RU2616249C1 - Method for express-diagnostics of blood flow infection - Google Patents

Method for express-diagnostics of blood flow infection Download PDF

Info

Publication number
RU2616249C1
RU2616249C1 RU2016101596A RU2016101596A RU2616249C1 RU 2616249 C1 RU2616249 C1 RU 2616249C1 RU 2016101596 A RU2016101596 A RU 2016101596A RU 2016101596 A RU2016101596 A RU 2016101596A RU 2616249 C1 RU2616249 C1 RU 2616249C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
blood
smear
gram
microorganisms
microscopy
Prior art date
Application number
RU2016101596A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Наталья Михайловна Каргальцева
Владимир Иванович Кочеровец
Ольга Юрьевна Борисова
Станислав Степанович Афанасьев
Владимир Андрианович Алёшкин
Алексей Викторович Елисеев
Original Assignee
Федеральное бюджетное учреждение науки "Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное бюджетное учреждение науки "Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека filed Critical Федеральное бюджетное учреждение науки "Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека
Priority to RU2016101596A priority Critical patent/RU2616249C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2616249C1 publication Critical patent/RU2616249C1/en

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: invention relates to medicine, namely to laboratory methods of research, express-method for diagnostics of infectious disease accompanied by presence of microorganisms in blood. Way of express-method of blood flow infection diagnostics includes identification of microorganisms in blood by method of blood smear microscopy with immersion and magnification ×1000, with smear being prepared from leukocyte layer of venous blood with application of "two glasses" technique. After drying distilled water is poured on smear, covering its entire area, after 3-5 s destructed erythrocytes are washed away and smear is dried. After fixation above burner flame and Gram-staining, microscopy of obtained smear is realised by provision of colourless background of blood smear.
EFFECT: invention ensures increased efficiency of diagnostics of blood flow infection due to possibility of identification of Gram-positive and Gram-negative microorganisms with preservation of simplicity and availability of diagnostics.
1 tbl

Description

Изобретение относится к медицине, а именно к лабораторным методам исследования, экспресс-методу диагностики инфекционного заболевания, сопровождающегося наличием микроорганизмов - его возбудителей - в крови.The invention relates to medicine, namely to laboratory research methods, an express method for the diagnosis of an infectious disease, accompanied by the presence of microorganisms - its pathogens - in the blood.

Микроскопическое исследование биологического материала (моча, кал, мокрота, отделяемое гнойно-воспалительных очагов) является обязательным этапом клинического исследования материала в клинической лаборатории.Microscopic examination of biological material (urine, feces, sputum, separated by purulent-inflammatory foci) is an obligatory step in the clinical study of material in a clinical laboratory.

В микробиологической лаборатории также проводят микроскопическое исследование биологического материала (мокрота, спинномозговая жидкость, отделяемое ран, пунктаты и т.д.) при определенных инфекциях, но микроскопия мазка периферической крови не нашла широкого применения при диагностике инфекции в крови, несмотря на то, что практически применяется с 1906 года, когда диагностировали менингококкцемию по обнаружению менингококков в мазке периферической крови.The microbiological laboratory also conducts a microscopic examination of biological material (sputum, cerebrospinal fluid, wounds, punctures, etc.) for certain infections, but microscopy of a peripheral blood smear has not been widely used in the diagnosis of infection in the blood, despite the fact that used since 1906, when meningococcemia was diagnosed by detecting meningococci in a smear of peripheral blood.

Метод микроскопии биологического материала, включая кровь, относится к ускоренным методам обнаружения микроорганизма, так как клиницист имеет информацию через 1-1,5 часа после поступления материала в лабораторию. В окрашенных мазках выявляют бактерии и грибы на основании морфологических и тинкториальных признаков. В дальнейшем микроскопия крови стала применяться для диагностики угрожающих жизни инфекционных заболеваний, так как она позволяла обнаружить возбудитель в течение 1-1,5 часов.The method of microscopy of biological material, including blood, refers to accelerated methods for detecting a microorganism, since the clinician has information 1-1.5 hours after the material is received in the laboratory. In stained smears, bacteria and fungi are detected on the basis of morphological and tinctorial characters. In the future, blood microscopy began to be used to diagnose life-threatening infectious diseases, since it allowed to detect the pathogen within 1-1.5 hours.

Исторически диагнозы многих заболеваний ставили на основании результатов микроскопии.Historically, the diagnoses of many diseases were made based on the results of microscopy.

Первое сообщение об обнаружении бактерий в периферической крови микроскопическим методом было сделано Raver и Davaine в 1850 году. Они увидели маленькие тельца в крови овцы, которые были искусственно введены от овцы, умершей от сибирской язвы. В 1906 году F.W. Andrews обнаружил менингококки в мазке периферической крови до получения гемокультуры [1].The first report of the detection of bacteria in peripheral blood by a microscopic method was made by Raver and Davaine in 1850. They saw little bodies in the blood of a sheep that were artificially introduced from a sheep who died of anthrax. In 1906, F.W. Andrews found meningococci in a peripheral blood smear before receiving a blood culture [1].

В 1915 году Coze и Feltz докладывали о наличии бактерий в крови у пациентов, страдающих тифоидной лихорадкой [2]. В 1918 году W.W. King исследовал каплю крови, взятой из мочки уха у больных цереброспинальным менингитом, и обнаружил грамположительные и грамотрицательные кокки, которые в дальнейшем были выделены и идентифицированы как Staphylococcus aureus и Neisseria meningitidis [3].In 1915, Coze and Feltz reported the presence of bacteria in the blood of patients suffering from typhoid fever [2]. In 1918, W.W. King examined a drop of blood taken from the earlobe in patients with cerebrospinal meningitis and found gram-positive and gram-negative cocci, which were subsequently isolated and identified as Staphylococcus aureus and Neisseria meningitidis [3].

Микроскопический метод исследования крови нашел широкое применение при диагностике паразитарных заболеваний, которые имели высокий уровень летальности. Babesia microti была впервые диагностирована в 1888 году как причина смерти крупного рогатого скота и собак. Anderson и соавт. опубликовали случай бабезиоза у человека после укуса клещей. При микроскопии крови паразиты были выявлены в эритроцитах в виде бактерий, делящихся на две и более дочерних клеток [4]. Исследуемым материалом служила капля крови.The microscopic method of blood testing has been widely used in the diagnosis of parasitic diseases that had a high mortality rate. Babesia microti was first diagnosed in 1888 as a cause of death for cattle and dogs. Anderson et al. published a case of babesiosis in humans after a tick bite. Microscopy of the blood revealed parasites in red blood cells in the form of bacteria, dividing into two or more daughter cells [4]. The studied material was a drop of blood.

Техника приготовления мазка крови претерпевала изменения.The technique for preparing a blood smear has undergone changes.

Первоначально для микроскопического исследования крови готовили препарат «толстая капля» [5]. Таким образом, была введена диагностика малярии на основании микроскопии толстой капли крови, которая широко используется и по настоящее время.Initially, a “thick drop" preparation was prepared for microscopic examination of blood [5]. Thus, the diagnosis of malaria was introduced on the basis of microscopy of a thick drop of blood, which is widely used to this day.

С момента внедрения в клиническую лабораторную практику микроскопии тонкого мазка крови с использованием техники «двух стекол» началась эпоха диагностики более широкого спектра микроорганизмов, включая возбудителей угрожающих жизни заболеваний (менингококк). Усовершенствование техники приготовления мазка крови способствовало диагностическому расширению спектра возбудителей, включая бактерии и грибы.Since the introduction of thin blood smear microscopy into clinical laboratory practice using the “two glass” technique, the era of diagnosing a wider range of microorganisms, including pathogens of life-threatening diseases (meningococcus), has begun. Improving the preparation of a blood smear contributed to the diagnostic expansion of the spectrum of pathogens, including bacteria and fungi.

В 1944 году A. Humphrey разработал методику получения лейкоцитарного концентрата из пробы периферической крови и описал технику приготовления мазка периферической крови из данного слоя крови. Мазки готовили техникой «двух стекол» [6, 7, 8]. Автору удалось диагностировать бактериемию до получения гемокультуры. Преимущество этого метода заключалось в том, что элементы крови при определенном режиме центрифугирования распределялись в соответствии с их силой тяжести. Тяжелые эритроциты оседали на дно, легкая плазма находилась наверху, и под плазмой на эритроцитах лежал тонкий белый слой, представляющий собой смесь лейкоцитов, тромбоцитов и склеенных с ними микроорганизмов. Часть микроорганизмов находилась внутри нейтрофилов в виду их фагоцитирования, а часть микроорганизмов была склеена тромбоцитами. Внеклеточные микроорганизмы поднимались тромбоцитами через среду до лейкоцитарного слоя. Стафилококки и менингококки располагались вне- и внутриклеточно в мазках крови. Вариант окрашивания мазков крови по Райту и Граму позволял быстро обнаруживать стафилококки, стрептококки и менингококки у больных септицемией.In 1944, A. Humphrey developed a technique for producing a white blood cell concentrate from a peripheral blood sample and described a technique for preparing a smear of peripheral blood from a given blood layer. Smears were prepared using the “two glass” technique [6, 7, 8]. The author was able to diagnose bacteremia before receiving a blood culture. The advantage of this method was that the elements of the blood under a certain centrifugation mode were distributed in accordance with their gravity. Heavy red blood cells settled to the bottom, light plasma was at the top, and under the plasma on the red blood cells lay a thin white layer, which is a mixture of white blood cells, platelets and microorganisms glued to them. Some microorganisms were located inside neutrophils due to their phagocytosis, and some microorganisms were glued together by platelets. Extracellular microorganisms were raised by platelets through the medium to the leukocyte layer. Staphylococci and meningococci were located extra- and intracellularly in blood smears. The option of staining blood smears according to Wright and Gram made it possible to quickly detect staphylococci, streptococci and meningococci in patients with septicemia.

Мазки крови были тонкие, клеточные элементы крови располагались в один слой и хорошо просматривались. При просмотре в световом микроскопе хорошо выявлялись грамположительные микроорганизмы и с большим трудом обнаруживали грамотрицательные, так как они были одного цвета с эритроцитами, образующими фон мазка.Blood smears were thin, the cellular elements of the blood were located in one layer and were clearly visible. When viewed under a light microscope, gram-positive microorganisms were well detected and gram-negative, with great difficulty, were found, since they were the same color as red blood cells forming the background of the smear.

Сравнение двух методов (микроскопия и посев) при диагностике бактериемии и фунгемии показало преимущество микроскопии перед посевом. Это объясняется тем, что культуральный метод выделения возбудителя из крови требует применения высокопитательных сред (сердечно-мозговых), анаэробных условий культивирования, закрытых гемокультуральных систем и определенного времени на рост микроорганизма. К сожалению, в России не выпускают промышленным способом сердечно-мозговые среды для культивирования крови, анаэробные условия культивирования применяются только в лабораториях крупных медицинских центров. В настоящее время с целью диагностики бактериемии используются зарубежные дорогостоящие закрытые системы лишь отдельными крупными лечебными учреждениями. Для выделения грибов требуются отдельные специальные среды.Comparison of two methods (microscopy and culture) in the diagnosis of bacteremia and fungemia showed the advantage of microscopy over culture. This is because the cultural method of isolating the pathogen from the blood requires the use of highly nutritious media (cardio-cerebral), anaerobic cultivation conditions, closed blood culture systems and a certain amount of time for the growth of the microorganism. Unfortunately, in Russia they do not produce in an industrial way cardio-cerebral media for the cultivation of blood, anaerobic cultivation conditions are used only in laboratories of large medical centers. Currently, for the purpose of diagnosing bacteremia, foreign expensive closed systems are used only by individual large medical institutions. For the selection of mushrooms, separate special media are required.

Микроскопический метод исследования крови позволяет обнаруживать бактерии и грибы, диагностировать бактериемию и фунгемию за короткий период времени. На основании морфологии и тинкториальных свойств обнаруженных микроорганизмов возможно назначать эмпирическую антимикробную терапию уже через 1-1,5 часа с момента поступления крови в лабораторию.The microscopic method of blood testing allows you to detect bacteria and fungi, diagnose bacteremia and fungemia in a short period of time. Based on the morphology and tinctorial properties of the detected microorganisms, it is possible to prescribe empirical antimicrobial therapy within 1-1.5 hours from the moment of blood entering the laboratory.

Метод микроскопии применяется для диагностики бактериальных и грибковых инфекций.The microscopy method is used to diagnose bacterial and fungal infections.

Молниеносная форма менингококкцемии была диагностирована микроскопией мазка крови по обнаружению грамотрицательных диплококков в полиморфонуклеарных клетках. Кроме фагоцитируемых были и внеклеточные диплококки [26]. Ранее, в 1935 году Boone и Hall [27] и в 1943 году Thomas [28] диагностировали случаи менингококкцемии на основании микроскопических результатов исследования мазка периферической крови.The fulminant form of meningococcemia was diagnosed by blood smear microscopy to detect gram-negative diplococci in polymorphonuclear cells. In addition to the phagocytized ones, there were extracellular diplococci [26]. Earlier, in 1935, Boone and Hall [27] and in 1943 Thomas [28] diagnosed cases of meningococcemia based on microscopic findings from a peripheral blood smear.

Микроскопия мазков лейкоцитарного слоя пробы периферической крови была применена при диагностике диссеминированной инфекции, вызванной Mycobacterium avium complex у пациента с синдромом иммунодефицита. У всех пациентов позже были получены гемокультуры данного возбудителя. Чувствительность микроскопического метода составляла 35%, специфичность и степень предположения данных возбудителей - 100%. Авторы показали, что микроскопия мазка лейкоцитарного слоя при микобактериальной инфекции является быстрым, простым и специфическим методом диагностики диссеминированной инфекции [29].Microscopy of smears of the leukocyte layer of a peripheral blood sample was used to diagnose disseminated infection caused by Mycobacterium avium complex in a patient with immunodeficiency syndrome. All patients later received blood cultures of this pathogen. The sensitivity of the microscopic method was 35%, the specificity and degree of assumption of these pathogens was 100%. The authors showed that smear microscopy of the leukocyte layer in case of mycobacterial infection is a quick, simple and specific method for diagnosing disseminated infection [29].

В мазках крови возможно обнаружение кислотоустойчивых бактерий при циркуляции их в кровотоке в количестве 20-180 КОЕ/мл крови у больных без соответствующей терапии и от 800 КОЕ/мл крови и более у больных на фоне терапии [29].Acid-resistant bacteria can be detected in blood smears by circulating them in the bloodstream in an amount of 20-180 CFU / ml of blood in patients without appropriate therapy and from 800 CFU / ml of blood or more in patients during therapy [29].

Graham и соавт. обнаруживали кислотоустойчивые бактерии в мазках лейкоцитарного слоя при окрашивании методом Киньона при наличии бактерий в кровотоке в количестве 150.000 КОЕ/мл крови у больных со СПИДом и диссеминированной инфекцией [30]. Авторы утверждали, что чувствительность метода микроскопии мазка лейкоцитарного слоя зависит от количества микобактерий в крови. У больных СПИДом прогрессивно нарастала микобактериемия и диагностика была возможна при микроскопическом исследовании крови.Graham et al. found acid-resistant bacteria in smears of the leukocyte layer when stained by the Kignon method in the presence of bacteria in the bloodstream in the amount of 150,000 CFU / ml of blood in patients with AIDS and disseminated infection [30]. The authors claimed that the sensitivity of the smear microscopy method of a white blood cell layer depends on the amount of mycobacteria in the blood. Mycobacteremia progressively increased in patients with AIDS and diagnosis was possible with a microscopic examination of the blood.

Микроскопическое исследование мазка крови позволило определить диссеминированную форму токсоплазмоза [31].Microscopic examination of a blood smear made it possible to determine the disseminated form of toxoplasmosis [31].

Пневмококковая бактериемия была диагностирована микроскопией мазка периферической крови больного с миеломой. Мазок крови был окрашен по Райту и диплококки располагались внеклеточно. В гемокультуре и посеве ликвора был получен пневмококк [32].Pneumococcal bacteremia was diagnosed by microscopy of a peripheral blood smear of a patient with myeloma. A blood smear was stained by Wright and diplococci were located extracellularly. In blood culture and cerebrospinal fluid culture pneumococcus was obtained [32].

При микроскопии мазков крови больного септицемией на фоне хондросаркомы были обнаружены споры Cl. perfringens внутри лейкоцитов. Мазки были выполнены из лейкоцитарного слоя пробы крови и окрашены по Райту. Полученные гемокультуры спорообразующего микроорганизма подтвердили ранее обнаруженного возбудителя в мазках [33].Microscopy of blood smears of a patient with septicemia against the background of chondrosarcoma revealed spores of Cl. perfringens inside white blood cells. Smears were made from a white blood cell layer and stained with Wright. The obtained hemocultures of the spore-forming microorganism confirmed the previously detected pathogen in smears [33].

Диагноз системного кандидоза был поставлен по результатам микроскопии «тонких» мазков и мазков лейкоцитарного слоя пробы периферической крови.The diagnosis of systemic candidiasis was made by microscopy of “thin” smears and smears of the leukocyte layer of a peripheral blood sample.

В 1945 году Parsons и Zarafonetis обнаружили бластоспоры Histoplasma capsulatum внутри нейтрофилов в «тонком» мазке периферической крови [34]. Другими авторами была описана фунгемия, вызванная Histoplasma capsulatum, которая была диагностирована микроскопически до получения гемокультуры. Мазок был выполнен из лейкоцитарного слоя и окрашен по Райту-Гимза. В мазках просматривались маленькие контрастные тельца, которые находились внеклеточно. Позднее была получена гемокультура [35].In 1945, Parsons and Zarafonetis found Histoplasma capsulatum blastospores inside neutrophils in a “thin” smear of peripheral blood [34]. Other authors described fungemia caused by Histoplasma capsulatum, which was diagnosed microscopically before receiving a blood culture. The smear was made of a white blood cell layer and stained according to Wright-Giemsa. In the smears, small contrasting bodies that were extracellular were visible. A blood culture was later obtained [35].

В 1948 году Portnoy описал два случая обнаружения С. albicans в «тонких» мазках периферической крови до получения гемокультуры [36]. Anderson в 1972 году описал обнаружение дрожжевых клеток в марках периферической крови при системном кандидозе. Диагноз был поставлен по факту наличия дрожжевых клеток и псевдогиф в мазке крови [37]. В 1973 году Silverman диагностировал системный кандидоз по результатам микроскопии мазков лейкоцитарного слоя крови [38]. Большинство из обнаруженных микроорганизмов представляли собой бластоспоры в виде маленьких базофильных овальных телец, окруженных четкой зоной. Большинство из них находились в цитоплазме нейтрофилов. Мазки окрашивали по Райту и метенаминовым серебром [38]. При окраске методом PAS (Periodic Acid-Schiff) дрожжевые клетки и псевдогифы окрашиваются в ярко-красный цвет. Автор предложил использовать метод микроскопии лейкоцитарного слоя для подтверждения ожидаемой кандидемии [38]. K. Kobza продемонстрировал обнаружение бластоспор и псевдогиф в свободном и фагоцитированном лейкоцитами состояниях в мазках лейкоцитарного слоя пробы периферической крови и получение роста S. aureus и С. albicans в гемокультуре, которая подтвердила микроорганизмы, обнаруженные ранее в мазках крови [39].In 1948, Portnoy described two cases of detection of C. albicans in “thin” smears of peripheral blood before receiving a blood culture [36]. Anderson in 1972 described the detection of yeast cells in brands of peripheral blood in systemic candidiasis. The diagnosis was made on the fact of the presence of yeast cells and pseudohyphus in a blood smear [37]. In 1973, Silverman diagnosed systemic candidiasis by microscopy of smears of the white blood cell layer [38]. Most of the detected microorganisms were blastospores in the form of small basophilic oval bodies surrounded by a clear zone. Most of them were in the cytoplasm of neutrophils. Smears were stained according to Wright and methenamine silver [38]. When stained with PAS (Periodic Acid-Schiff), the yeast cells and pseudohyphae are stained in bright red. The author suggested using the method of microscopy of the white blood cell layer to confirm the expected candidaemia [38]. K. Kobza demonstrated the detection of blastospores and pseudohyphus in the free and phagocytosed by leukocyte states in smears of the leukocyte layer of a peripheral blood sample and the growth of S. aureus and C. albicans in blood culture, which confirmed microorganisms previously found in blood smears [39].

Грибковые элементы, включая бластоспоры, псевдогифы были обнаружены у пациентки после хирургической операции. Дрожжевые клетки располагались как внутриклеточно, так и вне клеток. Спустя два дня после диагноза, поставленного микроскопически, была получена гемокультура С. albicans, что подтвердило первоначальные микроскопические находки [40].Fungal elements, including blastospores, pseudohyphae were found in the patient after surgery. Yeast cells were located both intracellularly and outside the cells. Two days after the microscopic diagnosis, C. albicans blood culture was obtained, which confirmed the initial microscopic findings [40].

В 1986 году был опубликован первый случай диагностики Candida parapsilosis микроскопическим исследованием крови. Дрожжевые клетки располагались внутри моноцитов и нейтрофилов. Больной страдал хронической лимфотической лейкемией [41]. При микроскопии мазков периферической крови в нейтрофилах наблюдали фагоцитоз клеток грибов Rhodotorula rubra и Candida guilliermondii у больных нейтропенией.In 1986, the first case of diagnosing Candida parapsilosis with a microscopic blood test was published. Yeast cells were located inside monocytes and neutrophils. The patient suffered from chronic lymphatic leukemia [41]. Microscopy of peripheral blood smears in neutrophils revealed phagocytosis of the cells of the fungi Rhodotorula rubra and Candida guilliermondii in patients with neutropenia.

Гемолиз эритроцитов случается при разрушении оболочки эритроцитов. Разрушение может возникать в кровотоке и вне организма, т.е. в пробирке. При попадании эритроцита в воду он начинает поглощать ее. Вода, вследствие резкой разницы в осмотическом давлении внутри и вне эритроцита, быстро диффундирует внутрь эритроцита, вызывает его набухание и разрыв оболочки. Так как осмотическое давление воды меньше, чем давление внутри эритроцита, поэтому вода поступает внутрь эритроцита, увеличивая его объем и давление внутри. Эритроцит набухает, и его оболочка разрывается и свертывается [42]. В опытах было показана скорость гемолиза. Каждые 30 секунд гемолизу подвергаются 30% эритроцитов. В патенте «Способ определения осмотической резистентности эритроцитов» оценивали степень гемолиза эритроцитов в различных растворах. Оказалось, что в дистиллированной воде гемолиз происходит в 100% случаев [42].Red blood cell hemolysis occurs when the red blood cell membrane is destroyed. Destruction can occur in the bloodstream and outside the body, i.e. in vitro. When a red blood cell enters the water, it begins to absorb it. Water, due to the sharp difference in the osmotic pressure inside and outside the red blood cell, quickly diffuses into the red blood cell, causing it to swell and rupture of the membrane. Since the osmotic pressure of water is less than the pressure inside the red blood cell, therefore, the water enters the red blood cell, increasing its volume and pressure inside. The red blood cell swells, and its membrane breaks and coagulates [42]. In experiments, the rate of hemolysis was shown. Every 30 seconds, 30% of red blood cells undergo hemolysis. In the patent "Method for determining the osmotic resistance of red blood cells", the degree of hemolysis of red blood cells in various solutions was evaluated. It turned out that in distilled water hemolysis occurs in 100% of cases [42].

В качестве прототипа изобретения взят способ приготовления мазка крови из лейкоцитарного слоя венозной крови, описанный в методических рекомендациях «Микробиологические методы диагностики инфекции кровотока», 2010 год, утвержденных Комитетом по здравоохранению Правительства Санкт-Петербурга [43]. Приведенный прототип изобретения предусматривает технологию приготовления мазка, которая заключается в следующем.As a prototype of the invention, a method for preparing a blood smear from a leukocyte layer of venous blood is described in the methodological recommendations “Microbiological methods for the diagnosis of blood flow infection”, 2010, approved by the Health Committee of the Government of St. Petersburg [43]. The above prototype of the invention provides for the preparation of a smear, which is as follows.

Кровь отбирается в пробирку, содержащую антикоагулянт, после центрифугирования удаляют верхний светлый слой - плазму и собирают тонкий белый слой, лежащий на эритроцитах, который представляет собой лейкоцитарный слой. Капли этого слоя наносят на предметные стекла и шлифовальным стеклом техникой «двух стекол» делают тонкий мазок. Мазок высушивают, фиксируют, окрашивают по Граму и смотрят в световом микроскопе с иммерсией. Мазок представляет собой расположенные в один слой эритроциты, создающие красный фон, и расположенные между ними лейкоциты с окрашенными в синий цвет ядрами и микроорганизмами разной формы и цвета окрашивания (красные и синие). При микроскопии грамположительные микроорганизмы синего цвета хорошо просматриваются на красном фоне, а грамотрицательные красного цвета сливаются с фоном и просматриваются с трудом. Поэтому при этиологической диагностике инфекции кровотока в большинстве случаев выявляли грамположительные микроорганизмы, включая бактерии и грибы.Blood is taken into a test tube containing an anticoagulant, after centrifugation, the upper light layer, the plasma, is removed and a thin white layer lying on the red blood cells, which is a leukocyte layer, is collected. Drops of this layer are applied to slides and using a “two glass” technique, a thin smear is made with a grinding glass. The smear is dried, fixed, stained according to Gram and viewed under a light microscope with immersion. A smear consists of red blood cells arranged in a single layer, creating a red background, and white blood cells located between them with blue-stained nuclei and microorganisms of different shapes and color of staining (red and blue). Under microscopy, gram-positive microorganisms of blue are clearly visible on a red background, and gram-negative red are merged with the background and are difficult to see. Therefore, in the etiological diagnosis of bloodstream infection, in most cases, gram-positive microorganisms were detected, including bacteria and fungi.

Нами поставлена задача разработать доступный универсальный способ экспресс-метода диагностики инфекции кровотока, позволяющий выявлять как грамположительные, так и грамотрицательные микроорганизмы в крови пациента.We set the task to develop an affordable universal method for the express method for the diagnosis of blood flow infection, which allows to detect both gram-positive and gram-negative microorganisms in the patient's blood.

Технический результат, достигаемый при осуществлении изобретения, заключается в повышении эффективности диагностики инфекции кровотока за счет дополнительной возможности выявления грамотрицательных микроорганизмов путем обеспечения бесцветного фона мазка крови при сохранении простоты, доступности диагностики.The technical result achieved by the implementation of the invention is to increase the efficiency of the diagnosis of blood flow infection due to the additional ability to identify gram-negative microorganisms by providing a colorless blood smear background while maintaining simplicity and accessibility of diagnosis.

Нами предложено для повышения диагностических возможностей способа выявления инфекции кровотока устранять розовый фон мазка крови путем разрушения эритроцитов. Таким образом, обработка мазка крови дистиллированной водой разрушает и удаляет эритроциты из мазка крови, что обеспечивает дополнительное выявление грамотрицательных (красных) микроорганизмов на бесцветном фоне мазка крови при микроскопии.We proposed to improve the diagnostic capabilities of a method for detecting bloodstream infection to eliminate the pink background of a blood smear by destroying red blood cells. Thus, processing a blood smear with distilled water destroys and removes red blood cells from a blood smear, which provides additional detection of gram-negative (red) microorganisms against a colorless blood smear background under microscopy.

Предлагаемый способ позволяет гарантированно обнаруживать все имеющиеся микроорганизмы в мазке крови, как грамположительные, так и грамотрицательные, так как все окрашенные формы бактерий и грибов лежат на прозрачном фоне мазка крови.The proposed method allows guaranteed detection of all available microorganisms in a blood smear, both gram-positive and gram-negative, since all colored forms of bacteria and fungi lie on a transparent background of a blood smear.

Таким образом, чувствительность метода повышается за счет обнаружения грамотрицательных микроорганизмов. Если грамположительные микроорганизмы составляют около 50-60% в этиологии бактериемии, то на грамотрицательные микроорганизмы приходится около 20%, поэтому обнаружение грамотрицательных микроорганизмов позволяет повысить эффективность диагностики на 20%, тем самым повысить ценность метода и возможности подбора антимикробной терапии.Thus, the sensitivity of the method increases due to the detection of gram-negative microorganisms. If gram-positive microorganisms make up about 50-60% in the etiology of bacteremia, then gram-negative microorganisms account for about 20%, therefore, the detection of gram-negative microorganisms can increase the diagnostic efficiency by 20%, thereby increasing the value of the method and the possibility of selecting antimicrobial therapy.

Кроме того, обнаружение грамотрицательных микроорганизмов важно для диагностики госпитальной инфекции и вторичного инфекционного эндокардита (после операции по поводу протезирования клапанов сердца). В этиологии бактериемий у амбулаторных пациентов преобладают грамположительные микроорганизмы, а при госпитальной инфекции - грамотрицательные. Расшифровка этиологии госпитальных инфекций - ключ профилактики госпитальной инфекции в каждой конкретной клинике.In addition, the detection of gram-negative microorganisms is important for the diagnosis of hospital infection and secondary infectious endocarditis (after surgery for prosthetic heart valves). Gram-positive microorganisms predominate in the etiology of bacteremia in outpatients, and gram-negative in hospital infections. Deciphering the etiology of hospital infections is the key to preventing hospital infection in each particular clinic.

При сравнении процента обнаружения микроорганизмов в крови и процента их выделения при посеве крови оказалось, что микроскопический метод эффективнее культурального в несколько раз. Разница в процентах указывает, что даже самая богатая питательная среда (сердечно-мозговая) с гемолизированной кровью и витаминными добавками не может воссоздать полный набор необходимых питательных компонентов для жизнедеятельности микроорганизмов, которым обладает кровь. Кроме того, при микроскопии могут быть обнаружены как живые, так и погибшие клетки микроорганизмов, а при посеве крови получаем рост только живых микроорганизмов.When comparing the percentage of detection of microorganisms in the blood and the percentage of their excretion during blood culture, it turned out that the microscopic method is several times more effective than the cultural method. The percentage difference indicates that even the richest nutrient medium (cardiac) with hemolyzed blood and vitamin supplements cannot recreate the complete set of essential nutrients for the vital functions of microorganisms that the blood possesses. In addition, with microscopy, both live and dead cells of microorganisms can be detected, and when blood is sown, we get the growth of only living microorganisms.

По обнаруженным микроорганизмам в мазке крови назначается эмпирическая антимикробная терапия. От момента приготовления мазка до назначения терапии требуется 1-1,5 часа. Этот метод диагностики инфекции в крови относится к экспресс-методу.Empirical antimicrobial therapy is prescribed for detected microorganisms in a blood smear. From the time of preparation of the smear to the appointment of therapy requires 1-1.5 hours. This method of diagnosing an infection in the blood refers to the express method.

Сущность изобретения заключается в следующем.The invention consists in the following.

Способ экспресс-метода диагностики инфекции кровотока предполагает выявление микроорганизмов в крови методом микроскопии мазка крови с иммерсией и увеличением ×1000. При этом мазок готовят из лейкоцитарного слоя венозной крови, используя технику «двух стекол». После высушивания наливают на мазок дистиллированную воду, покрывая всю его площадь. Через 3-5 секунд смывают разрушенные эритроциты и мазок высушивают. После фиксации над пламенем горелки и окрашивания по Граму выполняют микроскопию полученного маска.The method of the express method for the diagnosis of blood flow infection involves the identification of microorganisms in the blood by a blood smear microscopy with immersion and magnification × 1000. In this case, a smear is prepared from a leukocyte layer of venous blood using the “two glass” technique. After drying, distilled water is poured onto the smear, covering its entire area. After 3-5 seconds, the destroyed red blood cells are washed off and the smear is dried. After fixing over the flame of the burner and staining according to Gram, microscopy of the resulting mask is performed.

Способ осуществляется следующим образом.The method is as follows.

Кровь пациента отбирают в «шприц-пробирки» с антикоагулянтом (лимонно-кислый натрий) в объеме 5 мл или 10 мл путем венопункции. После удаления шприца из вены удаляют иглу, отламывают поршень и полученную пробирку из шприца переворачивают не менее 3-х раз для хорошего смешивания крови с антикоагулянтом. После доставки в лабораторию пробирку с кровью центрифугируют при режиме 1000-1500 оборотов в минуту в течение 15-20 минут. Пастеровской пипеткой удаляют плазму. Лейкоцитарный слой лежит на эритроцитах в виде тонкого светлого слоя высотой 0,5-1,0 мм. Капилляром Панченкова или одноразовой пипеткой с широким плоским концом собирают этот слой и каплями наносят на предметные стекла. Погружают шлифовальный конец предметного стекла в каплю, ждут, когда капля растечется по ребру шлифовального стекла и, слегка нажимая на стекло для мазка, распределяют каплю лейкоцитарного слоя по поверхности предметного стекла техникой «двух стекол» для получения тонкого мазка крови. Техника «двух стекол» осуществляется в клинических лабораториях для приготовления тонких клинических мазков крови. Мазок крови высушивают на воздухе. Мазок имеет розовую окраску. Затем на мазок наливают дистиллированную воду и смывают разрушенные в течение нескольких секунд эритроциты. Мазок приобретает вид прозрачного стекла. Мазок снова высушивают. Затем его фиксируют над пламенем горелки и окрашивают по Граму по общепринятой методике. Мазок крови просматривают под иммерсионным маслом с увеличением ×1000. При микроскопии мазка, обработанного дистиллированной водой, на белом фоне хорошо просматриваются морфологические формы микроорганизмов, окрашенных как грамположительно, так и грамотрицательно. Микроорганизмы, окрашенные грамотрицательно в слабо-розовый цвет, хорошо просматриваются на прозрачном фоне стекла.The patient’s blood is collected in a “syringe tube” with an anticoagulant (citric acid sodium) in a volume of 5 ml or 10 ml by venipuncture. After removing the syringe from the vein, the needle is removed, the piston is broken off and the resulting tube from the syringe is turned over at least 3 times for good mixing of blood with the anticoagulant. After delivery to the laboratory, the blood tube is centrifuged at 1000-1500 rpm for 15-20 minutes. The Pasteur pipette removes the plasma. The leukocyte layer lies on red blood cells in the form of a thin light layer with a height of 0.5-1.0 mm. A capillary of Panchenkov or a disposable pipette with a wide flat end collect this layer and drop it onto a glass slide. Immerse the grinding end of the slide in a drop, wait for the drop to spread over the edge of the grinding glass and, gently pressing the smear glass, distribute the drop of the leukocyte layer on the surface of the slide with the “two glasses” technique to obtain a thin smear of blood. The "two glass" technique is carried out in clinical laboratories for the preparation of thin clinical blood smears. A blood smear is dried in air. The smear is pink in color. Then distilled water is poured onto the smear and the red blood cells destroyed within a few seconds are washed off. The smear takes the form of transparent glass. The smear is dried again. Then it is fixed above the flame of the burner and stained according to Gram according to the generally accepted technique. A blood smear is viewed under immersion oil with a magnification of × 1000. Microscopy of a smear treated with distilled water on a white background clearly shows the morphological forms of microorganisms stained both gram-positive and gram-negative. Microorganisms, painted gram-negative in a slightly pink color, are clearly visible on a transparent glass background.

Для доказательств возможности реализации заявленного назначения и достижения указанного технического результата приводим следующие данные.To prove the possibility of realizing the claimed purpose and achieving the specified technical result, we provide the following data.

Пример 1Example 1

Исследовались мазки крови, приготовленные из лейкоцитарного слоя пробы периферической крови, микроскопическим методом больного Г., 37 лет, с клиническим диагнозом инфекционного эндокардита. Было приготовлено два мазка крови для окрашивания по Граму с предварительной обработкой дистиллированной водой (по предлагаемому способу) и без обработки. При микроскопии мазка крови без обработки дистиллированной водой были обнаружены грамположительные дрожжевые клетки синего цвета на плотном ярко-розовом фоне эритроцитов с небольшим количеством лейкоцитов. При микроскопии мазка крови с предварительной обработкой дистиллированной водой были обнаружены грамотрицательные палочки розового цвета, грамположительные дрожжевые клетки синего цвета и лейкоциты с окрашенными в синий цвет ядрами внутри них в небольшом количестве. Все формы хорошо просматривались на белом прозрачном фоне стекла. При посеве крови была получена гемокультура E. coli, которая подтвердила наличие кишечной палочки в мазке, но увиденной только на прозрачном фоне, т.е. без эритроцитов.Blood smears were studied, prepared from the leukocyte layer of a peripheral blood sample, by the microscopic method of patient G., 37 years old, with a clinical diagnosis of infectious endocarditis. Two blood smears were prepared for Gram staining with preliminary treatment with distilled water (according to the proposed method) and without treatment. Microscopy of a blood smear without treatment with distilled water revealed gram-positive yeast cells of blue color on a dense bright pink background of red blood cells with a small number of white blood cells. Microscopy of a blood smear with pretreatment with distilled water revealed pink gram-negative rods, blue gram-positive yeast cells, and white blood cells with blue-stained nuclei inside them in small quantities. All forms were clearly visible on a white transparent glass background. During blood culture, an E. coli blood culture was obtained, which confirmed the presence of E. coli in the smear, but seen only on a transparent background, i.e. without red blood cells.

Пример 2Example 2

Таким же образом были приготовлены мазки больной И., 50 лет, с диагнозом хроническое воспалительное заболевание верхних дыхательных путей. При микроскопии мазка без обработки дистиллированной водой были обнаружены грамположительные кокки в небольшом количестве и лейкоциты в значительном количестве. В мазке крови, который подвергался обработке дистиллированной водой (по предлагаемому способу), на прозрачном фоне были видны грамотрицательные палочки и грамположительные кокки в небольшом количестве, большое количество лейкоцитов. В посеве крови была получена полимикробная гемокультура, содержавшая в себе штаммы Staphylococcus epidermidis и Enterobacter aerogenes.In the same way, smears of patient I., 50 years old, were prepared with a diagnosis of chronic inflammatory disease of the upper respiratory tract. Microscopy of the smear without treatment with distilled water revealed gram-positive cocci in a small amount and white blood cells in a significant amount. In a blood smear, which was subjected to treatment with distilled water (according to the proposed method), on a transparent background, gram-negative bacilli and gram-positive cocci in a small amount, a large number of leukocytes were visible. In blood culture, a polymicrobial blood culture was obtained containing strains of Staphylococcus epidermidis and Enterobacter aerogenes.

В таблице представлены результаты обнаружения грамотрицательных палочек при микроскопии мазка крови при разных условиях приготовления мазка крови (результаты параллельных микроскопий мазков крови).The table shows the results of the detection of gram-negative rods under microscopy of a blood smear under different conditions for the preparation of a blood smear (results of parallel microscopy of blood smears).

Figure 00000001
Figure 00000001

Предлагаемый способ технически прост по методике и используемому реактиву, эффективен для улучшения выявления микроорганизмов и доступен для микробиологической лаборатории при микробиологическом исследовании крови при инфекции в крови.The proposed method is technically simple in terms of the method and reagent used, effective for improving the detection of microorganisms, and is available for the microbiological laboratory for microbiological blood tests for infections in the blood.

ЛитератураLiterature

1. Andrews F.W., Case of Acute meningococcal septicaemia, Lancet, 1906, 1, 1172-1174.1. Andrews F.W., Case of Acute meningococcal septicaemia, Lancet, 1906, 1, 1172-1174.

2. Bulloch W. The History of bacteriology. New York, Oxford University Press, 1938, 141, 179.2. Bulloch W. The History of bacteriology. New York, Oxford University Press, 1938, 141, 179.

3. King W.W., Early diagnosis of cerebrospinal meningitis by the examination of stained blood films, J.A.M.A., 1918, v. 71, 2048-2050.3. King W.W., Early diagnosis of cerebrospinal meningitis by the examination of stained blood films, J.A.M.A., 1918, v. 71, 2048-2050.

4. Anderson A.E., Cassaday P.B., Healy G.R. Babesiosis in man. Am. J. of Clin. Pathl., 1974, v. 62, 5, 612-619.4. Anderson A.E., Cassaday P.B., Healy G.R. Babesiosis in man. Am. J. of Clin. Pathl., 1974, v. 62, 5, 612-619.

5. Иванов В.П., Постовит B.A., Бойцов А.Г., Гранстрем К.О., Клиническая и лабораторная диагностика инфекционного процесса, Монография, Санкт-Петербург, 1996, с. 102.5. Ivanov V.P., Postovit B.A., Boytsov A.G., Granstrom K.O., Clinical and laboratory diagnosis of an infectious process, Monograph, St. Petersburg, 1996, p. 102.

6. King W.W. Early diagnosis of cerebrospinal meningitis by the examination of stained blood films. J.A.M.A., 1918, v. 71, 2048-2050.6. King W.W. Early diagnosis of cerebrospinal meningitis by the examination of stained blood films. J.A.M.A., 1918, v. 71, 2048-2050.

7. Humphrey A.A., Use of the buffy layer in the rapid diagnosis of septicaemia, Am. J. Clin. Pathol., 1944, v. 14, 4, 358-362.7. Humphrey A.A., Use of the buffy layer in the rapid diagnosis of septicaemia, Am. J. Clin. Pathol., 1944, v. 14, 4, 358-362.

8. Humphrey A.A. Use of the buffy layer in the rapid diagnosis of septicemia. Am. J. Clin. Pathol., 1944, v. 14, 4. 358-362.8. Humphrey A.A. Use of the buffy layer in the rapid diagnosis of septicemia. Am. J. Clin. Pathol., 1944, v. 14, 4. 358-362.

9. Carison B.E., Andersen B.R. Value of granulocyte examination for bacteria. JAMA, 1976, v. 235, 14, 1465-1466.9. Carison B.E., Andersen B.R. Value of granulocyte examination for bacteria. JAMA, 1976, v. 235, 14, 1465-1466.

10. Powers D.L., Mandell G.L. Intraleukocytic bacteria in endocarditis patients. JAMA, 1974, 227, 312-313.10. Powers D.L., Mandell G.L. Intraleukocytic bacteria in endocarditis patients. JAMA, 1974, 227, 312-313.

11. Kronvall G., Myhre E., Differential staining of bacteria in clinical specimens using acridine orange byffered at a low pH, Acta Pathol. Microbiol. Scand., 1977, v. 85, 2, 249-254.11. Kronvall G., Myhre E., Differential staining of bacteria in clinical specimens using acridine orange byffered at a low pH, Acta Pathol. Microbiol. Scand., 1977, v. 85, 2, 249-254.

12. Hanes C.V.E., Luoia H.L., Acridine orange as a Screen for organisms in clinical specimens and comparison with Grams Stain, Arch. Pathol. Lab. Med., 1988, v. 112, 5, 529-532.12. Hanes C.V.E., Luoia H.L., Acridine orange as a Screen for organisms in clinical specimens and comparison with Grams Stain, Arch. Pathol. Lab. Med., 1988, v. 112, 5, 529-532.

13. Lquer B.A., Reller L.B., Mirrett S., Comparison of Acridine Orange and Gram Stains for Detection of Microorganisms in Cerebrospinal Fluid and other Clinical Specimens, J. of Clin. Microb., 1981, v. 14, 2, 201-205.13. Lquer B.A., Reller L. B., Mirrett S., Comparison of Acridine Orange and Gram Stains for Detection of Microorganisms in Cerebrospinal Fluid and other Clinical Specimens, J. of Clin. Microb., 1981, v. 14, 2, 201-205.

14. Lipsky B.A., Plorde J.L., Tenover F.C. et al., Comparison of the Automicrobic system, acridine orange-atained smears, and Gram-stained smears in detecting bacteriuria, J. Clin. Microb., 1985, v. 22, 2, 176-181.14. Lipsky B.A., Plorde J.L., Tenover F.C. et al., Comparison of the Automicrobic system, acridine orange-atained smears, and Gram-stained smears in detecting bacteriuria, J. Clin. Microb., 1985, v. 22, 2, 176-181.

15. Feldman W.E., Relation of concentrations of bacteria and bacterial antigen in cerebrospinal fluid to prognosis in patients with bacterial meningitis, N. Engl. J. med., 1977, 296, 433-435.15. Feldman W.E., Relation of concentration of bacteria and bacterial antigen in cerebrospinal fluid to prognosis in patients with bacterial meningitis, N. Engl. J. med., 1977, 296, 433-435.

16. Kass E.H., Asymptomatic infections of the urinary tract. Trans. Assoc. Am. Physicians., 1956, 69, 56-64.16. Kass E.H., Asymptomatic infections of the urinary tract. Trans. Assoc. Am. Physicians., 1956, 69, 56-64.

17. Reik H., Rubin S.J. Evaluation of the buffy-coat for rapid detection of bacteremia. JAMA, 1981, 245, 357-359.17. Reik H., Rubin S.J. Evaluation of the buffy-coat for rapid detection of bacteremia. Jama, 1981, 245, 357-359.

18. Brooks G.F., Pribble A.H., Beatty H.N. Early diagnosis of bacteremia by buffy-coat examination. Arch. Intern. Med., 1973, 132, 673-675.18. Brooks G.F., Pribble A.H., Beatty H.N. Early diagnosis of bacteremia by buffy-coat examination. Arch. Intern. Med., 1973, 132, 673-675.

19. Faden H.S. Early diagnosis of neonatal bacteremia by buffy-coat examination. J. Pediatr., 1976, 88, 1032-1034.19. Faden H.S. Early diagnosis of neonatal bacteremia by buffy-coat examination. J. Pediatr., 1976, 88, 1032-1034.

20. Stratton Ch.W. Detection of bacteremia and fungemia: microscopic examination of peripheral blood smears. Infection Control, 1984, v. 5, 9, 448-452.20. Stratton Ch.W. Detection of bacteremia and fungemia: microscopic examination of peripheral blood smears. Infection Control, 1984, v. 5, 9, 448-452.

21. Smith H. Leucocytes containing bacteriain plain blood films from patients with septicemia. Aust. Ann. Med., 1966, 15, 210-221.21. Smith H. Leucocytes containing bacteriain plain blood films from patients with septicemia. Aust. Ann. Med., 1966, 15, 210-221.

22. Carlson B.E., Anderson B.R. Value of granulocyte examination for bacteria. JAMA, 1976, 235, 1465-1466.22. Carlson B.E., Anderson B.R. Value of granulocyte examination for bacteria. JAMA, 1976, 235, 1465-1466.

23. Storm W. Early detection of bacteremia by peripheral blood smears in critically ill newborns. Acta Pediatr. Scand., 1981, 70, 415-416.23. Storm W. Early detection of bacteremia by peripheral blood smears in critically ill newborns. Acta Pediatr. Scand., 1981,170, 415-416.

24. Boyle R.J., Chandler B.D., Stonestreet B.S. et al. Early identification of sepsis in infants with respiratory distress. Pediatrics, 1978, 62, 744-750.24. Boyle R.J., Chandler B.D., Stonestreet B.S. et al. Early identification of sepsis in infants with respiratory distress. Pediatrics, 1978, 62, 744-750.

25. Torres J., Bisno A.L., Hyposplenism and Pneumococcemia visualization of Diolococcus pneumonia in the peripheral blood smear., Am. J. Med., 1973, 55, 851-85525. Torres J., Bisno A. L., Hyposplenism and Pneumococcemia visualization of Diolococcus pneumonia in the peripheral blood smear., Am. J. Med., 1973, 55, 851-855

26. Boger W.P., Fulminating meningococcemia demonstration of intracellular and extracellular meningococci in direct smears of the blood, N. Eng. J. of Med., 1944, 231, 11, 385-387.26. Boger W.P., Fulminating meningococcemia demonstration of intracellular and extracellular meningococci in direct smears of the blood, N. Eng. J. of Med., 1944, 231, 11, 385-387.

27. Boone J.T., Hall W.W., Meningococcal septicemia with report of case showing organism in direct blood smear, U.S. Nav. M. Bull., 1935, 33, 446-451.27. Boone J.T., Hall W.W., Meningococcal septicemia with report of case showing organism in direct blood smear, U.S. Nav. M. Bull., 1935, 33, 446-451.

28. Thomas J.M.Jr., Meningococci meningitis and septicemia report of outbreak in fourth service command during winter and spring of 1942-43, J.A.M.A., 1943, 123, 264-272.28. Thomas J.M. J., Meningococci meningitis and septicemia report of outbreak in fourth service command during winter and spring of 1942-43, J.A.M.A., 1943, 123, 264-272.

29. Nussbaum J.M., Dealist C, Lewis W. et al., Rapid diagnosis by buffy coat smear of disseminated mycobacterium avium complex infection in patients with acquired immunodeficiency syndrome, 1990, 28, 3, 631-632,29. Nussbaum J.M., Dealist C, Lewis W. et al., Rapid diagnosis by buffy coat smear of disseminated mycobacterium avium complex infection in patients with acquired immunodeficiency syndrome, 1990, 28, 3, 631-632,

30. Graham B.S., Hinson M.V., Benett S.R. et al., Acid-fast bacilli on buffy coat smears in the acquired immunodeficiency syndrome: a lessonfrom Hansen s bacillus, South Med. J., 1984, 77, 246-248.30. Graham B.S., Hinson M.V., Benett S.R. et al., Acid-fast bacilli on buffy coat smears in the acquired immunodeficiency syndrome: a lessonfrom Hansen s bacillus, South Med. J., 1984, 77, 246-248.

31. Albrecht H., Sobottka J., Stellbrink H.J., van Lunzen J., Greten H. Diagnosis of disseminated toxoplasmosis using a peripheral blood smear (letter). AIDS, 1996, 10 (7), 799-800.31. Albrecht H., Sobottka J., Stellbrink H.J., van Lunzen J., Greten H. Diagnosis of disseminated toxoplasmosis using a peripheral blood smear (letter). AIDS, 1996, 10 (7), 799-800.

32. Posner M.R., Berk S.L., Rice P.A., Pneumococcal bacteremia diagnosed by peripheral blood smear in multiple myeloma, Arch. Intern. Med., 1978, 138, 1720-21.32. Posner M.R., Berk S.L., Rice P.A., Pneumococcal bacteremia diagnosed by peripheral blood smear in multiple myeloma, Arch. Intern. Med., 1978, 138, 1720-21.

33. Kuberski T.T., Intraleucocitic spore formation and leukocytic vacuolization during Clostridium perfringens septicemia, Am. J. Clin. Pathol., 1977, 68, 794-796.33. Kuberski T.T., Intraleucocitic spore formation and leukocytic vacuolization during Clostridium perfringens septicemia, Am. J. Clin. Pathol., 1977, 68, 794-796.

34. Parsons R.J., Zarafonetis C.J.D., Histoplasmosis in man, Arch. Intern. Med., 1945, 75, 23, 1.34. Parsons R.J., Zarafonetis C.J.D., Histoplasmosis in man, Arch. Intern. Med., 1945, 75, 23, 1.

35. Snider H.L., Fungemia in chronic cavitary pulmonary histoplasmosis, J. of InfDis., 1981, 143, 4, 633.35. Snider H.L., Fungemia in chronic cavitary pulmonary histoplasmosis, J. of InfDis., 1981, 143, 4, 633.

36. Portnoy J., Wolf, Webb M., et al., Candida blastospores and pseudohyphae in blood smears, New. Eng J. of Med., 1971, 285, 16, 1010-11.36. Portnoy J., Wolf, Webb M., et al., Candida blastospores and pseudohyphae in blood smears, New. Eng J. of Med., 1971, 285, 16, 1010-11.

37. Anderson A.O., Yardley J.M. Demonstration of Candida in blood smears, N. Eng. J. Med., 1972, 286, 108-9.37. Anderson A.O., Yardley J.M. Demonstration of Candida in blood smears, N. Eng. J. Med., 1972, 286, 108-9.

38. Silverman E.M., Norman L.E., Goldman R.T. et al., Diagnosis of systemic candidiasis in smears of venous blood stained with Wrights stain, Am. J. of Clin. Pathology, 1973, 60, 473-75.38. Silverman E.M., Norman L.E., Goldman R.T. et al., Diagnosis of systemic candidiasis in smears of venous blood stained with Wrights stain, Am. J. of Clin. Pathology, 1973, 60, 473-75.

39. Kobza K., Demonstration of Candida in blood smears, British. Med. J., 1977, I, 1640-41.39. Kobza K., Demonstration of Candida in blood smears, British. Med. J., 1977, I, 1640-41.

40. Berrouane Y., Bisiau H., le Baron F., et al., Candida albicans blastoconidia in oeriphetal blood smears from non-neutropenic surgical patients, J. Clin. Pathol., 1998, 51 (7), 537-8.40. Berrouane Y., Bisiau H., le Baron F., et al., Candida albicans blastoconidia in oeriphetal blood smears from non-neutropenic surgical patients, J. Clin. Pathol., 1998, 51 (7), 537-8.

41. Monihan J.M., Jewell T.W., Weir G.T. Candida parapsilosis diagnosed by peripheral blood smear. Arch. Pathol. Lab. Med., 1986, 110 (12), 1180-1181.41. Monihan J.M., Jewell T.W., Weir G.T. Candida parapsilosis diagnosed by peripheral blood smear. Arch. Pathol. Lab. Med., 1986, 110 (12), 1180-1181.

42. Горшкова M.A., Миллер Д.А., Егорова E.H., Федотова Т.А. Патент РФ №2328741. Способ определения осмотической резистентности эритроцитов, 2008.42. Gorshkova M.A., Miller D.A., Egorova E.H., Fedotova T.A. RF patent №2328741. A method for determining the osmotic resistance of red blood cells, 2008.

43. Каргальцева Н.М., Кочеровец В.И., Кафтырева Л.А., Пастушенков В.Л., Колосовская Е.Н., Кучеренко Е.В., Сатосова Н.В. Микробиологические методы диагностики инфекции кровотока, Санкт-Петербург, 2010, 41 с.43. Kargaltseva N.M., Kocherovets V.I., Kaftyreva L.A., Pastushenkov V.L., Kolosovskaya E.N., Kucherenko E.V., Satosova N.V. Microbiological methods for the diagnosis of bloodstream infection, St. Petersburg, 2010, 41 p.

Claims (1)

Способ экспресс-диагностики инфекции кровотока, включающий выявление микроорганизмов в крови методом микроскопии мазка крови с иммерсией и увеличением ×1000, отличающийся тем, что мазок готовят из лейкоцитарного слоя крови, используя технику «двух стекол», после высушивания наливают на мазок дистиллированную воду, покрывая всю его площадь, через 3-5 с смывают разрушенные эритроциты, мазок высушивают, далее после фиксации над пламенем горелки и окрашивания по Граму выполняют микроскопию полученного мазка.A method for the rapid diagnosis of blood flow infection, including the detection of microorganisms in the blood by microscopy of a blood smear with immersion and magnification × 1000, characterized in that the smear is prepared from a white blood cell layer using the “two glasses” technique, after drying, distilled water is poured onto the smear, coating its entire area, after 3-5 seconds, the destroyed red blood cells are washed off, the smear is dried, then after fixation over the flame of the burner and staining according to Gram microscopy of the obtained smear is performed.
RU2016101596A 2016-01-20 2016-01-20 Method for express-diagnostics of blood flow infection RU2616249C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2016101596A RU2616249C1 (en) 2016-01-20 2016-01-20 Method for express-diagnostics of blood flow infection

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2016101596A RU2616249C1 (en) 2016-01-20 2016-01-20 Method for express-diagnostics of blood flow infection

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2616249C1 true RU2616249C1 (en) 2017-04-13

Family

ID=58642585

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2016101596A RU2616249C1 (en) 2016-01-20 2016-01-20 Method for express-diagnostics of blood flow infection

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2616249C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109929904A (en) * 2019-03-29 2019-06-25 广西壮族自治区妇幼保健院 A kind of pre-treating method of blood culture with positive bacteria sample Grain stain smear

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2072103C1 (en) * 1993-06-10 1997-01-20 Ростовский научно-исследовательский институт акушерства и педиатрии Method of diagnosis of bacterial infections in newborns
RU2098486C1 (en) * 1995-06-23 1997-12-10 Наталья Михайловна Каргальцева Method of bacteremia diagnosis
RU2362995C1 (en) * 2008-03-26 2009-07-27 Общество с ограниченной ответственностью "ШИ-КОН" Way of blood protozoan diseases diagnostics

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2072103C1 (en) * 1993-06-10 1997-01-20 Ростовский научно-исследовательский институт акушерства и педиатрии Method of diagnosis of bacterial infections in newborns
RU2098486C1 (en) * 1995-06-23 1997-12-10 Наталья Михайловна Каргальцева Method of bacteremia diagnosis
RU2362995C1 (en) * 2008-03-26 2009-07-27 Общество с ограниченной ответственностью "ШИ-КОН" Way of blood protozoan diseases diagnostics

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Faden H.S. Early diagnosis of neonatal bacteremia by buffy-coat examination. J. Pediatr., 1976, 88, 1032-1034.. *
Бережанский Б. В., Жевнерев А. А. Катетер-ассоциированные инфекции кровотока. Клиническая микробиологическая антимикробная химиотерапия. Болезни и возбудители. 2006, Т. 8, N2, с. 130-143. Faden H.S. Early diagnosis of neonatal bacteremia by buffy-coat examination. J. Pediatr., 1976, 88, 1032-1034.. *
Каргальцева Н. М. и др. Микробиологические методы диагностики инфекции кровотока. Санкт-Петербург, 2010, 41с.. *
Каргальцева Н. М. и др. Микробиологические методы диагностики инфекции кровотока. Санкт-Петербург, 2010, 41с.. Бережанский Б. В., Жевнерев А. А. Катетер-ассоциированные инфекции кровотока. Клиническая микробиологическая антимикробная химиотерапия. Болезни и возбудители. 2006, Т. 8, N2, с. 130-143. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109929904A (en) * 2019-03-29 2019-06-25 广西壮族自治区妇幼保健院 A kind of pre-treating method of blood culture with positive bacteria sample Grain stain smear

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Kędzierska et al. Current status of fungal cell wall components in the immunodiagnostics of invasive fungal infections in humans: galactomannan, mannan and (1→ 3)-β-D-glucan antigens
Deighton et al. Adherence measured by microtiter assay as a virulence marker for Staphylococcus epidermidis infections
Shanholtzer et al. Concentrated gram stain smears prepared with a cytospin centrifuge
Adger et al. Screening for Chlamydia trachomatis and Neisseria gonorrhoeae in adolescent males: value of first-catch urine examination
CN103975241B (en) For improving the specific N-acetyl group-GLUCOSAMINE of A type streptococcus immunoassay
RU2657581C2 (en) Method and kit for immunological detection of mycobacterium tuberculosis complex
WO2016175269A1 (en) Method for collecting microbial antigen
Tilton The laboratory approach to the detection of bacteremia
RU2616249C1 (en) Method for express-diagnostics of blood flow infection
Akya et al. Platelet indices as useful indicators of urinary tract infection
Perera et al. The optimum relative centrifugal force and centrifugation time for improved sensitivity of smear and culture for detection of Mycobacterium tuberculosis from sputum
RU2332460C1 (en) Method of detection of epidemiologically relevant cholera vibrions vibrio eltor and vibrio cholerae o139 by their adhesion properties
Patel Experimental microbiology
Dougherty et al. Cerebrospinal fluid cultures and analysis
RU2362997C2 (en) Way of revealing disturbance of function of phagocytes at development of relapsing infectious processes
Mamatmusaeva et al. BIG YOUNG IN PEOPLE CHARACTERISTICS OF LABORATORY AND INSTRUMENTAL DIAGNOSTICS OF PNEUMOCOCCAL MENINGITIS
CN1834650A (en) Immunity chromatography test paper for detecting farcina Boeck Hold's bacteria infection and prepn. method thereof
CN109490556A (en) AGP1, ORM2 and C9 are distinguishing the application in tuberculous pleural effusion and malignant pleural effusion
Nakao et al. Quantitative Assay of (1–3)-β-D-Glucan in Culture Media of Candida albicans Using the G-Test
RU2296336C2 (en) Method for predicting the development of anemia in case of purulent-inflammatory diseases
Prisecaru et al. VARIABILITY OF PLEURAL LIQUID CHARACTERISTICS AND THEIR ROLE IN DIAGNOSIS
Prisecaru et al. CYTOLOGY OF CEREBROSPINAL FLUID (CSF) IN MENINGITIS
Hurley et al. A quantitative micro-assay for endotoxin and correlation with bacterial density in urine
EP2205735B1 (en) Immunological tests for the presence of bacteria which make use of antibodies obtained using a specific method
CN1265200C (en) Immune chromatographic test paper for detecting Yersinia pestis infection and preparing process thereof

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20180121

NF4A Reinstatement of patent

Effective date: 20190222