RU2569150C1 - MYCOPLASMA (Mycoplasma hominis) INHIBITOR PRODUCER - Google Patents
MYCOPLASMA (Mycoplasma hominis) INHIBITOR PRODUCER Download PDFInfo
- Publication number
- RU2569150C1 RU2569150C1 RU2014139932/10A RU2014139932A RU2569150C1 RU 2569150 C1 RU2569150 C1 RU 2569150C1 RU 2014139932/10 A RU2014139932/10 A RU 2014139932/10A RU 2014139932 A RU2014139932 A RU 2014139932A RU 2569150 C1 RU2569150 C1 RU 2569150C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- mycoplasma
- producer
- growth
- hominis
- strain
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к медицине, биохимии, фармакологии и может найти применение в биотехнологии, микробиологии.The invention relates to medicine, biochemistry, pharmacology and may find application in biotechnology, microbiology.
Mycoplasma hominis является условно-патогенным микроорганизмом, обитает в урогенитальном тракте (УГТ) человека, причастна, по данным ряда авторов, к развитию хориоамнионита, внутриутробной патологии плода, развитию бактериального вагиноза и других патологических состояний УГТ. Описаны случаи выделения этой микоплазмы из абсцесса головного мозга, при пневмонии, при перикардите, эндокардите, раневой инфекции (Раковская И.В. Микоплазмы - возбудители микоплазменных инфекций человека. В кн. Руководство по медицинской микробиологии / Под ред. А.С. Лабинской и др. М.: БИНОМ, 2010, с. 964-993).Mycoplasma hominis is a conditionally pathogenic microorganism, lives in the urogenital tract (UGT) of a person, and, according to some authors, is involved in the development of chorioamnionitis, intrauterine pathology of the fetus, the development of bacterial vaginosis and other pathological conditions of UGT. Cases of the isolation of this mycoplasma from a brain abscess, with pneumonia, with pericarditis, endocarditis, wound infection (Rakovskaya I.V. Mycoplasmas - pathogens of human mycoplasma infections. In the book. Guide to medical microbiology / Edited by A.S. Labinskaya and Dr. M .: BINOM, 2010, p. 964-993).
Для лечения микоплазменных инфекций используют антибиотики широкого спектра действия: чаще всего антибиотики тетрациклинового ряда (диоксициклин, миноциклин) и макролиды (джозамицин, клиндомицин, мидекамицин, рокситромицин). Однако известно, что многие штаммы микоплазм, обитающие в урогенитальном тракте, резистентны к тетрациклинам и макролидам. В таких случаях рекомендуется использовать хинолоны: левофлоксацин, офлоксацин, пефлоксацин, ципрофлоксанцин. Но в настоящее время от пациентов выделяют штаммы, устойчивые и к хинолонам. Показано также, что эффективность антибиотиков зависит от состояния иммунной системы. Для пациентов с иммунодефицитом рекомендуют вводить антибиотики внутривенно и обязательно после определения чувствительности к ним выделенной микоплазмы. Часто требуется продолжительная терапия. В связи с этим ведущие микоплазмологи считают, что радикальных средств для лечения микоплазменных инфекций в настоящее время нет (Baseman J.B., Tully J.G. Mycoplasmas: Sophisticated, Reemerging, and Burdened by Their Notoriety. Emerging Infect. Diseases. 1997, Vol 3, №1, P. 21-32.).For the treatment of mycoplasma infections, broad-spectrum antibiotics are used: most often tetracycline antibiotics (dioxicycline, minocycline) and macrolides (josamycin, clindomycin, midecamycin, roxithromycin). However, it is known that many strains of mycoplasmas that live in the urogenital tract are resistant to tetracyclines and macrolides. In such cases, it is recommended to use quinolones: levofloxacin, ofloxacin, pefloxacin, ciprofloxancin. But at present, patients resistant to quinolones are isolated from patients. It was also shown that the effectiveness of antibiotics depends on the state of the immune system. For patients with immunodeficiency, it is recommended to administer intravenous antibiotics and be sure to determine the sensitivity of the allocated mycoplasma to them. Prolonged therapy is often required. In this regard, leading mycoplasmologists believe that there are currently no radical remedies for the treatment of mycoplasma infections (Baseman JB, Tully JG Mycoplasmas: Sophisticated, Reemerging, and Burdened by Their Notoriety. Emerging Infect. Diseases. 1997, Vol 3, No. 1, P. 21-32.).
Известен штамм Trichoderma harzianum Rifai ВКПМ F-180 (патент RU 2493247). Сведения о применении штамма в качестве продуцента ингибитора роста Mycoplasma hominis отсутствуют.Known strain Trichoderma harzianum Rifai VKPM F-180 (patent RU 2493247). There is no information on the use of the strain as a producer of the growth inhibitor Mycoplasma hominis.
Техническим результатом изобретения является подавление роста Mycoplasma hominis.The technical result of the invention is the inhibition of the growth of Mycoplasma hominis.
Технический результат достигается тем, что в качестве продуцента ингибитора роста Mycoplasma hominis применяют штамм Trichoderma harzianum Rifai. Штамм депонирован во Всероссийской коллекции промышленных микроорганизмов под №F-180 (Москва, Дорожный 1-й проезд, д. 1 Институт генетики и селекции, 1987 г.).The technical result is achieved by the fact that the strain Trichoderma harzianum Rifai is used as a producer of the growth inhibitor Mycoplasma hominis. The strain was deposited in the All-Russian collection of industrial microorganisms under the number F-180 (Moscow, Dorozhny 1-y passage, building 1 Institute of Genetics and Selection, 1987).
Морфолого-биохимическая характеристика штамма.Morphological and biochemical characteristics of the strain.
Штамм Trichoderma harzianum Rifai на среде сусло-агар образует колонии быстрорастущие. Мицелий гриба бесцветный, септированный, распростертый. На 4-е - 5-е сутки роста появляются дерновинки с конидиеносцами, подушковидные, сначала белые, со временем желто- или темно-зеленого цвета. Фиалиды бутыльчатые /9-12µ/, расположены мутовками по 3 и более. На каждой фиалиде образуются конидии, склеенные в головку. Конидии гриба округлые, гладкие, мелкие /3-5µ/, в проходящем свете бледно-зеленые, а в массе - темные.The strain Trichoderma harzianum Rifai on wort-agar medium forms fast-growing colonies. The fungal mycelium is colorless, septate, prostrate. On the 4th - 5th day of growth, tufts with conidiophores appear, pillow-shaped, initially white, with a yellow or dark green color over time. Bottle phialides / 9-12µ /, located in whorls of 3 or more. Conidia glued into the head form on each phialid. The conidia of the fungus are round, smooth, small / 3-5µ /, in transmitted light pale green, and in the mass - dark.
На агаризованной среде Чапека колонии штамма-продуцента быстрорастущие, но слабо спороносящие. Штамм хорошо растет на среде Чапека, однако лучший рост наблюдается на среде сусло-агар. Агар и желатину не разжижает, молоко не пептонизирует. Аэробный гриб. Температурный оптимум +28-+29°C. На картофельно-декстрозном агаре наблюдается снижение интенсивности роста, образование воздушного мицелия и спороношения. Оптимальные условия роста гриба при pH 4-6, однако, может расти и при pH от 1,5 до 9.On Chapek’s agar medium, the colonies of the producer strain are rapidly growing, but slightly spore-bearing. The strain grows well on the Chapek medium, but the best growth is observed on the wort-agar medium. Agar does not dilute gelatin, milk does not peptone. Aerobic mushroom. Temperature optimum + 28- + 29 ° C. On potato-dextrose agar, a decrease in growth intensity, the formation of aerial mycelium and sporulation are observed. Optimum conditions for the growth of the fungus at pH 4-6, however, can grow at pH from 1.5 to 9.
Trichoderma harzianum Rifai в одинаковой степени усваивает как аммонийные, так и азотнокислые соли. Лучшим источником азота из органических соединений является пептон. Хорошо растет на средах с аспарагином и с глутаминовой кислотой. Лучшими источниками углерода являются ксилоза, глюкоза, сахароза, лактоза, галактоза, маннит, крахмал. На средах с этими сахарами наблюдается интенсивный рост. Слабо усваиваются спирты - метиловый, этиловый, дульцит. Хорошо усваивает в качестве источника углерода пшеничные отруби. Инокулят гриба, выросший на среде с пшеничными отрубями, дает положительный результат при использовании его при ферментации на средах разного состава.Trichoderma harzianum Rifai equally assimilates both ammonium and nitric acid salts. The best source of nitrogen from organic compounds is peptone. It grows well on media with asparagine and with glutamic acid. The best sources of carbon are xylose, glucose, sucrose, lactose, galactose, mannitol, and starch. On media with these sugars, intense growth is observed. Alcohols are poorly absorbed - methyl, ethyl, dulcite. It well assimilates wheat bran as a carbon source. The inoculum of the fungus grown on a medium with wheat bran gives a positive result when used in fermentation on media of different compositions.
Штамм Trichoderma harzianum Rifai обладает L-лизин-α-оксидазной активностью. Активность L-лизин-α-оксидазы в культуральной жидкости Trichoderma harzianum Rifai рассчитывали по приросту H2O2, количество которой определяли спектрофотометрическим ортодиазидиновым микрометодом. Сущность метода заключается во взаимодействии всей образующейся в реакции H2O2 с О-дианизидингидрохлоридом. Инкубационная смесь содержала 20 мкг пероксидазы, 250 мкг О-дианизидингидрохлорида и 0.1-0,5 мг белка в 1 мл конечного объема. После 20 минут инкубирования в термостате при температуре +37°C пробы охлаждали до +4°C. Оптическую плотность окрашенных растворов опытной и контрольной (без субстрата) проб измеряли на спектрофотометре СФ-16 при 540 нм против второй контрольной пробы (без пероксидазы).The strain Trichoderma harzianum Rifai has L-lysine-α-oxidase activity. The activity of L-lysine-α-oxidase in the Trichoderma harzianum Rifai culture fluid was calculated by the growth of H 2 O 2 , the amount of which was determined by a spectrophotometric orthodiazidine micromethod. The essence of the method is the interaction of all formed in the reaction of H 2 O 2 with O-dianisidine hydrochloride. The incubation mixture contained 20 μg of peroxidase, 250 μg of O-dianisidine hydrochloride and 0.1-0.5 mg of protein in 1 ml of the final volume. After 20 minutes of incubation in a thermostat at a temperature of + 37 ° C, the samples were cooled to + 4 ° C. The optical density of the colored solutions of the experimental and control (without substrate) samples was measured on an SF-16 spectrophotometer at 540 nm against the second control sample (without peroxidase).
Активность L-лизин-α-оксидазы рассчитывали по приросту H2O2 и выражали на 1 мл культуральной жидкости.The activity of L-lysine-α-oxidase was calculated by the growth of H 2 O 2 and expressed per 1 ml of culture fluid.
Условия культивирования штамма Trichoderma harzianum Rifai.The cultivation conditions of the strain Trichoderma harzianum Rifai.
Ферментация штамма производилась на оборудовании Опытной технологической установки ИБФМ РАН им. Г.К. Скрябина (г. Пущино).Fermentation of the strain was carried out on the equipment of the Experimental technological installation of IBPM RAS named after G.K. Scriabin (Pushchino city).
Использовали ферментер типа БИОР-01 производства ОКБ ТБМ, г. Кириши, объемом 100 л с коэффициентом заполнения 0,6. Ферментер оснащен магнитной мешалкой, фильтрами тонкой очистки воздуха, датчиками температуры и pH.Used a BIOR-01 type fermenter manufactured by OKB TBM, Kirishi, with a volume of 100 l with a fill factor of 0.6. The fermenter is equipped with a magnetic stirrer, fine filters, air, temperature and pH sensors.
Питательную среду готовили непосредственно в аппарате. Для этого в аппарат заливали 60 л водопроводной воды, вносили 1% пшеничных отрубей, стимулятор - 0,1%, 1,3% сульфата аммония, значение pH 5.8-6,0 устанавливали 10%-ным раствором HCl. Пшеничные отруби и стимулятор предварительно замачивали в 10 литрах воды в течение 4-х часов, стерилизовали в автоклаве 1 час при t°+125°C. Затем подготовленный ферментер засевали посевным материалом из колб. Посевная доза не менее 5%. Культивирование проводили при температуре +26°C, расход воздуха на протяжении всей ферментации 30 л в минуту, скорость вращения мешалки 200 оборотов в минуту. Величину pH в процессе роста корректировали до 6,5. Продолжительность выращивания составила 94-98 часов, конечные значения pH от 5,3 до 7.5.The nutrient medium was prepared directly in the apparatus. To do this, 60 l of tap water was poured into the apparatus, 1% of wheat bran was added, a stimulant - 0.1%, 1.3% ammonium sulfate, the pH value of 5.8-6.0 was set with a 10% HCl solution. Wheat bran and the stimulator were pre-soaked in 10 liters of water for 4 hours, sterilized in an autoclave for 1 hour at t ° + 125 ° C. Then the prepared fermenter was seeded with seed from flasks. Sowing dose of at least 5%. The cultivation was carried out at a temperature of + 26 ° C, air flow throughout the fermentation 30 l per minute, the speed of rotation of the mixer 200 rpm. The pH during the growth process was adjusted to 6.5. The duration of cultivation was 94-98 hours, the final pH values from 5.3 to 7.5.
По окончании ферментации культуральную жидкость направляли на участок предварительной очистки, где мицелий гриба отделяли фильтрованием под вакуумом на нутч-фильтре. Вес полученной биомассы составил 3,5 кг. Полученный нативный раствор подвергали дополнительному сепарированию на сепараторе типа ОСБ при 9000 об/мин в течение часа при температуре +(2-4)°C. Затем нативный раствор в объеме 55 л, полученный после отделения биомассы, концентрировали до 1,5 л (концентрат).At the end of the fermentation, the culture fluid was sent to the pre-treatment section, where the mycelium of the fungus was separated by filtration under vacuum on a suction filter. The weight of the obtained biomass was 3.5 kg. The resulting native solution was subjected to additional separation on an OSB separator at 9000 rpm for one hour at a temperature of + (2-4) ° C. Then the native solution in a volume of 55 l, obtained after separation of the biomass, was concentrated to 1.5 l (concentrate).
Активность полученного концентрата культуральной жидкости Trichoderma harzianum Rifai составляла 0,54 Ед/мл.The activity of the obtained Trichoderma harzianum Rifai culture fluid concentrate was 0.54 U / ml.
В работе использовали вид микроорганизма класса Mollicutes:The work used the type of microorganism of the class Mollicutes:
Mycoplasma hominis (Mh). Штамм M.hominis H-34 был получен в 1967 г. из коллекции доктора Lemke R.M. (Lister Inst. Preventive medicine, London S.W.I.). Штамм хранится и поддерживается в лаборатории микоплазм и L-форм бактерий ФГБУ НИИЭМ имени почетного академика Н.Ф. Гамалеи.Mycoplasma hominis (Mh). The strain M.hominis H-34 was obtained in 1967 from the collection of Dr. Lemke R.M. (Lister Inst. Preventive medicine, London S.W.I.). The strain is stored and maintained in the laboratory of mycoplasmas and L-forms of bacteria FSBI NIIEM named after honorary academician N.F. Gamalei.
Для выращивания штамма Mycoplasma hominis использовали бульон (Difco PPLOBroth, Becton, Dickinson, USA) с 20% сыворотки крови лошади, 2% свежего дрожжевого экстракта, 1% аргинина или 1% глюкозы (в зависимости от пищевых потребностей вида микоплазм) и 0,005% индикатора фенолово-красного. Для титрования культур делали серийные десятикратные разведения пробы в физиологическом растворе с высевом материала из всех разведений на 0,3% агар (BBL Mycoplasma Agar Base, Becton, Dickinson, USA) с такими же добавками, как в бульоне. Спустя трое суток подсчитывали число колоний в двух последних пробирках из ряда разведений и высчитывали средний показатель числа колоний. Титр культур выражали средним числом выросших колоний, помноженным на разведение культуры. В опыт брали культуры с установленным ранее титром.To grow Mycoplasma hominis strain, we used a broth (Difco PPLOBroth, Becton, Dickinson, USA) with 20% horse serum, 2% fresh yeast extract, 1% arginine or 1% glucose (depending on the nutritional needs of mycoplasma species) and 0.005% indicator phenol red. For titration of cultures, serial ten-fold dilutions of the sample were made in physiological saline with seeding from all dilutions on 0.3% agar (BBL Mycoplasma Agar Base, Becton, Dickinson, USA) with the same additives as in the broth. Three days later, the number of colonies in the last two tubes from a series of dilutions was counted and the average number of colonies was calculated. The crop titer was expressed by the average number of colonies grown, multiplied by the cultivation of the culture. Cultures with the previously established caption were taken into experience.
Опыты по определению чувствительности микоплазм к концентрату культуральной жидкости Trichoderma harzianum Rifai проводили по следующей схеме. В пробирки вносили 1 мл бульонной культуры микоплазм с известным титром, затем соединяли с 1 мл культуральной жидкости с активностью L-лизин-α-оксидазы 0,54 Ед/мл в разведениях 1:10 и 1:100 и 0,1 мл культуры микоплазмы с известным титром. Смеси выдерживали в течение 45 мин при комнатной температуре, затем заливали жидкой питательной средой и культивировали в течении 3 суток, наблюдая за скоростью и интенсивностью роста по изменению цвета культуральной среды. Титр клеток микоплазмы в опытной и контрольной пробирке определяли описанным выше способом.The experiments to determine the sensitivity of mycoplasmas to the concentrate of the culture fluid Trichoderma harzianum Rifai were carried out according to the following scheme. 1 ml of mycoplasma broth culture with a known titer was added to the tubes, then combined with 1 ml of culture fluid with 0.54 U / ml L-lysine-α-oxidase activity in dilutions of 1:10 and 1: 100 and 0.1 ml of mycoplasma culture with a famous caption. The mixtures were kept for 45 min at room temperature, then they were poured with a liquid nutrient medium and cultivated for 3 days, observing the growth rate and intensity by the color change of the culture medium. The titer of mycoplasma cells in the experimental and control tube was determined as described above.
Из данных таблицы видно, что в присутствии культуральной жидкости продуцента L-лизин-α-оксидазы скорость роста Mycoplasma hominis, регистрируемая по изменению цвета среды, была снижена, особенно при низкой посевной дозе. При определении титра КОЕ/мл наблюдали полное подавление роста при контакте клеток микоплазмы с неразведенной культуральной жидкостью триходермы с активностью L-лизин-α-оксидазы 0,54-0,56 Ед/мл даже при высокой посевной дозе. Десятикратное разведение исходной культуральной жидкости триходермы также подавляло рост микоплазм, но в меньшей степени - на 3 Lg. При использовании меньшей посевной дозы микоплазм рост также был подавлен полностью при контакте с культуральной жидкостью продуцента It can be seen from the table that in the presence of the culture fluid of the producer of L-lysine-α-oxidase, the growth rate of Mycoplasma hominis, detected by the color change of the medium, was reduced, especially at a low inoculum dose. When determining the titer of CFU / ml, complete growth inhibition was observed upon contact of mycoplasma cells with undiluted trichoderma culture fluid with an activity of L-lysine-α-oxidase 0.54-0.56 U / ml even at a high inoculum dose. Tenfold dilution of the original trichoderma culture fluid also inhibited the growth of mycoplasmas, but to a lesser extent - by 3 Lg. When using a lower inoculum dose of mycoplasmas, growth was also completely suppressed by contact with the producer culture fluid
фермента. Использование десятикратного разведения ее в опытных пробирках приводило к росту лишь единичных колоний.enzyme. The use of ten-fold dilution in experimental tubes led to the growth of only single colonies.
Титр КОЕ/мл культур Mh был ниже в сравнении с контролем на 3 Lg и 1 Lg (соответственно) при высокой посевной дозе культуры и разных концентрациях культуральной жидкости продуцента L-лизин-α-оксидазы. При более низкой посевной дозе и разных концентрациях культуральной жидкости исследуемого штамма -продуцента фермента титр КОЕ выросшей культуры различался на 3 и 2 Lg соответственно.The titer of CFU / ml of Mh cultures was lower in comparison with the control by 3 Lg and 1 Lg (respectively) at a high inoculum dose of the culture and different concentrations of the culture fluid of the producer of L-lysine-α-oxidase. At a lower inoculum dose and different concentrations of the culture fluid of the studied strain producing the enzyme, the CFU titer of the grown culture differed by 3 and 2 Lg, respectively.
Таким образом, в результате проведенных исследований, полученные данные свидетельствуют о том, что культуральная жидкость Trichoderma harzianum Rifai F-180 способна ингибировать рост Mycoplasma hominis, которая наглядно проявляется после предварительного контакта микоплазм и культуральной жидкости триходермы. Степень подавления роста зависит от посевной дозы микоплазм и используемой концентрации культуральной жидкости триходермы.Thus, as a result of the studies, the obtained data indicate that the Trichoderma harzianum Rifai F-180 culture fluid is able to inhibit the growth of Mycoplasma hominis, which is clearly manifested after preliminary contact of mycoplasmas and trichoderma culture fluid. The degree of growth inhibition depends on the inoculum dose of mycoplasmas and the concentration of trichoderma culture fluid used.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2014139932/10A RU2569150C1 (en) | 2014-10-02 | 2014-10-02 | MYCOPLASMA (Mycoplasma hominis) INHIBITOR PRODUCER |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2014139932/10A RU2569150C1 (en) | 2014-10-02 | 2014-10-02 | MYCOPLASMA (Mycoplasma hominis) INHIBITOR PRODUCER |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2569150C1 true RU2569150C1 (en) | 2015-11-20 |
Family
ID=54598329
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2014139932/10A RU2569150C1 (en) | 2014-10-02 | 2014-10-02 | MYCOPLASMA (Mycoplasma hominis) INHIBITOR PRODUCER |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2569150C1 (en) |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2233171C2 (en) * | 2002-04-03 | 2004-07-27 | Смирнова Ирина Павловна | POLYFUNCTIONAL PHARMACEUTICAL COMPOSITION BASED ON L-LYSINE-α-OXIDASE FROM FUNGUS OF GENUS TRICHODERMA AND METHOD FOR PREPARING THIS ENZYME |
RU2493247C1 (en) * | 2012-03-15 | 2013-09-20 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Российский университет дружбы народов" (РУДН) | Inhibitor of stimulant of bacterial burn of fruit crops (erwinia amylovora) |
-
2014
- 2014-10-02 RU RU2014139932/10A patent/RU2569150C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2233171C2 (en) * | 2002-04-03 | 2004-07-27 | Смирнова Ирина Павловна | POLYFUNCTIONAL PHARMACEUTICAL COMPOSITION BASED ON L-LYSINE-α-OXIDASE FROM FUNGUS OF GENUS TRICHODERMA AND METHOD FOR PREPARING THIS ENZYME |
RU2493247C1 (en) * | 2012-03-15 | 2013-09-20 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Российский университет дружбы народов" (РУДН) | Inhibitor of stimulant of bacterial burn of fruit crops (erwinia amylovora) |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
BASEMAN J.B.,TULLY J.G.,Mycoplasmas:Sophisticated,Remerging and Burdened by Their Notoriety.Emerging Infect.Diseases.1997, vol. 3,N1,p.21-32. * |
КУЗЬМИН В.Н., ГУСЕЙНЗАДЕ М.И., Эффективная антибактериальная терапия микоплазменной инфекции у женщин репродуктивного возраста, Медицинский научно- практический. журнал "Лечащий врач", 2014, N 3. Найдено в интернет: http://www.lvrach.ru/2014/03/15435914/. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Miller et al. | Two streptomycin-resistant variants of meningococcus | |
Staib et al. | The brown colour effect (BCE) of Cryptococcus neoformans in the diagnosis, control and epidemiology of C. neoformans infections in AIDS patients | |
CN109055268B (en) | Composite microecological preparation and application thereof in bee breeding process | |
Gottshall et al. | Synnematin, an antibiotic produced by Tilachlidium | |
CN115637240A (en) | Bacillus belgii and application thereof | |
CN101153316A (en) | Method for detecting lactobacillus casei in probiotic bacteria milk product | |
RU2398872C1 (en) | Bacillus licheniformis BACTERIA STRAIN USED FOR MAKING PROBIOTIC SUPPLEMENT FEED USED FOR PRODUCING HIGH-QUALITY FODDER IMPROVING PERFORMANCE AND REDUCING RISK OF GASTROINTESTINAL DISTURBANCES IN ANIMALS, BIRDS AND FISHES | |
RU2569150C1 (en) | MYCOPLASMA (Mycoplasma hominis) INHIBITOR PRODUCER | |
CN105925517A (en) | Serum-free anaerobic high-density fermentation culture process for Streptococcus equi subsp. zooepidemicu | |
CN114854632B (en) | Symbiotic salt spore fungus HZ014 derived from seaweed and application thereof | |
CN114891678B (en) | Bacillus polymyxa CPL258 and screening and application thereof | |
KR20020013670A (en) | Probiotic preparations for aquacultured fish and its production method | |
CN115651860A (en) | Bacillus coagulans BC-HYC strain and application thereof | |
JPH10503368A (en) | Antigenic animal cyclic tetrapeptide | |
Povitzky et al. | Effectiveness of standard diphtheria antitoxin against all types of diphtheria infection | |
Rakovskaya et al. | Anti mycoplasmal activity of the concentrate from Trichoderma | |
RU2493247C1 (en) | Inhibitor of stimulant of bacterial burn of fruit crops (erwinia amylovora) | |
US3534136A (en) | M.g. inoculum for poultry | |
RU2203947C1 (en) | Strain of bacterium bacillus licheniformis used for preparing probiotic preparation designated for prophylaxis and treatment of gastroenteric diseases in animals, poultry and fishes | |
Shapiro et al. | Lactobacilli in the intestinal tract of the chicken | |
Khandelwal et al. | Studies on Bacteriocin producing abilities of indigenously isolated lactic acid bacteria strains | |
RU2237709C2 (en) | Microbiological medium for isolation of trichophyton verrucosum | |
CN115851541B (en) | Probiotic microecological preparation and preparation method and application thereof | |
CN114836338B (en) | Lactobacillus rhamnosus A5 and application thereof | |
LU503123B1 (en) | Bacillus subtilis dk-03 and use thereof |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20181003 |