RU2623083C1 - Method for platelets freezing - Google Patents

Method for platelets freezing Download PDF

Info

Publication number
RU2623083C1
RU2623083C1 RU2016124197A RU2016124197A RU2623083C1 RU 2623083 C1 RU2623083 C1 RU 2623083C1 RU 2016124197 A RU2016124197 A RU 2016124197A RU 2016124197 A RU2016124197 A RU 2016124197A RU 2623083 C1 RU2623083 C1 RU 2623083C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
platelet
platelets
cryoprotectant
plasma
dmso
Prior art date
Application number
RU2016124197A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Игорь Валерьевич Высочин
Максим Сергеевич Макаров
Елена Николаевна Кобзева
Валерий Борисович Хватов
Original Assignee
Государственное бюджетное учреждение здравоохранения города Москвы Научно-исследовательский институт скорой помощи имени Н.В. Склифосовского Департамента здравоохранения г. Москвы
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Государственное бюджетное учреждение здравоохранения города Москвы Научно-исследовательский институт скорой помощи имени Н.В. Склифосовского Департамента здравоохранения г. Москвы filed Critical Государственное бюджетное учреждение здравоохранения города Москвы Научно-исследовательский институт скорой помощи имени Н.В. Склифосовского Департамента здравоохранения г. Москвы
Priority to RU2016124197A priority Critical patent/RU2623083C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2623083C1 publication Critical patent/RU2623083C1/en

Links

Images

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N1/00Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
    • A01N1/02Preservation of living parts

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Dentistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: for platelet freezing, the initial platelet concentrate (PC) is sampled with a platelet concentration of 1×109/ml to 1.5×109/ml containing functionally active platelets. The PC is divided to the platelet-containing part and plasma, followed by plasma separation from the platelet-containing part. A combined cryoprotectant containing 55% DMSO and 5% dextran 40 is prepared by diluting the cryoprotectant with plasma to the final DMSO concentration of 10-15%. The platelet-containing part is resuspended by a diluted cryoprotectant which is injected into the platelet-containing part by 1-3 ml with 1-3 min intervals at constant stirring, until the final DMSO concentration of 5-7% in the platelet suspension is reached. The platelet suspension and plasma are frozen at a rate of 1-3°/min in separate containers in the freezing chamber at temperatures from minus 80 to minus 100°C. The frozen platelets and plasma are stored at a temperature from minus 85 to minus 196°C.
EFFECT: application of the invention allows to improve the quality of platelets after defrosting.
6 cl, 4 tbl, 1 dwg, 1 ex

Description

Область, к которой относится изобретениеFIELD OF THE INVENTION

Изобретение относится к области медицины, а именно производственной и клинической трансфузиологии, и может быть использовано для заготовки замороженных тромбоцитов.The invention relates to medicine, namely to production and clinical transfusiology, and can be used for harvesting frozen platelets.

Уровень техникиState of the art

Известен способ замораживания богатой тромбоцитами плазмы без использования криопротекторов [патент РФ на изобретение «Способ криоконсервации богатой тромбоцитами плазмы» авторы Суханов В.А., Трофимов И.М., Левит А.Л., №2138162, 1999], согласно которому плазму помещают в контейнер с жидким азотом, располагают контейнер между двумя металлическими пластинами, после чего последовательно подвергают процессам замораживания и хранения, при этом процесс замораживания плазмы ведут при скорости 2-3°С/с. Однако этот способ не включает оценку параметров структурной полноценности и функциональной активности тромбоцитов человека.There is a method of freezing platelet-rich plasma without the use of cryoprotectants [RF patent for the invention "Method for cryopreservation of platelet-rich plasma" authors VA Sukhanov, IM Trofimov, AL Levit, No. 2138162, 1999], according to which the plasma is placed in a container with liquid nitrogen, a container is placed between two metal plates, after which they are subsequently subjected to freezing and storage processes, while the plasma freezing process is carried out at a speed of 2-3 ° C / s. However, this method does not include the assessment of the parameters of structural usefulness and functional activity of human platelets.

Известен способ замораживания тромбоцитов с содержанием ДМСО в замороженных тромбоцитах 10% [Khuri S.F., Healey N., MacGregor H. et al. Comparison of the effects of transfusions of cryopreserved and liquid-preserved platelets on hemostasis and blood loss after cardiopulmonary bypass J Thorac Cardiovasc Surg 1999; 117: 172-84]. Однако данный способ предусматривает использование эндоцелюлярного криопротектора - ДМСО, что не позволяет достигнуть высокой степени сохранности тромбоцитов в замороженном состоянии.A known method of freezing platelets with a DMSO content in frozen platelets of 10% [Khuri S.F., Healey N., MacGregor H. et al. Comparison of the effects of transfusions of cryopreserved and liquid-preserved platelets on hemostasis and blood loss after cardiopulmonary bypass J Thorac Cardiovasc Surg 1999; 117: 172-84]. However, this method involves the use of an endocellular cryoprotectant - DMSO, which does not allow to achieve a high degree of preservation of platelets in a frozen state.

Наиболее близким к заявляемому решению является способ замораживания тромбоцитов с ДМСО с последующим хранением клеток в замороженном состоянии при температуре минус 80°С [С. Robert Valery, Gina Rango, and Shukri Khuri Freezing human platelets with 6 percent dimethyl sulfoxide with removal of the supernatant solution before freezing and storage at -80°C without postthaw processing // Transfusion 2005; 45: 1890-1898]. Исходные тромбоцитные концентраты (ТК) получают путем аппаратного афереза на сепараторах Cobe Spectra и Amicus, общий объем ТК составляет 200-300 мл, содержание тромбоцитов - от 3,5 до 4,0×1011 клеток в 1 дозе (концентрация 1,3-2,0×109 в мл). Оценка качества клеток ТК проводится перед замораживаем ТК и включает следующие параметры: количество тромбоцитов (109/мл); рН тромбоконцентрата, величину R-периода на тромбоэластограмме, агрегационную активность тромбоцитов (индукторы - 50 мкг/мл арахидоновой кислоты и 2 мкМоль/л АДФ); продукцию тромбоксана В2 после стимуляции 50 мкг/мл арахидоновой кислоты и 2 мкМоль/л АДФ; содержание аннексин-положительных тромбоцитов. Процедура подготовки ТК к замораживанию включает 4 технологических этапа: внесение криопротектора в дозу ТК; центрифугирование дозы ТК в присутствие криопротектора; удаление избытка криопротектора с бесклеточной плазмой после центрифугирования; ресуспендирование клеток ТК с криопротектором. В качестве криопротектора используют солевой раствор 27% ДМСО (эндоцитраный криопротектор), который добавляют к ТК при постоянном покачивании с частотой 180 колебаний в минуту до конечной концентрации 6% ДМСО в ТК. Затем ТК центрифугируют при 1250g в течение 10 минут с целью удаления супернатанта, содержащего избыток ДМСО. Весь супернатантный раствор удаляют. Это снижает остаточное количество ДМСО в замороженном ТК как минимум на 95%. Оставшийся осадок объемом 10-15 мл ресуспендируют покачиванием в течение 3-5 минут, контейнер с суспензией тромбоцитов помещают в защитный полимерный пакет, затем в картонную коробку и замораживают на дне механического морозильника при температуре минус 80°С.Closest to the claimed solution is a method of freezing platelets with DMSO, followed by storage of cells in a frozen state at a temperature of minus 80 ° C [C. Robert Valery, Gina Rango, and Shukri Khuri Freezing human platelets with 6 percent dimethyl sulfoxide with removal of the supernatant solution before freezing and storage at -80 ° C without postthaw processing // Transfusion 2005; 45: 1890-1898]. The initial platelet concentrates (TK) are obtained by hardware apheresis on Cobe Spectra and Amicus separators, the total volume of TK is 200-300 ml, the platelet content is from 3.5 to 4.0 × 10 11 cells in 1 dose (concentration 1.3- 2.0 × 10 9 in ml). Assessment of the quality of TK cells is carried out before freezing TK and includes the following parameters: platelet count (10 9 / ml); thromboconcentrate pH, the value of the R-period on the thromboelastogram, platelet aggregation activity (inducers - 50 μg / ml of arachidonic acid and 2 μmol / l ADP); thromboxane B2 production after stimulation with 50 μg / ml arachidonic acid and 2 μmol / L ADP; the content of annexin-positive platelets. The procedure for preparing TC for freezing includes 4 technological stages: the introduction of a cryoprotectant in a dose of TC; centrifugation of a dose of TC in the presence of a cryoprotectant; removal of excess cryoprotectant with acellular plasma after centrifugation; resuspension of TC cells with cryoprotectant. As a cryoprotectant, a saline solution of 27% DMSO (endocyte cryoprotectant) is used, which is added to the TC with constant shaking at a frequency of 180 vibrations per minute to a final concentration of 6% DMSO in the TC. Then, the TCs are centrifuged at 1250g for 10 minutes to remove the supernatant containing excess DMSO. All supernatant solution is removed. This reduces the residual amount of DMSO in frozen TC by at least 95%. The remaining 10-15 ml sediment is resuspended by shaking for 3-5 minutes, the container with the platelet suspension is placed in a protective plastic bag, then in a cardboard box and frozen at the bottom of a mechanical freezer at a temperature of minus 80 ° C.

Однако данный способ замораживания включает методы анализа тромбоцитов в ТК: агрегометрия, тромбоэластография и проточная цитометрия, которые не отражают структурную целостность тромбоцитов, что снижает достоверность общего анализа тромбоцитов перед замораживанием; использует только эндоцитарный (внутриклеточный) криопротектор ДМСО, который обладает низкой способностью к сохранению наружных мембранных структур клеток при заморозке, что повышает риск повреждения тромбоцитарных рецепторов; процедура подготовки ТК к криоконсервированию включает 4 последовательных технологических этапа, которые в сумме занимают 25-30 мин, что существенно повышает риск токсического действия ДМСО на тромбоциты.However, this method of freezing includes methods for the analysis of platelets in the TC: aggregometry, thromboelastography and flow cytometry, which do not reflect the structural integrity of the platelets, which reduces the reliability of the general analysis of platelets before freezing; uses only the endocytic (intracellular) cryoprotectant DMSO, which has a low ability to preserve the outer membrane structures of cells during freezing, which increases the risk of platelet receptor damage; the procedure for preparing TC for cryopreservation includes 4 consecutive technological stages, which in total take 25-30 minutes, which significantly increases the risk of toxic effects of DMSO on platelets.

Раскрытие изобретенияDisclosure of invention

Задачей изобретения является разработка способа замораживания тромбоцитов для получения лечебных доз ТК длительного хранения с высокой сохранностью биологически полноценных тромбоцитов.The objective of the invention is to develop a method of freezing platelets to obtain therapeutic doses of TC long-term storage with high preservation of biologically complete platelets.

Техническим результатом, на достижение которого направлено заявленное изобретение, является повышение качества получаемых после размораживания криоконсервированных тромбоцитов за счет комплекса используемых технологических операций, качественных и количественных параметров криопротектора и режимов, позволяющих сократить время контакта тромбоцитов с криопротектором, сохранить гораздо большее число биологически полноценных тромбоцитов (в 1,5-1,8 раза по сравнению с технологией по прототипу), хранить размороженные ТК при комнатной температуре в течение 4 часов без угрозы потери структурной или функциональной полноценности тромбоцитов, получить осмолярность дозы ТК, соответствующей физиологической норме, не вызывающей развития у пациентов посттрансфузионных реакций.The technical result to which the claimed invention is directed is to improve the quality of cryopreserved platelets obtained after thawing due to the complex of technological processes used, the qualitative and quantitative parameters of the cryoprotectant and the regimes that reduce the contact time of platelets with the cryoprotectant, and to preserve a much larger number of biologically complete platelets (in 1.5-1.8 times compared with the technology of the prototype), store thawed TC at room temperature temperature for 4 hours without the threat of losing the structural or functional usefulness of platelets, obtain an osmolarity of a dose of TC corresponding to a physiological norm that does not cause the development of post-transfusion reactions in patients.

Поставленная задача решается тем, что способ замораживания тромбоцитов включает следующие этапы:The problem is solved in that the method of freezing platelets includes the following steps:

- отбор исходного тромбоцитного концентрата (ТК) с концентрацией тромбоцитов от 1×109/мл до 1,5×109/мл, содержащего функционально активные тромбоциты;- selection of the initial platelet concentrate (TK) with a platelet concentration of 1 × 109 / ml to 1.5 × 109 / ml containing functionally active platelets;

- разделение ТК на тромбоцитсодержащую часть и плазму с последующим отделением плазмы от тромбоцитсодержащей части;- separation of TC into a platelet-containing part and plasma, followed by separation of the plasma from the platelet-containing part;

- ресуспендирование тромбоцитсодержащей части предварительно приготовленным комбинированным криопротектором, который вводят в тромбоцитсодержащую часть по 1-3 мл с интервалами 1-3 минуты при постоянном перемешивании до конечной концентрации ДМСО в суспензии тромбоцитов от 5 до 7%;- resuspension of the platelet-containing part by a pre-prepared combined cryoprotectant, which is injected into the platelet-containing part of 1-3 ml at intervals of 1-3 minutes with constant stirring to a final concentration of DMSO in the platelet suspension from 5 to 7%;

- замораживание суспензии тромбоцитов и плазмы со скоростью 1-3°/мин в отдельных контейнерах в морозильной камере при температуре от минус 80°С до минус 100°С;- freezing a suspension of platelets and plasma at a speed of 1-3 ° / min in separate containers in the freezer at a temperature of minus 80 ° C to minus 100 ° C;

- хранение замороженных тромбоцитов и плазмы при температуре от минус 85°С до минус 196°С;- storage of frozen platelets and plasma at a temperature of minus 85 ° C to minus 196 ° C;

при этом комбинированный криопротектор, содержащий 55% ДМСО и 5% декстран 40, перед ресуспендированием тромбоцитсодержащей части предварительно разводят плазмой до конечной концентрации ДМСО от 10 до 15%.wherein the combined cryoprotectant containing 55% DMSO and 5% dextran 40, is preliminarily diluted with plasma to a final concentration of DMSO from 10 to 15% before resuspending the platelet-containing part.

Функционально активными в исходном ТК считают тромбоциты, которые соответствуют следующим параметрам: тромбоциты с гранулами от 40% до 70% и тромбоциты с адгезивной активностью от 40 до 70%.Platelets that correspond to the following parameters are considered functionally active in the initial TC: platelets with granules from 40% to 70% and platelets with adhesive activity from 40 to 70%.

Кроме того, разделение ТК на тромбоцитсодержащую часть и плазму может быть реализовано с помощью центрифугирования со скоростью от 1100g до 1400g в течение от 7 до 12 минут. В качестве криопротектора может быть использован DIMETYLSULFOXIDE/DEXTRAN 40 SOLUTION (Cryopreservative Solution) 5 ml. Ресуспендирование тромбоцитсодержащей части криопротектором осуществляют в течение от 9 до 12 минут.In addition, the separation of TC into a platelet-containing part and plasma can be realized by centrifugation at a speed of 1100g to 1400g for 7 to 12 minutes. As a cryoprotectant, DIMETYLSULFOXIDE / DEXTRAN 40 SOLUTION (Cryopreservative Solution) 5 ml can be used. Resuspension of the platelet-containing part by a cryoprotectant is carried out for 9 to 12 minutes.

В конкретном варианте осуществления изобретения исходный тромбоцитный концентрат отбирают объемом от 180 до 220 мл, для приготовления комбинированного криопротектора с конечной концентрации ДМСО от 10 до 15% исходный криопротектор разводят плазмой в объемном соотношении 1:9, ресуспендирование тромбоцитсодержащей части разведенным криопротектором для получения суспензии тромбоцитов с конечной концентрацией ДМСО от 5 до 7% осуществляют в объемном соотношении 1:1.In a specific embodiment, the initial platelet concentrate is taken from 180 to 220 ml, for the preparation of a combined cryoprotectant with a final concentration of DMSO from 10 to 15%, the initial cryoprotectant is diluted with plasma in a volume ratio of 1: 9, resuspending the platelet-containing part with a diluted cryoprotectant to obtain a platelet suspension with the final concentration of DMSO from 5 to 7% is carried out in a volume ratio of 1: 1.

После размораживания измеряют следующие параметры тромбоцитов: количество тромбоцитов, количество тромбоцитов с гранулами и количество адгезивно активных тромбоцитов. Данную информацию наносят на контейнер для последующего выбора контейнера с необходимыми параметрами для транфузии конкретному пациенту в зависимости от его антропометрических характеристик.After thawing, the following platelet parameters are measured: platelet count, platelet count with granules and adhesive platelet count. This information is applied to the container for subsequent selection of the container with the necessary parameters for transfusion to a particular patient, depending on its anthropometric characteristics.

Таким образом, поставленная задача решается за счет внедрения в технологию замораживания тромбоцитов адекватных методов анализа структурной целостности и функциональной активности тромбоцитов, использование комбинированного (эндоцитарного и экзоцитарного) криопротектора, предварительное разделение ТК путем центрифугирования на тромбоцитную часть и бедную тромбоцитами плазму с последующим замораживанием тромбоцитной части и бедной тромбоцитами плазмы при температуре минус 80°С, хранение замороженного ТК при температуре от минус 80°С до минус 196°С от 180 суток до 24 месяцев с целью карантинизации тромбоцитов и плазмы.Thus, the problem is solved by introducing into the platelet freezing technology adequate methods for analyzing the structural integrity and functional activity of platelets, using a combined (endocytic and exocytic) cryoprotectant, preliminary separation of TK by centrifugation into the platelet part and platelet-poor plasma, followed by freezing of the platelet part platelet-poor plasma at a temperature of minus 80 ° C, storage of frozen TC at a temperature of minus 8 0 ° C to minus 196 ° C from 180 days to 24 months in order to quarantine platelets and plasma.

Использование адекватного метода морфофункционального анализа тромбоцитов человека позволило оптимизировать оценку качества клеток в ТК на разных этапах криоконсервирования. В качестве такого приема был предложен разработанный ранее способ оценки морфофункционального статуса тромбоцитов человека [Патент РФ на изобретение №2485502 «Способ оценки морфофункционального статуса тромбоцитов человека», авторы Хубутия М.Ш., Макаров М.С., Хватов В.Б., Высочин И.В., Кобзева Е.Н., Боровкова Н.В., Конюшко О.И., 20.06.2013], основанный на витальном (прижизненном) окрашивании тромбоцитов флуорохромным красителем на основе трипафлавина и акридинового оранжевого с последующим их анализом во флуоресцентном микроскопе. Данный метод позволяет параллельно оценить структурную целостность и функциональную активность тромбоцитов независимо от их концентрации в пробе. Таким образом, используя данный метод, появляется возможность оценить общее содержание биологически Полноценных тромбоцитов в исследуемом ТК. Проведенные исследования показывают, что биологически полноценными (с нормальной структурой и функциями) являются лишь те тромбоциты, в которых при витальном окрашивании отчетливо выявляются гранулы - не менее 3 гранул диаметром более 300 мкм на клетку во флуоресцентном микроскопе, яркость свечения клетки - не менее 40 фут-кандел (Макаров М.С., Кобзева Е.Н., Высочин И.В., Боровкова Н.В., Хватов В.Б. Морфофункциональный анализ тромбоцитов человека с помощью витального окрашивания // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 2013. - №9. - С. 388-391). Следовательно, оценка содержания тромбоцитов с гранулами может быть использована для контроля качества клеток ТК (до и после криоконсервирования).The use of an adequate method of morphofunctional analysis of human platelets made it possible to optimize the assessment of the quality of cells in TC at different stages of cryopreservation. As such a technique, a previously developed method for assessing the morphofunctional status of human platelets was proposed [RF Patent for invention No. 2485502 “Method for assessing the morphofunctional status of human platelets”, authors Khubutia M.Sh., Makarov MS, Khvatov VB, Vysochin I.V., Kobzeva E.N., Borovkova N.V., Konyushko O.I., June 20, 2013], based on vital (intravital) staining of platelets with fluorochrome dye based on tripaflavin and acridine orange, followed by their analysis in fluorescence a microscope. This method allows you to simultaneously evaluate the structural integrity and functional activity of platelets, regardless of their concentration in the sample. Thus, using this method, it becomes possible to assess the total content of biologically valuable platelets in the studied TC. The studies show that only platelets in which granules are clearly visible during vital staining are clearly biologically complete (with normal structure and functions) - at least 3 granules with a diameter of more than 300 microns per cell in a fluorescence microscope, the brightness of the cell is at least 40 feet -candle (Makarov M.S., Kobzeva E.N., Vysochin I.V., Borovkova N.V., Khvatov V.B. Morphofunctional analysis of human platelets using vital staining // Bulletin of Experimental Biology and Medicine. - 2013 . - No. 9. - S. 388-391 ) Therefore, the assessment of platelet count with granules can be used to control the quality of TK cells (before and after cryopreservation).

При экспозиции, богатой тромбоцитами плазмы (БоТП) с ДМСО в конечной концентрации от 0,5 до 20% при комнатной температуре, было установлено, что в процессе контакта с ДМСО биологическая полноценность клеток БоТП снижается, параллельно с этим уменьшается содержание тромбоцитов с гранулами (табл. 1). Так, при 0,5% ДМСО содержание тромбоцитов с гранулами в БоТП практически не менялось в течение 2 часов при комнатной температуре, через 4 часа снижалась на 7-10%, через 20 часов - на 70%. При концентрации ДМСО от 1 до 20% динамика снижения числа тромбоцитов с гранулами была сходной в течение первых двух часов: через 1 час потеря тромбоцитов с гранулами составила 10-20%, через 2 часа - 40-50%, через 4 часа - от 60 до 80%, через 20 часов тромбоциты с гранулами в БоТП полностью отсутствовали. Еще более выраженной динамика снижения тромбоцитов с гранулами была при 10-20% ДМСО: через 2 часа потеря тромбоцитов с гранулами составила 55-65%, через 4 часа - 90-99%. Стоит особо отметить, что при концентрации ДМСО 5% и выше адгезивная активность тромбоцитов с гранулами падает гораздо быстрее, чем их содержание. Этот эффект становится выражен уже при концентрации ДМСО 2% и выше. При использовании 5% ДМСО после 30 мин экспозиции адгезивная активность тромбоцитов снижалась в среднем в 2 раза (табл. 2). Таким образом, уже через 30 мин экспозиции БоТП с 5% ДМСО при комнатной температуре в среднем 50% тромбоцитов с гранулами не проявляли функциональной активности. Это указывает на то, что время контакта тромбоцитов с 5% ДМСО при комнатной температуре должно быть минимизировано. С другой стороны, при концентрации 0,3-0,5% ДМСО биологическая полноценность тромбоцитов практически не нарушается в течение нескольких часов. Следовательно, разведение размороженных ДМСО-содержащих ТК до концентрации 0,3-0,5% ДМСО позволит сохранить их структурную и функциональную полноценность в течение 4-6 часов после разморозки.When exposed to platelet-rich plasma (BTP) with DMSO in a final concentration of 0.5 to 20% at room temperature, it was found that in contact with DMSO the biological usefulness of BTP cells decreases, and at the same time, the content of platelets with granules decreases (Table . one). So, at 0.5% DMSO, the content of platelets with granules in the BTP practically did not change for 2 hours at room temperature, after 4 hours it decreased by 7-10%, after 20 hours - by 70%. At a DMSO concentration of 1 to 20%, the dynamics of a decrease in the number of platelets with granules was similar during the first two hours: after 1 hour, the loss of platelets with granules was 10-20%, after 2 hours - 40-50%, after 4 hours - from 60 up to 80%, after 20 hours, platelets with granules in the BTP were completely absent. An even more pronounced decrease in platelet count with granules was at 10-20% DMSO: after 2 hours, platelet loss with granules was 55-65%, after 4 hours - 90-99%. It is worth noting that with a DMSO concentration of 5% or higher, the adhesive activity of platelets with granules decreases much faster than their content. This effect becomes apparent even at a concentration of DMSO of 2% and higher. When using 5% DMSO after 30 minutes of exposure, the adhesive activity of platelets decreased on average by 2 times (table. 2). Thus, after 30 minutes of exposure to BTP with 5% DMSO at room temperature, an average of 50% of platelets with granules did not show functional activity. This indicates that platelet contact time with 5% DMSO at room temperature should be minimized. On the other hand, at a concentration of 0.3-0.5% DMSO, the biological usefulness of platelets is practically not disturbed for several hours. Therefore, the dilution of thawed DMSO-containing TC to a concentration of 0.3-0.5% DMSO will allow them to maintain their structural and functional usefulness for 4-6 hours after defrosting.

Figure 00000001
Figure 00000001

Figure 00000002
Figure 00000002

В процессе проведения научно-исследовательской работы была разработана процедура замораживания ТК, при которой время контакта тромбоцитов под действием ДМСО было минимизировано. Был выбран комбинированный стерильный криоконсервирующий раствор, содержащий 55% ДМСО (эндоцитарный криопротектор) и 5% декстран (экзоцитарный криопротектор), который позволяет адекватно проводить заморозку клеток и межклеточной среды. Вносить криопротектор в ТК предлагается после его центрифугирования и разделения на тромбоцитсодержащую часть и бедную тромбоцитами плазму. Для получения бедной тромбоцитами плазмы ТК необходимо подвергнуть центрифугированию при ускорении 1250 g. Проведенные ранее исследования показали, что центрифугирование БоТП и ТК с ускорением от 500g до 2000g значимо не влияет на содержание клеток с гранулами [Макаров М.С., Кобзева Е.Н., Боровкова Н.В., Хватов В.Б. Влияние центрифугирования на биологическую полноценность тромбоцитов человека // Вестник службы крови России. - 2015. - №1. - С. 41-44]. Как и в прототипе, объем полученной тромбоцитсодержащей части составлял 10-15 мл. Однако, в отличие от прототипа, вносили комбинированный криопротектор на основе ДМСО и декстрана уже после центрифугирования и отделения бедной тромбоцитами плазмы. Общая продолжительность этой процедуры составляет 8-12 мин, тогда как в прототипе - от 25 до 30 минут. Таким образом, заявляемая технология в 2,5-3,0 раза сокращает время контакта тромбоцитов с криопротектором.In the process of conducting research work, a procedure for freezing TC was developed, in which the contact time of platelets under the influence of DMSO was minimized. A combined sterile cryopreservation solution was selected containing 55% DMSO (endocytic cryoprotectant) and 5% dextran (exocytic cryoprotectant), which allows adequate freezing of cells and intercellular medium. It is proposed to introduce a cryoprotectant into a TC after centrifugation and separation into a platelet-containing part and a platelet-poor plasma. To obtain platelet-poor plasma, TC must be centrifuged at an acceleration of 1250 g. Previous studies have shown that centrifugation of BTP and TC with acceleration from 500g to 2000g does not significantly affect the content of cells with granules [Makarov MS, Kobzeva EN, Borovkova NV, Khvatov VB The effect of centrifugation on the biological usefulness of human platelets // Bulletin of the Russian blood service. - 2015. - No. 1. - S. 41-44]. As in the prototype, the volume of the obtained platelet-containing part was 10-15 ml. However, unlike the prototype, a combined cryoprotectant based on DMSO and dextran was introduced after centrifugation and separation of platelet-poor plasma. The total duration of this procedure is 8-12 minutes, while in the prototype from 25 to 30 minutes. Thus, the claimed technology 2.5-3.0 times reduces the contact time of platelets with a cryoprotectant.

Было проведено сравнение качества тромбоцитов в криоконсервированных ТК, полученных с помощью технологии-прототипа и с помощью заявляемой технологии (таблица 3.). Для оценки эффективности криоконсервирования тромбоцитов решено было определять сохранность тромбоцитов с гранулами и сохранность их адгезивной активности. Было установлено, что заявляемая технология позволяет сохранить гораздо большее число биологически полноценных тромбоцитов (в 1,5-1,8 раза), чем технология-прототип. Разведение криконсервированных ТК осуществляли с помощью бесклеточной плазмы того же донора, которую параллельно замораживали (без криопротектора), а затем размораживали. Объем размороженной плазмы составлял 90-100 мл, что позволяло развести тромбоцитсодержащую часть ТК в 10 раз, снижая концентрацию ДМСО в ней до 0,4-0,6%. В то же время в прототипе концентрация ДМСО составляет 2,5-3%, осмолярность - более 800 мОсмоль/л, что является токсичным для тромбоцитов человека. При этом для дилюции ТК используется 0,9% раствор хлорида натрия, не обладающий буферными свойствами и не препятствующий закислению среды. В результате хранение размороженных ТК, полученных по технологии-прототипу, сопровождается выраженным снижением структурной и функциональной полноценности тромбоцитов. Так, через 1 час хранения в размороженных ТК адгезивная активность клеток снижается на 70%, через 2 часа - на 90%, через 4 часа - на 95-98% (фиг. 1). Это указывает на неэффективность хранения ТК (в прототипе) при комнатной температуре. Напротив, при разведении тромбоцитсодержащей части ТК бесклеточной плазмой (предлагаемая технология) адгезивная активность тромбоцитов снижается через 4 часа лишь на 10% фиг. 1). Таким образом, появляется возможность хранения размороженных ТК при комнатной температуре в течение 4 часов без угрозы потери структурной или функциональной полноценности тромбоцитов. Осмолярность полученной дозы ТК составляет 360-380 мОсмоль/л, что соответствует физиологической норме и не вызывает развития у пациентов посттрансфузионных реакций.A comparison was made of the quality of platelets in cryopreserved TCs obtained using the prototype technology and using the inventive technology (table 3.). To assess the effectiveness of platelet cryopreservation, it was decided to determine the safety of platelets with granules and the safety of their adhesive activity. It was found that the claimed technology allows you to save a much larger number of biologically complete platelets (1.5-1.8 times) than the prototype technology. Cryopreserved TCs were diluted using acellular plasma of the same donor, which was simultaneously frozen (without a cryoprotectant) and then thawed. The volume of thawed plasma was 90-100 ml, which made it possible to dilute the platelet-containing part of the TC by 10 times, reducing the concentration of DMSO in it to 0.4-0.6%. At the same time, in the prototype, the concentration of DMSO is 2.5-3%, the osmolarity is more than 800 mOsmol / l, which is toxic to human platelets. In this case, for dilution of TC, a 0.9% sodium chloride solution is used, which does not have buffering properties and does not interfere with acidification of the medium. As a result, storage of thawed TC obtained by the technology of the prototype is accompanied by a pronounced decrease in the structural and functional usefulness of platelets. So, after 1 hour of storage in thawed TCs, the adhesive activity of cells decreases by 70%, after 2 hours - by 90%, after 4 hours - by 95-98% (Fig. 1). This indicates the inefficiency of storage of TC (in the prototype) at room temperature. On the contrary, when the platelet-containing part of the TC is diluted with acellular plasma (the proposed technology), the adhesive activity of the platelets decreases after 4 hours only by 10% of FIG. one). Thus, it becomes possible to store thawed TC at room temperature for 4 hours without the threat of losing the structural or functional usefulness of platelets. The osmolarity of the received dose of TC is 360-380 mOsmol / l, which corresponds to the physiological norm and does not cause the development of post-transfusion reactions in patients.

Figure 00000003
Figure 00000003

Краткое описание чертежейBrief Description of the Drawings

Изобретение поясняется графиком, на котором представлена динамика изменения адгезивной активности тромбоцитов в размороженных ТК, приготовленных с использованием технологии-прототипа и заявляемой технологии.The invention is illustrated in the graph, which shows the dynamics of changes in the adhesive activity of platelets in thawed TC prepared using the technology of the prototype and the inventive technology.

Осуществление изобретенияThe implementation of the invention

Ниже представлено подробное описание заявляемого способа замораживания тромбоцитов с указанием в некоторых случаях конкретных значений параметров, которые не ограничивают заявляемое изобретение, а представлены лишь для лучшего понимания сущности изобретения. Заявляемый способ включает следующие этапы.Below is a detailed description of the proposed method of platelet freezing, indicating in some cases specific values of the parameters that do not limit the claimed invention, but are presented only for a better understanding of the invention. The inventive method includes the following steps.

1. Отбор исходного тромбоцитного концентрата (ТК)1. The selection of the original platelet concentrate (TC)

Отбор ТК, полученного методом афереза или из дозы крови, проводят по показателям: концентрация и морфофункциональный статус тромбоцитов. Концентрацию тромбоцитов в ТК определяют на геманализаторе. Функциональную активность тромбоцитов оценивают методом витального окрашивания. Для этого готовят витальный краситель для тромбоцитов путем разведения 10 мг трипафлавина и 20 мг акридинового оранжевого при комнатной температуре в 100 мл фосфатного буфера (рН - 7,2-7,4), окрашивают пробу ТК из расчета 200 мкл готового красителя на 1 мл пробы в течение 2-5 мин при комнатной температуре, после чего 5 мкл пробы с окрашенными тромбоцитами переносят на предметное стекло и накрывают покровным стеклом. Витально окрашенный препарат анализируют во флуоресцентном микроскопе (объектив ×100, числовая апертура 0.6, λ возбуждения 450-490 нм, λ эмиссии - от 520 нм) в полуавтоматическом режиме. Анализируют изображения 100-200 клеток, определяют содержание тромбоцитов с гранулами (в %) и адгезивную активность тромбоцитов (в %). Для криоконсервирования используют ТК, содержащие от 1×109/мл до 1,5×109/мл тромбоцитов, имеющие тромбоциты с гранулами от 40% до 70% и тромбоциты с адгезивной активностью от 40% до 70%.The selection of TC obtained by apheresis or from a dose of blood is carried out according to indicators: concentration and morphofunctional status of platelets. The concentration of platelets in the TC is determined on a hemisphere analyzer. The functional activity of platelets is evaluated by vital staining. To do this, prepare a vital dye for platelets by diluting 10 mg of tripaflavin and 20 mg of acridine orange at room temperature in 100 ml of phosphate buffer (pH 7.2-7.4), staining the TC sample at the rate of 200 μl of the finished dye per 1 ml of sample for 2-5 min at room temperature, after which 5 μl of a sample with stained platelets is transferred to a glass slide and covered with a coverslip. A vitally stained preparation is analyzed under a fluorescence microscope (objective × 100, numerical aperture 0.6, excitation λ 450–490 nm, emission λ from 520 nm) in a semi-automatic mode. Analyze images of 100-200 cells, determine the platelet content with granules (in%) and the adhesive activity of platelets (in%). For cryopreservation, TCs are used that contain from 1 × 10 9 / ml to 1.5 × 10 9 / ml platelets, having platelets with granules from 40% to 70% and platelets with adhesive activity from 40% to 70%.

2. Фракционирование ТК2. Fractionation of TC

Для концентрирования тромбоцитов ТК центрифугируют со скоростью от 1100g до 1400g в течение от 7 до 12 минут. После центрифугирования получают надосадок (плазму бедную тромбоцитами) и тромбоцитсодержащую часть.To concentrate platelets, TCs are centrifuged at a speed of 1100g to 1400g for 7 to 12 minutes. After centrifugation, a supernatant (platelet poor plasma) and a platelet-containing part are obtained.

3. Приготовление (разведение) криопротектора3. Preparation (breeding) of cryoprotectant

Набирают в 10 мл шприц от 1 до 3 мл комбинированного стерильного криопротектора («DIMETYLSULFOXIDE/DEXTRAN 40 SOLUTION (Cryopreservative Solution) 5 ml», содержащего 55% ДМСО и 5% декстран 40. Подсоединяют шприц с криопротектором к контейнеру, содержащему ТК, размещенному в плазмоэкстракторе. Набирают в шприц, содержащий криопротектор, от 10 до 12 мл плазмы. В результате разведения криопротектора концентрация ДМСО снижается в 5 раз.From 1 to 3 ml of a combined sterile cryoprotectant (DIMETYLSULFOXIDE / DEXTRAN 40 SOLUTION (Cryopreservative Solution) 5 ml) containing 55% DMSO and 5% dextran 40 is collected in a 10 ml syringe. Connect the syringe with cryoprotectant to a container containing TK placed in a TK 10 to 12 ml of plasma is drawn into a syringe containing a cryoprotectant. As a result of dilution of the cryoprotectant, the concentration of DMSO is reduced by a factor of 5.

4. Отделение плазмы от тромбоцитсодержащей части4. Separation of plasma from the platelet-containing part

Контейнер, содержащий надосадок (плазму бедную тромбоцитами) и тромбоцитсодержащую часть, помещают в плазмоэкстрактор и удаляют плазму в другой контейнер для последующего замораживания.A container containing a supernatant (platelet-poor plasma) and a platelet-containing part is placed in a plasma extractor and the plasma is removed in another container for subsequent freezing.

5. Ресуспендирование тромбоцитов криопротектором5. Resuspension of platelets by a cryoprotector

Приготовленным криопротектором DIMETYLSULFOXIDE/DEXTRAN 40 SOLUTION (Cryopreservative Solution), содержащим 55% ДМСО и 5% декстран, предварительно разведенным плазмой до конечной концентрации ДМСО 10-15% (в соотношении 1:4), ресуспендируют тромбоцитсодержащую часть. Приготовленный криопротектор вводят по 2 мл с интервалами 2 минуты при постоянном перемешивании содержимого контейнера до достижения конечной концентрации ДМСО в суспензии тромбоцитов от 5 до 7%.The platelet-containing part is resuspended with the prepared cryoprotectant DIMETYLSULFOXIDE / DEXTRAN 40 SOLUTION (Cryopreservative Solution) containing 55% DMSO and 5% dextran, previously diluted with plasma to a final concentration of DMSO 10-15% (1: 4 ratio). The prepared cryoprotectant is administered in 2 ml intervals of 2 minutes with constant stirring of the contents of the container until the final concentration of DMSO in the platelet suspension is from 5 to 7%.

6. Замораживание тромбоцитов6. Platelet Freeze

Ресуспендированные криопротектором тромбоциты замораживают со скоростью 1-3°/мин в морозильной камере при температуре от минус 85°С до минус 100°С.Platelets resuspended by a cryoprotectant are frozen at a speed of 1-3 ° / min in a freezer at a temperature of minus 85 ° C to minus 100 ° C.

7. Хранение замороженных тромбоцитов7. Storage of frozen platelets

Замороженные тромбоциты хранят при температуре от минус 85°С до минус 196°С.Frozen platelets are stored at a temperature of minus 85 ° C to minus 196 ° C.

8. Контроль качества размороженных тромбоцитов.8. Quality control of thawed platelets.

Качество размороженных тромбоцитов определяют по параметрам: объем (от 180 до 220 мл), сохранность тромбоцитов не менее 75% от исходного, сохранность тромбоцитов с гранулами и тромбоцитов с адгезивной активностью не менее 50% от исходного.The quality of thawed platelets is determined by the parameters: volume (from 180 to 220 ml), the safety of platelets is at least 75% of the original, the safety of platelets with granules and platelets with adhesive activity of at least 50% of the original.

ПримерExample

Для получения замороженных тромбоцитов заготовили тромбоцитный концентрат (ТК) методом афереза на сепараторе крови Trima Accel®. Объем ТК составил 200 мл, содержание тромбоцитов - 218×109/дозе, содержание тромбоцитов с гранулами - 51%, адгезивная активность тромбоцитов - 50%. ТК разделили на две равные части: одну часть (ТК №1) замораживали, используя технологию-прототип, другую (ТК №2) - используя предлагаемую технологию. Параметры качества криоконсервированных тромбоцитов представлены в таблице 4.To obtain frozen platelets, a platelet concentrate (TC) was prepared by apheresis on a Trima Accel® blood separator. The TC volume was 200 ml, the platelet content was 218 × 10 9 / dose, the platelet content with granules was 51%, and the platelet adhesive activity was 50%. TCs were divided into two equal parts: one part (TC No. 1) was frozen using the prototype technology, the other (TC No. 2) was frozen using the proposed technology. The quality parameters of cryopreserved platelets are presented in table 4.

Анализ результатов хранения замороженных тромбоцитов показал, что заявляемая технология по сравнению с прототипом обеспечивает значимо большую сохранность жизнеспособных клеток в размороженных ТК. Так после размораживания тромбоцитов по предложенной технологии содержание жизнеспособных клеток было больше, чем в прототипе, в 2,5-3 раза.Analysis of the results of storage of frozen platelets showed that the claimed technology in comparison with the prototype provides significantly greater safety of viable cells in thawed TCs. So after thawing platelets according to the proposed technology, the content of viable cells was 2.5-3 times higher than in the prototype.

Figure 00000004
Figure 00000004

Claims (12)

1. Способ замораживания тромбоцитов включает:1. The method of freezing platelets includes: отбор исходного тромбоцитного концентрата (ТК) с концентрацией тромбоцитов от 1×109/мл до 1,5×109/мл, содержащего функционально активные тромбоциты;selection of the initial platelet concentrate (TK) with a platelet concentration from 1 × 10 9 / ml to 1.5 × 10 9 / ml containing functionally active platelets; разделение ТК на тромбоцитсодержащую часть и плазму с последующим отделением плазмы от тромбоцитсодержащей части;separation of TC into a platelet-containing part and plasma, followed by separation of the plasma from the platelet-containing part; приготовление комбинированного криопротектора, содержащего 55% ДМСО и 5% декстран 40, путем разведения криопротектора плазмой до конечной концентрации ДМСО от 10 до 15%;preparation of a combined cryoprotectant containing 55% DMSO and 5% dextran 40 by diluting the cryoprotectant with plasma to a final concentration of DMSO from 10 to 15%; ресуспендирование тромбоцитсодержащей части разведенным криопротектором, который вводят в тромбоцитсодержащую часть по 1-3 мл с интервалами 1-3 минуты при постоянном перемешивании до конечной концентрации ДМСО в суспензии тромбоцитов от 5 до 7%;resuspension of the platelet-containing part with a diluted cryoprotectant, which is introduced into the platelet-containing part of 1-3 ml at intervals of 1-3 minutes with constant stirring to a final concentration of DMSO in a platelet suspension of 5 to 7%; замораживание суспензии тромбоцитов и плазмы со скоростью 1-3°/мин в отдельных контейнерах в морозильной камере при температуре от минус 80 до минус 100°C;freezing a suspension of platelets and plasma at a speed of 1-3 ° / min in separate containers in the freezer at a temperature of minus 80 to minus 100 ° C; хранение замороженных тромбоцитов и плазмы при температуре от минус 85 до минус 196°C.storage of frozen platelets and plasma at a temperature of minus 85 to minus 196 ° C. 2. Способ по п. 1, характеризующийся тем, что функционально активные тромбоциты в исходном ТК определяются параметрами: тромбоциты с гранулами от 40 до 70% и тромбоциты с адгезивной активностью от 40 до 70%.2. The method according to p. 1, characterized in that the functionally active platelets in the original TC are determined by the parameters: platelets with granules from 40 to 70% and platelets with adhesive activity from 40 to 70%. 3. Способ по п. 1, характеризующийся тем, что разделение ТК на тромбоцитсодержащую часть и плазму осуществляют центрифугированием со скоростью от 1100g до 1400g в течение от 7 до 12 минут.3. The method according to p. 1, characterized in that the separation of the TC into the platelet-containing part and the plasma is carried out by centrifugation at a speed of from 1100g to 1400g for 7 to 12 minutes. 4. Способ по п. 1, характеризующийся тем, что в качестве криопротектора используют DIMETYLSULFOXIDE/DEXTRAN 40 SOLUTION (Cryopreservative Solution) 5 ml.4. The method according to p. 1, characterized in that as a cryoprotectant use DIMETYLSULFOXIDE / DEXTRAN 40 SOLUTION (Cryopreservative Solution) 5 ml. 5. Способ по п. 1, характеризующийся тем, что ресуспендируют тромбоцитсодержащую часть криопротектором в течение от 9 до 12 минут.5. The method according to p. 1, characterized in that the platelet-containing part is resuspended by a cryoprotectant for 9 to 12 minutes. 6. Способ по п. 1, характеризующийся тем, что исходный тромбоцитный концентрат отбирают объемом от 180 до 220 мл, для приготовления комбинированного криопротектора с конечной концентрации ДМСО от 10 до 15% исходный криопротектор разводят плазмой в объемном соотношении 1:9, ресуспендирование тромбоцитсодержащей части разведенным криопротектором для получения суспензии тромбоцитов с конечной концентрацией ДМСО от 5 до 7% осуществляют в объемном соотношении 1:1.6. The method according to p. 1, characterized in that the initial platelet concentrate is taken with a volume of from 180 to 220 ml, for the preparation of a combined cryoprotectant with a final concentration of DMSO from 10 to 15%, the initial cryoprotectant is diluted with plasma in a volume ratio of 1: 9, resuspension of the platelet-containing part diluted cryoprotectant to obtain a platelet suspension with a final concentration of DMSO from 5 to 7% is carried out in a volume ratio of 1: 1.
RU2016124197A 2016-06-20 2016-06-20 Method for platelets freezing RU2623083C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2016124197A RU2623083C1 (en) 2016-06-20 2016-06-20 Method for platelets freezing

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2016124197A RU2623083C1 (en) 2016-06-20 2016-06-20 Method for platelets freezing

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2623083C1 true RU2623083C1 (en) 2017-06-21

Family

ID=59241303

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2016124197A RU2623083C1 (en) 2016-06-20 2016-06-20 Method for platelets freezing

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2623083C1 (en)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU99126524A (en) * 1999-12-16 2001-08-27 Военно-медицинская академия METHOD FOR LOW TEMPERATURE CANNING OF THROMBOCYTES
RU2233589C2 (en) * 2002-01-14 2004-08-10 Галина Степановна Лобынцева Method for cryopreserving human hemopoietic cells
RU2006131078A (en) * 2006-08-29 2008-03-10 ФГУ "Кировский НИИ гематологии и переливани крови Росздрава" (RU) METHOD FOR CRYOPreservation of platelets

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU99126524A (en) * 1999-12-16 2001-08-27 Военно-медицинская академия METHOD FOR LOW TEMPERATURE CANNING OF THROMBOCYTES
RU2233589C2 (en) * 2002-01-14 2004-08-10 Галина Степановна Лобынцева Method for cryopreserving human hemopoietic cells
RU2006131078A (en) * 2006-08-29 2008-03-10 ФГУ "Кировский НИИ гематологии и переливани крови Росздрава" (RU) METHOD FOR CRYOPreservation of platelets

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
GLAFKE C et al. Cryopreservation of platelets using trehalose: the role of membrane phase behavior during freezing. Biotechnol Prog., 2012, 28(5), p.1347-54. *
VALERI CR et al. Freezing human platelets with 6 percent dimethyl sulfoxide with removal of the supernatant solution before freezing and storage at -80 degrees C without postthaw processing. Transfusion, 2005, 45(12), p.1890-8. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
García-Roa et al. Red blood cell storage time and transfusion: current practice, concerns and future perspectives
Almizraq et al. Extracellular vesicles in transfusion-related immunomodulation and the role of blood component manufacturing
Hubel et al. Storage of human biospecimens: selection of the optimal storage temperature
EP2271209B1 (en) Materials and methods for hypothermic collection of whole blood
Veale et al. Effect of additive solutions on red blood cell (RBC) membrane properties of stored RBCs prepared from whole blood held for 24 hours at room temperature
Hess Conventional blood banking and blood component storage regulation: opportunities for improvement
Tissot et al. The storage lesions: from past to future
Yang et al. Factors affecting banking quality of umbilical cord blood for transplantation
AU4507896A (en) Method and bag set for concentrating white cells
US20010034513A1 (en) High concentration white cells, a method for agglomeration of the high concentration and a bag set for use in conjunction therewith
Chang et al. Previous cryopreservation alters the natural history of the red blood cell storage lesion
Chen et al. Introducing the red cell storage lesion
Wannez et al. Extracellular vesicles in red blood cell concentrates: an overview
RU2623081C1 (en) Method for platelets cryopreservation
US20150328260A1 (en) Blood cell preparations and related methods (gen 8)
Johnson et al. Refrigeration of apheresis platelets in platelet additive solution (PAS‐E) supports in vitro platelet quality to maximize the shelf‐life
Lelkens et al. Prolonged post‐thaw shelf life of red cells frozen without prefreeze removal of excess glycerol
Johnson et al. Platelet microparticles in cryopreserved platelets: potential mediators of haemostasis
Johnson et al. Extended storage of thawed platelets: refrigeration supports postthaw quality for 10 days
Singh et al. Platelet storage lesion in interim platelet unit concentrates: A comparison with buffy-coat and apheresis concentrates
Reid et al. Cooling and freezing damage platelet membrane integrity
Kono et al. Morphological and flow-cytometric analysis of haemin-induced human neutrophil activation: implications for transfusion-related acute lung injury
Eker et al. Generation of platelet microparticles after cryopreservation of apheresis platelet concentrates contributes to hemostatic activity
Johnson et al. The role of sodium citrate during extended cold storage of platelets in platelet additive solutions
Hussein et al. Clinical and quality evaluation of red blood cell units collected via apheresis versus those obtained manually

Legal Events

Date Code Title Description
QB4A Licence on use of patent

Free format text: LICENCE FORMERLY AGREED ON 20180201

Effective date: 20180201

QB4A Licence on use of patent

Free format text: LICENCE FORMERLY AGREED ON 20180426

Effective date: 20180426

QB4A Licence on use of patent

Free format text: LICENCE FORMERLY AGREED ON 20180905

Effective date: 20180905

QB4A Licence on use of patent

Free format text: LICENCE FORMERLY AGREED ON 20180912

Effective date: 20180912

QB4A Licence on use of patent

Free format text: LICENCE FORMERLY AGREED ON 20181219

Effective date: 20181219

QB4A Licence on use of patent

Free format text: LICENCE FORMERLY AGREED ON 20191107

Effective date: 20191107

QB4A Licence on use of patent

Free format text: LICENCE FORMERLY AGREED ON 20191113

Effective date: 20191113

QB4A Licence on use of patent

Free format text: LICENCE FORMERLY AGREED ON 20191120

Effective date: 20191120

QB4A Licence on use of patent

Free format text: LICENCE FORMERLY AGREED ON 20200420

Effective date: 20200420