RU2576573C1 - Способ получения органной культуры собственно сосудистой оболочки из глаза взрослого донора-трупа - Google Patents

Способ получения органной культуры собственно сосудистой оболочки из глаза взрослого донора-трупа Download PDF

Info

Publication number
RU2576573C1
RU2576573C1 RU2014152574/14A RU2014152574A RU2576573C1 RU 2576573 C1 RU2576573 C1 RU 2576573C1 RU 2014152574/14 A RU2014152574/14 A RU 2014152574/14A RU 2014152574 A RU2014152574 A RU 2014152574A RU 2576573 C1 RU2576573 C1 RU 2576573C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
occ
cco
organ culture
medium
sterile
Prior art date
Application number
RU2014152574/14A
Other languages
English (en)
Inventor
Сергей Анатольевич Борзенок
Ирина Николаевна Сабурина
Илья Андреевич Попов
Патимат Магомедовна Арбуханова
Дмитрий Сергеевич Островский
Елена Борисовна Прытова
Original Assignee
федеральное государственное бюджетное учреждение "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by федеральное государственное бюджетное учреждение "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова" Министерства здравоохранения Российской Федерации filed Critical федеральное государственное бюджетное учреждение "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Priority to RU2014152574/14A priority Critical patent/RU2576573C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2576573C1 publication Critical patent/RU2576573C1/ru

Links

Images

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Изобретение относится к медицине, в частности к офтальмологии и трансплантологии, и касается получения органной культуры собственно сосудистой оболочки глаза (ССО). Для этого удаляют из глазного яблока взрослого донора-трупа роговично-склеральный диск. Затем глазное яблоко осматривают на предмет наличия сквозных повреждений радужной оболочки, цилиарного тела и видимой части ССО, а также выхода стекловидного тела за пределы витреальной полости. При отсутствии перечисленных признаков полностью погружают глазное яблоко в стерильную емкость со стерильным фосфатно-солевым буфером с pH 7,4. Производят полное отделение склеры от ССО путем рассечения склеры меридиональными разрезами спереди назад на 2, 3 или 4 «лепестка» и пересечения со стороны супрахориоидального пространства вортикозных вен и внутрисклеральной части зрительного нерва. Производят три разреза хороидально-пигментного комплекса (ХПК), состоящего из ССО и ретинального пигментного эпителия (РПЭ). Первый круговой разрез производят на расстоянии 1 мм от зубчатой линии, один меридиональный - в любом меридиане в направлении от первого кругового разреза спереди назад к культе диска зрительного нерва. Еще один круговой разрез проводят на расстоянии 1 мм от культи зрительного нерва. Далее ХПК аккуратно отделяют от нейральной сетчатки пинцетом и укладывают на дно стерильной чашки Петри в положении клетками РПЭ вверх. Заливают ХПК 2 мл смеси раствора 0,25% трипсина и раствора Версена в соотношении 1:1 по объему. Инкубируют при 37°C и 5% концентрации CO2 в течение 20 минут. После этого РПЭ отделяют с поверхности ССО струей фосфатно-солевого буфера pH=7,4. ССО переносят в отдельную чашку Петри, несколько раз промывают раствором стерильного фосфатно-солевого буфера pH 7,4. К выделенной ССО добавляют питательную среду следующего состава: среда Игла в модификации Дульбекко со средой Хэма F12 (DMEM/F12) - 89%, эмбриональная телячья сыворотка - 10%, смесь антибиотиков, включающая пенициллин 10000 МЕ/мл, стрептомицин 10000 мкг/мл, амфотерицин 25 мкг/мл - 1%. ССО инкубируют при 37°C и при 5% концентрации CO2. При этом питательную среду заменяют 2 раза в день. Способ обеспечивает снижение степени загрязнения посторонними клеточными элементами получаемой органной культуры ССО. 2 ил.

Description

Изобретение относится к области медицины, а именно к офтальмологии, патофизиологии и экспериментальной трансплантологии, и может быть использовано для получения органной культуры собственно сосудистой оболочки (ССО) донора-трупа при снижении уровня загрязнения выделяемой ткани фрагментами сетчатки и содержимым витреальной полости.
ССО глаза вместе с располагающимся с ее внутренней стороны слоем ретинального пигментного эпителия (РПЭ) вместе составляют хороидально-пигментный комплекс (ХПК) и выполняют функцию двусторонней доставки многочисленных метаболитов из кровотока к слою фоторецепторов сетчатки и обратно, обеспечивая нормальную фототрансдуктивную функцию сетчатки. Патология РПЭ считается патогенетическим звеном дистрофических заболеваний сетчатки - возрастной макулярной дегенерации, пигментного ретинита, наследственных дистрофий сетчатки. При экспериментальной разработке способов терапии указанных состояний широко используют методы клеточных и органных культур, которые позволяют изучать процессы взаимодействия РПЭ и ССО in vitro, для чего в ряде случаев получают органную культуру ССО из трупного донорского глаза.
Ближайшим аналогом является способ получения органной культуры ССО глаза взрослого человека, описанный в научной статье: Moore DJ, Hussain АА, Marshall J. Age-related variation in the hydraulic conductivity of Bruch′s membrane. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1995 Jun; 36(7):1290-7. Согласно статье органную культуру ССО получают следующим образом. Используют глазное яблоко после удаления роговично-склерального комплекса для трансплантации роговицы. Проводят вокруг плоской части цилиарного тела, удаляют иридо-хрусталиковую диафрагму, цилиарное и стекловидное тела. Далее с помощью 7.75 мм трепана выкраивают фрагменты, включающие сетчатую оболочку, ХПК и склеру. Из полученных круглых фрагментов затем пинцетом удаляют сетчатую оболочку, мягкой соболевой кисточкой счищают слой РПЭ, а затем тупым расслаиванием отделяют ССО от склеры. ССО помещают в фосфатно-солевой буфер Дульбекко.
Способ имеет недостаток: при обработке глазного яблока таким способом неизбежно повреждается сетчатая оболочка глаза и стекловидное тело, что может приводить к попаданию на поверхность ССО способных к пролиферации клеток сетчатки (глиальных клеток Мюллера) и стекловидного тела (гиалоцитов), что может осложнять выполнение ряда экспериментальных задач. Задачей изобретения является получение органной культуры ССО глаза взрослого донора-трупа in vitro при снижении уровня ее загрязнения фрагментами сетчатки и содержимым витреальной полости.
Техническим результатом является снижение степени загрязнения посторонними клеточными элементами получаемой органной культуры ССО. Технический результат достигается тем, что в способе получения органной культуры ССО из глаза взрослого донора-трупа, включающем удаление из глазного яблока донора-трупа роговично-склерального диска, согласно изобретению при отсутствии сквозных повреждений радужной оболочки, цилиарного тела и видимой части ССО и выхода стекловидного тела за пределы витреальной полости глазное яблоко без роговично-склерального диска полностью погружают в емкость с фосфатно-солевым буфером с pH 7,4, производят полное отделение склеры от ССО путем рассечения склеры меридиональными разрезами спереди назад на 2, 3 или 4 «лепестка» и пересечения со стороны супрахориоидального пространства вортикозных вен и внутрисклеральной части зрительного нерва; производят три разреза ХПК, состоящего из ССО и РПЭ: первый круговой разрез - на расстоянии 1 мм от зубчатой линии, один меридиональный - в любом меридиане в направлении от первого кругового разреза спереди назад к культе диска зрительного нерва и второй круговой разрез - на расстоянии 1 мм от культи зрительного нерва; далее ХПК аккуратно отделяют от нейральной сетчатки пинцетом и укладывают на дно стерильной чашки Петри в положении клетками РПЭ вверх, заливают двумя мл смеси раствора 0,25% трипсина и раствора Версена в соотношении 1:1 по объему, инкубируют при 37°C и 5% концентрации CO2 в течение 20 минут, после чего РПЭ отделяют с поверхности ССО струей фосфатно-солевого буфера pH=7,4, ССО переносят в отдельную чашку Петри, несколько раз промывают раствором стерильного фосфатно-солевого буфера pH 7,4 и к выделенной ССО добавляют питательную среду следующего состава: среда Игла в модификации Дульбекко со средой Хэма F12 - 89%, эмбриональная телячья сыворотка - 10%, смесь антибиотиков, включающая пенициллин 10000 МЕ/мл, стрептомицин 10000 мкг/мл, амфотерицин 25 мкг/мл - 1%; при этом органную культуру ССО инкубируют при 37°C и при 5% концентрации CO2, питательную среду заменяют 2 раза в день.
При данном способе обработки глазного яблока сетчатка не повреждается, витреальная полость остается невскрытой, радужная оболочка, цилиарное тело, хрусталик, сетчатка и стекловидное тело отделяются единым неповрежденным замкнутым блоком, таким образом, исключаются возможные источники клеточного загрязнения органной культуры ССО.
Изобретение поясняется рисунками 1 и 2.
На рис. 1 изображена схема пересечения тканей заднего отрезка глаза при выделении ССО согласно ближайшему аналогу. На рис. 2 изображена схема пересечения тканей заднего отрезка глаза при выделении ССО согласно предложенному изобретению. На обоих рисунках позицией 1 обозначена склера, позицией 2 - ХПК, позицией 3 - сетчатая оболочка, позицией 4 - зрительный нерв. На рисунке 1 позицией 5 обозначены места рассечения сетчатой оболочки по ближайшему аналогу - трепанируют сетчатую оболочку, ХПК и склеру, при этом полость стекловидного тела неизбежно вскрывают, сетчатка повреждена. На рисунке 2 позицией 6 обозначены линии рассечения зрительного нерва на уровне его интрасклеральной части, согласно настоящему изобретению - полость стекловидного тела не вскрыта, сетчатка не повреждена.
Способ осуществляется следующим образом: глазное яблоко донора-трупа после удаления роговично-склерального диска осматривают на предмет наличия сквозных повреждений радужной оболочки, цилиарного тела и видимой части ССО и выхода стекловидного тела за пределы витреальной полости и при отсутствии перечисленных признаков погружают в стерильную емкость со стерильным фосфатно-солевым буфером (pH=7,4). Склеру рассекают спереди назад двумя, тремя, или четырьмя меридиональными разрезами длиной 2/3 длины глазного яблока, параллельными переднезадней оси глаза через равные промежутки с получением двух, трех или четырех «лепестков» склеры. «Лепестки» склеры поочередно отгибают и со стороны супрахориоидального пространства пересекают вортикозные вены и интрасклеральную часть зрительного нерва, после чего склеру удаляют из операционного поля. Далее производят три разреза ХПК: первый круговой разрез - на расстоянии 1 мм от зубчатой линии, один меридиональный разрез - в любом меридиане в направлении от первого кругового разреза спереди назад к культе диска зрительного нерва и второй круговой разрез - на расстоянии 1 мм от культи зрительного нерва; далее ХПК аккуратно отделяют от нейральной сетчатки пинцетом и укладывают на дно стерильной чашки Петри в положении «клетками РПЭ вверх», заливают двумя мл смеси раствора 0,25% трипсина и раствора Версена в соотношении 1:1 по объему, инкубируют при 37°C и 5% концентрации CO2 в течение 20 минут, после чего РПЭ отделяют с поверхности ССО струей фосфатно-солевого буфера pH=7,4. ССО переносят в отдельную чашку Петри, несколько раз промывают раствором стерильного фосфатно-солевого буфера pH 7,4 и к выделенной ССО добавляют питательную среду следующего состава: DMEM/F12 - 89%, эмбриональная телячья сыворотка - 10%, смесь антибиотиков, включающая пенициллин 10000 МЕ/мл, стрептомицин 10000 мкг/мл, амфотерицин 25 мкг/мл - 1%; при этом органную культуру ССО инкубируют при 37°C и при 5% концентрации CO2, питательную среду заменяют 2 раза в день.
Способ поясняется примером.
Пример. Глазное яблоко донора-трупа, мужчины 56 лет, после удаления роговично-склерального диска (Разрешение на применение новой медицинской технологии ФС №2010/243 от 24 июня 2010 года «Алгоритм заготовки трупных роговиц человека для трансплантации») осматривают на предмет выявления сквозных повреждений радужной оболочки, цилиарного тела и видимой части ССО. Убедившись в целостности указанных структур и отсутствии выхода стекловидного тела за пределы витреальной полости, глазное яблоко полностью погружают в стерильную емкость со стерильным фосфатно-солевым буфером с pH=7,4 (ПанЭко, Россия). Склеру рассекают спереди назад тремя меридиональными разрезами длиной 2/3 от длины глазного яблока, параллельными переднезадней оси глаза через равные промежутки с получением трех «лепестков» склеры. «Лепестки» склеры поочередно отгибают и со стороны супрахориоидального пространства пересекают вортикозные вены и внутрисклеральную часть зрительного нерва, после чего склера удаляется из операционного поля. Далее производится три разреза ХПК: первый круговой разрез - на расстоянии 1 мм от зубчатой линии, один меридиональный разрез - в направлении от первого кругового разреза спереди назад к культе диска зрительного нерва и второй круговой разрез - на расстоянии 1 мм от культи зрительного нерва; далее ХПК аккуратно отделяют от нейральной сетчатки пинцетом и укладывают на дно стерильной чашки Петри (60×15 мм, SPL Life Sciences, Co., Ltd, Корея) в положении «клетками РПЭ вверх», заливают двумя мл смеси раствора 0,25% трипсина (ПанЭко, Россия) и раствора Версена (ПанЭко, Россия) в соотношении 1:1 по объему, инкубируют при 37°C и 5% концентрации CO2 в течение 20 минут (инкубатор NU-5510, NuAire, США), после чего РПЭ отделяют с поверхности ССО струей фосфатно-солевого буфера pH=7,4. ССО переносят в отдельную чашку Петри (60×15 мм, SPL Life Sciences, Co., Ltd, Корея), несколько раз промывают раствором стерильного фосфатно-солевого буфера pH 7,4, чтобы смыть остатки РПЭ и к выделенной ССО добавляют питательную среду следующего состава: DMEM/F12 (БиолоТ, Россия) - 89%, эмбриональная телячья сыворотка (HyClone, США) - 10%, смесь антибиотиков, включающая пенициллин 10000 МЕ/мл, стрептомицин 10000 мкг/мл, амфотерицин 25 мкг/мл - 1% (MP Biomedicals, LLC, США), получая, таким образом, органную культуру ССО; при этом органную культуру ССО инкубируют при 37°C и при 5% концентрации CO2, питательную среду заменяют 2 раза в день.

Claims (1)

  1. Способ получения органной культуры собственно сосудистой оболочки (ССО) из глаза взрослого донора-трупа, включающий удаление из глазного яблока донора-трупа роговично-склерального диска, отличающийся тем, что при отсутствии сквозных повреждений радужной оболочки, цилиарного тела и видимой части ССО и выхода стекловидного тела за пределы витреальной полости глазное яблоко без роговично-склерального диска полностью погружают в емкость с фосфатно-солевым буфером с pH 7,4, производят полное отделение склеры от ССО путем рассечения склеры меридиональными разрезами спереди назад на 2, 3 или 4 «лепестка» и пересечения со стороны супрахориоидального пространства вортикозных вен и внутрисклеральной части зрительного нерва; производят три разреза хороидально-пигментного комплекса (ХПК), состоящего из ССО и ретинального пигментного эпителия (РПЭ): первый круговой разрез - на расстоянии 1 мм от зубчатой линии, один меридиональный - в любом меридиане в направлении от первого кругового разреза спереди назад к культе диска зрительного нерва и второй круговой разрез - на расстоянии 1 мм от культи зрительного нерва; далее ХПК аккуратно отделяют от нейральной сетчатки пинцетом и укладывают на дно стерильной чашки Петри в положении клетками РПЭ вверх, заливают двумя мл смеси раствора 0,25% трипсина и раствора Версена в соотношении 1:1 по объему, инкубируют при 37°C и 5% концентрации CO2 в течение 20 минут, после чего РПЭ отделяют с поверхности ССО струей фосфатно-солевого буфера pH=7,4, ССО переносят в отдельную чашку Петри, несколько раз промывают раствором стерильного фосфатно-солевого буфера pH 7,4 и к выделенной ССО добавляют питательную среду следующего состава: среда Игла в модификации Дульбекко со средой Хэма F12 - 89%, эмбриональная телячья сыворотка - 10%, смесь антибиотиков, включающая пенициллин 10000 МЕ/мл, стрептомицин 10000 мкг/мл, амфотерицин 25 мкг/мл - 1%; при этом органную культуру ССО инкубируют при 37°C и при 5% концентрации CO2, питательную среду заменяют 2 раза в день.
RU2014152574/14A 2014-12-25 2014-12-25 Способ получения органной культуры собственно сосудистой оболочки из глаза взрослого донора-трупа RU2576573C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2014152574/14A RU2576573C1 (ru) 2014-12-25 2014-12-25 Способ получения органной культуры собственно сосудистой оболочки из глаза взрослого донора-трупа

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2014152574/14A RU2576573C1 (ru) 2014-12-25 2014-12-25 Способ получения органной культуры собственно сосудистой оболочки из глаза взрослого донора-трупа

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2576573C1 true RU2576573C1 (ru) 2016-03-10

Family

ID=55654023

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2014152574/14A RU2576573C1 (ru) 2014-12-25 2014-12-25 Способ получения органной культуры собственно сосудистой оболочки из глаза взрослого донора-трупа

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2576573C1 (ru)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2704094C1 (ru) * 2019-05-16 2019-10-23 федеральное государственное автономное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова" Министерства здравоохранения Российской Федерации Способ трансплантации ретинального пигментного эпителия в форме многоклеточных 3D сфероидов в эксперименте
RU2730937C1 (ru) * 2019-11-01 2020-08-26 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр глазных болезней имени Гельмгольца" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "НМИЦ ГБ им. Гельмгольца" Миндрава России) Способ трансплантации клеток ретинального пигментного эпителия (РПЭ), дифференцированных из индуцированных плюрипотентных стволовых клеток человека, при атрофии ретинального пигментного эпителия

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2361550C2 (ru) * 2007-09-24 2009-07-20 Федеральное государственное учреждение "МОСКОВСКИЙ НАУЧНО-ИССЛЕДОВАТЕЛЬСКИЙ ИНСТИТУТ ГЛАЗНЫХ БОЛЕЗНЕЙ ИМЕНИ ГЕЛЬМГОЛЬЦА ФЕДЕРАЛЬНОГО АГЕНТСТВА ПО ВЫСОКОТЕХНОЛОГИЧНОЙ МЕДИЦИНСКОЙ ПОМОЩИ" Устройство для получения лимбального аллотрансплантата из трупного глаза, ранее использованного для извлечения сквозного роговичного аллотрансплантата, и способ получения лимбального аллотрансплантата из трупного глаза, ранее использованного для извлечения сквозного роговичного аллотрансплантата
RU2464783C1 (ru) * 2011-06-17 2012-10-27 Федеральное государственное учреждение "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова Федерального агентства по высокотехнологичной медицинской помощи" Способ выделения и фиксации клеток ретинального пигментного эпителия трупных глаз человека
CN102807965A (zh) * 2012-08-28 2012-12-05 陕西瑞盛生物科技有限公司 一种组织工程角膜的制备方法及其装置
RU2475218C1 (ru) * 2011-12-06 2013-02-20 Федеральное государственное учреждение "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова Федерального агентства по высокотехнологичной медицинской помощи" Способ выделения и органо-типической консервации аллогенного лимбального трансплантата

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2361550C2 (ru) * 2007-09-24 2009-07-20 Федеральное государственное учреждение "МОСКОВСКИЙ НАУЧНО-ИССЛЕДОВАТЕЛЬСКИЙ ИНСТИТУТ ГЛАЗНЫХ БОЛЕЗНЕЙ ИМЕНИ ГЕЛЬМГОЛЬЦА ФЕДЕРАЛЬНОГО АГЕНТСТВА ПО ВЫСОКОТЕХНОЛОГИЧНОЙ МЕДИЦИНСКОЙ ПОМОЩИ" Устройство для получения лимбального аллотрансплантата из трупного глаза, ранее использованного для извлечения сквозного роговичного аллотрансплантата, и способ получения лимбального аллотрансплантата из трупного глаза, ранее использованного для извлечения сквозного роговичного аллотрансплантата
RU2464783C1 (ru) * 2011-06-17 2012-10-27 Федеральное государственное учреждение "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова Федерального агентства по высокотехнологичной медицинской помощи" Способ выделения и фиксации клеток ретинального пигментного эпителия трупных глаз человека
RU2475218C1 (ru) * 2011-12-06 2013-02-20 Федеральное государственное учреждение "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова Федерального агентства по высокотехнологичной медицинской помощи" Способ выделения и органо-типической консервации аллогенного лимбального трансплантата
CN102807965A (zh) * 2012-08-28 2012-12-05 陕西瑞盛生物科技有限公司 一种组织工程角膜的制备方法及其装置

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
MOORE DJ et al. Age-related variation in the hydraulic conductivity of Bruchs membrane. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1995 Jun; 36(7):1290-7. *
ХАПЧАЕВ Ю. Х. Перфузионный способ дезагрегации органов для получения разных видов культур клеток. Автореф. дис. канд. биол. наук, 1983. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2704094C1 (ru) * 2019-05-16 2019-10-23 федеральное государственное автономное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр "Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" имени академика С.Н. Федорова" Министерства здравоохранения Российской Федерации Способ трансплантации ретинального пигментного эпителия в форме многоклеточных 3D сфероидов в эксперименте
RU2730937C1 (ru) * 2019-11-01 2020-08-26 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр глазных болезней имени Гельмгольца" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "НМИЦ ГБ им. Гельмгольца" Миндрава России) Способ трансплантации клеток ретинального пигментного эпителия (РПЭ), дифференцированных из индуцированных плюрипотентных стволовых клеток человека, при атрофии ретинального пигментного эпителия

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Ong et al. Evolution of therapies for the corneal endothelium: past, present and future approaches
Alió et al. Regenerative surgery of the corneal stroma for advanced keratoconus: 1-year outcomes
Del Barrio et al. Corneal stroma enhancement with decellularized stromal laminas with or without stem cell recellularization for advanced keratoconus
Arenas et al. Lamellar corneal transplantation
Pang et al. A rabbit anterior cornea replacement derived from acellular porcine cornea matrix, epithelial cells and keratocytes
Stalmans et al. ICG staining of the inner limiting membrane facilitates its removal during surgery for macular holes and puckers
Fernandez et al. Descemet stripping automated endothelial keratoplasty in a child
RU2631412C1 (ru) Способ получения донорского трансплантата десцеметовой мембраны
RU2576573C1 (ru) Способ получения органной культуры собственно сосудистой оболочки из глаза взрослого донора-трупа
Kwitko et al. The history of modern cataract surgery
Sikora et al. Examples of successful biomaterial-based artificial tissues—artificial corneas
RU2569481C1 (ru) Способ получения культуры клеток ретинального пигментного эпителия из глаза взрослого донора-трупа
RU2578526C1 (ru) Способ получения органной культуры хороидально-пигментного комплекса из глаза взрослого донора-трупа
Park et al. Tectonic lamellar keratoplasty: simplified management of corneal perforations with an automated microkeratome
Coroneo Paradigm shifts, peregrinations and pixies in ophthalmology
Mau What DSAEK is going on? An alternative to penetrating keratoplasty for endothelial dysfunction
Saldan et al. The sixth layer of the cornea: is it fiction or real fact?
RU2630035C1 (ru) Способ лечения сочетанной патологии ранней стадии первичной эндотелиальной дистрофии роговицы Фукса и катаракты
Taneri et al. Retinal detachment and phthisis bulbi after implantation of an iris prosthetic system
Sachsenweger Illustrated handbook of ophthalmology
Kim et al. Descemet membrane stripping endothelial keratoplasty for Descemet membrane detachment following phacoemulsification
RU2560390C1 (ru) Способ лечения деструктивных поражений роговицы при оказании неотложной помощи
RU2266083C2 (ru) Способ хирургического лечения буллезной кератопатии
Fine et al. Late reopening of fibrosed capsular bags to reposition decentered intraocular lenses
Nita et al. Ophthalmic transplantology: Anterior segment of the eye–Part I

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20161226