RU2537271C1 - Method for suppressing viability of pathogenic leptospira - Google Patents
Method for suppressing viability of pathogenic leptospira Download PDFInfo
- Publication number
- RU2537271C1 RU2537271C1 RU2013141193/10A RU2013141193A RU2537271C1 RU 2537271 C1 RU2537271 C1 RU 2537271C1 RU 2013141193/10 A RU2013141193/10 A RU 2013141193/10A RU 2013141193 A RU2013141193 A RU 2013141193A RU 2537271 C1 RU2537271 C1 RU 2537271C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- bacillus subtilis
- leptospira
- subtilis tnp
- dep
- strains
- Prior art date
Links
Classifications
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
- Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
- Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change
Abstract
Description
Изобретение относится к области ветеринарии и медицины, в частности к борьбе с лептоспирозом человека и животных.The invention relates to the field of veterinary medicine and, in particular, to the fight against leptospirosis of humans and animals.
Известен способ подавления корд-фактора патогенности микробактерий туберкулеза с использованием микробного препарата (патент Российской Федерации на изобретение №2422150, А61K 35/74, опубл. 27.06.2011 г., бюл. №18). Однако нет сведений об использовании штаммов бактерий «Bacillus subtilis ТНП-3-ДЕП» и «Bacillus subtilis ТНП-5-ДЕП» для лизиса лептоспир.A known method of suppressing the cord factor of pathogenicity of tuberculosis microbes using a microbial preparation (patent of the Russian Federation for invention No. 2422150, A61K 35/74, publ. 06/27/2011, bull. No. 18). However, there is no evidence of the use of the bacterial strains Bacillus subtilis TNP-3-DEPT and Bacillus subtilis TNP-5-DEPT for leptospira lysis.
Для лечения больных лептоспирозом животных используются различные антибиотики (Инструкция «О мероприятиях по профилактике и оздоровлению животных от лептоспироза», от 23.06.1992 г.). Однако известно, что использование антибиотиков вызывает дисбактериоз кишечника, снижает иммунобиологическую реактивность и иммуногенность вакцины, способствует появлению антибиотико-резистентных штаммов лептоспир.Various antibiotics are used to treat animals with leptospirosis (Instruction “On measures for the prevention and recovery of animals from leptospirosis”, dated June 23, 1992). However, it is known that the use of antibiotics causes intestinal dysbiosis, reduces the immunobiological reactivity and immunogenicity of the vaccine, and contributes to the emergence of antibiotic-resistant strains of leptospira.
В основу изобретения положена задача разработки способа подавления жизнеспособности и лизиса патогенных лептоспир путем применения микробного препарата.The basis of the invention is the task of developing a method of suppressing the viability and lysis of pathogenic leptospira by the use of a microbial preparation.
Технический результат изобретения - способ подавления жизнеспособности патогенных лептоспир путем использования микробного препарата. В жидкую питательную среду с культурой штаммов различных серогрупп патогенных лептоспир добавляют культуру штаммов бактерий «Bacillus subtilis ТНП-3-ДЕП» и «Bacillus subtilis ТНП-5-ДЕП». В результате подавляется жизнеспособность и лизируются лептоспиры.The technical result of the invention is a method of suppressing the viability of pathogenic leptospira by using a microbial preparation. In a liquid culture medium with a culture of strains of various serogroups of pathogenic leptospira, a culture of bacteria strains Bacillus subtilis TNP-3-DEPT and Bacillus subtilis TNP-5-DEPT is added. As a result, viability is suppressed and leptospira is lysed.
В качестве микробного препарата используют штаммы бактерий «Bacillus subtilis ТНП-3-ДЕП» и «Bacillus subtilis ТНП-5-ДЕП», депонированные в коллекции микроорганизмов Всероссийского государственного института контроля, стандартизации и сертификации ветеринарных препаратов (ВГНКИ), справка о депонировании от 6 февраля 2001 г., №180/15 и №181/15.The bacterial strains Bacillus subtilis TNP-3-DEP and Bacillus subtilis TNP-5-DEP, deposited in the microorganism collection of the All-Russian State Institute for the Control, Standardization and Certification of Veterinary Medicines (VGNKI), deposit certificate from 6 are used as a microbial preparation February 2001, No. 180/15 and No. 181/15.
Штаммы бактерий «Bacillus subtilis ТНП-3-ДЕП» и «Bacillus subtilis ТНП-5-ДЕП» могут быть получены в лаборатории по разработке микробных препаратов ГНУ Якутский научно-исследовательский институт сельского хозяйства Россельхозакадемии и ВГНКИ ветеринарных препаратов.The bacterial strains "Bacillus subtilis TNP-3-DEPT" and "Bacillus subtilis TNP-5-DEPT" can be obtained in the laboratory for the development of microbial preparations of GNU Yakutsk Research Institute of Agriculture of the Russian Agricultural Academy and VGNKI of veterinary preparations.
Технический результат достигается следующим образом.The technical result is achieved as follows.
Штаммы бактерий «Bacillus subtilis ТНП-3-ДЕП» и «Bacillus subtilis ТНП-5-ДЕП» выращивают в мясопептонном агаре pH 7,0-7,2 в течение 5-7 суток при 37°C, затем суспензируют в равных соотношениях в физиологическом растворе хлористого натрия в концентрации 5×108 КОЕ в 1 мл. Штаммы лептоспир серогрупп: Pomona, Tarassovi, Grippotyphosa, Hebdomadis, Sejroe, Icterohaemorrhagiae, Canicola (из диагностического набора) выращивают в среде Уленгута в течение 10-15 суток при 28-30°C до достижения концентрации 5×104 КОЕ в 1 мл.The bacterial strains Bacillus subtilis TNP-3-DEPT and Bacillus subtilis TNP-5-DEPT are grown in meat and peptone agar pH 7.0-7.2 for 5-7 days at 37 ° C, then suspended in equal proportions physiological solution of sodium chloride at a concentration of 5 × 10 8 CFU in 1 ml Strains of leptospira serogroups: Pomona, Tarassovi, Grippotyphosa, Hebdomadis, Sejroe, Icterohaemorrhagiae, Canicola (from the diagnostic kit) are grown in Ulengut medium for 10-15 days at 28-30 ° C until a concentration of 5 × 10 4 CFU in 1 ml is reached.
В пробирки вносят 1 мл культуры разных серогрупп лептоспир (по 3 пробирки на каждую серологическую группу) и добавляют суспензию штаммов бактерий «Bacillus subtilis ТНП-3-ДЕП» и «Bacillus subtilis ТНП-5-ДЕП» в равных соотношениях в дозе 1 мл.1 ml culture of various leptospira serogroups was added to the tubes (3 tubes per serological group) and a suspension of the bacterial strains Bacillus subtilis TNP-3-DEPT and Bacillus subtilis TNP-5-DEPT in equal proportions at a dose of 1 ml was added.
Контроль: в пробирки с культурой разных серогрупп лептоспир добавляют 1 мл стерильного физиологического раствора.Control: in test tubes with a culture of different serogroups, leptospira add 1 ml of sterile saline.
Учет результатов проводят через 12 дней, инкубации при 28-30°C. Проводят микроскопию мазков в темном поле при увеличении 40×7-10. При микроскопировании суспензии с пробирок, содержащих штаммы бактерий, отмечают отсутствие лептоспир всех серогрупп, то есть фиксируют подавление жизнеспособности и лизис лептоспир.Analysis is carried out after 12 days, incubation at 28-30 ° C. Microscopy of smears in a dark field is carried out at a magnification of 40 × 7-10. When microscopying suspensions from test tubes containing bacterial strains, the absence of leptospira of all serogroups is noted, i.e., suppression of viability and leptospira lysis are recorded.
В пробирках без суспензии культуры штаммов бактерий «Bacillus subtilis» отмечают живые лептоспиры, то есть сохранение жизнеспособности лептоспир всех серогрупп.In test tubes without a suspension of the culture of bacterial strains of Bacillus subtilis, live leptospira is observed, that is, leptospira of all serogroups remains viable.
Таким образом, суспензия штаммов бактерий «Bacillus subtilis ТНП-3-ДЕП» и «Bacillus subtilis ТНП-5-ДЕП» в питательной среде подавляют жизнеспособность и вызывают лизис патогенных лептоспир 7 серологических групп.Thus, a suspension of the bacterial strains Bacillus subtilis TNP-3-DEPT and Bacillus subtilis TNP-5-DEPT in the nutrient medium suppresses viability and causes lysis of pathogenic leptospira 7 serological groups.
Способ подавления жизнеспособности и лизирования патогенных лептоспир может быть использован в ветеринарной и медицинской практике для разработки пробиотических препаратов в качестве лечебно-профилактических средств и обезвреживания объектов внешней среды при лептоспирозе.A method of suppressing the viability and lysis of pathogenic leptospira can be used in veterinary and medical practice for the development of probiotic drugs as therapeutic and prophylactic agents and the neutralization of environmental objects during leptospirosis.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2013141193/10A RU2537271C1 (en) | 2013-09-06 | 2013-09-06 | Method for suppressing viability of pathogenic leptospira |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2013141193/10A RU2537271C1 (en) | 2013-09-06 | 2013-09-06 | Method for suppressing viability of pathogenic leptospira |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2537271C1 true RU2537271C1 (en) | 2014-12-27 |
Family
ID=53287645
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2013141193/10A RU2537271C1 (en) | 2013-09-06 | 2013-09-06 | Method for suppressing viability of pathogenic leptospira |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2537271C1 (en) |
Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2105810C1 (en) * | 1996-03-11 | 1998-02-27 | Научно-производственное объединение "Якутское" СО РАСХН | Strain of bacterium bacillus subtilis used for disinfection of avian dung and manure from pathogenic microorganisms |
RU2297842C2 (en) * | 2005-02-15 | 2007-04-27 | Государственное научное учреждение Якутский научно-исследовательский институт сельского хозяйства Сибирского отделения РАСХН | Method for animal mycotoxicosis prophylaxis |
RU2352344C2 (en) * | 2007-03-09 | 2009-04-20 | ООО НПЦ "Норд-Бакт" | Method of cows endometritis prevention |
RU2422150C1 (en) * | 2009-12-21 | 2011-06-27 | Государственное научное учреждение Якутский научно-исследовательский институт сельского хозяйства Россельхозакадемии | Method of suppressing cord-factor of tuberculosis mycobacteria pathogenicity |
RU2451085C2 (en) * | 2010-06-02 | 2012-05-20 | Государственное научное учреждение Якутский научно-исследовательский институт сельского хозяйства Россельхозакадемии | Method for estimating antibacterial activity of aerobic sporous microorganisms bacillus subtilis |
-
2013
- 2013-09-06 RU RU2013141193/10A patent/RU2537271C1/en active
Patent Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2105810C1 (en) * | 1996-03-11 | 1998-02-27 | Научно-производственное объединение "Якутское" СО РАСХН | Strain of bacterium bacillus subtilis used for disinfection of avian dung and manure from pathogenic microorganisms |
RU2297842C2 (en) * | 2005-02-15 | 2007-04-27 | Государственное научное учреждение Якутский научно-исследовательский институт сельского хозяйства Сибирского отделения РАСХН | Method for animal mycotoxicosis prophylaxis |
RU2352344C2 (en) * | 2007-03-09 | 2009-04-20 | ООО НПЦ "Норд-Бакт" | Method of cows endometritis prevention |
RU2422150C1 (en) * | 2009-12-21 | 2011-06-27 | Государственное научное учреждение Якутский научно-исследовательский институт сельского хозяйства Россельхозакадемии | Method of suppressing cord-factor of tuberculosis mycobacteria pathogenicity |
RU2451085C2 (en) * | 2010-06-02 | 2012-05-20 | Государственное научное учреждение Якутский научно-исследовательский институт сельского хозяйства Россельхозакадемии | Method for estimating antibacterial activity of aerobic sporous microorganisms bacillus subtilis |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Côté-Gravel et al. | Symposium review: Features of Staphylococcus aureus mastitis pathogenesis that guide vaccine development strategies | |
Jacques et al. | Biofilm formation in bacterial pathogens of veterinary importance | |
Kanaan et al. | Drug resistance and virulence traits of Acinetobacter baumannii from Turkey and chicken raw meat | |
Johnson et al. | Location of increased serum survival gene and selected virulence traits on a conjugative R plasmid in an avian Escherichia coli isolate | |
RU2446900C2 (en) | Method of cleaning out of frozen soil from crude oil by spore-forming bacteria bacillus subtilis | |
Ceccarelli et al. | Competitive exclusion reduces transmission and excretion of extended-spectrum-β-lactamase-producing Escherichia coli in broilers | |
Sherpa et al. | Application of iChip to grow “uncultivable” microorganisms and its impact on antibiotic discovery | |
Isaac et al. | Commensal coagulase-negative Staphylococcus from the udder of healthy cows inhibits biofilm formation of mastitis-related pathogens | |
Kuntaman et al. | Prevalence of methicillin resistant Staphylococcus aureus from nose and throat of patients on admission to medical wards of DR Soetomo Hospital, Surabaya, Indonesia | |
CN102329746B (en) | Porcine streptococcus disease and haemophilus parasuis disease combined inactivated vaccine and preparation method thereof | |
Xie et al. | Prevalence and characterization of Salmonella enterica and Salmonella bacteriophages recovered from beef cattle feedlots in South Texas | |
Couto et al. | Biocide and antimicrobial susceptibility of methicillin-resistant staphylococcal isolates from horses | |
CN110123806A (en) | Epigallo-catechin gallate (EGCG) is preparing the application in anti-streptococcus suis drug | |
Ahmad et al. | The first isolation and molecular characterization of Mycoplasma capricolum subsp. capripneumoniae Pakistan strain: A causative agent of contagious caprine pleuropneumonia | |
Zahid et al. | In vitro and in vivo pathogenicity tests of local isolates APEC from naturally infected broiler in Baghdad | |
CN104107194A (en) | Making method of human intestinal micro-ecological system | |
RU2537271C1 (en) | Method for suppressing viability of pathogenic leptospira | |
Thøfner et al. | Bacterial diseases in poultry | |
Saeki et al. | The detection of toxigenic Corynebacterium ulcerans from cats with nasal inflammation in Japan | |
Barigye et al. | Prevalence and antimicrobial susceptibility of virulent and avirulent multidrug-resistant Escherichia coli isolated from diarrheic neonatal calves | |
Khairullah et al. | Detection of multidrug-resistant (MDR) Staphylococcus aureus and coagulase-negative staphylococci (CoNS) in cow milk and hands of farmers in East Java, Indonesia | |
Lublin et al. | Salmonella in Poultry and Other Birds | |
CN103865839B (en) | A kind of probiotics applied to aquaculture | |
RU2422150C1 (en) | Method of suppressing cord-factor of tuberculosis mycobacteria pathogenicity | |
CN108018228B (en) | Escherichia coli O157H 7 low virulent strain and application thereof |