RU2572349C1 - Система контроля фотосинтетического и дыхательного со2-газообмена растений, изолированных органов и тканей in vitro - Google Patents
Система контроля фотосинтетического и дыхательного со2-газообмена растений, изолированных органов и тканей in vitro Download PDFInfo
- Publication number
- RU2572349C1 RU2572349C1 RU2014128497/10A RU2014128497A RU2572349C1 RU 2572349 C1 RU2572349 C1 RU 2572349C1 RU 2014128497/10 A RU2014128497/10 A RU 2014128497/10A RU 2014128497 A RU2014128497 A RU 2014128497A RU 2572349 C1 RU2572349 C1 RU 2572349C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- vitro
- air
- gas
- volume
- circuit
- Prior art date
Links
Images
Abstract
Изобретение относится к области биохимии. Предложена система контроля фотосинтетического и дыхательного СО2-газообмена в культуре in vitro. Система герметичным образом через типовой уплотнитель сопрягается с прозрачным технологическим объемом in vitro с культивируемыми полноценными растениями на различных этапах онтогенеза, регенерантами, изолированными органами и тканями. Система образует вместе с подключенным технологическим объемом общий замкнутый герметичный воздушный контур. Контур состоит из последовательно соединенных между собой указанного технологического объема и воздушного насоса, ротаметра, воздушного осушителя и CO2-газоанализатора. Контур между CO2-газоанализатором и технологическим объемом in vitro дополнительно оборудован двухпозиционным газовым переключателем. Изобретение обеспечивает многократную воспроизводимость процедуры измерения. 1 з.п. ф-лы, 3 ил., 1 табл.
Description
Прототип: Баранова Е.Н., Аканов Э.Н., Гулевич А.А., Куренина Л.В., Данилова С.А., Халилуев М.Р. Интенсивность темнового дыхания трансгенных растений томата, экспрессирующих ген FeSOD1, в условиях хлоридного и сульфатного засоления // Доклады РАСХН. - 2013. - №6. - с. 13-16.
Изобретение может быть использовано в сельском хозяйстве в ходе производственной деятельности, а также в области биотехнологии и физиологии растений при проведении научно-исследовательских работ, объектами которых служат культивируемые в условиях in vitro полноценные растения на различных этапах онтогенеза, регенераты, изолированные органы и ткани (в том числе, каллусная ткань).
Известна система контроля фотосинтетического и дыхательного СО2-газообмена растений LI-6200, разработанная американской фирмой LI-COR (LI-6200 Primer. Авторское право фирмы LI-COR Inc. 1987 г. Lincoln Nebraska 68504 USA). Система при ее работе по замкнутому принципу состоит из трех главных частей: листовой камеры, насоса и инфракрасного СО2-газоанализатора. Листовая камера имеет двухстворчатую конструкцию. С помощью эластичной прокладки неотделенный от целого растения лист во время измерения остается защемленным между двумя створками камеры. Прозрачная поверхность створок обеспечивает доступ света к фотосинтезирующей поверхности листа растения. В результате камера и в целом весь замкнутый контур системы оказываются герметично изолированными от воздуха в окружающей среде. Определение CO2-газообмена между листом и атмосферой производится расчетным путем в процессе отслеживания скорости изменения концентрации CO2 внутри замкнутого контура с учетом ряда факторов, таких как рабочая площадь листовой поверхности, объем системы, интенсивность освещения, температура и давление.
Однако с точки зрения возможности применения в условиях in vitro, а также по технической сущности, наиболее близкой к заявленной системе контроля является другая известная система фотосинтетического и дыхательного СО2-газообмена: Баранова Е.Н., Аканов Э.Н., Гулевич А.А., Куренина Л.В., Данилова С.А., Халилуев М.Р. Интенсивность темнового дыхания трансгенных растений томата, экспрессирующих ген FeSOD1, в условиях хлоридного и сульфатного засоления // Доклады РАСХН. - 2013. - №6. - с. 13-16.
На фиг. 1 представлена принципиальная схема замкнутого воздушного контура известной системы контроля.
Главной ее отличительной особенностью является то, что в качестве герметичного контролируемого объема вместо листовой камеры непосредственно используется технологический объем, применяемый в процессе культивирования in vitro (пробирка, чашка Петри, контейнер, колба). Культивирование индивидуальных регенерантов или же растений на ранних этапах развития наиболее часто осуществляют в пробирках различного размера, как это представлено на фиг. 1. В результате проводится измерение СО2-газообмена не отдельного фрагмента листа, а всего объекта (регенерантов, растений или их эксплантов (изолированных органов или их фрагментов, тканей, в том числе, каллусной)), тем самым увеличивая достоверность результатов измерения.
Герметизация пробирки осуществляется при помощи резиновой пробки 2 с двумя отверстиями, по одной из которых воздух забирается насосом 3, а по другой - возвращается в пробирку. В замкнутый циркулирующий контур последовательно вовлечены: ротаметр 4, осушитель воздуха 5 и инфракрасный CO2-газоанализатор 6.
CO2-газообмен рассчитывается аналогично тому, как это осуществляется в описанной выше известной системе контроля.
Одним из недостатков вышеописанной системы для оценки фотосинтетического и дыхательного СО2-газообмена растений является то, что исходная концентрация CO2 внутри системы формируется случайным образом одномоментно при ее замыкании и зависит от того, каким было нерегулируемое содержание этого газа в окружающем воздухе, например под влиянием выдыхаемого оператором воздуха.
Другим недостатком является отсутствие электрического источника света, который необходим для обеспечения полноценного прохождения процесса фотосинтеза.
Была поставлена цель - устранить отмеченные недостатки. Для этого воздушный контур системы, как это представлено на фиг. 1, между составными элементами 1 и 6 дополнительно оборудован двухпозиционным газовым переключателем 7, благодаря которому заявленная система контроля приобретает способность многократно воспроизводить процедуру измерения.
В зависимости от положения А или Б воздушный контур становится, соответственно, замкнутым или открытым. В положении А система контроля переключается в рабочий режим, а в другом положении Б воздушный контур «промывается» воздухом из внешнего воздушного источника 8, в качестве которого может быть использован чистый наружный воздух, находящийся за пределами рабочей зоны. По окончании данной операции в воздушном контуре устанавливается концентрация CO2, соответствующая заданному технологическому регламенту, и система контроля занимает исходное положение перед началом нового измерительного цикла.
Для получения эффекта объемного освещения технологический объем оборудован электрическим источником света. Источником света является кольцевая люминисцентная лампа фирмы OSRAM (Германия). Как видно на фиг. 2, технологический объем, в котором находится объект для измерений, находится в центре кольцевого источника света.
Заявленная система контроля была технически реализована на базе инфракрасного CO2-газоанализатора ГОА 4-07 (НПО Химавтоматика), имеющего шкалу 0-0,05% CO2, и электрической лампы OSRAM (L 22W/840 LUMILUX Cool White 1230 lm). Лампа создавала световой квантовый поток, равный 90 мкм/м2с.
В качестве растительного материала для апробации заявленной системы были использованы асептические проростки томата сорта Форвард. Асептические донорные проростки были получены из семян. Впоследствии 8-10-суточные асептические проростки томата переносили на базовую питательную среду, составленную по прописи Мурасиге-Скуга, с различным содержанием нитрата аммония: I вариант среды содержал 10,3 мМ NH4 + и 29,1 мМ NO3 -, II вариант - 20,6 мМ NH4 + и 39,4 мМ NO3 - , III вариант - 30,9 мМ NH4 + и 49,7 мМ NO3 -. Проростки культивировали в одинаковых по размеру технологических объемах, представляющих собой прозрачные стеклянные сосуды для культивирования емкостью 300 см. В каждом сосуде с различными вариантами аммонийно-нитратного питания находилось по 10 проростков томата. После 8 суток культивирования проводили измерение интенсивности фотосинтетического и дыхательного CO2-газообмена с помощью заявленной системы. Для этого каждый сосуд для культивирования герметичным образом подключали к системе контроля. Процесс непрерывного измерения осуществляли с помощью самописца КСП-4 (0-10 mV), подключенного к газоанализатору. На диаграммной ленте регистрировали изменение концентрации CO2 в технологическом объеме при включенной и выключенной лампе. В результате соответствующий участок записи на диаграммной ленте, как показано на фиг. 3, отражал процесс темнового дыхания и видимого фотосинтеза. По полученным записям, согласно известной методике для закрытых газометрических систем (Вознесенский В.Л., Заленский О.В., Семихатова О.А. Методы исследования фотосинтеза и дыхания растений. Л.: Наука, 1965. 305 с.), рассчитывали интенсивность фотосинтеза и темнового дыхания в мкг CO2/чмг, приведенные к нормальным условиям, учитывая, что общий объем замкнутого контура системы, включая сам технологический объем, составляет 400 см, температура воздуха - 294 K. Полученные результаты представлены в таблице ниже.
Claims (2)
1. Система контроля фотосинтетического и дыхательного СО2-газообмена в культуре in vitro, которая герметичным образом через типовой уплотнитель сопрягается с прозрачным технологическим объемом in vitro с культивируемыми полноценными растениями на различных этапах онтогенеза, регенерантами, изолированными органами и тканями и которая в результате образует вместе с подключенным технологическим объемом общий замкнутый герметичный воздушный контур, состоящий из последовательно соединенных между собой указанного технологического объема и воздушного насоса, ротаметра, воздушного осушителя и CO2-газоанализатора, отслеживающего скорость изменения концентрации CO2 внутри указанного контура, отличающаяся тем, что указанный контур между CO2-газоанализатором и технологическим объемом in vitro дополнительно оборудован двухпозиционным газовым переключателем, позволяющим многократно воспроизводить регламентированную процедуру контроля, замыкая и размыкая воздушный контур для возвращения системы в исходное состояние путем вентиляции контура от внешнего воздушного источника, имеющего стабильный состав воздуха согласно принятому технологическому регламенту.
2. Система контроля по п. 1, отличающаяся тем, что прозрачный технологический объем оборудован электрическим кольцевым источником света, при этом прозрачный технологический объем находится в центре кольцевого источника света.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2014128497/10A RU2572349C1 (ru) | 2014-07-11 | 2014-07-11 | Система контроля фотосинтетического и дыхательного со2-газообмена растений, изолированных органов и тканей in vitro |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2014128497/10A RU2572349C1 (ru) | 2014-07-11 | 2014-07-11 | Система контроля фотосинтетического и дыхательного со2-газообмена растений, изолированных органов и тканей in vitro |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2572349C1 true RU2572349C1 (ru) | 2016-01-10 |
Family
ID=55072105
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2014128497/10A RU2572349C1 (ru) | 2014-07-11 | 2014-07-11 | Система контроля фотосинтетического и дыхательного со2-газообмена растений, изолированных органов и тканей in vitro |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2572349C1 (ru) |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EA200600345A1 (ru) * | 2003-07-31 | 2006-06-30 | Блу Мембрейнз Гмбх | Способ культивирования клеток |
RU2403706C1 (ru) * | 2009-06-29 | 2010-11-20 | Федеральное государственное общеобразовательное учреждение высшего профессионального образования "Челябинский государственный агроинженерный университет" | Способ автоматического управления свето-температурно-влажностным режимом в теплице и система для его реализации |
EA201070861A1 (ru) * | 2008-01-18 | 2011-02-28 | Авестон Гриффорд Лтд. | Фотобиореактор |
RU117920U1 (ru) * | 2010-11-08 | 2012-07-10 | Ческе Високе Учени Техницке В Празе, Факульта Стройни Устав Механики, Биомеханики А Мехатроники | Биореактор для функциональной тканевой инженерии |
-
2014
- 2014-07-11 RU RU2014128497/10A patent/RU2572349C1/ru not_active IP Right Cessation
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EA200600345A1 (ru) * | 2003-07-31 | 2006-06-30 | Блу Мембрейнз Гмбх | Способ культивирования клеток |
EA201070861A1 (ru) * | 2008-01-18 | 2011-02-28 | Авестон Гриффорд Лтд. | Фотобиореактор |
RU2403706C1 (ru) * | 2009-06-29 | 2010-11-20 | Федеральное государственное общеобразовательное учреждение высшего профессионального образования "Челябинский государственный агроинженерный университет" | Способ автоматического управления свето-температурно-влажностным режимом в теплице и система для его реализации |
RU117920U1 (ru) * | 2010-11-08 | 2012-07-10 | Ческе Високе Учени Техницке В Празе, Факульта Стройни Устав Механики, Биомеханики А Мехатроники | Биореактор для функциональной тканевой инженерии |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Adhikari et al. | Phenomic and physiological analysis of salinity effects on lettuce | |
Kozai et al. | Photosynthetic characteristics of Cymbidium plantlet in vitro | |
Werth et al. | Root-derived carbon in soil respiration and microbial biomass determined by 14C and 13C | |
Jud et al. | Volatilomics: a non-invasive technique for screening plant phenotypic traits | |
ES2236202T3 (es) | Medida de cambios de velocidad metabolica. | |
JP2013513087A5 (ru) | ||
Porter et al. | How well do you know your growth chambers? Testing for chamber effect using plant traits | |
EP2918179A1 (en) | Control apparatus for controlled atmosphere cells for storing perishable items | |
CN110769684A (zh) | 利用uv的植物栽培方法及用于其的植物栽培系统 | |
VALCKE | Can chlorophyll fluorescence imaging make the invisible visible? | |
Su et al. | Development of a systemic crop signalling system for automated real-time plant care in vegetable crops | |
CN102435589B (zh) | 有害物质的评价方法以及有害物质的评价用工具箱 | |
Georgieva et al. | In vitro propagation of wild Bulgarian small berry fruits (bilberry, lingonberry, raspberry and strawberry) | |
RU2572349C1 (ru) | Система контроля фотосинтетического и дыхательного со2-газообмена растений, изолированных органов и тканей in vitro | |
Willits et al. | Using chlorophyll fluorescence to model leaf photosynthesis in greenhouse pepper and tomato | |
CN103698330A (zh) | 一种测定植物呼吸作用的实验装置及其方法 | |
Polzella et al. | Morpho-physiological responses of Pisum sativum L. to different light-emitting diode (led) light spectra in combination with biochar amendment | |
Zobayed et al. | Cauliflower shoot-culture: effects of different types of ventilation on growth and physiology | |
KR101316593B1 (ko) | 식물생육 조절장치 | |
Van Oorschot et al. | An assembly for the continuous recording of CO2 exchange and transpiration of whole plants | |
JPWO2013035816A1 (ja) | 植物栽培装置、植物栽培方法、植物栽培プログラム、及びコンピュータ読み取り可能な記録媒体 | |
Studer et al. | The MICE facility–a new tool to study plant–soil C cycling with a holistic approach | |
Yadav et al. | Assessing rates of long-distance carbon transport in arabidopsis by collecting phloem exudations into EDTA solutions after photosynthetic labeling with [14C] CO2 | |
Pérez-Molina et al. | Chlorophyll fluorescence and biomass partitioning within light and nitrogen deficiency: An example of the use of the R programming language for teaching | |
RU2677921C1 (ru) | Способ получения растительного сырья ириса сибирского (Iris sibirica L.) методами биотехнологии |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20180712 |