RU2628063C1 - Способ прогнозирования транслокации E.coli из кишечника при некультивируемом типе инфекционного процесса в эксперименте на кроликах - Google Patents

Способ прогнозирования транслокации E.coli из кишечника при некультивируемом типе инфекционного процесса в эксперименте на кроликах Download PDF

Info

Publication number
RU2628063C1
RU2628063C1 RU2016137864A RU2016137864A RU2628063C1 RU 2628063 C1 RU2628063 C1 RU 2628063C1 RU 2016137864 A RU2016137864 A RU 2016137864A RU 2016137864 A RU2016137864 A RU 2016137864A RU 2628063 C1 RU2628063 C1 RU 2628063C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
translocation
days
bacteria
alt
rabbits
Prior art date
Application number
RU2016137864A
Other languages
English (en)
Inventor
Сергей Павлович Сахаров
Леонид Борисович Козлов
Олег Евгеньевич Козлов
Original Assignee
федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Тюменский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО Тюменский ГМУ Минздрава России)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Тюменский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО Тюменский ГМУ Минздрава России) filed Critical федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Тюменский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО Тюменский ГМУ Минздрава России)
Priority to RU2016137864A priority Critical patent/RU2628063C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2628063C1 publication Critical patent/RU2628063C1/ru

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G09EDUCATION; CRYPTOGRAPHY; DISPLAY; ADVERTISING; SEALS
    • G09BEDUCATIONAL OR DEMONSTRATION APPLIANCES; APPLIANCES FOR TEACHING, OR COMMUNICATING WITH, THE BLIND, DEAF OR MUTE; MODELS; PLANETARIA; GLOBES; MAPS; DIAGRAMS
    • G09B23/00Models for scientific, medical, or mathematical purposes, e.g. full-sized devices for demonstration purposes
    • G09B23/28Models for scientific, medical, or mathematical purposes, e.g. full-sized devices for demonstration purposes for medicine

Landscapes

  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Изобретение относится к экспериментальной медицине, а именно к патофизиологии и может быть использовано для прогнозирования транслокации E. coli из кишечника, вызванной некультивируемыми бактериями. Способ включает заражение кроликов с использованием взвеси некультивируемых бактерий P. aeruginosa и S. aureus в концентрациях 105-106 микробных клеток в 1 мл на физиологическом растворе хлорида натрия, который вводят подкожно. Затем на 1-2 и 4-5 сутки исследуют АЛТ и мочевину в сыворотке крови. При показателе АЛТ на 1-2 сутки, равном 53,0-63,0 u/L, а на 4-5 сутки - 57,0-69,0 u/L, и показателе концентрации мочевины на 1-2 сутки, равном 4,6-5,6 u/L, а на 4-5 сутки - 1,3-1,9 u/L, прогнозируют развитие транслокации E. coli из кишечника во внутренние органы животного. Полученные результаты позволяют экстраполировать полученные данные для людей с целью совершенствования диагностики и лечения больных пациентов при инфекционных процессах, вызванных некультивируемыми бактериями. 2 пр., 1 табл.

Description

Изобретение относится к экспериментальной медицине, а именно к патофизиологии и может быть использовано для выявления развития патогенетических механизмов транслокации, вызванных некультивируемыми бактериями, с целью экстраполяции полученных данных для разработки способов лечения и снижения летальности у людей, вызванных некультивируемыми бактериями.
В основе транслокации лежит способность бактерий проникать во внутренние органы из желудочно-кишечного тракта. [Berg R.D. Bacterial translocation from the intestines // Jikken Dobutsu, 1985, Jan., 34(1), 1-16] и вызывать сепсис [Несвижский Ю.В., Богданова Е.А., Зверев В.В. Колонизация Staphylococcus aureus биотопов желудочно-кишечного тракта крыс // Вестник РАМН, 2009, №4, с. 28-30; Бондаренко В.М., Рябиченко Е.В. Роль дисфункции кишечного барьера в поддержании хронического воспалительного процесса различной локализации // Ж. микробиол., 2010, 1, 92-100].
Причины возникновения транслокации изучены недостаточно. Транслокация возникает при снижении иммунитета организма, при кишечной непроходимости [Пашков С.А., Плечев В.В., Мурысева Е.М. Интраперитонеальная транслокация бактерий и антибиотикотерапия при острой спаечной кишечной непроходимости // Казанский медицинский журнал, 2004, т. 85, №5, с. 346-350; Салато О.В. Исследование транслокации бактерий при механической непроходимости тонкой кишки // Бюллетень ВСНЦ СО РАМН, 2008, №4(62), с. 76-79], при стрессовых ситуациях, ожогах, радиационных поражениях [Павлович Е.Р., Дугин С.Ф. Патофизиологическое значение трансинтестинальной транслокации бактерий // Успехи современного естествознания, 2006, №6, с. 81-82].
Известна бактериальная транслокация при хирургических инфекциях [Апарцин К.А., Лишманов Ю.Б., Галеев Ю.М. и др. Бактериальная транслокация при релапаротомии в условиях распространенного перитонита // Бюллетень СО РАМН, 2009, №2(136), с. 95-100; Шестаков А.И., Хафизов А.Р. К вопросу о транслокации бактерий в хирургии аорты // Вестник Башкирского университета, 2006, №2, с. 70-73; Тарасенко B.C., Никитенко В.И., Кубышкин В.А. Острый панкреатит и транслокация бактерий. // Вестн. хирургии им. И.И. Грекова. 2000, - Т. 159, №6. - С. 86-88].
На механизм транслокации оказывает влияние не только макроорганизм, но свойства микроорганизмов. Под влиянием эндотоксина бактерий происходит транслокация микрофлоры кишечника во внутренние органы [Домарадский И.В., Хохоев Т.Х., Кондракова О.А. и др. Противоречивая микроэкология // Рос. хим. журн. (Ж. Рос. хим. об-ва им. Д.И. Менделеева), 2002, т. XLVI, №3, с. 80-89].
Однако влияние некультивируемых бактерий на механизм развития транслокации при инфекционных заболеваниях в периодической патентной и научно-технической литературе не описано. Хотя, известно широкое распространение некультивируемых бактерий в популяциях патогенных и условно-патогенных микроорганизмов [Соколенко А.В., Шаманская Е.П. Некультивируемые формы патогенных бактерий и здоровье человека // Валеология. - 2008. - №2. - С. 10-20; Козлов Л.Б., Диц Е.В. Роль микробных ассоциаций в инфекционной патологии человека // Фундаментальные исследования, 2013. - №9. - С. 366-370; Соколенко А.В. Некультивируемые формы бактерий: распространение в природе, индукторы некультивируемого состояния и реверсии // Современные наукоемкие технологии. - 2006. - №2 - С. 11-15; Heim S. Et al. The viable but nonculturable state and starvation are different stress responses of Enterococcus faecalis, as determined by proteome analysis // J. Bacteriol. - 2002. - Vol. 184. - №23. - P. 6739-6745].
Поэтому прогнозирование транслокации микрофлоры из кишечника под влиянием некультивируемых бактерий, а также создание экспериментальной модели по изучению влияния некультивируемых бактерий на патогенетические механизмы развития транслокации является актуальным в плане создания эффективного лечения и снижения летальности при инфекционных процессах, вызванных некультивируемыми бактериями.
В патентной литературе описан способ выделения некультивируемых бактерий [патент RU №2470074 от 20.12.2012 г. Бюл. №35].
Описан способ предупреждения транслокации условно-патогенной микрофлоры кишечника животных (беспородные белые крысы) при стрессовом воздействии в эксперименте, при использовании биологически активной добавки «Ультрасорб» [патент RU №2410101 С1 от 27.01.2011]. Для подтверждения транслокации бактерий в организме животных авторы использовали сложные гистологические исследования.
Для профилактики транслокации предложен штамм Lactobacillus plantarum [патент RU №2521364 С2 от 27.06.2014]. Изобретение относится к области промышленной микробиологии и за счет увеличения бактериального разнообразия повышена эффективность профилактического действия препарата и снижена возможность транслокации бактерий из желудочно-кишечного тракта, но не устраняются основные причины и механизмы транслокации бактерий.
В предложенных выше двух технических решениях не предусмотрено устранение причин транслокации вызванных некультивируемыми бактериями, постоянно присутствующих в популяциях патогенных и условно-патогенных микроорганизмов.
В качестве прототипа нами выбран способ прогнозирования транслокации бактерий в кровь при генерализованном хроническом пародонтите [патент RU №2472858 С2 от 20.01.2013]. Транслокация бактерий прогнозирована по усилению гемолитической активности, антилизоцимной активности и росту в отношении других штаммов симбионтов. Штамм - симбионт, обладающий этими свойствами обладает способностью транслоцировать в кровь. Предложена сложная микробиологическая методика выявления транслокации бактерий, включающая выделение чистой культуры бактерий из крови и со слизистых оболочек пародонтальных карманов, идентификацию бактерий до вида и сравнение выделенных культур по типу антибиотикограмм. Предложенный способ не позволяет выявить транслокацию, вызванную некультивируемыми бактериями и представляется сложным проследить эффективность химиотерапевтического лечения при выявленной транслокации (необходимы дополнительные лабораторные исследования по изучению влияния предложенного химиотерапевтического препарата на культивируемый микроорганизм вызывающий транслокацию). Предложенный способ не позволяет выявить патогенетический механизм развития транс локации, вызванной некультивируемыми бактериями.
Задачей настоящего изобретения является установить достоверное прогнозирование транслокации, вызванной некультивируемыми бактериями в экспериментальной модели, с целью изучения патогенетического механизма развития транслокации, вызванной некультивируемыми бактериями.
Результаты проведенных экспериментальных исследований позволят экстраполировать полученные данные для разработки эффективного лечения и предупреждения летальности у людей вызванных некультивируемыми бактериями в процессе транслокации.
Технический результат заявленного нами способа заключается в использовании биохимических тестов для прогноза возникновения транслокации, вызванной наличием в микробных популяциях некультивируемых бактерий.
Для достижения данного технического результата необходима экспериментальная модель транслокации на лабораторных животных, вызванной некультивируемыми бактериями. Для этих целей использованы кролики породы «шиншилла», инфицированные некультивируемыми бактериями P. aeruginosa, S. aureus.
Технический результат - простой, не требующий больших материальных затрат и основан на исследовании сывороток крови кроликов в первые 5 дней болезни на наличие биохимических показателей: аланинаминотрансферазы (АЛТ) и концентрации мочевины.
Технический результат предложенного способа достигается тем, что способ прогнозирования транслокации E. coli из кишечника, вызванной некультивируемыми бактериями, в эксперименте, заключается в том, что проводят заражение кроликов с использованием взвеси некультивируемых бактерий P. aeruginosa и S. aureus в концентрациях 105-106 микробных клеток в 1 мл на физиологическом растворе хлорида натрия, который вводят подкожно, затем на 1-2 и 4-5 сутки исследуют АЛТ и мочевину в сыворотке крови и при показателе АЛТ на 1-2 сутки, равном 53,0-63,0 u/L, а 4-5 сутки - 57,0-69,0 u/L и показателе концентрации мочевины на 1-2 сутки, равном 4,6-5,6 u/L, а на 4-5 сутки - 1,3-1,9 u/L прогнозируют развитие транслокации E. coli из кишечника во внутренние органы животного.
Предлагаемый способ осуществляют следующим образам.
Здоровых кроликов породы «шиншилла» массой 2500-3500 грамм содержат в клетках в соответствии с требованиями санитарных правил (утв. Главным Государственным санитарным врачом №1045-73). В виварии поддерживают температуру воздуха 24-26°С в соответствии с приказом МЗ РФ №267 от 19.06.2003 и требованиями Европейской конвенции (Страсбург, 1986) по содержанию, кормлению и уходу за подопытными животными, выводу их из эксперимента и последующей утилизации.
Для заражения кроликов использовали взвесь некультивируемых бактерий P. aeruginosa и S. aureus в концентрациях 105-106 микробных клеток в 1 мл на физиологическом растворе хлорида натрия, а затем вводили кроликам подкожно в объеме 1,0 мл смеси. Некультивируемые бактерии получали по методике предложенной Л.Б. Козловым с соавт. [патент RU №2470074 от 20.12.2012 г. Бюл. №35].
На 1-2 и 4-5 сутки после заражения кроликов некультивируемыми бактериями проводили биохимическое исследование сывороток крови на наличие АЛТ и мочевины. Биохимические исследования проводили на автоматическом биохимическом анализаторе BS 200 (Mindray) с использованием коммерческих наборов реактивов. При показателе АЛТ в сыворотке крови животных на 1-2 сутки болезни кроликов 53,0-63,0 u/L, а 4-5 сутки - 57,0-69,0 u/L и показателе концентрации мочевины на 1-2 сутки 4,6-5,6 u/L, а на 4-5 сутки - 1,3-1,9 u/L прогнозировали развитие транслокации, вызванной некультивируемыми бактериями.
Наличие транслокации, вызванной некультивируемыми бактериями, определяют бактериологическим методом. Животных вскрывают на 7-9 сутки после инфицирования некультивируемыми бактериями и определяют наличие, а также концентрацию E. coli в легких, печени и почках, используя общепринятые микробиологические методики [Биргер М.О. Справочник по микробиологическим и вирусологическим методам исследования. - М.: Медицина, 1982, 462 с.].
Для изучения микробной обсемененности внутренних органов экспериментальных животных использован метод определения "бактерийного индекса" селезенки. После извлечения органа в асептических условиях, его взвешивали на торсионных весах. На каждые 100 мг веса органа прибавляют 1 мл стерильного изотонического раствора NaCL и в стерильной ступке путем растирания получают основную взвесь исследуемой ткани органа. Затем из основной взвеси делают ряд последовательных десятикратных разведений и 0,1 мл каждого разведения высевают на элективную питательную среду для выделения E. coli. Через 24 часа инкубации в термостате при 37°С подсчитывают количество колоний.
Примеры практического использования предлагаемого способа:
Пример 1.
Здорового кролика породы «шиншилла» массой 2800 грамм содержали в клетке в соответствии с требованиями санитарных правил (утв. Главным Государственным санитарным врачом №1045-73). В виварии поддерживали температуру воздуха 24-26°С в соответствии с приказом МЗ РФ №267 от 19.06.2003 и требованиями Европейской конвенции (Страсбург, 1986) по содержанию, кормлению и уходу за подопытными животными, выводу их из эксперимента и последующей утилизации.
Для заражения кролика использовали смесь взвеси некультивируемых бактерий P. aeruginosa и S. aureus в концентрациях 105 микробных клеток в количестве 1 мл на физиологическом растворе хлорида натрия, а затем вводили кролику подкожно в объеме 1,0 мл. Некультивируемые бактерии получали по методике предложенной Л.Б. Козловым с соавт. [патент RU №2470074 от 20.12.2012 г. Бюл. №35].
Через сутки и четверо суток после заражения кролика некультивируемыми бактериями проводили биохимические исследования сывороток крови на наличие АЛТ и мочевины. Показатель АЛТ в сыворотке крови животных через сутки болезни составил 53 u/L, а на 4-е сутки - 57 u/L и показатель концентрации мочевины через сутки составил 4,7 u/L, а на 4-е сутки - 1,4 u/L. На основании полученных результатов биохимических исследований сывороток крови животного прогнозировано развитие транслокации, вызванной некультивируемыми бактериями.
Биохимические исследования проводили на автоматическом биохимическом анализаторе BS 200 (Mindray) с использованием коммерческих наборов реактивов.
Для подтверждения возникновения транслокации E. coli во внутренние органы использовали клинические наблюдения за кроликом, результаты микробиологических исследований внутренних органов и проводили анализ изменений в тканях органов на основании гистологических срезов, полученных после вскрытия животного. Животного вскрыли на 9-е сутки после инфицирования некультивируемыми бактериями и определяли концентрацию E. coli в легких, печени и почках, используя общепринятые микробиологические методики [Биргер М.О. Справочник по микробиологическим и вирусологическим методам исследования. - М.: Медицина, 1982, 462 с.].
Для изучения микробной обсемененности внутренних органов экспериментального животного использовали метод определения "бактерийного индекса" селезенки. После извлечения органа в асептических условиях, его взвешивали на торсионных весах. На каждые 100 мг веса органа добавляли 1 мл стерильного изотонического раствора NaCL и в стерильной ступке путем растирания получали основную взвесь исследуемой ткани органа. Затем из основной взвеси делали ряд последовательных десятикратных разведений и 0,1 мл каждого разведения высевали на плотную элективную питательную среду для выделения E. coli и учета изолированных колоний E. coli. Через 24 часа инкубации в термостате при 37°С подсчитывали количество выросших колоний.
На 9 день инфекционного процесса концентрация E. coli в легких животного составила 1,0×103 микробных клеток в 1 грамме исследуемой ткани, в печени - 9,0×102 и в почках - 1,0×103 микробных клеток (даны средние данные по результатам трех исследований органа).
Результаты клинического наблюдения за животным.
На 5-е сутки болезни кролик отказался от еды, а затем на 6-е сутки отмечено вздутие живота и отсутствие перистальтики кишечника.
Результаты гистологических исследований органов.
В динамике развивалась очаговая инфильтрация печени. Диагноз: Очаговый септический гепатит.
В легких отмечалось расширение альвеолл с разрывами межальвеолярных перегородок, утолщение единичных межальвеолярных перегородок за счет воспалительной инфильтрации. Диагноз: Острая инфекционная эмфизема легких.
В почках выявлено полнокровие, в просветах сосудов эритростазы, умеренно выраженная белковая дистрофия эпителия извитых канальцев нефрона с десквамацией эпителия. Капсулы клубочков тонкие, несколько отечные. Сосуды единичных клубочков содержат фибриновые тромбы. Диагноз: Морфологические признаки шока.
Пример 2.
Здорового кролика породы «шиншилла» массой 3200 грамм содержали в клетке в соответствии с требованиями санитарных правил (утв. Главным Государственным санитарным врачом №1045-73). В виварии поддерживали температуру воздуха 24-26°С в соответствии с приказом МЗ РФ №267 от 19.06.2003 и требованиями Европейской конвенции (Страсбург, 1986) по содержанию, кормлению и уходу за подопытными животными, выводу их из эксперимента и последующей утилизации.
Для заражения кролика использовали смесь взвеси некультивируемых бактерий P. aeruginosa и S. aureus в концентрациях 106 микробных клеток в 1 мл на физиологическом растворе хлорида натрия, а затем вводили кролику подкожно в объеме 1,0 мл. Некультивируемые бактерии получали по методике предложенной Л.Б. Козловым с соавт. [патент RU №2470074 от 20.12.2012 г. Бюл. №35].
На 2-е и 5-е сутки после заражения кролика некультивируемыми бактериями проводили биохимические исследования сывороток крови на наличие АЛТ и мочевины. Показатель АЛТ в сыворотке крови животного на 2-е сутки болезни составил 60 u/L, а на 5-е сутки - 68 u/L и показатель концентрации мочевины на 2-е сутки 5,3 u/L, а на 5-е сутки - 1,8 u/L. На основании полученных результатов биохимических исследований сывороток крови животного прогнозировано развитие транслокации, вызванной некультивируемыми бактериями.
Биохимические исследования проводили на автоматическом биохимическом анализаторе BS 200 (Mindray) с использованием коммерческих наборов реактивов.
Для подтверждения возникновения транслокации E. coli во внутренние органы использовали клинические наблюдения за кроликом, результаты микробиологических исследований внутренних органов и проводили анализ изменений в тканях органов на основании гистологических срезов, полученных после вскрытия животного. Животного вскрыли на 9-е сутки после инфицирования некультивируемыми бактериями и определяли концентрацию E. coli в легких, печени и почках, используя общепринятые микробиологические методики [Биргер М.О. Справочник по микробиологическим и вирусологическим методам исследования. - М.: Медицина, 1982, 462 с.].
Для изучения микробной обсемененности внутренних органов экспериментального животного использовали метод определения "бактерийного индекса" селезенки. После извлечения органа в асептических условиях, его взвешивали на торсионных весах. На каждые 100 мг веса органа добавляли 1 мл стерильного изотонического раствора NaCL и в стерильной ступке путем растирания получали основную взвесь исследуемой ткани органа. Затем из основной взвеси делали ряд последовательных десятикратных разведений и 0,1 мл каждого разведения высевали на плотную элективную питательную среду для выделения E. coli и учета изолированных колоний E. coli. Через 24 часа инкубации в термостате при 37°С подсчитывали количество колоний E. coli.
На 9 день инфекционного процесса концентрация E. coli в легких животного составила 1,0×103 микробных клеток в 1 грамме исследуемой ткани, в печени - 9,0×102 и в почках - 5,0×102 микробных клеток (даны средние данные по результатам трех исследований органа).
Результаты клинического наблюдения за животным.
На 5-е сутки болезни кролик отказался от еды, а затем на 7-е сутки отмечено вздутие живота и отсутствие перистальтики кишечника. На 8-е сутки животное погибло.
Результаты гистологических исследований органов.
В тканях печени наблюдался мостовидный некроз, распространяющийся между соседними портальными трактами, а также ступенчатый некроз, с распространением к центру дольки. Диагноз: Острый серозно-гнойный септический гепатит.
В легких на основании гистологических срезов ткани легкого поставлен диагноз: Острая инфекционная эмфизема легких.
В почках выявлены аутоиммунные поражения (по типу системных заболеваний соединительной ткани. Наблюдается острое течение патологического процесса.
Проведенные результаты исследований подтверждают, что на основании биохимических исследований сывороток крови животного (показатели АЛТ и мочевина) можно прогнозировать развитие транслокации E. coli во внутренние органы животных.
Были проведены следующие исследования: Здоровых кроликов породы «шиншилла» массой 2500-3500 грамм инфицировали культивируемыми и некультивируемыми бактериями P. aeruginosa и S. aureus. С 1 по 9 сутки у животных брали кровь и проводили биохимические исследования сывороток крови. Определяли наличие щелочной фосфатазы (ЩФ), АЛТ, мочевины, креатинина и общего биллирубина. Наличие транслокации E. coli у животных было подтверждено клиническими наблюдениями за животными, микробиологическими и гистологическими исследованиями. Результаты исследований представлены в таблице.
Предложенный способ прогнозирования транслокации E. coli из кишечника при некультивируемом типе инфекционного процесса в эксперименте на кроликах позволяет также осуществлять контроль за эффективностью лечения заболеваний вызванных культивируемыми и некультивируемыми бактериями. У больных кроликов при некультивируемом типе инфекционного процесса показатели щелочной фосфатазы в 3 раза выше, чем при инфекционном процессе, вызванным культивируемыми бактериями, а показатели АЛТ в 2 раза ниже. Эти показатели можно использовать при контроле эффективности проводимого лечения.
Предложенный способ легко воспроизводим, не требует больших материальных затрат, в ранние сроки позволяет прогнозировать транслокацию E. coli во внутренние органы. Результаты выявления патогенетических механизмов транслокации кишечной палочки в организме кроликов могут быть использованы для экстраполяции полученных данных с целью совершенствования диагностики и лечения больных людей с инфекционными процессами, вызванные культивируемыми и некультивируемыми бактериями.
Figure 00000001

Claims (1)

  1. Способ прогнозирования транслокации E. coli из кишечника, вызванной некультивируемыми бактериями, в эксперименте, заключается в том, что проводят заражение кроликов с использованием взвеси некультивируемых бактерий P. aeruginosa и S. aureus в концентрациях 105-106 микробных клеток в 1 мл на физиологическом растворе хлорида натрия, который вводят подкожно, затем на 1-2 и 4-5 сутки исследуют АЛТ и мочевину в сыворотке крови и при показателе АЛТ на 1-2 сутки, равном 53,0-63,0 u/L, а на 4-5 сутки - 57,0-69,0 u/L, и показателе концентрации мочевины на 1-2 сутки, равном 4,6-5,6 u/L, а на 4-5 сутки - 1,3-1,9 u/L, прогнозируют развитие транслокации E. coli из кишечника во внутренние органы животного.
RU2016137864A 2016-09-22 2016-09-22 Способ прогнозирования транслокации E.coli из кишечника при некультивируемом типе инфекционного процесса в эксперименте на кроликах RU2628063C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2016137864A RU2628063C1 (ru) 2016-09-22 2016-09-22 Способ прогнозирования транслокации E.coli из кишечника при некультивируемом типе инфекционного процесса в эксперименте на кроликах

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2016137864A RU2628063C1 (ru) 2016-09-22 2016-09-22 Способ прогнозирования транслокации E.coli из кишечника при некультивируемом типе инфекционного процесса в эксперименте на кроликах

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2628063C1 true RU2628063C1 (ru) 2017-08-14

Family

ID=59641704

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2016137864A RU2628063C1 (ru) 2016-09-22 2016-09-22 Способ прогнозирования транслокации E.coli из кишечника при некультивируемом типе инфекционного процесса в эксперименте на кроликах

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2628063C1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2734820C2 (ru) * 2018-06-25 2020-10-23 Государственное бюджетное учреждение здравоохранения города Москвы Московский клинический научно-практический центр им. А.С. Логинова Департамента здравоохранения города Москвы Способ прогнозирования транслокации бактерий при хроническом эхинококкозе

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2470652C2 (ru) * 2007-05-18 2012-12-27 Нестек С.А. Пробиотики в пред- и/или послеоперационный период
RU2472858C2 (ru) * 2011-06-27 2013-01-20 Учреждение Российской академии наук "Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза Уральского отделения Российской академии наук" Способ прогнозирования транслокации бактерий в кровь при генерализованном хроническом пародонтите
RU2521364C2 (ru) * 2007-03-01 2014-06-27 Проби Аб Применение lactobacillus plantarum для повышения бактериального разнообразия

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2521364C2 (ru) * 2007-03-01 2014-06-27 Проби Аб Применение lactobacillus plantarum для повышения бактериального разнообразия
RU2470652C2 (ru) * 2007-05-18 2012-12-27 Нестек С.А. Пробиотики в пред- и/или послеоперационный период
RU2472858C2 (ru) * 2011-06-27 2013-01-20 Учреждение Российской академии наук "Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза Уральского отделения Российской академии наук" Способ прогнозирования транслокации бактерий в кровь при генерализованном хроническом пародонтите

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
АЛМАГАМБЕТОВ К. Х. Моделирование транслокации кишечной микрофлоры на конвенциональных животных. Журн. микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии, 1991, N8, С. 15-17. VAN DER HEIJDEN KM et al. Intestinal translocation of clinical isolates of vancomycin-resistant Enterococcus faecalis and ESBL-producing Escherichia coli in a rat model of bacterial colonization and liver ischemia/reperfusion injury. PLoS One. 2014 Sep 25;9(9):e108453. *
ГАЛЕЕВ Ю. М. Методы ядерной медицины в изучении патогенеза бактериальной транслокации абдоминального происхождения: автореферат диссертации на соискание ученой степени доктора медицинских наук, Томск, 2011,50 с. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2734820C2 (ru) * 2018-06-25 2020-10-23 Государственное бюджетное учреждение здравоохранения города Москвы Московский клинический научно-практический центр им. А.С. Логинова Департамента здравоохранения города Москвы Способ прогнозирования транслокации бактерий при хроническом эхинококкозе

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Gonçalves et al. Effects of bovine subclinical mastitis caused by Corynebacterium spp. on somatic cell count, milk yield and composition by comparing contralateral quarters
WO2016110177A1 (zh) 碱性抗菌肽及其靶向设计和应用
RU2628063C1 (ru) Способ прогнозирования транслокации E.coli из кишечника при некультивируемом типе инфекционного процесса в эксперименте на кроликах
RU2472858C2 (ru) Способ прогнозирования транслокации бактерий в кровь при генерализованном хроническом пародонтите
Ramanjeneya et al. Virulence potential, biofilm formation, and antibiotic susceptibility of Listeria monocytogenes isolated from cattle housed in a particular gaushala (cattle shelter) and organized farm
Castellani et al. Fate of pathogenic bacteria in microcosms mimicking human body sites
Park et al. Successful management of multidrug-resistant Pseudomonas aeruginosa pneumonia after kidney transplantation in a dog
Korman et al. Fatal Legionella longbeachae infection following heart transplantation
Udoh et al. Occurrence of mastitis and methicillin resistant Staphylococcus aureus in Goats in Zaria, Kaduna State, Nigeria
Rasheed et al. Isolation, identification and sensitivity of Mannheimia haemolytica from Ewes udder with clinical mastitis
Hussain et al. Antimicrobial activity of non-bond colicin on Candida albicans biofilm
RU2705385C1 (ru) Способ диагностики стрептококковой абдоминальной хирургической инфекции
RU2790481C1 (ru) Антибактериальная композиция на основе эндолизинов и лекарственные средства в форме геля или спрея с ее использованием
RU2639544C1 (ru) Средство для лечения и профилактики заболеваний желудочно-кишечного тракта птицы
RU2332671C2 (ru) Способ прогнозирования хронического течения урогенитальной гонококковой инфекции
RU2705384C1 (ru) Способ диагностики грамотрицательной абдоминальной хирургической инфекции
Oladele et al. Studies on experimental Pseudomoniasis and Vibriosis in African catfish
Sampson et al. Incidence of Staphylococcus aureus Wound Infection amongst Patients Attending University of Port Harcourt Teaching Hospital, Rivers State, Nigeria
CN113425719B (zh) H2dpa及其衍生物作为金属β-内酰胺酶抑制剂在抗菌中应用
Fraczkowska et al. Aerobic Commensal Conjunctival Microflora in Healthy Donkeys. Animals 2022, 12, 756
Živković et al. To Biofilm or Not to Biofilm?
US20220127657A1 (en) A method for detecting dormant or cell wall deficient mycobacterium species and a method and medium for the growth promotion of dormant or cell wall deficient forms of mycobacterium species
RU2653631C2 (ru) Способ прогноза летальности при гнойно-септических инфекциях в эксперименте
RU2642327C1 (ru) Способ прогноза развития патогенетического процесса по некультивируемому или культивируемому типу в эксперименте
Al Sattar Isolation and identification of Staphylococcus aureus from bovine milk

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20180923

NF4A Reinstatement of patent

Effective date: 20210817