RU2628693C1 - Recombinant l1hpv16 gene, recombinant pqe-l1/16 plasmid, l1hpv16 protein and their application - Google Patents
Recombinant l1hpv16 gene, recombinant pqe-l1/16 plasmid, l1hpv16 protein and their application Download PDFInfo
- Publication number
- RU2628693C1 RU2628693C1 RU2016144184A RU2016144184A RU2628693C1 RU 2628693 C1 RU2628693 C1 RU 2628693C1 RU 2016144184 A RU2016144184 A RU 2016144184A RU 2016144184 A RU2016144184 A RU 2016144184A RU 2628693 C1 RU2628693 C1 RU 2628693C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- l1hpv16
- protein
- recombinant
- vaccine
- gene
- Prior art date
Links
Images
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K39/12—Viral antigens
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/005—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
- C07K14/01—DNA viruses
- C07K14/025—Papovaviridae, e.g. papillomavirus, polyomavirus, SV40, BK virus, JC virus
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
- C12N15/70—Vectors or expression systems specially adapted for E. coli
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Virology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Zoology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Gastroenterology & Hepatology (AREA)
- Plant Pathology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Immunology (AREA)
- Mycology (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к генной инженерии, биохимии, биотехнологии и иммунологии. Получают синтетический ген белка L1 вируса папилломы человека 16 типа (L1HPV16), оптимизированный для гетерологичной экспрессии в непатогенных лабораторных штаммах Escherichia coli. На его основе получают рекомбинантную плазмиду pQE-L1/16, состоящую из синтетического гена белка L1HPV16, включающего промоторную область раннего промотора бактериофага Т5, ген белка L1HPV16 и терминатор транскрипции Т1; гена бета-лактамазы и бактериального участка инициации репликации типа ColE1. Изобретение также включает способ рефолдинга белка в корректную пространственную структуру и его очистки методом гель-фильтрации. Изобретение относится к самому рекомбинантному белку L1HPV16, экспрессионному вектору pQE-L1/16 и иммуногенной вакцинной композиции, содержащей рекомбинантный белок L1HPV16, направленной на индукцию иммунитета против вируса папилломы человека (HPV). Изобретение позволяет получать устойчивый очищенный иммуногенный белок L1HPV16, а также получать эффективные иммуногенные вакцинные композиции против HPV.The invention relates to genetic engineering, biochemistry, biotechnology and immunology. A synthetic human papilloma virus L1 protein gene of type 16 (L1HPV16), optimized for heterologous expression in non-pathogenic laboratory strains of Escherichia coli, is obtained. Based on it, a recombinant plasmid pQE-L1 / 16 is obtained, consisting of a synthetic gene of the L1HPV16 protein, including the promoter region of the early promoter of the bacteriophage T5, the L1HPV16 protein gene and T1 transcription terminator; beta-lactamase gene and bacterial replication initiation site of ColE1 type. The invention also includes a method of refolding the protein into the correct spatial structure and purifying it by gel filtration. The invention relates to the recombinant protein L1HPV16 itself, the expression vector pQE-L1 / 16 and an immunogenic vaccine composition containing the recombinant protein L1HPV16 aimed at inducing immunity against human papillomavirus (HPV). EFFECT: invention enables to obtain stable purified immunogenic protein L1HPV16, as well as to obtain effective immunogenic vaccine compositions against HPV.
На сегодняшний день доказано, что эффективным методом предотвращения инфекции HPV является профилактическая вакцинация. В настоящее время на рынке присутствуют три профилактические вакцины - двухвалентный церварикс от компании GSK, четырехвалентный гардасил и девятивалентный гардасил-9 от компании Merck&Co. Целевым контингентом этих вакцин являются дети и молодые люди, не инфицированные HPV. Во всех этих вакцинах иммуногеном является белок капсида вируса L1, способный самопроизвольно формировать псевдовирусные частицы, не обладающие инфекционной активностью. Псевдовирусные частицы являются эффективной формой презентации вирусного антигена иммунной системе и обеспечивает развитие стойкого гуморального и клеточного иммунного ответа (DraperE. et al. A randomized, observer-blinded immunogenicity trial of Cervarix® and Gardasil® human papillomavirus vaccines in 12-15 year old girls. // PloS one - 2013. - Vol. 8. - №.5. - P. e61825; Toft L. et al. Comparison of the immunogenicity of Cervarix® and Gardasil® human papillomavirus vaccines for oncogenic non-vaccine serotypes HPV-31, HPV-33, and HPV-45 in HIV-infected adults. // Human vaccines & immunotherapeutics - 2014. - Vol. 10. - №.5. - P. 1147-1154; Godi A. et al. Relationship between Humoral Immune Responses against HPV16, HPV18, HPV31 and HPV45 in 12-15 Year Old Girls Receiving Cervarix® or Gardasil® Vaccine. // PloSone - 2015. - Vol. 10. - №.10. - P. e0140926; Giuliano A.R. et al. Immunogenicity and safety of Gardasil among mid-adult aged men (27-45 years) - The MAM Study. // Vaccine. - 2015. - Vol. 33. - №.42. - P. 5640-5646; Gizzo S., Noventa M., Nardelli G.B. Gardasil administration to hr-HPV-positive women and their partners. // Trends Pharmacol Sci. - 2013. - Vol. 34. - №.9. - P. 479-480; Luna J. et al. Long-term follow-up observation of the safety, immunogenicity, and effectiveness of Gardasil™ in adult women. // PloS one. - 2013. - Vol. 8. - №.12. - P. e83431; Petrosky E. et al. Use of 9-valent human papillomavirus (HPV) vaccine: updated HPV vaccination recommendations of the advisory committee on immunization practices. // MMWR Morb Mortal Wkly Rep. - 2015. - Vol. 64. - №.11. - P. 300-304).To date, it has been proven that preventive vaccination is an effective way to prevent HPV infection. Currently, there are three prophylactic vaccines on the market - divalent cervarix from GSK, tetravalent gardasil and nine valent gardasil-9 from Merck & Co. The target population of these vaccines is children and young people who are not infected with HPV. In all of these vaccines, the immunogen is the L1 virus capsid protein, capable of spontaneously forming pseudovirus particles that do not have infectious activity. Pseudovirus particles are an effective form of presentation of the viral antigen to the immune system and provide a stable humoral and cellular immune response (DraperE. Et al. A randomized, observer-blinded immunogenicity trial of Cervarix® and Gardasil® human papillomavirus vaccines in 12-15 year old girls. // PloS one - 2013. - Vol. 8. - No. 5. - P. e61825; Toft L. et al. Comparison of the immunogenicity of Cervarix® and Gardasil® human papillomavirus vaccines for oncogenic non-vaccine serotypes HPV-31 , HPV-33, and HPV-45 in HIV-infected adults. // Human vaccines & immunotherapeutics - 2014. - Vol. 10. - No. 5. - P. 1147-1154; Godi A. et al. Relationship between Humoral Immune Responses against HPV16, HPV18, HPV31 and HPV45 in 12-15 Year Old Girls Receiving Cervarix® or Gardasil® Vaccine. // PloSone - 2015. - Vol. 10. - No. 10. - P. e0140926; Giuliano AR et al. Immunogenicity and safety of Gardasil among mid-adult aged men (27-45 years) - The MAM Study. // Vaccine. - 2015. - Vol . 33. - No. 42. - P. 5640-5646; Gizzo S., Noventa M., Nardelli G.B. Gardasil administration to hr-HPV-positive women and their partners. // Trends Pharmacol Sci. - 2013 .-- Vol. 34. - No. 9. - P. 479-480; Luna J. et al. Long-term follow-up observation of the safety, immunogenicity, and effectiveness of Gardasil ™ in adult women. // PloS one. - 2013 .-- Vol. 8. - No. 12. - P. e83431; Petrosky E. et al. Use of 9-valent human papillomavirus (HPV) vaccine: updated HPV vaccination recommendations of the advisory committee on immunization practices. // MMWR Morb Mortal Wkly Rep. - 2015. - Vol. 64. - No. 11. - P. 300-304).
Церварикс содержит L1 белки ПВЧ двух наиболее онкогенных типов - 16 и 18, которые обуславливают развитие около 70% случаев рака шейки матки (РШМ). Доказано, что церварикс существенно снижает риск инфекции HPV 16 и 18 типов и предотвращает развитие РШМ. Церварикс показан женщинам в возрасте от 9 до 26 лет (Monie A. et al. Cervarix™: a vaccine for the prevention of HPV 16, 18-associated cervical cancer. // Biologies: targets & therapy. - 2008. - Vol. 2. - №.1. - P. 107-113; WO 2010012780 A1).Cervarix contains L1 HPV proteins of the two most oncogenic types - 16 and 18, which cause the development of about 70% of cases of cervical cancer (cervical cancer). It is proved that cervarix significantly reduces the risk of HPV infection of
Гардасил в своем составе содержит L1 белки четырех онкогенных типов HPV - 6, 11, 16 и 18. Показано, что эта вакцина предотвращает не только развитие РШМ, но и рака вульвы и влагалища, а также папилломатоз и формирование аногенитальных бородавок. В связи с этим Гардасил рекомендован женщинам и мужчинам в возрасте от 9 до 26 лет (McLemore M.R. Gardasil®: introducing the new human papillomavirus vaccine. // Clinical journal of oncology nursing - 2006. - Vol. 10. - №. 5. - P. 559).Gardasil in its composition contains L1 proteins of four oncogenic types of HPV - 6, 11, 16 and 18. It is shown that this vaccine prevents not only the development of cervical cancer, but also cancer of the vulva and vagina, as well as papillomatosis and the formation of anogenital warts. In this regard, Gardasil is recommended for women and men aged 9 to 26 years (McLemore MR Gardasil®: introducing the new human papillomavirus vaccine. // Clinical journal of oncology nursing - 2006. - Vol. 10. - No. 5. - P. 559).
Гардасил-9 содержит LI белки девяти типов HPV. Гардасил-9 предотвращает развитие дополнительных (по сравнению с Гардасилом) 20% HPV-опосредованных видов аногенитального рака и доброкачественных новообразований. Гардасил-9 показан и для мужчин, и для женщин в возрасте от 9 до 26 лет (Printz C. FDA approves Gardasil 9 for more types of HPV. // Cancer. - 2015. - Vol. 121. - №.8. - P. 1156-1157).Gardasil-9 contains LI proteins of nine types of HPV. Gardasil-9 prevents the development of additional (compared to Gardasil) 20% of HPV-mediated types of anogenital cancer and benign neoplasms. Gardasil-9 is indicated for both men and women aged 9 to 26 years (Printz C. FDA approves Gardasil 9 for more types of HPV. // Cancer. - 2015. - Vol. 121. - No. 8. - P. 1156-1157).
Кроме самого белка L1, вакцины содержат адъюванты - аморфный гидроксифосфат-сульфат алюминия, который является стимулятором гуморального иммунного ответа (используется в вакцинах гардасил и гардасил-9), а также гидрат окиси алюминия с монофосфорил липидом А1 из Salmonella enterica, который является эффективным стимулятором клеточного иммунного ответа (используются в вакцине церварикс) (Mata-HaroV. etal. The vaccine adjuvant monophosphoryl lipid A as a TRIF-biased agonist of TLR4. // Science. - 2007. - Vol. 316. - №.5831. - P. 1628-1632; Casella C.R., Mitchell Т.C. Putting endotoxin to work for us: monophosphoryl lipid A as a safe and effective vaccine adjuvant. // Cellular and molecular life sciences. - 2008. - Vol. 65. - №.20. - P. 3231-3240; Lindblad E.B. Aluminium compounds for use in vaccines. // Immunology and cell biology - 2004. - Vol. 82. - №.5. - P. 497-505; Marrack P., McKee A.S., Munks M.W. Towards an understanding of the adjuvant action of aluminium // Nature Reviews Immunology. - 2009. - Vol. 9. - №.4. - P. 287-293). Кроме того, в состав этих вакцин входят стабилизаторы суспензии полисорбат-80 и L-гистидин, поддерживающие свойства суспензии и повышающие стабильность комплекса между аморфным алюминием и антигеном (патент US 20050158334 А1).In addition to the L1 protein itself, vaccines contain adjuvants - amorphous aluminum hydroxyphosphate sulfate, which is a stimulator of the humoral immune response (used in the vaccines gardasil and gardasil-9), as well as aluminum oxide hydrate with monophosphoryl lipid A1 from Salmonella enterica, which is an effective stimulator of cellular immune response (used in the Cervarix vaccine) (Mata-HaroV. etal. The vaccine adjuvant monophosphoryl lipid A as a TRIF-biased agonist of TLR4. // Science. - 2007. - Vol. 316. - No. 5831. - P. 1628-1632; Casella CR, Mitchell T.C. Putting endotoxin to work for us: monophosphoryl lipid A as a safe and effective vaccine adjuvant. // Cellular and mo lecular life sciences. - 2008. - Vol. 65. - No. 20. - P. 3231-3240; Lindblad EB Aluminum compounds for use in vaccines. // Immunology and cell biology - 2004. - Vol. 82. - No. 5. - P. 497-505; Marrack P., McKee AS, Munks MW Towards an understanding of the adjuvant action of aluminum // Nature Reviews Immunology. - 2009. - Vol. 9. - No. 4. - P. 287-293). In addition, the composition of these vaccines includes suspension stabilizers polysorbate-80 and L-histidine, which maintain the properties of the suspension and increase the stability of the complex between amorphous aluminum and antigen (patent US 20050158334 A1).
Описанные выше вакцины позволяют значительно снизить распространенность инфекции HPV и снизить риск связанных с HPV заболеваний. В то же время данные вакцины имеют существенный недостаток: их стоимость достаточно высока по причине использования для получения белка L1 и сборки псевдовирусных частиц дорогостоящих бакуловирусных (церварикс) и дрожжевых (гардасил и гардасил-9) экспрессионных систем. Отсюда следует высокая актуальность разработки новых решений для удешевления процесса получения иммуногена белка L1 и формируемых им псевдовирусных частиц для применения в составе иммуногенных композиций.The vaccines described above can significantly reduce the prevalence of HPV infection and reduce the risk of HPV-related diseases. At the same time, these vaccines have a significant drawback: their cost is quite high due to the use of expensive baculovirus (cervarix) and yeast (gardasil and gardasil-9) expression systems to obtain L1 protein and assemble pseudovirus particles. Hence the high relevance of developing new solutions to reduce the cost of the process of obtaining the L1 protein immunogen and the pseudoviral particles formed by it for use in immunogenic compositions.
Технический результат выражается в получении отдельных высокоочищенных и стабильных белковых компонентов, которые характеризуются высоким уровнем экспрессии и стабильности в бактериальных экспрессионных системах, на основе которых могут быть получены вакцины.The technical result is expressed in obtaining separate highly purified and stable protein components, which are characterized by a high level of expression and stability in bacterial expression systems, on the basis of which vaccines can be obtained.
Получен иммуногенный белок L1 папилломавируса человека 16 типа (L1HPV16) в экспрессионной системе непатогенных лабораторных штаммов Escherichia coli с последующим рефолдингом L1HPV16 и его очисткой методом гель-фильтрации.An immunogenic L1 human papillomavirus protein type 16 (L1HPV16) was obtained in the expression system of non-pathogenic laboratory strains of Escherichia coli, followed by refolding of L1HPV16 and its purification by gel filtration.
Была получена синтетическая последовательность ДНК, кодирующая белок L1HPV16. Для обеспечения высокого уровня продукции рекомбинантного белка L1HPV16 в гетерологичной системе проводили оптимизацию кодонов. Спланированная кодирующая последовательность ДНК отличалась от нативной последовательности ДНК вируса папилломы человека 16 типа нуклеотидным составом. Этот прием позволил получить высокоэффективную продукцию рекомбинантного белка L1HPV16 в нерастворимой фракции в количествах около 20% от суммарного белка клетки.A synthetic DNA sequence encoding the L1HPV16 protein was obtained. To ensure a high level of production of the recombinant protein L1HPV16 in the heterologous system, codons were optimized. The planned coding DNA sequence was different from the native DNA sequence of human
Заявляемая группа изобретений позволяет получить оптимальную для гетерологичной экспрессии синтетическую последовательность ДНК, кодирующую рекомбинантный белок L1HPV16, обеспечивающую высокий уровень продукции белка L1HPV16 в непатогенных лабораторных экспрессионных штаммах Е. coli; проводить простую и эффективную очистку белка L1HPV16, способного собираться в псевдовирусные частицы, и в этой форме эффективно и специфически индуцировать гуморальный и клеточный иммунный ответ к папилломавирусу человека 16 типа; создавать иммуногенные композиции на основе рекомбинантного белка с использованием геля гидрата окиси алюминия (Al) и монофосфорил липида А1 из Salmonella enterica (MPLA) в качестве адъювантов.The claimed group of inventions allows to obtain the optimal synthetic sequence for heterologous expression of DNA encoding the recombinant protein L1HPV16, providing a high level of production of protein L1HPV16 in non-pathogenic laboratory expression strains of E. coli; to carry out a simple and effective purification of the L1HPV16 protein, which is able to assemble into pseudovirus particles, and in this form, efficiently and specifically induce a humoral and cellular immune response to type 16 human papillomavirus; create immunogenic compositions based on a recombinant protein using alumina (Al) hydrate gel and monophosphoryl lipid A1 from Salmonella enterica (MPLA) as adjuvants.
Указанный результат достигается за счет синтеза рекомбинатного белка L1HPV16 в клетках лабораторных штаммов Е. coli, несущих рекомбинантную плазмиду pQE-L1/16, а также за счет создания комплексного препарата L1HPV16 (5 или 0,5 мкг) с адъювантами Al (200 мкг) и MPLA (1 мкг).This result is achieved due to the synthesis of the recombinant protein L1HPV16 in the cells of laboratory E. coli strains carrying the recombinant plasmid pQE-L1 / 16, as well as by creating a complex preparation L1HPV16 (5 or 0.5 μg) with Al adjuvants (200 μg) and MPLA (1 μg).
Сущность изобретения состоит в том, что плазмида pQE-L1/16 содержит следующие существенные для ее функционирования структурные элементы:The essence of the invention lies in the fact that the plasmid pQE-L1 / 16 contains the following structural elements essential for its functioning:
а) искусственный ген L1HPV16, состоящий из:a) the artificial gene L1HPV16, consisting of:
- промоторной области раннего промотора бактериофага Т5 (10-54 п.н.), обеспечивающей эффективную транскрипцию мРНК;- the promoter region of the early promoter of the T5 bacteriophage (10-54 bp), which provides efficient transcription of mRNA;
- рекомбинантного гена, кодирующего белок L1 папилломавируса человека 16 типа (117-1524 п.н.);- a recombinant gene encoding the L1 protein of human papillomavirus type 16 (117-1524 bp);
- нетранслируемой области терминации транскрипции бактериального оперона, обеспечивающей эффективное окончание транскрипции гена L1HPV16 (2150-2236 п.н.);- untranslated region of the termination of transcription of the bacterial operon, which ensures the efficient termination of transcription of the L1HPV16 gene (2150-2236 bp);
в) бактериального гена bla, находящегося под контролем промотора AmpR (3477-4442 п.н.), кодирующего белок бета-лактамазу - селективный маркер для трансформации штамма Е. coli;c) the bacterial bla gene, which is under the control of the AmpR promoter (3477-4442 bp), encoding the beta-lactamase protein, a selective marker for the transformation of E. coli strain;
г) бактериального участка инициации репликации типа ColE1, обеспечивающего репликацию плазмиды в штамме Е. coli: L1HPV16 (2718-3306 п.н.).d) a bacterial site of replication initiation of ColE1 type, which ensures replication of the plasmid in E. coli strain: L1HPV16 (2718-3306 bp).
Таким образом, создана рекомбинантная плазмида pQE-L1/16 (4542 п.н.), кодирующая рекомбинантный белок L1HPV16, обладающий способностью самопроизвольно формировать псевдовирусные частицы. Плазмида содержит следующие структурные элементы: искусственный ген полноразмерного белка L1 вируса папилломы человека 16 типа, включающий промоторную область раннего промотора бактериофага Т5 (45 п.н.), ген химерного белка L1HPV16 (1524 п.н.) и терминатор транскрипции Т1 (87 п.н.); ген бета-лактамазы (966 п.н.) и бактериальный участок инициации репликации типа ColE1 (589 п.н.).Thus, a recombinant plasmid pQE-L1 / 16 (4542 bp) was created that encodes a recombinant protein L1HPV16, which has the ability to spontaneously form pseudovirus particles. The plasmid contains the following structural elements: an artificial gene of the full-sized protein L1 of
По формулированию препарата рекомбинантного белка L1HPV16 в виде псевдовирусных частиц в комплексе с адъювантами (гелем гидрата оксида алюминия и монофосфорил липидом А1 из S. enterica) технический результат достигается за счет создания рекомбинантного белка L1HPV16, а также за счет получения иммунологической вакцинной композиции, в которой рекомбинантный белок L1HPV16 содержится в виде комплекса с MPLA и частицами Al.By formulating the preparation of the recombinant protein L1HPV16 in the form of pseudovirus particles in combination with adjuvants (gel of aluminum oxide hydrate and monophosphoryl lipid A1 from S. enterica), the technical result is achieved by creating a recombinant protein L1HPV16, as well as by obtaining an immunological vaccine composition in which the recombinant L1HPV16 protein is contained in a complex with MPLA and Al particles.
Была исследована иммуногенность комплексного вакцинного препарата L1HPV16-Al-MPLA на мышах. Мышей иммунизировали вакцинной композицией подкожно три раза с интервалом в две недели и через неделю сравнивали гуморальный и клеточный иммунный ответ с ответом мышей, иммунизированных равными количествами белка L1HPV16. Был выявлен выраженный специфический гуморальный и клеточный иммунный ответ на композицию, содержащую L1HPV16 с добавлением Al и MPLA.The immunogenicity of the complex vaccine L1HPV16-Al-MPLA in mice was investigated. The mice were immunized subcutaneously with the vaccine composition three times at two-week intervals, and after a week the humoral and cellular immune responses were compared with those of mice immunized with equal amounts of L1HPV16 protein. A pronounced specific humoral and cellular immune response to a composition containing L1HPV16 with the addition of Al and MPLA was detected.
Техническим результатом, достигаемым при осуществлении изобретения, является получение высокого уровня продукции белка L1HPV16, который после рефолдинга и очистки формирует стабильные псевдовирусные частицы, обладающие способностью индуцировать гуморальный и клеточный иммунный ответ. Кроме этого, техническим результатом является эффективная иммуногенная вакцинная композиция, эффективно и специфически индуцирующая гуморальный и клеточный иммунный ответ к папилломавирусу человека 16 типа.The technical result achieved by the implementation of the invention is to obtain a high level of production of the L1HPV16 protein, which, after refolding and purification, forms stable pseudovirus particles with the ability to induce a humoral and cellular immune response. In addition, the technical result is an effective immunogenic vaccine composition that effectively and specifically induces a humoral and cellular immune response to type 16 human papillomavirus.
Изобретение проиллюстрировано следующими примерами, приведенными ниже. Генно-инженерные и микробиологические манипуляции, амплификацию и секвенирование ДНК проводили по стандартным методикам (Маниатис Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Молекулярное клонирование, М.: Мир, 1984; Клонирование ДНК. Методы. Под ред. Д. Гловера, Пер. с англ., М.: Мир, 1988; Saiki R.K., Gelfand D.H., StoffelS. etal. Primer-directed enzymatic amplification of DNA with a thermostable DNA polymerase. Science, 1988, Vol. 239, No. 4839, pp. 487-491; Sanger F., Nicklen S., Coulson A.R. DNA sequencing with chain-terminating inhibitors (DNA polymerase/nucleotide sequences/bacteriophage 4X174). Proc. Nat. Acad. Sci. USA, 1977, Vol. 74, No. 12, pp. 5463-5467).The invention is illustrated by the following examples below. Genetic engineering and microbiological manipulations, amplification and DNA sequencing were carried out according to standard methods (Maniatis T., Fritsch E., Sambrook J. Molecular cloning, M .: Mir, 1984; DNA cloning. Methods. Edited by D. Glover, Per . English, M .: Mir, 1988; Saiki RK, Gelfand DH, Stoffel S. etal. Primer-directed enzymatic amplification of DNA with a thermostable DNA polymerase. Science, 1988, Vol. 239, No. 4839, pp. 487 -491; Sanger F., Nicklen S., Coulson AR DNA sequencing with chain-terminating inhibitors (DNA polymerase / nucleotide sequences / bacteriophage 4X174). Proc. Nat. Acad. Sci. USA, 1977, Vol. 74, No. 12 , pp. 5463-5467).
Пример 1Example 1
Получение плазмиды pQE-L1/16Obtaining plasmid pQE-L1 / 16
Синтетическая последовательность ДНК, кодирующая ген белка L1HPV16, была спланирована таким образом, чтобы нуклеотидный состав кодонов был оптимизирован для гетерологичной экспрессии в непатогенном лабораторном штамме Е. coli, а аминокислотный состав синтезируемого рекомбинатного белка при этом не изменялся (последовательность №1). Для клонирования фрагмента ДНК последовательность гена была фланкирована сайтами эндонуклеаз рестрикции BamHI и KpnI. Для инициации и остановки трансляции были предусмотрены стартовый и терминирующий кодоны.The synthetic DNA sequence encoding the L1HPV16 protein gene was designed so that the nucleotide composition of the codons was optimized for heterologous expression in a non-pathogenic laboratory strain of E. coli, while the amino acid composition of the synthesized recombinant protein was not changed (sequence No. 1). To clone a DNA fragment, the gene sequence was flanked by restriction endonucleases BamHI and KpnI. To initiate and stop the broadcast, start and termination codons were provided.
Фрагмент ДНК, кодирующий белок L1HPV16, был синтезирован твердофазным амидофосфитным методом (ЗАО «Евроген», РФ) на синтезаторе AppliedBiosystemsABI 3900 с последующим клонированием ДНК дуплекса в pAL-TA вектор. Первичную структуру полученной конструкции подтверждали секвенированием.The DNA fragment encoding the L1HPV16 protein was synthesized by the solid-phase amidophosphite method (ZAO Evrogen, RF) on an AppliedBiosystemsABI 3900 synthesizer, followed by cloning of the duplex DNA into a pAL-TA vector. The primary structure of the resulting construct was confirmed by sequencing.
Для получения конструкции, кодирующей последовательность гена L1HPV16, плазмиды pALTA-L1HPV16 и pQE6 гидролизовали эндонуклеазами рестрикции BamHI и KpnI при 37°C в буфере, содержащем 50 мМ Трис-HCl (pH 7,5), 10 мМ хлорида магния, 100 мМ хлорида натрия и 0,1 мг/мл BSA, в течение 1 часа. В 1,2% агарозном геле проводили разделение продуктов рестрикции. Выделенный из агарозного геля фрагмент плазмиды pALTA-L1HPV16 (1521 п.н.) лигировали с выделенным из агарозного геля фрагментом плазмиды pQE6 (3028 п.н.) с помощью ДНК-лигазы бактериофага Т4. Методом электропорации полученной лигазной смесью трансформировали компетентные клетки Е. coli M15 [pREP4]. После трансформации клоны отбирали на агаризованнной среде LB, содержащей антибиотики ампициллин и канамицин. Плазмидную ДНК выделяли методом щелочного лизиса и анализировали методом рестрикционного картирования. Отбирали клоны плазмидной ДНК pQE-L1/16 (4542 п.н., последовательность №2), содержащей в своем составе последовательность ДНК, кодирующую полноразмерный белок L1HPV16. Первичную структуру полученной конструкции подтверждали секвенированием. Схема плазмиды pQE-L1/16 приведена на фиг. 1.To obtain a construct encoding the L1HPV16 gene sequence, the plasmids pALTA-L1HPV16 and pQE6 were hydrolyzed with restriction endonucleases BamHI and KpnI at 37 ° C in a buffer containing 50 mM Tris-HCl (pH 7.5), 10 mM magnesium chloride, 100 mM sodium chloride and 0.1 mg / ml BSA, for 1 hour. Restriction products were separated on a 1.2% agarose gel. A fragment of plasmid pALTA-L1HPV16 isolated from an agarose gel (1521 bp) was ligated with a fragment of plasmid pQE6 (3028 bp) isolated from an agarose gel using bacteriophage T4 DNA ligase. Using electroporation, the obtained ligase mixture was used to transform competent E. coli M15 cells [pREP4]. After transformation, clones were selected on LB agar medium containing antibiotics ampicillin and kanamycin. Plasmid DNA was isolated by alkaline lysis and analyzed by restriction mapping. Clones of plasmid DNA pQE-L1 / 16 (4542 bp, sequence No. 2) containing the DNA sequence encoding the full-length protein L1HPV16 were selected. The primary structure of the resulting construct was confirmed by sequencing. The plasmid pQE-L1 / 16 is shown in FIG. one.
Пример 2Example 2
Получение, рефолдинг и очистка рекомбинантного белка L1HPV16Obtaining, refolding and purification of the recombinant protein L1HPV16
Культуру клеток E.coli осаждали, взвешивали, отмывали 10-кратным объемом буфера для отмывки А: 20 мМ Трис-HCl, pH 7.5, 50 мМ натрия хлорида, 0.5 мМ ЭДТА, 1 мМ PMSF. После отмывки клетки Е. coli снова ресуспендировали в 10-кратном объеме того же буфера и добавляли лизоцим из расчета 25 мкг/мл суспензии клеток. Инкубировали 30 мин при комнатной температуре, периодически перемешивая. Проводили озвучивание суспензии в течение 5 мин с помощью ультразвукового дезинтегратора BandelinSonopuls (20% амплитуды, 5 сек - импульс, 3 сек - пауза). Центрифугировали 30 мин при 10000 g и температуре 5°C. Целевой белок находится в телах включения (ТВ) в осадочной фракции. Супернатант декантировали, осадочную фракцию взвешивали и отмывали повторно 10-кратным объемом буфера для отмывки А. Отмытые ТВ растворяли в 10-кратном объеме буфера для отмывки А+5-20 мМ DTT+1-5% натрия лаурилсаркозината. Содержание целевого белка в отмытых ТВ составляло порядка 80%. После солюбилизации целевого белка из ТВ раствор осветляли центрифугированием при 10000 g. Для снижения содержания детергента раствор диализовали против буфера для отмывки А+10 мМ DTT+0.06% натрия лаурилсаркозината, 0.02% Твин-20. Дальнейшую очистку белка проводили методом гель-фильтрации на сорбенте ToyopearlHW-65, уравновешенном буфером для отмывки А+0-10 мМ DTT+0-1% натрия лаурилсаркозината, 0-1% Твин-20. Количественные характеристики этапов очистки приведены в таблице:The E. coli cell culture was besieged, weighed, washed with 10-fold volume of washing buffer A: 20 mM Tris-HCl, pH 7.5, 50 mM sodium chloride, 0.5 mM EDTA, 1 mM PMSF. After washing, E. coli cells were again resuspended in a 10-fold volume of the same buffer and lysozyme was added at the rate of 25 μg / ml cell suspension. Incubated for 30 min at room temperature, stirring occasionally. The suspension was voiced for 5 min using a BandelinSonopuls ultrasonic disintegrator (20% amplitude, 5 sec pulse, 3 sec pause). Centrifuged for 30 min at 10,000 g and a temperature of 5 ° C. The target protein is in inclusion bodies (TB) in the sedimentary fraction. The supernatant was decanted, the sediment fraction was weighed and washed again with 10 times the volume of washing buffer A. The washed TB was dissolved in 10 times the volume of washing buffer A + 5-20 mM DTT + 1-5% sodium lauryl sarcosinate. The content of the target protein in the washed TV was about 80%. After solubilization of the target protein from TB, the solution was clarified by centrifugation at 10,000 g. To reduce the detergent content, the solution was dialyzed against washing buffer A + 10 mM DTT + 0.06% sodium lauryl sarcosinate, 0.02% Tween-20. Further protein purification was carried out by gel filtration on a ToyopearlHW-65 sorbent, equilibrated with washing buffer A + 0-10 mM DTT + 0-1% sodium lauryl sarcosinate, 0-1% Tween-20. The quantitative characteristics of the cleaning steps are shown in the table:
Пример 3Example 3
Проверка сборки белка L1HPV16, формирования пентамеров и псевдовирусных частиц.Verification of the assembly of the L1HPV16 protein, the formation of pentamers and pseudovirus particles.
Медные сеточки (200 меш) покрывали коллодием (4%-ный раствор нитроцеллюлозы в амиалацетате) и напыляли углем. Далее сеточки ионизировали в тлеющем разряде для гидрофилизации поверхности. Образцы белка L1HPV16, растворенного в фосфатно-солевом буфере в концентрации 50 мкг/мл, наносили на поверхность сеточек в объеме 15 мкл и контрастировали 2%-ным водным раствором уранил ацетата или 1,5%-ым водным раствором фосфовольфрамовой кислоты. Анализ проводили на просвечивающем электронном микроскопе JEM-1400 ТЕМ (JEOL, Япония) при ускоряющем напряжении 80 кВ. Электронные изображения получали с помощью цифровой камеры OlympusQuemesa (Olympus-SIS, Германия) и программного обеспечения iTEM (Olympus Soft Imaging Solutions GmbH, Германия). С помощью электронной микроскопии в образце белка L1HPV16 обнаруживали псевдовирусные частицы диаметром 40-50 нм (фиг. 2).Copper grids (200 mesh) were coated with collodion (4% solution of nitrocellulose in amyl acetate) and sprayed with charcoal. Next, the nets were ionized in a glow discharge to hydrophilize the surface. Samples of L1HPV16 protein, dissolved in phosphate-buffered saline at a concentration of 50 μg / ml, were applied to the surface of the nets in a volume of 15 μl and contrasted with a 2% aqueous solution of uranyl acetate or a 1.5% aqueous solution of phosphofungstate. The analysis was performed on a JEM-1400 TEM transmission electron microscope (JEOL, Japan) at an accelerating voltage of 80 kV. Electronic images were obtained using an OlympusQuemesa digital camera (Olympus-SIS, Germany) and iTEM software (Olympus Soft Imaging Solutions GmbH, Germany). Using electron microscopy, pseudovirus particles with a diameter of 40-50 nm were detected in a L1HPV16 protein sample (Fig. 2).
Пример 4Example 4
Проверка взаимодействия белка L1HPV16 с моно- и поликлональными специфическими антителамиVerification of the interaction of the L1HPV16 protein with mono- and polyclonal specific antibodies
Проверку взаимодействия L1HPV16 со специфическими поликлональными антителами проводили с помощью иммуноферментного анализа. В лунки планшетов для иммуноферментного анализа вносили 50 мкг раствора очищенного рефолдированного белка L1HPV16 в PBS c концентрацией 1 мкг/мл и инкубировали 2 ч при 25°C, после чего отмывали три раза PBS с добавлением 0,02% Tween-20. Блокировку свободных мест связывания проводили 5% раствором фетальной бычьей сыворотки в PBS (2 ч при 25°C) с последующей отмывкой PBS с добавлением 0,02% Tween-20. В качестве первичных антител к L1HPV16 использовали сывороточные антитела кролика, иммунизированного вакциной «Гардасил». Связывание с первичными антителами проводили в течение 2 ч при 25°C с последующей трехкратной отмывкой PBS, 0,02% Tween-20. Связывание с вторичными антителами козла к иммуноглобулинам кролика, конъюгированными с пероксидазой хрена (Имтек, Россия), проводили в течение 2 ч при 25°C с последующей трехкратной отмывкой PBS, 0,02% Tween-20. Детекцию вторичных антител проводили с помощью хромогенного субстрата 3,3',5,5'-тетраметибензидина в течение 10 минут при температуре 25°C. Реакцию останавливали 0.16 М водным раствором серной кислоты. Измерение интенсивности свечения хромогенного субстрата проводили на длине волны 450 нм с использованием плашечного спектрофотометра Multiskan™ FC MicroplatePhotometer (ThermoFisher, США). Коррекцию фонового сигнала проводили при длине волны 620 нм. С помощью иммуноферментного анализа было показано, что очищенный рефолдированный L1HPV16 эффективно распознается поликлональными антителами, полученными к компонентам вакцины «Гардасил» (фиг. 3 А).The interaction of L1HPV16 with specific polyclonal antibodies was checked by enzyme-linked immunosorbent assay. Enzyme immunoassay plates were loaded with 50 μg of a solution of purified refolded L1HPV16 protein in PBS with a concentration of 1 μg / ml and incubated for 2 hours at 25 ° C, after which they were washed three times with PBS with the addition of 0.02% Tween-20. The free binding sites were blocked with a 5% solution of fetal bovine serum in PBS (2 h at 25 ° C), followed by washing with PBS with the addition of 0.02% Tween-20. The primary antibodies to L1HPV16 were serum rabbit antibodies immunized with the Gardasil vaccine. Binding to primary antibodies was carried out for 2 hours at 25 ° C, followed by three times washing with PBS, 0.02% Tween-20. Binding to goat's secondary antibodies to rabbit immunoglobulins conjugated to horseradish peroxidase (Imtek, Russia) was carried out for 2 h at 25 ° C, followed by three times washing with PBS, 0.02% Tween-20. Secondary antibodies were detected using a chromogenic substrate of 3.3 ', 5.5'-tetramethibenzidine for 10 minutes at a temperature of 25 ° C. The reaction was stopped with 0.16 M aqueous sulfuric acid. The luminescence intensity of the chromogenic substrate was measured at a wavelength of 450 nm using a Multiskan ™ FC MicroplatePhotometer (ThermoFisher, USA). Background signal correction was carried out at a wavelength of 620 nm. An enzyme-linked immunosorbent assay showed that purified refolded L1HPV16 is efficiently recognized by the polyclonal antibodies obtained against the components of the Gardasil vaccine (Fig. 3A).
Способность коммерчески доступных моноклональных антител CamVir-1 (клон 289-16981, MeridianLifeScience, США) эффективно распознавать белок L1HPV16, полученный и очищенный предлагаемыми в данной заявке способами, была продемонстрирована с помощью метода «Вестерн-блот» (фиг. 3 Б).The ability of commercially available CamVir-1 monoclonal antibodies (clone 289-16981, Meridian LifeScience, USA) to efficiently recognize the L1HPV16 protein obtained and purified by the methods proposed in this application was demonstrated using the Western blot method (Fig. 3 B).
Пример 5Example 5
Проверка иммуногенности вакцинной композиции на основе белкового препарата L1HPV16 на мышах.Testing the immunogenicity of the vaccine composition based on the protein preparation L1HPV16 in mice.
Самкам мышей линии balb/c вводили подкожно трехкратно с двухнедельным интервалом следующие препараты:The following preparations were administered subcutaneously to female balb / c mice three times at a two-week interval:
1) 5 мкг очищенного рекомбинантного белка L1HPV16;1) 5 μg of purified recombinant protein L1HPV16;
2) 0,5 мкг очищенного рекомбинантного белка L1HPV16;2) 0.5 μg of purified recombinant protein L1HPV16;
3) 5 мкг очищенного рекомбинантного белка L1HPV16 с добавлением 200 мкг Al и 1 мкг MPLA;3) 5 μg purified recombinant protein L1HPV16 with the addition of 200 μg Al and 1 μg MPLA;
4) 0,5 мкг очищенного рекомбинантного белка L1HPV16 с добавлением 200 мкг Al и 1 мкг MPLA.4) 0.5 μg of purified recombinant protein L1HPV16 with the addition of 200 μg of Al and 1 μg of MPLA.
Все инъекционные препараты были растворены в 100 мкл стерильного фосфатно-солевого буфера. Через неделю после последней иммунизации у животных отбирали кровь и проводили резекцию селезенки с выделением спленоцитов для определения клеточного иммунного ответа (оценивали количество интерферона-гамма, синтезируемого спленоцитами мышей после стимуляции антигеном). Иммуногенная композиция, содержащая 0,5 мкг или 0,5 мкг L1HPV16+200 мкг Al+1 мкг MPLA, является оптимальной как для индукции клеточного иммунного ответа (от 300 до 1630 пг/мл интерферона-гамма в зависимости от животного), так и для индукции формирования специфических антител (определение методом иммуноферментного анализа: титр около 1/60000).All injectable preparations were dissolved in 100 μl of sterile phosphate-buffered saline. One week after the last immunization, blood was taken from the animals and spleen resection was performed with splenocytes isolation to determine the cellular immune response (the amount of interferon-gamma synthesized by mouse splenocytes after stimulation with the antigen was estimated). An immunogenic composition containing 0.5 μg or 0.5 μg L1HPV16 + 200 μg Al + 1 μg MPLA is optimal both for the induction of a cellular immune response (from 300 to 1630 pg / ml interferon-gamma depending on the animal), and to induce the formation of specific antibodies (determination by enzyme immunoassay: titer of about 1/60000).
Таким образом, результаты свидетельствуют, что полученная вакцинная композиция приводит к специфической индукции гуморального и клеточного иммунного ответа.Thus, the results indicate that the resulting vaccine composition leads to a specific induction of a humoral and cellular immune response.
Claims (9)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2016144184A RU2628693C1 (en) | 2016-11-10 | 2016-11-10 | Recombinant l1hpv16 gene, recombinant pqe-l1/16 plasmid, l1hpv16 protein and their application |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2016144184A RU2628693C1 (en) | 2016-11-10 | 2016-11-10 | Recombinant l1hpv16 gene, recombinant pqe-l1/16 plasmid, l1hpv16 protein and their application |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2628693C1 true RU2628693C1 (en) | 2017-08-21 |
Family
ID=59744881
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2016144184A RU2628693C1 (en) | 2016-11-10 | 2016-11-10 | Recombinant l1hpv16 gene, recombinant pqe-l1/16 plasmid, l1hpv16 protein and their application |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2628693C1 (en) |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20020168372A1 (en) * | 1993-07-16 | 2002-11-14 | Matthias Durst | Dna sequence encoding a papillomavirus l1 protein capable of efficiently forming virus-like particles |
WO2005123762A2 (en) * | 2004-06-18 | 2005-12-29 | Indian Immunologicals Ltd | Codon-optimized hpv16 li for salmonella vaccine strains against human papillomavirus type 16 |
WO2010012780A1 (en) * | 2008-07-31 | 2010-02-04 | Glaxosmithkline Biologicals S.A. | Vaccine against hpv |
RU2014102200A (en) * | 2011-06-24 | 2015-07-27 | Мерк Шарп И Доум Корп. | VACCINE COMPOSITIONS AGAINST HUMAN PAPILLOMA VIRUS (HPV), CONTAINING ALUMINUM ADJUVANT AND METHODS FOR PRODUCING THEM |
-
2016
- 2016-11-10 RU RU2016144184A patent/RU2628693C1/en active
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20020168372A1 (en) * | 1993-07-16 | 2002-11-14 | Matthias Durst | Dna sequence encoding a papillomavirus l1 protein capable of efficiently forming virus-like particles |
WO2005123762A2 (en) * | 2004-06-18 | 2005-12-29 | Indian Immunologicals Ltd | Codon-optimized hpv16 li for salmonella vaccine strains against human papillomavirus type 16 |
WO2010012780A1 (en) * | 2008-07-31 | 2010-02-04 | Glaxosmithkline Biologicals S.A. | Vaccine against hpv |
RU2014102200A (en) * | 2011-06-24 | 2015-07-27 | Мерк Шарп И Доум Корп. | VACCINE COMPOSITIONS AGAINST HUMAN PAPILLOMA VIRUS (HPV), CONTAINING ALUMINUM ADJUVANT AND METHODS FOR PRODUCING THEM |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
CASELLA C. R. et al., Putting endotoxin to work for us: Monophosphoryl lipid A as a safe and effective vaccine adjuvant, Cellular and Molecular Life Sciences Vol. 65, No. 20, pp. 3231-3240, 2008. ERIK B LINDBLAD, Aluminium compounds for use in vaccines, Immunology and Cell Biology. Vol. 82, Issue 5, pp. 497-505, 2004. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Dadar et al. | Advances in designing and developing vaccines, drugs and therapeutic approaches to counter human papilloma virus | |
RU2206608C2 (en) | Papilloma viral vaccines | |
CN111662389A (en) | SARS-CoV-2 fusion protein and vaccine composition thereof | |
Yoon et al. | Oral administration of HPV-16 L2 displayed on Lactobacillus casei induces systematic and mucosal cross-neutralizing effects in Balb/c mice | |
US8735561B2 (en) | Virus-like particles of capsid proteins from human papillomavirus type 16/58/18/6/11 and the method for preparation and the uses thereof | |
TW201217530A (en) | Norovirus capsid and rotavirus VP6 protein for use as combined vaccine | |
JP2007054074A (en) | Papillomavirus polyprotein construct | |
JP6185932B2 (en) | VLPs containing immunogenic HPV L2 and related compositions and methods | |
Massa et al. | Antitumor activity of DNA vaccines based on the human papillomavirus-16 E7 protein genetically fused to a plant virus coat protein | |
EP4114458A1 (en) | Immunogenic compositions against severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 | |
EP1790332B1 (en) | Human papilloma virus vaccine for oral administration | |
RU2494106C2 (en) | Genes coding major capsid protein l1 of human papilloma virus, and using them | |
Motavalli Khiavi et al. | A Dual‐Type L2 11‐88 Peptide from HPV Types 16/18 Formulated in Montanide ISA 720 Induced Strong and Balanced Th1/Th2 Immune Responses, Associated with High Titers of Broad Spectrum Cross‐Reactive Antibodies in Vaccinated Mice | |
WO2011100234A2 (en) | Immunogenic hpv l2-containing vlps and related compositions, constructs, and therapeutic methods | |
RU2628693C1 (en) | Recombinant l1hpv16 gene, recombinant pqe-l1/16 plasmid, l1hpv16 protein and their application | |
CN114437236A (en) | Recombinant African swine fever virus multi-epitope fusion protein, preparation and application thereof | |
WO2006065166A1 (en) | Protein l1 and protein e7 peptide-based composition for treating and preventing a human papillomaviral infection | |
Shokri et al. | Designing of DNA vaccine based on a secretory form of major capsid protein of human papillomavirus type 18 | |
RU2546243C1 (en) | Recombinant vaccine for prevention of human papillomavirus infection and method of its preparation | |
Gholami Parizad et al. | Immune Response in Mice Immunized with Recombinant PreS2/S-C18-27 Protein from Hepatitis B Virus Compared with Commercial Vaccine | |
Parizad et al. | Comparison of Immune Response in Mice Immunized with Recombinant PreS2/S-C18-27 Protein Derived from Hepatitis B Virus with Commercial Vaccine | |
RU2509570C2 (en) | Vaccine composition applicable in hpv and hepatitis virus infections, and method for preparing it | |
Yadav | Efficacy of Mixed MS2-L2 VLPs against Six HPV Types and the Development & Evaluation of Viral Structural Proteins for Assembly into VLPs | |
Im et al. | Prevention of cervical cancer with vaccines | |
WO2008115631A2 (en) | Plant-produced compositions for treating papillomavirus infection and related methods |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PD4A | Correction of name of patent owner |