RU2548199C1 - METHOD OF PRODUCTION OF BIOLOGICAL PREPARATION FOR PROTECTION OF WINTER GRAIN CROPS FROM PINK SNOW MOULD Microdochium nivale - Google Patents

METHOD OF PRODUCTION OF BIOLOGICAL PREPARATION FOR PROTECTION OF WINTER GRAIN CROPS FROM PINK SNOW MOULD Microdochium nivale Download PDF

Info

Publication number
RU2548199C1
RU2548199C1 RU2014101283/13A RU2014101283A RU2548199C1 RU 2548199 C1 RU2548199 C1 RU 2548199C1 RU 2014101283/13 A RU2014101283/13 A RU 2014101283/13A RU 2014101283 A RU2014101283 A RU 2014101283A RU 2548199 C1 RU2548199 C1 RU 2548199C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
saprophillus
fungus
nivale
mycohelminths
nematodes
Prior art date
Application number
RU2014101283/13A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Александр Александрович Шестепёров
Олег Борисович Ткаченко
Анастасия Геннадиевна Щуковская
Алла Васильевна Овсянкина
Original Assignee
Государственное научное учреждение (ГНУ) Всероссийский научно-исследовательский институт гельминтологии им. К.И. Скрябина (ВИГИС) Россельхозакадемии
Федеральное государственное бюджетное учреждение науки (ФГБУН) Главный ботанический сад им. Н.В. Цицина Российской академии наук
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Государственное научное учреждение (ГНУ) Всероссийский научно-исследовательский институт гельминтологии им. К.И. Скрябина (ВИГИС) Россельхозакадемии, Федеральное государственное бюджетное учреждение науки (ФГБУН) Главный ботанический сад им. Н.В. Цицина Российской академии наук filed Critical Государственное научное учреждение (ГНУ) Всероссийский научно-исследовательский институт гельминтологии им. К.И. Скрябина (ВИГИС) Россельхозакадемии
Priority to RU2014101283/13A priority Critical patent/RU2548199C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2548199C1 publication Critical patent/RU2548199C1/en

Links

Abstract

FIELD: agriculture.
SUBSTANCE: in the method the potato-dextrose agar (PDA) is prepared, the fungus is isolated in pure culture, the inoculum is prepared for infectious background, the nematodes (A. saprophillus) are isolated from the infected plants. The mycohelminths (A. saprophillus) are massively propagated on the fungus M. nivale at a temperature of +5°C. The suspension of mycohelminths A. saprophillus is prepared and applied in autumn on the fields affected by pink snow mould of winter grain crops, the suspension with the mycohelminths (A. saprophillus) at a dose of 160 thousand pcs/m2.
EFFECT: method enables to reduce the number of fungicides used, destroys fungal mycelium of M. nivale of the pathogen PSM, promotes the plants to resist affected by PSM in the autumn-winter-spring period, provides obtaining the environmentally clean grain, and improves its quality.
3 tbl

Description

Способ получения биологического препарата для защиты озимых зерновых культур от розовой снежной плесени относится к области сельского хозяйства и может быть использовано в биотехнологии для биологической защиты зерновых злаковых культур.A method of obtaining a biological preparation for protecting winter crops from pink snow mold belongs to the field of agriculture and can be used in biotechnology for biological protection of cereal crops.

Розовую снежную плесень (РСП) вызывает фитопатогенный низкотемпературный гриб Microdochium (Fusarium) nivale (Fr.) Samuels & I.C. Hallet. Заражение растений происходит, прежде всего, через почву, так как возбудитель может сохраняться на пожнивных остатках, но возможно также и заражение с посевным материалом. В сильно раскустившихся посевах распространению инфекции особенно способствуют высокая влажность воздуха и низкие температуры, близкие к нулю. Если посевы на незамерзшей почве долгое время покрыты снегом, создаются особенно благоприятные условия для развития этого гриба. Болезнь становится заметна лишь весной после таяния снега. Сразу после схода снега больные растения обычно покрыты мицелием, имеющим окраску, от грязно-белой до светло-розовой, которая исчезает при солнечной и ветреной погоде. Обильное образование налета ведет к склеиванию листьев; вследствие чего пораженные листья отмирают. При сильном поражении наблюдается отмирание узла кущения, листовых влагалищ, корней и гибель всего растения. Выжившие растения могут отставать в своем развитии, а в их колосьях часто формируется неполноценное зерно. Вредоносность РСП заключается в изреживании посевов, а нередко частичной или полной их гибели. При сильном поражении растений иногда приходится прибегать к пересеву яровыми. Потери урожая при этом могут быть 20-50%. Для подавления РСП используют химические фунгициды при предпосадочном протравливании зерна и опрыскивании как можно ближе к установлению снегового покрова, сроки установления которого трудно предсказать. К тому же применение фунгицидов имеет много отрицательных сторон (загрязнение пестицидами почвы и природных вод, накопление токсичных веществ в продуктах питания, нарушение экологической целостности почвенной биоты и т.д.). В настоящее время во многих странах мира ведутся работы, направленные на экологизацию выращивания сельскохозяйственных культур, для которой биологический метод имеет большое значение.Pink snow mold (RSP) is caused by the phytopathogenic low-temperature fungus Microdochium (Fusarium) nivale (Fr.) Samuels & I.C. Hallet Infection of plants occurs primarily through the soil, since the pathogen can persist on crop residues, but infection with seed is also possible. In heavily opened crops, the spread of infection is particularly promoted by high air humidity and low temperatures close to zero. If crops on unfrozen soil are covered with snow for a long time, especially favorable conditions are created for the development of this fungus. The disease becomes noticeable only in the spring after the snow melts. Immediately after the snow melts, the diseased plants are usually covered with filamentous mycelium, from dirty white to light pink, which disappears in sunny and windy weather. Abundant plaque formation leads to gluing of leaves; as a result, the affected leaves die off. With severe damage, the death of the tillering node, leaf sheaths, roots and the death of the whole plant is observed. Surviving plants may lag behind in their development, and inferior grains often form in their ears. The harmfulness of the CPD is the thinning of crops, and often their partial or complete death. With severe damage to plants, sometimes you have to resort to reseeding spring. The yield loss in this case can be 20-50%. To suppress CPD, chemical fungicides are used in preplant seed dressing and spraying as close as possible to the establishment of snow cover, the timing of which is difficult to predict. In addition, the use of fungicides has many negative aspects (pesticides contamination of soil and natural waters, accumulation of toxic substances in food, violation of the ecological integrity of soil biota, etc.). Currently, work is underway in many countries around the world to green the cultivation of crops, for which the biological method is of great importance.

Разработанный биологический препарат для защиты озимой пшеницы от РСП заключается в использовании в качестве биологического агента низкотемпературных микогельминтов. Это специфичные к РСП нематоды вооруженные стилетом, с помощью которого прокалывают стенки гиф мицелия и высасывают его содержимое. В результате мицелий гриба М. nivale погибает.The developed biological preparation for protecting winter wheat from CPD consists in the use of low-temperature mycohelminths as a biological agent. These are nematode-specific nematodes armed with a stylet, with which they pierce the walls of mycelium hyphae and suck out its contents. As a result, the mycelium of the fungus M. nivale dies.

Аналога использования этих микогельминтов в борьбе с розовой снежной плесенью озимой пшеницы нам не известны.We are not aware of the use of these mycohelminths in the fight against pink snow mold of winter wheat.

Цель патента заключается в разработке технологии биологической защиты зерновых злаковых культур от розовой снежной плесени с помощью специально выделенных высокоэффективных низкотемпературных микогельминтов, а также разработке оптимальных условий их применения.The purpose of the patent is to develop a technology for the biological protection of cereal crops from pink snow mold using specially selected high-performance low-temperature mycohelminths, as well as to develop optimal conditions for their use.

Примеры конкретного исполненияExamples of specific performance

Для получения биологического препарата были разработаны специальные методики:To obtain a biological preparation, special techniques have been developed:

1. Методика приготовления картофельно-декстрозного агара (PDA)1. The method of preparation of potato dextrose agar (PDA)

Для приготовления питательной среды для грибов, использовали готовый PDA фирмы HIMEDIA (Индия).To prepare a nutrient medium for mushrooms, we used a ready-made PDA from HIMEDIA (India).

Размешать 39 г порошка в 1000 мл дистилированной воды. Колбу с раствором нагревали на водяной бане до полного растворения частиц. Стерилизовали в автоклаве при 1,1 атм (121°C) в течение 15 минут.Stir 39 g of powder in 1000 ml of distilled water. The flask with the solution was heated in a water bath until the particles were completely dissolved. Autoclaved at 1.1 atm (121 ° C) for 15 minutes.

2. Методика выделения гриба в чистую культуру2. The method of isolation of the fungus in a pure culture

Взятые из пораженных растений изоляты мицелия гриба М. nivale ополаскивали в стерильной воде и высевали на PDA в чашки Петри и выращивали при комнатной температуре. Через 5 дней мицелий гриба полностью распространялся по поверхности питательной среды.The M. nivale fungus mycelium isolates taken from the affected plants were rinsed in sterile water and plated on PDA in Petri dishes and grown at room temperature. After 5 days, the mycelium of the fungus completely spread over the surface of the nutrient medium.

3. Методика подготовки иннокулюма для инфекционного фона3. Methods of preparing the innoculum for an infectious background

Простерелизованное в автоклаве (при давлении 1,5 атмосфер, 60 мин) и затем остывшее зерно пшеницы засевали грибом М nivale. Соотношение пшеницы и воды 1:1 (по весу). Затем колбы помещали в климакамеру (SanyoMPR-311D(H), Япония) на 30 дней, поддерживая t=10°C.Sterilized in an autoclave (at a pressure of 1.5 atmospheres, 60 min) and then cooled wheat grain was seeded with M nivale fungus. The ratio of wheat to water is 1: 1 (by weight). Then the flasks were placed in a menopause chamber (SanyoMPR-311D (H), Japan) for 30 days, maintaining t = 10 ° C.

4. Методика выделения нематод из пораженных растений4. The method of isolation of nematodes from affected plants

Материалами для исследований служили сборы внешне здоровых и пораженных РСП растений озимой пшеницы и прикорневой почвы. Для извлечения нематод из разных частей растений и почвы применяли модифицированный метод Бермана. Навески, очищенные от лишних примесей, раскладывали слоем 3-5 мм на ватном фильтре, в сите. Сито вставляли в воронку диаметром 12-15 см, на раструб которой надевали кусок резинового шланга длиной 10-15 см. В нижний конец трубки вставляли энтомологическую пробирку для сбора выделенных нематод. Воронку с резиновой трубкой и с пробиркой устанавливали в деревянном штативе со специально изготовленными отверстиями для воронок. Воронку заливали свежей водопроводной водой так, чтобы жидкость покрыла насыпанную на сито массу.The materials for the research were collections of apparently healthy and affected CPF winter wheat plants and basal soil. To extract nematodes from different parts of plants and soil, a modified Berman method was used. Samples, cleaned of excess impurities, were laid out with a layer of 3-5 mm on a cotton filter, in a sieve. The sieve was inserted into a funnel with a diameter of 12-15 cm, on the socket of which a piece of rubber hose 10-15 cm long was put on. An entomological tube was inserted into the lower end of the tube to collect the isolated nematodes. A funnel with a rubber tube and a test tube was installed in a wooden tripod with specially made holes for the funnels. The funnel was filled with fresh tap water so that the liquid covered the mass sprinkled on the sieve.

Продолжительность растительной экспозиции составляет 24 часа, для почвы - 48 часов. При определении нематод учитывают количество самок, самцов и личинок. При анализе материала под микроскопом, наносили суспензию нематод из энтомологической пробирки на предметное стекло, просматривали и определяли вид. При определении видового состава нематод использовались работы по систематике нематод (Парамонов, 1962).The duration of plant exposure is 24 hours, for the soil - 48 hours. When determining nematodes, the number of females, males and larvae is taken into account. When analyzing the material under a microscope, a suspension of nematodes from an entomological tube was applied to a glass slide, viewed and the species was determined. In determining the species composition of nematodes, work was done on the systematics of nematodes (Paramonov, 1962).

5. Методика массового размножения микогельминта A. saprophillus на грибе Alternaria tenius Nees5. The method of mass reproduction of A. saprophillus mycohelminth on the fungus Alternaria tenius Nees

Культивирование и размножение нематод проводилось по методу Шестеперова А.А. (1995). Результаты исследований Шестеперова показывают, что микотрофные нематоды лучше всего размножаются на грибе Alternaria tenius.The cultivation and reproduction of nematodes was carried out according to the method of A. Shesteperov. (1995). The results of Shesteperov's studies show that mycotrophic nematodes reproduce best on the fungus Alternaria tenius.

При размножении грибов использовали PDA. Его наливали в двухлитровые матрацы по 200 мл и закрывали ватно-марлевыми пробками. Затем автоклавировали при атмосфере 0,5 в течение 0,5 часа. После стириллизации матрацы были сложены на ровную поверхность до остывания и затвердевания питательной среды. Гриб высевали на полностью остывший питательный субстрат и выращивали 3-10 дней в термостате при температуре 26-27°C. Заселенные грибом двухлитровые матрацы заражали водной суспензией нематод в количестве 500 экз. и оставляли при комнатной температуре. Через 30-40 дней количество нематод увеличивалось в 80-100 раз. Матрацы хранили в климакамере при температуре +5°C.When propagating fungi, PDA was used. It was poured into 200 ml two-liter mattresses and covered with cotton-gauze plugs. Then autoclaved at an atmosphere of 0.5 for 0.5 hours. After sterilization, the mattresses were folded onto a flat surface until the medium was cooled and solidified. The fungus was sown on a completely cooled nutrient substrate and grown for 3-10 days in an incubator at a temperature of 26-27 ° C. Two-liter mattresses populated by the fungus were infected with an aqueous suspension of nematodes in an amount of 500 ind. and left at room temperature. After 30-40 days, the number of nematodes increased 80-100 times. The mattresses were stored in a climacteric chamber at a temperature of + 5 ° C.

6. Методика внесения инокулюма на опытные делянки6. The method of making inoculum on experimental plots

Из колб с наработанным инокулюмом гриба М. nivale извлекали заросшее мицелием гриба зерно, которое было взвешено на торзионных весах (100 г) и распределены по пакетам. Развешенный и распределенный инокулем гриба равномерно рассыпали по поверхности опытной делянки (1×1 м2).Grains overgrown with mycelium of the fungus were weighed from flasks with the inoculum of the fungus M. nivale, which was weighed on a torsion balance (100 g) and distributed in packets. Suspended and distributed by the inoculum of the fungus, it was evenly scattered over the surface of the experimental plot (1 × 1 m 2 ).

7. Методика подготовки водной суспензии микогельминта A. saprophillus7. Methodology for the preparation of an aqueous suspension of A. saprophillus mycohelminth

A. saprophillus культивировали в лаборатории на грибе М. nivale при t +5°C. Микогельминта размножали в двухлитровых колбах. Когда в большинстве колб мицелий гриба был съеден, нематод смывали со стенок колб. Полученную суспензию (в объеме 800 мл), довели до объема 1 л (для удобства подсчета). Полученный раствор тщательно перемешали (с помощью магнитной мешалки) и подсчитали число нематод в 1 мл (1 мл = 100 экз).A. saprophillus was cultured in the laboratory on M. nivale fungus at t + 5 ° C. Mycohelminths were propagated in two-liter flasks. When the fungus mycelium was eaten in most flasks, the nematodes were washed off the walls of the flasks. The resulting suspension (in a volume of 800 ml) was brought to a volume of 1 l (for ease of calculation). The resulting solution was thoroughly mixed (using a magnetic stirrer) and the number of nematodes in 1 ml was calculated (1 ml = 100 copies).

Полученную суспензию взбалтывали и заливали в опрыскиватель. Нематод распыляли на пораженные РСП растения осенью. Весной определяли биологическую эффективность применения микогельминта A. saprophillus в борьбе с РСП, а осенью - хозяйственную эффективность.The resulting suspension was shaken and poured into a sprayer. The nematode was sprayed onto the affected plants in the fall. In the spring, the biological effectiveness of the use of the A. saprophillus mycohelminth in the fight against CPD was determined, and in the autumn, economic efficiency was determined.

В проведенных лабораторных опытах микогельминты Aphelenchoides saprophillus Franklin, Paraphelenchus tritici Baranovskaja, Aphelenchus avenae Bastian, были внесены в количестве ±100-200 экз. / пробирку (20×200 мм) на мицелий гриба M. nivale при температурах +5°C, +15°C и +27°C. Температура +5°C оказалась наиболее благоприятной для культивирования микогельминтов Р. tritici, A. avenae и A. saprophillus на мицелии гриба М. nivale. Коэффициент размножения при этой температуре у всех видов колебался от 4,8 до 7,1, при этом нематоды использовали все представленные пищевые ресурсы (мицелий гриба М. nivale) за 50-75 дней. Однако при температуре +15°C скорость размножения у микогельминтов уменьшилась (коэффициент размножения - 4,65-6,09), что естественным образом сказалось на численности популяции (табл.1). В конце эксперимента в пробирках, хранившихся при температуре +15°C, были отмечены единичные погибшие особи, что не наблюдалось в пробирках при температуре +5°C. В тоже время, у видов Р. tritici, A.avenae и A. saprophillus при температуре +27°C не зарегистрировано размножения (коэффициент размножения - 1,14-1,48).In laboratory experiments, mycohelminths Aphelenchoides saprophillus Franklin, Paraphelenchus tritici Baranovskaja, Aphelenchus avenae Bastian, were introduced in an amount of ± 100-200 ind. / tube (20 × 200 mm) on the mycelium of M. nivale fungus at temperatures of + 5 ° C, + 15 ° C and + 27 ° C. The temperature of + 5 ° C turned out to be the most favorable for the cultivation of mycohelminths of P. tritici, A. avenae and A. saprophillus on the mycelium of the fungus M. nivale. The breeding coefficient at this temperature in all species ranged from 4.8 to 7.1, while the nematodes used all the food resources presented (M. mycelium nivale mycelium) for 50-75 days. However, at a temperature of + 15 ° C, the breeding rate of mycogelminthes decreased (breeding coefficient - 4.65-6.09), which naturally affected the population size (Table 1). At the end of the experiment, in test tubes stored at a temperature of + 15 ° C, single dead individuals were noted, which was not observed in test tubes at a temperature of + 5 ° C. At the same time, in species P. tritici, A.avenae, and A. saprophillus, no breeding was recorded at a temperature of + 27 ° C (the breeding coefficient is 1.14–1.48).

Таблица 1Table 1 Влияние температуры на численность микогельминтов на мицелий гриба Microdochium nivale при культивированииThe effect of temperature on the number of mycohelminths on the mycelium of the fungus Microdochium nivale during cultivation Виды микогельминтовTypes of mycohelminths t=+5°Ct = + 5 ° C t=+15°Ct = + 15 ° C t=+27°Ct = + 27 ° C HCP01 Hcp 01 Aphelenchoides saprophillusAphelenchoides saprophillus 661661 570570 146146 2323 Aphelenchus avenaeAphelenchus avenae 627627 536536 116116 9595 Paraphelenchus triticiParaphelenchus tritici 536536 444444 9393 3131 HCP01 Hcp 01 77 1616 9191

Анализ полученных данных по культивированию трех видов микогельминтов на грибе М. nivale показал, что температура влияла на размножение нематод и на сроки использования представленных пищевых ресурсов. Установлено, что температура +5°C (близкая к температуре под снеговым покровом) является благоприятной для размножения трех видов нематод, а общая численность нематод при данной температуре была достаточно высокая. Так как, A. saprophillus проявил наиболее агрессивные качества к грибу М. nivale (полное подавление роста популяции гриба в опытных пробирках, тогда как с другими видами микогельминтов сохранился мицелий гриба) и лучше размножался при трех исследуемых температурах, в сравнении с другими видами микогельминтов наименьшее существенная разница (HCP01-23). Дальнейшие исследования проводились именно с этим видом микогельминта (Щуковская, А.Г. 2012 г.).An analysis of the obtained data on the cultivation of three types of mycohelminths on the fungus M. nivale showed that the temperature influenced the reproduction of nematodes and the terms of use of the presented food resources. It was found that the temperature + 5 ° C (close to the temperature under the snow cover) is favorable for the propagation of three species of nematodes, and the total number of nematodes at this temperature was quite high. Since A. saprophillus showed the most aggressive qualities for the fungus M. nivale (complete suppression of the growth of the fungus population in test tubes, while mycelium of the fungus was preserved with other types of mycohelminths) and it reproduced better at the three studied temperatures, compared with other types of mycohelminths significant difference (HCP 01 -23). Further studies were conducted with this particular type of mycohelminth (Schukovskaya, A.G. 2012).

Проведенные мелкоделяночные полевые опыты показали, что внесение осенью микогельминтов на посевы озимой пшеницы, пораженной РСП, уменьшило степень поражения болезни весной следующего года.Conducted small-scale field experiments showed that the introduction of mycogelminthes in autumn on crops of winter wheat affected by CPN reduced the degree of disease damage in the spring of next year.

Таблица 2table 2 Влияние численности микогельминтов на развитие РСП озимой пшеницыThe influence of the number of mycohelminths on the development of winter wheat CPF Варианты опытаExperience Options Кол-во. Растений, шт./м2 Qty Plants, pcs / m 2 Кол-во продуктивных стеблей, шт./м2 Number of productive stems, pcs / m 2 Высота растений, смPlant height, cm Длина Колоса, смSpike Length, cm К-во зерен в Колосе, шт.No. of grains in Kolos, pcs. Масса зерна в колосе, гThe mass of grain in the ear, g Масса 1000 зерен, гMass of 1000 grains, g Урожайность, ц/гаProductivity, t / ha Контроль (гриб М nivale без внесения нематод)Control (M nivale fungus without introducing nematodes) 273,5273.5 270,2270,2 74,574.5 7,957.95 23,723.7 2,72.7 47,4547.45 6868 Гриб М nivale + A. saprophillus (38000 тыс. экз.)Mushroom M nivale + A. saprophillus (38,000 thousand specimens) 321321 326326 100,7100.7 7,877.87 23,7523.75 2,22.2 47,747.7 71,171.1 Гриб М nivale + A. saprophillus (80000 тыс. экз.)Fungus M nivale + A. saprophillus (80,000 thousand specimens) 338,75338.75 333,75333.75 101,7101.7 8,58.5 25,525.5 2,192.19 44,7544.75 78,278,2 Гриб М nivale + A. saprophillus (160000 тыс. экз.)Fungus M nivale + A. saprophillus (160,000 thousand specimens) 345,2345.2 344,5344.5 104104 8,378.37 23,7523.75 2,282.28 48,848.8 79,479,4 HCP05 Hcp 05 10,110.1

В экспериментах внесенные нематоды существенно снижали степень развития заболевания и улучшали показатели продуктивных качеств растений озимой пшеницы, что, в свою очередь, влияло на повышение урожая.In the experiments, the introduced nematodes significantly reduced the degree of development of the disease and improved the indicators of the productive qualities of winter wheat plants, which, in turn, affected the increase in yield.

В варианте, где было внесено 160000 тыс. экз. нематод процент развития РСП составил всего 20,5%, тогда как в контроле развитие болезни было в 2,5 раза больше (табл.3). В вариантах с численностью внесения 80000 тыс. экз. и 38000 тыс. экз. нематод развитие болезни было (26% и 31,25% соответственно).In the variant where 160,000 thousand copies were introduced. Nematodes, the percentage of development of RSP was only 20.5%, while in the control the development of the disease was 2.5 times greater (Table 3). In options with the number of applications 80,000 thousand copies. and 38,000 thousand copies. nematodes, the development of the disease was (26% and 31.25%, respectively).

В контроле пораженные растения имели меньшее количество продуктивных стеблей (270,2) по сравнению с вариантом М nivale + А. saprophillus (160000 тыс. экз.) - 344,5 шт. Отмечалось снижение массы зерна в колосе, 1000 зерен (47,45 г - контроль и 48,8 г в варианте М. nivale + А. saprophillus 160000 тыс. экз.).In the control, the affected plants had fewer productive stems (270.2) compared with the variant M nivale + A. saprophillus (160,000 thousand specimens) - 344.5 pcs. There was a decrease in the mass of grain in the ear, 1000 grains (47.45 g - control and 48.8 g in the variant M. nivale + A. saprophillus 160,000 thousand copies).

Расчет биологической эффективности показал (табл.3), что в варианте, где была внесена максимальная концентрация микогельминтов 160000 шт./м2 биологическая эффективность - 62,7%, в варианте с концентрацией 80000 шт./м2 - 52,7%, а с концентрацией 38000 шт./м2 - 43,1%. В варианте, где вносили нематод в максимальной концентрации, хозяйственная эффективность выше на 6,7%, в сравнении с вариантом, где вносили среднюю концентрацию и 45,3%, где вносили минимальную концентрацию микогельминтов.The calculation of biological effectiveness showed (Table 3) that in the variant where the maximum concentration of mycohelminths was added to 160,000 pcs / m 2, the biological efficiency is 62.7%, in the variant with a concentration of 80,000 pcs / m 2 - 52.7%, and with a concentration of 38000 pcs / m 2 - 43.1%. In the variant where the nematodes were introduced in the maximum concentration, the economic efficiency was higher by 6.7%, in comparison with the variant where the average concentration was added and 45.3%, where the minimum concentration of mycohelminths was introduced.

Таблица 3Table 3 Биологическая и хозяйственная эффективности применения суспензии микогельминта A. saprophillus на растениях озимой пшеницы, пораженной РСПBiological and economic efficiency of the use of A. saprophillus mycohelminth suspension on winter wheat plants affected by CPN ВариантOption Биологическая эффективность, %Biological efficiency,% Поражение РСП, %The defeat of the CPD,% Хозяйственная эффективность, %Economic efficiency,% Урожайность, ц /гаProductivity, t / ha М. nivale (контроль - без внесения нематод)M. nivale (control - without introducing nematodes) 00 5555 00 6868 М. nivale + мин.M. nivale + min. 43,143.1 31,2531.25 4.34.3 71,171.1 концентрация (38000 экз/делянка)concentration (38000 ind./ plot) М. nivale + сред. концентрация (60000 экз/делянка)M. nivale + environments concentration (60,000 ind / plot) 52,752.7 2626 13,0413.04 78,278,2 М. nivale + мах. концентрация (160000 экз/делянка)M. nivale + max. concentration (160,000 ind / plot) 62,762.7 20,520.5 14,4514.45 79,479,4 1919 19,619.6 10,510.5 1010

Представленные результаты исследований статистически обработаны в программе Microsoft Excel (Statstica).The presented research results were statistically processed in Microsoft Excel (Statstica).

Перечень существенных признаков изобретенияThe list of essential features of the invention

При использовании суспензии микогельминта A. saprophillus в борьбе мицелием РСП отмечены следующие существенные признаки:When using a suspension of mycohelminth A. saprophillus in the fight against mycelium of RSP, the following significant signs were noted:

- Снижает степень развития РСП в осенне-зимне-весенний период.- Reduces the degree of development of CPD in the autumn-winter-spring period.

- Помогает растениям противостоять поражению РСП в зимний период.- Helps plants withstand CPD damage in winter.

- Обеспечивает получение экологически чистого зерна и повышает его качество.- Provides environmentally friendly grain and improves its quality.

- Не заносит на посевы фитопатогенных организмов.- Does not enter phytopathogenic organisms on crops.

ЛитератураLiterature

1. Шестеперов А.А., Савотиков Ю.Ф. «Карантинные фитогельминтозы» // Кн.1. - М.: Колос, 1995. - 463 с.1. Shesteperov A.A., Savotikov Yu.F. “Quarantine phytohelminthoses” // Book 1. - M .: Kolos, 1995 .-- 463 p.

2. Щуковская А.Г., Шестеперов А.А., Ткаченко О.Б. «Микогельминты озимой пшеницы - потенциальные биоагенты гриба Microdochium nivale» // Мат. научн. конф. «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». М. 2012. Вып.13. С.466-468.2. Schukovskaya A.G., Shesteperov A.A., Tkachenko O. B. “Winter wheat mycohelminths are potential bioagents of the Microdochium nivale fungus” // Mat. scientific conf. "Theory and practice of controlling parasitic diseases." M. 2012. Issue 13. S.466-468.

3. Hoshino Т., Xiao N., Yajima Yu., Tkachenko O.B. Fungi in Cryosphere: Their Adaptations to Environments. Part 1. Biodiversity in Cold Ecosystems. Chapter.3. Hoshino T., Xiao N., Yajima Yu., Tkachenko O.B. Fungi in Cryosphere: Their Adaptations to Environments. Part 1. Biodiversity in Cold Ecosystems. Chapter.

4. Cold-adapted Microorganisms. Edited by Isao Yumoto. Norfolk, UK: Caister Academic Press, 2013. - P.51-68.4. Cold-adapted Microorganisms. Edited by Isao Yumoto. Norfolk, UK: Caister Academic Press, 2013 .-- P.51-68.

Claims (1)

Способ внесения биологического препарата для защиты озимых зерновых культур от розовой снежной плесени (Microdochium nivale), который заключается в приготовлении картофельно-декстрозного агара (PDA), выделении гриба в чистую культуру, подготовке инокулюма для инфекционного фона, выделении нематод (A. saprophillus) из пораженных растений, массовом размножении микогельминта (A. saprophillus) на грибе М. nivale при температуре +5°C, подготовке суспензии микогельминта A. saprophillus и внесении осенью на поля, пораженные розовой снежной плесенью озимых зерновых культур, суспензии с микогельминтами (A. saprophillus) в дозе 160 тыс. шт./м2. The method of introducing a biological preparation for protecting winter crops from pink snow mold (Microdochium nivale), which consists in preparing potato-dextrose agar (PDA), isolating the fungus in a pure culture, preparing an inoculum for an infectious background, isolating nematodes (A. saprophillus) from affected plants, mass propagation of mycohelminth (A. saprophillus) on M. nivale fungus at a temperature of + 5 ° C, preparation of a suspension of A. saprophillus mycohelminth and application of winter crops to the fields affected by pink snow mold in autumn sii with mycohelminths (A. saprophillus) at a dose of 160 thousand pcs./m 2 .
RU2014101283/13A 2014-01-17 2014-01-17 METHOD OF PRODUCTION OF BIOLOGICAL PREPARATION FOR PROTECTION OF WINTER GRAIN CROPS FROM PINK SNOW MOULD Microdochium nivale RU2548199C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2014101283/13A RU2548199C1 (en) 2014-01-17 2014-01-17 METHOD OF PRODUCTION OF BIOLOGICAL PREPARATION FOR PROTECTION OF WINTER GRAIN CROPS FROM PINK SNOW MOULD Microdochium nivale

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2014101283/13A RU2548199C1 (en) 2014-01-17 2014-01-17 METHOD OF PRODUCTION OF BIOLOGICAL PREPARATION FOR PROTECTION OF WINTER GRAIN CROPS FROM PINK SNOW MOULD Microdochium nivale

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2548199C1 true RU2548199C1 (en) 2015-04-20

Family

ID=53289209

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2014101283/13A RU2548199C1 (en) 2014-01-17 2014-01-17 METHOD OF PRODUCTION OF BIOLOGICAL PREPARATION FOR PROTECTION OF WINTER GRAIN CROPS FROM PINK SNOW MOULD Microdochium nivale

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2548199C1 (en)

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2143199C1 (en) * 1994-04-18 1999-12-27 Свенска Лантменнен, Риксфербунд, ЕК.Фер. Composition and method of control of plant sicknesses

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2143199C1 (en) * 1994-04-18 1999-12-27 Свенска Лантменнен, Риксфербунд, ЕК.Фер. Composition and method of control of plant sicknesses

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
КОСТЕНКО Е.С. Совершенствование приемов фитосанитарного мониторинга и защиты газонных травостоев от основных вредных организмов (снежной плесени и жуков щелкунов), автореф. на соиск. уч.ст. к.б.н. , Москва, 28.05.2012, с.7-8, 11, 14. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Senanayake et al. Morphological approaches in studying fungi: Collection, examination, isolation, sporulation and preservation
Tian et al. Effect of the endophyte Neotyphodium lolii on susceptibility and host physiological response of perennial ryegrass to fungal pathogens
Khan et al. Chemical control of bacterial leaf blight of rice caused by Xanthomonas oryzae pv. oryzae
CN110200016B (en) Streptomyces strain PBSH9 capable of preventing and treating potato scab and promoting potato growth and application thereof
WO2015029872A1 (en) Repellant for repelling root-knot nematodes, method for manufacturing same and repelling method using repellant
Anderson et al. Puccinia araujiae, a promising classical biocontrol agent for moth plant in New Zealand: Biology, host range and hyperparasitism by Cladosporium uredinicola
Mauchline et al. Process of infection of armored scale insects (Diaspididae) by an entomopathogenic Cosmospora sp.
Simon Management of root knot disease in rice caused by Meloidogyne graminicola through nematophagous fungi
Lichtenzveig et al. Inoculation and growth with soil borne pathogenic fungi
El-Sufty et al. Biological control of red palm weevil, Rhynchophorus ferrugineus (Col.: Curculionidae) by the entomopathogenic fungus Beauveria bassiana in United Arab Emirates
RU2548199C1 (en) METHOD OF PRODUCTION OF BIOLOGICAL PREPARATION FOR PROTECTION OF WINTER GRAIN CROPS FROM PINK SNOW MOULD Microdochium nivale
CN113481108B (en) Nutritional matrix for stimulating growth of nematode-trapping fungi on trunk, and preparation method and application method thereof
Khudhair et al. Evaluating the virulence of Metarhizium anisopliae (Deuteromycotina: Hyphomycetes) and Beauveria bassiana (Ascomycota: Hypocreales) isolates to Arabian rhinoceros beetle, Oryctes agamemnon arabicus
Sivakumar et al. Bio efficacy of bio-nematon (Paecilomyces lilacinus 1.15% wp) against root-knot nematode (Meloidogyne incognita) in cucumber crop
CA2834250A1 (en) Uses, methods and biological composition of the genus paecilomyces in the control, prevention and eradication of plant parasites in solanaceae cultures
Eltayeb The effects of Bacillus subtilis bacteria on Meloidogyne javanica (Nematode) infection and tomato plant growth
Sreegayathri et al. Effect of root knot nematode (Meloidogyne incognita) infestation on severity of wilt (Fusarium solani) in bitter gourd and its management.
Kumar et al. Use of Dactylaria brochopaga, a predacious fungus, for managing root-knot disease of wheat (Triticum aestivum) caused by Meloidogyne graminicola
Beales Detection of fungal plant pathogens from plants, soil, water and air.
JP2021020864A (en) Antibacterial agents, agrochemicals, and methods of controlling plant infectious diseases by microorganisms
PERVEZ et al. Management of root-knot nematode Meloidogyne incognita infesting turmeric (Curcuma longa) under coconut (Cocos nucifera) cropping system
Sosa-Rodriguez et al. Hevea brasiliensis and Urtica dioica impact the in vitro mycorrhization of neighbouring Medicago truncatula seedlings
CN112961838B (en) Bean hawkmoth cytoplasmic polyhedrosis virus strain and propagation method and application thereof
Jacinta Evaluation of biocontrol efficacy of trichoderma harzianum against fusarium oxysporium in tomatoes (Solanum esculentum L.)
Wayal et al. Bioefficacy of Metarhizium anisopliae (Metschn.) Sorokin from different solid media against Aphis craccivora (Koach) under laboratory condition

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20160118