RU2571896C2 - Способ моделирования женского ановуляторного бесплодия на крысах - Google Patents

Способ моделирования женского ановуляторного бесплодия на крысах Download PDF

Info

Publication number
RU2571896C2
RU2571896C2 RU2015102815/14A RU2015102815A RU2571896C2 RU 2571896 C2 RU2571896 C2 RU 2571896C2 RU 2015102815/14 A RU2015102815/14 A RU 2015102815/14A RU 2015102815 A RU2015102815 A RU 2015102815A RU 2571896 C2 RU2571896 C2 RU 2571896C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
rats
infertility
anovulatory
phase
female
Prior art date
Application number
RU2015102815/14A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2015102815A (ru
Inventor
Николай Александрович Лысов
Анна Николаевна Лысова
Елена Григорьевна Зарубина
Original Assignee
"Частное учреждение образовательная организация высшего образования "Медицинский университет "РЕАВИЗ"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by "Частное учреждение образовательная организация высшего образования "Медицинский университет "РЕАВИЗ" filed Critical "Частное учреждение образовательная организация высшего образования "Медицинский университет "РЕАВИЗ"
Priority to RU2015102815/14A priority Critical patent/RU2571896C2/ru
Publication of RU2015102815A publication Critical patent/RU2015102815A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2571896C2 publication Critical patent/RU2571896C2/ru

Links

Images

Landscapes

  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Abstract

Изобретение относится к медицине, в частности к экспериментальной гинекологии и патофизиологии репродуктивной системы, и может быть использовано для моделирования и последующего изучения женского ановуляторного бесплодия. Моделирование проводят на крысах породы Wistar. Причем используют половозрелых самок крыс с регулярным эстральным циклом в возрасте не менее 120 дней весом 180-210 грамм. Животным однократно в фазу диэструса, подтвержденного цитологическим анализом влагалищных мазков, вводят в носовые ходы 10 мкл раствора (2×10-3 моль) блокатора кисспептинэргических рецепторов - kisspeptin-234 trifluoroacetate salt. Пролангацию ановуляторой фазы подтверждают цитологически. Способ позволяет создать приближенную к физиологическим условиям экспресс - модель женского ановуляторного бесплодия, обладает хорошей воспроизводимостью результатов и возможностью продления сроков эксперимента без вреда для жизни животного неограниченно долго. 1 табл., 5 ил.

Description

Изобретение относится к области медицины, а более конкретно к экспериментальной гинекологии и патофизиологии репродуктивной системы, и может быть использовано для моделирования и последующего изучения женского ановуляторного бесплодия.
По данным отечественной и зарубежной литературы, с проблемой бесплодия сталкиваются и обращаются за медицинской помощью 15% супружеских пар, при этом в более чем половине случаев при обследовании причиной этому является женское бесплодие. Этиология женского бесплодия многообразна, однако, основное место занимают ановуляторные факторы. Несмотря на совершенствование методов диагностики и лечения, ановуляторное бесплодие по-прежнему плохо поддается лечению, а возможность забеременеть у таких женщин остается низкой. Вместе с тем в настоящее время отсутствуют физиологически приближенные экспериментальные модели женского ановуляторного бесплодия, что значительно затрудняет процесс разработки его диагностического алгоритма и программ коррекции.
Именно поэтому исследование ановуляторного бесплодия в экспериментальных условиях остается актуальной задачей.
Известны способы восстановления воспроизводительной функции у бесплодных животных, имеющих функциональные расстройства яичников путем введения стимулирующих лекарственных препаратов, преимущественно гормонов (С.А. Сысоев, Физиология размножения с.-х. животных, М.: "Колос", 1978, с. 142; А.П. Студенцов и др. "Ветеринарное акушерство и гинекология", М.: "Колос", 1980, с. 374-384; И.Е. Мозгов и др. "Гормоны в животноводстве", М.: "Колос", 1977, с. 34, 112, 125, 146; Н.И. Полянцев, А.Н. Синявин "Акушерско-гинекологическая диспансеризация на молочных фермах", М.: Росагропромиздат, 1989, с. 116-125; А.И. Сергиенко "Профилактика бесплодия крупного рогатого скота", М.: "Колос", 1984, с. 136-160; Н.И. Полянцев "Практические советы по борьбе с яловостью коров", М.: Россельхозиздат, 1986, с. 158; А.с. 709063, A61B 17/00; В.Г. Вогралик "Основы китайского лечебного метода чженьцзю", Горький, 1961 и др. (А.с. 1216844, A01K 67/02, 1992, Бюл. N 40).
Недостатками этих способов являются их факультативность, наличие побочных явлений, трудоемкость, нефизиологичность, связанная с дополнительным введением чужеродных для организма веществ, для угнетения половой функции. (Tripathi S.S. Brattacharya А.K. Luhture S.N. Influence of administration of massivedoses of oestrogens and progesterone on reproduction in heifers and conss. "Indian Vet"), 1979, 56, N 1, 41-44).
Также известен способ моделирования синдрома хронической ановуляции на крысах (RU №2076593, A01K 67/02, 02.061994), заключающийся в том, что в качестве медикаментозного средства для индукции экстральных циклов у нециклирующих самок, имеющих функциональные расстройства репродуктивных органов, вводят ганглиоблокатор бензогексоний в дозе 2 мг/кг внутримышечно с интервалом 6 ч до появления признаков течки.
Недостатками этого способа являются:
- модель не соответствует клинической ситуации бесплодия, а значит, данный способ не может считаться полностью физиологичным;
- модель не может быть использована для обработки методов лечения ановуляторного бесплодия, поскольку в ходе создания модели у экспериментального животного вызывается необратимая атрезия фолликулов;
- длительность проводимого эксперимента (не менее 30 дней), что затрудняет и удлиняет сроки исследования.
Данный метод не является физиологичным, поскольку для инициации бесплодия применяются вещества лекарственной природы. Возможны значительные аллергические осложнения и изменения в функционировании сердечно-сосудистой и центральной нервной системы, что затрудняет возможность интерпретации полученных результатов и снижает возможность переноса полученных результатов на женский организм.
В качестве прототипа взят способ моделирования синдрома хронической ановуляции на крысах (RU №2527166, G09B 23/28, 28.07.2013). Изобретение относится к экспериментальной медицине, а именно к изучению патофизиологии репродуктивной системы. Для этого используют неполовозрелых самок крыс линии Vistar в возрасте 30 дней, массой 30-35 г, при физиологическом отсутствии регулярных эстральных четырехдневных циклов. Моделирование проводят в течение одного месяца. При этом через питательный зонд ежедневно утром животному вводят раствор, содержащий 2 капли препарата Циклодинон, разведенный в 1 мл дистиллированной воды. Способ обеспечивает развитие атрезии незрелых фолликулов, отсутствие желтых тел в яичниках и циклических изменений в эндометрии.
Недостатком этого способа является его неполная физиологичность, т.к. объектом исследования являются не половозрелые крысы. Также в данной модели использовались крысы с врожденным нарушением эстрального цикла. Вызывает сомнение механизм воздействия циклодинона на формирование ановуляторного бесплодия, поскольку как в настоящее время доказано, повышение уровня пролактина приводит к снижению уровня ЛГ, ФСГ, и развитию ановуляторного бесплодия, и наоборот, снижение уровня пролактина приводит к увеличению выброса ЛГ и ФСГ и восстановлению цикла. Поскольку циклодинон обладает допаминэргическим действием и уменьшает уровень пролактина в крови, непонятно снижение на его фоне уровня ЛГ и ФСГ и возникновение ановуляторного бесплодия.
Задачей настоящего изобретения является создание приближенной к физиологическим условиям экспресс - модели женского ановуляторного бесплодия для разработки дальнейших способов его изучения, диагностики и лечения.
Поставленная задача достигается тем, что моделирование женского ановуляторного бесплодия производят на крысах породы Wistar, при этом используют половозрелых самок крыс с регулярным эстральным циклом в возрасте не менее 120 дней весом 180-210 грамм, которым однократно в фазу диэструса, подтвержденного цитологическим анализом влагалищных мазков, вводят в носовые ходы 10 мкл раствора (2×10-3 моль) блокатора кисспептинэргических рецепторов - kisspeptin-234 trifluoroacetate salt с последующим цитологическим подтверждением пролангации ановуляторной фазы.
Разработанный авторами способ моделирования женского ановуляторного бесплодия на крысах предполагает существование двухкомпонентной системы, состоящей из модели и прототипа, где роль модели играет животное, а прототипом является человек. При этом исследование модели дает возможность делать выводы о прототипе, в которых биологические посылки относятся к одному объекту, а научное заключение - к другому. В качестве экспериментального животного_для разработки экспериментальной модели ановуляторных нарушений в репродуктивной сфере женщины были выбраны крысы линии Wistar.
На выбор крыс в качестве модели для эксперимента повлияло несколько факторов. В частности, аллометричность функционирования репродуктивной сферы самок крыс и человека. Так, известно, что в норме частота и амплитуда импульсов гонадотропинов у женщин существенно меняется в зависимости от фазы менструального цикла, причем при сопоставлении пульсаций ЛГ и ФСГ в течение всего цикла у женщины и астрального цикла у животных (крыса) выявлена их полная идентичность.
По мнению профессора Raul Gomez (Global Fertility Academy, 2013), высокая аллометричность половых сфер женщин и крыс подтверждается не только схожестью нормального функционирования, формированием бесплодия, но и аналогичностью процессов инволюции половой сферы.
Новизна способа в том, что впервые для получения модели ановуляторного бесплодия использовался блокатор кисппептинэргических рецепторов, что прекращает воздействие на организм кисспептина, кодируемого геном kiSS-1. Поскольку установлено, что это ранее неизвестное, вырабатываемое в организме естественным путем, вещество отвечает за регуляцию репродуктивной функции организма через увеличение активности клеток гипоталамуса, выделяющих гормон гонадолиберин, который, в свою очередь, управляет уровнями лютеинизирующего гормона (ЛГ) и фолликулостимулирующего гормона (ФСГ), от которых зависит возникновение овуляции, а следовательно, возможность зачатия, то его блокада приводит к состоянию, характеризующемуся нарушением ановуляторной регуляции репродуктивной сферы и бесплодию. Таким образом, использование блокатора кисспептинэргических рецепторов - kisspeptin-234 trifluoroacetate salt (Sigma, USA) - полностью моделирует изменения в организме женщин, страдающих эндокринным бесплодием, что делает эту модель не отличимой от бесплодия, развивающегося в естественных условиях. Кроме этого, поскольку блокатор кисспептинэргических рецепторов не изменяет морфологию гонад, то и блокада рецепторов не является окончательной. Естественная активность рецепторов может быть восстановлена либо прекращением введения блокатора, либо повышением уровня кисспептина, либо другими лечебными мероприятиями, что позволяет использовать модель для обработки методов лечения ановуляторного бесплодия.
Способ моделирования ановуляторного бесплодия проводят на самках половозрелых крыс породы Wistar с регулярным эстеральным циклом весом 180-210 грамм, возрастом не менее 120 дней, в фазу диэструса, подтвержденного цитологическим анализом влагалищных мазков и состоит из 2-х этапов. Отобранные для эксперимента животные должны находиться в условиях стандартного режима освещения при температуре 20-22°C. Люминесцентные лампы (освещенность 750 лк на уровне клеток) должны освещать помещение в течение 12 дневных часов, на ночь свет должен отключаться. Кормление крыс производят полнорационным гранулированным кормом при свободном доступе к воде. Организация эксперимента осуществляется с учетом «Правил лабораторной практики в РФ и директив Европейской Конвенции по защите позвоночных животных (Strasbourg, 1986)».
На первом этапе моделирования эндокринного бесплодия оценивают ритмичность функционирования яичников животных и формируют группу животных с синхронизированными эстральными циклами в количестве, необходимом для дальнейших исследований. Оценку фаз эстрального цикла производят при помощи цитологического анализа влагалищных мазков у животных. Материал для цитологического исследования получают путем осторожного прикосновения ватно-марлевым тампоном к боковой стенке влагалища не соскабливая слизистую оболочку. В мазок должны попадать только те клетки, которые свободно отделились от слизистой оболочки влагалища. Взятый материал переносят на предметное стекло. Мазки анализируют с помощью светового микроскопа при увеличении 10×20, после окраски 0,5% спиртовым раствором метиленового синего. Подсчет клеток включает изучение не менее 8-10 полей зрения (200-300 клеток, преимущественно из центра мазка). При цитологической оценке влагалищных мазков крыс применяют упрощенную классификацию Geist, Salmon.
Каждой стадии полового цикла самок млекопитающих соответствует определенная клеточная картина влагалищных выделений.
Диэструс - покой вагинального эпителия, обусловленный низким уровнем эстрогенов в организме. В стадии диэструса, составляющей около 2-х суток эстрального цикла, в мазке у 100,0% животных преобладают слизь и лейкоциты, Фиг. 1.
В стадии проэструса, продолжающейся около 12 ч, мазок состоит почти из одних эпителиальных клеток, слущенных со стенок влагалища. Он совпадает с наиболее высоким уровнем секреции эстрогенов созревающими фолликулами яичника и характеризовался гипертрофией и гиперплазией эпителиальных клеток влагалища и последующим отторжением клеток, секретирующих слизь, Фиг. 2.
В стадии эструса, длительность около 24-27 ч, в мазке содержатся преимущественно чешуйки - безъядерные, ороговевшие клетки, образующиеся из-за расслоения клеток эпителия. Этот период в норме сочетается, обычно, с активизацией полового поведения и по времени примерно совпадает с овуляцией, Фиг. 3.
В метэструс, длительность которого у животных не превышает 6 часов, происходит резкое снижение активности половых гормонов с отторжением базального слоя клеток, Фиг. 4.
Для подтверждения регулярности эстрального цикла у каждого животного фиксируют не менее 3-4-х одинаковых последовательных циклов.
После подтвержденного регулярного эстрального цикла у всех животных, с целью моделирования ановуляторного бесплодия в носовой ход вводят 10 мкл раствора (2×10-3 моль) блокатора кисспептинергических рецепторов - kisspeptin-234 trifluoroacetate salt (Sigma, USA). Однократное введение блокатора кисспептинергических рецепторов в указанной дозе приводит к удлинению ановуляторной фазы до 6 дней. При необходимости, ее можно продлять повторными аналогичными введениями блокатора кисспептинэргических рецепторов в той же дозировке с интервалом в 5-6 суток. Контроль за состоянием диэструса осуществляют также ежесуточно, с интервалом в 24 часа по анализу цитологической картины влагалища, которая соответствует фазе физиологического покоя - диэструса.
На Фиг. 5 представлена пролонгация диэструса на фоне введения кисспептинэргических рецепторов. На препарате видно большое количество слизи и лейкоцитов, что свидетельствует о низком содержании половых гормонов и отсутствии овуляции, т.е. достигнута цель опыта - получение у крысы ановуляторного бесплодия.
Экспериментальная модель была отработана на 76 животных. Пример полученных результатов представлен в Табл. 1
Figure 00000001
Способ полностью физиологичен, не требует введения чужеродных лекарственных препаратов, которые могут вызывать побочные эффекты, моделирует естественные условия развития ановуляторного бесплодия, обладает хорошей воспроизводимостью результатов и возможностью продления сроков эксперимента без вреда для жизни животного, что позволяет использовать данную модель для отработки способов диагностики и лечения ановуляторного бесплодия.

Claims (1)

  1. Способ моделирования женского ановуляторного бесплодия на крысах породы Wistar, отличающийся тем, что используют половозрелых самок крыс с регулярным эстральным циклом в возрасте не менее 120 дней весом 180-210 г, которым однократно в фазу диэструса, подтвержденного цитологическим анализом влагалищных мазков, вводят в носовые ходы 10 мкл раствора (2×10-3 моль) блокатора кисспептинэргических рецепторов - kisspeptin-234 trifluoroacetate salt с последующим цитологическим подтверждением пролангации ановуляторой фазы.
RU2015102815/14A 2015-01-28 2015-01-28 Способ моделирования женского ановуляторного бесплодия на крысах RU2571896C2 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2015102815/14A RU2571896C2 (ru) 2015-01-28 2015-01-28 Способ моделирования женского ановуляторного бесплодия на крысах

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2015102815/14A RU2571896C2 (ru) 2015-01-28 2015-01-28 Способ моделирования женского ановуляторного бесплодия на крысах

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2015102815A RU2015102815A (ru) 2015-06-27
RU2571896C2 true RU2571896C2 (ru) 2015-12-27

Family

ID=53497337

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2015102815/14A RU2571896C2 (ru) 2015-01-28 2015-01-28 Способ моделирования женского ановуляторного бесплодия на крысах

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2571896C2 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2732873C1 (ru) * 2019-08-06 2020-09-24 Федеральное Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования Дагестанский государственный медицинский университет Министерства здравоохранения Российской Федерации Способ моделирования неразвивающейся беременности у крыс в условиях эксперимента

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2337411C1 (ru) * 2007-04-16 2008-10-27 Юлия Юрьевна Чеботарева Способ моделирования поликистозных яичников
EP2755690A1 (en) * 2011-08-04 2014-07-23 Merck Sharp & Dohme B.V. Kisspeptide-pentasaccharide conjugates
RU2527166C1 (ru) * 2013-07-26 2014-08-27 Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Ростовский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ГБОУ ВПО РостГМУ Минздрава России) Способ моделирования синдрома хронической ановуляции

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2337411C1 (ru) * 2007-04-16 2008-10-27 Юлия Юрьевна Чеботарева Способ моделирования поликистозных яичников
EP2755690A1 (en) * 2011-08-04 2014-07-23 Merck Sharp & Dohme B.V. Kisspeptide-pentasaccharide conjugates
RU2527166C1 (ru) * 2013-07-26 2014-08-27 Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Ростовский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ГБОУ ВПО РостГМУ Минздрава России) Способ моделирования синдрома хронической ановуляции

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
LADYMAN SR et al. Food restriction during lactation suppresses Kiss1 mRNA expression and kisspeptin-stimulated LH release in rats. Reproduction. 2014 Apr 10;147(5):743-51, abstrHOSSAIN MM et al. Altered expression of miRNAs in a dihydrotestosterone-induced rat PCOS model. J Ovarian Res. 2013 May 15;6(1):36, abstr. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2732873C1 (ru) * 2019-08-06 2020-09-24 Федеральное Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования Дагестанский государственный медицинский университет Министерства здравоохранения Российской Федерации Способ моделирования неразвивающейся беременности у крыс в условиях эксперимента

Also Published As

Publication number Publication date
RU2015102815A (ru) 2015-06-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Adams et al. Ovulation-inducing factor in seminal plasma: a review
Swelum et al. Use of fluorogestone acetate sponges or controlled internal drug release for estrus synchronization in ewes: Effects of hormonal profiles and reproductive performance
Dal Bosco et al. Ovulation induction in rabbit does: current knowledge and perspectives
Driancourt et al. Induction of an LH surge and ovulation by buserelin (as Receptal) allows breeding of weaned sows with a single fixed-time insemination
Mialot et al. Estrus synchronization in beef cows: comparison between GnRH+ PGF2α+ GnRH and PRID+ PGF2α+ eCG
Silva et al. Ovulation-inducing factor (OIF/NGF) from seminal plasma origin enhances Corpus Luteum function in llamas regardless the preovulatory follicle diameter
Little Female reproduction
Hashem et al. Effects of a single administration of different gonadotropins on day 7 post-insemination on pregnancy outcomes of rabbit does
Balet et al. Immunization against gonadotropin-releasing hormone in dairy cattle: Antibody titers, ovarian function, hormonal levels, and reversibility
Maciel et al. Follicular dynamics and in vivo embryo production in Santa Inês ewes treated with smaller doses of pFSH
El-Mokadem et al. Manipulation of reproductive seasonality using melatonin implantation in Anglo-Nubian does treated with controlled internal drug release and equine chorionic gonadotropin during the nonbreeding season
Callealta et al. Non-surgical artificial insemination using a GnRH analogue for ovulation induction during natural oestrus in African lions (Panthera leo)
von Wolff et al. Intravaginal and intracervical application of seminal plasma in in vitro fertilization or intracytoplasmic sperm injection treatment cycles—a double-blind, placebo-controlled, randomized pilot study
Sanchez-Rodriguez et al. Physiological effects on rabbit sperm and reproductive response to recombinant rabbit beta nerve growth factor administered by intravaginal route in rabbit does
Pietrani et al. Effect of the interval from prostaglandin F2alpha treatment to ovulation on reproductive efficiency rates in a commercial equine embryo transfer program
Bafor et al. A role of alpha-tocopherol and phylloquinone in the modulation of uterine contractility and reproductive function in mouse models
Thitaram et al. Monitoring and controlling ovarian activity in elephants
RU2571896C2 (ru) Способ моделирования женского ановуляторного бесплодия на крысах
Kelley Sterility in the Female with Special Reference to Psychic Factors: Part I: A Review of the Literature
Yaron Effects of ovariectomy and steroid replacement on the genital tract of the viviparous lizard, Xantusia vigilis
Hajibemani et al. Effect of PGF2α and GnRH administration on reproductive performance in Ghezel ewes
Sayuti et al. Superovulation induction with bovine pituitary extract in local rabbits
Sarrafzadeh et al. Success rate of hysteroscopy and endometrial scratching in repeated implantation failure: a randomized controlled clinical trial
Holumbiyovska et al. Effects of implant Suprelorin on cytological changes of vaginal epithelial cells in female dogs (4.7 mg deslorelin)
Cuervo-Arango et al. The effect of a single high dose of PGF2α administered to dairy cattle 3.5 days after ovulation on luteal function, morphology, and follicular dynamics

Legal Events

Date Code Title Description
HZ9A Changing address for correspondence with an applicant
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20170129