RU2542393C2 - METHOD OF PREPARING CONJUGATE OF CAPSULAR POLYSACCHARIDE Haemophilus influenzae TYPE b (Hib) C ANTIGENS FOR PREPARING IMMUNOBIOLOGICAL PREPARATIONS - Google Patents
METHOD OF PREPARING CONJUGATE OF CAPSULAR POLYSACCHARIDE Haemophilus influenzae TYPE b (Hib) C ANTIGENS FOR PREPARING IMMUNOBIOLOGICAL PREPARATIONS Download PDFInfo
- Publication number
- RU2542393C2 RU2542393C2 RU2013120878/10A RU2013120878A RU2542393C2 RU 2542393 C2 RU2542393 C2 RU 2542393C2 RU 2013120878/10 A RU2013120878/10 A RU 2013120878/10A RU 2013120878 A RU2013120878 A RU 2013120878A RU 2542393 C2 RU2542393 C2 RU 2542393C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- hib
- capsular polysaccharide
- conjugate
- preparing
- antigens
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к биотехнологии и касается способа связывания капсульного полисахарида Haemophilus influenzae тип b (Hib) с антигенами, в качестве которых используются столбнячный и дифтерийный анатоксины.The invention relates to biotechnology and relates to a method for binding capsular polysaccharide Haemophilus influenzae type b (Hib) with antigens, which are used as tetanus and diphtheria toxoids.
Существует способ связывания капсульного полисахарида Hib, при котором модифицированный бромцианом капсульный полисахарид Hib и дериват дифтерийного анатоксина десятикратно отмывают от продуктов химической реакции методом ультрафильтрации, концентрируют, смешивают в равных объемах и инкубируют в течение 18 часов при 4°C до получения конъюгата (US 4496538).There is a method of binding the Hib capsular polysaccharide, in which the Hib bromine-modified capsular polysaccharide Hib and the diphtheria toxoid derivative are washed ten times from the chemical reaction products by ultrafiltration, concentrated, mixed in equal volumes and incubated for 18 hours at 4 ° C until the conjugate is obtained (US 44965) .
Существует способ конъюгации, в котором капсульный полисахарид Hib ковалентно связывают со столбнячным анатоксином через дигидразид адипиновой кислоты и очищают методом ультрафильтрации от не связавшихся компонентов. Полученный конъюгат адсорбируют на геле фосфата алюминия и лиофилизируют. Перед применением препарат смешивают с водой для инъекций или с другой жидкой многокомпонентной вакциной (АКДС), адсорбированной на геле фосфата алюминия (US 20020182226).There is a conjugation method in which the Hib capsular polysaccharide is covalently coupled to a tetanus toxoid via adipic acid dihydrazide and purified by ultrafiltration of unbound components. The resulting conjugate is adsorbed on an aluminum phosphate gel and lyophilized. Before use, the drug is mixed with water for injection or with another liquid multicomponent vaccine (DTP) adsorbed on an aluminum phosphate gel (US20020182226).
Существует также способ связывания, в котором капсульные полисахариды Hib и менингококка конъюгируют со столбнячным и дифтерийным анатоксинами соответственно. Полученные препараты отмывают и концентрируют с использованием ультрафильтрации. Каждый из конъюгатов отдельно адсорбируют на геле фосфата алюминия, объединяют и лиофилизируют в присутствии сахарозы. Перед введением лиофилизат смешивают с жидкими компонентами вакцины (поверхностный антиген гепатита B, цельные клетки коклюша), адсорбированными на геле фосфата алюминия (US 20030180316).There is also a binding method in which the capsular polysaccharides Hib and meningococcus are conjugated to tetanus and diphtheria toxoids, respectively. The resulting preparations were washed and concentrated using ultrafiltration. Each of the conjugates is separately adsorbed on an aluminum phosphate gel, combined and lyophilized in the presence of sucrose. Before administration, the lyophilisate is mixed with the liquid components of the vaccine (hepatitis B surface antigen, whole whooping cough cells) adsorbed on an aluminum phosphate gel (US20030180316).
В указанных способах конъюгация капсульного полисахарида Hib с белковыми антигенами осуществляется в водных средах. Для удаления химических реагентов и не связавшихся компонентов использовался метод мембранной ультрафильтрации. Эта технология требует высоких концентраций антигенов, больших объемов буферных растворов и ведет к значительным потерям препарата на различных стадиях производства. Для использования полученного конъюгата в качестве составляющей многокомпонентной вакцины необходима его лиофилизация в присутствии стабилизатора (сахароза, лактоза и т.п.), что существенно сказывается на свойствах и себестоимости конечного продукта. В случае смешивания конъюгата с АКДС-вакциной происходит антигенная перегрузка иммунизируемого организма дифтерийным или столбнячным анатоксинами.In these methods, the conjugation of the capsular polysaccharide Hib with protein antigens is carried out in aqueous media. To remove chemicals and unbound components, the membrane ultrafiltration method was used. This technology requires high concentrations of antigens, large volumes of buffer solutions and leads to significant drug losses at various stages of production. To use the obtained conjugate as a component of a multicomponent vaccine, its lyophilization in the presence of a stabilizer (sucrose, lactose, etc.) is necessary, which significantly affects the properties and cost of the final product. In the case of mixing the conjugate with the DTP vaccine, antigenic overload of the immunized organism with diphtheria or tetanus toxoids occurs.
Целью настоящего изобретения явилась разработка способа связывания капсульного полисахарида Hib с белковыми антигенами, который позволил бы исключить лиофилизацию конъюгатов и снизить антигенную нагрузку на иммунизируемый организм.The aim of the present invention was to develop a method of binding capsular polysaccharide Hib with protein antigens, which would eliminate the lyophilization of conjugates and reduce the antigenic load on the immunized organism.
Поставленная цель достигается тем, что химическое связывание капсульного полисахарида Haemophilus influenzae тип b осуществляют со смесью столбнячного и дифтерийного анатоксинов, адсорбированных на геле гидроокиси алюминия или геле фосфата алюминия.The goal is achieved in that the chemical binding of the capsular polysaccharide Haemophilus influenzae type b is carried out with a mixture of tetanus and diphtheria toxoids adsorbed on an aluminum hydroxide gel or aluminum phosphate gel.
Способ осуществляют следующим образом.The method is as follows.
Используют капсульный полисахарид Haemophilus influenzae тип b, полученный по технологии, описанной в патенте RU 2185191 (2002). Бактерии Haemophilus influenzae тип b выращивают на твердой питательной среде (шоколадный питательный агар), культуру смывают физиологическим раствором и инокулят засевают на жидкую синтетическую питательную среду. Выращенную биомассу обрабатывают 0,1% водным раствором формалина в течение 1-2 ч, а клетки отделяют ультрафильтрацией на молекулярных волоконных фильтрах. Капсульный полисахарид Hib, находящийся в ультрафильтрате, концентрируют на молекулярных волоконных фильтрах и лиофилизируют.Use the capsular polysaccharide Haemophilus influenzae type b obtained by the technology described in patent RU 2185191 (2002). The bacteria Haemophilus influenzae type b is grown on solid nutrient medium (chocolate nutrient agar), the culture is washed off with saline and the inoculum is seeded on a liquid synthetic nutrient medium. The grown biomass is treated with a 0.1% aqueous formalin solution for 1-2 hours, and the cells are separated by ultrafiltration on molecular fiber filters. The Hib capsular polysaccharide in the ultrafiltrate is concentrated on molecular fiber filters and lyophilized.
100 мл смеси столбнячного и дифтерийного анатоксинов, адсорбированных на геле гидроокиси алюминия или фосфата алюминия, центрифугируют при 3000 об/мин в течение 5 мин. Осадок химически связывают карбодиимидным способом через дигидразид адипиновой кислоты с 3 мг капсульного полисахарида Hib, растворенного в 1 мл дистиллированной воды. Полученный конъюгат отмывают 0,9% раствором натрия хлорида при центрифугировании 3000 об/мин в течение 5 мин и доводят 0,9% раствором натрия хлорида до объема 100 мл.100 ml of a mixture of tetanus and diphtheria toxoids adsorbed on an aluminum hydroxide or aluminum phosphate gel are centrifuged at 3000 rpm for 5 minutes. The precipitate was chemically coupled by the carbodiimide method via adipic acid dihydrazide with 3 mg of Hib capsular polysaccharide dissolved in 1 ml of distilled water. The resulting conjugate is washed with 0.9% sodium chloride solution by centrifugation at 3000 rpm for 5 minutes and adjusted with a 0.9% sodium chloride solution to a volume of 100 ml.
Изучение иммуногенности препарата проводили на четырех группах беспородных белых мышей. Животных вакцинировали однократно внутрибрюшинно в объеме 0,5 мл (одна человекодоза).The study of the immunogenicity of the drug was carried out on four groups of outbred white mice. Animals were vaccinated once intraperitoneally in a volume of 0.5 ml (one human dose).
Первую группу прививали экспериментальным адсорбированным жидким дифтерийно-столбнячно-гемофильным конъюгатом, вторую - коммерческой АДС-вакциной, смешанной с одной человекодозой сухой коньюгированной со столбнячным анатоксином гемофильной вакциной (AKT-Hib), третью иммунизировали коммерческой АДС-вакциной, четвертую группу животных не иммунизировали, использовали в качестве контрольной. Через месяц в сыворотках крови мышей определяли методом иммуноферментного анализа содержание антител к капсульному полисахариду Hib, а также к дифтерийному и столбнячному анатоксинам, сравнивая оптическую плотность реакционной смеси. Результаты испытаний представлены в таблице №1.The first group was inoculated with an experimental adsorbed liquid diphtheria-tetanus-hemophilic conjugate, the second with a commercial ADS vaccine mixed with one human dose of dry conjugated with tetanus toxoid hemophilic vaccine (AKT-Hib), the third was immunized with a commercial ADS vaccine, the fourth group of animals were not immunized used as a control. After a month, the content of antibodies to the Hib capsular polysaccharide, as well as to diphtheria and tetanus toxoids, was determined in the blood serum of mice by enzyme-linked immunosorbent assay, comparing the optical density of the reaction mixture. The test results are presented in table No. 1.
Как видно из таблицы, препарат, полученный предлагаемым способом, обладает более высокой иммуногенной активностью Hib-компонента по сравнению с коммерческой АДС-вакциной, смешанной с лиофилизированным гемофильно-столбнячным конъюгатом и не вызывает антигенной перегрузки столбнячным анатоксином. Полученные данные свидетельствуют, что предлагаемый способ связывания капсульного полисахарида Hib не требует высокой концентрации антигенов, большого объема буферных растворов и не приводит к потерям гемофильного компонента. В качестве антигенов могут быть использованы и другие иммуногенные полимеры. Разработанная технология не нуждается в лиофилизации и не приводит к антигенной перегрузке T-зависимым компонентом, использованным в качестве носителя.As can be seen from the table, the drug obtained by the proposed method has a higher immunogenic activity of the Hib component compared to the commercial ADS vaccine mixed with lyophilized hemophilic-tetanus conjugate and does not cause antigenic overload with tetanus toxoid. The data obtained indicate that the proposed method of binding capsular polysaccharide Hib does not require a high concentration of antigens, a large volume of buffer solutions and does not lead to loss of hemophilic component. Other immunogenic polymers may also be used as antigens. The developed technology does not require lyophilization and does not lead to antigenic overload by the T-dependent component used as a carrier.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2013120878/10A RU2542393C2 (en) | 2013-05-06 | 2013-05-06 | METHOD OF PREPARING CONJUGATE OF CAPSULAR POLYSACCHARIDE Haemophilus influenzae TYPE b (Hib) C ANTIGENS FOR PREPARING IMMUNOBIOLOGICAL PREPARATIONS |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2013120878/10A RU2542393C2 (en) | 2013-05-06 | 2013-05-06 | METHOD OF PREPARING CONJUGATE OF CAPSULAR POLYSACCHARIDE Haemophilus influenzae TYPE b (Hib) C ANTIGENS FOR PREPARING IMMUNOBIOLOGICAL PREPARATIONS |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2013120878A RU2013120878A (en) | 2014-11-20 |
RU2542393C2 true RU2542393C2 (en) | 2015-02-20 |
Family
ID=53289180
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2013120878/10A RU2542393C2 (en) | 2013-05-06 | 2013-05-06 | METHOD OF PREPARING CONJUGATE OF CAPSULAR POLYSACCHARIDE Haemophilus influenzae TYPE b (Hib) C ANTIGENS FOR PREPARING IMMUNOBIOLOGICAL PREPARATIONS |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2542393C2 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2020218949A1 (en) * | 2019-04-22 | 2020-10-29 | Федеральное Государственное Унитарное Предприятие "Санкт-Петербургский Научно-Исследовательский Институт Вакцин И Сывороток И Предприятие По Производству Бактерийных Препаратов" Федерального Медико- Биологического Агентства | Method for preparing a conjugate haemophilus b-type vaccine |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2185191C1 (en) * | 2001-02-01 | 2002-07-20 | Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии и паразитологии | Method of preparing antigenic preparation haemophilus influenzae type b (hib) |
RU2420315C2 (en) * | 2005-03-17 | 2011-06-10 | Новартис Вэксинес Энд Дайэгностикс Срл | Combined vaccines with whole cell pertussis antigen |
US20120076817A1 (en) * | 2003-08-06 | 2012-03-29 | Human Services | Polysaccharide-protein conjugate vaccines |
-
2013
- 2013-05-06 RU RU2013120878/10A patent/RU2542393C2/en active
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2185191C1 (en) * | 2001-02-01 | 2002-07-20 | Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии и паразитологии | Method of preparing antigenic preparation haemophilus influenzae type b (hib) |
US20120076817A1 (en) * | 2003-08-06 | 2012-03-29 | Human Services | Polysaccharide-protein conjugate vaccines |
RU2420315C2 (en) * | 2005-03-17 | 2011-06-10 | Новартис Вэксинес Энд Дайэгностикс Срл | Combined vaccines with whole cell pertussis antigen |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2020218949A1 (en) * | 2019-04-22 | 2020-10-29 | Федеральное Государственное Унитарное Предприятие "Санкт-Петербургский Научно-Исследовательский Институт Вакцин И Сывороток И Предприятие По Производству Бактерийных Препаратов" Федерального Медико- Биологического Агентства | Method for preparing a conjugate haemophilus b-type vaccine |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2013120878A (en) | 2014-11-20 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
EP0186576B1 (en) | Covalently-modified neutral bacterial polysaccharides, stable covalent conjugates of such polysaccharides and immunogenic proteins, and methods of preparing such polysaccharides and conjugates | |
KR101897317B1 (en) | Immunogenic Composition | |
JP6950099B2 (en) | Polyvalent pneumococcal polysaccharide-protein complex composition | |
US10702595B2 (en) | Manufacture of vaccines and compositions for the prevention of Salmonella infections | |
TW201808328A (en) | Multivalent pneumococcal polysaccharide-protein conjugate composition | |
IE58088B1 (en) | Covalently-modified bacterial polysaccharides, stable covalent conjugates of such polysaccharides and immunogenic proteins with bigeneric spacers, and methods of preparing such polysaccharides and conjugates and of confirming covalency | |
CN103747798B (en) | Include the protein matrix vaccines composition of polycation | |
US20070031447A1 (en) | Method of isolating biologically active fraction containing clinically acceptable native S-lipopolysaccharides obtained from bacteria producing endotoxic lipopolysaccharides | |
RU2378015C2 (en) | Conjugate for immunisation and vaccination and method for improving immunogenicity | |
KR102083973B1 (en) | A multivalent immunogenic composition with improved IgG titer and use thereof | |
RU2542393C2 (en) | METHOD OF PREPARING CONJUGATE OF CAPSULAR POLYSACCHARIDE Haemophilus influenzae TYPE b (Hib) C ANTIGENS FOR PREPARING IMMUNOBIOLOGICAL PREPARATIONS | |
Coughlin et al. | Adjuvant activity of QS-21 for experimental E. coli 018 polysaccharide vaccines | |
RU2185191C1 (en) | Method of preparing antigenic preparation haemophilus influenzae type b (hib) | |
ES2942133T3 (en) | Streptococcal capsular polysaccharide purification | |
KR20140030233A (en) | Exopolysaccharide of shigella sonnei bacteria, method for producing same, vaccine and pharmaceutical composition containing same | |
CN113663066B (en) | Inositol-arabinomannine oligosaccharide conjugate and application thereof in anti-tuberculosis vaccine | |
TW201406389A (en) | Conjugates of polysaccharide and E. coli heat-labile toxin, their use and preparation method | |
Patkar | Recombinant Production of Carrier Proteins: Well-Characterized CRM197 Essential for the Development of Many Conjugate Vaccines | |
KR20050008257A (en) | Preparation and Immunogenicity of the combined vaccine composed of the polysaccharide capsule of Salmonella typhi and Japanese encephalitis virus | |
CN106039301A (en) | Preparation method of pneumococcus-type b haemophilus influenzae-diphtheria-pertussis-tetanus combined vaccine |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
QB4A | Licence on use of patent |
Free format text: LICENCE FORMERLY AGREED ON 20190206 Effective date: 20190206 |