RU2628092C1 - Method for obtaining of msc-associated non-differentiated hemopoietic precursor cells with cd34+/cd133+ phenotype - Google Patents
Method for obtaining of msc-associated non-differentiated hemopoietic precursor cells with cd34+/cd133+ phenotype Download PDFInfo
- Publication number
- RU2628092C1 RU2628092C1 RU2016104419A RU2016104419A RU2628092C1 RU 2628092 C1 RU2628092 C1 RU 2628092C1 RU 2016104419 A RU2016104419 A RU 2016104419A RU 2016104419 A RU2016104419 A RU 2016104419A RU 2628092 C1 RU2628092 C1 RU 2628092C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- cells
- stromal
- mscs
- msc
- hspcs
- Prior art date
Links
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
- C12N5/0618—Cells of the nervous system
- C12N5/0623—Stem cells
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
- C12N5/0652—Cells of skeletal and connective tissues; Mesenchyme
- C12N5/0662—Stem cells
- C12N5/0665—Blood-borne mesenchymal stem cells, e.g. from umbilical cord blood
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Neurology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Neurosurgery (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Developmental Biology & Embryology (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к медицине, а именно к биотехнологии, и может быть использовано для получения недифференцированных гемопоэтических клеток-предшественников из пуповинной крови (ГСПК), для клинического использования.The invention relates to medicine, namely to biotechnology, and can be used to obtain undifferentiated hematopoietic progenitor cells from umbilical cord blood (GSPK), for clinical use.
Пуповинная кровь в настоящее время рассматривается как полноценный источник гемопоэтических стволовых и прогениторных клеток.Cord blood is currently regarded as a complete source of hematopoietic stem and progenitor cells.
Важным преимуществом, по сравнению с костным мозгом и мобилизованной периферической кровью, является возможность неинвазивного получения образцов ГСПК в достаточно большом количестве и использования клеток с меньшим соответствием по антигенам гистосовместимости, достаточная безопасность реципиента в связи с более редкими случаями возникновения реакции «трансплантат против хозяина» [Broxmeyer, 2005; Gluckman, Rocha, 2009].An important advantage, compared with bone marrow and mobilized peripheral blood, is the possibility of non-invasive production of HSPC samples in a sufficiently large number and the use of cells with less correspondence for histocompatibility antigens, sufficient safety of the recipient in connection with more rare cases of the reaction “transplant against the host” [ Broxmeyer, 2005; Gluckman, Rocha, 2009].
Однако абсолютное количество гемопоэтических стволовых клеток в пуповинной крови невелико, поэтому все больший интерес вызывает возможность их экспансии ex vivo для последующего клинического применения.However, the absolute number of hematopoietic stem cells in umbilical cord blood is small, so the possibility of their ex vivo expansion for subsequent clinical use is of increasing interest.
Обычно для экспансии ex vivo используются суспензионные монокультуры CD34+ в статическом режиме с добавлением гемопоэтиновых коктейлей (содержащих цитокины, стимулирующие гемопоэз), обеспечивающих самообновление и пролиферацию примитивных гемопоэтических предшественников [Andrade et al., 2013]. При этом требуется очень точный подбор условий культивирования и необходимо поддержание постоянной концентрации кислорода и рН среды.Typically, ex vivo expansion employs CD34 + suspension monocultures in a static mode with the addition of hematopoietic cocktails (containing cytokines that stimulate hematopoiesis) that provide self-renewal and proliferation of primitive hematopoietic precursors [Andrade et al., 2013]. This requires a very accurate selection of cultivation conditions and it is necessary to maintain a constant oxygen concentration and pH of the medium.
Для культивирования больших объемов клеточной суспензии применяют биореакторы, в которых обеспечивается постоянное перемешивание культуральной среды, поддержание постоянной концентрации кислорода и ее рН. Применение таких систем требует больших объемов культуральных сред и высокой квалификации персонала.To cultivate large volumes of cell suspension, bioreactors are used in which constant mixing of the culture medium is ensured, maintaining a constant concentration of oxygen and its pH. The use of such systems requires large volumes of cultural environments and highly qualified personnel.
В настоящее время ведутся разработки использования трехмерных матриц с применением пористых биоматериалов Cytomatrix с целью ex vivo экспансии ГСПК [Ehring et al., 2003]. Однако использование такого поддерживающего слоя является дорогостоящим и трудоемким.Currently, the development of the use of three-dimensional matrices using porous Cytomatrix biomaterials with the aim of ex vivo expansion of HSPC [Ehring et al., 2003] is underway. However, the use of such a support layer is expensive and time consuming.
Одним из направлений экспансии ex vivo ГСПК является сокультивирование со стромальными компонентами, в частности, с мультипотентными мезенхимальными клетками (МСК). Преимущество использования фидер-содержащих систем для поддержания малодифференцированных гемопоэтических предшественников в настоящее время не вызывает сомнения.One of the directions of ex vivo expansion of HSPC is co-cultivation with stromal components, in particular, with multipotent mesenchymal cells (MSCs). The advantage of using feeder-containing systems to maintain poorly differentiated hematopoietic precursors is currently not in doubt.
Еще в классических работах [Dexter et al., 1977, 1982] на подслое из смешанной популяции клеток костного мозга было продемонстрировано длительное, в течение нескольких месяцев, поддержание кроветворения. Кроме того, для успешной амплификации необходим непосредственный контакт гемопоэтических и стромальных клеток, что было убедительно показано Silva et al., [2010], когда прирост малодифференцированных предшественников в трансвеллах был практически в 10 раз меньшим, чем при прямом взаимодействии. Использование стромального подслоя позволяет, в какой-то мере, имитировать структурно-функциональные особенности гемопоэтической ниши. В частности, в сокультуре с клетками стромы гемопоэтические клетки могут занимать различные компартменты.Even in classical works [Dexter et al., 1977, 1982], a prolonged, for several months, maintenance of hematopoiesis was demonstrated on the sublayer of a mixed population of bone marrow cells. In addition, for successful amplification, direct contact of hematopoietic and stromal cells is necessary, which was convincingly shown by Silva et al., [2010], when the growth of poorly differentiated precursors in transwells was almost 10 times less than with direct interaction. The use of the stromal sublayer allows, to some extent, to imitate the structural and functional features of the hematopoietic niche. In particular, in co-culture with stromal cells, hematopoietic cells can occupy various compartments.
В так называемых «Декстеровских» культурах из стромальных клеток костного мозга, которые были упомянуты выше, была описана локализация гемопоэтических клеток в 3-х областях относительно стромального подслоя.In the so-called "Dexter" cultures from bone marrow stromal cells, which were mentioned above, the localization of hematopoietic cells in 3 regions relative to the stromal sublayer was described.
Во-первых - это клетки, адгезировавшие к строме при инокуляции гемопоэтической суспензии, во-вторых, клетки переходящие в суспензию при делении прикрепившихся, и, в-третьих, клетки, трансмигрирующие под стромальный подслой [Dexter et al., 1977; Wagner et al., 2007; Jing et al., 2010; Andreeva et al., 2015]. CD34+ гемопоэтические предшественники в трех описанных компартментах на подслое из мезенхимальных стромальных клеток (МСК) костного мозга были фенотипированы, и установлено, что в суспензии находятся наиболее активно пролиферирующие клетки, тогда как предшественники, ассоциированные со стромой, делятся медленнее и обогащены недифференцированными гемопоэтическими клетками с фенотипом CD34+/CD38- [Wagner et al., 2007; Jing et al., 2010].Firstly, these are cells that adhere to the stroma upon inoculation of a hematopoietic suspension, secondly, cells that become suspension upon division of attached cells, and thirdly, cells transmigrating under the stromal sublayer [Dexter et al., 1977; Wagner et al., 2007; Jing et al., 2010; Andreeva et al., 2015]. CD34 + hematopoietic precursors in the three described compartments on the sublayer of mesenchymal stromal cells (MSCs) of the bone marrow were phenotyped, and it was found that the most proliferating cells were found in suspension, while the precursors associated with the stroma divide more slowly and are enriched in undifferentiated hematopoietic cells with phenotype CD34 + / CD38 - [Wagner et al., 2007; Jing et al., 2010].
Таким образом, использование стромального подслоя из мезехимальных стромальных клеток костного мозга позволяет получать популяции гемопоэтических клеток с разной степенью коммитированности.Thus, the use of the stromal sublayer from mesochemical stromal cells of the bone marrow makes it possible to obtain populations of hematopoietic cells with varying degrees of commitment.
К сожалению, в различных протоколах, использующих сокультуру МСК/ГСПК, только вновь образующиеся суспензионные ГСПК рассматриваются в качестве целевых клеток для экспансии, хотя, как было сказано выше, это популяция содержит больше коммитированых предшественников, чем строма-ассоциированные клетки.Unfortunately, in various protocols using the MSC / HSPC co-culture, only newly formed suspension HSPCs are considered as target cells for expansion, although, as mentioned above, this population contains more committed precursors than stroma-associated cells.
Рутинным этапом при выделении популяции и экспансии ГСПК является их сортировка по CD34 антигену [Brandt et al., 1990]. В популяции CD34+ ГСПК присутствуют клетки, различающиеся по потенциям к дифференцировке: часть из них может коммитироваться в несколько гемопоэтических ростков, а у других эта способность ограничена [Perey et al., 1998; Dykstra et al., 2007]. К сожалению, при иммуноселекции CD34+ клеток могут быть потеряны наиболее ранние ГСПК с фенотипом CD34- [Zanjani et al., 2003]. Такие клетки экспрессируют антиген CD133, обладая свойствами стволовых кроветворных клеток [Gallacher et al., 2000; Rutella et al., 2003]. По наличию/отсутствию CD34 и CD133 антигеновThe routine step in isolating a population and expanding HSPCs is to sort them by CD34 antigen [Brandt et al., 1990]. The CD34 + HSPC population contains cells that differ in their potentials for differentiation: some of them can be committed to several hematopoietic sprouts, while in others this ability is limited [Perey et al., 1998; Dykstra et al., 2007]. Unfortunately, the immunological selection of CD34 + cells may lose the earliest HSPCs with the CD34 phenotype - [Zanjani et al., 2003]. Such cells express the CD133 antigen, possessing the properties of hematopoietic stem cells [Gallacher et al., 2000; Rutella et al., 2003]. By the presence / absence of CD34 and CD133 antigens
недифференцированные гемопоэтические предшественники разделяют на ранние (CD34-/CD133+), средние (CD34+/CD133+) и поздние CD34+/CD133-) [McGuckin et al., 2003].undifferentiated hematopoietic precursors are divided into early (CD34 - / CD133 + ), medium (CD34 + / CD133 + ) and late CD34 + / CD133 - ) [McGuckin et al., 2003].
Вне зависимости от того, какие клетки взяты для экспансии - мононуклеары из костного мозга, пуповинной или мобилизованной периферической крови, или CD34+ популяции, в ходе ex vivo экспансии вновь образующиеся ГСПК утрачивают недифференцированный фенотип в пользу коммитированных предшественников. Это снижает их ценность, как клеточного материала для восстановления кроветворения.Regardless of which cells were taken for expansion - mononuclear cells from bone marrow, umbilical cord or mobilized peripheral blood, or a CD34 + population, during ex vivo expansion, newly formed HSPCs lose an undifferentiated phenotype in favor of committed predecessors. This reduces their value as cellular material for the restoration of blood formation.
Особый интерес для исследователей представляют клетки, способные длительно восстанавливать кроветворение при трансплантации, в отличие от более коммитированных предшественников, обеспечивающих только короткосрочные эффекты.Of particular interest to researchers are cells capable of long-term restoration of hematopoiesis during transplantation, in contrast to more committed precursors that provide only short-term effects.
Известно, что среди ГСПК присутствуют клетки, способные формировать «области булыжной мостовой» (КООБ или CAFC (Cobblestone Area Forming Cell)) под МСК в сокультуре. Для выявления таких клеток используются тесты in vitro, основанные на выявлении частоты КООБ или их коммитированных потомков (клеток, инициирующих длительные культуры (КИДК) или LTC-IC (от слов Long-term Culture Initiating Cell)) методом лимитирующих разведений [van Os et al., 2008].It is known that among HSPCs there are cells capable of forming “cobblestone bridge areas” (COOB or CAFC (Cobblestone Area Forming Cell)) under MSC in co-culture. In vitro tests are used to identify such cells, based on the detection of the frequency of COOB or their committed offspring (cells initiating long-term cultures (CIDC) or LTC-IC (from the words Long-term Culture Initiating Cell)) by the method of limiting dilutions [van Os et al ., 2008].
Показано, что CD34+/CD133+ клетки ПК существенно обогащены КИДК, в то время как среди CD34+/CD133- КИДК значительно меньше [De Wynter et al., 1998]. При этом известно, что большая часть (до 80%) гемопоэтических клеток пкМНК представлена поздними предшественниками с фенотипом CD34+/CD133- и, в меньшей степени, клетками с экспрессией ранних маркеров.It has been shown that CD34 + / CD133 + PS cells are significantly enriched in KIDK, while among CD34 + / CD133 - KIDK is significantly less [De Wynter et al., 1998]. Moreover, it is known that the majority (up to 80%) of hematopoietic cells of pcMNAs are represented by late predecessors with the CD34 + / CD133 phenotype - and, to a lesser extent, cells with the expression of early markers.
В связи с этим задача разработки подходов для более эффективной и физиологически обоснованной экспансии гемопоэтических клеток, по-прежнему остается одной из наиболее значимых в области клеточнойIn this regard, the task of developing approaches for more efficient and physiologically sound expansion of hematopoietic cells remains one of the most significant in the field of cell
терапии и регенеративной медицины.therapy and regenerative medicine.
Наиболее близким аналогом изобретения является способ экспансии мононуклеарных клеток пуповинной крови (МНК ПК) ex vivo в присутствии мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток (МСК) человека (RU 2525143, 10.08.2014 г.). Данный способ включает культивирование МСК из стромально-васкулярной фракции жировой ткани до достижения монослоя при концентрации O2 в среде 5%, добавление суспензии МНК ПК к монослою МСК, культивирование в течение 72 часов при концентрации O2 в среде 5%, отбор неприкрепленных МНК ПК и замену среды, продолжение культивирования МСК с прикрепившимися к ним МНК ПК в течение 7 дней при концентрации O2 в среде 5%.The closest analogue of the invention is a method of expansion of mononuclear cells of umbilical cord blood (MNC PK) ex vivo in the presence of multipotent mesenchymal stromal cells (MSCs) of a person (RU 2525143, 08/10/2014). This method includes the cultivation of MSCs from the stromal-vascular fraction of adipose tissue to achieve a monolayer at a concentration of O 2 in a medium of 5%, the addition of a suspension of MNCs to the monolayer of MSCs, cultivation for 72 hours at a concentration of O 2 in a medium of 5%, selection of loose MSCs and medium replacement, continued cultivation of MSCs with PC MNCs attached to them for 7 days at a concentration of O 2 in the medium of 5%.
Показано, что МСК из жировой ткани могут эффективно поддерживать жизнеспособность гемопоэтических предшественников и сокультивирование МНК и МСК ex vivo, обогащая популяцию мононуклеаров из пуповинной крови гемопоэтическими предшественниками.It was shown that MSCs from adipose tissue can effectively support the viability of hematopoietic precursors and ex vivo co-cultivation of MNCs and MSCs, enriching the population of umbilical cord blood mononuclear cells with hematopoietic precursors.
Недостатком данного метода является получение клеток ГСПК разной степени коммитированности. Кроме того, в данном методе экспансии показано обогащение популяции клетками-предшественниками, положительными по каждому отдельному маркеру CD34+ и CD133+, при этом такая позитивная сортировка CD34+ и CD133+ клеток включает популяцию клеток с фенотипами более поздней дифференцировки.The disadvantage of this method is the production of HSPC cells of varying degrees of commitment. In addition, this method of expansion shows enrichment of the population with progenitor cells positive for each individual marker CD34 + and CD133 + , while such a positive sorting of CD34 + and CD133 + cells includes a population of cells with phenotypes of later differentiation.
Поэтому задачей изобретения была разработка технологии, позволяющей не только увеличить кратность числа гемопоэтических предшественников в эксперименте in vitro, а также получить популяцию, обогащенную недифференцированными гемопоэтическими предшественниками пуповинной крови с комплексным фенотипом CD34+/CD133+, соответствующим именно ранним предшественникам кроветворения.Therefore, the objective of the invention was to develop a technology that allows not only to increase the number of hematopoietic precursors in an in vitro experiment, but also to obtain a population enriched in undifferentiated hematopoietic umbilical cord blood precursors with a complex phenotype CD34 + / CD133 + , which corresponds specifically to early hematopoietic precursors.
Для получения МСК-ассоциированных недифференцированныхTo obtain MSC-associated undifferentiated
гемопоэтических клеток-предшественников с фенотипом CD34+/CD133+ осуществляли следующие этапы:the hematopoietic progenitor cells with the CD34 + / CD133 + phenotype carried out the following steps:
- проводили подготовку стромального подслоя из МСК из стромально-васкулярной фракции жировой ткани, постоянно культивируя при концентрации O2 в среде 5%,- preparing the stromal sublayer from MSCs from the stromal-vascular fraction of adipose tissue, constantly cultivating at a concentration of O 2 in the medium of 5%,
- добавляли мононуклеарную фракцию пуповинной крови (МНК ПК) к монослою МСК и совместно культивировали 72 часа,- added the mononuclear fraction of umbilical cord blood (MNC PK) to the MSC monolayer and co-cultured for 72 hours,
- осуществляли селекцию из МНК ПК недифференцированных гемопоэтических предшественников за счет адгезии к МСК при 20% O2,- selection of undifferentiated hematopoietic precursors from MNC PC was performed due to adhesion to MSCs at 20% O 2 ,
- культивировали МСК с прикрепившимися к ним МНК ПК в течение 96 часов при концентрации O2 в среде 20% с образованием строма-ассоциированной популяции ГСПК с фенотипом CD34+/CD133+.- MSCs were cultured with PC MNCs attached to them for 96 hours at an O 2 concentration of 20% with the formation of a stroma-associated population of HSPCs with the CD34 + / CD133 + phenotype.
Техническим результатом предлагаемого способа является получение популяции ГСПК, более чем на 90% представленной клетками-предшественниками с комплексным фенотипом CD34+/CD133+, ассоциированными со стромальным подслоем из мультипотентных стромальных клеток (МСК) жировой ткани и образующими области булыжника (КООБ). The technical result of the proposed method is to obtain a population of HSPCs that is more than 90% represented by progenitor cells with the complex CD34 + / CD133 + phenotype associated with the stromal sublayer of multipotent stromal cells (MSCs) of adipose tissue and forming cobblestone areas (COOB).
Кроме того, получаемые после сокультивирования клеточные препараты не нуждаются в отделении МСК, поскольку аллогенные МСК способствуют приживлению гемопоэтических трансплантатов.In addition, cell preparations obtained after co-cultivation do not need to separate MSCs, since allogeneic MSCs contribute to the engraftment of hematopoietic grafts.
Этот технический результат достигается тем, что в способе получения популяции недифференцированных гемопоэтических предшественников пуповинной крови (ГСПК), содержащих ГСПК с фенотипом CD34+/CD133+, ассоциированных со стромальным подслоем из мультипотентных стромальных клеток жировой ткани (МСК) включающих подготовку стромального подслоя из МСК из стромально-васкулярной фракции жировой ткани, постоянно культивируя при концентрации O2 в среде 5%, добавление мононуклеарной фракции пуповинной крови (МНК This technical result is achieved in that in a method for producing a population of undifferentiated hematopoietic umbilical cord blood precursors (HSPCs) containing HSPCs with the CD34 + / CD133 + phenotype associated with the stromal sublayer from multipotent stromal adipose tissue cells (MSCs) including the preparation of a stromal sublayer from MSCs from stromal-vascular fraction of adipose tissue, constantly culturing at a concentration of O 2 in a medium of 5%, the addition of a mononuclear fraction of umbilical cord blood (MNC
ПК) к монослою МСК, их совместное культивирование 72 часа с дальнейшей селекцией из МНК ПК недифференцированных гемопоэтических предшественников за счет адгезии к МСК при 20% O2, продолжение культивирования МСК с прикрепившимися к ним МНК ПК в течение 96 часов при концентрации O2 в среде 20% с образованием популяции ГСПК, включающих ГСПК с фенотипом CD34+/CD133+ ассоциированных со стромальным подслоем из МСК жировой ткани.PC) to the MSC monolayer, their co-cultivation for 72 hours with further selection of undifferentiated hematopoietic precursors from MNC PCs due to adhesion to MSCs at 20% O 2 , continued cultivation of MSCs with PC MNCs attached to them for 96 hours at a concentration of O 2 in the medium 20% with the formation of a population of HSPCs, including HSPCs with the phenotype CD34 + / CD133 + associated with the stromal sublayer from MSCs of adipose tissue.
Краткое описание чертежей.A brief description of the drawings.
Фигура 1 - Схема получения ГСПК после сокультивирования МНК ПК с МСК.Figure 1 - Scheme for the production of HSPC after co-cultivation of MNC PC with MSC.
Фигура 2 - Суспензия ГСПК в сокультуре с МСК из жировой ткани после 7 суток ex vivo экспансии.Figure 2 - Suspension of HSPC in co-culture with MSCs from adipose tissue after 7 days of ex vivo expansion.
Фигура 3 - МСК-ассоциированные ГСПК на поверхности МСК и под стромальным подслоем - «клетки образующие области булыжной мостовой - (КООБ)» в сокультуре с МСК из жировой ткани после 7 суток ex vivo экспансии.Figure 3 - MSC-associated HSPCs on the surface of MSCs and under the stromal sublayer - "cells forming the cobblestone bridge area - (COOB)" in co-culture with MSCs from adipose tissue after 7 days of ex vivo expansion.
Фигура 4 - Суспензионные ГСПК при анализе на проточном цитофлуориметре - распределение по размеру и гранулярности.Figure 4 - Suspension GSPK when analyzing on a flow cytometer, the distribution of size and granularity.
Фигура 5 - Распределение суспензионных ГСПК при анализе на проточном цитофлуориметре - гейтирование популяции ГСПК по CD45 антигену.Figure 5 - Distribution of suspension HSPCs when analyzed on a flow cytometer — gating of the HSPC population by CD45 antigen.
Фигура 6 - Распределение суспензионных ГСПК при анализе на проточном цитофлуориметре - CD34+ и CD133+ ГСПК среди CD45+ клетокFigure 6 - Distribution of suspension HSPCs when analyzed on a flow cytometer - CD34 + and CD133 + HSPC among CD45 + cells
Фигура 7 - МСК-ассоциированные ГСПК при анализе на проточном цитофлуориметре - распределение по размеру и гранулярности.Figure 7 - MSC-associated HSPC when analyzed on a flow cytometer - distribution of size and granularity.
Фигура 8 - Распределение МСК-ассоциированных ГСПК при анализе на проточном цитофлуориметре. Гейтирование популяции МСК и ГСПК по CD45 антигену.Figure 8 - Distribution of MSC-associated HSPCs when analyzed on a flow cytometer. Gating populations of MSCs and HSPCs by CD45 antigen.
Фигура 9 - Распределение МСК-ассоциированных ГСПК при анализе на проточном цитофлуориметре - CD34+ и CD133+ ГСПК среди CD45+ клеток.Figure 9 - Distribution of MSC-associated HSPCs by analysis on a flow cytometer - CD34 + and CD133 + HSPC among CD45 + cells.
Подробное описание изобретения.DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION
Выделение мононуклеарной фракции пуповинной крови (МНК ПК).Isolation of the mononuclear fraction of cord blood (MNC PC).
Заготовку ПК проводили с письменного информированного согласия обследованных здоровых рожениц в отделениях Научного центра акушерства, гинекологии и перинатологии им. акад. В.И. Кулакова. Кровь собирали в мешки донорской системы с антикоагулянтом ЦФДА-1 и обрабатывали в течение 24 часов. Получение «концентрата ядросодержащих клеток» проводили методом двойного центрифугирования в соответствии с зарегистрированной медицинской технологией (ФС2009/387 от 23.11.2009 г.). После седиментации эритроцитов и удаления избытка плазмы фракцию ядросодержащих клеток ПК ресуспендировали в аутологичной плазме с добавлением 10% диметилсульфоксида (Sigma, США) и 1% Декстрана-40, расфасовывали в криопробирки и подвергали программному замораживанию до конечной температуры -90°С в соответствии со Стандартными операционными процедурами Банка стволовых клеток. В день эксперимента клетки размораживали на водяной бане при +37°С и отмывали от криопротектора в избытке среды культивирования (см. ниже). После оценки жизнеспособности в тесте с трипановым синим концентрацию клеток доводили до 1.5-2.5×106 клеток/мл и использовали в течение 30 минут.The procurement of PCs was carried out with written informed consent of the examined healthy women in labor at the departments of the Scientific Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology named after Acad. IN AND. Kulakova. Blood was collected in bags of the donor system with the anticoagulant TSFDA-1 and processed for 24 hours. The preparation of the “nucleated cell concentrate” was carried out by the double centrifugation method in accordance with the registered medical technology (FS2009 / 387 of 11/23/2009). After erythrocyte sedimentation and removal of excess plasma, the fraction of nucleated PC cells was resuspended in autologous plasma with the addition of 10% dimethyl sulfoxide (Sigma, USA) and 1% Dextran-40, packaged in cryovials, and subjected to program freezing to a final temperature of -90 ° C in accordance with Standard stem cell bank operating procedures. On the day of the experiment, the cells were thawed in a water bath at + 37 ° C and washed from the cryoprotectant in excess of the culture medium (see below). After assessing viability in the trypan blue test, the cell concentration was adjusted to 1.5-2.5 × 10 6 cells / ml and used for 30 minutes.
Выделение и культивирование МСКIsolation and cultivation of MSCs
Для получения МСК использовали стромально-васкулярную фракцию жировой ткани человека (жтМСК). Клетки выделяли по стандартной методике и культивировали жтМСК постоянно при 5% O2 в мультигазовом инкубаторе (Sanyo, Япония) в среде α-МЕМ (Gibco, США) с добавлением 10% инактивированной фетальной бычьей сыворотки (Hyclone, США), 100 ед./мл пенициллина и 100 мкг/мл стрептомицина (Биолот, Россия). ПоTo obtain MSCs, the stromal-vascular fraction of human adipose tissue (zhMSC) was used. Cells were isolated according to the standard method and cultured with zMTSCs continuously at 5% O 2 in a multigas incubator (Sanyo, Japan) in α-MEM medium (Gibco, USA) with the addition of 10% inactivated fetal bovine serum (Hyclone, USA), 100 units / ml of penicillin and 100 μg / ml of streptomycin (Biolot, Russia). By
достижении 70-80% конфлуентности клетки пересевали. Для экспериментов использовали МСК 2-4 пассажей.reaching 70-80% confluency, the cells were reseeded. For experiments used MSC 2-4 passages.
Получение жтМСК-ассоциированных ГСПК ПКObtaining zhtMSK-associated GSPK PC
Суспензию МНК ПК (10x106) в 5 мл среды добавляли к предмонослою МСК в чашках Петри диаметром 60 мм. Через 72 часа неадгезированные клетки отбирали и проводили замену среды культивирования на свежую. Сокультивирование приводило к адгезии части МНК ПК. Эти клетки при дальнейшем культивировании в течение 96 часов давали начало новой популяции суспензионных ГСПК, существенно обогащенных CD34+ недифференцированными гемопоэтическими предшественниками. При этом часть ГСПК оставались ассоциированными с МСК, формируя два компартмента - на поверхности и под монослоем МСК. По окончании сокультивирования вновь образованную суспензию ГСПК отбирали, а оставшийся комплекс МСК/ГСПК трипсинизировали. Затем из суспензионных и МСК-ассоциированных ГСПК готовили пробы для характеристики иммунофенотипа и жизнеспособности с помощью проточной цитофлуориметрии. Схема получения ГСПК после сокультивирования МНК ПК с МСК показана на фигуре 1.A suspension of PK MNC (10x10 6 ) in 5 ml of medium was added to the MSC premonolayer in Petri dishes 60 mm in diameter. After 72 hours, non-adherent cells were selected and the culture medium was replaced with fresh. Co-cultivation led to adhesion of a portion of the MNCs of PK. These cells, upon further cultivation for 96 hours, gave rise to a new population of suspension HSPCs, substantially enriched with CD34 + undifferentiated hematopoietic precursors. At the same time, part of the GSPC remained associated with MSCs, forming two compartments — on the surface and under the monolayer of MSCs. At the end of the co-cultivation, the newly formed suspension of HSPC was selected, and the remaining MSC / HSPC complex was trypsinized. Then, samples were prepared from suspension and MSC-associated HSPCs to characterize the immunophenotype and viability using flow cytometry. The scheme for obtaining HSPC after co-cultivation of MNC PK with MSCs is shown in figure 1.
Иммунофенотипирование ГСПК проводили среди исходных ядросодержащих клеток ПК, адгезированных ГСПК ПК и популяции клеток, вновь образующихся при дальнейшем культивировании прикрепленных клеток с помощью проточной цитометрии (Accuri С6, BD Biosciences, США). В работе использовали ФИТЦ-, фикоэритрин- и PerCP-конъюгированные антитела к CD45, CD34, CD133 а также FITC-меченые антитела к антигену МСК - CD90 (BD Pharmingen, США) в концентрации, рекомендованной изготовителем. GSPK immunophenotyping was performed among the initial nucleated cells of PCs adhered to HSPC PCs and a population of cells newly formed upon further cultivation of attached cells by flow cytometry (Accuri C6, BD Biosciences, USA). We used FITC, phycoerythrin, and PerCP conjugated antibodies to CD45, CD34, CD133, as well as FITC-labeled antibodies to MSC antigen - CD90 (BD Pharmingen, USA) at the concentration recommended by the manufacturer.
Статистика . Статистический анализ проводили с использованием пакета программ «Microsoft Excel 2000» и «Statistica 7.0» и критерия Манна-Уитни. Различия считали достоверными при р<0.05. Statistics . Statistical analysis was performed using the Microsoft Excel 2000 and Statistica 7.0 software package and the Mann-Whitney test. Differences were considered significant at p <0.05.
Пример 1.Example 1
К предмонослою жтМСК (70-80% конфлюэнтности) культивирование которых проводили при 5% O2 добавляли суспензию МНК ПК в количестве 10×106.To the pre-monolayer of zhMSC (70-80% confluency) cultivation of which was carried out at 5% O 2, a suspension of MNC PK was added in an amount of 10 × 10 6 .
Сокультивирование мононуклеаров пуповинной крови и стромально-васкулярной фракции жировой ткани человека проводили при концентрации O2 в среде 20%. Неадгезированные в течение 72 часов МНК ПК удаляли и проводили дальнейшее культивирование оставшихся клеток в течение 96 часов при концентрации O2 в среде 20% с образованием строма-ассоциированной популяции ГСПК.The co-cultivation of cord blood mononuclear cells and the stromal-vascular fraction of human adipose tissue was carried out at a concentration of O 2 in the medium of 20%. PC MNCs that were not adhered for 72 hours were removed and the remaining cells were further cultured for 96 hours at an O 2 concentration of 20% with the formation of a stroma-associated population of HSPCs.
В ходе работы было показано, что после 7 суток ex vivo экспансии в сокультуре жтМСК/ГСПК можно обнаружить 2 популяции гемопоэтических клеток. На фигуре 2 приведено репрезентативное изображение суспензии ГСПК, полученное при микроскопии методом фазового контраста, масштабный отрезок соответствует 100 мкм. На фигуре 3 красными стрелками показаны МСК-ассоциированные ГСПК на поверхности МСК, желтыми стрелками - МСК-ассоциированные ГСПК под стромальным подслоем - «клетки образующие области булыжной мостовой - (КООБ)» в сокультуре с МСК из жировой ткани после 7 суток ex vivo экспансии (фазовый контраст, масштабный отрезок - 100 мкм),In the course of the work, it was shown that after 7 days of ex vivo expansion in the co-culture of zhMSC / HSPC, 2 populations of hematopoietic cells can be detected. The figure 2 shows a representative image of a suspension of HSPC obtained by microscopy by phase contrast, the scale segment corresponds to 100 μm. In figure 3, red arrows show MSC-associated HSPCs on the surface of MSCs, yellow arrows show MSC-associated HSCCs under the stromal sublayer — “cells forming cobblestone pavement regions - (COOB)” in co-culture with MSCs from adipose tissue after 7 days of ex vivo expansion ( phase contrast, scale segment - 100 microns),
суспензионные ГСПК и строма-ассоциированные ГСПК, куда были отнесены как клетки, находящиеся на поверхности МСК, так и клетки, образующие области булыжной мостовой под стромальным слоем (фигура 3).suspension HSPCs and stroma-associated HSPCs, which included both cells located on the surface of MSCs and cells forming cobblestone pavement areas under the stromal layer (Figure 3).
Жизнеспособность ГСПК в обеих популяциях согласно тесту с трипановым синим составляла более 90%.The viability of HSPC in both populations according to the trypan blue test was more than 90%.
В обеих популяциях было определено соотношение ранних, средних и поздних недифференцированных гемопоэтических предшественников.In both populations, the ratio of early, middle and late undifferentiated hematopoietic precursors was determined.
На фигуре 4 приведена репрезентативная гистограмма распределения суспензионных ГСПК по размеру и гранулярности при анализе на проточном цитофлуориметре. На точечной диаграмме, характеризующей ГСПК по размеру и структуре, можно было видеть присутствие двух субпопуляций разного размера. Клетки меньшего размера образовывали плотное облако, характерное для лимфоцитарно-моноцитарного гейта. Во второй субпопуляции клетки были крупнее с более гранулярной цитоплазмой. Количество крупных клеток было в среднем в 1, 5 раза больше, чем мелких (фигура 4). На фигуре 6 показано распределение суспензионных ГСПК при анализе на проточном цитофлуориметре - гейтирование популяции ГСПК по наличию CD45 антигена. На фигуре 7 приведено репрезентативное распределение клеток несущих CD34, CD133 и оба антигена сразу среди CD45+ ГСПК (крупные клетки). В пробах МСК-ассоциированных ГСПК, использованных для цитофлуориметрического анализа, присутствовали как ГСПК, так и МСК.The figure 4 shows a representative histogram of the distribution of suspension HSPC in size and granularity when analyzed on a flow cytometer. In the scatter plot characterizing HSPC in size and structure, one could see the presence of two subpopulations of different sizes. Smaller cells formed a dense cloud characteristic of a lymphocytic-monocytic gate. In the second subpopulation, the cells were larger with more granular cytoplasm. The number of large cells was on average 1.5 times more than small (figure 4). Figure 6 shows the distribution of suspension HSPCs when analyzed on a flow cytometer — gating of the HSPC population by the presence of CD45 antigen. The figure 7 shows a representative distribution of cells bearing CD34, CD133 and both antigens immediately among CD45 + HSPC (large cells). In samples of MSC-associated HSPCs used for cytofluorimetric analysis, both HSPC and MSC were present.
Репрезентативная диаграмма распределения МСК-ассоциированныхГСПК при анализе на проточном цитофлуориметре по размеру и гранулярности приведена на фигуре 7. Анализ по размеру/структуре не позволил выявить четко различимых субпопуляций. Также, как и для суспензии ГСПК, было проведено гейтирование популяции МСК и ГСПК по CD45 антигену, как показано на фигуре 8, после чего были выявлены CD34+ и CD133+ ГСПК среди CD45+ клеток, репрезентативное распределение которых показано на фигуре 9. Практически все CD45+ клетки положительно окрашивались антителами против CD34 и CD133 антигенов некоммитированных гемопоэтических предшественников.A representative distribution chart of MSC-associated HSPCs when analyzed on a flow cytometer in size and granularity is shown in Figure 7. Size / structure analysis did not reveal clearly distinguishable subpopulations. Also, as for the HSPC suspension, a population of MSCs and HSPCs was gated by the CD45 antigen, as shown in Figure 8, after which CD34 + and CD133 + HSPCs were detected among CD45 + cells, a representative distribution of which is shown in Figure 9. Almost all CD45 + cells were positively stained with antibodies against CD34 and CD133 antigens of uncommitted hematopoietic precursors.
В настоящей работе мы впервые проанализировали соотношение недиференцированных ГСПК разной степени зрелости после ex vivo экспансии с использованием МСК из жировой ткани, культивирование которых было проведено в условия «физиологической» гипоксии (5% O2).In this work, we first analyzed the ratio of undifferentiated HSPCs of varying degrees of maturity after ex vivo expansion using MSCs from adipose tissue, cultivation of which was carried out under conditions of “physiological” hypoxia (5% O 2 ).
В таблице 1 представлены количественные данные по содержанию ГСПК, относящихся к ранним, средним и поздним недифференцированным предшественникам.Table 1 presents quantitative data on the content of HSPCs related to early, middle and late undifferentiated precursors.
Как видно из представленной таблицы 1 менее половины суспензионных CD45+ клеток несли антигены примитивных ГСПК. Среди них было около 20% ранних (CD34-/CD133+) и 30% средних (CD34+/CD133+) предшественников. Практически все CD45+ ГСПК, ассоциированные с МСК, были представлены примитивными гемопоэтическими предшественниками с фенотипом средних предшественников CD34+/CD133+ (более 90%). В обеих популяциях практически не было поздних CD34+/CD133- ГСПК.As can be seen from table 1, less than half of the suspension CD45 + cells carried antigens of primitive HSPCs. Among them were about 20% of early (CD34 - / CD133 + ) and 30% of medium (CD34 + / CD133 + ) predecessors. Almost all CD45 + HSPCs associated with MSCs were represented by primitive hematopoietic precursors with the phenotype of medium precursors CD34 + / CD133 + (more than 90%). In both populations, there was practically no late CD34 + / CD133 - HSPK.
Эффективность предложенного способа, позволяющего культивировать ГСПК, способствует пролиферации гемопоэтических предшественников с фенотипом CD34+/CD133+ без их дальнейшей дифференцировки в короткие сроки (7 суток).The effectiveness of the proposed method, allowing the cultivation of HSPC, promotes the proliferation of hematopoietic precursors with the phenotype CD34 + / CD133 + without their further differentiation in a short time (7 days).
В нашей работе среди CD34+/CD133+ ГСПК, ассоциированных с МСК, большая часть была представлена именно КООБ, что подтверждено микроскопическим анализом (фигура 3), выявившим КООБ под МСК, а также данными проточной цитофлуориметрии о присутствии крупных CD34+/CD133+ клеток в общей популяции МСК-ассоциированных ГСПК. Мы обнаружили, что ГСПК в сокультуре с жтМСК занимают те же компартменты относительно стромального слоя, что и в случае с МСК из костного мозга.In our work, among the CD34 + / CD133 + HSPCs associated with MSCs, the majority were represented by COOB, which was confirmed by microscopic analysis (Figure 3), which revealed COOB under MSCs, as well as flow cytofluorimetry data on the presence of large CD34 + / CD133 + cells in the general population of MSC-associated HSPCs. We found that HSPCs in co-culture with zhMSCs occupy the same compartments with respect to the stromal layer as in the case of bone marrow-derived MSCs.
Поскольку время в сокультуре, за которое мы получили эти клетки, составило 168 часов (7 суток), то можно предположить, что в иерархии КООБ описанные клетки относятся к КООБ-7, способные коммитироваться в мульти- и бипотентные КОЕ: КОЕ-ГЭММ, КОЕ-ГМ, БОЕ-Э in vitro, а также КОЕ-С in vivo [de Haan and van Zant, 1997].Since the time in the co-culture for which we obtained these cells was 168 hours (7 days), it can be assumed that in the cohort hierarchy the described cells belong to cohob-7, capable of committing to multi- and bipotent CFUs: CFU-HEMM, CFU GM, PFU-E in vitro, as well as CFU-C in vivo [de Haan and van Zant, 1997].
Таким образом, нами предложен эффективный метод получения и увеличения количества недифференцированных ГСПК с комплексным фенотипом CD34+/CD133+, ассоциированных со стромальным подслоем изThus, we have proposed an effective method for obtaining and increasing the number of undifferentiated HSPCs with the complex phenotype CD34 + / CD133 + associated with the stromal sublayer of
мультипотентных стромальных клеток (МСК) жировой ткани, при этом популяция получаемых клеток более чем на 90% представлена гемопоэтическими прогениторами с фенотипом CD34+/CD133+ и с формированием клеток, образующих области булыжника (КООБ), имеющих фенотип - примитивных предшественников.multipotent stromal cells (MSCs) of adipose tissue, while the population of the resulting cells is more than 90% represented by hematopoietic progenitors with the CD34 + / CD133 + phenotype and with the formation of cells forming cobblestone regions (COOB) with the phenotype of primitive predecessors.
Список литературыBibliography
- Broxmeyer HE. Biology of cord blood cells and future prospects for enhanced clinical benefit. Cytotherapy. 2005. - 7(3): 209-218.- Broxmeyer HE. Biology of cord blood cells and future prospects for enhanced clinical benefit. Cytotherapy. 2005 .-- 7 (3): 209-218.
- Gluckman E, Ruggeri A, Rocha V, et al. Family-directed umbilical cord blood banking. Haematologica. 2011. 961: 1700-1707.- Gluckman E, Ruggeri A, Rocha V, et al. Family-directed umbilical cord blood banking. Haematologica. 2011.961: 1700-1707.
- Andrade PZ, Santos FD, Cabral JM, da Silva CL. Stem cell bioengineering strategies to widen the therapeutic applications of haematopoietic stem/progenitor cells from umbilical cord blood. J Tissue Eng Regen. 2015. 9:988-1003.- Andrade PZ, Santos FD, Cabral JM, da Silva CL. Stem cell bioengineering strategies to widen the therapeutic applications of haematopoietic stem / progenitor cells from umbilical cord blood. J Tissue Eng Regen. 2015.9: 988-1003.
- Ehring B, Biber K, Upton TM, et al. Expansion of HPCs from cord blood in a novel 3D matrix. Cytotherapy. 2003; 5(6): 490-9.- Ehring B, Biber K, Upton TM, et al. Expansion of HPCs from cord blood in a novel 3D matrix. Cytotherapy. 2003; 5 (6): 490-9.
- Dexter TM, Allen TD, Lajtha L.G. Conditions controlling the proliferation of haemopoietic stem cells in vitro. J Cell Physiol. 1977. 91.3: 335-344.- Dexter TM, Allen TD, Lajtha L.G. Conditions controlling the proliferation of haemopoietic stem cells in vitro. J Cell Physiol. 1977. 91.3: 335-344.
- Dexter TM. Stromal cell associated haemopoiesis. J Cell Physiol Suppl. 1982. 1: 87-94.- Dexter TM. Stromal cell associated haemopoiesis. J Cell Physiol Suppl. 1982. 1: 87-94.
- Da Silva CL, Goncalves R, Crapnell KB et al. A human stromal-based serum-free culture system supports the ex vivo expansion/maintenance of bone marrow and cord blood hematopoietic stem/progenitor cells. Exp Hematol. 2005. 33: 828-835.- Da Silva CL, Goncalves R, Crapnell KB et al. A human stromal-based serum-free culture system supports the ex vivo expansion / maintenance of bone marrow and cord blood hematopoietic stem / progenitor cells. Exp Hematol. 2005.33: 828-835.
- Wagner W, Wein F, Roderburg C, et al. Adhesion of hematopoietic progenitor cells to human mesenchymal stem cells as a model for cell-cell interaction. Exp. Hematol. 2007. 35(2): 314-325.- Wagner W, Wein F, Roderburg C, et al. Adhesion of hematopoietic progenitor cells to human mesenchymal stem cells as a model for cell-cell interaction. Exp. Hematol. 2007.35 (2): 314-325.
- Jing D, Fonseca AV, Alakel N et al. Hematopoietic stem cells in co-culture with mesenchymal stromal cells--modeling the niche compartments in vitro. Haematologica. 2010. 95(6):542-550.- Jing D, Fonseca AV, Alakel N et al. Hematopoietic stem cells in co-culture with mesenchymal stromal cells - modeling the niche compartments in vitro. Haematologica. 2010.95 (6): 542-550.
- Andreeva ER, Andrianova IV, Sotnezova EV et al. Human adipose-tissue derived stromal cells in combination with hypoxia effectively support ex vivo expansion of cord blood haematopoietic progenitors. PLoS One. 2015. 10(4):e0124939.- Andreeva ER, Andrianova IV, Sotnezova EV et al. Human adipose-tissue derived stromal cells in combination with hypoxia effectively support ex vivo expansion of cord blood haematopoietic progenitors. Plos one. 2015.10 (4): e0124939.
- Brandt JE, Galy AH, Luens KM, et al. Bone marrow repopulation by human marrow stem cells after longterm expansion culture on a porcine endothelial cell line. Exp Hematol. 1998. 26: 950-961.- Brandt JE, Galy AH, Luens KM, et al. Bone marrow repopulation by human marrow stem cells after longterm expansion culture on a porcine endothelial cell line. Exp Hematol. 1998.26: 950-961.
- Perey L, Peters R, Pampallona S et al. Extensive phenotypic analysis of CD34 subsets in successive collections of mobilized peripheral blood progenitors. Br J Haematol. 1998. 103(3):618-29.- Perey L, Peters R, Pampallona S et al. Extensive phenotypic analysis of CD34 subsets in successive collections of mobilized peripheral blood progenitors. Br J Haematol. 1998.103 (3): 618-29.
- Dykstra B, Kent D, Bowie M, McCaffrey et al. Long-term propagation of distinct hematopoietic differentiation programs in vivo. Cell Stem Cell. 2007. 1(2):218-29.- Dykstra B, Kent D, Bowie M, McCaffrey et al. Long-term propagation of distinct hematopoietic differentiation programs in vivo. Cell Stem Cell. 2007.1 (2): 218-29.
- Zanjani ED, Almeida-Porada G, Livingston AG et al. Reversible expression of CD34 by adult human bone marrow long-term engrafting hematopoietic stem cells. Exp Hematol. 2003; 31(5): 406-412.- Zanjani ED, Almeida-Porada G, Livingston AG et al. Reversible expression of CD34 by adult human bone marrow long-term engrafting hematopoietic stem cells. Exp Hematol. 2003; 31 (5): 406-412.
- Gallacher L, Murdoch B, Wu DM et al. Isolation and characterization of human CD34(-)Lin(-) and CD34(+)Lin(-) hematopoietic stem cells using cell surface markers AC133 and CD7. Blood. 2000 May 1;95(9):2813-20.- Gallacher L, Murdoch B, Wu DM et al. Isolation and characterization of human CD34 (-) Lin (-) and CD34 (+) Lin (-) hematopoietic stem cells using cell surface markers AC133 and CD7. Blood 2000 May 1; 95 (9): 2813-20.
- Rutella S, Bonanno G, Marone M et al. Identification of a novel subpopulation of human cord blood CD34-CD133-CD7-CD45+lineage-cells capable of lymphoid/NK cell differentiation after in vitro exposure to IL-15. J Immunol. 2003. 171(6):2977-88.- Rutella S, Bonanno G, Marone M et al. Identification of a novel subpopulation of human cord blood CD34-CD133-CD7-CD45 + lineage-cells capable of lymphoid / NK cell differentiation after in vitro exposure to IL-15. J Immunol. 2003.171 (6): 2977-88.
- McGuckin CP, Pearce D, Forraz N et al. Multiparametric analysis of immature cell populations in umbilical cord blood and bone marrow. Eur J- McGuckin CP, Pearce D, Forraz N et al. Multiparametric analysis of immature cell populations in umbilical cord blood and bone marrow. Eur j
Haematol. 2003. 71(5):341-50Haematol. 2003. 71 (5): 341-50
- van Os RP, Dethmers-Ausema B, de Haan G. In vitro assays for cobblestone area-forming cells, LTC-IC, and CFU-C. Methods Mol Biol. 2008; 430: 143-157.- van Os RP, Dethmers-Ausema B, de Haan G. In vitro assays for cobblestone area-forming cells, LTC-IC, and CFU-C. Methods Mol Biol. 2008; 430: 143-157.
- De Wynter EA, Buck D, Hart С et al. CD34+AC133+ cells isolated from cord blood are highly enriched in long-term culture-initiating cells, NOD/SCID-repopulating cells and dendritic cell progenitors. Stem Cells. 1998.16: 387-396.- De Wynter EA, Buck D, Hart C et al. CD34 + AC133 + cells isolated from cord blood are highly enriched in long-term culture-initiating cells, NOD / SCID-repopulating cells and dendritic cell progenitors. Stem Cells. 1998.16: 387-396.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2016104419A RU2628092C1 (en) | 2016-02-10 | 2016-02-10 | Method for obtaining of msc-associated non-differentiated hemopoietic precursor cells with cd34+/cd133+ phenotype |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2016104419A RU2628092C1 (en) | 2016-02-10 | 2016-02-10 | Method for obtaining of msc-associated non-differentiated hemopoietic precursor cells with cd34+/cd133+ phenotype |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2628092C1 true RU2628092C1 (en) | 2017-08-14 |
RU2016104419A RU2016104419A (en) | 2017-08-15 |
Family
ID=59633149
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2016104419A RU2628092C1 (en) | 2016-02-10 | 2016-02-10 | Method for obtaining of msc-associated non-differentiated hemopoietic precursor cells with cd34+/cd133+ phenotype |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2628092C1 (en) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2722669C1 (en) * | 2019-07-01 | 2020-06-02 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Государственный научный центр Российской Федерации - Институт медико-биологических проблем Российской академии наук (ГНЦ РФ - ИМБП РАН) | Method for producing associates of hematopoietic and stromal progenitor cells capable of suppressing activation and proliferation of allogenic lymphocytes |
RU2749156C1 (en) * | 2020-07-23 | 2021-06-07 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр психиатрии и наркологии имени В.П. Сербского" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "НМИЦ ПН им. В.П. Сербского" Минздрава России) | Method for obtaining adhesive culture of neutral stem/progenitor cells of olfactory nose of mammals for treatment of spinal cord injuries |
Citations (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20060205071A1 (en) * | 2003-07-17 | 2006-09-14 | Gamida-Cell Ltd. | Methods for ex-vivo expanding stem/progenitor cells |
WO2010077168A1 (en) * | 2008-12-30 | 2010-07-08 | Bryukhovetskiy Andrey Stepanovich | Drug made from stem cells with reprogrammed cell signaling, method for producing said preparation and the use thereof |
RU2433177C2 (en) * | 2006-03-23 | 2011-11-10 | Плуристем Лтд. | Method of cell expansion, method of obtaining conditioned medium, population of adhesive mesenchymal stromal cells of placenta or adipose tissue, pharmaceutical composition and application of adhesive mesenchymal stromal cells of placenta or adipose tissue in transplantation |
WO2012021845A2 (en) * | 2010-08-12 | 2012-02-16 | Fate Therapeutics, Inc. | Improved hematopoietic stem and progenitor cell therapy |
RU2474610C1 (en) * | 2012-03-11 | 2013-02-10 | Государственное бюджетное учреждение здравоохранения Свердловской области "Центр организации специализированных видов медицинской помощи "Институт медицинских клеточных технологий" (ГБУЗСО Институт медицинских клеточных технологий) | Method of separating haematopoietic stem cells |
RU2525143C1 (en) * | 2013-03-22 | 2014-08-10 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Государственный научный центр Российской Федерации-Институт медико-биологических проблем Российской академии наук | METHOD FOR CORD BLOOD MONONUCLEAR CELLS (cbMNC) EXPANSION ex vivo IN PRESENCE OF MULTIPOTENT MESENCHYMAL STROMAL CELLS (MMSCS) |
-
2016
- 2016-02-10 RU RU2016104419A patent/RU2628092C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20060205071A1 (en) * | 2003-07-17 | 2006-09-14 | Gamida-Cell Ltd. | Methods for ex-vivo expanding stem/progenitor cells |
RU2433177C2 (en) * | 2006-03-23 | 2011-11-10 | Плуристем Лтд. | Method of cell expansion, method of obtaining conditioned medium, population of adhesive mesenchymal stromal cells of placenta or adipose tissue, pharmaceutical composition and application of adhesive mesenchymal stromal cells of placenta or adipose tissue in transplantation |
WO2010077168A1 (en) * | 2008-12-30 | 2010-07-08 | Bryukhovetskiy Andrey Stepanovich | Drug made from stem cells with reprogrammed cell signaling, method for producing said preparation and the use thereof |
WO2012021845A2 (en) * | 2010-08-12 | 2012-02-16 | Fate Therapeutics, Inc. | Improved hematopoietic stem and progenitor cell therapy |
RU2474610C1 (en) * | 2012-03-11 | 2013-02-10 | Государственное бюджетное учреждение здравоохранения Свердловской области "Центр организации специализированных видов медицинской помощи "Институт медицинских клеточных технологий" (ГБУЗСО Институт медицинских клеточных технологий) | Method of separating haematopoietic stem cells |
RU2525143C1 (en) * | 2013-03-22 | 2014-08-10 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Государственный научный центр Российской Федерации-Институт медико-биологических проблем Российской академии наук | METHOD FOR CORD BLOOD MONONUCLEAR CELLS (cbMNC) EXPANSION ex vivo IN PRESENCE OF MULTIPOTENT MESENCHYMAL STROMAL CELLS (MMSCS) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2722669C1 (en) * | 2019-07-01 | 2020-06-02 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Государственный научный центр Российской Федерации - Институт медико-биологических проблем Российской академии наук (ГНЦ РФ - ИМБП РАН) | Method for producing associates of hematopoietic and stromal progenitor cells capable of suppressing activation and proliferation of allogenic lymphocytes |
RU2749156C1 (en) * | 2020-07-23 | 2021-06-07 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр психиатрии и наркологии имени В.П. Сербского" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "НМИЦ ПН им. В.П. Сербского" Минздрава России) | Method for obtaining adhesive culture of neutral stem/progenitor cells of olfactory nose of mammals for treatment of spinal cord injuries |
RU2749156C9 (en) * | 2020-07-23 | 2021-08-03 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр психиатрии и наркологии имени В.П. Сербского" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "НМИЦ ПН им. В.П. Сербского" Минздрава России) | Method for obtaining adhesive culture of neural stem/progenitor cells of olfactory nose of mammals for treatment of spinal cord injuries |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2016104419A (en) | 2017-08-15 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
EP2374871B1 (en) | Pluripotent stem cells, method for preparation thereof and uses thereof | |
Seshi et al. | Human bone marrow stromal cell: coexpression of markers specific for multiple mesenchymal cell lineages | |
Dennis et al. | Clinical-scale expansion of a mixed population of bone marrow-derived stem and progenitor cells for potential use in bone tissue regeneration | |
Raynaud et al. | Comprehensive characterization of mesenchymal stem cells from human placenta and fetal membrane and their response to osteoactivin stimulation | |
Montemurro et al. | Angiogenic and anti-inflammatory properties of mesenchymal stem cells from cord blood: soluble factors and extracellular vesicles for cell regeneration | |
CN101331225B (en) | Multipotent adult stem cells having an ability of Oct4 expression derived from umbilical cord blood and method for preparing the same | |
KR20070047850A (en) | Hematopoietic differentiation of human embryonic stem cells | |
US20210238554A1 (en) | Method for culturing a subpopulation of circulating epithelial tumour cells from a body fluid | |
CN100478441C (en) | Stem cell separating liquid and its separating method | |
WO2021049617A1 (en) | Serum-free medium not containing albumin and suited for culturing human hematopoietic stem cells, and albumin-free culturing method | |
US20210054343A1 (en) | Endocardium-derived adult stem cells and method for producing same | |
Tiwari et al. | Expansion of human hematopoietic stem/progenitor cells on decellularized matrix scaffolds | |
JP2011501960A (en) | Method of co-culturing cord blood-derived cells together with menstrual stem cells | |
Fujimoto et al. | Microencapsulated feeder cells as a source of soluble factors for expansion of CD34+ hematopoietic stem cells | |
Ghasemzadeh et al. | Comparable osteogenic capacity of mesenchymal stem or stromal cells derived from human amnion membrane and bone marrow | |
RU2628092C1 (en) | Method for obtaining of msc-associated non-differentiated hemopoietic precursor cells with cd34+/cd133+ phenotype | |
Maslova et al. | Enrichment of umbilical cord blood mononuclears with hemopoietic precursors in co-culture with mesenchymal stromal cells from human adipose tissue | |
KR101380561B1 (en) | Equine Amniotic Fluid-Derived Multipotent Stem Cells and Method for Producing the Same | |
Medvinsky et al. | Analysis and manipulation of hematopoietic progenitor and stem cells from murine embryonic tissues | |
Pranke et al. | Immunophenotype of hematopoietic stem cells from placental/umbilical cord blood after culture | |
Butler et al. | Generation of a vascular niche for studying stem cell homeostasis | |
Schwarz et al. | Human salivary gland stem cells: isolation, propagation, and characterization | |
ES2825723T3 (en) | Method of using lead cells for activation and differentiation of specific stem / progenitor cells | |
RU2525143C1 (en) | METHOD FOR CORD BLOOD MONONUCLEAR CELLS (cbMNC) EXPANSION ex vivo IN PRESENCE OF MULTIPOTENT MESENCHYMAL STROMAL CELLS (MMSCS) | |
Mobaraki et al. | Evaluation of expansion and maintenance of umbilical cord blood CD34+ cells in the co-culture with umbilical cord blood-derived mesenchymal stem cells in the presence of microcarrier beads |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20210211 |