RU2623084C2 - Method for simultaneous production of hypericin and pseudohypericin - Google Patents

Method for simultaneous production of hypericin and pseudohypericin Download PDF

Info

Publication number
RU2623084C2
RU2623084C2 RU2015124674A RU2015124674A RU2623084C2 RU 2623084 C2 RU2623084 C2 RU 2623084C2 RU 2015124674 A RU2015124674 A RU 2015124674A RU 2015124674 A RU2015124674 A RU 2015124674A RU 2623084 C2 RU2623084 C2 RU 2623084C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
hypericin
pseudohypericin
pigments
extract
vacuum
Prior art date
Application number
RU2015124674A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2015124674A (en
Inventor
Василий Витальевич Пунегов
Константин Витальевич Чуча
Эльмира Элизбаровна Эчишвили
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт биологии Коми научного центра Уральского отделения Российской академии наук
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт биологии Коми научного центра Уральского отделения Российской академии наук filed Critical Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт биологии Коми научного центра Уральского отделения Российской академии наук
Priority to RU2015124674A priority Critical patent/RU2623084C2/en
Publication of RU2015124674A publication Critical patent/RU2015124674A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2623084C2 publication Critical patent/RU2623084C2/en

Links

Images

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K36/00Medicinal preparations of undetermined constitution containing material from algae, lichens, fungi or plants, or derivatives thereof, e.g. traditional herbal medicines
    • A61K36/18Magnoliophyta (angiosperms)
    • A61K36/185Magnoliopsida (dicotyledons)
    • A61K36/38Clusiaceae, Hypericaceae or Guttiferae (Hypericum or Mangosteen family), e.g. common St. Johnswort
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K2236/00Isolation or extraction methods of medicinal preparations of undetermined constitution containing material from algae, lichens, fungi or plants, or derivatives thereof, e.g. traditional herbal medicine
    • A61K2236/30Extraction of the material
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D11/00Solvent extraction
    • B01D11/02Solvent extraction of solids

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Natural Medicines & Medicinal Plants (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Alternative & Traditional Medicine (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Medical Informatics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
  • Extraction Or Liquid Replacement (AREA)
  • Coloring Foods And Improving Nutritive Qualities (AREA)

Abstract

FIELD: pharmacology.
SUBSTANCE: method for producing hypericin and pseudohypericin from raw phytomass material of the plants of the spotted St. John's wort and common St. John's wort species, comprising grinding the plant raw materials, degreasing the raw materials with an organic solvent, separating the plants lipophilic substances extract, drying the raw material, re-extracting the fat-free raw material with aqueous solutions of the organic solvent, filtering the obtained extracts, the concentration of the extracts, the chromatographic separation of the target pigments on a column containing silica gel with using eluents containing an organic solvent and water, the concentration of the obtained eluates fractions, combining the fractions, the crystallization of hypericin and pseudohypericin with the use of solutions of polar organic solvents in a non-polar one, drying the finished pigment, wherein the aboveground mass of the plants Hypericum perforatum L. and Hypericum maculatum Crantz. collected in the phase of mass budding and beginning of flowering is previously degreased with an organic solvent, thrice extracted by macerating with the 40-55% alcohol of the formula CnH2nOH, where n=2 or n=3, the process is conducted in a microwave chamber, the extract is separated by filtration or centrifugation and evaporated in vacuum to dryness, thereinafter the extract is subjected to precipitation on silica gel with the functional pores cover of dimethyloctadecyl groups, with the subsequent drying in vacuum, thereinafter the precipitate is placed in a precolumn for flash chromatography over a sorbent, and naphthodianthrones pigments are eluted by aqueous solutions of ethanol; the crystallization of hypericin and pseudohypericin is carried out from a mixture of ethanol-water in the vacuum crystallization mode with the simultaneous concentration of the mother liquor on a rotary evaporator, the hypericin and pseudohypericin drying is carried out in vacuum, under specific conditions.
EFFECT: method is simplified, it increases the variability of the plant raw material extraction, increases the effectiveness of the deep cleaning stage of hypericin and pseudohypericin.
3 dwg, 17 ex, 1 tbl

Description

Изобретение относится к фармацевтической промышленности и касается способа производства субстанций препаратов, содержащих нафтодиантроновые пигменты растений - гиперицин и псевдогиперицин для медицины, ветеринарии, биотехнологии и научных исследований.The invention relates to the pharmaceutical industry and relates to a method for the production of substances of preparations containing naphthodianthrone plant pigments - hypericin and pseudohypericin for medicine, veterinary medicine, biotechnology and scientific research.

В научной и патентной литературе есть известные сведения о способах экстракции указанных пигментов из растительного сырья, способах разделения указанных пигментов. В связи с этим коллектив авторов считает необходимым привести сравнительный анализ уже известных способов экстракции и разделения указанных пигментов.In the scientific and patent literature there is known information about the methods of extraction of these pigments from plant materials, methods of separation of these pigments. In this regard, the team of authors considers it necessary to give a comparative analysis of the already known methods of extraction and separation of these pigments.

В описании изобретения имеются следующие сокращения и обозначения:In the description of the invention there are the following abbreviations and symbols:

- H - гиперицин;- H - hypericin;

- РН - псевдогиперицин;- pH - pseudohypericin;

- МАЭ - микроволновая активация процесса экстракции;- MAE - microwave activation of the extraction process;

- (об/об/об) - объемные отношения;- (v / v / v) - volumetric relations;

- ТСХ - тонкослойная хроматография;- TLC - thin layer chromatography;

- УЗВ - ультразвуковая ванна;- UZV - ultrasonic bath;

- ВЭЖХ - высокоэффективная жидкостная хроматография;- HPLC - high performance liquid chromatography;

- ГЖХ - газожидкостная хроматография;- GLC - gas-liquid chromatography;

- ТМС-производных - триметилсилильных производных;- TMS derivatives - trimethylsilyl derivatives;

- ИК-спектры - инфракрасные спектры;- IR spectra - infrared spectra;

- спектры поглощения в УФ-(ультрафиолетовой) области.- absorption spectra in the UV (ultraviolet) region.

Известен способ экстракции гиперицина и псевдогиперицина в аппаратах Сокслета и хроматографического выделения псевдогиперицина [Zotou Α., Loukou Ζ. Determination of Hypericin and Pseudohypericin in Extracts from Hypericum perforatum L. and Pharmaceutical Preparations by Liquid Chromatography-Fluorescence Detection // Chromatographia, 2001. - V. 54. - P. 218-224]. Способ осуществляют путем экстракции пигментов смесью метанол-ацетон (1:1) в течение 6 часов, при постоянном кипячении экстрагента, концентрирования экстракта пигментов до сухого остатка, растворения сухого экстракта в метаноле и выделения РН препаративной жидкостной хроматографией в течение десяти дней, концентрирования фракций, содержащих по данным ВЭЖХ анализа РН, методом лиофильной сушки.A known method of extraction of hypericin and pseudo-hypericin in Soxhlet apparatus and chromatographic isolation of pseudo-hypericin [Zotou Α., Loukou Ζ. Determination of Hypericin and Pseudohypericin in Extracts from Hypericum perforatum L. and Pharmaceutical Preparations by Liquid Chromatography-Fluorescence Detection // Chromatographia, 2001. - V. 54. - P. 218-224]. The method is carried out by extracting pigments with a mixture of methanol-acetone (1: 1) for 6 hours, with constant boiling of the extractant, concentrating the pigment extract to a dry residue, dissolving the dry extract in methanol and isolating the pH by preparative liquid chromatography for ten days, concentration of fractions, containing according to HPLC analysis of pH, by freeze drying.

Недостатками указанного способа экстракции пигментов и выделения РН являются: применение высокотоксичных растворителей: метанол и смесь метанола с ацетоном (1:1). Большая продолжительность экстракции пигментов на аппарате Сокслета (6 ч) и высокие трудозатраты на стадии выделения РН методом жидкостной хроматографии в течение 10 дней.The disadvantages of this method of extraction of pigments and the allocation of pH are: the use of highly toxic solvents: methanol and a mixture of methanol with acetone (1: 1). Long duration of pigment extraction on a Soxhlet apparatus (6 hours) and high labor costs at the stage of pH isolation by liquid chromatography for 10 days.

Известен способ экстракции пигментов зверобоя и обогащения экстракта гиперицинами [Стасевич О.В., Леонтьев В.Н., Коваленко Н.А., Супиченко Г.Н. Хроматографический анализ и разделение гиперицинсодержащего экстракта зверобоя // Труды БГТУ, 2012. - №4 (151). - С. 183-185]. Способ осуществляют экстракцией пигментов в аппарате Сокслета этанолом, препаративным разделением экстракта жидкостной хроматографией на сорбенте Diaion НР-20, элюированием пигментов с сорбента водными растворами спирта концентрации (0, 20, 40, 60, 80 и 100%), а также смесью этанолоа и хлороформа (1:1). Установлено, что при этом гиперицины концентрируются при элюировании 80%-ным этанолом в объеме 304-356 мл, а также смесью этанола с хлороформом в объеме 540-564 мл. В результате авторам удалось повысить концентрацию H в полученных фракциях с 0,08% до 0,34%.A known method of extraction of St. John's wort pigments and enrichment of the extract with hypericins [Stasevich OV, Leontiev VN, Kovalenko NA, Supichenko GN Chromatographic analysis and separation of hypericin-containing St. John's wort extract // Transactions of BSTU, 2012. - No. 4 (151). - S. 183-185]. The method is carried out by extraction of pigments in a Soxhlet apparatus with ethanol, preparative separation of the extract by liquid chromatography on a Diaion HP-20 sorbent, elution of pigments with a sorbent with aqueous solutions of alcohol concentration (0, 20, 40, 60, 80, and 100%), as well as a mixture of ethanol and chloroform (1: 1). It was found that in this case, hypericins are concentrated during elution with 80% ethanol in a volume of 304-356 ml, as well as with a mixture of ethanol with chloroform in a volume of 540-564 ml. As a result, the authors were able to increase the concentration of H in the obtained fractions from 0.08% to 0.34%.

Недостатками указанного способа экстракции пигментов и выделения H являются: применение высокотоксичных растворителей - смесь этанола с хлороформом (1:1). Применение сорбента для хроматографического обогащения пигментов, не обеспечивающего селективное разделение H и РН с получением препаративно чистых соединений. Большая продолжительность процесса хроматографического разделения пигментов на сорбентах с полистирольной матрицей, типа «Diaion НР-20».The disadvantages of this method of extraction of pigments and the allocation of H are: the use of highly toxic solvents - a mixture of ethanol with chloroform (1: 1). The use of a sorbent for chromatographic enrichment of pigments that does not provide selective separation of H and pH to obtain preparative pure compounds. The long duration of the process of chromatographic separation of pigments on sorbents with a polystyrene matrix, such as "Diaion HP-20".

Известен способ получения H и РН, приведенный в патенте [US Patent 5047435 Antiviral compositions containing aromatic polycyclic diones and method for treating retrovirus infections / Lavie; David (Rehovot, IL); Meruelo; Daniel (Scarborough, NY); Lavie; Gad (New York, NY); Revel; Michel (Rehovot, IL); Vande Velde; Vincent (Boncelles, BE); Rotman; Dalia (Rehovot, IL) Assignee: New York University (New York, NY); Yeda Research and Development Company, Ltd. (Rehovot, IL), Foreign Application Priority Data: Aug 08, 1986. Intern'l Class: A61K 031/015; A61K 045/08; A61L 002/18; A61L 015/00/], заключающийся в сушке растительного сырья при 55°С, измельчении сырья, экстракции 1 кг травы зверобоя ацетоном (около 5-10 л на кг) в аппарате Сокслета до обесцвечивания растворителя в извлечении (9-55 ч), концентрирования ацетонового экстракта выпариванием в вакууме досуха с получением остатка 95 г, хроматографического фракционирования полученного сухого экстракта на колонке, заполненной силикагелем 60 (0,06-0,20 мм). Для этого авторы патента растворяют 25 г полученного сухого экстракта в 500 мл ацетона, добавляют равное количество силикагеля 60 и упаривают на роторном испарителе с перемешиванием до получения однородной и сухой смеси, которую затем помещают в верхнюю часть хроматографической колонки, содержащей один кг силикагеля 60 и элюируют хлороформом до тех пор, пока растворитель не достигнет дна колонки. Затем колонку промывают смесью растворителей, включающей хлороформ-ацетон-метанол, 75:15:10 (об/об/об). После снижения интенсивности красной окраски элюата промывают колонку смесью растворителей хлороформ-ацетон-метанол, 55:15:10 (об/об/об). Собирают фракции по 250 мл. Каждую фракцию анализируют методом ТСХ. Дальнейшую очистку и разделение H и РН достигают последовательно двукратной флеш-хроматографией с использованием силикагеля 60 (меш 0,04-0,06) под давлением. Получают два основных компонента: H с выходом 0,19 г и РН с выходом 0,73 г.A known method for producing H and pH is given in patent [US Patent 5047435 Antiviral compositions containing aromatic polycyclic diones and method for treating retrovirus infections / Lavie; David (Rehovot, IL); Meruelo; Daniel (Scarborough, NY); Lavie; Gad (New York, NY); Revel Michel (Rehovot, IL); Vande Velde; Vincent (Boncelles, BE); Rotman; Dalia (Rehovot, IL) Assignee: New York University (New York, NY); Yeda Research and Development Company, Ltd. (Rehovot, IL), Foreign Application Priority Data: Aug 08, 1986. Intern'l Class: A61K 031/015; A61K 045/08; A61L 002/18; A61L 015/00 /], which consists in drying the plant material at 55 ° C, grinding the raw material, extracting 1 kg of St. John's wort grass with acetone (about 5-10 l per kg) in the Soxhlet apparatus until the solvent is discolored in extraction (9-55 h), concentrating the acetone extract by evaporation in vacuo to dryness to obtain a residue of 95 g, chromatographic fractionation of the obtained dry extract on a column filled with silica gel 60 (0.06-0.20 mm). For this, the authors of the patent dissolve 25 g of the obtained dry extract in 500 ml of acetone, add an equal amount of silica gel 60 and evaporate on a rotary evaporator with stirring until a homogeneous and dry mixture is obtained, which is then placed on top of a chromatographic column containing one kg of silica gel 60 and elute chloroform until the solvent reaches the bottom of the column. The column is then washed with a solvent mixture comprising chloroform-acetone-methanol 75:15:10 (v / v / v). After reducing the intensity of the red color of the eluate, the column is washed with a solvent mixture of chloroform-acetone-methanol, 55:15:10 (v / v / v). Fractions of 250 ml are collected. Each fraction was analyzed by TLC. Further purification and separation of H and pH are achieved sequentially by double flash chromatography using silica gel 60 (mesh 0.04-0.06) under pressure. Two main components are obtained: H with a yield of 0.19 g and a pH with a yield of 0.73 g.

Недостатками указанного способа экстракции пигментов и выделения H и РН являются: применение высокотоксичных растворителей - хлороформ, ацетон, метанол. Применение сорбента для хроматографического обогащения пигментов силикагеля 60, не обеспечивающего селективное разделение гиперицина и псевдогиперицина с получением препаративно чистых соединений в одну стадию флеш-хроматографии. Большая продолжительность процесса экстракции сырья ацетоном в аппарате Сокслета и хроматографического разделения пигментов на сорбентах типа силикагель 60.The disadvantages of this method of extraction of pigments and the allocation of H and pH are: the use of highly toxic solvents - chloroform, acetone, methanol. The use of a sorbent for chromatographic enrichment of silica gel 60 pigments, which does not provide selective separation of hypericin and pseudohypericin to obtain preparative pure compounds in one flash chromatography step. The long duration of the process of extraction of raw materials with acetone in a Soxhlet apparatus and chromatographic separation of pigments on sorbents such as silica gel 60.

Наиболее близким по технической сущности и достигаемому результату является способ экстракции H и РН из лекарственной фитомассы зверобоя продырявленного, описанный в статье [Пунегов В.В., Костромин В.И., Фомина М.Г., Зайнуллин В.Г., Юшкова Е.А., Белых Д.В., Чукичева И.Ю., Зайнуллин Г.Г. Экстрагирование гиперицина и псевдогиперицина из зверобоя продырявленного в условиях микроволновой активации процесса // Химия растительного сырья, 2014. - №1. - С. 125-130] и принимаемого за прототип в части стадии экстракции целевых пигментов. Способ экстракции H и РН заключается в измельчении лекарственной фитомассы зверобоя продырявленного до травяной муки, проходящей через сито с ячейкой 0,5 мм, трехкратной экстракции липофильных веществ хлороформом при гидромодуле, равном тридцати, с активацией процесса массопереноса обработкой суспензии сырье-хлороформ ультразвуком в течение 30 с, выдержки суспензии при комнатной температуре в течение 30 мин, фильтрования хлороформного экстракта хлорофилла и липидов через слой ваты и бумажного фильтра, сушки обезжиренного сырья в вакууме в токе воздуха с целью полного удаления паров хлороформа из сырья, трехкратной экстракции суммы H и РН из обезжиренного сырья в течение 60 с водным раствором этилового спирта или изопропанола при гидромодуле от 20 до 48 в условиях микроволновой активации процесса экстракции (далее по тексту МАЕ (э)) с нагреванием суспензии в микроволной камере до 65°С при частоте СВЧ излучения 2450 МГц, удельной мощности СВЧ в условиях эксперимента 0,0205 Вт/см3. Полученные экстракты объединяют и концентрируют в вакууме на роторном испарителе с целью рекуперации растворителей.The closest in technical essence and the achieved result is the method of extraction of H and pH from the medicinal phytomass of St. John's wort, described in the article [Punegov V.V., Kostromin V.I., Fomina MG, Zainullin V.G., Yushkova E .A., Belykh D.V., Chukicheva I.Yu., Zaynullin G.G. Extraction of hypericin and pseudohypericin from St. John's wort perforated under microwave activation of the process // Chemistry of plant raw materials, 2014. - No. 1. - S. 125-130] and taken as a prototype in part of the extraction stage of the target pigments. The method of extracting H and pH consists in grinding the medicinal phytomass of St. John's wort perforated to grass flour, passing through a sieve with a 0.5 mm cell, triple extraction of lipophilic substances with chloroform with a hydromodule of thirty, with activation of the mass transfer process by treating the feedstock-chloroform suspension with ultrasound for 30 c, holding the suspension at room temperature for 30 minutes, filtering the chloroform extract of chlorophyll and lipids through a layer of cotton and paper filter, drying the fat-free raw materials in vacuum in a stream of air in order to completely remove chloroform vapors from the feed, triple extraction of the sum of H and pH from non-fat feed for 60 with an aqueous solution of ethyl alcohol or isopropanol with a hydromodule from 20 to 48 under microwave activation of the extraction process (hereinafter referred to as MAE (e )) with heating the suspension in a microwave chamber to 65 ° C at a microwave frequency of 2450 MHz, the specific microwave power under the experimental conditions of 0.0205 W / cm 3 . The resulting extracts are combined and concentrated in vacuo on a rotary evaporator to recover solvents.

Недостатками указанного способа экстракции H и РН являются: применение в качестве экстрагента липофильных веществ токсичного хлороформа. Для полного удаления паров хлороформа из обезжиренного сырья требуется много времени. При этом пары хлороформа не подвергаются улавливанию и загрязняют атмосферу. Кроме того, как правило, технический хлороформ содержит в следовых количествах диоксины, которые могут вызвать контаминацию растительного сырья при использовании хлороформа.The disadvantages of this method of extraction of H and pH are: the use of toxic chloroform as an extractant of lipophilic substances. It takes a long time to completely remove chloroform vapor from nonfat raw materials. In this case, chloroform vapors are not trapped and pollute the atmosphere. In addition, as a rule, technical chloroform contains dioxins in trace amounts, which can cause contamination of plant materials using chloroform.

Экстракцию H и РН осуществляют быстрым нагреванием суспензии спирт-сырье в СВЧ камере до 65°С за 60 с, но при температуре более 60°С происходит интенсивная экстракция гликозидов флавоноидов и крахмала из фитомассы в раствор и загрязнение экстракта пигментов балластными, в данном случае, веществами. Эти вещества в дальнейшем снижают селективность хроматографического разделения H и РН в условиях флеш-хроматографии. Кроме того, в условиях постоянного быстрого нагревания суспензии сырье-экстрагент в СВЧ камере возможен локальный перегрев, сопровождающийся частичным разрушением целевых пигментов, а также при этом есть реальная опасность внезапного теплового выброса экстракционной массы из экстрактора.H and pH are extracted by rapidly heating the alcohol-raw material suspension in the microwave chamber to 65 ° C in 60 s, but at a temperature of more than 60 ° C, the glycosides of flavonoids and starch are intensively extracted from the phytomass into the solution and the pigment extract is polluted with ballast, in this case substances. These substances further reduce the selectivity of the chromatographic separation of H and pH under flash chromatography. In addition, under conditions of constant rapid heating of the suspension, the extractant feedstock in the microwave chamber may cause local overheating, accompanied by partial destruction of the target pigments, and there is also a real danger of a sudden thermal release of the extraction mass from the extractor.

Технический результат заключается в упрощении и сокращении затрат, повышении вариабельности экстракции растительного сырья и условий проведения экстракции, повышении эффективности стадии глубокой очистки гиперицина и псевдогиперицина методом препаративной жидкостной флеш-хроматографии от сопутствующих экстрактивных веществ растения.The technical result consists in simplifying and reducing costs, increasing the variability of extraction of plant materials and extraction conditions, increasing the efficiency of the stage of deep purification of hypericin and pseudohypericin by preparative liquid flash chromatography from associated extractive plant substances.

Изобретение поясняется рисунками:The invention is illustrated by drawings:

- на рис. 1 приведена хроматограмма ВЭЖХ анализа полученных пигментов. ВЭЖ хроматограммы чистых пигментов зверобоя продырявленного - гиперицина и псевдогиперицина, по вертикали: единицы оптической плотности (Б (бел.)), по горизонтали - время хроматографического удерживания компонентов, мин. Хроматограф «Милихром-5», VIS-детектор, колонка 80*2 мм, сорбент «Нуклеосил С18», 5 мкм, элюент ацетонитрил-этанол с линейным градиентом возрастания концентрации этанола, подкисленного уксусной кислотой (1%).- in fig. 1 shows the chromatogram of the HPLC analysis of the obtained pigments. HPLC chromatograms of pure perforated St. John’s wort pigments — hypericin and pseudohypericin — vertically: units of optical density (B (white)), horizontally — time of chromatographic retention of components, min. Milichrom-5 chromatograph, VIS detector, 80 * 2 mm column, Nucleosil C18 sorbent, 5 μm, eluent acetonitrile-ethanol with a linear gradient of increasing concentration of ethanol acidified with acetic acid (1%).

- на рис. 2 приведены ИК-спектры (ИК-спектр гиперицина (тонкая пленка на диске KBr), идентичный с ИК-спектром псевдогиперицина. Фурье спектрометр «Инфралюм ФТ-02».- in fig. Figure 2 shows the IR spectra (IR spectrum of hypericin (a thin film on a KBr disk) identical to the IR spectrum of pseudohypericin. Infralum FT-02 Fourier spectrometer.

- на рис. 3 приведен спектр поглощения в УФ- и видимой области спиртовых растворов полученных образцов гиперицина и псевдогиперицина. Спектрометр Shimadzu UV1700 (Япония).- in fig. Figure 3 shows the absorption spectrum in the UV and visible regions of alcohol solutions of the obtained samples of hypericin and pseudohypericin. Shimadzu UV1700 spectrometer (Japan).

В таблице 1 отражены условия реализации способа одновременного получения гиперицина (Н) и псевдогиперицина (РН), состав пигментов, практический выход и степень извлечения из растительного сырья.Table 1 shows the conditions for the implementation of the method for the simultaneous production of hypericin (H) and pseudohypericin (PH), the composition of the pigments, the practical yield and the degree of extraction from plant materials.

Способ осуществляется следующим образом: сырьем для производства гиперицина и псевдогиперицина является измельченная лекарственная фитомасса растений Hypericum maculatum Crantz и Hypericum peforatum L., заготавливаемая в фазе бутонизации или массового цветения растений.The method is as follows: the raw material for the production of hypericin and pseudohypericin is the chopped medicinal plant phytomass of Hypericum maculatum Crantz and Hypericum peforatum L., harvested in the phase of budding or mass flowering of plants.

Верхнюю часть олиственных стеблей зверобоя в фазе бутонизации-массового цветения длиной 20-25 см срезают и высушивают вне действия прямого солнечного света. Высушенное сырье перемалывают до частиц, проходящих через сито с ячейкой 0,5 мм. Травяную муку зверобоя вносят в стеклянную колбу объемом 1 л и экстрагируют липофильные вещества (хлорофиллы, каротиноиды, липиды) гексаном или петролейным эфиром, содержащим 10-20% (объемная доля) ацетона, при гидромодуле 4,8. Интенсивно перемешивают суспензию в течение 20 мин и выдерживают в ультразвуковой ванне в течение 5 мин при удельной мощности ультразвукового излучателя 39 Вт/дм3. Полученный экстракт отделяют фильтрованием. Сырье на фильтре дополнительно промывают раствором гексан-ацетон предпочтительно при объемном отношении 8:2 три раза по 0,1 л. Сырье, очищенное от липофильных веществ, высушивают в вакууме водоструйного насоса для удаления следов растворителей. Экстракт липофильных веществ концентрируют на ротационном испарителе в вакууме при температуре 45°С досуха для рекуперации гексана (или петролейного эфира) и ацетона. Полученная хлорофилльно-каротиноидная паста является сопутствующим продуктом при производстве гиперицина и псевдогиперицина. Пасту извлекают из кубовой емкости и фасуют в герметичные пластиковые емкости. Обезжиренное сырье вносят в экстрактор, снабженный обратным холодильником, и приливают 55%-ного этанола или изопропанола в таком количестве, чтобы гидромодуль был в интервале 40-48. Суспензию выдерживают 30 мин для набухания сырья и трехкратно экстрагируют гиперицин и псевдогиперицин в СВЧ камере с частотой излучения 2450 МГц, с удельной мощностью 41,6 Вт/дм3 при гидромодуле 40-48 с нагреванием суспензии сырье-экстрагент до 60-70°С (предпочтительно 66°С) за 29-46 мин (предпочтительно за 42 мин), с периодическим перемешиванием суспензии в условиях широтно-импульсной модуляции СВЧ излучения со скважностью пачек импульсов, равной 1,3, длительностью пачек импульсов СВЧ 23 с. Полученный после фильтрации (или центрифугирования) суммарный экстракт в объеме 14,3 л концентрируют в вакууме с одновременным облучением экстракта в отгонной колбе емкостью 10 л лампой накаливания в 95 Вт на ротационном испарителе при температуре 50°С досуха. Получают 60 г сухого экстракта фиолетового цвета. При облучении экстракта в процессе концентрирования в вакууме в течение 2,5 ч происходит фотоциклизация сопутствующих соединений: протогиперицина и протопсевдогиперицина соответственно до H и PH. Фотоциклизация указанных веществ позволяет повысить практический выход целевых пигментов. С целью дальнейшего фракционирования методом флеш-хроматографии суммарный экстракт пигментов смешивают с водой (0,25 л), диспергируют в УЗВ и смешивают с 300 г сорбента «Диасорб 130 С16Т». Для преципитации сорбент с экстрактом высушивают в вакууме при перемешивании на ротационном испарителе при температуре 50°С. Досушивают преципитат в вакууме масляного насоса при остаточном давлении 0,05-0,08 Па. Преципитат H и РН на «Диасорбе С16» представляет собой порошок коричнево-фиолетового цвета в количестве 360 г. В форколонку системы для препаративной флеш-хроматографии «FLASH150» вносят преципитат пигментов и элюируют псевдогиперицин и гиперицин через хроматографическую колонку внутренним диаметром 160 мм и высотой слоя сорбента 320 мм, заполненную сорбентом, фракции 40-64 мкм, содержащим на поверхности пор силикагеля функциональный покров из диметилоктадецилсилильных групп. Колонка снабжена пневматической системой для радиального сжатия сорбента в колонке, а также входным и выходным радиальным распределителем потока элюента вдоль колонки. В качестве элюента используют водные растворы этилового спирта с возрастанием концентрации от 5% до 60%. Для подавления диссоциации пигментов и увеличения селективности хроматографического разделения используют элюенты, подкисленные уксусной кислотой. Элюируют пигменты с колонки в режиме ступенчатого градиента концентрации этилового спирта. Псевдогиперицин элюируется из колонки 20 и 30%-ным этанолом. Гиперицин элюируется 40 и 45%-ным этанолом. Полученные фракции по 5 л каждая анализируются методом ВЭЖХ по тексту на аналитическом хроматографе «Милихром 5» и по результатам анализа объединяются отдельно фракции, содержащие псевдогиперицин и гиперицин. Фракции красного цвета, содержащие целевые пигменты концентрируются в вакууме на ротационном испарителе. В результате получают фракцию концентрата псевдогиперицина и гиперицина. Полученные концентраты псевдогиперицина и гиперицина растворяют соответственно в 800 мл и 300 мл 95%-ного этилового спирта при кипячении. Растворы фильтруют через мембранный фильтр из фторопласта с порами 0,2 мкм и концентрируют с одновременной вакуумной кристаллизацией на ротационном испарителе ИР-1М при остаточном давлении 33-13 кПа (25-10 мм рт. ст.) до остатка объемом соответственно 5 и 2 мл. Остаток, содержащий целевые продукты, отфильтровывают через мембранный фильтр из фторопласта с порами 0,2 мкм. Получают, после сушки в вакууме при 60°С, на фильтре в кристаллическом виде 0,06-0,073 г псевдогиперицина и 0,014-0,21 г гиперицина. По данным ВЭЖХ анализа массовая доля псевдогиперицина и гиперицина в полученных образцах 94-98%.The upper part of the foliage stalks of St. John's wort in the phase of budding-mass flowering 20-25 cm long is cut and dried out of direct sunlight. The dried raw material is ground to particles passing through a 0.5 mm sieve. St. John's wort herbal flour is introduced into a 1 L glass flask and the lipophilic substances (chlorophylls, carotenoids, lipids) are extracted with hexane or petroleum ether containing 10-20% (volume fraction) of acetone, with a hydromodule 4.8. The suspension is intensively mixed for 20 minutes and kept in an ultrasonic bath for 5 minutes at a specific power of the ultrasonic emitter of 39 W / dm 3 . The resulting extract was separated by filtration. The raw materials on the filter are additionally washed with a solution of hexane-acetone, preferably at a volume ratio of 8: 2 three times in 0.1 l. Raw materials purified from lipophilic substances are dried in a vacuum of a water-jet pump to remove traces of solvents. The extract of lipophilic substances is concentrated on a rotary evaporator in vacuum at a temperature of 45 ° C to dryness for the recovery of hexane (or petroleum ether) and acetone. The resulting chlorophyll-carotenoid paste is a co-product in the production of hypericin and pseudo-hypericin. The paste is removed from the bottoms and Packed in sealed plastic containers. Fat-free raw materials are introduced into an extractor equipped with a reflux condenser, and 55% ethanol or isopropanol are added in such an amount that the hydromodule is in the range of 40-48. The suspension is held for 30 minutes to swell the raw materials and extracted three times with hypericin and pseudo-hypericin in a microwave chamber with a radiation frequency of 2450 MHz, with a specific power of 41.6 W / dm 3 with a hydraulic module of 40-48 with heating of the suspension of the raw material-extractant to 60-70 ° C ( preferably 66 ° C) for 29-46 min (preferably 42 min), with periodic stirring of the suspension under conditions of pulse-width modulation of microwave radiation with a pulse duty cycle of 1.3, and a duration of microwave pulse packets of 23 s. The total extract obtained after filtration (or centrifugation) in a volume of 14.3 L was concentrated in vacuo while the extract was irradiated in a 10 L distillation flask with a 95 W incandescent lamp on a rotary evaporator at a temperature of 50 ° C to dryness. Get 60 g of a dry extract of purple color. When the extract is irradiated during concentration in vacuo for 2.5 h, the photocyclization of the concomitant compounds protogipericin and protopsevidogipericin occurs to H and PH, respectively. Photocyclization of these substances can increase the practical yield of target pigments. For the purpose of further fractionation by flash chromatography, the total pigment extract is mixed with water (0.25 L), dispersed in an ultrasonic grinder and mixed with 300 g of the Diasorb 130 C16T sorbent. For precipitation, the sorbent with the extract is dried in vacuum with stirring on a rotary evaporator at a temperature of 50 ° C. Dry the precipitate in a vacuum oil pump at a residual pressure of 0.05-0.08 Pa. The precipitate H and pH on Diasorb C16 is a brown-violet powder in an amount of 360 g. Pigment precipitate is added to the front column of the FLASH150 preparative flash chromatography system and pseudohypericin and hypericin are eluted through a chromatographic column with an inner diameter of 160 mm and a layer height sorbent 320 mm, filled with sorbent, fractions 40-64 microns, containing on the surface of the pores of silica gel a functional coating of dimethyl octadecylsilyl groups. The column is equipped with a pneumatic system for radial compression of the sorbent in the column, as well as an inlet and outlet radial distributor of eluent flow along the column. As an eluent, aqueous solutions of ethyl alcohol are used with an increase in concentration from 5% to 60%. To suppress the dissociation of pigments and increase the selectivity of chromatographic separation, eluents acidified with acetic acid are used. Pigments from the column were eluted in a stepwise gradient mode of ethanol concentration. Pseudohypericin is eluted from the column with 20 and 30% ethanol. Hypericin is eluted with 40 and 45% ethanol. The obtained fractions of 5 l each were analyzed by HPLC using the text on a Milichrome 5 analytical chromatograph and the fractions containing pseudo-hypericin and hypericin were combined separately according to the analysis results. Red fractions containing the desired pigments are concentrated in vacuo on a rotary evaporator. The result is a fraction of a concentrate of pseudohypericin and hypericin. The resulting concentrates of pseudohypericin and hypericin are dissolved in 800 ml and 300 ml of 95% ethyl alcohol, respectively, when boiled. The solutions are filtered through a 0.2 micron fluoroplastic membrane filter and concentrated with simultaneous vacuum crystallization on an IR-1M rotary evaporator at a residual pressure of 33-13 kPa (25-10 mmHg) to a residue of 5 and 2 ml, respectively . The residue containing the desired products is filtered through a 0.2 Fm fluoroplastic membrane filter. Received, after drying in vacuum at 60 ° C, on the filter in a crystalline form, 0.06-0.073 g of pseudohypericin and 0.014-0.21 g of hypericin. According to HPLC analysis, the mass fraction of pseudohypericin and hypericin in the obtained samples is 94-98%.

Маточные растворы, содержащие этанол упаривают досуха. Твердый остаток, представляющий собой смесь минорных диантроновых соединений зверобоя и следов каротиноидов растения, является сопутствующим продуктом производства гиперицина и псевдогиперицина. Его извлекают из отгонной колбы и после сушки в вакууме фасуют в герметичную тару. Смесь ацетон-гексан и ацетон-петролейный эфир перегоняют на ректификационной установке и после обезвоживания синтетическим цеолитом CaX, используют многократно для производства опытных партий пигментов зверобоя с целью медико-биологических исследований их свойств. Растительное сырье после экстракции целевых пигментов помещают в кубовую емкость лабораторной ретификационной установки и путем перегонки производят рекуперацию этилового спирта или изопропанола, сорбированного растительным жомом. Растительный остаток утилизируют.The mother liquors containing ethanol are evaporated to dryness. The solid residue, which is a mixture of minor diantronic compounds of St. John's wort and traces of plant carotenoids, is a co-product of the production of hypericin and pseudo-hypericin. It is removed from the distillation flask and, after drying in vacuum, is Packed in a sealed container. A mixture of acetone-hexane and acetone-petroleum ether is distilled at a distillation unit and after dehydration with synthetic zeolite CaX, it is used repeatedly for the production of experimental batches of St. John's wort pigments for the purpose of biomedical studies of their properties. After extraction of the target pigments, the plant material is placed in the stillage capacity of the laboratory retification unit and, by distillation, ethyl alcohol or isopropanol sorbed by the vegetable pulp are recovered. The plant residue is disposed of.

Данный способ можно с успехом использовать в фармацевтической промышленности, поэтому он соответствует критерию «промышленно применимо», «новизна» и «изобретательский уровень».This method can be successfully used in the pharmaceutical industry, therefore, it meets the criteria of "industrially applicable", "novelty" and "inventive step".

Способ одновременного производства гиперицина и псевдогиперицина конкретизируется следующими примерами:A method for the simultaneous production of hypericin and pseudohypericin is specified by the following examples:

Пример 1. Подготовка растительного сырья. Верхнюю часть олиственных стеблей зверобоя пятнистого (Hypericum maculatum Crantz) в фазе бутонизации-массового цветения длиной 20-25 см срезали и высушивали вне действия прямого солнечного света. Сырье было заготовлено в Сыктывдинском районе Республики Коми, а сырье зверобоя продырявленного (Hypericum perforatum L.) заготавливали с экспериментальных делянок Ботанического сада Института биологии Коми НЦ УрО РАН. Высушенное сырье перемалывали на мельнице до частиц, проходящих через сито с ячейкой 0,5 мм. По результатам ВЭЖХ анализа, в полученной травяной муке из зверобоя пятнистого содержится 0,095% суммы гиперицина и псевдогиперицина, в том числе 0,075% псевдогиперицина и 0,020% гиперицина. Травяная мука из зверобоя продырявленного содержит 0,087% суммы гиперицина и псевдогиперицина, в том числе 0,065% псевдогиперицина и 0,022% -гиперицина.Example 1. Preparation of plant materials. The upper part of the foliage stalks of St. John's wort (Hypericum maculatum Crantz) in the phase of budding-mass flowering 20-25 cm long was cut and dried out of direct sunlight. The raw materials were prepared in the Syktyvdinsky district of the Komi Republic, and the raw materials of perforated Hypericum (Hypericum perforatum L.) were procured from experimental plots of the Botanical Garden of the Institute of Biology of the Komi Scientific Center, Ural Branch of the Russian Academy of Sciences. The dried feed was ground in a mill to particles passing through a 0.5 mm sieve. According to the results of the HPLC analysis, the obtained grass meal from St. John's wort contains 0.095% of the sum of hypericin and pseudo-hypericin, including 0.075% of pseudo-hypericin and 0.020% of hypericin. Herbal flour from Hypericum perforatum contains 0.087% of the sum of hypericin and pseudo-hypericin, including 0.065% of pseudo-hypericin and 0.022% -hypericin.

Пример 2. Экстракция сопутствующих липофильных веществ (хлорофиллы и каротиноиды, триглицериды). 124 г воздушно-сухой травяной муки зверобоя пятнистого внесли в стеклянную колбу объемом 1 л и прилили 0,6 л гексана, содержащего 10% (объемная доля) ацетона. Гидромодуль 5. Интенсивно перемешивали суспензию на магнитной мешалке в течение 20 мин и выдерживали в УЗВ-2/150-ТН (ООО «Рэлтек», Россия) в течение 5 мин при удельной мощности ультразвукового излучателя 39 Вт/дм3. Полученный экстракт фильтровали на нутч-фильтре. Сырье на фильтре дополнительно промывали раствором гексан-ацетон (9:1) три раза по 0,1 л. Сырье, очищенное от липофильных веществ, высушивали в вакууме водоструйного насоса для удаления следов растворителей. Экстракт концентрировали на ротационном испарителе ИР-1 (ОАО «Химлаборприбор», г. Клин, Россия) в вакууме при температуре 45°С досуха для рекуперации гексана и ацетона. Полученная хлорофилльно-каротиноидная паста является сопутствующим продуктом при производстве гиперицина и псевдогиперицина. Пасту извлекали из кубовой емкости и фасовали в герметичные пластиковые емкости.Example 2. Extraction of concomitant lipophilic substances (chlorophylls and carotenoids, triglycerides). 124 g of air-dried grassy St. John's wort flour was introduced into a 1 L glass flask and 0.6 L of hexane containing 10% (volume fraction) of acetone was added. Hydro module 5. Intensively mixed the suspension on a magnetic stirrer for 20 min and kept in a UZV-2/150-TN (LLC Reltek, Russia) for 5 min with a specific power of the ultrasonic emitter 39 W / dm 3 . The resulting extract was filtered on a suction filter. The filter feed was washed further with a solution of hexane-acetone (9: 1) three times in 0.1 L each. Raw materials purified from lipophilic substances were dried in a vacuum of a water-jet pump to remove traces of solvents. The extract was concentrated on an IR-1 rotary evaporator (Khimlabribribor OJSC, Klin, Russia) in vacuum at a temperature of 45 ° C to dryness for the recovery of hexane and acetone. The resulting chlorophyll-carotenoid paste is a co-product in the production of hypericin and pseudo-hypericin. The paste was removed from the bottoms and Packed in sealed plastic containers.

Пример 3. Экстракция гиперицина и псевдогиперицина. Обезжиренное сырье вносили в полипропиленовый экстрактор объемом 6 л, снабженный обратным холодильником, и прилили 4960 мл 55%-ного этанола. Суспензию выдерживали 30 мин для набухания сырья и трехкратно экстрагировали пигменты в СВЧ камере с частотой излучения 2450 МГц, с удельной мощностью 41,6 Вт/дм3 при гидромодуле 40 с нагреванием суспензии сырье-экстрагент до 66°С за 42 мин, с периодическим перемешиванием суспензии в условиях широтно-импульсной модуляции СВЧ излучения со скважностью пачек импульсов, равной 1,3, длительностью пачек импульсов СВЧ 23 с. Полученный после фильтрации суммарный экстракт в объеме 14,3 л концентрировали в вакууме с одновременным облучением экстракта в отгонной колбе емкостью 10 л лампой накаливания в 95 Вт на ротационном испарителе ИР-10М (ОАО «Химлаборприбор», г. Клин, Россия) при температуре 50°С досуха. Получили 60 г сухого экстракта фиолетового цвета. При облучении экстракта в процессе концентрирования в вакууме в течение 2,5 ч происходит фотоциклизация сопутствующих соединений: протогиперицина и протопсевдогиперицина соответственно до Н и РН. Фотоциклизация указанных веществ позволяет повысить практический выход целевых пигментов. С целью дальнейшего фракционирования методом флеш-хроматографии суммарный экстракт пигментов смешивали с водой (0,25 л), диспергировали в УЗВ и смешивали со 300 г сорбента «Диасорб 130 С16Т» (ЗАО БиоХимМак СТ» г. Москва, Россия) фракции 160-250 мкм. Для преципитации сорбент с экстрактом высушивали в вакууме при перемешивании на ротационном испарителе ИР-1 при температуре 50°С. Досушивали в вакууме масляного насоса при остаточном давлении 0,05-0,08 Па. Преципитат пигментов на «Диасорбе С16» представлял собой порошок коричнево-фиолетового цвета в количестве 360 г. Example 3. Extraction of hypericin and pseudohypericin. Fat-free raw materials were introduced into a 6 L polypropylene extractor equipped with a reflux condenser and 4960 ml of 55% ethanol were added. The suspension was held for 30 minutes to swell the raw materials and the pigments were extracted three times in a microwave chamber with a radiation frequency of 2450 MHz, with a specific power of 41.6 W / dm 3 with a hydraulic module of 40 with heating of the suspension of the raw material-extractant to 66 ° C for 42 minutes, with periodic stirring suspension under conditions of pulse-width modulation of microwave radiation with a duty cycle of bursts of pulses equal to 1.3, the duration of bursts of microwave pulses is 23 s. The total extract obtained after filtration in a volume of 14.3 L was concentrated in vacuo with simultaneous irradiation of the extract in a 10 L distillation flask with a 95 W incandescent lamp on an IR-10M rotary evaporator (Khimlaborribor OJSC, Klin, Russia) at a temperature of 50 ° C to dryness. Received 60 g of a dry extract of purple color. When the extract is irradiated during concentration in vacuo for 2.5 hours, the photocyclization of the concomitant compounds protogipericin and protopsevidogipericin occurs to H and pH, respectively. Photocyclization of these substances can increase the practical yield of target pigments. For the purpose of further fractionation by flash chromatography, the total pigment extract was mixed with water (0.25 L), dispersed in a UZV and mixed with 300 g of the Diasorb 130 C16T sorbent (CJSC BioChemMak ST, Moscow, Russia), fractions 160-250 microns. For precipitation, the sorbent with the extract was dried in vacuum with stirring on a rotary evaporator IR-1 at a temperature of 50 ° C. Dried in vacuum of the oil pump at a residual pressure of 0.05-0.08 Pa. The pigment precipitate on Diasorb C16 was a brown-violet powder in an amount of 360 g.

Пример 4. Фракционирование пигментов флеш-хроматографией. В форколонку системы для препаративной флеш-хроматографии «FLASH150», (Biotage, USA) внесли полученный по примеру 3, преципитат пигментов в количестве 360 г и элюировали псевдогиперицин и гиперицин через хроматографическую колонку внутренним диаметром 160 мм и высотой слоя сорбента 320 мм, заполненную сорбентом, фракции 40-64 мкм, содержащим на поверхности пор силикагеля функциональный покров из диметилоктадецилсилильных групп. Колонка снабжена пневматической системой для радиального сжатия сорбента в колонке, а также входным и выходным радиальным распределителем потока элюента вдоль колонки. В качестве элюента использовали водные растворы этилового спирта с возрастанием концентрации от 5% до 60%. Для подавления диссоциации пигментов и увеличения селективности хроматографического разделения использовали элюенты, подкисленные уксусной кислотой с объемной долей 1%. Элюировали пигменты с колонки в режиме ступенчатого градиента концентрации этилового спирта. Расход элюента на выходе колонки составлял 850 см3/мин при давлении на входе колонки 6 атм (607,95 кПа). В первых фракциях, элюированных этанолом 5-15% целевые пигменты не были обнаружены методом ВЭЖХ анализа. Методом ГЖХ-анализа ТМС-производных в этих фракциях обнаружены моно- и дисахариды, гликозиды флавоноидов, преимущественно рутин. Псевдогиперицин элюировали из колонки 20 и 30%-ным этанолом. Гиперицин элюировался 40 и 45%-ным этанолом. Полученные 17 фракций по 5 л каждая анализировали методом ВЭЖХ на аналитическом хроматографе «Милихром 5» (ООО «Медикант», г. Орел, Россия) и по результатам анализа объединяли отдельно фракции, содержащие псевдогиперицин и гиперицин. Фракции красного цвета, содержащие целевые пигменты, концентрировали в вакууме на ротационном испарителе ИР-10М. В результате получена фракция концентрата псевдогиперицина в количестве 0,0883 г (практический выход 0,072%) и гиперицина 0,0221 г (практический выход 0,018%). По данным ВЭЖХ анализа содержание псевдогиперицина в полученном образце составляло 95%, а гиперицина во втором образце 96% (см. табл. 1).Example 4. Fractionation of pigments by flash chromatography. Prepared flash chromatography system “FLASH150”, (Biotage, USA) introduced 360 g of the pigment precipitate obtained in Example 3, and pseudohypericin and hypericin were eluted through a chromatographic column with an inner diameter of 160 mm and a sorbent layer height of 320 mm filled with sorbent , fractions 40-64 microns, containing on the surface of the pores of silica gel a functional coating of dimethyl octadecylsilyl groups. The column is equipped with a pneumatic system for radial compression of the sorbent in the column, as well as an inlet and outlet radial distributor of eluent flow along the column. Aqueous solutions of ethyl alcohol with increasing concentration from 5% to 60% were used as eluent. To suppress the dissociation of pigments and increase the selectivity of chromatographic separation used eluents acidified with acetic acid with a volume fraction of 1%. Pigments from the column were eluted in a stepwise gradient mode of ethanol concentration. The flow rate of the eluent at the column outlet was 850 cm 3 / min at a column inlet pressure of 6 atm (607.95 kPa). In the first fractions eluted with ethanol 5-15%, the target pigments were not detected by HPLC analysis. Mono- and disaccharides, glycosides of flavonoids, mainly rutin, were found in these fractions by GLC analysis of TMS derivatives. Pseudohypericin was eluted from the column with 20 and 30% ethanol. Hypericin was eluted with 40% and 45% ethanol. The obtained 17 fractions of 5 L each were analyzed by HPLC on a Milichrom 5 analytical chromatograph (Medicant LLC, Orel, Russia) and the fractions containing pseudo-hypericin and hypericin were separately combined according to the analysis results. The red fractions containing the target pigments were concentrated in vacuo on an IR-10M rotary evaporator. As a result, a fraction of pseudohypericin concentrate was obtained in an amount of 0.0883 g (practical yield 0.072%) and hypericin 0.0221 g (practical yield 0.018%). According to HPLC analysis, the content of pseudohypericin in the obtained sample was 95%, and hypericin in the second sample was 96% (see table 1).

Пример 5. Очистка методом перекристаллизации образцов гиперицина и псевдогиперицина, полученных по примеру 4. 0,0883 г псевдогиперицина и 0,0221 г гиперицина растворяли соответственно в 800 мл и 300 мл 95%-ного этилового спирта при кипячении в конических колбах, полученные растворы фильтровали через мембранный фильтр из фторопласта с порами 0,2 мкм (ЗАО «БиоХимМак СТ», г. Москва, Россия) и концентрировали с одновременной вакуумной кристаллизацией на ротационном испарителе ИР-1М (ОАО «Химлаборприбор», г. Клин, Россия) при остаточном давлении 33-13 кПа (25-10 мм рт. ст.) до остатка объемом соответственно 5 и 2 мл. Остаток, содержащий целевые продукты, отфильтровывали через мембранный фильтр из фторопласта с порами 0,2 мкм. Получили, после сушки в вакууме при 60°С, на фильтре в кристаллическом виде 0, 0879 г псевдогиперицина и 0,0218 г гиперицина. По данным ВЭЖХ анализа массовая доля псевдогиперицина в полученном образце составляет 98, 6%, гиперицина - 99,5% (табл. 1). В виде примеси псевдогиперицин содержит 1,4% гиперицина, а образец гиперицина содержит 0,5% псевдогиперицина. Полученные пигменты исследовали физико-химическими методами, показаными на рисунках. На рис. 1 приведена хроматограмма ВЭЖХ анализа полученных пигментов. На рис. 2 приведены ИК-спектры, а на рис. 3 спектры поглощения в УФ- и видимой области спектра спиртовых растворов полученных пигментов.Example 5. Purification by recrystallization of samples of hypericin and pseudo-hypericin obtained in example 4. 0.0883 g of pseudo-hypericin and 0.0221 g of hypericin were dissolved in 800 ml and 300 ml of 95% ethanol, respectively, while boiling in conical flasks, the resulting solutions were filtered through a 0.2 micron fluoroplastic membrane filter (BioChemMak ST CJSC, Moscow, Russia) and concentrated with simultaneous vacuum crystallization on an IR-1M rotary evaporator (Khimlaborribor OJSC, Klin, Russia) with a residual pressure of 33-13 kPa (25-10 m Hg. v.) to a residue volume of 5 and 2 ml. The residue containing the desired products was filtered through a fluoroplastic membrane filter with 0.2 μm pores. Received, after drying in vacuum at 60 ° C, on the filter in a crystalline form, 0.0879 g of pseudo-hypericin and 0.0218 g of hypericin. According to the HPLC analysis, the mass fraction of pseudohypericin in the obtained sample is 98.6%, hypericin - 99.5% (Table 1). As an impurity, pseudo-hypericin contains 1.4% hypericin, and a sample of hypericin contains 0.5% pseudo-hypericin. The obtained pigments were investigated by physicochemical methods shown in the figures. In fig. 1 shows the chromatogram of the HPLC analysis of the obtained pigments. In fig. 2 shows the IR spectra, and in Fig. 3 absorption spectra in the UV and visible spectral range of the alcohol solutions of the obtained pigments.

По результатам хромато-масс-спектрометрического анализа растворов полученных пигментов, установлено, в масс-спектре, фиксирующем отрицательные ионы, для образца псевдогиперицина характерен сигнал молекулярного иона со значением m/z 519, для образца гиперицина соответствующий сигнал регистрируется со значением m/z 503.According to the results of the chromatography-mass spectrometric analysis of the solutions of the obtained pigments, it was found that in the mass spectrum fixing negative ions, a molecular ion signal with a value of m / z 519 is characteristic for a pseudohypericin sample, a corresponding signal is recorded for a hypericin sample with a m / z value of 503.

Пример. 6. Рекуперация растворителей, утилизация маточных растворов и отработанного сырья. Маточные растворы, содержащие этанол, упаривали досуха. Твердый остаток, представляющий собой смесь минорных диантроновых соединений зверобоя и следов каротиноидов растения, является сопутствующим продуктом производства гиперицина и псевдогиперицина. Его извлекали из отгонной колбы и после досушки в вакууме фасовали в герметичную тару. Смесь ацетон-гексан и ацетон-петролейный эфир перегоняли на ректификационной установке и после обезвоживания синтетическим цеолитом СаХ использовали многократно для производства опытных партий пигментов зверобоя с целью медико-биологических исследований их свойств. Растительное сырье после экстракции целевых пигментов помещали в кубовую емкость лабораторной ретификационной установки и путем перегонки производили рекуперацию этилового спирта, сорбированного растительным жомом. Растительный остаток утилизировали.Example. 6. Recovery of solvents, utilization of mother liquors and waste raw materials. Stock solutions containing ethanol were evaporated to dryness. The solid residue, which is a mixture of minor diantronic compounds of St. John's wort and traces of plant carotenoids, is a co-product of the production of hypericin and pseudo-hypericin. It was removed from the distillation flask and, after drying in vacuum, was packaged in an airtight container. A mixture of acetone-hexane and acetone-petroleum ether was distilled at a distillation unit and, after dehydration with synthetic zeolite, CaX was used repeatedly for the production of experimental batches of St. John's wort pigments for the purpose of biomedical studies of their properties. After extraction of the target pigments, the plant raw material was placed in the stillage capacity of the laboratory retification unit, and ethylene recovered by distillation was recovered by distillation. The plant residue was disposed of.

Пример 7. Получение гиперицина и псевдогиперицина осуществляли согласно примерам 1-6, но для обезжиривания сырья использовали смесь ацетона и гексана в объемном соотношении 2:8 при гидромодуле 5. Практический выход и состав пигментов отражен в табл. 1.Example 7. Obtaining hypericin and pseudohypericin was carried out according to examples 1-6, but for the degreasing of the raw materials used a mixture of acetone and hexane in a volume ratio of 2: 8 with a hydraulic module 5. The practical yield and composition of the pigments are shown in table. one.

Пример 8. Получение гиперицина и псевдогиперицина осуществляли согласно примерам 1-6, но растительное сырье обезжиривают органическим растворителем состава гексан: ацетон (8:2) или петролейный эфир: ацетон (8:2) при гидромодуле 5 в течение 5 минут. Практический выход и состав пигментов отражен в табл. 1.Example 8. The preparation of hypericin and pseudohypericin was carried out according to examples 1-6, but the plant material was degreased with an organic solvent of hexane: acetone (8: 2) or petroleum ether: acetone (8: 2) with a hydromodule 5 for 5 minutes. The practical yield and composition of the pigments are shown in table. one.

Пример 9. Получение гиперицина и псевдогиперицина осуществляли согласно примерам 1-6, но растительное сырье обезжиривают органическим растворителем состава гексан: ацетон (9:1) или петролейный эфир: ацетон (9:1) при гидромодуле 5 в течение 5 минут. Практический выход и состав пигментов отражен в табл. 1.Example 9. The preparation of hypericin and pseudohypericin was carried out according to examples 1-6, but the plant material was degreased with an organic solvent of hexane: acetone (9: 1) or petroleum ether: acetone (9: 1) with a hydromodule 5 for 5 minutes. The practical yield and composition of the pigments are shown in table. one.

Пример 10. Получение гиперицина и псевдогиперицина осуществляли согласно примерам 1-6, но СВЧ экстракцию пигментов осуществляли с применением 55%-ного изопропанола при гидромодуле 40. Практический выход и состав пигментов отражен в табл. 1.Example 10. Obtaining hypericin and pseudohypericin was carried out according to examples 1-6, but microwave extraction of the pigments was carried out using 55% isopropanol with a hydromodule 40. The practical yield and composition of the pigments are shown in table. one.

Пример 11. Получение гиперицина и псевдогиперицина осуществляли согласно примерам 1-6, но СВЧ экстракцию пигментов осуществляли с применением 55%-ного этилового спирта, но при гидромодуле 48. Практический выход и состав пигментов отражен в табл. 1.Example 11. Obtaining hypericin and pseudohypericin was carried out according to examples 1-6, but the microwave extraction of the pigments was carried out using 55% ethanol, but with a hydraulic module 48. The practical yield and composition of the pigments are shown in table. one.

Пример 12. Получение гиперицина и псевдогиперицина осуществляли согласно примерам 1-6, но СВЧ экстракцию пигментов осуществляли с применением 55%-ного изопропанола при гидромодуле 48. Практический выход и состав пигментов отражен в табл. 1.Example 12. Obtaining hypericin and pseudohypericin was carried out according to examples 1-6, but the microwave extraction of the pigments was carried out using 55% isopropanol with a hydromodule 48. The practical yield and composition of the pigments are shown in table. one.

Пример 13. Получение гиперицина и псевдогиперицина осуществляли согласно примерам 1-6, но СВЧ экстракцию пигментов осуществляли с применением 55%-ного этилового спирта при гидромодуле 40 с нагреванием до 70°С за 46 мин. Практический выход и состав пигментов отражен в табл. 1.Example 13. The preparation of hypericin and pseudohypericin was carried out according to examples 1-6, but microwave extraction of the pigments was carried out using 55% ethanol with a hydromodule 40 with heating to 70 ° C for 46 minutes. The practical yield and composition of the pigments are shown in table. one.

Пример 14. Получение гиперицина и псевдогиперицина осуществляли согласно примерам 1-6, но СВЧ экстракцию пигментов осуществляли с применением 55%-спирта при гидромодуле 40 с нагреванием до 60°С. Практический выход и состав пигментов отражен в табл. 1.Example 14. Obtaining hypericin and pseudohypericin was carried out according to examples 1-6, but the microwave extraction of the pigments was carried out using 55% alcohol with a hydromodule 40 with heating to 60 ° C. The practical yield and composition of the pigments are shown in table. one.

Пример 15. Получение гиперицина и псевдогиперицина осуществляли согласно примерам 1-6, но в качестве сырья использовали 124 г травяной муки зверобоя пятнистого (Hypericum perforatum L). Практический выход и состав пигментов отражен в табл. 1.Example 15. Obtaining hypericin and pseudohypericin was carried out according to examples 1-6, but 124 g of spotted hypericum herbal flour (Hypericum perforatum L) was used as raw material. The practical yield and composition of the pigments are shown in table. one.

Пример 16. Получение гиперицина и псевдогиперицина осуществляют согласно примерам 1-6, но СВЧ экстракцию пигментов осуществляют с в режиме широтно-импульсной модуляции СВЧ излучения частотой 2450 МГц с удельной мощностью 55,5 Вт/дм3 три раза при гидромодуле 40 с нагреванием суспензии сырье-экстрагент до 66°С за 29 мин. Практический выход и состав пигментов отражен в табл. 1.Example 16. Obtaining hypericin and pseudohypericin is carried out according to examples 1-6, but the microwave extraction of the pigments is carried out in the mode of pulse-width modulation of microwave radiation with a frequency of 2450 MHz with a specific power of 55.5 W / dm 3 three times with a hydraulic module 40 with heating the suspension of raw materials extractant up to 66 ° C in 29 min. The practical yield and composition of the pigments are shown in table. one.

Пример 17. Получение гиперицина и псевдогиперицина осуществляют согласно примерам 1-6, но вместо фильтрования экстракта целевых пигментов используют центрифугирование суспензии сырье-экстракт на центрифуге Т230 в течение 10 мин при скорости вращения ротора центрифуги до 10000 об/мин.Example 17. Obtaining hypericin and pseudohypericin is carried out according to examples 1-6, but instead of filtering the extract of the target pigments, centrifugation of the suspension of the raw material-extract on a T230 centrifuge for 10 minutes at a rotational speed of the centrifuge rotor up to 10000 rpm is used.

Супернатант сливают с осадка, объединяют с получением 15 л суммарного экстракта и концентрируют в вакууме. Практический выход и состав пигментов отражен в табл. 1.The supernatant is drained from the precipitate, combined to obtain 15 l of the total extract and concentrated in vacuo. The practical yield and composition of the pigments are shown in table. one.

Таким образом предполагаемый объект позволяет упростить технологию получения целевых веществ - гиперицина и псевдогиперицина за счет отказа от применения высокотоксичного хлороформа, сократить продолжительность всех технологических стадий способа, уменьшить затраты электроэнергии и трудозатраты по сравнению с аналогом и прототипом, повысить экологическую безопасность производства целевых пигментов.Thus, the proposed object allows to simplify the technology for the production of target substances - hypericin and pseudohypericin due to the rejection of the use of highly toxic chloroform, reduce the duration of all technological stages of the method, reduce the cost of electricity and labor compared with the analogue and prototype, increase the environmental safety of the production of target pigments.

Figure 00000001
Figure 00000001

Claims (1)

Способ получения гиперицина и псевдогиперицина из сырьевой фитомассы растений видов зверобой пятнистый и зверобой продырявленный, включающий измельчение растительного сырья, обезжиривание сырья органическим растворителем, отделение экстракта липофильных веществ растений, сушку сырья, повторную экстракцию обезжиренного сырья водными растворами органического растворителя, фильтрацию полученных экстрактов, концентрирование экстрактов, хроматографическое разделение целевых пигментов на колонке, содержащей силикагель с использованием элюентов, содержащих органический растворитель и воду, концентрирование полученных фракций элюатов, объединение фракций, кристаллизацию гиперицина и псевдогиперицина с применением растворов полярного органического растворителя в неполярном, сушку готовых пигментов, отличающийся тем, что надземную массу растений Hypericum perforatim L. и Hypericum maculatum Crantz., собранную в фазу массовой бутонизации и начала цветения, предварительно обезжиривают органическим растворителем состава гексан и ацетон при соотношении гексан : ацетон 8-9:2-1 или состава петролейный эфир и ацетон при соотношении петролейный эфир и ацетон 8-9:2-1, соответственно, при гидромодуле 5 в течение 5 минут, последовательно трехкратно экстрагируют настаиванием 40-55% спиртом формулы CnH2nOH, где n=2 или n=3, при гидромодуле 40-48 в течение 29-46 минут, процесс ведут в СВЧ камере в условиях широтно-импульсной модуляции СВЧ излучения со скважностью пачек импульсов, равной 1,3, длительностью пачек импульсов СВЧ 23 секунд, частотой излучения 2450 МГц, с удельной мощностью 41,6 Вт/дм3 с нагреванием суспензии сырье-экстрагент до 66°С с периодическим перемешиванием суспензии, отделяют экстракт фильтрованием или центрифугированием и упаривают в вакууме досуха при температуре 50°С с одновременным облучением экстракта лампой накаливания 95 Вт, затем экстракт подвергают преципитации на силикагеле с функциональным покровом пор из диметилоктадецилсилильных групп при соотношении сухой остаток-сорбент 1:5 с последующей сушкой в вакууме 0,05-0,08 Па, далее преципитат помещают в форколонку для флэш-хроматографии поверх сорбента дисперсности 40-64 мкм и элюируют нафтодиантроновые пигменты водными растворами этилового спирта с градиентом концентрации спирта от 5% до 60%, кристаллизацию гиперицина и псевдогиперицина осуществляют из смеси этанол-вода в режиме вакуумной кристаллизации с одновременным концентрированием маточного раствора на роторном испарителе в вакууме с остаточным давлением 33-13 кПа (25-10 мм рт.ст.), сушку гиперицина и псевдогиперицина осуществляют в вакууме при температуре 60°С.A method of producing hypericin and pseudohypericin from the raw plant phytomass of St. John's wort and St. John's wort perforated, including grinding of plant materials, degreasing of raw materials with an organic solvent, separation of the extract of lipophilic substances of plants, drying of raw materials, re-extraction of fat-free raw materials with aqueous solutions of an organic solvent, filtering the obtained extracts, concentration of extracts , chromatographic separation of the target pigments on a column containing silica gel using taking eluents containing an organic solvent and water, concentrating the obtained eluate fractions, combining the fractions, crystallizing hypericin and pseudohypericin using solutions of a polar organic solvent in non-polar, drying the finished pigments, characterized in that the aerial mass of plants Hypericum perforatim L. and Hypericum maculatum Crantz. collected in the phase of mass budding and the beginning of flowering, pre-degreased with an organic solvent of hexane and acetone with a hexane: acetone ratio of 8-9: 2-1 or pet Oleina ether and acetone in a ratio of petroleum ether and acetone 8-9: 2-1, respectively, with liquor ratio of 5 for 5 minutes, three times sequentially extracted by infusion of 40-55% alcohol of formula C n H 2n OH, where n = 2 or n = 3, with a hydraulic module 40-48 for 29-46 minutes, the process is carried out in a microwave chamber under conditions of pulse-width modulation of microwave radiation with a duty cycle of pulse packets of 1.3, a duration of microwave pulse packets of 23 seconds, a radiation frequency of 2450 MHz, with a specific power of 41.6 W / dm 3 with heating the suspension of the raw material-extractant to 66 ° C with periodic by stirring the suspension, the extract is separated by filtration or centrifugation and evaporated in vacuo to dryness at a temperature of 50 ° C with simultaneous irradiation of the extract with a 95 W incandescent lamp, then the extract is subjected to precipitation on silica gel with a functional pore coating of dimethyl octadecylsilyl groups at a dry residue-sorbent ratio of 1: 5 s subsequent drying in a vacuum of 0.05-0.08 Pa, then the precipitate is placed in a flash column for flash chromatography on top of a sorbent with a dispersion of 40-64 microns and naphthodianthrone pigments are eluted with water ethyl alcohol solutions with a gradient of alcohol concentration from 5% to 60%, crystallization of hypericin and pseudohypericin is carried out from ethanol-water mixture in a vacuum crystallization mode with simultaneous concentration of the mother liquor on a rotary evaporator in vacuum with a residual pressure of 33-13 kPa (25-10 mm Hg), drying of hypericin and pseudo-hypericin is carried out in vacuum at a temperature of 60 ° C.
RU2015124674A 2015-06-23 2015-06-23 Method for simultaneous production of hypericin and pseudohypericin RU2623084C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2015124674A RU2623084C2 (en) 2015-06-23 2015-06-23 Method for simultaneous production of hypericin and pseudohypericin

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2015124674A RU2623084C2 (en) 2015-06-23 2015-06-23 Method for simultaneous production of hypericin and pseudohypericin

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2015124674A RU2015124674A (en) 2017-01-10
RU2623084C2 true RU2623084C2 (en) 2017-06-21

Family

ID=57955691

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2015124674A RU2623084C2 (en) 2015-06-23 2015-06-23 Method for simultaneous production of hypericin and pseudohypericin

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2623084C2 (en)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EA000948B1 (en) * 1995-09-29 2000-06-26 Др.Вилмар Швабе Гмбх И Ко. Stable extract of hypericum perforatum l., process for preparing the same and pharmaceutical compositions
EP1345611A1 (en) * 2000-11-27 2003-09-24 Phoenix Scientific, Inc. An antibiotic/analgesic formulation and a method of making this formulation
CN1883520A (en) * 2006-05-26 2006-12-27 四川三民药业有限公司 Hypericum perforatum L. phenolic acid and injection thereof preparation method

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EA000948B1 (en) * 1995-09-29 2000-06-26 Др.Вилмар Швабе Гмбх И Ко. Stable extract of hypericum perforatum l., process for preparing the same and pharmaceutical compositions
EP1345611A1 (en) * 2000-11-27 2003-09-24 Phoenix Scientific, Inc. An antibiotic/analgesic formulation and a method of making this formulation
CN1883520A (en) * 2006-05-26 2006-12-27 四川三民药业有限公司 Hypericum perforatum L. phenolic acid and injection thereof preparation method

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ПУНЕГОВ В.В. и др. Экстрагирование гиперицина и псевдогиперицина из зверобоя продырявленного в условиях микроволновой активации процесса // Химия растительного сырья, 2014. *
СТАСЕВИЧ О.В. и др. Хроматографический анализ и разделение гиперицинсодержащего экстракта зверобоя //Труды БГТУ, 2012. *

Also Published As

Publication number Publication date
RU2015124674A (en) 2017-01-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Rasul Extraction, isolation and characterization of natural products from medicinal plants
CN105237430B (en) A kind of method that spicy components are extracted in the green pepper from rattan
CN101130548B (en) Method for extracting and producing high content arteannuin
CN102976909B (en) Method for extracting and purifying 6-gingerol from ginger
Chanu et al. Phytochemical analysis and evaluation of anticancer activity of Parkia javanica seeds
KR20110119071A (en) A preparative method for isolation of fucoxanthin from seaweeds by centrifugal partition chromatography
Yagi et al. Chemical constituents and insecticidal activity of Senna italica Mill. from the Sudan
CN104910216B (en) It is a kind of with preparing liquid phase method while obtaining the separation method of a variety of epimedium flavones
CN109776474A (en) A method of the separating and purifying flavone class compound from eupatorium lindleynun var. trifoliolatum
RU2623084C2 (en) Method for simultaneous production of hypericin and pseudohypericin
CN102627677A (en) Method for separating and purifying monomer compounds from Rhizoma Polygoni Cuspidati
CN108373474B (en) A bilobalide compound extracted from folium Ginkgo and its preparation method
Bubenchikova et al. Caffeic and rosmarinic acids in Thyme Species
CN104926904B (en) A kind of method of extraction purification cordycepin in mycoderma from Cordyceps militaris
RU2475541C1 (en) METHOD TO PRODUCE DEINOXANTHINE-CAROTENOID OF MICROORGANISM Deinococcus radiodurans
CN106518831B (en) A kind of plant proanthocyanidin dimer, tripolymer quick separating preparation method
Sinha et al. Simple method for enrichment of azadirachtin from neem seeds
CN105330707B (en) It is a kind of while separating the Industrialized processing technique of ponticin and Rhapontin, deoxy-
Lee et al. Combined florisil, droplet counter-current, and high performance liquid chromatographies for the preparative isolation and purification of azadirachtin from neem (Azadirachta Indica) seeds
RU2783445C1 (en) Method for isolation and purification of baicalin from root cultures of scutellaria baicalensis georgi
CN109456372A (en) A kind of separation method of the Tulathromycin in relation to substance
Kumar et al. Efficient protocols of extraction, isolation and structural determination of active compounds from medicinal plants
CN114853840B (en) Preparation method and application of akebia stem saponin D bulk drug
RU2174397C1 (en) Method of preparing ecdysteroids and ecdysterone concentrate from vegetable raw
Rashid et al. Extraction Method and Isolation of Phytoconstituents from the Chloroform Extract of Plant Solanum Nigrum L. By Colunm Chromatography

Legal Events

Date Code Title Description
FZ9A Application not withdrawn (correction of the notice of withdrawal)

Effective date: 20170117