RU2627444C1 - Method for simulation of subacute liver exposure to toxic formalin - Google Patents

Method for simulation of subacute liver exposure to toxic formalin Download PDF

Info

Publication number
RU2627444C1
RU2627444C1 RU2016134265A RU2016134265A RU2627444C1 RU 2627444 C1 RU2627444 C1 RU 2627444C1 RU 2016134265 A RU2016134265 A RU 2016134265A RU 2016134265 A RU2016134265 A RU 2016134265A RU 2627444 C1 RU2627444 C1 RU 2627444C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
liver
formalin
subacute
toxic
days
Prior art date
Application number
RU2016134265A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Виктория Вячеславовна Козлова
Маргарита Евгеньевна Котова
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное учреждение "Пятигорский государственный научно-исследовательский институт курортологии Федерального медико-биологического агентства" (ФГБУ ПГНИИК ФМБА России)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное учреждение "Пятигорский государственный научно-исследовательский институт курортологии Федерального медико-биологического агентства" (ФГБУ ПГНИИК ФМБА России) filed Critical Федеральное государственное бюджетное учреждение "Пятигорский государственный научно-исследовательский институт курортологии Федерального медико-биологического агентства" (ФГБУ ПГНИИК ФМБА России)
Priority to RU2016134265A priority Critical patent/RU2627444C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2627444C1 publication Critical patent/RU2627444C1/en

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G09EDUCATION; CRYPTOGRAPHY; DISPLAY; ADVERTISING; SEALS
    • G09BEDUCATIONAL OR DEMONSTRATION APPLIANCES; APPLIANCES FOR TEACHING, OR COMMUNICATING WITH, THE BLIND, DEAF OR MUTE; MODELS; PLANETARIA; GLOBES; MAPS; DIAGRAMS
    • G09B23/00Models for scientific, medical, or mathematical purposes, e.g. full-sized devices for demonstration purposes
    • G09B23/28Models for scientific, medical, or mathematical purposes, e.g. full-sized devices for demonstration purposes for medicine

Landscapes

  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: formalin (CH2O) is used, which is injected orally to male rats every day, at the rate of 0.1 ml per 100 g of animal weight, for 14 days. On day 14, animals are decapitate with subsequent laboratory tests and liver study. The model of subacute lesions caused by the oral introduction of formalin (CH2O) is obtained, represented by increased degenerative processes in the liver, evolving creatininemia, increased transaminase level, development of cholestasis, and histologically proven by expressed degenerative damages of almost all sites of the liver.
EFFECT: method allows to obtain a model of subacute liver damage to be used in an experiment.
2 tbl

Description

Изобретение относится к медицине, а именно к экспериментальной биологии, токсикологии, и может быть использовано для изучения формирования и прогрессирования изменений в печени, возникающих под действием токсико-химического повреждающего фактора.The invention relates to medicine, namely to experimental biology, toxicology, and can be used to study the formation and progression of changes in the liver that occur under the influence of toxic-chemical damaging factor.

Одно из ведущих мест профессиональной патологии у работников предприятий с особо вредными и опасными условиями труда занимают токсические поражения печени. Используемые на производствах гепатотропные вещества, например формалин, всасываются и депонируются в печени, подвергаясь метилированию, аминированию, карбоксилированию, окислению с участием ферментов гепатобилиарной системы [Т.Б. Попова, П.Н. Любченко, 1996; Л.Б. Лазебник, Э.Я. Селезнева, 2004]. При этом яды и продукты их дезинтоксикации оказывают неблагоприятное влияние на пигменто-, белково-, углеводообразующую и ферментативную функции печени, что сопровождается определенными гистоморфологическими сдвигами, проявляющиеся в воспалительной реакцией - токсическим поражением печени.One of the leading places in occupational pathology among employees of enterprises with particularly harmful and hazardous working conditions is toxic liver damage. Hepatotropic substances used in production, for example, formalin, are absorbed and deposited in the liver, undergoing methylation, amination, carboxylation, and oxidation with the participation of enzymes in the hepatobiliary system [TB. Popova, P.N. Lyubchenko, 1996; L.B. Lazebnik, E.Ya. Selezneva, 2004]. At the same time, poisons and products of their detoxification have an adverse effect on the pigment, protein, carbohydrate and enzymatic functions of the liver, which is accompanied by certain histomorphological changes that manifest themselves in an inflammatory reaction - toxic liver damage.

Использование формальдегида в производстве смол в качестве бактерицидного и бальзамического средства, фунгицида - в качестве промежуточных продуктов при производстве химических веществ и как компонента конечного использования потребительских товаров придает этому веществу определенное токсикологическое значение при экспериментальном моделировании токсических поражений печени.The use of formaldehyde in the production of resins as a bactericidal and balsamic agent, fungicide - as intermediates in the production of chemicals and as a component of the end use of consumer goods gives this substance a certain toxicological value in experimental modeling of toxic liver lesions.

Известны следующие способы моделирования токсического поражения печени в эксперименте: ежедневное использование вместо питьевой воды 10% раствора этанола (С2Н5ОН) свободным поением, с одновременным пероральным введением формалина (СН2О), крысам-самцам, через день, из расчета 0,2 мл на 100 г массы животного, в течение 21 дня, с последующим проведением лабораторных тестов и исследования печени (Козлова В.В, Котова М.Е., Репс В.Ф. Способ моделирования токсического гепатита формалином и этиловым спиртом в эксперименте. Изобретение, патент №2564758 от 09.10.2015 г.); подкожное введение крысам 50% масляного раствора четыреххлористого углерода (Литвинова, Е.С. Фармакологическая коррекция нарушений иммунного гомеостаза при сочетанном воздействии гепатотропных агентов и постоянного магнитного поля: автореферат дис. канд. мед. наук: 14.00.25. / Литвинова Елена Сергеевна. - Курск, 2005. - С. 22)The following methods are known for simulating toxic liver damage in an experiment: daily use of 10% ethanol solution (C 2 H 5 OH) instead of drinking water with free watering, with oral administration of formalin (CH 2 O), to male rats, every other day, at the rate of 0 , 2 ml per 100 g of animal mass, for 21 days, followed by laboratory tests and liver tests (Kozlova V.V., Kotova M.E., Reps V.F. Method for modeling toxic hepatitis with formalin and ethyl alcohol in the experiment. Invention No. 2564758 from October 10, 2015); subcutaneous administration to rats of a 50% oil solution of carbon tetrachloride (Litvinova, E.S., Pharmacological correction of immune homeostasis disturbances due to combined exposure to hepatotropic agents and a constant magnetic field: abstract of dissertation, Candidate of Medical Sciences: 14.00.25. / Litvinova Elena Sergeevna. - Kursk, 2005 .-- S. 22)

К недостаткам данных способов можно отнести введение четыреххлористого углерода в растворителе, подкожно, хотя большинство профессиональных заболеваний формируется при поступлении токсических веществ ингаляторно и per os, использование для моделирования токсичного соединения, а также сочетанное применение двух токсикантов, несколько усложняющее процесс моделирования.The disadvantages of these methods include the introduction of carbon tetrachloride in a solvent, subcutaneously, although most occupational diseases are formed upon the ingress of toxic substances by inhalation and per os, the use of a toxic compound for modeling, as well as the combined use of two toxicants, which somewhat complicates the modeling process.

Наиболее близким по технической сущности к предлагаемому изобретению является способ инициации токсического поражения печени путем перорального введения крысам-самцам четыреххлористого углерода (CCl4) марки ХЧ через день, из расчета 0,1 мл на 100 г массы животного, в течение 21 дня, с последующим проведением лабораторных тестов и с исследованием печени (Козлова В.В, Репс В.Ф., Котова М.Е. Способ моделирования токсического поражения четыреххлористым углеродом в токсикологическом эксперименте. Изобретение, патент №2487421 от 10.07. 2013 г.).Closest to the technical nature of the present invention is a method of initiating toxic liver damage by oral administration to male rats of carbon tetrachloride (CCl 4 ) grade ChP every other day, at the rate of 0.1 ml per 100 g of animal weight, for 21 days, followed by laboratory tests and liver tests (Kozlova V.V., Reps V.F., Kotova M.E. A method for modeling toxic damage by carbon tetrachloride in a toxicological experiment. Invention Patent No. 2487421 dated July 10, 2013).

Недостатком данного способа является относительная длительность создания экспериментальной патологической модели подострого поражения (21 день), а также использование четыреххлористого углерода марки ХЧ, представляющего опасность для здоровья экспериментаторов и оказывающего побочные эффекты на нервную, дыхательную и мочеполовую системы экспериментальных животных, снижая процент выживаемости. При этом следует отметить, что временной показатель для создания экспериментальных моделей подострого токсического гепатита формалином при нашем варианте моделирования составляет 14 дней и при ежедневном введении токсиканта позволяет за более короткие сроки достигнуть желаемого результата.The disadvantage of this method is the relative duration of the creation of an experimental pathological model of subacute lesion (21 days), as well as the use of carbon tetrachloride grade ChP, which is dangerous for the health of experimenters and has side effects on the nervous, respiratory and genitourinary systems of experimental animals, reducing the survival rate. It should be noted that the time indicator for creating experimental models of subacute toxic hepatitis with formalin for our modeling option is 14 days and with the daily introduction of a toxicant, it allows us to achieve the desired result in a shorter time.

Техническим результатом предлагаемого способа является решение задачи, заключающейся в создании модели подострого токсического поражения печени формалином в более короткие сроки, ежедневным пероральным введением, с соответствующей картиной поражения, физиологичным способом, с высокой воспроизводимостью и меньшей токсичностью для экспериментатора.The technical result of the proposed method is to solve the problem of creating a model of subacute toxic liver damage with formalin in a shorter time, daily oral administration, with an appropriate picture of the lesion, in a physiological way, with high reproducibility and less toxicity for the experimenter.

Преимущества предлагаемой модели в том, что она легко воспроизводима, является менее токсичной для экспериментатора и результат достигается за более короткий промежуток времени по сравнению с прототипом. Повышение воспроизводимости формирования подострого патологического процесса в печени достигается за счет ежедневного перорального введения формалина экспериментальным животным и сокращения сроков опыта до 14 дней.The advantages of the proposed model is that it is easily reproducible, less toxic for the experimenter, and the result is achieved in a shorter period of time compared to the prototype. Increasing the reproducibility of the formation of a subacute pathological process in the liver is achieved due to the daily oral administration of formalin to experimental animals and reducing the duration of the experiment to 14 days.

Указанный технический результат достигается тем, что ежедневно перорально крысам-самцам вводили формалин (CH2O) из расчета 0,1 мл на 100 г массы животного, в течение 14 дней, с последующим проведением лабораторных тестов.The specified technical result is achieved by the fact that daily formalin (CH 2 O) was administered orally to male rats at the rate of 0.1 ml per 100 g of animal weight for 14 days, followed by laboratory tests.

Для достижения адекватности предлагаемой модели изучено 50 крыс-самцов линии Вистар массой тела 200-215 г, разделенных на группы. Первую группу составляли 10 интактных животных. 20 крысам, представляющим вторую группу, ежедневно перорально вводили формалин (CH2O) из расчета 0,1 мл на 100 г массы животного, в течение 14 дней. 20 крысам третьей группы инициировалось токсическое поражение путем перорального введения крысам-самцам четыреххлористого углерода (CCl4) марки ХЧ через день, из расчета 0,1 мл на 100 г массы животного, в течение 21 дня, по способу прототипа.To achieve the adequacy of the proposed model, 50 male Wistar rats weighing 200-215 g, divided into groups, were studied. The first group consisted of 10 intact animals. 20 rats, representing the second group, were daily orally administered formalin (CH 2 O) at the rate of 0.1 ml per 100 g of animal weight for 14 days. To 20 rats of the third group, toxic damage was initiated by oral administration to male rats of carbon tetrachloride (CCl 4 ) of grade ChC every other day, at the rate of 0.1 ml per 100 g of animal weight, for 21 days, according to the prototype method.

На 14 и 21 день животных декапитировали с последующим проведением лабораторных тестов и патоморфологических и гистологических исследований печени. Изучали содержание в сыворотке крови аспартатаминотрансферазы (ACT) и аланинаминотрансферазы (АЛТ) в Ед/л, креатинина (КР) в мкмоль/л, щелочной фосфатазы (ЩФ) в МЕ/л, холестерина (X) в ммоль/л, триглицеридов (ТГ) в ммоль/л.On days 14 and 21, the animals were decapitated, followed by laboratory tests and pathomorphological and histological studies of the liver. The serum levels of aspartate aminotransferase (ACT) and alanine aminotransferase (ALT) in U / L, creatinine (KR) in micromol / L, alkaline phosphatase (ALP) in IU / L, cholesterol (X) in mmol / L, triglycerides (TG) were studied. ) in mmol / l.

Способ осуществлялся следующим образом. Группе животных в течение 14 дней ежедневно перорально вводили формалин (CH2O) из расчета 0,1 мл раствора на 100 г массы животного. Воспроизведение модели констатировали по изменению биохимических показателей, таких как содержание в сыворотке крови аспартатаминотрансферазы (ACT), аланинаминотрансферазы (АЛТ), креатинина (КР), щелочной фосфатазы (ЩФ), холестерина (X), триглицеридов (ТГ).The method was carried out as follows. A group of animals was orally administered formalin (CH 2 O) daily for 14 days at the rate of 0.1 ml of solution per 100 g of animal weight. Reproduction of the model was ascertained by a change in biochemical parameters, such as serum aspartate aminotransferase (ACT), alanine aminotransferase (ALT), creatinine (CR), alkaline phosphatase (ALP), cholesterol (X), triglycerides (TG).

Приготовление формалина (CH2O) производили путем растворения формальдегида в воде до концентрации 40%.Formalin (CH 2 O) was prepared by dissolving formaldehyde in water to a concentration of 40%.

Способ апробирован в условиях отдела изучения механизмов действия физических факторов (ОИМДФФ) ФГБУ ПГНИИК ФМБА России.The method was tested in the conditions of the department for studying the mechanisms of the action of physical factors (OIMDFF) FSBI PGNIIK FMBA of Russia.

Объектом исследований послужили 50 крыс-самцов линии Вистар, разделенные на 3 группы - интактные, с моделью подострой интоксикации формалином и с моделью прототипа. По истечении срока эксперимента сравнивали полученную картину патогенетических реакций в системах, контролирующих метаболические реакции.The object of the study was 50 Wistar male rats, divided into 3 groups - intact, with a model of subacute formalin intoxication and with a prototype model. At the end of the experiment, the resulting pattern of pathogenetic reactions in systems that control metabolic reactions was compared.

Способ может быть проиллюстрирован следующими примерами.The method can be illustrated by the following examples.

Интактная крыса-самец линии Вистар №3, масса тела 200 г. Дополнительных воздействий не получала. Исследование животного осуществлено одновременно с животными опытной группы. Содержание в крови КР - 78,5 мкмоль/л, ЩФ - 392,9 МЕ/л, ACT - 137,1 Ед/л, АЛТ - 80,0 Ед/л, X - 1,8 ммоль/л, ТГ - 2,1 ммоль/л.An intact male Wistar rat No. 3, body weight 200 g. No additional effects. The study of the animal was carried out simultaneously with the animals of the experimental group. The blood content of KR is 78.5 μmol / L, alkaline phosphatase is 392.9 IU / L, ACT is 137.1 U / L, ALT is 80.0 U / L, X is 1.8 mmol / L, and TG is 2.1 mmol / L.

Крыса-самец линии Вистар №11, масса тела - 205 г. Животному осуществлялось ежедневное пероральное введение формалина (CH2O) из расчета 0,1 мл на 100 г массы животного, в течение 14 дней. КР - 110,8 мкмоль/л, ЩФ - 454,2 МЕ/л, ACT - 202,0 Ед/л, АЛТ - 110,0 Ед/л, X - 0,8 ммоль/л, ТГ - 1,7 ммоль/л. Результат расценен как подострое отравление.Male Wistar rat No. 11, body weight - 205 g. The animal was administered daily oral administration of formalin (CH 2 O) at the rate of 0.1 ml per 100 g of animal weight for 14 days. KR - 110.8 μmol / L, alkaline phosphatase - 454.2 IU / L, ACT - 202.0 U / L, ALT - 110.0 U / L, X - 0.8 mmol / L, TG - 1.7 mmol / l. The result is regarded as subacute poisoning.

Крыса-самец №47 линии Вистар, масса тела 210 г. Через день, 1 раз в сутки, в течение 21 дня, перорально шприцем вводили 0,1 мл четыреххлористого углерода марки ХЧ (CCl4) на 100 г массы животного. Содержание в крови КР - 96,7 мкмоль/л, ЩФ - 500,2 МЕ/л, ACT - 299,5 Ед/л, АЛТ - 138,4 Ед/л X - 1,7 ммоль/л, ТГ - 1,9 ммоль/л. Результат расценен как подострое отравление.Male rat No. 47 of the Wistar line, body weight 210 g. After a day, 1 time per day, for 21 days, 0.1 ml of carbon tetrachloride grade CC (CCl 4 ) per 100 g of animal weight was injected orally with a syringe. The blood content of KR is 96.7 μmol / L, alkaline phosphatase - 500.2 IU / L, ACT - 299.5 U / L, ALT - 138.4 U / L X - 1.7 mmol / L, TG - 1 9 mmol / L. The result is regarded as subacute poisoning.

Figure 00000001
Figure 00000001

Из представленной таблицы следует, что увеличение содержания ACT; АЛТ (Р<0,001), а также повышение КР (Р<0,001) в сыворотке крови указывают на усиление степени поражения печени и свидетельствуют о повреждении гепатоцитов, значительное снижение показателей X и ТГ (Р<0,001, Р<0,01) указывает на снижение синтетической функции печени, а повышение уровня ЩФ (Р<0,001) - на развитие холестаза.From the table it follows that the increase in the content of ACT; ALT (P <0.001), as well as an increase in CR (P <0.001) in blood serum indicate an increase in the degree of liver damage and indicate damage to hepatocytes, a significant decrease in X and TG (P <0.001, P <0.01) indicates a decrease in the synthetic function of the liver, and an increase in the level of alkaline phosphatase (P <0.001) - for the development of cholestasis.

Для подтверждения достоверности изменения полученных биохимических показателей дополнительно проведены патоморфологические и гистологические исследования, для чего изучены макро- и микропрепараты.To confirm the reliability of changes in the obtained biochemical parameters, pathological and histological studies were additionally carried out, for which macro- and micropreparations were studied.

МакропрепаратыMacro preparations

Группа 1. При патоморфологическом исследовании печень крыс нормальных размеров 2,5±0,5 см на 2,42±0,3 см, средняя масса 6,65±0,3 г. Капсула печени плотная, гладкая, блестящая; консистенция плотная. У всех крыс печень при разрезе красно-коричневого цвета, без патологических очагов.Group 1. In a pathomorphological study, the liver of rats of normal sizes 2.5 ± 0.5 cm by 2.42 ± 0.3 cm, average weight 6.65 ± 0.3 g. The capsule of the liver is dense, smooth, shiny; the consistency is dense. All rats had a liver with a red-brown incision, without pathological foci.

Группа 2. При патоморфологическом исследовании печень некоторых крыс имела охряно-красный цвет, светло-коричневая с множественными кровоизлияниями. Орган гипертрофирован, в большинстве случаев рыхлый, в отдельных местах с уплотненными участками; размеры 4,3±0,4 см на 6,6±0,5 см; средняя масса 10,23±0,7 г. У большинства крыс печень на разрезе сухая, кровь не выступает, в ряде случаев кровь на разрезе выступает умеренно.Group 2. In a pathomorphological study, the liver of some rats was ocher-red, light brown with multiple hemorrhages. The organ is hypertrophied, in most cases loose, in some places with densified areas; dimensions 4.3 ± 0.4 cm by 6.6 ± 0.5 cm; average weight 10.23 ± 0.7 g. In most rats, the liver on the incision is dry, blood does not protrude, in some cases the blood on the incision protrudes moderately.

Figure 00000002
Figure 00000002

Подострое поражение подтверждается и увеличением в размере печени на 3,58 г или на 53,83%. Гепатотоксическое действие формалина на фоне приема 10% этилового спирта на печень крыс подтвердилось с достоверной вероятностью (Р<0,001).Subacute lesion is confirmed by an increase in liver size by 3.58 g or 53.83%. The hepatotoxic effect of formalin while taking 10% ethyl alcohol on rat liver was confirmed with a reliable probability (P <0.001).

Группа 1. Микроскопическая картина печени интактных животных без патологии. Балочное строение печени не нарушено. Гапатоциты содержат овальные ядра с хорошо просматриваемыми ядрышками. В единичных гепатоцитах выявлено наличие жировой дистрофии.Group 1. Microscopic picture of the liver of intact animals without pathology. The beam structure of the liver is not broken. Hapatocytes contain oval nuclei with well visible nucleoli. The presence of fatty degeneration was detected in single hepatocytes.

Группа 2. При гистологическом исследовании печени 20 отравленных крыс определяется дистрофия гепатоцитов в виде набухания, цитоплазма их мутная, границы клеток нечеткие, ядра также набухшие. Отдельные клетки очень крупные и представляют собой сплошную вакуоль. Основная локализация измененных гепатоцитов преимущественно в перипортальной зоне, тут же формируется дискомплексация печеночных балок, пролиферация соединительной ткани в портальных трактах с утолщением фиброзных тяжей. В описанных участках - лимфоплазмоцитарная инфильтрация с примесью единичных сегментоядерных лейкоцитов. В 30% случаев обнаружены мелкие очаги некрозов разных размеров, в которых структурные элементы клеток не визуализируются, а ткань печени представляет собой гомогенную бесструктурную массу. Среди клеток большое количество лейкоцитов, макрофагов. В целом, у подавляющего большинства крыс отмечена картина токсического гепатита с достаточно высокой интенсивностью повреждения тканей. Обнаруженные изменения свидетельствуют о развитии у животных типичной токсической дистрофии печени.Group 2. During a histological examination of the liver of 20 poisonous rats, hepatocyte dystrophy is determined in the form of swelling, their cytoplasm is cloudy, the cell borders are fuzzy, and the nuclei are also swollen. Individual cells are very large and represent a continuous vacuole. The main localization of altered hepatocytes is mainly in the periportal zone, discomplexation of hepatic beams and proliferation of connective tissue in portal tracts with thickening of fibrous cords are immediately formed. In the described areas - lymphoplasmacytic infiltration with an admixture of single segmented white blood cells. In 30% of cases, small foci of necrosis of various sizes were found, in which the structural elements of the cells are not visualized, and the liver tissue is a homogeneous structureless mass. Among the cells, a large number of leukocytes, macrophages. In general, the vast majority of rats showed a toxic hepatitis pattern with a fairly high rate of tissue damage. The detected changes indicate the development of a typical toxic liver dystrophy in animals.

Таким образом, получена модель подострой интоксикации, вызванной формалином, выражающаяся в усилении дегенеративных процессов в печени, развивающейся креатининемии, развитии холестаза и гистологически подтверждающаяся в выраженных дегенеративных повреждениях практически всех участков печени, т.е. предлагаемый способ моделирования является достаточно информативным и показывает эффективность его использования в эксперименте.Thus, a model of subacute intoxication caused by formalin was obtained, which manifests itself in an increase in degenerative processes in the liver, developing creatininemia, the development of cholestasis and histologically confirmed in severe degenerative lesions of almost all parts of the liver, i.e. the proposed modeling method is quite informative and shows the effectiveness of its use in the experiment.

Claims (1)

Способ моделирования подострого токсического поражения печени, отличающийся тем, что используют формалин (СН2O), который вводят крысам-самцам перорально, ежедневно, из расчета 0,1 мл на 100 г массы животного, в течение 14 дней, с последующим проведением лабораторных тестов.A method for modeling subacute toxic liver damage, characterized in that formalin (CH 2 O) is used, which is administered to male rats orally, daily, at a rate of 0.1 ml per 100 g of animal weight, for 14 days, followed by laboratory tests .
RU2016134265A 2016-08-22 2016-08-22 Method for simulation of subacute liver exposure to toxic formalin RU2627444C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2016134265A RU2627444C1 (en) 2016-08-22 2016-08-22 Method for simulation of subacute liver exposure to toxic formalin

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2016134265A RU2627444C1 (en) 2016-08-22 2016-08-22 Method for simulation of subacute liver exposure to toxic formalin

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2627444C1 true RU2627444C1 (en) 2017-08-08

Family

ID=59632639

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2016134265A RU2627444C1 (en) 2016-08-22 2016-08-22 Method for simulation of subacute liver exposure to toxic formalin

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2627444C1 (en)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110652579A (en) * 2019-11-12 2020-01-07 重庆医科大学附属第二医院 Application of phosphorylated muramic acid acyl dipeptide in preparation of drug for constructing fulminant liver injury animal model
RU2766772C1 (en) * 2021-05-05 2022-03-15 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования Санкт-Петербургский государственный университет ветеринарной медицины Method for simulating fatty liver disease using strontium sulphate

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SU1767516A1 (en) * 1990-05-04 1992-10-07 Киевский Медицинский Институт Им.Акад.А.А.Богомольца Method for simulating toxical liver destruction
RU2487421C1 (en) * 2011-11-10 2013-07-10 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Пятигорский государственный научно-исследовательский институт курортологии Федерального медико-биологического агентства" (ФГБУ ПГНИИК ФМБА России) Method for simulating carbon tetrachloride-induced toxic damage in toxicological experiment

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SU1767516A1 (en) * 1990-05-04 1992-10-07 Киевский Медицинский Институт Им.Акад.А.А.Богомольца Method for simulating toxical liver destruction
RU2487421C1 (en) * 2011-11-10 2013-07-10 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Пятигорский государственный научно-исследовательский институт курортологии Федерального медико-биологического агентства" (ФГБУ ПГНИИК ФМБА России) Method for simulating carbon tetrachloride-induced toxic damage in toxicological experiment

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
СКУРАТОВ А.Г., Экспериментальное моделирование токсического повреждения печени // Проблемы здоровья и экологии. 2011. N 4 (30) c.27-33. SALUGDA TL ey al, Oxidative stress-induced apoptosis of bile duct cells in primary biliary cirrhosis. J Autoimmun. 2007 Sep-Nov; N 29(2-3), c. 78-86. PMID: 17544621. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110652579A (en) * 2019-11-12 2020-01-07 重庆医科大学附属第二医院 Application of phosphorylated muramic acid acyl dipeptide in preparation of drug for constructing fulminant liver injury animal model
RU2766772C1 (en) * 2021-05-05 2022-03-15 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования Санкт-Петербургский государственный университет ветеринарной медицины Method for simulating fatty liver disease using strontium sulphate

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Jörs et al. Lineage fate of ductular reactions in liver injury and carcinogenesis
Bennington Cancer of the kidney—etiology, epidemiology, and pathology
Fortoul et al. Inhalation of vanadium pentoxide and its toxic effects in a mouse model
Hessel-Pras et al. The pyrrolizidine alkaloid senecionine induces CYP-dependent destruction of sinusoidal endothelial cells and cholestasis in mice
Junqueira et al. Cell secretion: A study of pancreas and salivary glands
Laconi et al. Transplantation of normal hepatocytes modulates the development of chronic liver lesions induced by a pyrrolizidine alkaloid, lasiocarpinet
RU2627444C1 (en) Method for simulation of subacute liver exposure to toxic formalin
Wang et al. Protective roles of hepatic GABA signaling in acute liver injury of rats
Toth et al. Methylhydrazine tumorigenesis in Syrian golden hamsters and the morphology of malignant histiocytomas
Hassan et al. Synergistic curative effect of chicory extract and cisplatin against thioacetamide-induced hepatocellular carcinoma
Goldfarb et al. Biliary ductules and bile secretion
Lei et al. Progesterone improves neurobehavioral outcome in models of intracerebral hemorrhage
Kusmic et al. Anti-fibrotic effect of paramylon nanofibers from the WZSL mutant of Euglena gracilis on liver damage induced by CCl4 in mice
Gök et al. Histopathological, immunohistochemical and biochemical alterations in liver tissue after fungicide-mancozeb exposures in Wistar albino rats
Li et al. Hepatic loss of Lissencephaly 1 (Lis1) induces fatty liver and accelerates liver tumorigenesis in mice
RU2487421C1 (en) Method for simulating carbon tetrachloride-induced toxic damage in toxicological experiment
Kadnikov et al. Deferred administration of afobazole induces Sigma1R-dependent restoration of striatal dopamine content in a mouse model of Parkinson’s disease
Fedorov et al. Mitochondria-targeted antioxidant SkQ1 prevents the development of experimental colitis in mice and impairment of the barrier function of the intestinal epithelium
Fan et al. Molecular mechanism of ethylparaben on zebrafish embryo cardiotoxicity based on transcriptome analyses
Mabeku et al. Toxicological evaluation of ethyl acetate extract of Cylicodiscus gabunensis stem bark (Mimosaceae)
WO1988000048A1 (en) Drug for prophylaxis and treatment of hepatopathy
RU2401463C1 (en) Method of induced gastric carcinoma simulation
Clayson et al. The potential for the use of cell proliferation studies in carcinogen risk assessment
Dillberger et al. Four cases of neoplasia in captive wild birds
Jestin et al. Mitochondrial disease disrupts hepatic allostasis and lowers the threshold for immune-mediated liver toxicity

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20180823

NF4A Reinstatement of patent

Effective date: 20190814

PC41 Official registration of the transfer of exclusive right

Effective date: 20200430

MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20200823