RU2555136C1 - Method of monitoring microvessel of mesentery in laboratory animals using biomicroscopy - Google Patents
Method of monitoring microvessel of mesentery in laboratory animals using biomicroscopy Download PDFInfo
- Publication number
- RU2555136C1 RU2555136C1 RU2014116479/14A RU2014116479A RU2555136C1 RU 2555136 C1 RU2555136 C1 RU 2555136C1 RU 2014116479/14 A RU2014116479/14 A RU 2014116479/14A RU 2014116479 A RU2014116479 A RU 2014116479A RU 2555136 C1 RU2555136 C1 RU 2555136C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- biomicroscopy
- microscope
- mesentery
- fiber
- animal
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к экспериментальной медицине и биологии и может быть использовано при прижизненном исследовании микроциркуляции микрососудов в брюшной полости лабораторных животных.The invention relates to experimental medicine and biology and can be used in vivo study of microcirculation of microvessels in the abdominal cavity of laboratory animals.
Одним из основных способов изучения микроциркуляции, т.е. микрососудистого звена кровообращения, является биомикроскопия. Любой вид биомикроскопии требует выполнения следующих основных условий: обездвиживания животного (анестезия), надежной иммобилизации микроскопируемой области, содержания ее в максимально возможных физиологических условиях и регистрацию наблюдаемых явлений.One of the main ways to study microcirculation, i.e. microvascular circulation, is biomicroscopy. Any type of biomicroscopy requires the fulfillment of the following basic conditions: immobilization of the animal (anesthesia), reliable immobilization of the microscopic area, its maintenance under the maximum possible physiological conditions, and registration of the observed phenomena.
Для исследования микроциркуляции микрососудов брыжейки лабораторных животных используют методику, включающую в себя выделение кишечной петли, например, через небольшой парамедиальный разрез справа на уровне нижней трети живота, с последующим размещением брыжеечного сегмента в камерах для кишечной петли различной конструкции или на световоде термостатируемых столиков. Предупреждение высыхания исследуемого участка осуществляется путем орошения физиологическими растворами (A.M. Чернух, П.Н. Александров, О.В. Алексеев. Микроциркуляция / под общей редакцией A.M. Чернуха. - М.: Медицина, с.12-13, 1975).To study the microcirculation of the microvessels of the mesentery of laboratory animals, a technique is used that includes the extraction of the intestinal loop, for example, through a small paramedial incision on the right at the level of the lower third of the abdomen, followed by the placement of the mesenteric segment in the chambers for the intestinal loop of various designs or on the light guide of thermostated tables. Prevention of drying of the investigated area is carried out by irrigation with physiological solutions (A.M. Chernukh, PN Aleksandrov, OV Alekseev. Microcirculation / edited by A.M. Chernukha. - M .: Medicine, 12-12-13, 1975).
Известен способ для исследования состояния брыжейки мелких и средних животных (мышь, крыса), заключающийся в том, что занаркотизированное подопытное животное располагают на столике, температура которого поддерживается на физиологическом уровне. Затем производят срединную лапаротомию, извлекают часть тонкой кишки с брыжейкой, которые расправляются на столике и орошаются теплым раствором с помощью специальных систем подачи и подогрева орошаемого раствора. Далее используется методика исследования микроциркуляции с определением скорости лимфатического дренажа. С помощью системы мониторинга, представляющей собой установленный на штативе микроскоп с видеокамерой, в режиме реального времени наблюдают за развитием процесса и сохраняют эти сведения в памяти компьютера (RU 2465833, А61В 10/00, 2012).There is a method for studying the state of the mesentery of small and medium animals (mouse, rat), which consists in the fact that the zanarcotized experimental animal is placed on a table whose temperature is maintained at a physiological level. Then, a median laparotomy is performed, a part of the small intestine with the mesentery is removed, which are straightened on the table and irrigated with a warm solution using special supply and heating systems for the irrigated solution. Next, a microcirculation study technique is used to determine the rate of lymphatic drainage. Using a monitoring system, which is a microscope mounted on a tripod with a video camera, they monitor the development of the process in real time and save this information in the computer's memory (RU 2465833, АВВ 10/00, 2012).
Известен способ биомикроскопии капилляров брыжейки мелких лабораторных животных (SU 1391638, A61D 3/00, 1988). Способ заключается в том, что животное фиксируют на столике и вскрывают брюшную полость. Петлю кишки проводят через отверстие в камере и фиксируют на кольце с шипами, герметично соединяют брюшную полость с камерой, в которую наливают необходимый раствор. Устройство устанавливают на предметный столик микроскопа и выполняют биомикроскопию как обычно.A known method of biomicroscopy of capillaries of the mesentery of small laboratory animals (SU 1391638, A61D 3/00, 1988). The method consists in the fact that the animal is fixed on the table and the abdominal cavity is opened. A loop of the intestine is carried out through an opening in the chamber and fixed on a ring with spikes; the abdominal cavity is hermetically connected to the chamber into which the necessary solution is poured. The device is mounted on a microscope stage and biomicroscopy is performed as usual.
Известен способ прижизненного микроскопирования брыжейки, для реализации которого используют термостатическую камеру, столик и ванночку для физиологического раствора, в дно которой встроен световод из кварцевого стекла прямоугольной формы, и накрытую полусферой из прозрачного полиэтилена или резины, образующих камеру. Устройство монтируют на предметном столике микроскопа (SU 745498, А61В 1/06, 1980). Способ заключается в том, что на подставку помещают находящееся под наркозом животное. Через разрез в передней брюшной стенке выводят исследуемый внутренний орган (например, брыжейку тонкой кишки), который располагают на специальной площадке прозрачной эластичной камеры, заполненной теплой циркулирующей жидкостью. Для предупреждения высыхания исследуемого органа его дополнительно орошают физиологическим раствором или смазывают вазелиновым маслом.There is a known method of intravital microscopy of the mesentery, for the implementation of which a thermostatic chamber, a table and a tray for physiological saline are used, in the bottom of which a rectangular quartz glass fiber is built-in and covered with a hemisphere made of transparent polyethylene or rubber forming a chamber. The device is mounted on a microscope stage (SU 745498,
В другом варианте этого способа исследуемый орган размещают на световоде, состоящем из стержня с резьбой и набором усеченных конусов, выполненных из оптически прозрачного материала, большие основания которых образуют площадку для размещения микроскопируемого органа (SU 980687, А61В 1/06, 1982).In another embodiment of this method, the test organ is placed on a light guide consisting of a threaded rod and a set of truncated cones made of optically transparent material, the large bases of which form a platform for the microscopic organ (SU 980687, А61В 1/06, 1982).
Данные методики имеют ряд ограничений, которые связаны с необходимостью извлечения кишечной петли из брюшной полости и помещения ее в специальную камеру, в которой необходимо поддержание постоянной температуры и влажности путем орошения физиологическими растворами, что резко сокращает время наблюдения и повышает риск инфицирования кишечной петли. Кроме того, не исключено механическое повреждение исследуемого участка при манипуляциях из-за возможности прилипания к поверхности камеры и световода объекта исследования, а также перегиба сосудов. Эти факторы могут способствовать искажению результатов исследования.These methods have a number of limitations that are associated with the need to remove the intestinal loop from the abdominal cavity and place it in a special chamber, in which it is necessary to maintain a constant temperature and humidity by irrigation with physiological solutions, which dramatically reduces the observation time and increases the risk of infection of the intestinal loop. In addition, mechanical damage to the investigated area during manipulations is not ruled out due to the possibility of adhesion to the surface of the chamber and the optical fiber of the object of study, as well as kinking of the vessels. These factors can contribute to biased research results.
Наиболее близким (прототипом) является способ, изложенный в патенте (RU 2465833, А61В 10/00, 2012).The closest (prototype) is the method described in the patent (RU 2465833, AB 10/00, 2012).
Задачей изобретения является усовершенствование данной методики с целью проведения исследования в более физиологических условиях.The objective of the invention is to improve this technique with the aim of conducting research in more physiological conditions.
Технический результат заключается в предотвращении нарушений микроциркуляции в кишечной петле и близлежащих сегментах брыжейки, а также повышении чистоты эксперимента и приближении условий к физиологическим.The technical result consists in preventing microcirculation disorders in the intestinal loop and nearby segments of the mesentery, as well as increasing the purity of the experiment and bringing the conditions closer to physiological.
Технический результат достигается тем, что в способе мониторирования микрососудов брыжейки у лабораторных животных, предусматривающем наркоз, срединную лапаротомию, биомикроскопию и мониторирование с помощью видеокамеры, установленной на микроскопе и соединенной с вычислительным блоком, согласно изобретению перед лапаротомией размещают животное на подвижный термостатируемый препарационный столик, присоединенный к микроскопу вместо предметного столика, кровотечение останавливают с помощью термокоагуляции, фиксируют края раны с использованием лигатур, делают парамедиальный разрез справа на уровне нижней трети живота, биомикроскопию микрососудов брыжейки осуществляют с помощью съемного полого световода цилиндрической формы, вводимого непосредственно в брюшную полость через парамедиальный разрез с правой стороны с последующим набрасыванием брыжейки конечной петли подвздошной кишки на предварительно заполненный индифферентными маслами или физиологическими растворами полый верхний торец световода, нижний глухой торец которого пропущен через отверстие в препарационном столике за его пределы, операционное поле закрывается тампонами, смоченными физиологическим раствором натрия хлорида, столик, с таким образом подготовленным животным, перемещают до соосного совмещения световода и объектива микроскопа с выходом пучка проходящего света от конденсатора. Включается источник света и с помощью фиксированной видеокамеры для микроскопа, соединенной с персональным компьютером, производят фиксацию результатов на различных стадиях исследования с последующей обработкой полученных данных с использованием компьютерной программы, предназначенной для сохранения, просмотра и обработки видеозаписей.The technical result is achieved by the fact that in the method of monitoring the microvessels of the mesentery in laboratory animals, comprising anesthesia, median laparotomy, biomicroscopy and monitoring using a video camera mounted on a microscope and connected to a computing unit, according to the invention, the animal is placed on a movable thermostatically controlled preparation table attached to a laparotomy to the microscope instead of the stage, bleeding is stopped using thermocoagulation, the edges of the wound are fixed and Using ligatures, a paramedial incision is made on the right at the level of the lower third of the abdomen, biomicroscopy of the mesenteric microvessels is carried out using a removable hollow fiber guide of a cylindrical shape, inserted directly into the abdominal cavity through a paramedial incision on the right side, followed by the mesentery of the terminal ileum loop looped onto a pre-filled indifferent oil or indifferent physiological solutions, the hollow upper end of the fiber, the lower blind end of which is passed through the hole in paratsionnom table beyond, the operative field closes swab wetted with physiological sodium chloride solution, table, the thus prepared animal is moved to the coaxial alignment of the fiber and the lens of the microscope with transmitted light beam output from the capacitor. The light source is turned on and using a fixed video camera for a microscope connected to a personal computer, the results are recorded at various stages of the study, followed by processing of the obtained data using a computer program designed to store, view and process videos.
На фиг.1 представлена схема биомикроскопии наркотизированных лабораторных животных в брюшной полости; на фиг.2 представлено поэтапное исполнение способа (фиксирование краев раны и введение световода в брюшную полость наркотизированных лабораторных животных); на фиг.3 представлена конструкция используемого световода.Figure 1 presents a diagram of a biomicroscopy of anesthetized laboratory animals in the abdominal cavity; figure 2 presents a phased execution of the method (fixing the edges of the wound and the introduction of the light guide into the abdominal cavity of anesthetized laboratory animals); figure 3 presents the design of the used fiber.
Обозначения на фиг.1, 2 и 3: 1 - полый цилиндрический световод, 2 - брыжейка, 3 - термостатируемый препарационный столик, 4 - объектив, 5 - окуляр, 6 - конденсор, 7 - срединная лапаратомия, 8 - лигатуры, 9 - парамедиальный разрез справа, 10 - нижний торец световода, 11 - верхний полый торец световода, 12 - ограничитель световода, 13 - марлевые тампоны, 14 - источник света.Designations in figures 1, 2 and 3: 1 — hollow cylindrical fiber, 2 — mesentery, 3 — thermostatically controlled preparation stage, 4 — lens, 5 — eyepiece, 6 — condenser, 7 — median laparatomy, 8 — ligatures, 9 — paramedial section on the right, 10 - the lower end of the fiber, 11 - the upper hollow end of the fiber, 12 - the limiter of the fiber, 13 - gauze swabs, 14 - the light source.
Описание способаMethod Description
Анестезия достигается внутрибрюшинным введением раствора хлоралозы (40 мг/кг) и уретана (6 мг/кг). Перед проведением исследования с целью исключения загрязнения в области брюшной полости, а также нижней трети живота с правой стороны туловища удаляется шерстяной покров. После наступления состояния глубокого наркоза лабораторное животное помещается на подвижный термостатируемый (37-37,5°C) препарационный столик 3 в положении на спине с раскинутыми в стороны передними и задними лапами. В зависимости от высоты передней брюшной стенки подбирается стеклянный световод 1. Выполняется срединная лапаротомия 7. Кровотечение из мелких сосудов кожи и передней стенки брюшины останавливается с помощью термокоагуляции. Края раны фиксируются с использованием лигатур 8 (фиг.2а). Справа на уровне нижней трети живота делают небольшой парамедиальный разрез 9, через который вводится верхний открытый торец 11 съемного стеклянного полого световода 1, нижний торец 10 (фиг.1а, б) выводится через отверстие в пластине препарационного столика 3 за его пределы и фиксируется с помощью ограничителя 12 световода. Через верхний торец 11 световода проводят заполнение полости световода до верхней границы вазелиновым маслом, являющимся индифферентным, что исключает возможность прилипания объекта исследования к стенкам световода 1, проваливания внутрь световода и перегиба сосудов. Брыжейку 2 с кишечной петлей располагают на верхнем торце 11 световода. Операционное поле закрывается тампонами 13, смоченными физиологическим раствором натрия хлорида (t=37-37,5°C) (фиг.2г). По мере необходимости производится орошение исследуемого участка изотоническим раствором натрия хлорида. Столик 3, с таким образом подготовленным животным, перемещают до соосного совмещения световода 1 и объектива 4 микроскопа с выходом пучка проходящего света от конденсатора 6. Включается источник света 14. С помощью фиксированной камеры для микроскопа (на фигурах не показана), соединенной с вычислительным блоком, а именно персональным компьютером (на фигурах не показан), производится запись результатов исследований на различных стадиях с последующей обработкой полученных данных с использованием компьютерной программы, например программы ToupView, предназначенной для сохранения, просмотра и обработки видеозаписей, полученных с видеокамер для микроскопа фирмы Levenhuk.Anesthesia is achieved by intraperitoneal administration of a solution of chloralose (40 mg / kg) and urethane (6 mg / kg). Before the study, in order to exclude contamination in the abdominal cavity, as well as the lower third of the abdomen, wool is removed from the right side of the body. After the onset of deep anesthesia, the laboratory animal is placed on a movable thermostatically controlled (37-37.5 ° C) preparation table 3 in the supine position with the front and hind legs spread out to the sides. Depending on the height of the anterior abdominal wall, a
Таким образом, применение предложенного нами способа мониторирования микрососудов в брюшной полости повышает чистоту эксперимента, исключает высыхание и прилипание исследуемого участка, а также проваливание и перегиб сосудов, что позволяет выполнять длительные исследования. Наличие видеокамеры позволяет в реальном времени фиксировать с последующим детальным изучением изменения микрососудов и скорости кровотока.Thus, the application of our proposed method for monitoring microvessels in the abdominal cavity increases the purity of the experiment, eliminates drying and adhesion of the test site, as well as the failure and kinking of vessels, which allows for long-term studies. The presence of a video camera allows real-time recording with subsequent detailed study of changes in microvessels and blood flow velocity.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2014116479/14A RU2555136C1 (en) | 2014-04-23 | 2014-04-23 | Method of monitoring microvessel of mesentery in laboratory animals using biomicroscopy |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2014116479/14A RU2555136C1 (en) | 2014-04-23 | 2014-04-23 | Method of monitoring microvessel of mesentery in laboratory animals using biomicroscopy |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2555136C1 true RU2555136C1 (en) | 2015-07-10 |
Family
ID=53538283
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2014116479/14A RU2555136C1 (en) | 2014-04-23 | 2014-04-23 | Method of monitoring microvessel of mesentery in laboratory animals using biomicroscopy |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2555136C1 (en) |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
SU980687A1 (en) * | 1981-03-11 | 1982-12-15 | Днепропетровский Ордена Трудового Красного Знамени Медицинский Институт | Device for vital microscopy |
US20100196284A1 (en) * | 2007-04-20 | 2010-08-05 | Lindner Jonathan R | Ultrasound Imaging with Targeted Microbubbles |
RU2465833C1 (en) * | 2011-06-14 | 2012-11-10 | Юрий Маркович Левин | Device for studying tissue fluid transport |
RU145519U1 (en) * | 2014-04-23 | 2014-09-20 | федеральное государственное бюджетное учреждение высшего специального образования "Воронежский государственный университет" (ФГБУ ВПО ВГУ) | BIOMICROSCOPY FIBER |
-
2014
- 2014-04-23 RU RU2014116479/14A patent/RU2555136C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
SU980687A1 (en) * | 1981-03-11 | 1982-12-15 | Днепропетровский Ордена Трудового Красного Знамени Медицинский Институт | Device for vital microscopy |
US20100196284A1 (en) * | 2007-04-20 | 2010-08-05 | Lindner Jonathan R | Ultrasound Imaging with Targeted Microbubbles |
RU2465833C1 (en) * | 2011-06-14 | 2012-11-10 | Юрий Маркович Левин | Device for studying tissue fluid transport |
RU145519U1 (en) * | 2014-04-23 | 2014-09-20 | федеральное государственное бюджетное учреждение высшего специального образования "Воронежский государственный университет" (ФГБУ ВПО ВГУ) | BIOMICROSCOPY FIBER |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
СМОЛИЧЕВ Е.В. Метод прижизненного изучения капиллярного кровообращения с фотоэлектрической регистрацией диаметра сосудов и определением скорости кровотока, Патологическая физиология и экспериментальная терапия, 1968, N3, стр. 72-74. RHODIN J.A et al., Intravital and electron microscopic analysis of the arterioles by the immersion and perfusion technics of fixation of the rat messentery, Arkh Anat Gistol Embriol, 1981, 81(12), p 57-65, реферат * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
RU2696263C1 (en) | Emulsion or microemulsion for use in endoscopic resection of mucosa and/or endoscopic submucous disintegration | |
BR112021004204A2 (en) | system and surgical procedure for accurate intraocular pressure reduction | |
BR112021004197A2 (en) | non-invasive and minimally invasive laser surgery to reduce intraocular pressure in the eye | |
Hariri et al. | Platform to investigate aqueous outflow system structure and pressure-dependent motion using high-resolution spectral domain optical coherence tomography | |
ES2568787T3 (en) | Device and procedure for sampling tear fluid | |
Abourbih et al. | Renal pelvic pressure in percutaneous nephrolithotomy: the effect of multiple tracts | |
Hooker | The functional activity of the capillaries and venules | |
Rius et al. | Intravital microscopy in the cremaster muscle microcirculation for endothelial dysfunction studies | |
Caballero-Romeu et al. | Micro-ureteroscopy vs. ureteroscopy: effects of miniaturization on renal vascularization and intrapelvic pressure | |
Klein et al. | Mouse and rat models of induction of hepatic fibrosis and assessment of portal hypertension | |
NOER et al. | Circulatory disturbances produced by acute intestinal distention in the living animal | |
RU2555136C1 (en) | Method of monitoring microvessel of mesentery in laboratory animals using biomicroscopy | |
RU152550U1 (en) | INSTALLATION FOR BIOMICROSCOPY IN TRANSMISSION LIGHT | |
ES2972017T3 (en) | Device for non-invasive preventive cleaning of cerebrospinal fluid diversion systems | |
Hong et al. | Mechanism of urosepsis: relationship between intrarenal pressures and pyelovenous backflow | |
Koike et al. | Live intravital intestine with blood flow visualization in neonatal mice using Two-photon laser scanning microscopy | |
RU2400820C2 (en) | Method of creating experimental model of pancreatic necrosis in rats | |
Wiggins-Dohlvik et al. | A rat burn injury model for studying changes in microvascular permeability | |
RU2465833C1 (en) | Device for studying tissue fluid transport | |
Yoshida et al. | Development of new experimental kidney model for in vitro study of retrograde intrarenal surgery: The “T‐box”. | |
Hakim et al. | A new technique for the microscopic examination of cerebral vessels in vivo | |
Shirakabe et al. | Microscopic observation of lymphocyte dynamics in rat Peyer's patches | |
RU2703709C1 (en) | Method for simulating an experimental soft tissue wound in rats for developing a therapeutic approach | |
Ogata et al. | Encephaloscope: basic study | |
RU2369319C1 (en) | Method of projection representation of small parasagittal brain meningioms |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20170424 |