RU2566555C1 - Burkholderia cepacia B-7518 STRAIN USED FOR OBTAINING OF ANTIGEN FOR IDENTIFICATION OF ANTIBODIES TO Burkholderia cepacia IN BIOLOGICAL ENVIRONMENTS - Google Patents

Burkholderia cepacia B-7518 STRAIN USED FOR OBTAINING OF ANTIGEN FOR IDENTIFICATION OF ANTIBODIES TO Burkholderia cepacia IN BIOLOGICAL ENVIRONMENTS Download PDF

Info

Publication number
RU2566555C1
RU2566555C1 RU2014142299/10A RU2014142299A RU2566555C1 RU 2566555 C1 RU2566555 C1 RU 2566555C1 RU 2014142299/10 A RU2014142299/10 A RU 2014142299/10A RU 2014142299 A RU2014142299 A RU 2014142299A RU 2566555 C1 RU2566555 C1 RU 2566555C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
cepacia
antigen
burkholderia cepacia
antibodies
strain
Prior art date
Application number
RU2014142299/10A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Анна Валентиновна Алешукина
Галина Вальтеровна Алексеева
Лусине Ремуальдовна Аветисян
Наталья Петровна Агеева
Валерий Алексеевич Антонов
Борис Федорович Вачаев
Елена Владимировна Голошва
Елена Владимировна Молчанова
Марина Юрьевна Чернуха
Игорь Андронникович Шагинян
Ирина Леонидовна Юрьева
Эдуард Александрович Яговкин
Original Assignee
Федеральное бюджетное учреждение науки "Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии паразитологии" (ФБУН РостовНИИ микробиологии и паразитологии)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное бюджетное учреждение науки "Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии паразитологии" (ФБУН РостовНИИ микробиологии и паразитологии) filed Critical Федеральное бюджетное учреждение науки "Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии паразитологии" (ФБУН РостовНИИ микробиологии и паразитологии)
Priority to RU2014142299/10A priority Critical patent/RU2566555C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2566555C1 publication Critical patent/RU2566555C1/en

Links

Abstract

FIELD: biotechnologies.
SUBSTANCE: Burkholderia cepacia V-7518 strain with typical and stable cultural, tinctorial, biochemical properties is described.
EFFECT: strain can be used for obtaining of anti-gene for indentification of antibodies to Burkholderia cepacia in biological environments.
4 tbl, 6 ex

Description

Изобретение относится к медицинской микробиологии и биотехнологии и касается штамма Burkholderia cepacia B-7518, который может быть использован для получения антигена для определения антител к Burkholderia cepacia в биологических средах.The invention relates to medical microbiology and biotechnology and relates to a strain of Burkholderia cepacia B-7518, which can be used to obtain antigen for the detection of antibodies to Burkholderia cepacia in biological media.

Известно, что бактерии В. cepacia способны вызывать патологические изменения у человека. Наиболее остро проблема инфекции В. cepacia стоит у больных муковисцидозом, а также в связи с высокой частотой распространения среди населения иммунодефицитов приобретенного характера. Проблемы лечения больных с В. cepacia инфекциями осложняются высокой устойчивостью этого микроорганизма ко многим антибиотикам и появлением полирезистентных клонов. Актуальными являются поиск и разработка экологически чистых, безвредных биопрепаратов для лечения и профилактики данной инфекции.It is known that B. cepacia bacteria can cause pathological changes in humans. The most acute infection problem of B. cepacia is in patients with cystic fibrosis, as well as in connection with the high frequency of spread of acquired immunodeficiencies among the population. The problems of treating patients with B. cepacia infections are complicated by the high resistance of this microorganism to many antibiotics and the appearance of multiresistant clones. The search and development of environmentally friendly, harmless biological products for the treatment and prevention of this infection are relevant.

Для получения антигена для определения антител к В. cepacia в биологических средах в производственных масштабах необходим стандартный по своим ростовым, биохимическим и антигенным характеристикам штамм В. cepacia, который обеспечит наращивание биомассы при сохранении свойств.To obtain an antigen for the determination of antibodies to B. cepacia in biological media on an industrial scale, a strain of B. cepacia, which is standard in terms of growth, biochemical and antigenic characteristics, is required, which will ensure biomass growth while maintaining properties.

Целью предлагаемого изобретения является подбор штамма В. cepacia, стандартного по своим ростовым, биохимическим и антигенным характеристикам, обеспечивающего стабильно высокий рост при культивировании на плотных и жидких питательных средах и сохраняющего при этом свои свойства.The aim of the invention is the selection of a strain of B. cepacia, standard in terms of growth, biochemical and antigenic characteristics, providing stably high growth when cultivated on solid and liquid nutrient media and preserving its properties.

Предлагаемый штамм B. cepacia В-7518 обладает типичными для вида В. cepacia морфологическими, тинкториальными, биохимическими и культуральными признаками. Клетки представляют собой подвижные, грамотрицательные, не образующие спор палочки. Штамм хорошо растет на обычных питательных средах (микробиологический агар, агар Хоттингера). При +42°C рост культуры сохраняется. При +4°C рост отсутствует. Через 24-48 ч культивирования штамма на плотных питательных средах (микробиологический агар НПО “Микроген”, г. Махачкала) образуются гладкие круглые полупрозрачные колонии кремового цвета в S-форме. По биохимическим свойствам штамм - оксидазоположительный, каталазоположительный, образует желатиназу, лизиндекарбоксилазу и орнитиндекарбоксилазу. Не окисляет глюкозу, окисляет фруктозу, ксилозу, лактозу и мальтозу. Аргининдегидролаза отсутствует. Восстанавливает нитраты до нитритов. Чувствительность к антибактериальным препаратам низкая: штамм высокочувствителен к фторхинолонам II поколения (ципрофлоксацин); аминогликозидам (амикацин). Штамм депонирован в Государственной коллекции патогенных микроорганизмов и клеточных культур «ГКПМ-Оболенск» на базе ФБУН «Государственный научный центр прикладной микробиологии и биотехнологии» Роспотребнадзора (ФБУН ГНЦ ПМБ) по адресу: Российская Федерация, 142279, Московская обл., Серпуховский р-н, пос. Оболенск, под номером № В-7518 (Свидетельство о депонировании №208 от 24.12.2013).The proposed strain of B. cepacia B-7518 has typical morphological, tinctorial, biochemical and cultural characteristics typical of B. cepacia. Cells are motile, gram-negative, non-spore-forming rods. The strain grows well on ordinary nutrient media (microbiological agar, Hottinger agar). At + 42 ° C, culture growth is maintained. At + 4 ° C, there is no growth. After 24-48 hours of cultivation of the strain on solid nutrient media (microbiological agar of NPO Microgen, Makhachkala), smooth round translucent cream-colored colonies in S-form are formed. According to biochemical properties, the strain is oxide-positive, catalase-positive, forms gelatinase, lysine decarboxylase and ornithine decarboxylase. Does not oxidize glucose, oxidizes fructose, xylose, lactose and maltose. Arginine dehydrolase is absent. Restores nitrates to nitrites. Sensitivity to antibacterial drugs is low: the strain is highly sensitive to fluoroquinolones of the second generation (ciprofloxacin); aminoglycosides (amikacin). The strain was deposited in the State collection of pathogenic microorganisms and cell cultures "GKPM-Obolensk" on the basis of the Federal State Budgetary Institution "State Scientific Center for Applied Microbiology and Biotechnology" of the Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Welfare (FBSI SSC PMB) at the address: Russian Federation, 142279, Moscow region, Serpukhov district, pos. Obolensk, under the number No. B-7518 (Certificate of Deposit No. 208 of 12.24.2013).

Штамм B. cepacia В-7518 дает стабильно высокий рост при культивировании на плотных и жидких питательных средах, сохраняя при этом все свойства и предлагается для получения соматического антигена, используемого в разных диагностических системах по определению антител к B. cepacia.The strain B. cepacia B-7518 gives a consistently high growth when cultured on solid and liquid nutrient media, while retaining all the properties and is proposed to obtain a somatic antigen used in various diagnostic systems for the determination of antibodies to B. cepacia.

Пример 1. Ростовые характеристики штамма B. cepacia В-7518 при культивировании на жидких питательных средахExample 1. Growth characteristics of strain B. cepacia B-7518 when cultured in liquid nutrient media

Проводили культивирование 3 штаммов: B. cepacia В-7518 (г. Волгоград), B. cepacia №421 (г. Москва) и B. cepacia №315 (г. Ростов-на-Дону), полученных от больных детей в стационарах Российской Федерации. Для культивирования использовали питательные среды: микробиологический бульон (НПО «Микроген», г. Махачкала) и питательный бульон для культивирования микроорганизмов (ФБУН ГНЦ ПМБ, г. Оболенск) с применением медицинского шейкера С-3,02М. Условия культивирования: инкубация при 37°C при перемешивании со скоростью 20 об/мин в течение 4 ч. Стандартную посевную дозу для всех проб - 3 млрд м.т./мл (0,4 ед. оптической плотности по Мак-Фарланду), инокулировали в питательную среду в соотношении 1:10. Культивирование для каждого варианта проводили в трех повторностях. Контроль культивирования осуществляли путем дозированного высева жидкой культуры на плотную питательную среду (микробиологический агар НПО «Микроген», г. Махачкала) с подсчетом lg колониеобразующих единиц в 1 мл (КОЕ/мл) и определением оптической плотности по Мак-Фарланду. Результаты представлены в Таблице 1.Three strains were cultured: B. cepacia B-7518 (Volgograd), B. cepacia No. 421 (Moscow) and B. cepacia No. 315 (Rostov-on-Don), obtained from sick children in Russian hospitals Federation. For cultivation, we used nutrient media: microbiological broth (NPO Microgen, Makhachkala) and nutrient broth for the cultivation of microorganisms (FBUN SSC PMB, Obolensk) using a medical shaker S-3.02M. Cultivation conditions: incubation at 37 ° C with stirring at a speed of 20 rpm for 4 hours. The standard seed dose for all samples is 3 billion metric tons / ml (0.4 units of optical density according to McFarland), inoculated into the nutrient medium in a ratio of 1:10. Cultivation for each option was carried out in triplicate. Cultivation control was carried out by metering liquid culture on solid nutrient medium (microbiological agar of NPO Mikrogen, Makhachkala) with the calculation of lg colony forming units in 1 ml (CFU / ml) and the determination of optical density according to McFarland. The results are presented in Table 1.

Полученные данные свидетельствуют, что наиболее стабильны по наращиванию массы на разных питательных средах штаммы B. cepacia В-7518 и B. cepacia №375. При этом B. cepacia В-7518 дает прирост культуры на 3 порядка выше.The data obtained indicate that B. cepacia B-7518 and B. cepacia No. 375 strains are most stable in weight gain on different nutrient media. At the same time, B. cepacia B-7518 gives a culture increase 3 orders of magnitude higher.

B. cepacia В-7518 в процессе культивирования на жидких питательных средах не диссоциирует, сохраняет типичные биохимические свойства, что, в совокупности с хорошим приростом культуры в жидких питательных средах, делает его наиболее перспективным для получения соматического антигена.B. cepacia B-7518 does not dissociate during cultivation on liquid nutrient media, preserves typical biochemical properties, which, combined with good growth of the culture in liquid nutrient media, makes it the most promising for obtaining somatic antigen.

Пример 2. Приготовление антигенаExample 2. Preparation of antigen

Культуру B. cepacia В-7518 выращивали на микробиологическом агаре (НПО “Микроген”, г. Махачкала) 24 ч при +37°C. Смыв культуры производили изотоническим раствором натрия хлорида (0,85%) рН 7,1±0,1. Взвесь микроорганизмов доводили до концентрации 1 млрд м.т./мл в соответствии со стандартом мутности (по Мак-Фарланду соответственно 0,3 ед. опт. плотности). Взвесь микроорганизмов инактивировали прогреванием на водяной бане (+100°C) в течение 15 мин.The B. cepacia B-7518 culture was grown on microbiological agar (NPO Mikrogen, Makhachkala) for 24 h at + 37 ° C. The culture was washed off with an isotonic sodium chloride solution (0.85%), pH 7.1 ± 0.1. A suspension of microorganisms was adjusted to a concentration of 1 billion mt / ml in accordance with the turbidity standard (according to McFarland, respectively 0.3 units of optical density). A suspension of microorganisms was inactivated by heating in a water bath (+ 100 ° C) for 15 minutes.

Полученный комплексный соматический антиген B. cepacia В-7518 (инактивированный) хранили при +6-8°C в течение месяца. Использовали для постановки агглютинации в пробирках, метода ИФА и иммунизации кроликов с целью получения антисыворотки (положительный контроль в диагностических системах).The resulting complex somatic antigen of B. cepacia B-7518 (inactivated) was stored at + 6-8 ° C for a month. Used for formulation of agglutination in vitro, ELISA and immunization of rabbits in order to obtain antiserum (positive control in diagnostic systems).

Пример 3. Иммунизация кроликов для получения антисыворотки.Example 3. Immunization of rabbits to obtain antisera.

Кролики породы «Шиншилла» иммунизировали комплексным соматическим антигеном B. cepacia В-7518 в заднее правое бедро в количестве 1,0 мл на 1 животное на 1 инъекцию двукратно с интервалом 7 дней. Затем забирали кровь и получали антисыворотку, которая давала реакцию агглютинации с исходным антигеном в титре 1:8-1:32. Полученную антисыворотку фасовали по 0,5 мл в пробирки «Эппендорф» и хранили при -20°C в течение 6 мес.Chinchilla rabbits were immunized with the complex somatic antigen B. cepacia B-7518 in the rear right thigh in the amount of 1.0 ml per 1 animal per 1 injection twice with an interval of 7 days. Then, blood was taken and an antiserum was obtained, which gave an agglutination reaction with the initial antigen in a titer of 1: 8-1: 32. The resulting antiserum was packaged in 0.5 ml in Eppendorf tubes and stored at -20 ° C for 6 months.

Полученную антисыворотку использовали в качестве положительного контроля при постановке реакции агглютинации в пробирках и метода ИФА с целью выявления антител к буркхольдериям в биологических средах.The obtained antiserum was used as a positive control in the formulation of the agglutination reaction in test tubes and the ELISA method in order to detect antibodies to burkholderia in biological media.

Антитела к буркхольдериям с использованием полученного антигена и антисыворотки определяли в медицинском иммунобиологическом препарате для лечения и профилактики острых кишечных инфекций «Лактоглобулин против условно-патогенных бактерий и сальмонелл коровий для перорального применения» (рег. удостоверение № ЛСР-002636/08).Antibodies to burkholderia using the obtained antigen and antiserum were determined in a medical immunobiological preparation for the treatment and prevention of acute intestinal infections “Lactoglobulin against opportunistic bacteria and bovine salmonella for oral use” (reg. Certificate No. LSR-002636/08).

Пример 4. Постановка реакции агглютинации для определения антител к буркхольдериям.Example 4. Formulation of the agglutination reaction to determine antibodies to burkholderii.

Подготовка проб препарата «Лактоглобулин против условно-патогенных бактерий и сальмонелл коровий для перорального применения».Sample preparation of the drug "Lactoglobulin against opportunistic bacteria and Salmonella bovine for oral use."

Флаконы с лактоглобулином развальцовывали от металлических колпачков, подготавливали рабочие разведения двухмерным титрованием от 1:2 до 1:64, используя в качестве растворителя изотонический раствор натрия хлорида (рН 7,1±0,1). В подготовленные агглютинационные пробирки вносили по 2 мл разведений препарата.Vials with lactoglobulin were expanded from metal caps, working dilutions were prepared by two-dimensional titration from 1: 2 to 1:64, using an isotonic sodium chloride solution (pH 7.1 ± 0.1) as a solvent. In prepared agglutination tubes, 2 ml of dilutions of the preparation were added.

Постановка реакции агглютинации:Formulation of agglutination reaction:

1. В пробирки с разведенными образцами лактоглобулина вносили по 2 мл комплексного соматического антигена B. cepacia В-7518 (инактивированного). В качестве контроля использовали положительную антисыворотку в разведении 1:8 (положительный контроль сыворотки) и изотонический раствор натрия хлорида (отрицательный контроль антигена).1. Into test tubes with diluted lactoglobulin samples, 2 ml of the complex somatic antigen of B. cepacia B-7518 (inactivated) was added. As a control, a positive antiserum at a dilution of 1: 8 (positive control of serum) and isotonic sodium chloride solution (negative control of antigen) were used.

2. Перемешивали содержимое пробирок. Инкубацию смеси антигена и лактоглобулина проводили при 37°C в течение 30 мин.2. The contents of the tubes were mixed. The mixture of antigen and lactoglobulin was incubated at 37 ° C for 30 min.

3. Учет результатов реакции агглютинации проводили с использованием агглютиноскопа по обнаружению осадка агглютината в виде «зонтика» или «скопления гранул» по плюсовой системе. Последнее разведение препарата с выраженной агглютинацией (не менее +++) учитывали как диагностически значимое.3. The results of the agglutination reaction were taken into account using an agglutinoscope to detect agglutinate sediment in the form of an “umbrella” or “accumulation of granules” in a positive system. The last dilution of the drug with severe agglutination (not less than +++) was considered as diagnostically significant.

Результаты исследования наличия антител к буркхольдериям в 6 сериях препарата «Лактоглобулин против условно-патогенных бактерий и сальмонелл коровий для перорального применения» в реакции агглютинации с использованием комплексного соматического антигена B. cepacia В-7518 представлены в таблице 2.The results of the study of the presence of antibodies to burkholderia in 6 series of the drug “Lactoglobulin against opportunistic bacteria and bovine salmonella for oral administration” in the agglutination reaction using the complex somatic antigen of B. cepacia B-7518 are presented in table 2.

Пример 5. Постановка ИФА для определения антител к буркхольдериям.Example 5. The formulation of ELISA for the determination of antibodies to burkholderii.

1. Подготовка проб препарата «Лактоглобулин против условно-патогенных бактерий и сальмонелл коровий для перорального применения».1. Preparation of samples of the drug "Lactoglobulin against opportunistic bacteria and Salmonella bovine for oral use."

Флаконы с лактоглобулином развальцовывали от металлических колпачков, исходный жидкий препарат разводили 1:50. Подготавливали двухмерным титрованием рабочие разведения от 1:100 до 1:3200, используя в качестве растворителя изотонический раствор натрия хлорида (pH 7,1±0,1).Bottles with lactoglobulin were expanded from metal caps, the initial liquid preparation was diluted 1:50. Working dilutions from 1: 100 to 1: 3200 were prepared by two-dimensional titration using an isotonic sodium chloride solution (pH 7.1 ± 0.1) as a solvent.

2. Сенсибилизация планшета антигеном.2. Sensitization of the tablet with antigen.

В работе использовали 96-луночный полистироловый плоскодонный планшет для постановки иммунологических реакций “Linbro” USA.We used a 96-well polystyrene flat-bottomed plate for the formulation of immunological reactions “Linbro” USA.

Во все лунки (в соответствии с количеством анализируемых образцов) вносили комплексный соматический антиген B. cepacia В-7518 (инактивированный) по 100 мкл в лунку в двух повторностях. Планшет с антигеном выдерживали при +4°C 18-24 ч. Производили 3-кратно отмывку несвязавшихся компонентов фосфатно-солевым буферным раствором (ФСБР 7,2±0,2).Complex somatic antigen B. cepacia B-7518 (inactivated) 100 μl per well in duplicate was added to all wells (according to the number of samples analyzed). The tablet with the antigen was kept at + 4 ° C for 18-24 hours. The unbound components were washed 3 times with phosphate-buffered saline (PBS 7.2 ± 0.2).

Контроли:Controls:

1) контроль антигена (отрицательный контроль)1) antigen control (negative control)

Антиген вносили в лунку, помеченную как контроль антигена. При добавлении исследуемых образцов в лунку с антигеном вносили ФСБР.Antigen was added to the well labeled as antigen control. When test samples were added, PBS was added to the antigen well.

2) контроль наличия антител (положительный контроль)2) control the presence of antibodies (positive control)

Из положительной кроличьей антисыворотки приготавливали разведения: 1:50; 1:100; 1:200; 1:400; 1:800; 1:1600. Полученные разведения антисыворотки вносили в отмеченные лунки с антигеном. После проведения исследования по показателям оптической плотности положительной контрольной антисыворотки выстраивали калибровочную кривую, которую использовали для определения титров антител в испытуемых образцах.From a positive rabbit antiserum, dilutions were prepared: 1:50; 1: 100; 1: 200; 1: 400; 1: 800; 1: 1600. The resulting antiserum dilutions were added to the marked antigen wells. After the study, a calibration curve was built up according to the optical density indices of the positive control antiserum, which was used to determine antibody titers in the test samples.

3) контроль отсутствия антител (отрицательный контроль)3) control the absence of antibodies (negative control)

В качестве отрицательного контроля по отсутствию антител использовали кроличью сыворотку от неиммунизированного животного, которую разводили ФСБР в соотношении 1:50 и вносили по 100 мкл в соответствующую лунку.As a negative control for the absence of antibodies, rabbit serum from an unimmunized animal was used, which was diluted with PBS in a ratio of 1:50 and added 100 μl to the corresponding well.

4) контроль конъюгата (положительный контроль)4) conjugate control (positive control)

В соответствующую лунку вносили 100 мкл рабочего раствора конъюгата, который проявляли субстратной смесью в процессе постановки ИФА.100 μl of the conjugate working solution, which was developed with the substrate mixture during ELISA, was added to the corresponding well.

3. Проведение ИФА3. ELISA

Внесение подготовленных исследуемых проб производили при +37°C в течение 1 ч. Отмывали несвязавшиеся компоненты реакции 3-кратно фосфатно-солевым буферным раствором (ФСБР 7,2±0,2).The prepared test samples were introduced at + 37 ° C for 1 h. The unbound components of the reaction were washed with 3 times phosphate-buffered saline (PBS 7.2 ± 0.2).

В качестве конъюгата использовали коммерческий препарат «Белок А, меченный пероксидазой хрена, сухой» (НИИЭМ им. Пастера, г. Санкт-Петербург), который подготавливали с добавлением бычьего сывороточного альбумина (БСА) в соответствии с инструкцией, прилагаемой производителями. Раствор конъюгата с БСА вносили в лунки с пробами и антигеном по 100 мкл и инкубировали 1 ч при +37°C. Отмывали несвязавшиеся компоненты реакции 3-кратно фосфатно-солевым буферным раствором (ФСБР 7,2±0,2).The commercial preparation Protein A labeled with horseradish peroxidase dry was used as a conjugate (NIIEM Pasteur, St. Petersburg), which was prepared with the addition of bovine serum albumin (BSA) in accordance with the instructions provided by the manufacturers. The BSA conjugate solution was added to the wells with samples and antigen of 100 μl and incubated for 1 h at + 37 ° C. Unbound components of the reaction were washed with 3 times phosphate-buffered saline (PBS 7.2 ± 0.2).

Вносили субстратную смесь ОФД (ортофенилендиамин)+перекись водорода по 100 мкл и выдерживали 10-15 мин при 20°C. Останавливали реакцию Стоп-реагентом (0,1 М раствор серной кислоты) и фотометрировали результат с использованием микросканирующего устройства Organon Teknika Reader 530 Version 1.21 (λ=492).A substrate mixture of OPD (orthophenylenediamine) + hydrogen peroxide of 100 μl was introduced and held for 10-15 minutes at 20 ° C. The reaction was stopped with a Stop reagent (0.1 M sulfuric acid solution) and the result was photographed using an Organon Teknika Reader 530 Version 1.21 micro-scanning device (λ = 492).

4. Учет реакции ИФА4. Accounting for the reaction of ELISA

Титр антител устанавливали по усредненному результату оптической плотности образца препарата, превышающему показатели оптической плотности в отрицательных контролях не менее чем в 2 раза, и сопоставляли результат с калибровочными данными.The antibody titer was determined by the averaged result of the optical density of the sample of the drug, exceeding the optical density in the negative controls by at least 2 times, and the result was compared with calibration data.

Результаты исследования наличия антител к буркхольдериям в 6 сериях препарата «Лактоглобулин против условно-патогенных бактерий и сальмонелл коровий для перорального применения» с использованием комплексного соматического антигена B. cepacia В-7518 методом ИФА представлены в Таблице 3.The results of the study of the presence of antibodies to burkholderia in 6 series of the drug “Lactoglobulin against opportunistic bacteria and Salmonella bovine for oral administration” using the complex somatic antigen B. cepacia B-7518 by ELISA are presented in Table 3.

Пример 6. Использование диагностических систем для титрования антител к буркхольдериям в разных биологических средах.Example 6. The use of diagnostic systems for titration of antibodies to burkholderiy in different biological environments.

Реакцию агглютинации (пример №4) и метод ИФА (пример №5) использовали для определения титров антител в разных биологических образцах: лактосыворотках (основное сырье для получения лактоглобулина) - 6 образцов, кроличьих сыворотках - 6 образцов, в том числе 3 образца - от иммунизированных B. cepacia В-7518 и 3 образца - от неиммунизированных кроликов. Результаты приведены в Таблице 4.The agglutination reaction (example No. 4) and the ELISA method (example No. 5) were used to determine antibody titers in different biological samples: lactoserum (the main raw material for lactoglobulin) - 6 samples, rabbit sera - 6 samples, including 3 samples from immunized with B. cepacia B-7518 and 3 samples from non-immunized rabbits. The results are shown in Table 4.

Проведенные исследования показали, что реакция агглютинации и метод ИФА с использованием соматического антигена B. cepacia В-7518 дают сопоставимые результаты по определению титров антител в разных биологических средах - в сыворотках кроликов, иммунизированных и неиммунизированных B. cepacia В-7518, а также коровьих лактосыворотках.Studies have shown that the agglutination reaction and the ELISA using the somatic antigen of B. cepacia B-7518 give comparable results for the determination of antibody titers in different biological environments - in rabbit sera immunized and non-immunized with B. cepacia B-7518, as well as bovine lactoserum .

Figure 00000001
Figure 00000001

Figure 00000002
Figure 00000002

Figure 00000003
Figure 00000003

Figure 00000004
Figure 00000004

Таким образом, предлагаемый штамм B. cepacia В-7518 обеспечивает стабильно высокий рост при культивировании на твердых питательных средах при сохранении всех свойств, что позволяет использовать его для получения соматического антигена для определения антител к B. cepacia в биологических средах.Thus, the proposed strain of B. cepacia B-7518 provides a stably high growth when cultured on solid nutrient media while maintaining all the properties, which allows you to use it to obtain somatic antigen for the detection of antibodies to B. cepacia in biological media.

Claims (1)

Штамм Burkholderia cepacia B-7518, депонированный в Государственной коллекции патогенных микроорганизмов и клеточных культур «ГКПМ-Оболенск» ФБУН «Государственный научный центр прикладной микробиологии и биотехнологии» Роспотребнадзора под номером B-7518, используемый для получения антигена для определения антител к Burkholderia cepacia в биологических средах. The strain Burkholderia cepacia B-7518, deposited in the State collection of pathogenic microorganisms and cell cultures "GKPM-Obolensk" Federal State Budgetary Institution "State Scientific Center for Applied Microbiology and Biotechnology" Rospotrebnadzor under the number B-7518, used to obtain antigen for determination of antibodies to Burkholderia cepacia in bi environments.
RU2014142299/10A 2014-10-20 2014-10-20 Burkholderia cepacia B-7518 STRAIN USED FOR OBTAINING OF ANTIGEN FOR IDENTIFICATION OF ANTIBODIES TO Burkholderia cepacia IN BIOLOGICAL ENVIRONMENTS RU2566555C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2014142299/10A RU2566555C1 (en) 2014-10-20 2014-10-20 Burkholderia cepacia B-7518 STRAIN USED FOR OBTAINING OF ANTIGEN FOR IDENTIFICATION OF ANTIBODIES TO Burkholderia cepacia IN BIOLOGICAL ENVIRONMENTS

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2014142299/10A RU2566555C1 (en) 2014-10-20 2014-10-20 Burkholderia cepacia B-7518 STRAIN USED FOR OBTAINING OF ANTIGEN FOR IDENTIFICATION OF ANTIBODIES TO Burkholderia cepacia IN BIOLOGICAL ENVIRONMENTS

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2566555C1 true RU2566555C1 (en) 2015-10-27

Family

ID=54362310

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2014142299/10A RU2566555C1 (en) 2014-10-20 2014-10-20 Burkholderia cepacia B-7518 STRAIN USED FOR OBTAINING OF ANTIGEN FOR IDENTIFICATION OF ANTIBODIES TO Burkholderia cepacia IN BIOLOGICAL ENVIRONMENTS

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2566555C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2759831C1 (en) * 2021-05-31 2021-11-18 Андрей Владимирович Козлов Nutrient medium for cultivating microorganisms from burkholderia cepacia complex

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2281501C1 (en) * 2004-11-22 2006-08-10 Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт METHOD FOR QUICK-TEST DETECTING OF INTRA-HOSPITAL Burkholderia cepacia INFECTION AND ITS DIFFERENTIATION AGAINST OTHER SPECIES OF BURKCHOLDERIA AND PSEUDOMONAS
RU2339690C1 (en) * 2007-07-10 2008-11-27 ФГУЗ Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт Роспотребнадзора STRAIN OF BACTERIA Burkholderia cepacia - AVIRULENT PRODUCER OF BACTERIOPHAGE, LYSING ORIGINATOR OF GLANDERS

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2281501C1 (en) * 2004-11-22 2006-08-10 Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт METHOD FOR QUICK-TEST DETECTING OF INTRA-HOSPITAL Burkholderia cepacia INFECTION AND ITS DIFFERENTIATION AGAINST OTHER SPECIES OF BURKCHOLDERIA AND PSEUDOMONAS
RU2339690C1 (en) * 2007-07-10 2008-11-27 ФГУЗ Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт Роспотребнадзора STRAIN OF BACTERIA Burkholderia cepacia - AVIRULENT PRODUCER OF BACTERIOPHAGE, LYSING ORIGINATOR OF GLANDERS

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ЧЕРНУХА М.Ю.,Реализация патогенности бактерий Burkholderia cepacia при разных формах инфекции, Автореф. дисс. докт. мед. наук: 03.00.07, М., 2008. GOVAN J.R.W. et al., Burkholderia cepacia: medical, taxonomic and ecological issues, J. Med. Microbiol., 1996, vol.45, pp.395-407. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2759831C1 (en) * 2021-05-31 2021-11-18 Андрей Владимирович Козлов Nutrient medium for cultivating microorganisms from burkholderia cepacia complex

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Majewska et al. Oral application of T4 phage induces weak antibody production in the gut and in the blood
Rocha et al. Interaction between Shiga toxin and monoclonal antibodies: binding characteristics and in vitro neutralizing abilities
Heidebrecht et al. Treatment and prevention of recurrent Clostridium difficile infection with functionalized bovine antibody-enriched whey in a hamster primary infection model
Rudenko et al. A monoclonal antibody against the C-terminal domain of Bacillus cereus hemolysin II inhibits HlyII cytolytic activity
Kang et al. Characterization of two-component system CitB Family in Salmonella Pullorum
Noli Truant et al. Superantigens, a paradox of the immune response
RU2566555C1 (en) Burkholderia cepacia B-7518 STRAIN USED FOR OBTAINING OF ANTIGEN FOR IDENTIFICATION OF ANTIBODIES TO Burkholderia cepacia IN BIOLOGICAL ENVIRONMENTS
Peng et al. Impact of actin on adhesion and translocation of Enterococcus faecalis
Yamanashi et al. Effects of growth stage on the characterization of enterotoxin A-producing Staphylococcus aureus-derived membrane vesicles
Riaz et al. Human mucosal IgA immune responses against enterotoxigenic Escherichia coli
Chu et al. Chlamydia psittaci triggers the invasion of H9N2 avian influenza virus by impairing the functions of chicken macrophages
Liu et al. Determination of the expression of three fimbrial subunit proteins in cultured Trueperella pyogenes
RU2566554C1 (en) Stenotrophomonas maltophilia STRAIN USED FOR OBTAINING OF ANTIGEN FOR IDENTIFICATION OF ANTIBODIES TO Stenotrophomonas maltophilia IN BIOLOGICAL MEDIUMS
Ito et al. Yersinia enterocolitica bacteremia and enterocolitis in a previously healthy 20-month-old girl
Wang et al. Antimicrobial Activity of Sertraline on Listeria monocytogenes
Aminzadeh et al. Systematic evaluation of parameters important for production of native toxin A and toxin B from Clostridioides difficile
Jones Robert et al. Immune-enhanced phagocytosis of Neisseria gonorrhoeae by macrophages: characterization of the major antigens to which opsonins are directed
Figl et al. Safety and immunogenicity of recombinant Bacille Calmette-Guérin strain VPM1002 and its derivatives in a goat model
Fang et al. Production of Clostridium difficile toxin in a medium totally free of both animal and dairy proteins or digests
Puranik et al. Enhanced production and purification of recombinant surface array protein (Sap) for use in detection of Bacillus anthracis
RU2449290C2 (en) Method of obtaining erythrocytic antigenic diagnosticum
Popoff et al. Anaerobes and Toxins, a Tradition of the Institut Pasteur
Cornax et al. Novel models of Streptococcus canis colonization and disease reveal modest contributions of M-like (SCM) protein
RU2611359C1 (en) Method and set for determination of cholera toxin production and differentiation of epidemiologically significant strains of cholera vibrios of classical and el tor biovars
Kuznetsova et al. Creation of Antibody Immunoassay Test Systems for Indication of Enteropathogenic Yersinia

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20191021