RU2574364C2 - Способ трансплантации клеток из плотных тканей - Google Patents
Способ трансплантации клеток из плотных тканей Download PDFInfo
- Publication number
- RU2574364C2 RU2574364C2 RU2012152610/14A RU2012152610A RU2574364C2 RU 2574364 C2 RU2574364 C2 RU 2574364C2 RU 2012152610/14 A RU2012152610/14 A RU 2012152610/14A RU 2012152610 A RU2012152610 A RU 2012152610A RU 2574364 C2 RU2574364 C2 RU 2574364C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- cells
- liver
- mixture
- cell
- biomaterials
- Prior art date
Links
- 210000001519 tissues Anatomy 0.000 title claims abstract description 63
- 210000004027 cells Anatomy 0.000 claims abstract description 239
- 210000004185 Liver Anatomy 0.000 claims abstract description 122
- 210000000130 stem cell Anatomy 0.000 claims abstract description 69
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims abstract description 68
- 239000000560 biocompatible material Substances 0.000 claims abstract description 33
- 210000004500 stellate cell Anatomy 0.000 claims abstract description 17
- 210000000648 angioblast Anatomy 0.000 claims abstract description 16
- 238000005138 cryopreservation Methods 0.000 claims abstract description 13
- 210000000013 Bile Ducts Anatomy 0.000 claims abstract description 7
- 230000003511 endothelial Effects 0.000 claims abstract description 3
- 229920002674 hyaluronan Polymers 0.000 claims description 83
- 239000000017 hydrogel Substances 0.000 claims description 58
- 239000002609 media Substances 0.000 claims description 51
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 claims description 33
- OZAIFHULBGXAKX-UHFFFAOYSA-N precursor Substances N#CC(C)(C)N=NC(C)(C)C#N OZAIFHULBGXAKX-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 29
- 210000003494 Hepatocytes Anatomy 0.000 claims description 22
- 102000014961 Protein Precursors Human genes 0.000 claims description 20
- 108010078762 Protein Precursors Proteins 0.000 claims description 20
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 claims description 20
- 108010067787 Proteoglycans Proteins 0.000 claims description 17
- 102000016611 Proteoglycans Human genes 0.000 claims description 17
- 229920001436 collagen Polymers 0.000 claims description 17
- 239000000463 material Substances 0.000 claims description 17
- 239000004971 Cross linker Substances 0.000 claims description 16
- 238000005755 formation reaction Methods 0.000 claims description 16
- 210000003999 epithelial cell of bile duct Anatomy 0.000 claims description 14
- 210000002889 Endothelial Cells Anatomy 0.000 claims description 13
- 102100010813 EGF Human genes 0.000 claims description 12
- 101700033006 EGF Proteins 0.000 claims description 12
- 229940116977 Epidermal Growth Factor Drugs 0.000 claims description 12
- 210000002744 Extracellular Matrix Anatomy 0.000 claims description 12
- 230000011664 signaling Effects 0.000 claims description 12
- 239000000243 solution Substances 0.000 claims description 12
- 229920002683 Glycosaminoglycan Polymers 0.000 claims description 11
- 102000003745 Hepatocyte Growth Factor Human genes 0.000 claims description 11
- 108090000100 Hepatocyte Growth Factor Proteins 0.000 claims description 11
- 238000002347 injection Methods 0.000 claims description 11
- 239000007924 injection Substances 0.000 claims description 11
- 102000004338 Transferrin Human genes 0.000 claims description 10
- 108090000901 Transferrin Proteins 0.000 claims description 10
- NOESYZHRGYRDHS-UHFFFAOYSA-N insulin Chemical compound N1C(=O)C(NC(=O)C(CCC(N)=O)NC(=O)C(CCC(O)=O)NC(=O)C(C(C)C)NC(=O)C(NC(=O)CN)C(C)CC)CSSCC(C(NC(CO)C(=O)NC(CC(C)C)C(=O)NC(CC=2C=CC(O)=CC=2)C(=O)NC(CCC(N)=O)C(=O)NC(CC(C)C)C(=O)NC(CCC(O)=O)C(=O)NC(CC(N)=O)C(=O)NC(CC=2C=CC(O)=CC=2)C(=O)NC(CSSCC(NC(=O)C(C(C)C)NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(CC=2C=CC(O)=CC=2)NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(C)NC(=O)C(CCC(O)=O)NC(=O)C(C(C)C)NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(CC=2NC=NC=2)NC(=O)C(CO)NC(=O)CNC2=O)C(=O)NCC(=O)NC(CCC(O)=O)C(=O)NC(CCCNC(N)=N)C(=O)NCC(=O)NC(CC=3C=CC=CC=3)C(=O)NC(CC=3C=CC=CC=3)C(=O)NC(CC=3C=CC(O)=CC=3)C(=O)NC(C(C)O)C(=O)N3C(CCC3)C(=O)NC(CCCCN)C(=O)NC(C)C(O)=O)C(=O)NC(CC(N)=O)C(O)=O)=O)NC(=O)C(C(C)CC)NC(=O)C(CO)NC(=O)C(C(C)O)NC(=O)C1CSSCC2NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(NC(=O)C(CCC(N)=O)NC(=O)C(CC(N)=O)NC(=O)C(NC(=O)C(N)CC=1C=CC=CC=1)C(C)C)CC1=CN=CN1 NOESYZHRGYRDHS-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 10
- 239000012581 transferrin Substances 0.000 claims description 10
- IAZDPXIOMUYVGZ-UHFFFAOYSA-N dimethylsulphoxide Chemical compound CS(C)=O IAZDPXIOMUYVGZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 8
- 229940088597 Hormone Drugs 0.000 claims description 7
- 125000004386 diacrylate group Chemical group 0.000 claims description 7
- 239000005556 hormone Substances 0.000 claims description 7
- 229920001223 polyethylene glycol Polymers 0.000 claims description 7
- 229920001661 Chitosan Polymers 0.000 claims description 6
- 102400000022 Insulin-Like Growth Factor II Human genes 0.000 claims description 6
- 108090001117 Insulin-Like Growth Factor II Proteins 0.000 claims description 6
- 102000004218 Insulin-like growth factor I Human genes 0.000 claims description 6
- 108090000723 Insulin-like growth factor I Proteins 0.000 claims description 6
- 229940072056 alginate Drugs 0.000 claims description 6
- 229920000615 alginic acid Polymers 0.000 claims description 6
- 235000010443 alginic acid Nutrition 0.000 claims description 6
- 230000002338 cryopreservative Effects 0.000 claims description 6
- PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N glycerine Chemical compound OCC(O)CO PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 6
- 230000012010 growth Effects 0.000 claims description 6
- 239000001963 growth media Substances 0.000 claims description 6
- 102000018233 Fibroblast growth factor family Human genes 0.000 claims description 5
- 108050007372 Fibroblast growth factor family Proteins 0.000 claims description 5
- 229940065521 Glucocorticoid inhalants for obstructive airway disease Drugs 0.000 claims description 5
- 102000004877 Insulin Human genes 0.000 claims description 5
- 108090001061 Insulin Proteins 0.000 claims description 5
- 210000002747 Omentum Anatomy 0.000 claims description 5
- 229940037128 Systemic Glucocorticoids Drugs 0.000 claims description 5
- FPIPGXGPPPQFEQ-BOOMUCAASA-N Vitamin A Natural products OC/C=C(/C)\C=C\C=C(\C)/C=C/C1=C(C)CCCC1(C)C FPIPGXGPPPQFEQ-BOOMUCAASA-N 0.000 claims description 5
- 229940045997 Vitamin A Drugs 0.000 claims description 5
- FPIPGXGPPPQFEQ-OVSJKPMPSA-N all-trans-retinol Chemical compound OC\C=C(/C)\C=C\C=C(/C)\C=C\C1=C(C)CCCC1(C)C FPIPGXGPPPQFEQ-OVSJKPMPSA-N 0.000 claims description 5
- 229920000249 biocompatible polymer Polymers 0.000 claims description 5
- 238000006065 biodegradation reaction Methods 0.000 claims description 5
- OYPRJOBELJOOCE-UHFFFAOYSA-N calcium Chemical compound [Ca] OYPRJOBELJOOCE-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 5
- 239000011575 calcium Substances 0.000 claims description 5
- 229910052791 calcium Inorganic materials 0.000 claims description 5
- -1 ethediol Chemical compound 0.000 claims description 5
- 239000003862 glucocorticoid Substances 0.000 claims description 5
- LYCAIKOWRPUZTN-UHFFFAOYSA-N glycol Chemical compound OCCO LYCAIKOWRPUZTN-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 5
- 229960003471 retinol Drugs 0.000 claims description 5
- MAKUBRYLFHZREJ-JWBQXVCJSA-M sodium;(2S,3S,4R,5R,6R)-3-[(2S,3R,5S,6R)-3-acetamido-5-hydroxy-6-(hydroxymethyl)oxan-2-yl]oxy-4,5,6-trihydroxyoxane-2-carboxylate Chemical class [Na+].CC(=O)N[C@@H]1C[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](C([O-])=O)O[C@@H](O)[C@H](O)[C@H]1O MAKUBRYLFHZREJ-JWBQXVCJSA-M 0.000 claims description 5
- 239000011719 vitamin A Substances 0.000 claims description 5
- 235000019155 vitamin A Nutrition 0.000 claims description 5
- 230000001058 adult Effects 0.000 claims description 4
- 239000003963 antioxidant agent Substances 0.000 claims description 4
- 239000011248 coating agent Substances 0.000 claims description 4
- 238000000576 coating method Methods 0.000 claims description 4
- 150000002019 disulfides Chemical class 0.000 claims description 4
- ZHNUHDYFZUAESO-UHFFFAOYSA-N formamide Chemical compound NC=O ZHNUHDYFZUAESO-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 4
- 238000007710 freezing Methods 0.000 claims description 4
- 229920000159 gelatin Polymers 0.000 claims description 4
- 235000019322 gelatine Nutrition 0.000 claims description 4
- 235000011852 gelatine desserts Nutrition 0.000 claims description 4
- DHMQDGOQFOQNFH-UHFFFAOYSA-N glycine Chemical compound NCC(O)=O DHMQDGOQFOQNFH-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 4
- 230000002401 inhibitory effect Effects 0.000 claims description 4
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 claims description 4
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 claims description 4
- 229940030486 ANDROGENS Drugs 0.000 claims description 3
- 229940011871 Estrogens Drugs 0.000 claims description 3
- 108010010803 Gelatin Proteins 0.000 claims description 3
- 206010024324 Leukaemias Diseases 0.000 claims description 3
- 239000002202 Polyethylene glycol Substances 0.000 claims description 3
- 229940030484 SEX HORMONES AND MODULATORS OF THE GENITAL SYSTEM ESTROGENS Drugs 0.000 claims description 3
- 239000003098 androgen Substances 0.000 claims description 3
- 235000006708 antioxidants Nutrition 0.000 claims description 3
- 229940046080 endocrine therapy drugs Estrogens Drugs 0.000 claims description 3
- 239000000262 estrogen Substances 0.000 claims description 3
- 239000008273 gelatin Substances 0.000 claims description 3
- 230000002163 immunogen Effects 0.000 claims description 3
- 235000000346 sugar Nutrition 0.000 claims description 3
- PSJBSUHYCGQTHZ-UHFFFAOYSA-N 3-methoxypropane-1,2-diol Chemical compound COCC(O)CO PSJBSUHYCGQTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- 241000239290 Araneae Species 0.000 claims description 2
- 229960002747 Betacarotene Drugs 0.000 claims description 2
- 229960001231 Choline Drugs 0.000 claims description 2
- 239000004471 Glycine Substances 0.000 claims description 2
- 102000003815 Interleukin-11 Human genes 0.000 claims description 2
- 108090000177 Interleukin-11 Proteins 0.000 claims description 2
- 102000015696 Interleukins Human genes 0.000 claims description 2
- 108010063738 Interleukins Proteins 0.000 claims description 2
- 229940047122 Interleukins Drugs 0.000 claims description 2
- QNAYBMKLOCPYGJ-REOHCLBHSA-N L-alanine Chemical compound C[C@H](N)C(O)=O QNAYBMKLOCPYGJ-REOHCLBHSA-N 0.000 claims description 2
- JYTUSYBCFIZPBE-AMTLMPIISA-N Lactobionic acid Chemical compound OC(=O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]([C@H](O)CO)O[C@@H]1O[C@H](CO)[C@H](O)[C@H](O)[C@H]1O JYTUSYBCFIZPBE-AMTLMPIISA-N 0.000 claims description 2
- ATHHXGZTWNVVOU-UHFFFAOYSA-N N-methylformamide Chemical compound CNC=O ATHHXGZTWNVVOU-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- 229940076788 Pyruvate Drugs 0.000 claims description 2
- MUPFEKGTMRGPLJ-ZQSKZDJDSA-N Raffinose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO[C@@H]2[C@@H]([C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O2)O)O1 MUPFEKGTMRGPLJ-ZQSKZDJDSA-N 0.000 claims description 2
- MUPFEKGTMRGPLJ-RMMQSMQOSA-N Raffinose Natural products O(C[C@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O[C@@]2(CO)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O2)O1)[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O1 MUPFEKGTMRGPLJ-RMMQSMQOSA-N 0.000 claims description 2
- 229940036555 Thyroid hormones Drugs 0.000 claims description 2
- 229940046009 Vitamin E Drugs 0.000 claims description 2
- 229930003427 Vitamin E Natural products 0.000 claims description 2
- 235000004279 alanine Nutrition 0.000 claims description 2
- 230000000111 anti-oxidant Effects 0.000 claims description 2
- 239000000158 apoptosis inhibitor Substances 0.000 claims description 2
- OENHQHLEOONYIE-VYAWBVGESA-N beta-Carotene Natural products CC=1CCCC(C)(C)C=1\C=C\C(\C)=C/C=C/C(/C)=C\C=C\C=C(\C)/C=C/C=C(/C)\C=C\C1=C(C)CCCC1(C)C OENHQHLEOONYIE-VYAWBVGESA-N 0.000 claims description 2
- 239000011648 beta-carotene Substances 0.000 claims description 2
- 235000013734 beta-carotene Nutrition 0.000 claims description 2
- 102000024070 binding proteins Human genes 0.000 claims description 2
- 108091007650 binding proteins Proteins 0.000 claims description 2
- CRBHXDCYXIISFC-UHFFFAOYSA-N choline Chemical compound C[N+](C)(C)CC[O-] CRBHXDCYXIISFC-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- 229940099584 lactobionate Drugs 0.000 claims description 2
- 229920000036 polyvinylpyrrolidone Polymers 0.000 claims description 2
- 235000013855 polyvinylpyrrolidone Nutrition 0.000 claims description 2
- 239000001267 polyvinylpyrrolidone Substances 0.000 claims description 2
- LCTONWCANYUPML-UHFFFAOYSA-M pyruvate Chemical compound CC(=O)C([O-])=O LCTONWCANYUPML-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 2
- 230000002829 reduced Effects 0.000 claims description 2
- 239000005495 thyroid hormone Substances 0.000 claims description 2
- 239000011709 vitamin E Substances 0.000 claims description 2
- 235000019165 vitamin E Nutrition 0.000 claims description 2
- 150000003712 vitamin E derivatives Chemical class 0.000 claims description 2
- OENHQHLEOONYIE-JLTXGRSLSA-N β-Carotene Chemical compound CC=1CCCC(C)(C)C=1\C=C\C(\C)=C\C=C\C(\C)=C\C=C\C=C(/C)\C=C\C=C(/C)\C=C\C1=C(C)CCCC1(C)C OENHQHLEOONYIE-JLTXGRSLSA-N 0.000 claims description 2
- BJHIKXHVCXFQLS-UYFOZJQFSA-N Fructose Natural products OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)C(=O)CO BJHIKXHVCXFQLS-UYFOZJQFSA-N 0.000 claims 4
- 239000005715 Fructose Substances 0.000 claims 2
- 229920001963 Synthetic biodegradable polymer Polymers 0.000 claims 2
- 102000004887 Transforming Growth Factor beta Human genes 0.000 claims 2
- 108090001012 Transforming Growth Factor beta Proteins 0.000 claims 2
- 108010073929 Vascular Endothelial Growth Factor A Proteins 0.000 claims 2
- 102000009524 Vascular Endothelial Growth Factor A Human genes 0.000 claims 2
- DNIAPMSPPWPWGF-GSVOUGTGSA-N (-)-propylene glycol Chemical compound C[C@@H](O)CO DNIAPMSPPWPWGF-GSVOUGTGSA-N 0.000 claims 1
- 108010037362 Extracellular Matrix Proteins Proteins 0.000 claims 1
- 102000010834 Extracellular Matrix Proteins Human genes 0.000 claims 1
- 229960004666 Glucagon Drugs 0.000 claims 1
- 108060003199 Glucagon Proteins 0.000 claims 1
- MASNOZXLGMXCHN-ZLPAWPGGSA-N Glucagonum Chemical compound C([C@@H](C(=O)N[C@H](C(=O)N[C@@H](CCC(N)=O)C(=O)N[C@@H](CC=1C2=CC=CC=C2NC=1)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N[C@@H](CCSC)C(=O)N[C@@H](CC(N)=O)C(=O)N[C@@H]([C@@H](C)O)C(O)=O)C(C)C)NC(=O)[C@H](CC(O)=O)NC(=O)[C@H](CCC(N)=O)NC(=O)[C@H](C)NC(=O)[C@H](CCCNC(N)=N)NC(=O)[C@H](CCCNC(N)=N)NC(=O)[C@H](CO)NC(=O)[C@H](CC(O)=O)NC(=O)[C@H](CC(C)C)NC(=O)[C@H](CC=1C=CC(O)=CC=1)NC(=O)[C@H](CCCCN)NC(=O)[C@H](CO)NC(=O)[C@H](CC=1C=CC(O)=CC=1)NC(=O)[C@H](CC(O)=O)NC(=O)[C@H](CO)NC(=O)[C@@H](NC(=O)[C@H](CC=1C=CC=CC=1)NC(=O)[C@@H](NC(=O)CNC(=O)[C@H](CCC(N)=O)NC(=O)[C@H](CO)NC(=O)[C@@H](N)CC=1NC=NC=1)[C@@H](C)O)[C@@H](C)O)C1=CC=CC=C1 MASNOZXLGMXCHN-ZLPAWPGGSA-N 0.000 claims 1
- 241000238631 Hexapoda Species 0.000 claims 1
- 108090001005 Interleukin-6 Proteins 0.000 claims 1
- 229960004063 Propylene glycol Drugs 0.000 claims 1
- ZRKFYGHZFMAOKI-QMGMOQQFSA-N Tgfbeta Chemical compound C([C@H](NC(=O)[C@H](C(C)C)NC(=O)CNC(=O)[C@H](CCC(O)=O)NC(=O)[C@H](CCCNC(N)=N)NC(=O)[C@H](CC(N)=O)NC(=O)[C@H](CC(C)C)NC(=O)[C@H]([C@@H](C)O)NC(=O)[C@H](CCC(O)=O)NC(=O)[C@H]([C@@H](C)O)NC(=O)[C@H](CC(C)C)NC(=O)CNC(=O)[C@H](C)NC(=O)[C@H](CO)NC(=O)[C@H](CCC(N)=O)NC(=O)[C@@H](NC(=O)[C@H](C)NC(=O)[C@H](C)NC(=O)[C@@H](NC(=O)[C@H](CC(C)C)NC(=O)[C@@H](N)CCSC)C(C)C)[C@@H](C)CC)C(=O)N[C@@H]([C@@H](C)O)C(=O)N[C@@H](C(C)C)C(=O)N[C@@H](CC=1C=CC=CC=1)C(=O)N[C@@H](C)C(=O)N1[C@@H](CCC1)C(=O)N[C@@H]([C@@H](C)O)C(=O)N[C@@H](CC(N)=O)C(=O)N[C@@H](CCC(O)=O)C(=O)N[C@@H](C)C(=O)N[C@@H](CC=1C=CC=CC=1)C(=O)N[C@@H](CCCNC(N)=N)C(=O)N[C@@H](C)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N1[C@@H](CCC1)C(=O)N1[C@@H](CCC1)C(=O)N[C@@H](CCCNC(N)=N)C(=O)N[C@@H](CCC(O)=O)C(=O)N[C@@H](CCCNC(N)=N)C(=O)N[C@@H](CO)C(=O)N[C@@H](CCCNC(N)=N)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(O)=O)C1=CC=C(O)C=C1 ZRKFYGHZFMAOKI-QMGMOQQFSA-N 0.000 claims 1
- AUYYCJSJGJYCDS-LBPRGKRZSA-N Thyrolar Chemical compound IC1=CC(C[C@H](N)C(O)=O)=CC(I)=C1OC1=CC=C(O)C(I)=C1 AUYYCJSJGJYCDS-LBPRGKRZSA-N 0.000 claims 1
- HDTRYLNUVZCQOY-WSWWMNSNSA-N Trehalose Natural products O[C@@H]1[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O[C@@H]1O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O1 HDTRYLNUVZCQOY-WSWWMNSNSA-N 0.000 claims 1
- 230000003078 antioxidant Effects 0.000 claims 1
- 235000013399 edible fruits Nutrition 0.000 claims 1
- 150000002632 lipids Chemical class 0.000 claims 1
- 235000013772 propylene glycol Nutrition 0.000 claims 1
- BUGBHKTXTAQXES-UHFFFAOYSA-N selenium Chemical compound [Se] BUGBHKTXTAQXES-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims 1
- 239000011669 selenium Substances 0.000 claims 1
- 229910052711 selenium Inorganic materials 0.000 claims 1
- 229910001415 sodium ion Inorganic materials 0.000 claims 1
- 125000000647 trehalose group Chemical group 0.000 claims 1
- HCHKCACWOHOZIP-UHFFFAOYSA-N zinc Chemical compound [Zn] HCHKCACWOHOZIP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims 1
- 239000011701 zinc Substances 0.000 claims 1
- 229910052725 zinc Inorganic materials 0.000 claims 1
- 230000004069 differentiation Effects 0.000 abstract description 16
- 238000000034 method Methods 0.000 abstract description 16
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract description 11
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract description 8
- 230000007762 localization of cell Effects 0.000 abstract description 7
- 239000003814 drug Substances 0.000 abstract description 3
- 230000014509 gene expression Effects 0.000 description 50
- 210000000056 organs Anatomy 0.000 description 45
- 229920000671 polyethylene glycol diacrylate Polymers 0.000 description 34
- 238000002054 transplantation Methods 0.000 description 27
- XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N urea Chemical compound NC(N)=O XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 20
- 101700014023 AFP Proteins 0.000 description 15
- 101700065995 AFP1 Proteins 0.000 description 15
- 101700061082 ANPX Proteins 0.000 description 15
- 101700082057 ANPY Proteins 0.000 description 15
- 101700077278 ANTF Proteins 0.000 description 15
- 101700025474 ISP2 Proteins 0.000 description 15
- 102100000184 TRIM26 Human genes 0.000 description 15
- 101710021280 TRIM26 Proteins 0.000 description 15
- 101710004777 afgp8 Proteins 0.000 description 15
- 238000004132 cross linking Methods 0.000 description 15
- 101700024633 ibp Proteins 0.000 description 15
- 230000035800 maturation Effects 0.000 description 15
- 230000001965 increased Effects 0.000 description 14
- 102100001249 ALB Human genes 0.000 description 13
- 101710027066 ALB Proteins 0.000 description 13
- 229940050528 albumin Drugs 0.000 description 13
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 13
- 239000003102 growth factor Substances 0.000 description 13
- 101700078950 CD44 Proteins 0.000 description 11
- 102100003735 CD44 Human genes 0.000 description 11
- 108010066687 Epithelial Cell Adhesion Molecule Proteins 0.000 description 11
- 102000018651 Epithelial Cell Adhesion Molecule Human genes 0.000 description 11
- 108010069196 Neural Cell Adhesion Molecules Proteins 0.000 description 11
- 102000001068 Neural Cell Adhesion Molecules Human genes 0.000 description 11
- 239000004202 carbamide Substances 0.000 description 10
- 102100004728 CDH1 Human genes 0.000 description 9
- 101700016900 CDH1 Proteins 0.000 description 9
- 101700011568 DIB1 Proteins 0.000 description 9
- 108020004999 Messenger RNA Proteins 0.000 description 9
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 description 9
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 9
- 229920002106 messenger RNA Polymers 0.000 description 9
- 230000028327 secretion Effects 0.000 description 9
- 229920002971 Heparan sulfate Polymers 0.000 description 8
- 102000007547 Laminin Human genes 0.000 description 8
- 108010085895 Laminin Proteins 0.000 description 8
- 230000002503 metabolic Effects 0.000 description 8
- 108010035532 Collagen Proteins 0.000 description 7
- 102000008186 Collagen Human genes 0.000 description 7
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 7
- 229960005188 collagen Drugs 0.000 description 7
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 7
- 239000000499 gel Substances 0.000 description 7
- 230000003076 paracrine Effects 0.000 description 7
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 7
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 7
- 230000004083 survival Effects 0.000 description 7
- 238000010257 thawing Methods 0.000 description 7
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 6
- 210000000496 Pancreas Anatomy 0.000 description 6
- 238000009792 diffusion process Methods 0.000 description 6
- 230000002708 enhancing Effects 0.000 description 6
- 102000004127 Cytokines Human genes 0.000 description 5
- 108090000695 Cytokines Proteins 0.000 description 5
- 108010067306 Fibronectins Proteins 0.000 description 5
- 102000008055 Heparan Sulfate Proteoglycans Human genes 0.000 description 5
- 108010088992 Heparan Sulfate Proteoglycans Proteins 0.000 description 5
- 210000000603 Stem Cell Niche Anatomy 0.000 description 5
- 238000007792 addition Methods 0.000 description 5
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 5
- 230000004064 dysfunction Effects 0.000 description 5
- 238000005562 fading Methods 0.000 description 5
- 230000037320 fibronectin Effects 0.000 description 5
- 125000003147 glycosyl group Chemical group 0.000 description 5
- 210000004738 parenchymal cell Anatomy 0.000 description 5
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 5
- QAOWNCQODCNURD-UHFFFAOYSA-L sulfate Chemical compound [O-]S([O-])(=O)=O QAOWNCQODCNURD-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 5
- 230000002792 vascular Effects 0.000 description 5
- 102000004266 Collagen Type IV Human genes 0.000 description 4
- 108010042086 Collagen Type IV Proteins 0.000 description 4
- IGXWBGJHJZYPQS-SSDOTTSWSA-N D-Luciferin Chemical compound OC(=O)[C@H]1CSC(C=2SC3=CC=C(O)C=C3N=2)=N1 IGXWBGJHJZYPQS-SSDOTTSWSA-N 0.000 description 4
- 210000003038 Endothelium Anatomy 0.000 description 4
- 101710037135 GAPC2 Proteins 0.000 description 4
- 101710037116 GAPC3 Proteins 0.000 description 4
- 101710025049 GAPDG Proteins 0.000 description 4
- 101710008404 GAPDH Proteins 0.000 description 4
- 102100006425 GAPDH Human genes 0.000 description 4
- 101710010461 Gapdh1 Proteins 0.000 description 4
- 102000008100 Human Serum Albumin Human genes 0.000 description 4
- 108091006822 Human Serum Albumin Proteins 0.000 description 4
- 229940099552 Hyaluronan Drugs 0.000 description 4
- KIUKXJAPPMFGSW-MNSSHETKSA-N Hyaluronan Chemical compound CC(=O)N[C@H]1[C@H](O)O[C@H](CO)[C@@H](O)C1O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O[C@H]2[C@@H](C(O[C@H]3[C@@H]([C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O3)C(O)=O)O)[C@H](O)[C@@H](CO)O2)NC(C)=O)[C@@H](C(O)=O)O1 KIUKXJAPPMFGSW-MNSSHETKSA-N 0.000 description 4
- 239000005089 Luciferase Substances 0.000 description 4
- 108060001084 Luciferase family Proteins 0.000 description 4
- 210000004072 Lung Anatomy 0.000 description 4
- 101710025050 MK0970 Proteins 0.000 description 4
- 210000002536 Stromal Cells Anatomy 0.000 description 4
- 101710025091 cbbGC Proteins 0.000 description 4
- 230000010261 cell growth Effects 0.000 description 4
- 230000001413 cellular Effects 0.000 description 4
- 101710025070 gapdh-2 Proteins 0.000 description 4
- 239000000122 growth hormone Substances 0.000 description 4
- 238000002513 implantation Methods 0.000 description 4
- 108010028309 kalinin Proteins 0.000 description 4
- 230000003287 optical Effects 0.000 description 4
- 230000037361 pathway Effects 0.000 description 4
- 229920001184 polypeptide Polymers 0.000 description 4
- 235000018102 proteins Nutrition 0.000 description 4
- 238000011084 recovery Methods 0.000 description 4
- 238000001356 surgical procedure Methods 0.000 description 4
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 4
- 230000002194 synthesizing Effects 0.000 description 4
- 229920001059 synthetic polymer Polymers 0.000 description 4
- 230000035899 viability Effects 0.000 description 4
- KUDUQBURMYMBIJ-UHFFFAOYSA-N 2-prop-2-enoyloxyethyl prop-2-enoate Chemical compound C=CC(=O)OCCOC(=O)C=C KUDUQBURMYMBIJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 210000000683 Abdominal Cavity Anatomy 0.000 description 3
- 210000004369 Blood Anatomy 0.000 description 3
- 210000000988 Bone and Bones Anatomy 0.000 description 3
- YQEZLKZALYSWHR-UHFFFAOYSA-N Calypsol Chemical compound C=1C=CC=C(Cl)C=1C1(NC)CCCCC1=O YQEZLKZALYSWHR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 102000016289 Cell Adhesion Molecules Human genes 0.000 description 3
- 108010067225 Cell Adhesion Molecules Proteins 0.000 description 3
- 102000001187 Collagen Type III Human genes 0.000 description 3
- 108010069502 Collagen Type III Proteins 0.000 description 3
- 210000000805 Cytoplasm Anatomy 0.000 description 3
- 229920002307 Dextran Polymers 0.000 description 3
- 210000002782 Epithelial mesenchymal cell Anatomy 0.000 description 3
- 102000016359 Fibronectins Human genes 0.000 description 3
- 229940028334 Follicle Stimulating Hormone Drugs 0.000 description 3
- 102000012673 Follicle Stimulating Hormone Human genes 0.000 description 3
- 108010079345 Follicle Stimulating Hormone Proteins 0.000 description 3
- 210000004907 Glands Anatomy 0.000 description 3
- 210000002216 Heart Anatomy 0.000 description 3
- PLXBWHJQWKZRKG-UHFFFAOYSA-N Resazurin Chemical compound C1=CC(=O)C=C2OC3=CC(O)=CC=C3[N+]([O-])=C21 PLXBWHJQWKZRKG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 210000001685 Thyroid Gland Anatomy 0.000 description 3
- 108010042606 Tyrosine Transaminase Proteins 0.000 description 3
- 102000016540 Tyrosine aminotransferase Human genes 0.000 description 3
- 241000700605 Viruses Species 0.000 description 3
- BPICBUSOMSTKRF-UHFFFAOYSA-N Xylazine Chemical compound CC1=CC=CC(C)=C1NC1=NCCCS1 BPICBUSOMSTKRF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 229960001600 Xylazine Drugs 0.000 description 3
- 239000000654 additive Substances 0.000 description 3
- 230000002776 aggregation Effects 0.000 description 3
- 230000001580 bacterial Effects 0.000 description 3
- 229920002988 biodegradable polymer Polymers 0.000 description 3
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 3
- UIIMBOGNXHQVGW-UHFFFAOYSA-M buffer Substances [Na+].OC([O-])=O UIIMBOGNXHQVGW-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 3
- RMRJXGBAOAMLHD-CTAPUXPBSA-N buprenorphine Chemical compound C([C@]12[C@H]3OC=4C(O)=CC=C(C2=4)C[C@@H]2[C@]11CC[C@@]3([C@H](C1)[C@](C)(O)C(C)(C)C)OC)CN2CC1CC1 RMRJXGBAOAMLHD-CTAPUXPBSA-N 0.000 description 3
- 229960001736 buprenorphine Drugs 0.000 description 3
- 150000001720 carbohydrates Chemical class 0.000 description 3
- 125000002057 carboxymethyl group Chemical group [H]OC(=O)C([H])([H])[*] 0.000 description 3
- 230000004663 cell proliferation Effects 0.000 description 3
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 230000003394 haemopoietic Effects 0.000 description 3
- 229960003160 hyaluronic acid Drugs 0.000 description 3
- 238000003384 imaging method Methods 0.000 description 3
- 229960003299 ketamine Drugs 0.000 description 3
- 230000003908 liver function Effects 0.000 description 3
- 230000003278 mimic Effects 0.000 description 3
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 3
- 238000010172 mouse model Methods 0.000 description 3
- 239000004033 plastic Substances 0.000 description 3
- 229920003023 plastic Polymers 0.000 description 3
- 238000004321 preservation Methods 0.000 description 3
- 230000001172 regenerating Effects 0.000 description 3
- 230000001105 regulatory Effects 0.000 description 3
- 238000000518 rheometry Methods 0.000 description 3
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 3
- 238000005670 sulfation reaction Methods 0.000 description 3
- 230000001225 therapeutic Effects 0.000 description 3
- 238000002560 therapeutic procedure Methods 0.000 description 3
- 230000001131 transforming Effects 0.000 description 3
- 230000001052 transient Effects 0.000 description 3
- 230000000989 vascularization Effects 0.000 description 3
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- DPUYCSDGMSDKKV-MKBYFEBXSA-N (2S)-1-[(2S)-2-[[2-[[(2S,3S)-2-[[(2S)-2-acetamido-4-methylpentanoyl]amino]-3-methylpentanoyl]amino]acetyl]amino]-3-methylbutanoyl]-N-methylpyrrolidine-2-carboxamide Chemical group CC(C)C[C@H](NC(C)=O)C(=O)N[C@@H]([C@@H](C)CC)C(=O)NCC(=O)N[C@@H](C(C)C)C(=O)N1CCC[C@H]1C(=O)NC DPUYCSDGMSDKKV-MKBYFEBXSA-N 0.000 description 2
- 102100014001 ABCB1 Human genes 0.000 description 2
- 210000000941 Bile Anatomy 0.000 description 2
- 102000007350 Bone Morphogenetic Proteins Human genes 0.000 description 2
- 108010007726 Bone Morphogenetic Proteins Proteins 0.000 description 2
- 229940112869 Bone morphogenetic proteins Drugs 0.000 description 2
- 102000012422 Collagen Type I Human genes 0.000 description 2
- 108010022452 Collagen Type I Proteins 0.000 description 2
- 102000010970 Connexin Human genes 0.000 description 2
- 108050001175 Connexin Proteins 0.000 description 2
- JYGXADMDTFJGBT-VWUMJDOOSA-N Cortisol Chemical compound O=C1CC[C@]2(C)[C@H]3[C@@H](O)C[C@](C)([C@@](CC4)(O)C(=O)CO)[C@@H]4[C@@H]3CCC2=C1 JYGXADMDTFJGBT-VWUMJDOOSA-N 0.000 description 2
- 229920000045 Dermatan sulfate Polymers 0.000 description 2
- 238000002965 ELISA Methods 0.000 description 2
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 2
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 2
- 210000000981 Epithelium Anatomy 0.000 description 2
- 102100007155 FGF1 Human genes 0.000 description 2
- 101700064732 FGF1 Proteins 0.000 description 2
- 102100000261 FGF10 Human genes 0.000 description 2
- 101700052889 FGF10 Proteins 0.000 description 2
- 102100000360 FGF13 Human genes 0.000 description 2
- YSFTYXKQUONNFY-NQXPEFQPSA-N FGF2 Chemical compound C([C@@H](C(=O)N[C@@H](CCCCN)C(=O)N[C@@H](CC(O)=O)C(=O)N1CCC[C@H]1C(=O)N[C@@H](CCCCN)C(=O)N[C@@H](CCCNC(N)=N)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N[C@@H](CC=1C=CC(O)=CC=1)C(O)=O)NC(=O)[C@H](CC=1N=CNC=1)NC(=O)CNC(=O)[C@H]1N(CCC1)C(=O)[C@H]1N(CCC1)C(=O)[C@H](CC=1C=CC=CC=1)NC(=O)[C@H](C)NC(=O)CNC(=O)[C@H](CO)NC(=O)CNC(=O)CNC(=O)[C@H](CC(O)=O)NC(=O)[C@H](CCC(O)=O)NC(=O)[C@H]1N(CCC1)C(=O)[C@H](CC(C)C)NC(=O)[C@H](C)NC(=O)[C@H]1NCCC1)C1=CC=CC=C1 YSFTYXKQUONNFY-NQXPEFQPSA-N 0.000 description 2
- 102100008658 FN1 Human genes 0.000 description 2
- 108010080379 Fibrin Tissue Adhesive Proteins 0.000 description 2
- 108090000379 Fibroblast Growth Factor 2 Proteins 0.000 description 2
- 102000018997 Growth Hormone Human genes 0.000 description 2
- 108010051696 Growth Hormone Proteins 0.000 description 2
- 102000012355 Integrin beta1 Human genes 0.000 description 2
- 108010022222 Integrin beta1 Proteins 0.000 description 2
- 102000012334 Integrin beta4 Human genes 0.000 description 2
- 108010022238 Integrin beta4 Proteins 0.000 description 2
- 210000000936 Intestines Anatomy 0.000 description 2
- 206010061255 Ischaemia Diseases 0.000 description 2
- 210000004153 Islets of Langerhans Anatomy 0.000 description 2
- 210000002264 Mammary Glands, Animal Anatomy 0.000 description 2
- 210000004293 Mammary Glands, Human Anatomy 0.000 description 2
- 108010047230 Member 1 Subfamily B ATP Binding Cassette Transporter Proteins 0.000 description 2
- 210000004379 Membranes Anatomy 0.000 description 2
- 210000002901 Mesenchymal Stem Cells Anatomy 0.000 description 2
- 102000004140 Oncostatin M Human genes 0.000 description 2
- 108090000630 Oncostatin M Proteins 0.000 description 2
- 108010047386 Pituitary Hormones Proteins 0.000 description 2
- 102000006877 Pituitary Hormones Human genes 0.000 description 2
- 210000002307 Prostate Anatomy 0.000 description 2
- 102100003588 SCTR Human genes 0.000 description 2
- 101700074725 SCTR Proteins 0.000 description 2
- 210000002966 Serum Anatomy 0.000 description 2
- 210000003491 Skin Anatomy 0.000 description 2
- 210000000952 Spleen Anatomy 0.000 description 2
- 210000003954 Umbilical Cord Anatomy 0.000 description 2
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 2
- 239000000853 adhesive Substances 0.000 description 2
- 230000001070 adhesive Effects 0.000 description 2
- 238000005054 agglomeration Methods 0.000 description 2
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 2
- XKRFYHLGVUSROY-UHFFFAOYSA-N argon Chemical compound [Ar] XKRFYHLGVUSROY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- BQRGNLJZBFXNCZ-UHFFFAOYSA-N calcein am Chemical compound O1C(=O)C2=CC=CC=C2C21C1=CC(CN(CC(=O)OCOC(C)=O)CC(=O)OCOC(C)=O)=C(OC(C)=O)C=C1OC1=C2C=C(CN(CC(=O)OCOC(C)=O)CC(=O)OCOC(=O)C)C(OC(C)=O)=C1 BQRGNLJZBFXNCZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000002775 capsule Substances 0.000 description 2
- 235000014633 carbohydrates Nutrition 0.000 description 2
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 description 2
- 238000002659 cell therapy Methods 0.000 description 2
- 210000003850 cellular structures Anatomy 0.000 description 2
- RYGMFSIKBFXOCR-UHFFFAOYSA-N copper Chemical compound [Cu] RYGMFSIKBFXOCR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229910052802 copper Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000010949 copper Substances 0.000 description 2
- 230000000875 corresponding Effects 0.000 description 2
- 229920003013 deoxyribonucleic acid Polymers 0.000 description 2
- 230000001419 dependent Effects 0.000 description 2
- 125000000600 disaccharide group Chemical group 0.000 description 2
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 2
- 229920002549 elastin Polymers 0.000 description 2
- 238000005538 encapsulation Methods 0.000 description 2
- 210000003890 endocrine cells Anatomy 0.000 description 2
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 description 2
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 description 2
- 230000002068 genetic Effects 0.000 description 2
- 102000005396 glutamine synthetase family Human genes 0.000 description 2
- 108020002326 glutamine synthetase family Proteins 0.000 description 2
- 229920000669 heparin Polymers 0.000 description 2
- 229960000890 hydrocortisone Drugs 0.000 description 2
- 239000000960 hypophysis hormone Substances 0.000 description 2
- 238000011065 in-situ storage Methods 0.000 description 2
- 108010044426 integrins Proteins 0.000 description 2
- 102000006495 integrins Human genes 0.000 description 2
- 150000002500 ions Chemical class 0.000 description 2
- 230000000670 limiting Effects 0.000 description 2
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 2
- 239000003550 marker Substances 0.000 description 2
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 2
- 239000002207 metabolite Substances 0.000 description 2
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 2
- 238000006011 modification reaction Methods 0.000 description 2
- 239000003068 molecular probe Substances 0.000 description 2
- 210000000651 myofibroblasts Anatomy 0.000 description 2
- 108010008217 nidogen Proteins 0.000 description 2
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 description 2
- 230000035755 proliferation Effects 0.000 description 2
- 102000005962 receptors Human genes 0.000 description 2
- 108020003175 receptors Proteins 0.000 description 2
- 230000008929 regeneration Effects 0.000 description 2
- 238000011069 regeneration method Methods 0.000 description 2
- 238000010186 staining Methods 0.000 description 2
- 230000004936 stimulating Effects 0.000 description 2
- 150000003467 sulfuric acid derivatives Chemical class 0.000 description 2
- 239000003894 surgical glue Substances 0.000 description 2
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 2
- 150000003573 thiols Chemical group 0.000 description 2
- 210000003556 vascular endothelial cell Anatomy 0.000 description 2
- 229940100198 ALKYLATING AGENTS Drugs 0.000 description 1
- 102100007422 AQP4 Human genes 0.000 description 1
- 206010059512 Apoptosis Diseases 0.000 description 1
- 102000004888 Aquaporin 1 Human genes 0.000 description 1
- 108090001004 Aquaporin 1 Proteins 0.000 description 1
- 108010036280 Aquaporin 4 Proteins 0.000 description 1
- 101700030232 BETA1 Proteins 0.000 description 1
- 240000008371 Bacillus subtilis Species 0.000 description 1
- 229940075615 Bacillus subtilis Drugs 0.000 description 1
- 235000014469 Bacillus subtilis Nutrition 0.000 description 1
- 108010039209 Blood Coagulation Factors Proteins 0.000 description 1
- 102000015081 Blood Coagulation Factors Human genes 0.000 description 1
- 210000001124 Body Fluids Anatomy 0.000 description 1
- 101710005912 CDH2 Proteins 0.000 description 1
- 210000003996 CFU-GM Anatomy 0.000 description 1
- 102000000905 Cadherins Human genes 0.000 description 1
- 108050007957 Cadherins Proteins 0.000 description 1
- 210000003855 Cell Nucleus Anatomy 0.000 description 1
- 229940045110 Chitosan Drugs 0.000 description 1
- 210000002808 Connective Tissue Anatomy 0.000 description 1
- 102000003849 Cytochrome P450 Human genes 0.000 description 1
- 108050008488 Cytochrome P450 Proteins 0.000 description 1
- 210000004292 Cytoskeleton Anatomy 0.000 description 1
- FWBHETKCLVMNFS-UHFFFAOYSA-N DATI Chemical compound C1=CC(C(=N)N)=CC=C1C1=CC2=CC=C(C(N)=N)C=C2N1 FWBHETKCLVMNFS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- AVJBPWGFOQAPRH-FWMKGIEWSA-L Dermatan sulfate Chemical compound CC(=O)N[C@H]1[C@H](O)O[C@H](CO)[C@H](OS([O-])(=O)=O)[C@@H]1O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](C([O-])=O)O1 AVJBPWGFOQAPRH-FWMKGIEWSA-L 0.000 description 1
- 238000008157 ELISA kit Methods 0.000 description 1
- 208000005189 Embolism Diseases 0.000 description 1
- 210000001161 Embryo, Mammalian Anatomy 0.000 description 1
- 229950003499 FIBRIN Drugs 0.000 description 1
- 108010073385 Fibrin Proteins 0.000 description 1
- BWGVNKXGVNDBDI-UHFFFAOYSA-N Fibrin Chemical compound CNC(=O)CNC(=O)CN BWGVNKXGVNDBDI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102000009123 Fibrin Human genes 0.000 description 1
- 241000287828 Gallus gallus Species 0.000 description 1
- 229940014259 Gelatin Drugs 0.000 description 1
- 229960002442 Glucosamine Drugs 0.000 description 1
- RQFCJASXJCIDSX-UUOKFMHZSA-N Guanosine monophosphate Chemical compound C1=2NC(N)=NC(=O)C=2N=CN1[C@@H]1O[C@H](COP(O)(O)=O)[C@@H](O)[C@H]1O RQFCJASXJCIDSX-UUOKFMHZSA-N 0.000 description 1
- 102000003693 Hedgehog Proteins Human genes 0.000 description 1
- 108090000031 Hedgehog Proteins Proteins 0.000 description 1
- 241000711549 Hepacivirus C Species 0.000 description 1
- 229960002897 Heparin Drugs 0.000 description 1
- ZFGMDIBRIDKWMY-PASTXAENSA-N Heparin Chemical compound CC(O)=N[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](COS(O)(=O)=O)O[C@@H]1O[C@@H]1[C@@H](C(O)=O)O[C@@H](O[C@H]2[C@@H]([C@@H](OS(O)(=O)=O)[C@@H](O[C@@H]3[C@@H](OC(O)[C@H](OS(O)(=O)=O)[C@H]3O)C(O)=O)O[C@@H]2O)CS(O)(=O)=O)[C@H](O)[C@H]1O ZFGMDIBRIDKWMY-PASTXAENSA-N 0.000 description 1
- 208000006454 Hepatitis Diseases 0.000 description 1
- 108010001336 Horseradish Peroxidase Proteins 0.000 description 1
- 101700072148 IAA2 Proteins 0.000 description 1
- 206010062016 Immunosuppression Diseases 0.000 description 1
- 206010061218 Inflammation Diseases 0.000 description 1
- 108010030506 Integrin alpha6beta4 Proteins 0.000 description 1
- 229920000288 Keratan sulfate Polymers 0.000 description 1
- 210000003734 Kidney Anatomy 0.000 description 1
- XUJNEKJLAYXESH-REOHCLBHSA-N L-cysteine Chemical compound SC[C@H](N)C(O)=O XUJNEKJLAYXESH-REOHCLBHSA-N 0.000 description 1
- 210000003716 Mesoderm Anatomy 0.000 description 1
- 230000036740 Metabolism Effects 0.000 description 1
- 108090000743 Multidrug resistance protein 3 Proteins 0.000 description 1
- 102000004233 Multidrug resistance protein 3 Human genes 0.000 description 1
- 206010028980 Neoplasm Diseases 0.000 description 1
- 210000004940 Nucleus Anatomy 0.000 description 1
- 101700076891 PAPA Proteins 0.000 description 1
- 101710005767 POLR3C Proteins 0.000 description 1
- 101710041747 PPC1 Proteins 0.000 description 1
- 101710008481 PPC3 Proteins 0.000 description 1
- 101710008513 PPCA Proteins 0.000 description 1
- 101710008475 PPCA1 Proteins 0.000 description 1
- 241001631646 Papillomaviridae Species 0.000 description 1
- 241000237503 Pectinidae Species 0.000 description 1
- 210000004303 Peritoneum Anatomy 0.000 description 1
- NONJJLVGHLVQQM-JHXYUMNGSA-N Pheneticillin Chemical compound N([C@@H]1C(N2[C@H](C(C)(C)S[C@@H]21)C(O)=O)=O)C(=O)C(C)OC1=CC=CC=C1 NONJJLVGHLVQQM-JHXYUMNGSA-N 0.000 description 1
- 108010038512 Platelet-Derived Growth Factor Proteins 0.000 description 1
- 102000010780 Platelet-Derived Growth Factor Human genes 0.000 description 1
- 208000010378 Pulmonary Embolism Diseases 0.000 description 1
- 108010071390 Serum Albumin Proteins 0.000 description 1
- 102000007562 Serum Albumin Human genes 0.000 description 1
- 102000005157 Somatostatin Human genes 0.000 description 1
- 108010056088 Somatostatin Proteins 0.000 description 1
- 229960000553 Somatostatin Drugs 0.000 description 1
- 102000011096 Somatostatin receptor family Human genes 0.000 description 1
- 108050001286 Somatostatin receptor family Proteins 0.000 description 1
- 241000187747 Streptomyces Species 0.000 description 1
- 238000000692 Student's t-test Methods 0.000 description 1
- 210000001179 Synovial Fluid Anatomy 0.000 description 1
- 210000004291 Uterus Anatomy 0.000 description 1
- 102100009661 VTN Human genes 0.000 description 1
- 206010047461 Viral infection Diseases 0.000 description 1
- 208000001756 Virus Disease Diseases 0.000 description 1
- 210000004127 Vitreous Body Anatomy 0.000 description 1
- 108010031318 Vitronectin Proteins 0.000 description 1
- PNNCWTXUWKENPE-UHFFFAOYSA-N [N].NC(N)=O Chemical compound [N].NC(N)=O PNNCWTXUWKENPE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000003187 abdominal Effects 0.000 description 1
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 description 1
- 101710039743 acu-6 Proteins 0.000 description 1
- 238000004026 adhesive bonding Methods 0.000 description 1
- 238000004220 aggregation Methods 0.000 description 1
- 239000002168 alkylating agent Substances 0.000 description 1
- 230000003321 amplification Effects 0.000 description 1
- 230000033115 angiogenesis Effects 0.000 description 1
- 238000010171 animal model Methods 0.000 description 1
- 102000004965 antibodies Human genes 0.000 description 1
- 108090001123 antibodies Proteins 0.000 description 1
- 230000001640 apoptogenic Effects 0.000 description 1
- 230000006907 apoptotic process Effects 0.000 description 1
- 229910052786 argon Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000003114 blood coagulation factor Substances 0.000 description 1
- 239000010839 body fluid Substances 0.000 description 1
- 210000004271 bone marrow stromal cells Anatomy 0.000 description 1
- WTLYWPNEAZECAM-UHFFFAOYSA-N but-1-ene-2,3-diol Chemical compound CC(O)C(O)=C WTLYWPNEAZECAM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 201000011510 cancer Diseases 0.000 description 1
- 108010015046 cell aggregation factors Proteins 0.000 description 1
- 230000011712 cell development Effects 0.000 description 1
- 230000032823 cell division Effects 0.000 description 1
- 230000011748 cell maturation Effects 0.000 description 1
- 230000003833 cell viability Effects 0.000 description 1
- 238000010382 chemical cross-linking Methods 0.000 description 1
- 230000015271 coagulation Effects 0.000 description 1
- 238000005345 coagulation Methods 0.000 description 1
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 1
- 238000004624 confocal microscopy Methods 0.000 description 1
- 230000001276 controlling effect Effects 0.000 description 1
- 235000018417 cysteine Nutrition 0.000 description 1
- 201000003883 cystic fibrosis Diseases 0.000 description 1
- 230000021953 cytokinesis Effects 0.000 description 1
- 230000034994 death Effects 0.000 description 1
- 230000003247 decreasing Effects 0.000 description 1
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 1
- 201000009910 diseases by infectious agent Diseases 0.000 description 1
- 238000004090 dissolution Methods 0.000 description 1
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 1
- 229940079593 drugs Drugs 0.000 description 1
- 230000000467 effect on cytodieresis Effects 0.000 description 1
- 210000002257 embryonic structures Anatomy 0.000 description 1
- 239000003623 enhancer Substances 0.000 description 1
- 210000002919 epithelial cells Anatomy 0.000 description 1
- 238000011067 equilibration Methods 0.000 description 1
- 230000005284 excitation Effects 0.000 description 1
- 230000002349 favourable Effects 0.000 description 1
- 230000001605 fetal Effects 0.000 description 1
- 210000002950 fibroblast Anatomy 0.000 description 1
- GNBHRKFJIUUOQI-UHFFFAOYSA-N fluorescein Chemical compound O1C(=O)C2=CC=CC=C2C21C1=CC=C(O)C=C1OC1=CC(O)=CC=C21 GNBHRKFJIUUOQI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000000799 fluorescence microscopy Methods 0.000 description 1
- 239000007850 fluorescent dye Substances 0.000 description 1
- 108091006031 fluorescent proteins Proteins 0.000 description 1
- 102000034387 fluorescent proteins Human genes 0.000 description 1
- MURGITYSBWUQTI-UHFFFAOYSA-N fluorescin Chemical compound OC(=O)C1=CC=CC=C1C1C2=CC=C(O)C=C2OC2=CC(O)=CC=C21 MURGITYSBWUQTI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000006062 fragmentation reaction Methods 0.000 description 1
- 230000004110 gluconeogenesis Effects 0.000 description 1
- MSWZFWKMSRAUBD-IVMDWMLBSA-N glucosamine group Chemical group OC1[C@H](N)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O1)CO MSWZFWKMSRAUBD-IVMDWMLBSA-N 0.000 description 1
- 150000004676 glycans Chemical class 0.000 description 1
- 150000002337 glycosamines Chemical class 0.000 description 1
- 235000013928 guanylic acid Nutrition 0.000 description 1
- 230000002440 hepatic Effects 0.000 description 1
- 231100000283 hepatitis Toxicity 0.000 description 1
- 238000010562 histological examination Methods 0.000 description 1
- 230000036571 hydration Effects 0.000 description 1
- 238000006703 hydration reaction Methods 0.000 description 1
- 230000002706 hydrostatic Effects 0.000 description 1
- 230000002055 immunohistochemical Effects 0.000 description 1
- 230000001506 immunosuppresive Effects 0.000 description 1
- 239000007943 implant Substances 0.000 description 1
- 230000004054 inflammatory process Effects 0.000 description 1
- 229910010272 inorganic material Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000011147 inorganic material Substances 0.000 description 1
- 239000002198 insoluble material Substances 0.000 description 1
- 230000003993 interaction Effects 0.000 description 1
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 1
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 1
- 201000004044 liver cirrhosis Diseases 0.000 description 1
- 230000031142 liver development Effects 0.000 description 1
- 230000014759 maintenance of location Effects 0.000 description 1
- 230000001404 mediated Effects 0.000 description 1
- 230000004060 metabolic process Effects 0.000 description 1
- 230000035786 metabolism Effects 0.000 description 1
- 230000000051 modifying Effects 0.000 description 1
- 210000002894 multi-fate stem cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000003199 nucleic acid amplification method Methods 0.000 description 1
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 description 1
- MYMOFIZGZYHOMD-UHFFFAOYSA-N oxygen Chemical compound O=O MYMOFIZGZYHOMD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 description 1
- 210000004923 pancreatic tissues Anatomy 0.000 description 1
- 230000001575 pathological Effects 0.000 description 1
- 230000000149 penetrating Effects 0.000 description 1
- SCKXCAADGDQQCS-UHFFFAOYSA-N performic acid Chemical compound OOC=O SCKXCAADGDQQCS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000011505 plaster Substances 0.000 description 1
- 238000007747 plating Methods 0.000 description 1
- 238000003752 polymerase chain reaction Methods 0.000 description 1
- 230000003334 potential Effects 0.000 description 1
- 239000000047 product Substances 0.000 description 1
- NGVNAUIRSOXAJB-UHFFFAOYSA-N prop-1-ene-1,2-diol Chemical compound CC(O)=CO NGVNAUIRSOXAJB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000001711 protein immunostaining Methods 0.000 description 1
- 238000003908 quality control method Methods 0.000 description 1
- 238000003753 real-time PCR Methods 0.000 description 1
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 1
- 235000020637 scallop Nutrition 0.000 description 1
- 230000037390 scarring Effects 0.000 description 1
- 230000019491 signal transduction Effects 0.000 description 1
- 230000001743 silencing Effects 0.000 description 1
- KEAYESYHFKHZAL-UHFFFAOYSA-N sodium Chemical compound [Na] KEAYESYHFKHZAL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000011734 sodium Substances 0.000 description 1
- 229910052708 sodium Inorganic materials 0.000 description 1
- NHXLMOGPVYXJNR-ATOGVRKGSA-N somatostatin Chemical compound C([C@H]1C(=O)N[C@H](C(N[C@@H](CO)C(=O)N[C@@H](CSSC[C@@H](C(=O)N[C@@H](CCCCN)C(=O)N[C@@H](CC(N)=O)C(=O)N[C@@H](CC=2C=CC=CC=2)C(=O)N[C@@H](CC=2C=CC=CC=2)C(=O)N[C@@H](CC=2C3=CC=CC=C3NC=2)C(=O)N[C@@H](CCCCN)C(=O)N[C@H](C(=O)N1)[C@@H](C)O)NC(=O)CNC(=O)[C@H](C)N)C(O)=O)=O)[C@H](O)C)C1=CC=CC=C1 NHXLMOGPVYXJNR-ATOGVRKGSA-N 0.000 description 1
- 238000011105 stabilization Methods 0.000 description 1
- 230000003068 static Effects 0.000 description 1
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 1
- 239000003774 sulfhydryl reagent Substances 0.000 description 1
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 1
- 230000002195 synergetic Effects 0.000 description 1
- 239000002562 thickening agent Substances 0.000 description 1
- 125000003396 thiol group Chemical group [H]S* 0.000 description 1
- 230000036964 tight binding Effects 0.000 description 1
- 230000035897 transcription Effects 0.000 description 1
- 238000000844 transformation Methods 0.000 description 1
- 230000032258 transport Effects 0.000 description 1
- 230000017613 viral reproduction Effects 0.000 description 1
Images
Abstract
Группа изобретений относится к медицине и касается лечения заболеваний печени. Предложены варианты способа лечения и тканевый трансплантат для этого. При этом получают нормальные клетки печени или желчных протоков от донора. Эти клетки печени представляют собой стволовые клетки, коммитированные клетки-предшественники или зрелые клетки. Указанные клетки комбинируют с одним или несколькими ангиобластами, эндотелиальными клетками-предшественниками, клетками-предшественниками звездчатых клеток и одним или несколькими гель-образующими биоматериалами для образования смеси. Эту смесь (тканевый трансплантат) вводят на поверхность или внутрь печени субъекта. Предложен также способ криоконсервирования указанной смеси клеток. Изобретения обеспечивают эффективную дифференциацию клеток в соответствующий тип клетки, облегчают in vivo локализацию клеток при введении в ткань, имитируя сложность естественного микроокружения с минимальным числом компонент, способствуя успешному приживлению трансплантируемых клеток, увеличению объема и затем частичному или полному восстановлению печени. 4 н. и 11 з.п. ф-лы, 6 пр., 3 табл., 15 ил.
Description
Область техники, к которой относится изобретение
Настоящее изобретение направлено, в основном, на область имплантации ткани. Более конкретно, изобретение касается имплантации клеток.
Уровень техники
Согласно современным методикам при терапии клеточной трансплантацией донорские клетки вводят в организм хозяина через сосудистые пути, осуществляя стратегию, моделированную после гематопоэтической терапии. Однако терапия гематопоэтическими клетками осуществляется относительно легко, поскольку эти клетки находятся в суспензии и имеют врожденные свойства, которые поддерживают их возвращение к специфическим тканям-мишеням. Таким образом, многие тысячи исследований трансплантации субпопуляций гематопоэтических клеток имеют мало отношения к трансплантации клеток из плотных органов, таких как кожа или внутренние органы (например, печень, легкие, сердце). Действительно, когда клетки из плотных органов трансплантируют через сосудистые пути, их эффекты ослаблены из-за неэффективной имплантации, плохой приживаемости клеток и предрасположенности к образованию опасной для жизни эмболии. Следовательно, заболевания большинства плотных органов должны быть излечимы в будущем настолько успешно, насколько это возможно, при попытках использовать другие подходы к трансплантации.
Таким образом, настоящее изобретение направлено на способы трансплантации клеток из плотных органов по протоколам пересадки с помощью различных доступных стратегий.
Раскрытие изобретения
В одном воплощении настоящего изобретения предложен способ имплантации ткани внутреннего органа субъекту, у которого имеется повреждение или дисфункция внутреннего органа. Способ включает: (а) получение изолированных клеток внутреннего органа донора; (b) включение клеток в биоматериалы, содержащие компоненты внеклеточного матрикса, в некоторых случаях, в смеси с питательной средой и/или сигнальными молекулами (факторами роста, цитокинами, гормонами) и с) введение клеток в орган-мишень, где смесь клеток и гелей биоматериалов или загустителей помещают во внутренний орган или на его поверхность или в тот и другой отдел in vivo. В качестве внутренних органов могут служить печень, желчные протоки, поджелудочная железа, легкие, кишечник, щитовидная железа, простата, молочная железа, матка или сердце. Подходящие сигнальные молекулы - факторы роста и цитокины, которые могут включать, например, эпидермальный фактор роста (EGF), фактор роста гепатоцитов (HGF), фактор роста из клеток стромы (SGF), ретиноиды (например, витамин А), фактор роста фибробластов (FGF, например, FGF2, FGF10), фактор роста эндотелиальных клеток сосудов (VEGF), инсулиноподобный фактор роста I (IGF-I), инсулиноподобный фактор роста II (IGF-II), онкостатин М, фактор ингибирования лейкемии (LIF), трансферрин, инсулин, глюкокортикоиды, (например, гидрокортизон), гормон роста, любой из гипофизарных гормонов (например, гормон, стимулирующий фолликулы (FSH)), эстрогены, андрогены и тироидные гомоны (например, Т3 или Т4).
Для лечения поврежденных или не работающих органов донор клеток может не совпадать с реципиентом (аллотрансплантат) или может быть субъектом (аутологичным) с повреждением или дисфункцией внутреннего органа, обеспечивая получение нормальных клеток из той части внутреннего органа, которая не подвергнута повреждению или дисфункции. С целью создания модельной системы для исследования заболевания, донорские клетки могут иметь патологию и быть трансплантированными на/в нормальную ткань экспериментального животного
Клетки могут содержать стволовые клетки, зрелые клетки, ангиобласты, эндотелий, стволовые клетки мезенхимы (из любого источника), звездчатые клетки, фибробласты или их смеси. Кроме того, биоматериалы могут включать коллагены адгезионные молекулы (ламинины, фибронектины, нидогены), эластины, протеогликаны, гиалуронаны (НА), гликозаминогликановые цепи, хитозан, алгинат и синтетические, биодеградируемые и биосовместимые полимеры. Одним из предпочтительных материалов являются гиалуронаны.
Выделенные клетки внутреннего органа могут быть загущены ex vivo в биоматериалах перед введением клеток хозяину или, иначе, введены в виде жидкой субстанции, предоставив им загустевать in vivo. Предпочтительно, клетки вводят в поврежденную или дисфункциональную ткань, или вблизи нее, и введение может осуществляться путем инъекции, биодеградируемого покрытия или губки.
В другом воплощении настоящего изобретения предлагается способ восстановления ткани внутреннего органа у субъекта, страдающего от повреждения или дисфункции внутреннего органа. Способ включает (а) получение нормальных клеток внутреннего органа у донора; (b) соединение клеток с одним или несколькими биоматериалами; (с) в некоторых случаях соединение суспензии клеток с сигнальными молекулами (факторами роста, цитокинами), дополнительными клетками или их комбинациями; и (d) введение смеси (b) в организм субъекта, где смесь становится нерастворимой и образует трансплантат снаружи или внутри внутреннего органа in vivo.
Еще одно воплощение настоящего изобретения предлагает способ локализации клеток внутреннего органа на поверхности, во внутренней части или в обеих частях. внутреннего органа-мишени, причем способ включает введение содержащего клетки препарата внутреннего органа и раствора одного или нескольких предшественников, образующих гидрогель, в присутствии эффективного количества кросс-линкера на поверхность внутреннего органа-мишени, в его внутреннюю часть или в обе части внутреннего органа-мишени in vivo, где препарат образует гидрогель, содержащий клетки внутреннего органа на поверхности, во внутренней части или в обеих частях внутреннего органа-мишени. Кроме того смесь содержит питательную среду, молекулы внеклеточного матрикса и сигнальные молекулы. Загустевшая смесь, такая как гидрогель, создает трансплантат во внутреннем органе как на его поверхности, так и в его внутренней части или в обеих частях.
Клетки могут быть локализованы за время, по меньшей мере, равное двенадцати часам, по меньшей мере, двадцати четырем часам, по меньшей мере, приблизительно сорока восьми часам или по меньшей мере, приблизительно 72 часам в/на внутреннем органе-мишени, который может быть печенью, поджелудочной железой, желчными протоками, легкими, щитовидной железой, кишечником, молочной железой, простатой, костью или почкой. При лечении пациентов донорские клетки внутренних органов не должны быть поврежденными клетками (например, опухолевыми или раковыми клетками). Однако поврежденные клетки могут участвовать в трансплантате при попытках создать экспериментальную модельную систему заболевания.
Биоматериалы, которые могут образовывать гидрогели или частично нерастворимый комплекс, могут включать гликозаминогликаны, протеогликаны, коллагены, ламинины, нидоген, гиалуронаны, модифицированный тиолом гиалуронат натрия, их денатурированные формы (например, желатин) или их комбинации. Триггером загустевания диакрилат может быть любой фактор, обеспечивающий поперечное связывание компонент матрикса или при возможности образование гелей. Кросс-линкер может содержать диакрилат полиэтилен гликоля или его производные, содержащие дисульфид. Предпочтительно нерастворимый комплекс клеток и биоматериалов обладает вязкостью в интервале от приблизительно 0,1 до приблизительно 100 1 сПа, предпочтительно от приблизительно 1 до е 10 kПа, более предпочтительно, от приблизительно 2 до приблизительно 4 kПa, и наиболее предпочтительно, обладает жесткостью от приблизительно 11 до приблизительно 3500 Па.
В еще одном воплощении настоящего изобретения предложен способ криоконсервирования клеток, включающий: (а) получение изолированных клеток; (b) соединение клеток с гель-образующими биоматериалами и, в некоторых случаях, одну или несколько изотонических базальных сред, сигнальных молекул (цитокинов, факторов роста, гормонов), и компонентов внеклеточного матрикса (например, гиалуронанов); и замораживание клеточной смеси, с целью ее хранения в морозильной камере при температурах от -90°С или -180°С. Изотоническая среда может быть CS10 (biolife) или эквивалентным изотоническим буфером для криоконсервирования. Сигнальные молекулы могут быть факторами роста и цитокинами и включают, например, эпидермальный фактор роста (EGF), фактор роста гепатоцитов (HGF), фактор роста из клеток стромы (SGF), ретиноиды (например, витамин А), фактор роста фибробластов (FGF, например, FGF2, FGF10), фактор роста эндотелиальных клеток сосудов (VEGF), инсулиноподобный фактор роста I (IGF-I), инсулиноподобный фактор роста II (IGF-II), онкостатин М, фактор ингибирования лейкемии (LIF), трансферрин, инсулин, глюкокортикоиды, (например, гидрокортизон), гормон роста, любой из гормонов гипофиза (например, гормон, стимулирующий фолликулы (FSH)), эстрогены, андрогены и тироидные гормоны (например, Т3 или Т4). Внеклеточные матриксные компоненты могут быть, гиалуронанами, коллагенами, адгезионными молекулами (ламининами, фибронектинами), протеогликанами, хитозаном, алгинатом и синтетическими, биодеградируемыми и биосовместимыми полимерами или их комбинациями.
Для криоконсервирования смесей клеток и биоматериалов их можно комбинировать с (i) криоконсервантом, выбранным из группы, состоящей из диметил сульфоксида (DMSO), глицерина, этилен гликоля, этилендиолэталендиола, 1,2-пропаендиола, 2,3-бутендиола, формамида, N-метилформамида, 3-метокси-1,2-пропандиола по отдельности и их комбинаций и/или (ii) добавки, выбранной из группы, состоящей из сахара, глицина, аланина, поливинилпирролидона, пирувата, ингибитора апоптоза, кальция, лактобионата, раффинозы, дексаметозона, восстановленных ионов натрия, холина, антиоксидантов, гормонов или их комбинации, а антиоксидантами могут быть витамин Е, витамин А, бета-каротин или их комбинации.
Краткое описание чертежей
Фигура 1 - схематическое представление способов по данному изобретению трансплантации клеток в различные ткани-мишени. Эти способы включают имплантируемые трансплантаты, инъектируемые трансплантаты и трансплантаты, которые могут быть прикреплены к поверхности органа-мишени, («приклеенные трансплантаты»).
Фигура 2 предлагает реологические измерения на гиалуронанах, приготовленных с помощью среды Kubota Medium (KM-HA). а) Модули сдвига |G*| KM-HAs, измерение механической жесткости геля остаются постоянными, в то время как вязкоэластичное демпфирование |G''/G'|, измерение деформации под действием внешней силы, пренебрежимо мало в интервале частот действующих сил 0,1 Гц - 10 Гц для каждой из исследованных композиций; значения погрешностей: 95% доверительный интервал измерений при каждой исследованной частоте, b) KM-HA демонстрируют сдвиговое утоньшение, то есть уменьшение вязкости при увеличении частот действующих сил, в экспериментальном интервале скоростей сдвига 0,6 1/сек - 60 1/сек [частоты действующих сил 0,1 Гц - 10 Гц]; верхний и нижний пределы: основанный на модели степенной зависимости 95% доверительный интервал (правило предположения Cox-Merz), R2>0.993 для всех композиций в интервале скоростей сдвига 0,3 1/сек - 30 1/сек [частоты действующих сил 0,05 Гц - 5 Гц]). Реологические измерения выполняли только по обозначенным буквами техникам, показанным в таблице 3.
Фигура 3 демонстрирует размер, морфологию и результаты пролиферации стволовых клеток печени человека (hHpSCs) в KM-HA. Колонии hHpSCs приобретают трехмерную конфигурацию и демонстрируют а) агломерацию сфероидного типа (внизу слева) или складки (в середине, наверху справа) при посеве на KM-HA [рисунки в рамке: 900 мкм × 1200 мкм]. Конфокальная микроскопия на гистологических срезах hHpSC, засеянных на KM-HA, через 1 неделю культивирования обнаруживает клеточную морфологию смешанных фенотипов с размерами клеток b) приблизительно 7 мкм, или с) до 10-15 мкм среди паренхиматозных клеток [клеточное ядро при контрастном окрашивании DAPI синее, для b) и с) ядро ЕрСАМ красное, для b) CD44, или с) CDH1 зеленое; рисунки в рамке b) и с): 150 мкм × 150 мкм; выделенные белым участки изображения на b) и с): 15 мкм × 15 мкм]. d) Жизнеспособность hHpSC в KM-HA, измеренная с помощью метаболического восстановления AlamarBlue, демонстрирует функциональную репарацию и пролиферацию в KM-HA гидрогелях с 1,6% CMHA-S и 0,4% PEGDA (вариант среды Е, таблица 3) в течение 1 недели культивирования;
Измерения восстановления AlamarBlue после 24 часов инкубации нормировали по отношению к измерениям через 2-3 дня после посева; результаты представлены как среднее ± стандартная ошибка.
Фигура 4 демонстрирует экспрессию белков с помощью маркеров дифференцирования в среде KM-HA, засеянной hHpSC после 1 недели культивирования.
В колониях hHpSC наблюдаются различные уровни экспрессии маркеров дифференцирования в hHpSC при уровне трансляции, зависящем от свойств КМ-НА. Скорости метаболической секреции AFP человека коррелируют с экспрессией mRNA в культурах КМ-НА. Экспрессия NCAM положительна во всех КМ-НА, а экспрессия CD44 самая высокая в KM-HAs с содержанием CMHA-S 1,2% или меньше (обозначенные буквами варианты сред. А, В, С, D; таблица 3). Экспрессия CDH1 положительна для КМ-НА гидрогелей с |G*|<200 Па и отрицательна для |G*|>200 Па. Данные по скорости секреции AFP человека приведены как среднее ± стандартная ошибка. Иммуногистохимическое окрашивание ЕрСАМ, NCAM, CD44 и CDH1 выполнено на 15 -20 мкм срезах (~2 до 3 hHpSC толщиной; hHpSC диаметром: 5-7 мкм) и проявлено флуоресцентной микроскопией [изображения в рамках: 100 мкм × 100 мкм]. КМ-НА композиции, упорядоченные относительно роста жесткости (|G*|=25 Pa for A, |G*|=73 Па для В, |G*|=140 Па для Е, |G*|=165 Па для С, |G*|=220 Па для D, и |G*|=520 Па для F).
Фигура 5 представляет" уровни экспрессии генов, полученные с помощью полимеразной цепной реакции qRT-PCR для маркеров предшественников гепатоцитов hHpSC, выращенных на КМ-НА после 1 недели культивирования. Сравнение между уровнями экспрессии mRNA маркеров для hHpSC и их непосредственных потомков hHBs (гепатоспецифических AFP, ЕрСАМ, NCAM, CD44 и CDH1) показывают, что выращенные на КМ-НА hHpSC быстро приобретают hHB характеристики на уровне транскрипции в пассивной культуре в течение 1 недели. Диапазоны экспрессии в hHpSC и в свежевыделенных hHBs для CD44 сравнимы; Уровни экспрессии для остающихся маркеров статистически различаются, причем уровень в ЕрСАМ уменьшается приблизительно вдвое, в CDH1 уменьшается втрое, наблюдается NCAM сайленсинг и обогащение AFP при дифференцировании hHpSC в hHB. Во всех культурах на КМ-НА, средние уровни экспрессии засеянных hHpSC относительно AFP, NCAM и CDH1 сдвигались наружу из диапазона hHpSC по направлению к диапазону hHB, в то время как экспрессия ЕрСАМ полностью возрастала после 1 недели культивирования. Варианты сред КМ-НА, расположенные в порядке возрастания жесткости (|G*|=25 Па для A, |G*|=73 Па для В, |G*|=140 Па для Е, |G*|=165 Па для С, |G*|=220 Па для D, и |G*|=520 Па для F). Значения экспрессии (среднее ± стандартная ошибка) нормировали относительно GAPDH. Измерения в обозначенных буквами КМ-НА вариантах сред, (таблица 3) сравнивали с колониями hHpSC (зелеными) и свежевыделенными hHB (красными) для определения значимости отличий (t-test Стьюдента).
Фигура 6 представляет схему одного из воплощений разработанных способов криоконсервирования и оттаивания.
Фигура 7 показывает результаты, полученные на основе in vivo изображений в реальном времени люминесцентных сигналов от люциферин-производящих клеток, как при трансплантации гиалуронанами, так и при инъекции клеточной суспензии.
Фигура 8 демонстрирует сывороточный альбумин человека на 7 день после трансплантации в трансплантате по сравнению с клеточной суспензии в здоровой и поврежденной СС14 моделях печени.
Фигура 9 демонстрирует экспрессию генов маркеров фенотипа. Уровни экспрессии стволовых клеток печени нормируют на экспрессию GAPDH, и изменения сгибов нормируют на начальную экспрессию в колониях. * обозначает р<0,05% значимость различий между экспериментальными условиями и начальной экспрессией в колониях. ** обозначает р<0,05% значимость различий между экспериментальными условиями и начальной экспрессией в колониях, а также значимость различий между значениями экспрессии в двух экспериментальных условиях.
Фигура 10 представляет результаты функциональных исследований функции печени во времени. А) альбумин. В) Трансферрин, и С) Мочевина в трехмерной культуре гиалуронана во времени для разных уровней, нормализованных на клетку.
Фигура 11 представляет результаты изучения механических характеристик КМ-НА. а) Жесткость КМ-НА контролируема и зависит от содержания CMHA-S и PEGDA. Средний модуль сдвига |G*| возрастает экспоненциально с увеличением содержания CMHA-S и PEGDA, осуществляя прямой контроль конечных механических свойств КМ-HAs в течение начального смешивания гидрогеля; реологические измерения выполняли только в обозначенных буквами вариантах сред, показанных в таблице 3. Величина ошибки: ±1 стандартное отклонение для измерений в интервале частот возмущающей силы 0,05 Hz - 5 Hz. b) Диффузия в КМ-НА. Измерения коэффициента диффузии в КМ-НА с помощью FRAP (70 kDa меченого флуоресцеином декстрана) не отличались существенно от таковой в среде Kubota; измерения коэффициента диффузии, выполненные на всех вариантах сред, показаны в таблице 3. Величина ошибки: 95% доверительный интервал измерений.
Фигура 12 демонстрирует секрецию человеческого флуоресцентного белка AFP, альбумина и мочевины клетками hHpSC, культивированных в КМ-НА. Колонии hHpSC в КМ-НА проявляют некоторые функции печени с ростом концентраций человеческих AFP и альбумина, найденных в культуральной среде (КМ) и уравновешении синтеза мочевины еа 7-й день от начала культивирования. Скорости метаболической секреции человеческого AFP, человеческого альбумина и мочевины к 7-му дню от начала культивирования в вариантах сред КМ-НА различны с минимальными скоростями для AFP, альбумина, сниженным синтезом мочевины в KM-HAs с 1.6% CMHA-S и 0.4% PEGDA (вариант среды Е, таблица 3). Левая колонка: концентрация метаболита в культуральной среде, собираемой ежедневно после 24 часов инкубации в каждой из обозначенных буквами сред (таблица 3). Правая колонка: скорость секреции метаболитной массы на колонию hHpSC в культуральной среде после 24-часов инкубации; полную метаболитную массу в среде нормировали на количество функциональных колоний hHpSC в каждом интервале, рассчитанном путем изучения выживания по восстановлению AlamarBlue (приблизительное число колоний, в образце: 12). Все приведенные данные - среднее ± стандартная ошибка.
Фигура 13 показывает, что программа замораживания с контролируемой скоростью минимизирует фазовую энтропию жидкость-лед, предотвращая повреждение образующимся внутри льдом и позволяя повторное замораживание. А) График показывает связь температуры в камере и температуры образца (10% DMSO). В) программа замораживания, используемая для системы Cryomed 1010.
Фигура 14 демонстрирует (А) % выживаемости криоконсервированных клеток эмбриональной печени после оттаивания и (В) число колоний после 3 недель культивирования для разных условий, нормированное на свежие образцы. Результаты приведены как среднее ± стандартная ошибка среднего. КМ = Среда Kubota с 10% DMSO и 10% FBS. CS10 = криоконсервант, CS10+sup - криоконсервант 10 с добавлением 10М. 0,05% и 0,10% относятся к % добавленной гиалуроновой кислоты в каждом образце.
Фигура 15 демонстрирует относительную экспрессию mRNA, нормированную на экспрессию GAPDH. Среднее ± стандартная ошибка среднего. Достоверность отличия от свежих образцов *р>0,05. КМ = среда Kubota с 10% DMSO и 10% FBS. CS10 = криоконсервант, CS10+sup = криоконсервант 10 с добавлением КМ. 0,05% and 0,10% относятся к % добавленной гиалуроновой кислоты в каждом образце.
Осуществление изобретения
В настоящее время пересадку клеток, включая клетки, полученные из плотных органов, обычно выполняют через сосудистый путь, и результаты, как правило, поставляют огромное количество свидетельств неэффективной трансплантации, обычно порядка 20-30% для зрелых клеток и менее 5% для стволовых клеток. Различная приживаемость связана с их размерами, которые в печени малы у стволовых клеток (обычно меньше 10 мкм) и больше у зрелых клеток (обычно >18 мкм). Наши исследования подтвердили это наблюдение. Например, в одном исследовании стволовые клетки печени человека (hHpSC) и гепатобласты (hHBs) вводили мышам с иммунной недостаточностью путем инъекции клеток в селезенку. Поскольку селезенка непосредственно связана с печенью, клетки переносятся в печень, где они, как ожидается, приживаются. Однако большая часть клеток погибала до приживания или формировала агломераты не в тех тканях, которые предназначались быть тканью-мишенью (эктопические области).
Даже в тех случаях, когда клетки действительно выполняют свое предназначение, их превращению в полностью функциональные клетки препятствует отсутствие васкуляризации, отсутствие роста (при трансплантации зрелых клеток) и высоко иммуногенные свойства клеток при использовании зрелых клеток и необходимость долговременной иммуносупрессии. Другие препятствия включают поиск источников, высококачественных клеток клинического уровня и необходимость использовать свежевыделенные клетки из-за сложностей с криоконсервированием.
Помимо отмеченных неэффективности и сложностей трансплантация клеток из плотных органов через сосудистый путь, опасна. На поверхности клеток из плотных органов находятся молекулы (адгезивные клеточные молекулы, белки жесткой связи), которые заставляют клетки быстро связываться друг с другом и усиливать агрегацию. Этот процесс образования клеточных сгустков может привести к угрожающей жизни легочной эмболии.
В связи с некоторыми из этих препятствий и осложнений настоящее изобретение направлено на разработку техники трансплантации, включающей доставку трансплантатируемых клеток в виде агрегатов, прикрепленных внутри или к поверхности подложек, которые могут быть помещены в поврежденную ткань для обеспечения необходимой пролиферации и трансплантации. Таким образом, данное изобретение учитывает не только тип трансплантатируемых клеток, но также тип клеток в комбинации с соответствующими биоматериалами и способом пересадки для наиболее эффективной и успешной трансплантационной терапии. Техники трансплантации по настоящему изобретению применимы для терапевтического использования у больных и предлагают альтернативный способ лечения в области регенеративной медицины для регенерации поврежденной или дисфункциональной ткани.
Источники клеток
Согласно данному изобретению необходимые клеточные популяции, могут быть получены непосредственно от донора, имеющего «нормальную», «здоровую» ткань и/или клетки, имея в виду любую ткань или любые клетки, не пораженную/ые болезнью или дисфункцией. Разумеется, такая клеточная популяция может быть получена от лица, страдающего от поврежденного или не функционирующего органа или даже от части органа, находящегося в таком состоянии. Клетки могут быть получены из любой подходящей ткани млекопитающего независимо от возраста, включая эмбриональную, ткань новорожденного, ребенка и взрослого. Если требуется создать экспериментальные модели болезни, можно использовать в трансплантатах поврежденные клетки, которые должны быть пересажены соответствующему экспериментальному животному.
Более конкретно, клетки для различных видов терапии могут быть получены из «популяций клеточных поколений» на основании терапевтических потребностей. Например, «зрелые» клетки на поздних стадиях развития могут быть предпочтительными в тех случаях, когда имеется необходимость быстрого получения функций, проявляемых только на поздних стадиях развития клеток, или если реципиент содержит зависящий от стадии развития вирус, инфицирующий предпочтительно стволовые клетки и/или клетки-предшественники, что происходит в случае гепатита С или вируса папилломы. В любом случае» клетки-предшественники» могут использоваться для стабилизации любого из клеточных поколений соответствующих тканей.
Обсуждение популяций клеточной линии клеток печени и способа их выделения приведено в патентных заявках US NN 11/560,049 и 12/213100, описание которой полностью включено в данную заявку в виде ссылки. Вкратце, внутри печени имеется по меньшей мере восемь поколений клеток. Ниже описаны эти поколения и приведены относящиеся к ним краткие комментарии:
Этап созревания (Поколение) 1: Стволовые клетки печени человека (hHpSC) являются мультипотентными клетками, локализованными в дуктальных пластах печени эмбриона и новорожденного и в каналах Геринга печени детей и взрослых. Эти клетки обычно имеют от 7 до 10 мкм в диаметре и характеризуются высокими значениями отношения ядро/цитоплазма. Они устойчивы к ишемии, могут быть найдены в кадаверной печени более чем через 48 часов, после систолической смерти и образуют колонии hHpSC, способные дифференцироваться до зрелых клеток. Эти клетки составляют приблизительно 0,5-2% паренхимы печени доноров всех возрастов.
Этап созревания (Поколение) 2: Гепатобласты (hHB) являются непосредственными потомками hHpSC и вероятными клетками-усилителями печени. Они локализованы вне соответствующей ниши стволовых клеток. Эти клетки имеют больший размер (10-12 мкм), содержат более высокие количества цитоплазмы и распределены т vivo по всей паренхиме в печени эмбрионов и новорожденных и вблизи концов или по соседству с каналами Геринга в печени детей и взрослых. С возрастом число гспатобластов уменьшается до 0,01% паренхиматозных клеток в постнатальной печени. Было показано, что эта популяция клеток увеличивается во время регенеративных процессов, особенно связанных с определенными заболеваниями, такими как цирроз. Гепатобласты созревают, превращаясь либо в гепатоциты (Н), либо в холангиоциты, называемые также желчным эпителием (В):
Этапы созревания (Поколения) 3Н и 3В: В печени обнаружены детерминированные (унипотентные) предшественники гепатоцитов (3Н) и предшественники желчных холангиоцитов (3В). Эти унипотентные предшественники превращаются только в один тип взрослых клеток и больше не экспрессируют гены стволовых клеток (например, для них характерен низкий уровень или отсутствие экспрессии CD 133/1, белков хеджехог (Sonic/Indian), но они экспрессируют гены, типичные для клеток в эмбриональных тканях.
Этапы созревания (Поколения) 4Н и 4В: Перипортальные взрослые паренхиматические клетки включают относительно мелкие гепатоциты (4Н) и внутрипеченочный желчный эпителий (4В). Гепатоциты диплоидны, имеют приблизительно 18 мкм в диаметре и экспрессируют множество факторов/ферментов, связанных с глюконеогенезом, такими как РЕРСК, коннексины 26 и 32.
Холангиоциты этого поколения (4В) диплоидны, имеют приблизительно 6-7 мкм в диаметре, ограничивают часть каналов Геринга и экспрессируют различные гены, включая гены аквапорина 1 и 4, MDR1, рецептора секретина, но не CL-/HCO3 -. обменника или рецептора соматостатина.
Этапы созревания (Поколения) 5Н и 5В: Клетки этого поколения включают относительно крупные диплоидные гепатоциты (5Н) и холангиоциты (5В). Величина гепатоцитов приблизительно 22-25 мкм в диаметре, и они найдены в мидацинарной зоне. Мидацинарные гепатоциты экспрессируют высокие уровни альбумина и тирозин аминотрансферазы (ТАТ); особенно характерно то, что они экспрессируют трансферрин как белок (поколения 1-4, напротив, экспрессируют его только как mRNA).
Этап созревания (Поколение) 5В Холангиоциты имеют около 14 мкм в диаметре, локализованы во внутриглобулярных протоках и экспрессируют трансмембранный регулятор муковисцидоза (CFTR), рецептор секретина, рецептор соматостатина, MDR1 и MDR3, и обменник CL-/НСО3 -.
Этап созревания (Поколение) 6Н: Диплоидные перицентральные гепатоциты поколения 6 могут образовывать в культуре колонии, но обладают ограниченной способностью распространяться и существенно не способны к субкультивированию. Их процентное содержание уменьшается с возрастом (параллельно с увеличением процентного содержания тетраплоидных перицентральных клеток). Кроме альбумина, ТАТ и трансферрина, они также интенсивно экспрессируют ряд белков Р450, таких как Р450-3А, глутамин синтетазу (GT), гепарин протеогликаны и гены, связанные с образованием мочевины.
Этап созревания (Поколение) 7Н: Этот этап включает тетраплоидные перицентральные паренхиматозные клетки, которые больше не способны подвергаться полному клеточному делению. Они могут осуществлять синтез DNA, но обладают ограниченной способностью к цитокинезу. Эти гораздо большие клетки (>30 мкм в диаметре), экспрессируют большие количества генов, которые становятся доступными на этапах созревания 5-6.
Этап созревания 8: Апоптотические клетки: экспрессируют различные маркеры апоптоза и демонстрируют фрагментацию DNA.
Дополнительно к клеткам, требуемым для обеспечения собственно «функций» поврежденных или дисфункциональных внутренних органов, трансплантат предпочтительно включает дополнительные клеточные компоненты, которые предпочтительно имитируют категории клеток, определяющие эпителиально-мезенхимальное клеточное отношение, клеточную основу всех тканей. Эпителиально-мезенхимальные клеточные отношения, различны на каждом этапе развития. Эпителиальные стволовые клетки взаимодействуют с мезенхимальными стволовыми клетками, и их созревание взаимно координируется по мере созревания с образованием зрелых типов клеток в ткани. Взаимодействия между двумя типами клеток опосредованы паракринными сигналами, включающими растворимые сигналы (например, факторы роста) и компоненты внеклеточного матрикса.
Например, в печени стволовые клетки печени (HpSC) приводят к образованию гепатоцитов и холангиоцитов. Мезенхимальные партнеры HpSC - это ангиобласты. Имеются свидетельства, указывающие на превращение ангиобластов в предшественников эндотелиальных клеток и в предшественников звездчатых клеток в печени, мезенхимальных партнеров внутрипеченочных клеток паренхимы на этапе 2, гепатобластов (НВ). Предшественники эндотелиальных клеток созревают на последующих этапах до клеток эндотелия, которые становятся мезенхимальными партнерами этапов развития гепатоцитов. Предшественники звездчатых клеток превращаются в звездчатые клетки и затем в клетки стромы, а затем в, мезенхимальные партнеры холангиоцитов, миофибробласты.
Формирование печени, называемое гепатогенезом, регулируется с помощью сигналов из ангиобластов в эмбриональной мезенхиме, связанной с сердцем. На начальных стадиях развития печени факторы роста фибробластов (FGF) выделяются из прекардиальной мезодермы, в то время как костные морфогенетические белки (BMPs) образуются из мезенхимы. Эти вновь образованные клетки печени затем отделяются и мигрируют в окружающую мезенхиму и взаимодействуют с предшественниками с образованием как эндотелия, так и стромы. Мезенхимальные клетки остаются в контакте с клетками печени в процессе развития.
Стволовые клетки печени человека (hHpSC) для выживания требуют контакта с мезенхимальными клетками. Они будут самореплицироваться, оставаясь hHpSCs на фидерах ангиобластов. Их развитие ограничивается гепатобластами при культивировании на средах для звездчатых клеток печени. Они развиваются до зрелых гепатоцитов при культивировании на зрелом эндотелии и до холангиоцитов при культивировании на зрелой строме (например, звездчатых клетках или миофибробластах). Было показано, что контроль за судьбой стволовых клеток фидерами определяется точными комбинациями паракринных сигналов, образующимися в каждом из эпителиально-мезенхимальных клеточных отношений в процессе развития.
Согласно одному воплощению, изобретения для оптимизации трансплантата необходимо взаимодействие популяции изолированных клеток с известными паракринными сигналами (описанными ниже) и с «нативными» эпителиально-мезенхимальными партнерами. Таким образом, трансплантат будет включать эпителиальные стволовые клетки, стволовые клетки печени, смешанные с их нативными мезенхимальными партнерами, ангиобластами. Для создания временной усиливающей клеточной ниши трансплантата гепатобласты могут взаимодействовать со звездчатыми клетками печени и с предшественниками эндотелиальных клеток. В некоторых трансплантатах для оптимизации приживления клеток печени в ткани хозяина можно создать смесь из двух наборов клеток: стволовых клеток печени, гепатобластов, ангиобластов, предшественников эндотелиальных клеток, предшественников звездчатых клеток печени. Микроокружение трансплантата, в которое засевают клетки, будет включать паракринные сигналы, матрикс и растворимые сигнальные вещества, производимые на соответствующих этапах развития, используемых для трансплантата.
Трансплантаты могут быть также сформированы для лечения патологического состояния. Например, чтобы минимизировать зависящие от этапа развития эффекты вирусов (например, некоторых вирусов гепатита), которые инфицируют ранние этапы развития и затем созревают параллельно с клетками хозяина, можно приготовить трансплантаты из клеток более поздних этапов развития (например, гепатоцитов и их нативных партнеров, зндотелиальных клеток синуса), не проницаемых для вирусной инфекции. Трансплантаты можно использовать также для создания модели заболевания с помощью поврежденных клеток в трансплантате, переносимом в/на орган-мишень в экспериментальной животной модели.
Пример трансплантата стволовых клеток с использованием в качестве модели терапии клетками печени включает стволовые клетки печени, ангиобласты и предшественники звездчатых клеток печени. Напротив, трансплантат «зрелых» клеток печени будет содержать гепатоциты, зрелые эндотелиальные клетки и пенрициты, являющиеся зрелыми звездчатыми клетками. Обсуждение отношения эпителиально-мезенхимального отношения в печени приведено в патентной заявке US no. 11/753,326, описание которой полностью включено в данную заявку в качестве ссылки
Образование системы сосудов играет важную роль для всех трансплантатов, и поэтому они должны быть имплантированы в место, благоприятное для васкуляризации (например, в печень). Для большинства патологий трансплантаты из стволовых клеток предпочтительны, благодаря их способности к росту, способности дифференцироваться до зрелых типов клеток, их устойчивости к ишемии, что позволяет получать их из кадаверных тканей, и их минимальной иммуногенности, если она существует.
Материалы трансплантатов
Использование гель-образующих биоматериалов по настоящему изобретению обеспечивает образование подложки для поддержки клеток и сигналов, способствующих успешной трансплантации и процессам регенерации. Поскольку ткань плотных органов подвергается постоянной перестройке, диссоциированные клетки стремятся переформировать свои исходные структуры под влиянием условий окружающей среды. Клетки могут взаимодействовать с одной или несколькими питательными средами (например, RPM 1640), с сигнальными молекулами (например, инсулином, трансферрином, VEGF) и с одним или несколькими компонентами внеклеточного матрикса (например, гиалуронанами, коллагенами, нидогеном, протеогликанами).
Во всех тканях паракринные сигналы включают как растворимые (мириады факторов роста и гормонов), так и нерастворимые (внеклеточные матричные (ЕСМ) сигналы. Синэргичные эффекты между растворимыми и (нерастворимыми) матричными факторами могут определять ростовую и дифференцирующую реакции на трансплантируемые клетки. Компоненты матрикса являются основными детерминантами прикрепления, выживания, клеточной формы (а также организации цитоскелета) и стабилизации требуемых рецепторов на клеточной поверхности, которые обеспечивают реакцию клеток на специфические внеклеточные сигналы.
Известно, что внеклеточный матрикс ЕСМ регулирует морфологию клетки, рост и экспрессию клеточных генов. Тканеспецифичная химия подобная той, которая наблюдается in vivo, может достигаться ex vivo при использовании очищенных ЕСМ компонент. Многие из них коммерчески доступны и способствуют поведению клеток, подобному наблюдаемому in vivo.
Подходящие компоненты внеклеточного матрикса включают коллагены, адгезионные молекулы (например, клеточные адгезионные молекулы (САМ), жесткие связи ((кадгерины), базальные адгезионные молекулы (ламинины, фибронектины), белки, соединяющие промежутки (коннексины), эластины и сульфатированные углеводы, образующие протеогликаны (PG) и гликозамингликаны (GAG). Каждая из этих категорий определяет происхождение молекул. Например, существует по меньшей мере 25 типов коллагена, каждый из которых, кодируется отдельным геном и обладает уникальной регуляцией и функциями. Дополнительные биоматериалы включают неорганические натуральные материалы типа хитозана и алгината, а также множество синтетических, биодеградируемых и биосовместимых полимеров. Эти материалы часто являются «уплотненными» (например, включены в гель или нерастворимый материал) с помощью способов, включающих термическое желирование, поперечное сшивание под действием света или химическое поперечное сшивание или экспозицию к микроокружению (например, высокой концентрации соли), что приводит к нерастворимости материалов. Однако при каждом способе необходимо оценить повреждение клеток (например, от избыточных значений температуры, экспозиции к ультрафиолету). Для более детального обсуждения биоматериалов, особенно для использования гиалуроновых гидрогелей, см. патентную заявку US No. 12/073,420, описание которой включено полностью в настоящую заявку в виде ссылки.
Особый выбор, с помощью которого можно получать компоненты матрикса, с помощью градиентов in vivo, например, переход от компонентов, найденных в связи с компартментом стволовых клеток, к компонентам, связанным со стволовыми клетками на поздних этапах развития. Биоматериалы для трансплантата предпочтительно воспроизводят химию матрикса определенных этапов развития, требуемых для трансплантата. Эффективность выбранной смеси компонентов матрикса может быть подвергнута оценке в исследованиях ех vivo, с помощью очищенных компонентов матрикса и растворимых сигналов, многие из которых коммерчески доступны, согласно протоколу «Правила организации производства и контроля качества лекарственных средств (GMP).» Биоматериалы, выбранные для трансплантата, предпочтительно вызывают соответствующий рост, и реакцию дифференцировки, необходимую для успешной трансплантации клеток.
Что касается печени, химические соединения матрикса, связанные с клетками паренхимы печени, и, вне стволовых клеток и переходными усиливающими клеточными нишами, присутствуют в пространстве Disse, на площади, локализованной между паренхимой, эндотелием или другими формами мезенхимальных клеток. Помимо изменения созревания клеток в разных зонах печени, наблюдается также изменение химии матрикса. Химический состав матрикса перипортально в зоне 1 аналогичен таковому, найденному в эмбриональной печени и включает коллагены типа 111 и типа IV, гиалуронаны (НА), ламинины, и формы протеогликанов хондриотина сульфата. Эти зональные переходы к другой химии матрикса в перицентральной зоне 3, содержащей коллаген типа 1, фибронектин и уникальные формы протеогликанов гепарина и гепаран сульфата.
Ниша стволовых клеток печени была частично охарактеризована, и было обнаружено, что она содержит гиалуронаны, формы ламинина (например, ламинин 5), которые связываются с альфа 6-бета 4 интегрином, коллагеном типа 111 и уникальными формами минимально сульфатированных протеогликанов хондриотин сульфата (CS-PG). В этой нише имеются ограниченные количества коллагена типа IV и нет коллагена типа 1.
Химия матрикса этой ниши преобразуется в связанную с переходным усиливающим клеточным компартментом и состоит из коллагена типа IV, форм ламинина, который связывается с другими интегринами (αβ1), и формами GAG и PG, которые включают формы CS-PG с большим сульфатированием, дерматан сульфат-PGs и специфические формы гепаран-сульфата-PG (HS-PGS).
Переходной усиливающий клеточный компартмент переходит к более поздним этапам дифференцировки, и с каждым следующим этапом химия матрикса становится более стабильной (например, содержит более стабильные коллагены), меньше подвержена превращениям и содержит больше высоко сульфатированные формы GAG и PG. Наиболее зрелые клетки связаны с формами гепарин-PG (HP-PG), свидетельствуя о том, что множество белков (например, факторы роста и гормоны, факторы свертывания, различные ферменты) могут связываться с матриксом и сохранять стабильность благодаря связыванию с дискретными и специфическими сульфатированными структурами в GAG. Таким образом, химия матрикса переходит от начальной точки в нише стволовых клеток, обладающей лабильной химией матрикса, связанной с высокой изменяемостью и минимальным сульфатированием (и поэтому минимальным связыванием с сигналами в стабильном состоянии вблизи от клеток), к стабильной химии матрикса с повышенным сульфатированием (и соответственно все более высокими значениями связывания с сигналами и удерживания их вблизи от клеток).
Следовательно, настоящее изобретение учитывает, что химический состав молекул матрикса изменяется при созревании клеток в процессе увеличения возраста организма-хозяина и по мере увеличения этапа развития. Трансплантация подходящего материала должна оптимизировать приживание трансплантируемых клеток в ткани, предотвращать рассеивание клеток по эпитопам, минимизировать проблемы эмболизации и увеличить способность клеток как можно быстрее интегрироваться в ткани. Кроме того, факторы в трансплантате могут быть выбраны так, чтобы свести к минимуму проблемы иммуногенности.
Клетки печени человека можно культивировать в среде, не содержащей сыворотки. Стволовые клетки печени человека или гепатобласты (hHpSC или hHB) могут быть пересажены сами по себе или в комбинации с ангиобластами /предшественниками эндотелиальных клеток и предшественниками звездчатых клеток. Клетки можно суспендировать в тиолированной и химически модифицированной НА (CMHA-S, или гликозил, гликозан BioSystems, Salt Lake City, UT), содержащей среде (НА-М) и в KM (Среде Kubota) и помещать их в один из шприцов набора парных шприцов. Второй шприц может быть заполнен кросс-линкером, например, диакрилатом поли(этилен гликоля) или PEGDA, приготовленном в КМ (или в условиях, требуемых для достижения нерастворимости биоматериалов). Шприцы соединены с помощью иглы, которая разветвляется на два наконечника люэра. Таким образом, клетки в гидрогеле, и кросс-линкер могут подаваться через одну иглу, чтобы обеспечить быструю поперечную связь CMHA-S в геле при инъекции (или обеспечить нерастворимость биоматериалов другими способами).
Клеточная суспензия в CMHA-S и кросс-линкер могут быть введены либо непосредственно, либо трансплантированы в печень с помощью ткани сальника с образованием кармана. В другом варианте клетки могут быть инкапсулированы без использования кросслинкера PEGDA, позволяя суспензии оставаться в течение ночи на воздухе, что приводит к образованию дисульфидных поперечных связей с пластичным вязким гидрогелем. Кроме того, могут быть добавлены тиол-модифицированные макромономеры, например желатин- DTPH, гепарин-DTPH, хондриотин сульфат-DTPH, чтобы получить ковалентную сеть, имитирующую химический состав матрикса особых ниш in vivo. В другом проявлении полипептиды, содержащие цистеиновые или тиоловые остатки, могут быть сопряжены с PEGDA перед добавлением PEGDA к Glycosil, позволяя специфическим полипептидным сигналам встраиваться в гидрогель. В альтернативном варианте любой полипептид, фактор роста или компонент матрикса, такой как изоформа коллагена, ламинин, витронектин, фибронектин, и т.д., может быть добавлен к гликозилу и клеточному раствору перед поперечным связыванием, позволяя осуществлять пассивный захват важных полипептидных компонентов в гидрогеле.
Гиалуронаны: Гиалуронаны (HAs) являются членами одного из 6 больших глнкозаминогликановых (GAG) семейств углеводов, которые являются полимерами уроновой кислоты и аминосахарами. [1-3]. Другие семейства содержат хондриотин сульфаты (CS, [глюкуроновая кислота-галоктозамин]х), дерматан сульфаты (DS, более высоко сульфатированые [глюкуроновая кислота-галоктозамин]х), гепаран сульфаты (HS, [глюкуроновая кислота-галоктозамин]х), гепарины (HP, более высоко сульфатированные [глюкуроновая кислота-галоктозамин]х) и кератан сульфаты (K.S, [галактоза-N-ацетилглюкозамин]х).
НА составлены из дисахаридных единиц глюкозамина и глурониевой кислоты, соединенных с помощью связей β1-4, β1-3. Биологически полимерный гликан состоит из линейно повторяющихся от нескольких сот до 20000 или большего числа дисахаридных единиц. HAs имеют молекулярные массы обычно в интервале от 100000 Da в сыворотке и 2000000 в синовиальной жидкости до 8000000 в пупочных канатиках и стекловидном теле. Благодаря высокой плотности своего отрицательного заряда НА привлекает положительные ионы, локализованные в воде. Эта гидратация позволяет НА выдерживать очень значительные нагрузки. НА локализованы во всех тканях и жидкостях организма, и больше всего их в пластичных соединительных тканях, и способность к переносу воды приводит к предположению об их другой роли, включая влияние на формирование и функционирование ткани. Он найден во внеклеточном матриксе, на поверхности клеток и внутри клеток.
Нативные формы химии НА разнообразны. Наиболее общей переменной является длина цепи. Некоторые обладают высоким молекулярным весом благодаря длинным углеводным цепям (например, таким, как в куриных гребешках и в пупочных канатиках), а другие имеют низкий молекулярный вес вследствие коротких цепей (например, из бактериальных культур). Длина цепи HAs играет ключевую роль в установившихся биологических функциях. Низкий молекулярный вес НА (меньше 3,5×104 килодальтон) может индуцировать цитокинную активность, связанную с преобразованием матрикса и, как известно, имеет отношение к воспалению в ткани. Высокий молекулярный вес (выше 2×105 килодальтон) может ингибировать клеточную пролиферацию. Показано, что малые фрагменты НА между 1 и 4 килодальтон, усиливают ангиогенез.
Нативные формы НА модифицировали для приобретения ими желаемых свойств (например, модификация НА для приобретения тиоловых групп, что позволяет использовать тиол для связывания других компонентов матрикса или гормонов или новых форм кросс-линкинга). Кроме того существуют природные формы кросс-линкинга (например, регулируемые кислородом) и другие, вводимые искусственно путем обработки нативных и модифицированных НА определенными реагентами (например, алкилирующими агентами) или, как указывалось выше, путем установки модифицированных НА, что делает их проницаемыми к определенным формам кросс-линкинга (например, образование дисульфидных мостиков в тилол-модифицированных НА).
Согласно настоящему изобретению, предпочтительны тиол-модифицированные НА и in situ полимеризуемые техники, применяемые для них. Эти техники включают образование дисульфидных мостиков между тиолированными карбоксиметилированными НА, известными как CMHA-S или гликозил. Для исследований т vivo можно использовать НА с меньшим молекулярным весом, например, 70-250 килодальтон, поскольку при кросслинкинге дисульфидами или PEGDA образуется гидрогель с очень высокими размерами молекул. Тиоловый реактив - линкер, диакрилат полиэтилен гликоля (PEGDA) пригоден как для инкапсулирования, так и для инъекций in vivo. Такой комбинированный гликозил-PEGDA материал сшивается в ковалентной реакции, и в течение минут обеспечивает биосовместимость, клеточный рост и пролиферацию.
Гидрогелевый материал Glycosil имеет свойства геля, подходящие для конструирования ткани из стволовых клеток in vivo. Гликозил является частью техники полусинтетического внеклеточного матрикса (sECM), доступной из Glycosan Biosciences в Salt Lake City, UT. Множество продуктов торговых линий Extracel и HyStem коммерчески доступны. Эти материалы биосовместимы, биодеградируемы и не иммуногены.
Кроме того, гликозил и экстралинк могут быть легко скомбинированы с другими ЕСМ материалами для задач конструирования ткани. НА может быть получен из многих коммерческих источников, предпочтительно, для бактериального ферментирования с использованием либо штаммов Streptomyces (например, Genzyme, LifeCore, NovaMatrix, и другие), либо для процесса бактериального ферментирования с использованием Bacillus subtilis в качестве хозяина в процессе ISO 9001:2000 (исключительно для Novozymes).
Идеальные отношения клеточных популяций должны повторять отношения in vivo в суспензиях клеток ткани. Смесь клеток обеспечивает созревание клеток-предшественников и/или сохранение зрелых клеточных типов, сопровождающее развитие необходимой васкуляризации. Таким образом, достигается сложная микросреда, использующая гиалуронаны как основу комплекса, содержащего множество компонентов матрикса и растворимых сигнальных факторов и предназначенного для имитирования специфических ниш микроокружения, состоящих из специфических наборов паракринных сигналов от эпителиальной клетки и мезенхимальной клетки на специфическом этапе развития. Ниже приведены примеры:
Таблица 1 | ||
Типичные ниши трансплантатов для клеток-предшественников | ||
Ниша трансплантата стволовой клетки | Ниша трансплантата транзитной усиливающей клетки | |
Клеточные компоненты | hHpSCs, ангиобласты | Гепатобласты, звездчатые клетки-предшественники печени, эндотелиальные клетки-предшественники (или мезенхимальная стволовая клетка) |
Основная среда | Среда Kubota (оптимальная для эндодермальных клеток-предшественников) или среда, разработанная для специфической категории стволовых клеток | Среда Kubota или среда, оптимальная для специфических эндодермальных клеток-предшественников, разработанная для транзитных усиливающих клеток |
Дополнительные растворимые факторы (подобранные для печени) | LIF, VEGF | EGF, HGF, VEGF |
Основная подложка | НА или химически-модифицированная НА как sECM | НА или химически-модифицированная НА как sECM |
Другие компоненты матрикса | Коллаген типа III, эмбриональные формы ламинина (например, ламинин 5, который связывается с а6/β4 интегрином); хондриотин сульфат - PG (новая форма, обнаруженная в нишах) | Коллаген типа IV, любые из ряда форм ламининов, CS-PG, HS-PG |
Таблица 2 | ||
Типичные ниши трансплантатов для зрелых паренхимальных клеток | ||
Этап созревания (Поколение)4 Гепатоциты | Этап созревания (Поколение) 5, В нутрипеченочный холангиоцит | |
Клеточные компоненты | Перипортальные гепатоциты (~ 18 мкм в диаметре); перипортальные эндотелиальные клетки | Внутрипеченочный холатгиецит (~15 мкм в диаметре); стромальные клетки |
Основная среда | Среда Kubota (или среда, разработанная для зрелых гепатоцитов): добавление меди (10Е-10 М), кальция (0,6 mM), EGF (10 нг/мл) | Среда Kubota (или среда, разработанная для зрелых холангиоцитов): добавление меди (10Е-10 М), кальция (0,6 mM), EGF (10 нг/мл) |
Дополнительные растворимые факторы (разработанные для печени) | VEGF (10 нг/мл), EGF (10 нг/мл), Т3 (10Е-9М), глюкокортикоиды (10Е-8М) | PDGF (10 нг/мл), EGF (10 нг/мл), HGF (10 нг/мл), Т3 (10Е-9М), глюкокортикоиды (10Е-8М) |
Основная подложка | НА или химически-модифицированная НА как ЕСМ | НА или химически-модифицированная НА как ЕСМ |
Другие компоненты матрикса | Коллаген типа III, эмбриональные формы ламинина (например, ламинин 5, который связывается с а6/β4 интегрином); хондриотин сульфат -PG (новая форма, обнаруженная в нишах) | Коллаген типа IV, любые из ряда форм ламининов, которые связываются с a/β1, CS-PG, HS-PG |
Микроокружение ниши стволовой клетки в печени состоит из паракринных сигналов между стволовой клеткой печени и ангиобластами. Оно состоит из гиалуронанов, коллагена типа III, специфических форм ламинина (например, ламинина 5), уникальной формы хондриотин сульфат протеогликана (CS-PG), который почти не содержит сульфатов, а отношение растворимого сигнала к составу среды близко или в точности соответствует отношению для среды Kubota, разработанной для клеток-предшественников печени. Нет жесткой потребности в других факторах, хотя при снабжении фактором стволовых клеток, лейкемическим ингибирующим фактором (LIF) и/или некоторыми интерлейкинами (например, IL 6, IL11 и TGF-R1) могут наблюдаться эффекты. Ниша стволовой клетки формы CS-PG пока недоступна.
Микроокружение транзитной усиливающей клетки в печени морфологически находится между микроокружением гепатобластов и звездчатых клеток печени. Компоненты этого микроокружения включают гиалуронаны, коллагены типа IV специфические формы ламининов, которые связываются с β1 интегрином, более сульфатированные CS-PG, формы гепаран сульфат протеогликанов (HS-PG), и растворимые сигналы, которые включают среду Kubota, дополненную фактором роста эпидермиса (EGF), фактором роста гепатоцитов (HGF), фактором роста клеток стромального происхождения (SGF) и ретиноидами (например, витамином А).
Способы трансплантации
В зависимости от типа ткани может быть выбран соответствующий способ трансплантации. Для тканей, где трансплантаты должны заместить поврежденные или недостающие ткани (например, костные), подходит имплантируемый трансплантат. Затем в зависимости от выбранного способа могут быть выбраны соответствующие биоматериалы для улучшения способа. Могут потребоваться разные способы. Например, в примере с костью плотный матрикс позволяет засеять в матрикс клетки с необходимыми факторами роста и после культивирования имплантировать его пациенту, фигура 1.
Преимущество инъецируемых трансплантатов заключается в том, что они могут заполнить любой дефицит формы или расстояния (например, в поврежденных органах или тканях). В соответствии с этим способом клетки совместно культивируют и вводят в суспензию клеток, внедренную в желируемые биоматериалы, которые уплотняют in situ с помощью разных способов кросслинкинга. Смесь может быть непосредственно инъецирована в ткань или орган хозяина (например, в печень), инъецирована под капсулу органа, под любую оболочку ткани; инъецирована внутрь кармана, при образовании складки над частью сальника и приклеивании ее с образованием кармана; или при образовании кармана с использованием хирургического клея для прикрепления другого материала (например, паутины паука) к поверхности органа и введении в него смеси..
Непосредственная инъекция может заключаться в инъекции под Glisson капсулу печени и в паренхиму в нескольких местах, но в возможно меньшем количестве, чтобы избежать гидростатического давления со стороны гидрогеля, способного повредить ткань печени. Инъекцию трансплантатов ниши стволовых клеток в печень осуществляют с помощью двойного цилиндрического шприца, как было описано выше в данной заявке. Вкратце, смесь клеток с матриксом и средой загружают в одну часть шприца с иглой, присоединенной к другому шприцу, содержащему кросс-линкер PEGDA. Смесь может вводиться через иглу номером 25 непосредственно в печень и сразу подвергаться поперечному сшиванию для образования гидрогеля. Использование CMHA-S с PEGDA при рН 7,4 способствует инкапсулированию клеток так же как при инъекции in vivo, поскольку реакция поперечного сшивания происходит за несколько минут или менее чем за to 10-20 мин, в зависимости от концентрации кросс-линкера.
Неорганические природные материалы типа хитозана, алгината, гиалуроновой кислоты, фибрина, желатина, а также многие синтетические полимеры могут удовлетворять требованиям к биоматериалам для инъекций. Эти материалы часто уплотняют с помощью способов, включающих термическое желирование, поперечное сшивание фото- и химическими методами. В суспензию клеток добавляют растворимые сигнальные вещества или специфические компоненты матрикса. Поскольку эти трансплантаты можно относительно легко вводить в желаемую область, нет необходимости (или она минимальна) в инвазивной хирургии, что уменьшает стоимость, дискомфорт пациента, риск инфекции и образование шрамов. Можно использовать также СМНА для инъектируемого материала для формирования ткани благодаря его длительному эффекту при сохранении биосовместимости. Методы кросс-линкинга также сохраняют биосовместимость материала, и его присутствие на больших регенерирующих поверхностях или в нишах стволовых клеток/клеток-предшественников делает его материалом, привлекательным для инъекций.
В некоторых воплощениях трансплантат может быть предназначен для помещения на поверхности органа или ткани; в этом случае трансплантат будет удерживаться на месте с биосовместимым и биодеградируемым покрытием («лейкопластырь»). Для некоторых абдоминальных органов это покрытие может быть получено из аутологичных тканей. Например, трансплантацию клеток печени (например, клеток-предшественников гепатоцитов) на поверхность печени можно осуществлять, используя сальник хозяина для формирования инъекционного кармана. Сальник поднимают от места его локализации в брюшной полости и наклеивают на печень с помощью хирургического клея (например, фибринового клея, кожного протеза) для образования кармана для материала трансплантата. Двухцилиндровый шприц может быть вновь использован для введения матриксного материала в карман на поверхности печени.
Кроме того, трансплантат может быть сформирован в кармане сальника независимо от ткани-мишени. Например, вместо имплантирования трансплантата внутрь или на поверхность ткани-мишени, можно использовать способ имплантирования в эктопические участки. Трансплантат мог быть установлен внутрь кармана сальника, который мог бы быть сформирован с помощью фибринового клея (или его эквивалента). Этот подход может быть особенно применим для трансплантатов печени, когда печень хозяина слишком покрыта рубцами или имеет некоторые параметры, которые препятствуют успешному приживанию трансплантата в ткани как таковой. Другой пример относится к эндокринным клеткам (например, островковым), для которых в первую очередь требуется способность осуществлять кровоснабжение. Трансплантация эндокринных клеток, таких как островковые, могла бы осуществляться в кармане сальника.
Авторы настоящего изобретения показали, что жесткость, вязкоэластичные свойства и вязкость гидрогелей КМ-НА могут зависеть от содержания CMHA-S и PEGDA. Гидрогели КМ-НА, например, поддерживают постоянную жесткость в широком интервале частот возмущающей силы, причем демонстрируют постоянно эластичное поведение (фигура 2а) и истоньшение сдвига, при котором их вязкость снижается с ростом частоты возмущающей силы, (фигура 2b). Эти КМ-НА гидрогели могут привести к модулю сдвига в интервале от 11 до 3500 Па с разными концентрациями PEGDA и CMHA-S при смешивании в забуфференной дистиллированной воде, но эти значения могут быть модулированы с помощью использования разных основных сред типа среды Kubota (фигура 2 и фигура 11).
Механические свойства ЕСМ, в которые засеваются трансплантируемые клетки, могут оказывать значительные эффекты на передачу сигналов, на транспорт и на способность клеток реагировать на механические силы с помощью механизмов, которые все вместе известны как механотрансдукция. Например, клетки-предшественники печени человека, такие как стволовые клетки печени, могут дифференцироваться при засевании в механически жесткие трансплантаты, такие как жесткие НА гидрогели с результирующим модулем сдвига в интервале от 11 до 3500 Па с разными концентрациями PEGDA и CMHA-S при смешивании в забуференной дистиллированной воде (фигура 2).
Колонии стволовых клеток печени имеют различную метаболическую активность в соответствии с составом содержащего их гидрогеля КМ-НА. Абсолютная секреция в средах КМ-НА сравнима с показателями функции печени (AFP, альбумин и мочевина) в процессе культивирования; однако абсолютная секреция, сопряженная с метаболической эффективностью, изображает процесс отбора, который зависит от содержания НА. (фигура 12). В этом процессе скорости секреции возрастают под давлением метаболизма для гидрогелей КМ-НА с содержанием CMHA-S, меньшим, чем 1.2%; напротив, скорости секреции сравнительно невелики в гидрогелях КМ-НА с большим содержанием CMHA-S (1.6%) и большими метаболическими функциями или даже повышенной жизнеспособностью, как в среде Е (фигура 3d). Поскольку hHpSCs и hHBs демонстрируют разные метаболические возможности, гидрогели КМ-НА могут выбрать экспансию или дифференцирование клеток-предшественников гепатоцитов.
Анализ экспрессии маркеров дифференцирования в клетках-предшественниках гепатоцитов подтверждает, что дифференцирование происходит в гидрогелях КМ-НА, о чем свидетельствует повышенная полная экспрессия генов ЕрСАМ по сравнению с установленными значениями для колоний на пластиковых плашках (фигура 5), а также гетерогенная экспрессия NCAM в колониях относительно внешних границ и на апикальной поверхности внешних клеток (фигура 4). Было показано, что CD44 экспрессирован на hHpSCs и hHBs на уровне экспрессии mRNA (фигура 5). В отличие от NCAM, большая экспрессия CD44 наблюдалась в гидрогелях КМ-НА при содержании CMHA-S около 1.2% или меньше (фигура 4).
Уровни экспрессии mRNA зависят от жесткости гидрогелей КМ-НА (фигура 5), причем эта зависимость от жесткости определяет два режима (один при низких жесткостях трансплантата, когда экспрессия снижается с увеличением жесткости, и другой при восстановлении экспрессии генов при высоких жесткостях трансплантата |G*|>200 Па). Эффект еще более значительный для Е-кадаверина: экспрессия белка отсутствует после точек бифуркаций вокруг |G*|=200 Па, несмотря на высокую экспрессию mRNA, которая соответствует тем из более мягких гидрогелей, в которых наблюдается экспрессия белка Е-кадаверина (фигура 4). Клетки, которые непосредственно подвержены действию внешних механических сил, таким образом, способны передавать сигналы соседним клеткам на внешней поверхности колонии.
Таким образом, продемонстрировав, что трансляционный контроль экспрессии Е-кадаверина зависит от жесткости окружающей среды, можно связать сигнальные механизмы в hHpSCs с их способностью коллективно приспосабливаться к жесткости их субстрата. Поэтому процессы превращения ген-белок в hHpSC определяются зависящим от жесткости бифуркационным критерием.
Изменения экспрессии генов колониями hHpSC, культивируемыми в гидрогелях КМ-НА, предполагают постепенное дифференцирование внутри этих трехмерных сред.
Особенно часто дифференцирование в данной культуральной модели может происходить в отсутствие биохимических добавок. Эти результаты показывают, что hHpSC, встроенные в различные гидрогели КМ-НА, обнаруживают дифференцирование до промежуточных этапов hHB за 1 неделю статической культуры.
Криоконсервирование
В другом воплощении настоящего изобретения гели НА могут быть использованы с помощью обычных методов криоконсервирования, позволяющих получить лучшую сохранность и выживаемость после оттаивания. Обзор этого процесса показан на фигуре 6. Не придерживаясь теории и не связываясь с ней, считают, что включение НА улучшает сохранность с помощью стимуляции адгезионных механизмов (например, экспрессии Интегрина β1), облегчающих культивирование клеток и сохранение функции после оттаивания. Предпочтительно, концентрация НА находится в интервале от 0,01 до 1 весового процента, и более предпочтительно, от 0,5 до 0,10%.
Если не определено иное, все используемые здесь технические и научные термины имеют то же значение, которое обычно понимают средними специалистами в той области, куда относится данное изобретение. Все публикации, патентные заявки, патенты и другие упомянутые здесь ссылки включены полностью в виде ссылок. Кроме того, материалы, методы и примеры являются только иллюстративными и не предназначаются для ограничения.
Ниже изобретение будет описано в основном с помощью следующих иллюстративных примеров; однако рамки данного изобретения не предназначены для ограничения и не могут быть ограничены приводимыми ниже воплощениями.
Пример 1
Клетки-предшественники печени мыши выделяли из мыши-хозяина C57/BL6 (4-5 недель) согласно опубликованным протоколам. Для исследования трансплантатов вводили GFP датчик в клетки-предшественники печени. Затем клетки смешивали с гиалуронановыми (НА) гидрогелями, и НА поперечно сшивали с диакрилатом поли (этилен гликоля) - (PEG-DA) перед тем, как ввести исследуемой мыши. Для введения /трансплантации мышь анестезировали кетамином (90-120 мг/кг) и ксилазином (10 мг/кг), и вскрывали брюшину. Затем клетки с НА или без нее медленно вводили в, переднюю долю печени. Разрез зашивали, и животные получали 0,1 мг/кг бупренорфина каждые 12 часов в течение 48 часов. Через 48 часов животных усыпляли, и ткань удаляли, фиксировали и готовили срезы для гистологии.
Для определения локализации клеток в мышиной модели «контрольные» клетки-предшественники печени инфицировали в течение 4 часов при 37°С экспрессирующим люциферазу аденовирусным вектором при 50 POI. Прижизненную операцию выполняли как описано выше, и клетки (1-1,5Е6) вводили непосредственно в печеночную долю с НА или без НА. Непосредственно перед получением изображения мышам вводили подкожно люциферин, вызывая в трансплантированных клетках появление люминесцентного сигнала. Определяли локализацию клеток в организме мыши с помощью Кинетического оптического формирователя изображений IVIS.
Результаты
Через 24 часа «контрольные» клетки, введенные без трансплантирования с НА, обнаруживаются как в печени, так и в легких. Однако через 72 часа большая часть клеток не может быть локализована, только небольшое количество идентифицируемых клеток остается в печени. Напротив, трансплантированные по настоящему изобретению клетки наблюдались в виде группы клеток, успешно интегрированных в печень как через 24, так и через 72 часа, где они и остаются еще через 2 недели. Клетки, трансплантированные через нишу стволовых клеток, были также локализованы почти исключительно в ткани печени и не были найдены в других тканях при исследовании рандомизированных гистологических образцов (фигура 7).
Пример 2
Клетки-предшественники печени человека выделяли из эмбриональной ткани печени (16-20 недель) согласно приведенным протоколам. В клетки-предшественники вводили экспрессирующий люциферазу аденовирусный вектор. Затем клетки смешивали с тиол-модифицированной карбоксиметил НА (CMHA-S) в присутствии кросс-линкера диакрилата поли (этилен гликоля)- (PEG-DA) перед введением исследуемой мыши. Более конкретно, конструировали гидрогель, растворяя сухие реагенты НА в КМ для получения 2.0% раствора (вес/объем) и растворяли кросс-линкер в КМ для получения 4.0% раствора (вес/объем). Затем образцы инкубировали на 37°С водяной бане до полного растворения. Коллаген III и ламинин готовили при концентрации 1,0 мг/мл и смешивали с кросслинкером/гидрогелем в отношении 1:4.
Для введения /трансплантации мышей анестезировали кетамином (90-120 мг/кг) и ксилазином (10 мг/кг), и вскрывали брюшную полость. Затем клетки с НА или без нее медленно вводили в переднюю долю печени. Полость зашивали, и животные получали 0,1 мг/кг бупренорфина каждые 12 часов в течение 48 часов. Для моделей поврежденной печени вводили внутрибрюшинно однократную дозу 0,6 мкл/г. Через 48 часов животных усыпляли, ткани удаляли, фиксировали и готовили срезы для гистологии.
Для определения локализации клеток в мышиных моделях «контрольные» клетки-предшественники печени инфицировали в течение 4 часов при 37°С с экспрессирующим люциферазу аденовирусным вектором при 50 POI. Прижизненную операцию осуществляли, как было описано выше, и клетки (1-1.5Е6) вводили непосредственно в долю печени с НА или без нее. Сразу перед получением изображения мышам внутрибрюшинно вводили К соль люциферина (150 мг/кг), получая люминесцентный сигнал от трансплантированных клеток. Используя кинетический оптический формирователь изображений IVIS, определяли через 10-15 минут локализацию клеток в организме мыши (фигура 7).
Для определения функционирования трансплантированных клеток-предшественников печени человека оценивали значения концентрации секретированного альбумина человека в сыворотке мыши на 7 день. Образование альбумина измеряли с помощью ELISA с пероксидазой хрена, конъюгированной с флуоресцентными зондами, определяя оптическое поглощение при 450 нм (фигура 8). На 7 день удаляли из организма мыши пробы ткани, фиксировали их 2 дня в 4% PFA и хранили в 70% этаноле. Окрашивали срезы толщиной 5 мкм для гистологического исследования.
Результаты
На 7 день образцы крови, и ткани удаляли и фиксировали для гистологии. Наблюдалось небольшое увеличение сывороточного альбумина в модели повреждения по сравнению со здоровой моделью, и методы НА-трансплантации также показали увеличение по сравнению с результатами, полученными с суспензиями клеток без НА (фигура 8).
Ткань из мышей, обработанных CCU, окрашивали на альбумин человека. Было показано, что клетки, трансплантированные способами, использующими НА, были сгруппированы и поддерживают большие клеточные массы трансплантированных клеток среди клеток хозяина. Однако клетки, трансплантированные с помощью клеточной суспензии образуют малые агрегаты по всей печени.
Пример 3
Клетки-предшественники поджелудочной железы человека выделяли из ткани поджелудочной железы. В клетки-предшественники вводили экспрессирующий люцнферазу аденовирусный вектор. Затем клетки смешивали с тиол-модифицированной карбоксиметил НА (CMHA-S) в присутствии кросс-линкера диакрилата поли (этилен гликоля)- (PEG-DA) как описано в примере 2.
Для введения /трансплантации мышей анестезировали кетамином (90-120 мг/кг) и ксилазином (10 мг/кг), и вскрывали брюшную полость. Затем клетки с НА или без нее медленно вводили в переднюю долю печени. Полость зашивали, и животные получали 0,1 мг/кг бупренорфина каждые 12 часов в течение 48 часов. Для моделей поврежденной печени вводили внутрибрюшинно однократную дозу 0,6 мкл/г. Через 48 часов животных усыпляли, и ткани удаляли, фиксировали и готовили срезы для гистологии.
Для определения локализации клеток в мышиных моделях «контрольные» клетки-предшественники печени инфицировали в течение 4 часов при 37°С с экспрессирующим люциферазу аденовирусным вектором при 50 POI. Прижизненную операцию осуществляли как было описано выше, и клетки (1-1,5Е6) вводили непосредственно в поджелудочную железу с НА или без нее. Сразу перед получением изображения мышам внутрибрюшинно вводили К соль люциферина (150 мг/кг), получая люминесцентный сигнал от трансплантированных клеток. Используя IVIS кинетический оптический формирователь изображений, определяли через 10-15 минут локализацию клеток в организме мыши.
Результаты
Через 24 часа «контрольные» клетки, введенные без трансплантирования с НА, обнаруживаются в поджелудочной железе среди прочих органов. Однако через 72 часа большая часть клеток не может быть локализована, и только небольшое количество идентифицируемых клеток остается в поджелудочной железе. Напротив, трансплантированные по настоящему изобретению клетки наблюдаются в виде группы клеток, успешно интегрированных в поджелудочную железу как через 24, так и через 72 часа и остаются еще через 2 недели.
Пример 4
Выполняли исследования для оценки жизнеспособности и функционирования стволовых клеток печени, засеянных в гидрогели. Жизнеспособность оценивали в культурах с помощью набора Molecular Probes Calcein AM live cell viability kit (Molecular Probes, Eugene Oregon). Проникающий через мембрану кальцеин AM расщеплялся в живых клетках эстеразами с образованием зеленой флуоресценции в цитоплазме. В течение 1 недели измеряли значения концентрации секретированного альбумина, трансферрина и мочевины в культуральной среде. Вкратце, собирали супернатант среды и хранили его замороженным при -20°С до анализа. Образование альбумина измеряли с помощью ELISA, используя количественные наборы ELISA для альбумина. Образование мочевины анализировали с помощью колориметрических реагентов для определения азота мочевины в крови. Все исследования проводили индивидуально на цитофлуориметрическом многоячеистом плашечном ридере Spectramax 250.
Результаты
Результаты представлены на фигурах 9 и 10. Через 3 недели культивирования в клетках определяли генетическую экспрессию. Значения экспрессии mRNA нормировали на GAPDH. Все измерения выражены в кратностях изменения по сравнению с исходными колониями стволовых клеток печени перед трехмерной культурой в гидрогелях гиалуронана. В обоих экспериментальных условиях гиалуронановой культуры (НА и НА + коллаген Ш + ламинин), наблюдается значительное возрастание ЕрСАМ (7,72±1,42, 9,04±1,82) и альбумина (5,57±0,73, 4,84±0,84) по сравнению с исходной экспрессией колонии. В обоих случаях наблюдалось также значительное снижение маркера дифференцирования гепатобласта AFP (0,55±0,11, 0,17±0,03). Кроме того, в условиях HA+CIII+Lam наблюдалось значительное снижение экспрессии AFP по сравнению с базовой НА культурой.
Пример 5
Оценивали эффекты механических свойств гидрогелей НА с разными концентрациями НА и PEGDA на встроенные hHpSCs, культивируемые в среде, не содержащей сыворотки. Используемые варианты сред суммированы в приведенной ниже таблице 3.
Таблица 3 | |||||
Конечное содержание (распределение 4:1) | Исходное содержание PEGDA в растворе (1 часть) | ||||
2,0% (вес/объем) | 4,0% (вес/объем) | 6,0% (вес/объем) | 8,0% (вес/объем) | ||
Исходное содержание CMHA-S в растворе (4 части) | 1,0% (вес/объем) | Состав ACMHA-S 0,8% (вес/объем PEGDA 0,4% (вес/объем) | CMHA-S 0,8% (вес/объем) PEGDA 0,8% (вес/объем) | CMHA-S 0,8% (вес/объем) PEGDA 1,2% (вес/объем) | Состав В CMHA-S 0,8% (вес/объем)) PEGDA 1.6% (вес/объем) |
1,5% (вес/объем) | CMHA-S 1,2% (вес/объем) PEGDA 0,4% (вес/объем) | Состав С CMHA-S 1,2% (вес/объем) PEGDA 0,8% (вес/объем) | Состав D CMHA-S 1,2% (вес/объем) PEGDA 1,2% (вес/объем) | CMHA-S 1,2% (вес/объем) (w/v) PEGDA 1,6% ((вес/объем)) | |
2,0% (вес/объем) | Состав Е CMHA-S 1,6% (вес/объем) PEGDA 0,4% (вес/объем) | CMHA-S 1,6% (вес/объем) PEGDA 0,8% (вес/объем) | CMHA-S 1,6% (вес/объем) PEGDA 1,2% (вес/объем) | Состав F CMHA-S 1,6% (вес/объем) PEGDA 1,6% (вес/объем) |
Конечную композицию гидрогеля КМ-НА для каждого варианта среды получали смешиванием растворов тиол-модифицированной карбоксиметиловой НА (CMHA-S) и полиэтилен гликоль)-бис-акрилата (PEGDA) в отношении 4:1. Специфические концентрации сухих реагентов CMHA-S и PEGDA по отдельности смешивали в КМ при рН 7,4 при специфической концентрации CMHA-S и PEGDA, и нагревали в течение 30 минуг при 37°С, чтобы увеличить растворение сухих реагентов. Максимальный кросс-линкинг гидрогеля происходил без дополнительной среды в течение 1 часа в стерильных условиях в инкубаторе при 5% смеси CO2/air и при 37°С. Затем к гидрогелям добавляли 2,5 мл среды НК и инкубировали в течение ночи перед тестированием.
Для изучения коэффициента диффузии гидрогелевые среды гомогенизировали с помощью вортекса и формировали пластинки толщиной ~ 1 мм. Гидрогели инкубировали без дополнительных сред в течение 1 часа в стерильных условиях в инкубаторе со смесью 5% СO2/воздух и при 37°С, чтобы осуществить максимальный кросс-линкинг после смешивания. Образцы затем были дополнены равными объемами дополнительной КМ с 2,5 мг/мл (0,036 мМ) конъюгированных с флуоресцеином 70-кВа молекул декстрана. Молекулы декстрана могли диффундировать в образцы в течение ночи перед тестированием.
Коэффициенты диффузии гидрогелей НА измеряли с помощью системы восстановления флуоресценции после фотовыцветания (FRAP) system. Тестирование в ячейках на образцах осуществляли после уравновешивания с комнатной температурой для получения изображений без предварительного засасывания КМ, дополненного D70. В каждом образце исследовали всего 5 индивидуальных 30-секундных пятен фотовыцветания (13,5-мватт 458/488 нм возбуждения аргоновым лазером, геометрия выцветания: кружок диаметром 35-мкм), одно однонаправленное сканированное изображение до выцветания и, одно однонаправленное сканированное изображение после прекращения выцветания и 28 однонаправленных сканированных изображений с интервалами 4,0-секунд после этого (размер рамки 256×256 пикселей, разрешение 0,9 мкм/пиксель) требовались для последующей обработки через одиночный зеленый канал (эмиссия LP 505 нм).
Результаты
Жесткость, вязкоупругие свойства и вязкость гидрогелей КМ-НА зависят от содержания CMHA-S и PEGDA. Гидрогели КМ-НА поддерживают постоянную жесткость в широком интервале частот возмущающей силы, обнаруживая в то же время вполне упругое поведение и истоньшение сдвига, поскольку вязкость уменьшается с увеличением частоты возмущающей силы. Содержание CMHA-S и PEGDA контролировали механические свойства гидрогелей КМ-НА (фигура 11а). Напротив, диффузионные свойства гидрогелей КМ-НА оптимальны, поскольку они сравнимы со свойствами среды Kubota's без добавок (фигура 11b).
Колонии стволовых клеток печени смешивали с гидрогелями КМ-НА и начинали превращать их плоскую конфигурацию в агломерацию сфероидных структур или свертывание в 3D структуры, причем то и другое является признаками дифференцирования. После 1 недели культивирования морфология клеток становится разнообразной, и некоторые клетки увеличиваются до приблизительно 15 мкм в диаметре, что характерно для hHB. Иммуноокрашивание антителами с целью маркирования клеточной поверхности на hHpSC и hHB, как и на ЕрСАМ, CD44 и CDH1, подтверждало дифференцирование.
В процессе культивирования hHpSC во всех проверенных композициях КМ-НА гидрогели секретировали AFP и альбумин в возрастающих концентрациях, в то время как синтез мочевины уравнивался до сравнимых значений во всех КМ-НА гидрогелях к седьмому дню (фигура 12). После 1 недели культивирования значения экспрессии mRNA ЕрСАМ в колонии клеток hHpSC, посеянных в гидрогели КМ-НА, были значительно выше, чем в 20-выращенных hHpSC колониях или свежевыделенных hHB. Значения экспрессии mRNA NCAM, AFP и Е-кадаверина (CDH1) для hHpSC в гидрогелях КМ-НА также значительно отличались от значений в 20-выращенных hHpSC колониях (фигура 5).
Количественные измерения экспрессии генов маркеров дифференцирования для hHpSCs (NCAM, AFP, CDH1) и маркеров, общих для hHpSC и hHB (CD44, ЕрСАМ), проявляли постепенное снижение с ростом жесткости гидрогеля КМ-НА для |G*|<200 Па и последующего восстановления (фигура 5). Клетки из всех типов гидрогеля экспрессировали белки ЕрСАМ, NCAM и CD44; однако, обогащенный CD44 возникал, в составе КМ-НА, содержащем 1.2% CMHA-S или меньше, в то время как NCAM оставался богатым во всех вариантах гидрогелей КМ-НА (фигура 4).
Пример 6
Исследовали влияние НА на улучшение сохранности механизмов адгезии, способные облегчить культивирование клеток и сохранение их функционирования после оттаивания. Свежевыделенные hHpSC и гепатобласты выделяли из эмбриональной печени и криоконсервировали в одном из нескольких различных буферов для криоконсервирования с добавлением 0,5 или 0,10% гиалуронанов (НА) или без него. Более конкретно, образцы замораживали при концентрации 2х 106 клеток /мл в растворе для криоконсервирования, содержащем либо культуральную среду с добавлением 10% DMSO, либо CryoStorTM-CS10 (Biolife Solutions), и 0,05, или 0,10% НА гидрогеля по весу. Клеткам позволяли уравновешиваться с растворе для криоконсервирования в течение 10 мин при 4°С перед контролируемым замораживанием в НА без поперечных связей, как показано на фигуре 13.
После оттаивания клетки наносили на плашки для культуры ткани, покрытые коллагеном III при 1 мкг/см2 для облегчения прикрепления стволовых клеток.
Результаты
Все проверенные буферы свидетельствовали о высоких значениях выживаемости (80-90%) после оттаивания (фигура 14). Однако добавление НА демонстрировало значительное улучшение способности консервированных клеток прикрепляться к поверхности(ям) культуры ткани и культивированию. Наилучшие результаты наблюдались для клеток, криоконсервированных в изотонической среде CS10 с добавлением небольших количеств гиалуронанов (0,05 или 0,10%). Полученные результаты обнаруживают улучшенные способы криоконсервирования свежевыделенных предшественников клеток печени человека в условиях без сыворотки, предлагая более эффективные способы для хранения стволовых клеток как для исследовательских, так и для потенциально терапевтических целей.
Определяли экспрессию межклеточных факторов адгезии и факторов адгезии клеток к матриксу. Результаты профилей генетической экспрессии молекул адгезии клеток в криоконсервированных образцах можно видеть на фигуре 15. Наибольшая экспрессия интегрина р1 была видна в образцах, замороженных в CS10 +0.05% НА (0,130±0,028, n=28). Это существенно отличается от экспрессии, наблюдаемой в свежих образцах (0,069±0,007, n=24, р<0.01). Кроме того, экспрессия CDH-1 (Е-кадаверина) в клетках, замороженных в CS10+0,1% НА (0,049±0,006, n=20) и CS10+0,05% HA (0.064±0,003, n=16) демонстрировала значительное увеличение по сравнению со свежими образцами (0,037±,005, n=36, р<0,05).
Несмотря на то, что изобретение было описано в связи с его специфическими воплощениями, следует иметь в виду, что оно способно к дальнейшим модификациям, и данная заявка должна охватить все варианты, применения или изменения предлагаемого ниже изобретения. В целом, принципы данного изобретения, включая такие отклонения от настоящего изложения, которые проявляются в пределах известной или общепринятой практики в области, к которой относится изобретение и которая может быть применена к приведенным выше существенным характеристикам, представлены в рамках приложенной формулы.
Claims (15)
1. Способ лечения субъекта, у которого печень находится в поврежденном или дисфункциональном состоянии, включающий прививку смеси клеток, получаемых с помощью
a) получения нормальных клеток печени или желчных протоков от донора, причем эти клетки печени представляют собой стволовые клетки, коммитированные клетки-предшественники или зрелые клетки;
b) комбинирования этих клеток с одним или несколькими ангиобластами, эндотелиальными клетками-предшественниками и клетками-предшественниками звездчатых клеток и одним или несколькими гель-образующими биоматериалами для образования смеси,
причем эта смесь вводится непосредственно в или на печень субъекта, и основная часть этих нормальных клеток донора размещается в или на, по меньшей мере, части печени in vivo.
a) получения нормальных клеток печени или желчных протоков от донора, причем эти клетки печени представляют собой стволовые клетки, коммитированные клетки-предшественники или зрелые клетки;
b) комбинирования этих клеток с одним или несколькими ангиобластами, эндотелиальными клетками-предшественниками и клетками-предшественниками звездчатых клеток и одним или несколькими гель-образующими биоматериалами для образования смеси,
причем эта смесь вводится непосредственно в или на печень субъекта, и основная часть этих нормальных клеток донора размещается в или на, по меньшей мере, части печени in vivo.
2. Способ по п. 1, в котором смесь дополнительно содержит питательную среду, сигнальные молекулы, белки внеклеточного матрикса или их комбинацию.
3. Способ по п. 1 или 2, в котором:
- донором является субъект, имеющий печень в поврежденном или дисфункциональном состоянии, а нормальные клетки донора получены из неповрежденной и не дисфункциональной части печени, или при котором донором является не аутологичный донор и/или
- донором является ребенок или взрослый.
- донором является субъект, имеющий печень в поврежденном или дисфункциональном состоянии, а нормальные клетки донора получены из неповрежденной и не дисфункциональной части печени, или при котором донором является не аутологичный донор и/или
- донором является ребенок или взрослый.
4. Способ по пп. 1-3, в котором:
- один или несколько биоматериалов включают коллагены, ламинины, адгезионные молекулы, протеогликаны, гиалуронаны, гликозаминогликановые цепи, хитозан, алгинат и синтетические биодеградируемые и биосовместимые полимеры или их комбинации.
- один или несколько биоматериалов включают коллагены, ламинины, адгезионные молекулы, протеогликаны, гиалуронаны, гликозаминогликановые цепи, хитозан, алгинат и синтетические биодеградируемые и биосовместимые полимеры или их комбинации.
5. Способ по любому из пп. 1-4, в котором сигнальные молекулы включают фактор роста фибробластов, фактор роста гепатоцитов, эпидермальный фактор роста, фактор роста сосудистого эндотелия (VEGF), инсулиноподобный фактор роста I (IGF-I), инсулиноподобный фактор роста II (IGF-II), онкостатин-М, фактор ингибирования лейкемии (LIF), интерлейкины, трансформирующий β-фактор роста (TGF-β), фактор роста гепатоцитов (HGF), трансферрин, инсулин, трансферрин/fe, три-йодтиронин (Т3), глюкагон, глюкокортикоиды, гормоны роста, эстрогены, андрогены, тироидные гормоны и их комбинации и при котором интерлейкины представляют собой предпочтительно IL-6, IL-11, IL-13 или их комбинации.
6. Способ по любому из пп. 1-5, в котором нормальные клетки донора культивируются в не содержащей сыворотку среде и при котором эта среда предпочтительно содержит инсулин, трансферрин, липиды, кальций, цинк и селен.
7. Способ по любому из пп. 1-6, в котором нормальные клетки донора отверждаются ex vivo или in vivo в биоматериалах перед введением клеток субъекту.
8. Способ по любому из пп. 1-7, в котором:
- смесь клеток вводят прямо в или рядом с поврежденной или находящейся в дисфункциональном состоянии тканью; и/или
- смесь клеток вводят прямо в ткань, представляющую собой сальник или печень, и/или
- смесь клеток вводят с помощью инъекции, биодеградируемого покрытия или губки.
- смесь клеток вводят прямо в или рядом с поврежденной или находящейся в дисфункциональном состоянии тканью; и/или
- смесь клеток вводят прямо в ткань, представляющую собой сальник или печень, и/или
- смесь клеток вводят с помощью инъекции, биодеградируемого покрытия или губки.
9. Способ криоконсервирования клеток, включающий:
a) получение смеси нормальных клеток печени или желчных протоков донора, содержащих стволовые клетки, коммитированные клетки-предшественники или зрелые клетки;
b) комбинирование этих клеток одним или несколькими ангиобластами, предшественниками эндотелиальных клеток и клетками-предшественниками звездчатых клеток и с одним или несколькими биоматериалами;
c) замораживание смеси, в котором:
- один или несколько биоматериалов включают коллагены, ламинины, адгезионные молекулы, протеогликаны, гиалуронаны, гликозаминогликановые цепи, хитозан, алгинат и синтетические биодеградируемые и биосовместимые полимеры или их комбинации, предпочтительно биоматериал включает гиалуронаны; и/или
- в котором смесь дополнительно скомбинирована с криоконсервантом, выбранным из группы, состоящей из диметилсульфоксида (DMSO), глицерина, этиленгликоля, этедиола, 1,2-пропандиола, 2,-3 бутендиола, формамида, N-метилформамида, 3-метокси-1,2-пропандиола как таковых и их комбинаций; и/или
- в котором смесь дополнительно комбинируют с сахаром, глицином, аланином, поливинилпирролидоном, пируватом, ингибитором апоптоза, кальцием, лактобионатом, раффинозой, дексамитазоном, восстановленными ионами натрия, холином, антиоксидантами, гормонами или их комбинацией, причем предпочтительно сахаром является трегалоза, фруктоза, глюкоза или их комбинация; и/или
- в котором антиоксидантом являются витамин Е, витамин А, бета-каротин или их комбинация.
a) получение смеси нормальных клеток печени или желчных протоков донора, содержащих стволовые клетки, коммитированные клетки-предшественники или зрелые клетки;
b) комбинирование этих клеток одним или несколькими ангиобластами, предшественниками эндотелиальных клеток и клетками-предшественниками звездчатых клеток и с одним или несколькими биоматериалами;
c) замораживание смеси, в котором:
- один или несколько биоматериалов включают коллагены, ламинины, адгезионные молекулы, протеогликаны, гиалуронаны, гликозаминогликановые цепи, хитозан, алгинат и синтетические биодеградируемые и биосовместимые полимеры или их комбинации, предпочтительно биоматериал включает гиалуронаны; и/или
- в котором смесь дополнительно скомбинирована с криоконсервантом, выбранным из группы, состоящей из диметилсульфоксида (DMSO), глицерина, этиленгликоля, этедиола, 1,2-пропандиола, 2,-3 бутендиола, формамида, N-метилформамида, 3-метокси-1,2-пропандиола как таковых и их комбинаций; и/или
- в котором смесь дополнительно комбинируют с сахаром, глицином, аланином, поливинилпирролидоном, пируватом, ингибитором апоптоза, кальцием, лактобионатом, раффинозой, дексамитазоном, восстановленными ионами натрия, холином, антиоксидантами, гормонами или их комбинацией, причем предпочтительно сахаром является трегалоза, фруктоза, глюкоза или их комбинация; и/или
- в котором антиоксидантом являются витамин Е, витамин А, бета-каротин или их комбинация.
10. Способ по п. 9, в котором смесь комбинируют с одним или несколькими изотоническими питательными средами, сигнальными молекулами и компонентами внеклеточного матрикса в растворе одного или нескольких гель-образующих предшественников.
11. Тканевый трансплантат, включающий клетки печени, выбранные из стволовых клеток печени, гепатобластов, коммитированных клеток-предшественников гепатоцитов и/или зрелых гепатоцитов, смешанные с одними или несколькими ангиобластами, предшественниками эндотелиальных клеток и клетками-предшественниками звездчатых клеток и с одним или несколькими биоматериалами для образования трансплантата, в котором компоненты трансплантата имеют модуль сдвига от 25 до 520 Па.
12. Способ лечения печени, включающий локализацию нормальных клеток печени или желчных протоков на поверхности, во внутренней части печени-мишени или и там и там, путем введения препарата, содержащего нормальные клетки печени или желчных протоков, один или несколько ангиобластов, предшественников эндотелиальных клеток и клеток-предшественников звездчатых клеток и раствор одного или нескольких биоматериалов в присутствии кросс-линкера, отличного от указанного биоматериала, на поверхность, во внутреннюю часть или в оба этих отдела печени-мишени in vivo, причем этот биоматериал и кросс-линкер связываются ковалентно и перекрестно друг с другом с образованием гидрогеля, содержащего клетки печени на поверхности, во внутренней части или в обоих этих отделах печени-мишени, причем печень-мишень находится в поврежденном или дисфункциональном состоянии, и причем
- клетки печени локализованы в течение по меньшей мере 12 часов, по меньшей мере в течение 24 часов или по меньшей мере около 48 часов или по меньшей мере 72 часов на поверхности, во внутренней части или в обоих этих отделах печени-мишени.
- клетки печени локализованы в течение по меньшей мере 12 часов, по меньшей мере в течение 24 часов или по меньшей мере около 48 часов или по меньшей мере 72 часов на поверхности, во внутренней части или в обоих этих отделах печени-мишени.
13. Способ по п. 12, в котором один или несколько биоматериалов включают гликозаминногликаны, гиалуронаны, протеогликаны, желатины, коллагены, ламинины, другие прикрепляющие белки, компоненты матрикса растительного происхождения, их денатурированные формы или их комбинации; и/или
- один или несколько биоматериалов состоят из тиол-модифицированного гиалуроната натрия и тиол-модифицированного желатина; и/или
- кросс-линкер включает диакрилат полиэтиленгликоля или его дисульфид-содержащее производное; и/или
- гидрогель обладает вязкостью в интервале от приблизительно 0,1 до приблизительно 100 кПа.
- один или несколько биоматериалов состоят из тиол-модифицированного гиалуроната натрия и тиол-модифицированного желатина; и/или
- кросс-линкер включает диакрилат полиэтиленгликоля или его дисульфид-содержащее производное; и/или
- гидрогель обладает вязкостью в интервале от приблизительно 0,1 до приблизительно 100 кПа.
14. Способ по п. 13, в котором гидрогель обладает вязкостью в интервале от приблизительно 100 Па до приблизительно 500 Па.
15. Способ по п. 12, в котором указанный препарат в присутствии эффективного количества кросс-линкера вводят в карман, сформированный на поверхности печени-мишени, причем карман приготовлен из сальника, паутины паука, насекомого и/или синтетического, биоразлагаемого, биосовместимого, неиммуногенного материала.
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US33244110P | 2010-05-07 | 2010-05-07 | |
US61/332,441 | 2010-05-07 | ||
PCT/US2011/035498 WO2011140428A1 (en) | 2010-05-07 | 2011-05-06 | Method of engrafting cells from solid tissues |
Related Child Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2015155133A Division RU2736955C2 (ru) | 2010-05-07 | 2011-05-06 | Способ прививки клеток печени субъекту с заболеванием или дисфункцией печени |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2012152610A RU2012152610A (ru) | 2014-06-20 |
RU2574364C2 true RU2574364C2 (ru) | 2016-02-10 |
Family
ID=
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2618989C1 (ru) * | 2016-03-09 | 2017-05-11 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова" (МГУ) | Способ лечения печеночной недостаточности |
Citations (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5885829A (en) * | 1996-05-28 | 1999-03-23 | The Regents Of The University Of Michigan | Engineering oral tissues |
RU2268062C1 (ru) * | 2004-06-04 | 2006-01-20 | ЗАО "РеМеТэкс" | Биотрансплантат, способ его получения (варианты) и способ лечения дилятационной кардиомиопатии |
US20060025524A1 (en) * | 2004-07-28 | 2006-02-02 | University Of Delaware | Novel hydrogels and uses thereof |
RU2283113C2 (ru) * | 2004-12-14 | 2006-09-10 | Государственное учреждение Научно-исследовательский институт клинической иммунологии СО РАМН | Способ лечения хронических диффузных заболеваний печени |
WO2009022339A1 (en) * | 2007-08-15 | 2009-02-19 | Ramot At Tel Aviv University Ltd. | Polypeptides, matrices, hydrogels and methods of using same for tissue regeneration and repair |
RU2347579C1 (ru) * | 2007-07-03 | 2009-02-27 | Общество с ограниченной ответственностью "Медицинские технологии" | Способ получения клеточной культуры для лечения сосудистых и демиелинизирующих заболеваний нервной системы и клеточная культура, полученная этим способом (варианты) |
Patent Citations (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5885829A (en) * | 1996-05-28 | 1999-03-23 | The Regents Of The University Of Michigan | Engineering oral tissues |
RU2268062C1 (ru) * | 2004-06-04 | 2006-01-20 | ЗАО "РеМеТэкс" | Биотрансплантат, способ его получения (варианты) и способ лечения дилятационной кардиомиопатии |
US20060025524A1 (en) * | 2004-07-28 | 2006-02-02 | University Of Delaware | Novel hydrogels and uses thereof |
RU2283113C2 (ru) * | 2004-12-14 | 2006-09-10 | Государственное учреждение Научно-исследовательский институт клинической иммунологии СО РАМН | Способ лечения хронических диффузных заболеваний печени |
RU2347579C1 (ru) * | 2007-07-03 | 2009-02-27 | Общество с ограниченной ответственностью "Медицинские технологии" | Способ получения клеточной культуры для лечения сосудистых и демиелинизирующих заболеваний нервной системы и клеточная культура, полученная этим способом (варианты) |
WO2009022339A1 (en) * | 2007-08-15 | 2009-02-19 | Ramot At Tel Aviv University Ltd. | Polypeptides, matrices, hydrogels and methods of using same for tissue regeneration and repair |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
МКЕРВАЛИ Н. Г. Отдаленные результаты аллотрансплантации культур островковых клеток поджелудочной железы плодов больным инсулинзависимым сахарным диабетом. Вопросы трансплантологии и искусственных органов. 1989, C. 91-98. ЗАВЕРНЫЙ Г. Л. Лечение послеоперационного гипопаратиреоза методом ксенотрансплантации культуры клеток паращитовидных желез свиньи,1990, Трансплантация органов, 1990, C. 57-59. Инновационные технологии в трансплантации органов, тканей и клеток. Материалы Всероссийской конференции с международным участием, Россия, Самара, 18-20 июня 2008 г., 2008, сборник статей. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2618989C1 (ru) * | 2016-03-09 | 2017-05-11 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова" (МГУ) | Способ лечения печеночной недостаточности |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JP7358441B2 (ja) | 膵臓に細胞を移植するための薬剤の製造のための混合物の使用 | |
KR102417995B1 (ko) | 탈세포화된 기관 및 조직에 대한 마이크로입자 및 내피 세포의 용도 | |
ES2968686T3 (es) | Método para tratar afecciones pancreáticas mediante trasplante de células madre en las paredes de los conductos biliares | |
RU2539918C1 (ru) | Способ получения тканеспецифического матрикса для тканевой инженерии паренхиматозного органа | |
AU2019271995B2 (en) | Method of engrafting cells from solid tissues | |
RU2574364C2 (ru) | Способ трансплантации клеток из плотных тканей | |
BR122021002798B1 (pt) | Método de criopreservação de células | |
Sabetkish et al. | Lung Extracellular Matrix as a Platform for Lung Organ Bioengineering: Design and Development of Tissue Engineered Lung | |
Alzebdeh | Development of scaffold architectures and heterotypic cell systems for hepatocyte transplantation |