RU2542393C2 - METHOD OF PREPARING CONJUGATE OF CAPSULAR POLYSACCHARIDE Haemophilus influenzae TYPE b (Hib) C ANTIGENS FOR PREPARING IMMUNOBIOLOGICAL PREPARATIONS - Google Patents

METHOD OF PREPARING CONJUGATE OF CAPSULAR POLYSACCHARIDE Haemophilus influenzae TYPE b (Hib) C ANTIGENS FOR PREPARING IMMUNOBIOLOGICAL PREPARATIONS Download PDF

Info

Publication number
RU2542393C2
RU2542393C2 RU2013120878/10A RU2013120878A RU2542393C2 RU 2542393 C2 RU2542393 C2 RU 2542393C2 RU 2013120878/10 A RU2013120878/10 A RU 2013120878/10A RU 2013120878 A RU2013120878 A RU 2013120878A RU 2542393 C2 RU2542393 C2 RU 2542393C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
hib
capsular polysaccharide
conjugate
preparing
antigens
Prior art date
Application number
RU2013120878/10A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2013120878A (en
Inventor
Борис Федорович Вачаев
Ирина Леонидовна Юрьева
Эдуард Александрович Яговкин
Елена Борисовна Анисимова
Original Assignee
Федеральное бюджетное учреждение науки "Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии и паразитологии" (ФБУН РостовНИИ микробиологии и паразитологии)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное бюджетное учреждение науки "Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии и паразитологии" (ФБУН РостовНИИ микробиологии и паразитологии) filed Critical Федеральное бюджетное учреждение науки "Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии и паразитологии" (ФБУН РостовНИИ микробиологии и паразитологии)
Priority to RU2013120878/10A priority Critical patent/RU2542393C2/en
Publication of RU2013120878A publication Critical patent/RU2013120878A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2542393C2 publication Critical patent/RU2542393C2/en

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: method comprises preparing a mixture of tetanus and diphtherial anatoxins adsorbed on the gel of hydroxide or aluminium phosphate which is used as an antigen. The said mixture is centrifuged at 3000 rpm for 5 min, the resulting precipitate is bonded with the carbodiimide method through adipic acid dihydrazide with 3 mg of capsular polysaccharide Hib dissolved in 1 ml of distilled water. The conjugate is washed with 0.9% sodium chloride solution by centrifugation 3000 rpm for 5 min and adjusted to 0.9% with sodium chloride solution to the volume of 100 ml.
EFFECT: method enables to eliminate lyophilisation of obtained conjugates and thereby to reduce the antigen load on the immunised organism.
1 tbl

Description

Изобретение относится к биотехнологии и касается способа связывания капсульного полисахарида Haemophilus influenzae тип b (Hib) с антигенами, в качестве которых используются столбнячный и дифтерийный анатоксины.The invention relates to biotechnology and relates to a method for binding capsular polysaccharide Haemophilus influenzae type b (Hib) with antigens, which are used as tetanus and diphtheria toxoids.

Существует способ связывания капсульного полисахарида Hib, при котором модифицированный бромцианом капсульный полисахарид Hib и дериват дифтерийного анатоксина десятикратно отмывают от продуктов химической реакции методом ультрафильтрации, концентрируют, смешивают в равных объемах и инкубируют в течение 18 часов при 4°C до получения конъюгата (US 4496538).There is a method of binding the Hib capsular polysaccharide, in which the Hib bromine-modified capsular polysaccharide Hib and the diphtheria toxoid derivative are washed ten times from the chemical reaction products by ultrafiltration, concentrated, mixed in equal volumes and incubated for 18 hours at 4 ° C until the conjugate is obtained (US 44965) .

Существует способ конъюгации, в котором капсульный полисахарид Hib ковалентно связывают со столбнячным анатоксином через дигидразид адипиновой кислоты и очищают методом ультрафильтрации от не связавшихся компонентов. Полученный конъюгат адсорбируют на геле фосфата алюминия и лиофилизируют. Перед применением препарат смешивают с водой для инъекций или с другой жидкой многокомпонентной вакциной (АКДС), адсорбированной на геле фосфата алюминия (US 20020182226).There is a conjugation method in which the Hib capsular polysaccharide is covalently coupled to a tetanus toxoid via adipic acid dihydrazide and purified by ultrafiltration of unbound components. The resulting conjugate is adsorbed on an aluminum phosphate gel and lyophilized. Before use, the drug is mixed with water for injection or with another liquid multicomponent vaccine (DTP) adsorbed on an aluminum phosphate gel (US20020182226).

Существует также способ связывания, в котором капсульные полисахариды Hib и менингококка конъюгируют со столбнячным и дифтерийным анатоксинами соответственно. Полученные препараты отмывают и концентрируют с использованием ультрафильтрации. Каждый из конъюгатов отдельно адсорбируют на геле фосфата алюминия, объединяют и лиофилизируют в присутствии сахарозы. Перед введением лиофилизат смешивают с жидкими компонентами вакцины (поверхностный антиген гепатита B, цельные клетки коклюша), адсорбированными на геле фосфата алюминия (US 20030180316).There is also a binding method in which the capsular polysaccharides Hib and meningococcus are conjugated to tetanus and diphtheria toxoids, respectively. The resulting preparations were washed and concentrated using ultrafiltration. Each of the conjugates is separately adsorbed on an aluminum phosphate gel, combined and lyophilized in the presence of sucrose. Before administration, the lyophilisate is mixed with the liquid components of the vaccine (hepatitis B surface antigen, whole whooping cough cells) adsorbed on an aluminum phosphate gel (US20030180316).

В указанных способах конъюгация капсульного полисахарида Hib с белковыми антигенами осуществляется в водных средах. Для удаления химических реагентов и не связавшихся компонентов использовался метод мембранной ультрафильтрации. Эта технология требует высоких концентраций антигенов, больших объемов буферных растворов и ведет к значительным потерям препарата на различных стадиях производства. Для использования полученного конъюгата в качестве составляющей многокомпонентной вакцины необходима его лиофилизация в присутствии стабилизатора (сахароза, лактоза и т.п.), что существенно сказывается на свойствах и себестоимости конечного продукта. В случае смешивания конъюгата с АКДС-вакциной происходит антигенная перегрузка иммунизируемого организма дифтерийным или столбнячным анатоксинами.In these methods, the conjugation of the capsular polysaccharide Hib with protein antigens is carried out in aqueous media. To remove chemicals and unbound components, the membrane ultrafiltration method was used. This technology requires high concentrations of antigens, large volumes of buffer solutions and leads to significant drug losses at various stages of production. To use the obtained conjugate as a component of a multicomponent vaccine, its lyophilization in the presence of a stabilizer (sucrose, lactose, etc.) is necessary, which significantly affects the properties and cost of the final product. In the case of mixing the conjugate with the DTP vaccine, antigenic overload of the immunized organism with diphtheria or tetanus toxoids occurs.

Целью настоящего изобретения явилась разработка способа связывания капсульного полисахарида Hib с белковыми антигенами, который позволил бы исключить лиофилизацию конъюгатов и снизить антигенную нагрузку на иммунизируемый организм.The aim of the present invention was to develop a method of binding capsular polysaccharide Hib with protein antigens, which would eliminate the lyophilization of conjugates and reduce the antigenic load on the immunized organism.

Поставленная цель достигается тем, что химическое связывание капсульного полисахарида Haemophilus influenzae тип b осуществляют со смесью столбнячного и дифтерийного анатоксинов, адсорбированных на геле гидроокиси алюминия или геле фосфата алюминия.The goal is achieved in that the chemical binding of the capsular polysaccharide Haemophilus influenzae type b is carried out with a mixture of tetanus and diphtheria toxoids adsorbed on an aluminum hydroxide gel or aluminum phosphate gel.

Способ осуществляют следующим образом.The method is as follows.

Используют капсульный полисахарид Haemophilus influenzae тип b, полученный по технологии, описанной в патенте RU 2185191 (2002). Бактерии Haemophilus influenzae тип b выращивают на твердой питательной среде (шоколадный питательный агар), культуру смывают физиологическим раствором и инокулят засевают на жидкую синтетическую питательную среду. Выращенную биомассу обрабатывают 0,1% водным раствором формалина в течение 1-2 ч, а клетки отделяют ультрафильтрацией на молекулярных волоконных фильтрах. Капсульный полисахарид Hib, находящийся в ультрафильтрате, концентрируют на молекулярных волоконных фильтрах и лиофилизируют.Use the capsular polysaccharide Haemophilus influenzae type b obtained by the technology described in patent RU 2185191 (2002). The bacteria Haemophilus influenzae type b is grown on solid nutrient medium (chocolate nutrient agar), the culture is washed off with saline and the inoculum is seeded on a liquid synthetic nutrient medium. The grown biomass is treated with a 0.1% aqueous formalin solution for 1-2 hours, and the cells are separated by ultrafiltration on molecular fiber filters. The Hib capsular polysaccharide in the ultrafiltrate is concentrated on molecular fiber filters and lyophilized.

100 мл смеси столбнячного и дифтерийного анатоксинов, адсорбированных на геле гидроокиси алюминия или фосфата алюминия, центрифугируют при 3000 об/мин в течение 5 мин. Осадок химически связывают карбодиимидным способом через дигидразид адипиновой кислоты с 3 мг капсульного полисахарида Hib, растворенного в 1 мл дистиллированной воды. Полученный конъюгат отмывают 0,9% раствором натрия хлорида при центрифугировании 3000 об/мин в течение 5 мин и доводят 0,9% раствором натрия хлорида до объема 100 мл.100 ml of a mixture of tetanus and diphtheria toxoids adsorbed on an aluminum hydroxide or aluminum phosphate gel are centrifuged at 3000 rpm for 5 minutes. The precipitate was chemically coupled by the carbodiimide method via adipic acid dihydrazide with 3 mg of Hib capsular polysaccharide dissolved in 1 ml of distilled water. The resulting conjugate is washed with 0.9% sodium chloride solution by centrifugation at 3000 rpm for 5 minutes and adjusted with a 0.9% sodium chloride solution to a volume of 100 ml.

Изучение иммуногенности препарата проводили на четырех группах беспородных белых мышей. Животных вакцинировали однократно внутрибрюшинно в объеме 0,5 мл (одна человекодоза).The study of the immunogenicity of the drug was carried out on four groups of outbred white mice. Animals were vaccinated once intraperitoneally in a volume of 0.5 ml (one human dose).

Первую группу прививали экспериментальным адсорбированным жидким дифтерийно-столбнячно-гемофильным конъюгатом, вторую - коммерческой АДС-вакциной, смешанной с одной человекодозой сухой коньюгированной со столбнячным анатоксином гемофильной вакциной (AKT-Hib), третью иммунизировали коммерческой АДС-вакциной, четвертую группу животных не иммунизировали, использовали в качестве контрольной. Через месяц в сыворотках крови мышей определяли методом иммуноферментного анализа содержание антител к капсульному полисахариду Hib, а также к дифтерийному и столбнячному анатоксинам, сравнивая оптическую плотность реакционной смеси. Результаты испытаний представлены в таблице №1.The first group was inoculated with an experimental adsorbed liquid diphtheria-tetanus-hemophilic conjugate, the second with a commercial ADS vaccine mixed with one human dose of dry conjugated with tetanus toxoid hemophilic vaccine (AKT-Hib), the third was immunized with a commercial ADS vaccine, the fourth group of animals were not immunized used as a control. After a month, the content of antibodies to the Hib capsular polysaccharide, as well as to diphtheria and tetanus toxoids, was determined in the blood serum of mice by enzyme-linked immunosorbent assay, comparing the optical density of the reaction mixture. The test results are presented in table No. 1.

Таблица 1Table 1 Результаты ИФА сывороток крови белых мышей после иммунизации вакцинными препаратамиThe results of ELISA of blood serum of white mice after immunization with vaccines №№ п/п№№ Наименование группыGroup name Кол-во животныхNumber of animals Средняя оптическая плотность λ 450 нм/630 нмAverage optical density λ 450 nm / 630 nm HibHib столбнячный анатоксинtetanus toxoid дифтерийный анатоксинdiphtheria toxoid 1.one. конъюгат АДС-Hib (экспериментальная)ADS-Hib conjugate (experimental) 1010 1,721.72 1,411.41 0,620.62 2.2. смесь АДС и AKT-Hib (прототип, коммерческая)a mixture of ADS and AKT-Hib (prototype, commercial) 1010 0,840.84 1,621,62 0,660.66 3.3. контрольная группа, иммунизированная АДСcontrol group immunized with ADS 1010 -- 1,381.38 0,840.84 4.four. контрольная (неиммунизированная)control (non-immunized) 1010 0,030,03 0,030,03 0,050.05

Как видно из таблицы, препарат, полученный предлагаемым способом, обладает более высокой иммуногенной активностью Hib-компонента по сравнению с коммерческой АДС-вакциной, смешанной с лиофилизированным гемофильно-столбнячным конъюгатом и не вызывает антигенной перегрузки столбнячным анатоксином. Полученные данные свидетельствуют, что предлагаемый способ связывания капсульного полисахарида Hib не требует высокой концентрации антигенов, большого объема буферных растворов и не приводит к потерям гемофильного компонента. В качестве антигенов могут быть использованы и другие иммуногенные полимеры. Разработанная технология не нуждается в лиофилизации и не приводит к антигенной перегрузке T-зависимым компонентом, использованным в качестве носителя.As can be seen from the table, the drug obtained by the proposed method has a higher immunogenic activity of the Hib component compared to the commercial ADS vaccine mixed with lyophilized hemophilic-tetanus conjugate and does not cause antigenic overload with tetanus toxoid. The data obtained indicate that the proposed method of binding capsular polysaccharide Hib does not require a high concentration of antigens, a large volume of buffer solutions and does not lead to loss of hemophilic component. Other immunogenic polymers may also be used as antigens. The developed technology does not require lyophilization and does not lead to antigenic overload by the T-dependent component used as a carrier.

Claims (1)

Способ получения конъюгата капсульного полисахарида Haemophilus influenzae тип b (Hib) с антигенами карбодиимидным методом через дигидразид адипиновой кислоты, отличающийся тем, что в качестве антигена используют смесь столбнячного и дифтерийного анатоксинов, адсорбированных на геле гидроокиси или фосфата алюминия, которую центрифугируют при 3000 об/мин в течение 5 мин, полученный осадок связывают карбодиимидным способом через дигидразид адипиновой кислоты с 3 мг капсульного полисахарида Hib, растворенного в 1 мл дистиллированной воды, конъюгат отмывают 0,9% раствором натрия хлорида при центрифугировании 3000 об/мин в течение 5 мин и доводят 0,9% раствором натрия хлорида до объема 100 мл. A method for producing a Haemophilus influenzae type b capsular polysaccharide conjugate with antigens by the carbodiimide method via adipic acid dihydrazide, characterized in that a mixture of tetanus and diphtheria toxoids adsorbed on an aluminum hydroxide or phosphate gel is centrifuged at 3000 rpm. within 5 min, the resulting precipitate was coupled by the carbodiimide method via adipic acid dihydrazide with 3 mg of Hib capsular polysaccharide dissolved in 1 ml of distilled water, washing the conjugate 0.9% by the centrifugation 3000 rpm / min with a solution of sodium chloride for 5 minutes and adjusted to 0.9% sodium chloride solution to a volume of 100 ml.
RU2013120878/10A 2013-05-06 2013-05-06 METHOD OF PREPARING CONJUGATE OF CAPSULAR POLYSACCHARIDE Haemophilus influenzae TYPE b (Hib) C ANTIGENS FOR PREPARING IMMUNOBIOLOGICAL PREPARATIONS RU2542393C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2013120878/10A RU2542393C2 (en) 2013-05-06 2013-05-06 METHOD OF PREPARING CONJUGATE OF CAPSULAR POLYSACCHARIDE Haemophilus influenzae TYPE b (Hib) C ANTIGENS FOR PREPARING IMMUNOBIOLOGICAL PREPARATIONS

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2013120878/10A RU2542393C2 (en) 2013-05-06 2013-05-06 METHOD OF PREPARING CONJUGATE OF CAPSULAR POLYSACCHARIDE Haemophilus influenzae TYPE b (Hib) C ANTIGENS FOR PREPARING IMMUNOBIOLOGICAL PREPARATIONS

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2013120878A RU2013120878A (en) 2014-11-20
RU2542393C2 true RU2542393C2 (en) 2015-02-20

Family

ID=53289180

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2013120878/10A RU2542393C2 (en) 2013-05-06 2013-05-06 METHOD OF PREPARING CONJUGATE OF CAPSULAR POLYSACCHARIDE Haemophilus influenzae TYPE b (Hib) C ANTIGENS FOR PREPARING IMMUNOBIOLOGICAL PREPARATIONS

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2542393C2 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2020218949A1 (en) * 2019-04-22 2020-10-29 Федеральное Государственное Унитарное Предприятие "Санкт-Петербургский Научно-Исследовательский Институт Вакцин И Сывороток И Предприятие По Производству Бактерийных Препаратов" Федерального Медико- Биологического Агентства Method for preparing a conjugate haemophilus b-type vaccine

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2185191C1 (en) * 2001-02-01 2002-07-20 Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии и паразитологии Method of preparing antigenic preparation haemophilus influenzae type b (hib)
RU2420315C2 (en) * 2005-03-17 2011-06-10 Новартис Вэксинес Энд Дайэгностикс Срл Combined vaccines with whole cell pertussis antigen
US20120076817A1 (en) * 2003-08-06 2012-03-29 Human Services Polysaccharide-protein conjugate vaccines

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2185191C1 (en) * 2001-02-01 2002-07-20 Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии и паразитологии Method of preparing antigenic preparation haemophilus influenzae type b (hib)
US20120076817A1 (en) * 2003-08-06 2012-03-29 Human Services Polysaccharide-protein conjugate vaccines
RU2420315C2 (en) * 2005-03-17 2011-06-10 Новартис Вэксинес Энд Дайэгностикс Срл Combined vaccines with whole cell pertussis antigen

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2020218949A1 (en) * 2019-04-22 2020-10-29 Федеральное Государственное Унитарное Предприятие "Санкт-Петербургский Научно-Исследовательский Институт Вакцин И Сывороток И Предприятие По Производству Бактерийных Препаратов" Федерального Медико- Биологического Агентства Method for preparing a conjugate haemophilus b-type vaccine

Also Published As

Publication number Publication date
RU2013120878A (en) 2014-11-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0186576B1 (en) Covalently-modified neutral bacterial polysaccharides, stable covalent conjugates of such polysaccharides and immunogenic proteins, and methods of preparing such polysaccharides and conjugates
KR101897317B1 (en) Immunogenic Composition
JP6950099B2 (en) Polyvalent pneumococcal polysaccharide-protein complex composition
US10702595B2 (en) Manufacture of vaccines and compositions for the prevention of Salmonella infections
TW201808328A (en) Multivalent pneumococcal polysaccharide-protein conjugate composition
IE58088B1 (en) Covalently-modified bacterial polysaccharides, stable covalent conjugates of such polysaccharides and immunogenic proteins with bigeneric spacers, and methods of preparing such polysaccharides and conjugates and of confirming covalency
CN103747798B (en) Include the protein matrix vaccines composition of polycation
US20070031447A1 (en) Method of isolating biologically active fraction containing clinically acceptable native S-lipopolysaccharides obtained from bacteria producing endotoxic lipopolysaccharides
RU2378015C2 (en) Conjugate for immunisation and vaccination and method for improving immunogenicity
KR102083973B1 (en) A multivalent immunogenic composition with improved IgG titer and use thereof
RU2542393C2 (en) METHOD OF PREPARING CONJUGATE OF CAPSULAR POLYSACCHARIDE Haemophilus influenzae TYPE b (Hib) C ANTIGENS FOR PREPARING IMMUNOBIOLOGICAL PREPARATIONS
Coughlin et al. Adjuvant activity of QS-21 for experimental E. coli 018 polysaccharide vaccines
RU2185191C1 (en) Method of preparing antigenic preparation haemophilus influenzae type b (hib)
ES2942133T3 (en) Streptococcal capsular polysaccharide purification
KR20140030233A (en) Exopolysaccharide of shigella sonnei bacteria, method for producing same, vaccine and pharmaceutical composition containing same
CN113663066B (en) Inositol-arabinomannine oligosaccharide conjugate and application thereof in anti-tuberculosis vaccine
TW201406389A (en) Conjugates of polysaccharide and E. coli heat-labile toxin, their use and preparation method
Patkar Recombinant Production of Carrier Proteins: Well-Characterized CRM197 Essential for the Development of Many Conjugate Vaccines
KR20050008257A (en) Preparation and Immunogenicity of the combined vaccine composed of the polysaccharide capsule of Salmonella typhi and Japanese encephalitis virus
CN106039301A (en) Preparation method of pneumococcus-type b haemophilus influenzae-diphtheria-pertussis-tetanus combined vaccine

Legal Events

Date Code Title Description
QB4A Licence on use of patent

Free format text: LICENCE FORMERLY AGREED ON 20190206

Effective date: 20190206