R.M. Biofilms: survival mechanisms of clinically relevant microorganisms / R.M. Donlan, J.W. Costerton // Clin Microbiol Rev. - 2002. - V.15 (2). - P. 167-193.

34. Evaristo, F.F. Antimicrobial effect of the triterpene 3в,6в,16в-trihydroxylup-20(29)-ene on planktonic cells and biofilms from Gram positive and Gram negative bacteria / F.F. Evaristo [et al.] // Biomed Res Int. - 2014. - V. 2014. - Article ID729358. - P. 1-7.34. Evaristo, F.F. Antimicrobial effect of the triterpene 3c, 6c, 16c-trihydroxylup-20 (29) -ene on planktonic cells and biofilms from Gram positive and Gram negative bacteria / F.F. Evaristo [et al.] // Biomed Res Int. - 2014. - V. 2014. - Article ID729358. - P. 1-7.

35. Gilan, I. Effect of proteases on biofilm formation of the plastic-degrading actinomycete Rhodococcus ruber C208 / I. Gilan, A. Sivan // FEMS Microbiol Lett. - 2013. - V. 342(1). - P. 18-23.35. Gilan, I. Effect of proteases on biofilm formation of the plastic-degrading actinomycete Rhodococcus ruber C208 / I. Gilan, A. Sivan // FEMS Microbiol Lett. - 2013 .-- V. 342 (1). - P. 18-23.

36. Hancock, V. Abolition of biofilm formation in urinary tract Escherichia coli and Klebsiella isolates by metal interference through competition for fur / V. Hancock [et al.] // Appl Environ Microbiol. - 2010. - V. 76(12). - P. 3836-3841.36. Hancock, V. Abolition of biofilm formation in urinary tract Escherichia coli and Klebsiella isolates by metal interference through competition for fur / V. Hancock [et al.] // Appl Environ Microbiol. - 2010 .-- V. 76 (12). - P. 3836-3841.

37. Kaplan, J.B. Biofilm dispersal: mechanisms, clinical implications, and potential therapeutic uses / Kaplan J.B. // J Dent Res. - 2010. - V. 89(3). - P. 205-218.37. Kaplan, J.B. Biofilm dispersal: mechanisms, clinical implications, and potential therapeutic uses / Kaplan J.B. // J Dent Res. - 2010 .-- V. 89 (3). - P. 205-218.

38. Karosi, T. Low-frequency ultrasound for biofilm disruption in chronic rhinosinusitis with nasal polyposis: in vitro pilot study / T. Karosi [et al.] // Laryngoscope. - 2013. - V. 123(1). - P. 17-23.38. Karosi, T. Low-frequency ultrasound for biofilm disruption in chronic rhinosinusitis with nasal polyposis: in vitro pilot study / T. Karosi [et al.] // Laryngoscope. - 2013 .-- V. 123 (1). - P. 17-23.

39. Katerere, D.R. Antimicrobial activiti of pentacyclic triterpenes isolated from African Combretaccae / D.R. Katerere [et al.] // Phytochemistry. - 2003. - V. 63. - №1. - P. 81-88.39. Katerere, D.R. Antimicrobial activiti of pentacyclic triterpenes isolated from African Combretaccae / D.R. Katerere [et al.] // Phytochemistry. - 2003. - V. 63. - No. 1. - P. 81-88.

40. Klemm, P. Prevention of bacterial adhesion / Klemm P. [et al.] // Appl Microbiol Biotechnol. - 2010. - V. 88(2). - P. 451-459.40. Klemm, P. Prevention of bacterial adhesion / Klemm P. [et al.] // Appl Microbiol Biotechnol. - 2010 .-- V. 88 (2). - P. 451-459.

41. Kolodkin-Gal, I. D-amino acids trigger biofilm disassembly //1. Kolodkin-Gal [et al.] // Science. - 2010. - V. 328(5978). - P. 627-629.41. Kolodkin-Gal, I. D-amino acids trigger biofilm disassembly // 1. Kolodkin-Gal [et al.] // Science. - 2010 .-- V. 328 (5978). - P. 627-629.

42. Kostakioti, M. Bacterial biofilms: development, dispersal, and therapeutic strategies in the dawn of the postantibiotic era / M. Kostakioti [et al.] // Cold Spring Harb Perspect Med. - 2013. - 3(4). - P. 1-23.42. Kostakioti, M. Bacterial biofilms: development, dispersal, and therapeutic strategies in the dawn of the postantibiotic era / M. Kostakioti [et al.] // Cold Spring Harb Perspect Med. - 2013 .-- 3 (4). - P. 1-23.

43. Landini, P. Molecular mechanisms of compounds affecting bacterial biofilm formation and dispersal / P. Landini [et al.] // Appl Microbiol Biotechnol. - 2010. - V. 86 (3). - P. 813-823.43. Landini, P. Molecular mechanisms of compounds affecting bacterial biofilm formation and dispersal / P. Landini [et al.] // Appl Microbiol Biotechnol. - 2010 .-- V. 86 (3). - P. 813-823.

44. Lemos, M. The effects of ferulic and salicylic acids on Bacillus cereus andPseudomonas fluoresceins single-and dual-species biofilms / M. Lemos [et al.] / /International Biodeterioration & Biodegradation V.86,. - 2014. - P. 42-51.44. Lemos, M. The effects of ferulic and salicylic acids on Bacillus cereus and Pseudomonas fluoresceins single-and dual-species biofilms / M. Lemos [et al.] / / International Biodeterioration & Biodegradation V.86 ,. - 2014 .-- P. 42-51.

45. Lesic, B. Inhibitors of pathogen intercellular signals as selective anti-infective compounds / D. Lesic [et al.] // PLoS Pathog. - 2007. - V. 3(9). - P. 1229-1239.45. Lesic, B. Inhibitors of pathogen intercellular signals as selective anti-infective compounds / D. Lesic [et al.] // PLoS Pathog. - 2007.- V. 3 (9). - P. 1229-1239.

46. Lüttgen, H. Biosynthesis of terpenoids: YchB protein of Escherichia coli phosphorylates the 2-hydroxy group of 4-diphosphocytidyl-2C-methyl-D-erythritol / H. Lüttgen [et al.] // Proc Natl Acad Sci USA.- 2000. - V. 97(3). - P. 1062-1067.46. Lüttgen, H. Biosynthesis of terpenoids: YchB protein of Escherichia coli phosphorylates the 2-hydroxy group of 4-diphosphocytidyl-2C-methyl-D-erythritol / H. Lüttgen [et al.] // Proc Natl Acad Sci USA. - 2000.- V. 97 (3). - P. 1062-1067.

47. Mulcahy, L.R. Pseudomonas aeruginosa biofilms in disease / L.R. Mulcahy [et al.] // Microb Ecol. - 2014. - V. 68(1). - P. 1-12.47. Mulcahy, L.R. Pseudomonas aeruginosa biofilms in disease / L.R. Mulcahy [et al.] // Microb Ecol. - 2014 .-- V. 68 (1). - P. 1-12.

48. Nalca, Y. Quorum-sensing antagonistic activities of azithromycin in Pseudomonas aeruginosa PAO1: a global approach / Y. Nalca [et al.] // Antimicrob Agents Chemother. - 2006. - V. 50(5). - P. 1680-1688.48. Nalca, Y. Quorum-sensing antagonistic activities of azithromycin in Pseudomonas aeruginosa PAO1: a global approach / Y. Nalca [et al.] // Antimicrob Agents Chemother. - 2006. - V. 50 (5). - P. 1680-1688.

49. Nazzaro, F. Quorum sensing and phytochemicals / F. Nazzaro [et al.] // Int J Mol Sci. - 2013. - V. 14(6). - P. 12607-12619.49. Nazzaro, F. Quorum sensing and phytochemicals / F. Nazzaro [et al.] // Int J Mol Sci. - 2013 .-- V. 14 (6). - P. 12607-12619.

50. Nijland, R. Dispersal of biofilms by secreted, matrix degrading, bacterial DNase / R. Nijland [et al.] // PLoS One. - 2010. - V. 5(12). - e15668.50. Nijland, R. Dispersal of biofilms by secreted, matrix degrading, bacterial DNase / R. Nijland [et al.] // PLoS One. - 2010 .-- V. 5 (12). - e15668.

51. O'Toole, G. A. The global carbon metabolism regulator Crc is a component of a signal transduction pathway required for biofilm development by Pseudomonas aeruginosa // G.A. O'Toole [et al.] // J Bacteriol. - 2000. - V. 182. - P. 425-431.51. O'Toole, G. A. The global carbon metabolism regulator Crc is a component of a signal transduction pathway required for biofilm development by Pseudomonas aeruginosa // G.A. O'Toole [et al.] // J Bacteriol. - 2000. - V. 182. - P. 425-431.

52. Pinkner, J.S. Rationally designed small compounds inhibit pilus biogenesis in uropathogenic bacteria / J.S. Pinkner [et al.] // Proc Natl Acad Sci USA. - 2006. - V. 103(47). P. 17897-17902.52. Pinkner, J.S. Rationally designed small compounds inhibit pilus biogenesis in uropathogenic bacteria / J.S. Pinkner [et al.] // Proc Natl Acad Sci USA. - 2006 .-- V. 103 (47). P. 17897-17902.

53. Pintucci, J.P. Biofilms and infections of the upper respiratory tract / J.P. Pintucci [et al.] // Eur Rev Med Pharmacol Sci. - 2010. - V. 14(8). - P. 683-690.53. Pintucci, J.P. Biofilms and infections of the upper respiratory tract / J.P. Pintucci [et al.] // Eur Rev Med Pharmacol Sci. - 2010 .-- V. 14 (8). - P. 683-690.

54. Raja, A.F. Acetyl-11-keto-B-boswellic acid (AKBA); targeting oral cavity pathogens / A.F. Raja [et al.] // BMC Res Notes. - 2011. - V. 4. - art. 406.54. Raja, A.F. Acetyl-11-keto-B-boswellic acid (AKBA); targeting oral cavity pathogens / A.F. Raja [et al.] // BMC Res Notes. - 2011. - V. 4. - art. 406.

55. Ramphal, R. Recognition of mucin components by Pseudomonas aeruginosa / R. Ramphal, S.K. Arora // Glycoconj J. - 2001. - V. 18(9). - P. 709-713.55. Ramphal, R. Recognition of mucin components by Pseudomonas aeruginosa / R. Ramphal, S.K. Arora // Glycoconj J. - 2001 .-- V. 18 (9). - P. 709-713.

56. Sadovskaya, I. High-level antibiotic resistance in Pseudomonas aeruginosa biofilm: the ndvB gene is involved in the production of highly glycerol-phosphorylated beta-(1->3)-glucans, which bind aminoglycosides / I. Sadovskaya [et al.] // Glycobiology. - 2010. - V. 20(7). - P. 895-904.56. Sadovskaya, I. High-level antibiotic resistance in Pseudomonas aeruginosa biofilm: the ndvB gene is involved in the production of highly glycerol-phosphorylated beta- (1-> 3) -glucans, which bind aminoglycosides / I. Sadovskaya [et al .] // Glycobiology. - 2010 .-- V. 20 (7). - P. 895-904.

57. Sintim, H.O. Paradigm shift in discovering next-generation anti-infective agents: targeting quorum sensing, c-di-GMP signaling and biofilm formation in bacteria with small molecules / H.O. Sintim [et al.] // Future Med Chem. - 2010. - V. 2(6). - P. 1005-1035.57. Sintim, H.O. Paradigm shift in discovering next-generation anti-infective agents: targeting quorum sensing, c-di-GMP signaling and biofilm formation in bacteria with small molecules / H.O. Sintim [et al.] // Future Med Chem. - 2010 .-- V. 2 (6). - P. 1005-1035.

58. Smith, A., Buchinsky FJ, Post JC. Eradicating chronic ear, nose, and throat infections: a systematically conducted literature review of advances in biofilm treatment / A. Smith [et al.] // Otolaryngol Head Neck Surg. - 2011. - V. 144(3). - P. 338-347.58. Smith, A., Buchinsky FJ, Post JC. Eradicating chronic ear, nose, and throat infections: a systematically conducted literature review of advances in biofilm treatment / A. Smith [et al.] // Otolaryngol Head Neck Surg. - 2011 .-- V. 144 (3). - P. 338-347.

59. Thomas, R. Common oligosaccharide moieties inhibit the adherence of typical and atypical respiratory pathogens / Thomas R., Brooks T. // J Med Microbiol. - 2004. - V.53 (9). - P.833-840.59. Thomas, R. Common oligosaccharide moieties inhibit the adherence of typical and atypical respiratory pathogens / Thomas R., Brooks T. // J Med Microbiol. - 2004 .-- V.53 (9). - P.833-840.

60. Tre-Hardym, M. Efficacy of the combination of tobramycin and a macro-lide in an in vitro Pseudomonas aeruginosa mature biofilm model / M. Tre-Hardym [et al.] // Antimicrob Agents Chemother. - 2010. - V.54 (10). - P.4409-4415.60. Tre-Hardym, M. Efficacy of the combination of tobramycin and a macro-lide in an in vitro Pseudomonas aeruginosa mature biofilm model / M. Tre-Hardym [et al.] // Antimicrob Agents Chemother. - 2010 .-- V.54 (10). - P. 4409-4415.

61. Vejborg, R.M. Blocking of bacterial biofilm formation by a fish protein coating / R.M. Vejborg, P. Klemm // Appl Environ Microbiol. - 2008. - V. 74(11). - P. 3551-3558.61. Vejborg, R.M. Blocking of bacterial biofilm formation by a fish protein coating / R.M. Vejborg, P. Klemm // Appl Environ Microbiol. - 2008 .-- V. 74 (11). - P. 3551-3558.

62. Wojnicz, D. Medicinal plants extracts affect virulence factors expression and biofilm formation by the uropathogenic Escherichia coli / Wojnicz D. [et al.] // Urol Res. - 2012. - V. 40 (6). - P. 683-697.62. Wojnicz, D. Medicinal plants extracts affect virulence factors expression and biofilm formation by the uropathogenic Escherichia coli / Wojnicz D. [et al.] // Urol Res. - 2012 .-- V. 40 (6). - P. 683-697.

63. Zhao, T. N-acetylcysteine inhibit biofilms produced by Pseudomonas aeruginosa / Zhao Т., Liu Y. // BMC Microbiol. - 2010. - V. 10. - P. 140.63. Zhao, T. N-acetylcysteine inhibit biofilms produced by Pseudomonas aeruginosa / Zhao T., Liu Y. // BMC Microbiol. - 2010. - V. 10. - P. 140.

Claims (1)

Применение тритерпеноида милиацина в качестве средства для селективного влияния на биопленкообразование микроорганизмами, снижающего биопленкообразование патогенными - Salmonella typhimurium, Salmonella enteritidis и условно-патогенными - Pseudomonas aeruginosa, Klebsiella pneumoniae, Staphylococcus aureus бактериями и одновременно сохраняющего биопленкообразование нормофлорой - лактобактериями - Lactobacillus plantarum, Lactobacillus fermentum, Lactobacillus acidophilus и бифидобактериями - Bifidobacterium bifidum, Bifidobacterium adolescentis.The use of miliacin triterpenoid as a means for the selective influence on biofilm formation by microorganisms, which reduces biofilm formation by pathogenic Salmonella typhimurium, Salmonella enteritidis and conditionally pathogenic Pseudomonas aeruginosa, Klebsiella pneumoniae, bacterium bacteria, bacterium bacteria, and bacterium bacteria Lactobacillus acidophilus and bifidobacteria - Bifidobacterium bifidum, Bifidobacterium adolescentis.
RU2016116177A 2016-04-25 2016-04-25 Means for selective effect on biofilm formation by microorganisms RU2646488C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2016116177A RU2646488C2 (en) 2016-04-25 2016-04-25 Means for selective effect on biofilm formation by microorganisms

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2016116177A RU2646488C2 (en) 2016-04-25 2016-04-25 Means for selective effect on biofilm formation by microorganisms

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2016116177A RU2016116177A (en) 2017-10-30
RU2646488C2 true RU2646488C2 (en) 2018-03-05

Family

ID=60264116

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2016116177A RU2646488C2 (en) 2016-04-25 2016-04-25 Means for selective effect on biofilm formation by microorganisms

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2646488C2 (en)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2728940C1 (en) * 2020-01-27 2020-08-03 федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Тверской государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации Method for inhibiting microbial biofilm of plaque
RU2802523C1 (en) * 2022-10-26 2023-08-30 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Оренбургский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации Method for killing microorganisms in biofilms

Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2063237C1 (en) * 1986-07-16 1996-07-10 Нузов Борис Григорьевич Wound-healing agent
RU2478385C2 (en) * 2007-05-22 2013-04-10 Новартис Аг Triasol compounds for treatment of biofilm formation
WO2014078801A1 (en) * 2012-11-16 2014-05-22 President And Fellows Of Harvard College Methods and compositions comprising guanidines for treating biofilms
RU2527894C2 (en) * 2007-11-27 2014-09-10 Альгифарма ИПР АС Using alginate oligomers in biofilm control
RU2564918C1 (en) * 2014-05-07 2015-10-10 Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Оренбургская государственная медицинская академия" Министерства здравоохранения Российской Федерации /ГБОУ ВПО ОрГМА Минздрава России/ Agent for reducing systemic pathologic endotoxinemia
US20150366899A1 (en) * 2007-02-15 2015-12-24 National Jewish Health Methods and Compositions for the Disruption of Biofilms

Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2063237C1 (en) * 1986-07-16 1996-07-10 Нузов Борис Григорьевич Wound-healing agent
US20150366899A1 (en) * 2007-02-15 2015-12-24 National Jewish Health Methods and Compositions for the Disruption of Biofilms
RU2478385C2 (en) * 2007-05-22 2013-04-10 Новартис Аг Triasol compounds for treatment of biofilm formation
RU2527894C2 (en) * 2007-11-27 2014-09-10 Альгифарма ИПР АС Using alginate oligomers in biofilm control
WO2014078801A1 (en) * 2012-11-16 2014-05-22 President And Fellows Of Harvard College Methods and compositions comprising guanidines for treating biofilms
RU2564918C1 (en) * 2014-05-07 2015-10-10 Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Оренбургская государственная медицинская академия" Министерства здравоохранения Российской Федерации /ГБОУ ВПО ОрГМА Минздрава России/ Agent for reducing systemic pathologic endotoxinemia

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
MORRISON S et al. Impact of polymethylmethacrylate additives on methicillin-resistant Staphylococcus pseudintermedius biofilm formation in vitro. Am J Vet Res., 2015, 76(5), p.395-401. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2728940C1 (en) * 2020-01-27 2020-08-03 федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Тверской государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации Method for inhibiting microbial biofilm of plaque
RU2802523C1 (en) * 2022-10-26 2023-08-30 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Оренбургский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации Method for killing microorganisms in biofilms

Also Published As

Publication number Publication date
RU2016116177A (en) 2017-10-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Skariyachan et al. Recent perspectives on the molecular basis of biofilm formation by Pseudomonas aeruginosa and approaches for treatment and biofilm dispersal
Rather et al. Microbial biofilm: formation, architecture, antibiotic resistance, and control strategies
Satpathy et al. Review on bacterial biofilm: An universal cause of contamination
Fu et al. Strategies for interfering with bacterial early stage biofilms
Batoni et al. Antimicrobial peptides and their interaction with biofilms of medically relevant bacteria
Simoes Antimicrobial strategies effective against infectious bacterial biofilms
Buommino et al. Recent advances in natural product-based anti-biofilm approaches to control infections
Bjarnsholt et al. Applying insights from biofilm biology to drug development—can a new approach be developed?
Pompilio et al. Gram-negative bacteria holding together in a biofilm: the Acinetobacter baumannii way
Asma et al. An overview of biofilm formation–combating strategies and mechanisms of action of antibiofilm agents
Abdel-Aziz et al. Bacterial biofilm: dispersal and inhibition strategies
Khan et al. Mixed biofilms of pathogenic Candida-bacteria: regulation mechanisms and treatment strategies
Upmanyu et al. Factors mediating Acinetobacter baumannii biofilm formation: Opportunities for developing therapeutics
van Tilburg Bernardes et al. Current research approaches to target biofilm infections
Keman et al. Antibiotic-resistant Staphylococcus aureus does not develop resistance to vanillic acid and 2-hydroxycinnamic acid after continuous exposure in vitro
Vishwakarma et al. Unraveling the anti-biofilm potential of green algal sulfated polysaccharides against Salmonella enterica and Vibrio harveyi
Karunanidhi et al. Antibacterial and antibiofilm activities of nonpolar extracts of Allium stipitatum Regel. against multidrug resistant bacteria
Elkhatib et al. Efficacy of ciprofloxacin-clarithromycin combination against drug-resistant Pseudomonas aeruginosa mature biofilm using in vitro experimental model
Tetz et al. In vitro antimicrobial activity of a novel compound, Mul-1867, against clinically important bacteria
Stoitsova et al. Modulation of biofilm growth by sub-inhibitory amounts of antibacterial substances
Yadav et al. Recent development in therapeutic strategies targeting Pseudomonas aeruginosa biofilms–a review
US11478454B2 (en) Methods to control infection using new generation small molecule growth inhibitors
Khan et al. Current and emergent control strategies for medical biofilms
Saleemi et al. Alternative approaches to combat medicinally important biofilm-forming pathogens
RU2646488C2 (en) Means for selective effect on biofilm formation by microorganisms

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20190426