RU2548199C1 - METHOD OF PRODUCTION OF BIOLOGICAL PREPARATION FOR PROTECTION OF WINTER GRAIN CROPS FROM PINK SNOW MOULD Microdochium nivale - Google Patents
METHOD OF PRODUCTION OF BIOLOGICAL PREPARATION FOR PROTECTION OF WINTER GRAIN CROPS FROM PINK SNOW MOULD Microdochium nivale Download PDFInfo
- Publication number
- RU2548199C1 RU2548199C1 RU2014101283/13A RU2014101283A RU2548199C1 RU 2548199 C1 RU2548199 C1 RU 2548199C1 RU 2014101283/13 A RU2014101283/13 A RU 2014101283/13A RU 2014101283 A RU2014101283 A RU 2014101283A RU 2548199 C1 RU2548199 C1 RU 2548199C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- saprophillus
- fungus
- nivale
- mycohelminths
- nematodes
- Prior art date
Links
Abstract
Description
Способ получения биологического препарата для защиты озимых зерновых культур от розовой снежной плесени относится к области сельского хозяйства и может быть использовано в биотехнологии для биологической защиты зерновых злаковых культур.A method of obtaining a biological preparation for protecting winter crops from pink snow mold belongs to the field of agriculture and can be used in biotechnology for biological protection of cereal crops.
Розовую снежную плесень (РСП) вызывает фитопатогенный низкотемпературный гриб Microdochium (Fusarium) nivale (Fr.) Samuels & I.C. Hallet. Заражение растений происходит, прежде всего, через почву, так как возбудитель может сохраняться на пожнивных остатках, но возможно также и заражение с посевным материалом. В сильно раскустившихся посевах распространению инфекции особенно способствуют высокая влажность воздуха и низкие температуры, близкие к нулю. Если посевы на незамерзшей почве долгое время покрыты снегом, создаются особенно благоприятные условия для развития этого гриба. Болезнь становится заметна лишь весной после таяния снега. Сразу после схода снега больные растения обычно покрыты мицелием, имеющим окраску, от грязно-белой до светло-розовой, которая исчезает при солнечной и ветреной погоде. Обильное образование налета ведет к склеиванию листьев; вследствие чего пораженные листья отмирают. При сильном поражении наблюдается отмирание узла кущения, листовых влагалищ, корней и гибель всего растения. Выжившие растения могут отставать в своем развитии, а в их колосьях часто формируется неполноценное зерно. Вредоносность РСП заключается в изреживании посевов, а нередко частичной или полной их гибели. При сильном поражении растений иногда приходится прибегать к пересеву яровыми. Потери урожая при этом могут быть 20-50%. Для подавления РСП используют химические фунгициды при предпосадочном протравливании зерна и опрыскивании как можно ближе к установлению снегового покрова, сроки установления которого трудно предсказать. К тому же применение фунгицидов имеет много отрицательных сторон (загрязнение пестицидами почвы и природных вод, накопление токсичных веществ в продуктах питания, нарушение экологической целостности почвенной биоты и т.д.). В настоящее время во многих странах мира ведутся работы, направленные на экологизацию выращивания сельскохозяйственных культур, для которой биологический метод имеет большое значение.Pink snow mold (RSP) is caused by the phytopathogenic low-temperature fungus Microdochium (Fusarium) nivale (Fr.) Samuels & I.C. Hallet Infection of plants occurs primarily through the soil, since the pathogen can persist on crop residues, but infection with seed is also possible. In heavily opened crops, the spread of infection is particularly promoted by high air humidity and low temperatures close to zero. If crops on unfrozen soil are covered with snow for a long time, especially favorable conditions are created for the development of this fungus. The disease becomes noticeable only in the spring after the snow melts. Immediately after the snow melts, the diseased plants are usually covered with filamentous mycelium, from dirty white to light pink, which disappears in sunny and windy weather. Abundant plaque formation leads to gluing of leaves; as a result, the affected leaves die off. With severe damage, the death of the tillering node, leaf sheaths, roots and the death of the whole plant is observed. Surviving plants may lag behind in their development, and inferior grains often form in their ears. The harmfulness of the CPD is the thinning of crops, and often their partial or complete death. With severe damage to plants, sometimes you have to resort to reseeding spring. The yield loss in this case can be 20-50%. To suppress CPD, chemical fungicides are used in preplant seed dressing and spraying as close as possible to the establishment of snow cover, the timing of which is difficult to predict. In addition, the use of fungicides has many negative aspects (pesticides contamination of soil and natural waters, accumulation of toxic substances in food, violation of the ecological integrity of soil biota, etc.). Currently, work is underway in many countries around the world to green the cultivation of crops, for which the biological method is of great importance.
Разработанный биологический препарат для защиты озимой пшеницы от РСП заключается в использовании в качестве биологического агента низкотемпературных микогельминтов. Это специфичные к РСП нематоды вооруженные стилетом, с помощью которого прокалывают стенки гиф мицелия и высасывают его содержимое. В результате мицелий гриба М. nivale погибает.The developed biological preparation for protecting winter wheat from CPD consists in the use of low-temperature mycohelminths as a biological agent. These are nematode-specific nematodes armed with a stylet, with which they pierce the walls of mycelium hyphae and suck out its contents. As a result, the mycelium of the fungus M. nivale dies.
Аналога использования этих микогельминтов в борьбе с розовой снежной плесенью озимой пшеницы нам не известны.We are not aware of the use of these mycohelminths in the fight against pink snow mold of winter wheat.
Цель патента заключается в разработке технологии биологической защиты зерновых злаковых культур от розовой снежной плесени с помощью специально выделенных высокоэффективных низкотемпературных микогельминтов, а также разработке оптимальных условий их применения.The purpose of the patent is to develop a technology for the biological protection of cereal crops from pink snow mold using specially selected high-performance low-temperature mycohelminths, as well as to develop optimal conditions for their use.
Примеры конкретного исполненияExamples of specific performance
Для получения биологического препарата были разработаны специальные методики:To obtain a biological preparation, special techniques have been developed:
1. Методика приготовления картофельно-декстрозного агара (PDA)1. The method of preparation of potato dextrose agar (PDA)
Для приготовления питательной среды для грибов, использовали готовый PDA фирмы HIMEDIA (Индия).To prepare a nutrient medium for mushrooms, we used a ready-made PDA from HIMEDIA (India).
Размешать 39 г порошка в 1000 мл дистилированной воды. Колбу с раствором нагревали на водяной бане до полного растворения частиц. Стерилизовали в автоклаве при 1,1 атм (121°C) в течение 15 минут.Stir 39 g of powder in 1000 ml of distilled water. The flask with the solution was heated in a water bath until the particles were completely dissolved. Autoclaved at 1.1 atm (121 ° C) for 15 minutes.
2. Методика выделения гриба в чистую культуру2. The method of isolation of the fungus in a pure culture
Взятые из пораженных растений изоляты мицелия гриба М. nivale ополаскивали в стерильной воде и высевали на PDA в чашки Петри и выращивали при комнатной температуре. Через 5 дней мицелий гриба полностью распространялся по поверхности питательной среды.The M. nivale fungus mycelium isolates taken from the affected plants were rinsed in sterile water and plated on PDA in Petri dishes and grown at room temperature. After 5 days, the mycelium of the fungus completely spread over the surface of the nutrient medium.
3. Методика подготовки иннокулюма для инфекционного фона3. Methods of preparing the innoculum for an infectious background
Простерелизованное в автоклаве (при давлении 1,5 атмосфер, 60 мин) и затем остывшее зерно пшеницы засевали грибом М nivale. Соотношение пшеницы и воды 1:1 (по весу). Затем колбы помещали в климакамеру (SanyoMPR-311D(H), Япония) на 30 дней, поддерживая t=10°C.Sterilized in an autoclave (at a pressure of 1.5 atmospheres, 60 min) and then cooled wheat grain was seeded with M nivale fungus. The ratio of wheat to water is 1: 1 (by weight). Then the flasks were placed in a menopause chamber (SanyoMPR-311D (H), Japan) for 30 days, maintaining t = 10 ° C.
4. Методика выделения нематод из пораженных растений4. The method of isolation of nematodes from affected plants
Материалами для исследований служили сборы внешне здоровых и пораженных РСП растений озимой пшеницы и прикорневой почвы. Для извлечения нематод из разных частей растений и почвы применяли модифицированный метод Бермана. Навески, очищенные от лишних примесей, раскладывали слоем 3-5 мм на ватном фильтре, в сите. Сито вставляли в воронку диаметром 12-15 см, на раструб которой надевали кусок резинового шланга длиной 10-15 см. В нижний конец трубки вставляли энтомологическую пробирку для сбора выделенных нематод. Воронку с резиновой трубкой и с пробиркой устанавливали в деревянном штативе со специально изготовленными отверстиями для воронок. Воронку заливали свежей водопроводной водой так, чтобы жидкость покрыла насыпанную на сито массу.The materials for the research were collections of apparently healthy and affected CPF winter wheat plants and basal soil. To extract nematodes from different parts of plants and soil, a modified Berman method was used. Samples, cleaned of excess impurities, were laid out with a layer of 3-5 mm on a cotton filter, in a sieve. The sieve was inserted into a funnel with a diameter of 12-15 cm, on the socket of which a piece of rubber hose 10-15 cm long was put on. An entomological tube was inserted into the lower end of the tube to collect the isolated nematodes. A funnel with a rubber tube and a test tube was installed in a wooden tripod with specially made holes for the funnels. The funnel was filled with fresh tap water so that the liquid covered the mass sprinkled on the sieve.
Продолжительность растительной экспозиции составляет 24 часа, для почвы - 48 часов. При определении нематод учитывают количество самок, самцов и личинок. При анализе материала под микроскопом, наносили суспензию нематод из энтомологической пробирки на предметное стекло, просматривали и определяли вид. При определении видового состава нематод использовались работы по систематике нематод (Парамонов, 1962).The duration of plant exposure is 24 hours, for the soil - 48 hours. When determining nematodes, the number of females, males and larvae is taken into account. When analyzing the material under a microscope, a suspension of nematodes from an entomological tube was applied to a glass slide, viewed and the species was determined. In determining the species composition of nematodes, work was done on the systematics of nematodes (Paramonov, 1962).
5. Методика массового размножения микогельминта A. saprophillus на грибе Alternaria tenius Nees5. The method of mass reproduction of A. saprophillus mycohelminth on the fungus Alternaria tenius Nees
Культивирование и размножение нематод проводилось по методу Шестеперова А.А. (1995). Результаты исследований Шестеперова показывают, что микотрофные нематоды лучше всего размножаются на грибе Alternaria tenius.The cultivation and reproduction of nematodes was carried out according to the method of A. Shesteperov. (1995). The results of Shesteperov's studies show that mycotrophic nematodes reproduce best on the fungus Alternaria tenius.
При размножении грибов использовали PDA. Его наливали в двухлитровые матрацы по 200 мл и закрывали ватно-марлевыми пробками. Затем автоклавировали при атмосфере 0,5 в течение 0,5 часа. После стириллизации матрацы были сложены на ровную поверхность до остывания и затвердевания питательной среды. Гриб высевали на полностью остывший питательный субстрат и выращивали 3-10 дней в термостате при температуре 26-27°C. Заселенные грибом двухлитровые матрацы заражали водной суспензией нематод в количестве 500 экз. и оставляли при комнатной температуре. Через 30-40 дней количество нематод увеличивалось в 80-100 раз. Матрацы хранили в климакамере при температуре +5°C.When propagating fungi, PDA was used. It was poured into 200 ml two-liter mattresses and covered with cotton-gauze plugs. Then autoclaved at an atmosphere of 0.5 for 0.5 hours. After sterilization, the mattresses were folded onto a flat surface until the medium was cooled and solidified. The fungus was sown on a completely cooled nutrient substrate and grown for 3-10 days in an incubator at a temperature of 26-27 ° C. Two-liter mattresses populated by the fungus were infected with an aqueous suspension of nematodes in an amount of 500 ind. and left at room temperature. After 30-40 days, the number of nematodes increased 80-100 times. The mattresses were stored in a climacteric chamber at a temperature of + 5 ° C.
6. Методика внесения инокулюма на опытные делянки6. The method of making inoculum on experimental plots
Из колб с наработанным инокулюмом гриба М. nivale извлекали заросшее мицелием гриба зерно, которое было взвешено на торзионных весах (100 г) и распределены по пакетам. Развешенный и распределенный инокулем гриба равномерно рассыпали по поверхности опытной делянки (1×1 м2).Grains overgrown with mycelium of the fungus were weighed from flasks with the inoculum of the fungus M. nivale, which was weighed on a torsion balance (100 g) and distributed in packets. Suspended and distributed by the inoculum of the fungus, it was evenly scattered over the surface of the experimental plot (1 × 1 m 2 ).
7. Методика подготовки водной суспензии микогельминта A. saprophillus7. Methodology for the preparation of an aqueous suspension of A. saprophillus mycohelminth
A. saprophillus культивировали в лаборатории на грибе М. nivale при t +5°C. Микогельминта размножали в двухлитровых колбах. Когда в большинстве колб мицелий гриба был съеден, нематод смывали со стенок колб. Полученную суспензию (в объеме 800 мл), довели до объема 1 л (для удобства подсчета). Полученный раствор тщательно перемешали (с помощью магнитной мешалки) и подсчитали число нематод в 1 мл (1 мл = 100 экз).A. saprophillus was cultured in the laboratory on M. nivale fungus at t + 5 ° C. Mycohelminths were propagated in two-liter flasks. When the fungus mycelium was eaten in most flasks, the nematodes were washed off the walls of the flasks. The resulting suspension (in a volume of 800 ml) was brought to a volume of 1 l (for ease of calculation). The resulting solution was thoroughly mixed (using a magnetic stirrer) and the number of nematodes in 1 ml was calculated (1 ml = 100 copies).
Полученную суспензию взбалтывали и заливали в опрыскиватель. Нематод распыляли на пораженные РСП растения осенью. Весной определяли биологическую эффективность применения микогельминта A. saprophillus в борьбе с РСП, а осенью - хозяйственную эффективность.The resulting suspension was shaken and poured into a sprayer. The nematode was sprayed onto the affected plants in the fall. In the spring, the biological effectiveness of the use of the A. saprophillus mycohelminth in the fight against CPD was determined, and in the autumn, economic efficiency was determined.
В проведенных лабораторных опытах микогельминты Aphelenchoides saprophillus Franklin, Paraphelenchus tritici Baranovskaja, Aphelenchus avenae Bastian, были внесены в количестве ±100-200 экз. / пробирку (20×200 мм) на мицелий гриба M. nivale при температурах +5°C, +15°C и +27°C. Температура +5°C оказалась наиболее благоприятной для культивирования микогельминтов Р. tritici, A. avenae и A. saprophillus на мицелии гриба М. nivale. Коэффициент размножения при этой температуре у всех видов колебался от 4,8 до 7,1, при этом нематоды использовали все представленные пищевые ресурсы (мицелий гриба М. nivale) за 50-75 дней. Однако при температуре +15°C скорость размножения у микогельминтов уменьшилась (коэффициент размножения - 4,65-6,09), что естественным образом сказалось на численности популяции (табл.1). В конце эксперимента в пробирках, хранившихся при температуре +15°C, были отмечены единичные погибшие особи, что не наблюдалось в пробирках при температуре +5°C. В тоже время, у видов Р. tritici, A.avenae и A. saprophillus при температуре +27°C не зарегистрировано размножения (коэффициент размножения - 1,14-1,48).In laboratory experiments, mycohelminths Aphelenchoides saprophillus Franklin, Paraphelenchus tritici Baranovskaja, Aphelenchus avenae Bastian, were introduced in an amount of ± 100-200 ind. / tube (20 × 200 mm) on the mycelium of M. nivale fungus at temperatures of + 5 ° C, + 15 ° C and + 27 ° C. The temperature of + 5 ° C turned out to be the most favorable for the cultivation of mycohelminths of P. tritici, A. avenae and A. saprophillus on the mycelium of the fungus M. nivale. The breeding coefficient at this temperature in all species ranged from 4.8 to 7.1, while the nematodes used all the food resources presented (M. mycelium nivale mycelium) for 50-75 days. However, at a temperature of + 15 ° C, the breeding rate of mycogelminthes decreased (breeding coefficient - 4.65-6.09), which naturally affected the population size (Table 1). At the end of the experiment, in test tubes stored at a temperature of + 15 ° C, single dead individuals were noted, which was not observed in test tubes at a temperature of + 5 ° C. At the same time, in species P. tritici, A.avenae, and A. saprophillus, no breeding was recorded at a temperature of + 27 ° C (the breeding coefficient is 1.14–1.48).
Анализ полученных данных по культивированию трех видов микогельминтов на грибе М. nivale показал, что температура влияла на размножение нематод и на сроки использования представленных пищевых ресурсов. Установлено, что температура +5°C (близкая к температуре под снеговым покровом) является благоприятной для размножения трех видов нематод, а общая численность нематод при данной температуре была достаточно высокая. Так как, A. saprophillus проявил наиболее агрессивные качества к грибу М. nivale (полное подавление роста популяции гриба в опытных пробирках, тогда как с другими видами микогельминтов сохранился мицелий гриба) и лучше размножался при трех исследуемых температурах, в сравнении с другими видами микогельминтов наименьшее существенная разница (HCP01-23). Дальнейшие исследования проводились именно с этим видом микогельминта (Щуковская, А.Г. 2012 г.).An analysis of the obtained data on the cultivation of three types of mycohelminths on the fungus M. nivale showed that the temperature influenced the reproduction of nematodes and the terms of use of the presented food resources. It was found that the temperature + 5 ° C (close to the temperature under the snow cover) is favorable for the propagation of three species of nematodes, and the total number of nematodes at this temperature was quite high. Since A. saprophillus showed the most aggressive qualities for the fungus M. nivale (complete suppression of the growth of the fungus population in test tubes, while mycelium of the fungus was preserved with other types of mycohelminths) and it reproduced better at the three studied temperatures, compared with other types of mycohelminths significant difference (HCP 01 -23). Further studies were conducted with this particular type of mycohelminth (Schukovskaya, A.G. 2012).
Проведенные мелкоделяночные полевые опыты показали, что внесение осенью микогельминтов на посевы озимой пшеницы, пораженной РСП, уменьшило степень поражения болезни весной следующего года.Conducted small-scale field experiments showed that the introduction of mycogelminthes in autumn on crops of winter wheat affected by CPN reduced the degree of disease damage in the spring of next year.
В экспериментах внесенные нематоды существенно снижали степень развития заболевания и улучшали показатели продуктивных качеств растений озимой пшеницы, что, в свою очередь, влияло на повышение урожая.In the experiments, the introduced nematodes significantly reduced the degree of development of the disease and improved the indicators of the productive qualities of winter wheat plants, which, in turn, affected the increase in yield.
В варианте, где было внесено 160000 тыс. экз. нематод процент развития РСП составил всего 20,5%, тогда как в контроле развитие болезни было в 2,5 раза больше (табл.3). В вариантах с численностью внесения 80000 тыс. экз. и 38000 тыс. экз. нематод развитие болезни было (26% и 31,25% соответственно).In the variant where 160,000 thousand copies were introduced. Nematodes, the percentage of development of RSP was only 20.5%, while in the control the development of the disease was 2.5 times greater (Table 3). In options with the number of applications 80,000 thousand copies. and 38,000 thousand copies. nematodes, the development of the disease was (26% and 31.25%, respectively).
В контроле пораженные растения имели меньшее количество продуктивных стеблей (270,2) по сравнению с вариантом М nivale + А. saprophillus (160000 тыс. экз.) - 344,5 шт. Отмечалось снижение массы зерна в колосе, 1000 зерен (47,45 г - контроль и 48,8 г в варианте М. nivale + А. saprophillus 160000 тыс. экз.).In the control, the affected plants had fewer productive stems (270.2) compared with the variant M nivale + A. saprophillus (160,000 thousand specimens) - 344.5 pcs. There was a decrease in the mass of grain in the ear, 1000 grains (47.45 g - control and 48.8 g in the variant M. nivale + A. saprophillus 160,000 thousand copies).
Расчет биологической эффективности показал (табл.3), что в варианте, где была внесена максимальная концентрация микогельминтов 160000 шт./м2 биологическая эффективность - 62,7%, в варианте с концентрацией 80000 шт./м2 - 52,7%, а с концентрацией 38000 шт./м2 - 43,1%. В варианте, где вносили нематод в максимальной концентрации, хозяйственная эффективность выше на 6,7%, в сравнении с вариантом, где вносили среднюю концентрацию и 45,3%, где вносили минимальную концентрацию микогельминтов.The calculation of biological effectiveness showed (Table 3) that in the variant where the maximum concentration of mycohelminths was added to 160,000 pcs / m 2, the biological efficiency is 62.7%, in the variant with a concentration of 80,000 pcs / m 2 - 52.7%, and with a concentration of 38000 pcs / m 2 - 43.1%. In the variant where the nematodes were introduced in the maximum concentration, the economic efficiency was higher by 6.7%, in comparison with the variant where the average concentration was added and 45.3%, where the minimum concentration of mycohelminths was introduced.
Представленные результаты исследований статистически обработаны в программе Microsoft Excel (Statstica).The presented research results were statistically processed in Microsoft Excel (Statstica).
Перечень существенных признаков изобретенияThe list of essential features of the invention
При использовании суспензии микогельминта A. saprophillus в борьбе мицелием РСП отмечены следующие существенные признаки:When using a suspension of mycohelminth A. saprophillus in the fight against mycelium of RSP, the following significant signs were noted:
- Снижает степень развития РСП в осенне-зимне-весенний период.- Reduces the degree of development of CPD in the autumn-winter-spring period.
- Помогает растениям противостоять поражению РСП в зимний период.- Helps plants withstand CPD damage in winter.
- Обеспечивает получение экологически чистого зерна и повышает его качество.- Provides environmentally friendly grain and improves its quality.
- Не заносит на посевы фитопатогенных организмов.- Does not enter phytopathogenic organisms on crops.
ЛитератураLiterature
1. Шестеперов А.А., Савотиков Ю.Ф. «Карантинные фитогельминтозы» // Кн.1. - М.: Колос, 1995. - 463 с.1. Shesteperov A.A., Savotikov Yu.F. “Quarantine phytohelminthoses” // Book 1. - M .: Kolos, 1995 .-- 463 p.
2. Щуковская А.Г., Шестеперов А.А., Ткаченко О.Б. «Микогельминты озимой пшеницы - потенциальные биоагенты гриба Microdochium nivale» // Мат. научн. конф. «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». М. 2012. Вып.13. С.466-468.2. Schukovskaya A.G., Shesteperov A.A., Tkachenko O. B. “Winter wheat mycohelminths are potential bioagents of the Microdochium nivale fungus” // Mat. scientific conf. "Theory and practice of controlling parasitic diseases." M. 2012. Issue 13. S.466-468.
3. Hoshino Т., Xiao N., Yajima Yu., Tkachenko O.B. Fungi in Cryosphere: Their Adaptations to Environments. Part 1. Biodiversity in Cold Ecosystems. Chapter.3. Hoshino T., Xiao N., Yajima Yu., Tkachenko O.B. Fungi in Cryosphere: Their Adaptations to Environments. Part 1. Biodiversity in Cold Ecosystems. Chapter.
4. Cold-adapted Microorganisms. Edited by Isao Yumoto. Norfolk, UK: Caister Academic Press, 2013. - P.51-68.4. Cold-adapted Microorganisms. Edited by Isao Yumoto. Norfolk, UK: Caister Academic Press, 2013 .-- P.51-68.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2014101283/13A RU2548199C1 (en) | 2014-01-17 | 2014-01-17 | METHOD OF PRODUCTION OF BIOLOGICAL PREPARATION FOR PROTECTION OF WINTER GRAIN CROPS FROM PINK SNOW MOULD Microdochium nivale |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2014101283/13A RU2548199C1 (en) | 2014-01-17 | 2014-01-17 | METHOD OF PRODUCTION OF BIOLOGICAL PREPARATION FOR PROTECTION OF WINTER GRAIN CROPS FROM PINK SNOW MOULD Microdochium nivale |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2548199C1 true RU2548199C1 (en) | 2015-04-20 |
Family
ID=53289209
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2014101283/13A RU2548199C1 (en) | 2014-01-17 | 2014-01-17 | METHOD OF PRODUCTION OF BIOLOGICAL PREPARATION FOR PROTECTION OF WINTER GRAIN CROPS FROM PINK SNOW MOULD Microdochium nivale |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2548199C1 (en) |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2143199C1 (en) * | 1994-04-18 | 1999-12-27 | Свенска Лантменнен, Риксфербунд, ЕК.Фер. | Composition and method of control of plant sicknesses |
-
2014
- 2014-01-17 RU RU2014101283/13A patent/RU2548199C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2143199C1 (en) * | 1994-04-18 | 1999-12-27 | Свенска Лантменнен, Риксфербунд, ЕК.Фер. | Composition and method of control of plant sicknesses |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
КОСТЕНКО Е.С. Совершенствование приемов фитосанитарного мониторинга и защиты газонных травостоев от основных вредных организмов (снежной плесени и жуков щелкунов), автореф. на соиск. уч.ст. к.б.н. , Москва, 28.05.2012, с.7-8, 11, 14. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Senanayake et al. | Morphological approaches in studying fungi: Collection, examination, isolation, sporulation and preservation | |
Tian et al. | Effect of the endophyte Neotyphodium lolii on susceptibility and host physiological response of perennial ryegrass to fungal pathogens | |
Khan et al. | Chemical control of bacterial leaf blight of rice caused by Xanthomonas oryzae pv. oryzae | |
CN110200016B (en) | Streptomyces strain PBSH9 capable of preventing and treating potato scab and promoting potato growth and application thereof | |
WO2015029872A1 (en) | Repellant for repelling root-knot nematodes, method for manufacturing same and repelling method using repellant | |
Anderson et al. | Puccinia araujiae, a promising classical biocontrol agent for moth plant in New Zealand: Biology, host range and hyperparasitism by Cladosporium uredinicola | |
Mauchline et al. | Process of infection of armored scale insects (Diaspididae) by an entomopathogenic Cosmospora sp. | |
Simon | Management of root knot disease in rice caused by Meloidogyne graminicola through nematophagous fungi | |
Lichtenzveig et al. | Inoculation and growth with soil borne pathogenic fungi | |
El-Sufty et al. | Biological control of red palm weevil, Rhynchophorus ferrugineus (Col.: Curculionidae) by the entomopathogenic fungus Beauveria bassiana in United Arab Emirates | |
RU2548199C1 (en) | METHOD OF PRODUCTION OF BIOLOGICAL PREPARATION FOR PROTECTION OF WINTER GRAIN CROPS FROM PINK SNOW MOULD Microdochium nivale | |
CN113481108B (en) | Nutritional matrix for stimulating growth of nematode-trapping fungi on trunk, and preparation method and application method thereof | |
Khudhair et al. | Evaluating the virulence of Metarhizium anisopliae (Deuteromycotina: Hyphomycetes) and Beauveria bassiana (Ascomycota: Hypocreales) isolates to Arabian rhinoceros beetle, Oryctes agamemnon arabicus | |
Sivakumar et al. | Bio efficacy of bio-nematon (Paecilomyces lilacinus 1.15% wp) against root-knot nematode (Meloidogyne incognita) in cucumber crop | |
CA2834250A1 (en) | Uses, methods and biological composition of the genus paecilomyces in the control, prevention and eradication of plant parasites in solanaceae cultures | |
Eltayeb | The effects of Bacillus subtilis bacteria on Meloidogyne javanica (Nematode) infection and tomato plant growth | |
Sreegayathri et al. | Effect of root knot nematode (Meloidogyne incognita) infestation on severity of wilt (Fusarium solani) in bitter gourd and its management. | |
Kumar et al. | Use of Dactylaria brochopaga, a predacious fungus, for managing root-knot disease of wheat (Triticum aestivum) caused by Meloidogyne graminicola | |
Beales | Detection of fungal plant pathogens from plants, soil, water and air. | |
JP2021020864A (en) | Antibacterial agents, agrochemicals, and methods of controlling plant infectious diseases by microorganisms | |
PERVEZ et al. | Management of root-knot nematode Meloidogyne incognita infesting turmeric (Curcuma longa) under coconut (Cocos nucifera) cropping system | |
Sosa-Rodriguez et al. | Hevea brasiliensis and Urtica dioica impact the in vitro mycorrhization of neighbouring Medicago truncatula seedlings | |
CN112961838B (en) | Bean hawkmoth cytoplasmic polyhedrosis virus strain and propagation method and application thereof | |
Jacinta | Evaluation of biocontrol efficacy of trichoderma harzianum against fusarium oxysporium in tomatoes (Solanum esculentum L.) | |
Wayal et al. | Bioefficacy of Metarhizium anisopliae (Metschn.) Sorokin from different solid media against Aphis craccivora (Koach) under laboratory condition |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20160118 |