RU2528099C2 - Biological microchip for detection and multiparameter analysis of anticholeraic antibodies - Google Patents

Biological microchip for detection and multiparameter analysis of anticholeraic antibodies Download PDF

Info

Publication number
RU2528099C2
RU2528099C2 RU2013129150/15A RU2013129150A RU2528099C2 RU 2528099 C2 RU2528099 C2 RU 2528099C2 RU 2013129150/15 A RU2013129150/15 A RU 2013129150/15A RU 2013129150 A RU2013129150 A RU 2013129150A RU 2528099 C2 RU2528099 C2 RU 2528099C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
antibodies
analysis
biological
cholera
antigens
Prior art date
Application number
RU2013129150/15A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2013129150A (en
Inventor
Денис Валерьевич Уткин
Наталья Александровна Осина
Михаил Николаевич Киреев
Алексей Николаевич Спицын
Светлана Анатольевна Щербакова
Original Assignee
Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека ("РосНИПЧИ "Микроб")
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека ("РосНИПЧИ "Микроб") filed Critical Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека ("РосНИПЧИ "Микроб")
Priority to RU2013129150/15A priority Critical patent/RU2528099C2/en
Publication of RU2013129150A publication Critical patent/RU2013129150A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2528099C2 publication Critical patent/RU2528099C2/en

Links

Images

Classifications

    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: what is presented is a biological microchip for the detection and multiparameter analysis of anticholeraic antibodies in human blood serum containing a massive of V. cholerae O-antigens discretely applied and immobilised on a carrier surface, and a cholera toxin grouped separately.
EFFECT: parallel immunological analysis of several samples of human blood serum for anticholeraic antibodies to a wide spectrum of cholera agents with determining G and M immunoglobulins for a relatively short time.
3 cl, 3 dwg, 2 ex

Description

Изобретение относится к области клинической лабораторной диагностики, биотехнологии и медицины, в частности к иммунохимическому анализу препаратов крови человека на наличие специфических противохолерных антител, и может найти применение в лабораторной диагностике холеры, а именно при серологическом обследовании людей на холеру.The invention relates to the field of clinical laboratory diagnostics, biotechnology and medicine, in particular to the immunochemical analysis of human blood products for the presence of specific cholera antibodies, and can be used in laboratory diagnosis of cholera, namely, in serological examination of people for cholera.

В настоящее время для выявления противохолерных антител у больных, переболевших, вибриононосителей и вакцинированных людей используется развернутая реакция агглютинации исследуемых сывороток крови человека с трехчасовой бульонной культурой Vibrio cholerae, выделенной в данном очаге или с тестовыми штаммами холерных вибрионов сероваров Огава, Инаба и O139 серогруппы [1]. Время анализа при этом составляет 18 ч. Длительное время анализа, субъективность учета результатов ставят актуальной задачу создания тест-систем нового поколения, обеспечивающих высокую производительность анализа, получение ответа в более короткие сроки, сокращение объема исследуемого образца.At present, a detailed agglutination reaction of the studied human blood sera with a three-hour broth culture of Vibrio cholerae isolated in this focus or with test strains of cholera vibrios of serovars Ogawa, Inaba and O139 serogroup is used to detect anticholera antibodies in patients who have been ill, vibrio-carriers and vaccinated people. ]. In this case, the analysis time is 18 hours. The long analysis time and the subjectivity of taking into account the results make it urgent to create a new generation of test systems that provide high analysis performance, receive an answer in a shorter time, and reduce the volume of the test sample.

В настоящее время существенное развитие получила технология анализа сложных биологических систем с помощью биологических микрочипов (биочипов). В биологических микрочипах, в отличие от традиционных серологических методов, реализуется возможность одновременного параллельного анализа исследуемого образца по многим параметрам, то есть проведение многопараметрического анализа на наличие антител различной специфичности. Это значительно увеличивает эффективность анализа, снижает требуемое количество исследуемого материала, позволяет миниатюризировать проведение исследований, повысить достоверность результатов и автоматизировать этапы проведения анализа.At present, the technology for the analysis of complex biological systems using biological microchips (biochips) has received significant development. In biological microarrays, in contrast to traditional serological methods, the possibility of simultaneous parallel analysis of the test sample by many parameters, that is, a multi-parameter analysis for the presence of antibodies of different specificity, is realized. This significantly increases the effectiveness of the analysis, reduces the required amount of the studied material, allows you to miniaturize the research, increase the reliability of the results and automate the stages of the analysis.

Раздельное выявление антител различной специфичности важно при проведении эпидемиологического расследования случаев холеры. Определение антител к холерному токсину в сыворотке крови людей позволяет сделать заключение об эпидемической значимости штаммов холерных вибрионов, циркулирующих в очаге холеры.Separate detection of antibodies of different specificity is important when conducting an epidemiological investigation of cholera cases. Determination of antibodies to cholera toxin in the blood serum of people allows us to draw a conclusion about the epidemic significance of strains of cholera vibrios circulating in the focus of cholera.

Рядом авторов для идентификации и внутривидового типирования возбудителей инфекционных болезней разработаны биологические микрочипы на основе олигонуклеотидных зондов - так называемые «ДНК-чипы» [2-5]. Однако ДНК-чипы, при отсутствии выделения возбудителя, в том числе на фоне лечения антибиотиками, не позволяют оценить динамику развития инфекционного процесса, провести ретроспективную диагностику холеры, определить состояние гуморального иммунитета у вакцинированных людей.A number of authors have developed biological microchips based on oligonucleotide probes — the so-called “DNA chips” [2-5], for identification and intraspecific typing of infectious disease agents. However, DNA chips, in the absence of pathogen isolation, including during antibiotic treatment, do not allow to assess the dynamics of the infection process, conduct a retrospective diagnosis of cholera, and determine the state of humoral immunity in vaccinated people.

Для проведения иммунологического анализа применяют белковые микрочипы или иммуночипы. Белковые микрочипы делят на двумерные (белки иммобилизуются на поверхности носителя) и трехмерные (белки иммобилизуются внутри носителя) [6].For immunological analysis, protein microarrays or immunochips are used. Protein microarrays are divided into two-dimensional (proteins are immobilized on the surface of the carrier) and three-dimensional (proteins are immobilized inside the carrier) [6].

Известны трехмерный биологический микрочип на основе полиакриламидного гидрогеля для проведения множественного параллельного иммунологического анализа соединений, сформированный полимеризацией гидрогелевых элементов заданного объема на поверхности микрочипа [7], и способ обнаружения биологических токсинов с использованием гидрогелевого микрочипа [8]. Гидрогелевые биологические микрочипы позволяют проводить множественный иммунологический анализ широкого круга низкомолекулярных и высокомолекулярных соединений. Существенным недостатком трехмерных микрочипов является низкая скорость диффузии молекул пробы внутри объема гидрогеля, требующая многочасовой экспозиции, что практически нивелирует преимущество, полученное в результате увеличения пространственной плотности пробы. Кроме того, описанные биологические микрочипы предназначены для анализа одной пробы.Known three-dimensional biological microchip based on polyacrylamide hydrogel for conducting multiple parallel immunological analysis of compounds formed by the polymerization of hydrogel elements of a given volume on the surface of the microchip [7], and a method for detecting biological toxins using a hydrogel microchip [8]. Hydrogel biological microarrays allow for multiple immunological analysis of a wide range of low molecular weight and high molecular weight compounds. A significant drawback of three-dimensional microarrays is the low diffusion rate of sample molecules within the hydrogel volume, requiring many hours of exposure, which practically eliminates the advantage obtained by increasing the spatial density of the sample. In addition, the described biological microchips are designed to analyze a single sample.

Известны двумерные микрочипы для определения антигенов бактерий [9], выявления в сыворотке крови человека антител к ряду инфекционных агентов: вирусу гепатита С [10, 11], ВИЧ-инфекции [12], возбудителю сифилиса [13], боррелиоза [14], TORCH-инфекциям [15]. У двумерных микрочипов белки адсорбированы или ковалентно связаны с подложкой и непосредственно контактируют с исследуемым материалом, что существенно сокращает время анализа и упрощает технологию изготовления микрочипа. Для ковалентного связывания белков поверхность носителя подвергают химической модификации для введения амино-, альдегид- или эпоксигрупп [6], что обеспечивает прочное связывание белков с поверхностью подложки.Two-dimensional microarrays are known for determining bacterial antigens [9], detecting antibodies to a number of infectious agents in human serum: hepatitis C virus [10, 11], HIV infection [12], syphilis pathogen [13], borreliosis [14], TORCH infections [15]. In two-dimensional microarrays, proteins are adsorbed or covalently bound to the substrate and directly contact with the test material, which significantly reduces the analysis time and simplifies the technology of manufacturing the microarray. For covalent binding of proteins, the surface of the carrier is subjected to chemical modification to introduce amino, aldehyde, or epoxy groups [6], which ensures strong binding of proteins to the surface of the substrate.

Наиболее близкой по технической сущности является диагностическая тест-система в формате двумерного иммуночипа для серологической диагностики сифилиса [16]. Диагностическая тест-система в формате иммуночипа для серологической дифференциальной диагностики сифилиса состоит из иммуносорбента с иммобилизованными на нем раздельно антигенами возбудителя сифилиса Treponema pallidum, конъюгата и реактивов, необходимых для выявления комплекса антиген-антитело. Однако данная тест-система, позволяющая одновременно и дифференциально выявлять антитела к Treponema pallidum разных классов, не предназначена для выявления противохолерных антител.The closest in technical essence is a diagnostic test system in the format of a two-dimensional immunochip for serological diagnosis of syphilis [16]. The diagnostic test system in the format of an immunochip for serological differential diagnosis of syphilis consists of an immunosorbent with the antigens of the syphilis causative agent Treponema pallidum separately conjugated and the reagents necessary to detect the antigen-antibody complex immobilized on it. However, this test system, which allows simultaneously and differentially detecting antibodies to Treponema pallidum of different classes, is not intended to detect cholera antibodies.

Технической задачей настоящего изобретения является разработка биологического микрочипа, позволяющего выявлять в короткие сроки противохолерные антитела к антигенам возбудителя холеры O1 серогруппы сероваров Огава и Инаба, O139 серогруппы и холерному токсину.An object of the present invention is the development of a biological microchip, allowing to detect in a short time antichole antibodies to antigens of the pathogen cholera O1 of the serogroup Ogawa and Inaba, O139 serogroup and cholera toxin.

Техническим результатом является повышение эффективности и сокращение времени серодиагностики холеры у человека, увеличение информативности за счет определения классов иммуноглобулинов, что позволяет устанавливать сроки заболевания. Дополнительным результатом является повышение биологической безопасности серологической диагностики холеры за счет использования чистых растворимых антигенов.The technical result is to increase the efficiency and reduce the time of serodiagnosis of cholera in humans, increase in information content by determining the classes of immunoglobulins, which allows you to set the duration of the disease. An additional result is an increase in the biological safety of serological diagnosis of cholera through the use of pure soluble antigens.

Технический результат достигается тем, что биологический микрочип содержит массив дискретно нанесенных и иммобилизованных на поверхности подложки O-антигенов V. cholerae и холерного токсина, по меньшей мере, в двух повторах, сгруппированных в отдельные зоны для проведения параллельного иммунологического анализа нескольких образцов. Поверхность подложки активирована альдегид-, эпокси- или аминогруппами. Для выявления противохолерных антител используют O-антигены V. cholerae O1 серогруппы сероваров Огава и Инаба и O139 серогруппы.The technical result is achieved in that the biological microchip contains an array of V. cholerae O antigens and cholera toxin, discretely applied and immobilized on the surface of the substrate, in at least two repeats grouped into separate zones for parallel immunological analysis of several samples. The surface of the substrate is activated by aldehyde, epoxy or amino groups. V. cholerae O1 serogroups of the Ogawa and Inaba serovars and O139 serogroups are used to detect cholera antibodies.

Описание конструкции биологического микрочипа.Description of the design of the biological microchip.

Биологический микрочип представляет собой подложку, в качестве которой можно использовать предметное стекло по ГОСТ 9284-75 [17] размером 25x75x1 мм, активированное альдегид-, эпокси- или аминогруппами. В качестве специфических антигенов при изготовлении микрочипа используют препараты растворимых O-антигенов V. cholerae O1 серогруппы серовара Огава, O1 серогруппы серовара Инаба, 0139 серогруппы, полученные в соответствии с патентом РФ №2143280 [18] и препарат холерного токсина, полученный в соответствии с патентом РФ №2456996 [19]. Антигены наносят на активированное стекло методом контактной печати с помощью миниплоттера. Антигены разводят в буфере для печати до конечной концентрации 0,5-1 мг/мл и сорбируют в трех повторах на активированных стеклах. Каждому антигену соответствует индивидуальное пятно диаметром 0,3 мм. При печати набор антигенов группируют в виде 16 идентичных зон на одном стекле с расстоянием 9 мм между центрами зон (Фиг.1) и расстоянием между пятнами 0,8-1 мм, обеспечивающими высокую плотность расположения антигенов на единицу площади поверхности подложки. Иммобилизацию антигенов проводят в течение 1 ч при температуре 37°C. Свободные сайты связывания поверхности стекла блокируют 0,5% раствором бычьего сывороточного альбумина (БСА) в фосфатно-солевом буфере в течение 1 ч при температуре 25°C. Затем стекло высушивают центрифугированием в течение 1 мин при скорости вращения ротора 1000 об/мин. Стекла с иммобилизованными антигенами хранят при температуре 4°C до их использования. Максимальный срок хранения 6 мес.The biological microchip is a substrate, which can be used as a slide according to GOST 9284-75 [17] 25x75x1 mm in size, activated by aldehyde, epoxy or amino groups. The specific antigens used in the manufacture of the microchip are preparations of soluble O-antigens V. cholerae O1 serogroup Serovar Ogawa, O1 serogroup Serovar Inaba, 0139 serogroups obtained in accordance with RF patent No. 2143280 [18] and cholera toxin obtained in accordance with the patent RF №2456996 [19]. Antigens are applied to activated glass by contact printing using a mini-plotter. Antigens are diluted in printing buffer to a final concentration of 0.5-1 mg / ml and sorbed in triplicate on activated glasses. Each antigen corresponds to an individual spot with a diameter of 0.3 mm. When printing, the set of antigens is grouped in the form of 16 identical zones on the same glass with a distance of 9 mm between the centers of the zones (Figure 1) and a distance between spots of 0.8-1 mm, providing a high density of antigens per unit surface area of the substrate. Immobilization of antigens is carried out for 1 h at a temperature of 37 ° C. Free glass surface binding sites are blocked with a 0.5% solution of bovine serum albumin (BSA) in phosphate-buffered saline for 1 h at 25 ° C. Then the glass is dried by centrifugation for 1 min at a rotor speed of 1000 rpm. Glasses with immobilized antigens are stored at 4 ° C until used. The maximum shelf life of 6 months.

Краткое описание чертежей.A brief description of the drawings.

На Фиг.1 представлена общая схема расположения антигенов на микрочипе (А), состоящего из 16-ти идентичных зон (Б) и схема расположения антигенов в одной зоне. Каждая зона предназначена для анализа одного образца. Цифрами обозначены виды иммобилизуемых антигенов: 1 - антиген V. cholerae O1 серовара Огава, 2 - антиген V. cholerae O1 серовара Инаба, 3 - антиген V. cholerae O139 серогруппы, 4 - холерный токсин, 5 - отрицательный контроль (буфер для печати).Figure 1 shows the general arrangement of antigens on a microchip (A), consisting of 16 identical zones (B) and the arrangement of antigens in one zone. Each zone is designed to analyze one sample. The numbers indicate the types of immobilized antigens: 1 - V. cholerae O1 antigen of Serovar Ogawa, 2 - V. cholerae O1 antigen of Serovar Inaba, 3 - V. cholerae O139 antigen of serogroup, 4 - cholera toxin, 5 - negative control (print buffer).

На Фиг.2 представлено схематическое изображение трафарета. Цифрами обозначены номера ячеек. Размеры трафарета: 75x25,4 мм, размеры ячеек: 7x7x4 мм.Figure 2 presents a schematic illustration of a stencil. Numbers indicate cell numbers. Stencil dimensions: 75x25.4 mm, mesh sizes: 7x7x4 mm.

На Фиг.3 приведен пример положительного результата при наличии в исследуемом материале антител к V. cholerae O1 серогруппы серовара Огава (А), V. cholerae O1 серогруппы серовара Инаба (Б), V. cholerae O139 серогруппы (В), холерному токсину (Г).Figure 3 shows an example of a positive result in the presence of antibodies to V. cholerae O1 serogroup Serovar Ogawa (A), V. cholerae O1 serogroup Serovar Inaba (B), V. cholerae O139 serogroup (C), cholera toxin (D) in the test material )

Примеры использования биологического микрочипа.Examples of the use of a biological microchip.

Пример 1. Выявление и многопараметрический анализ противохолерных антител класса G/M в сыворотке крови человека при проведении оперативной диагностики холеры (без определения титра специфических антител)Example 1. The identification and multi-parameter analysis of cholera antibodies class G / M in human serum during the on-line diagnosis of cholera (without determining the titer of specific antibodies)

Перед постановкой анализа сверху на сконструированный биологический микрочип накладывают и плотно зажимают в специальной рамке трафарет. Трафарет содержит 16 ячеек квадратной формы (Фиг.2), соответствующих 16 зонам на биологическом микрочипе (Фиг.1А). При наложении трафарета на биологический микрочип каждая ячейка совмещается с соответствующей зоной. В каждую ячейку вносят по 98 мкл буферного раствора для отмывки микрочипа от несвязавшегося БСА и инкубируют на шейкере для иммуноплашетов с вращением платформы 500 об/мин при температуре 37°C в течение 2-3 мин. После инкубации содержимое из ячеек аккуратно отбирают с помощью вакуумного отсасывателя, не повреждая центральное поле ячейки, соответствующее расположению массива биологических молекул. Затем в каждую ячейку вносят по 90 мкл буферного раствора для разведения образцов. С 1 по 14 ячейки биологического микрочипа вносят по 2 мкл исследуемых сывороток, в 15 ячейку вносят 2 мкл положительного контроля (положительная сыворотка человека), в 16 ячейку - 2 мкл буфера для разведения образцов (отрицательный контроль). Биологические микрочипы накрывают крышкой и инкубируют на шейкере для иммунопланшетов с вращением платформы 500 об/мин при температуре 37°C в течение 30 мин. Содержимое из ячеек аккуратно отбирают с помощью вакуумного отсасывателя. Микрочипы промывают два раза буферным раствором для отмывки, вносят в каждую ячейку по 100 мкл буферного раствора и инкубируют на шейкере для иммунопланшетов с вращением платформы 500 об/мин при температуре 37°C в течение 2-3 мин. В каждую ячейку вносят по 100 мкл конъюгата, содержащего антитела против иммуноглобулинов класса G/M человека, меченные флуоресцентным красителем, имеющим максимум поглощения при длине волны 532 нм или 635 нм, в рабочем разведении. Микрочипы накрывают крышкой и инкубируют на шейкере для иммунопланшетов с вращением платформы 500 об/мин при температуре 37°C в течение 30 мин. Содержимое из ячеек аккуратно отбирают с помощью вакуумного отсасывателя. Микрочипы промывают два раза буферным раствором для отмывки, внося в каждую лунку по 100 мкл буферного раствора, и инкубируют на шейкере для иммунопланшетов с вращением платформы 500 об/мин при температуре 37°C в течение 2-3 мин. Снимают трафарет с микрочипа. Микрочип промывают дистиллированной водой и высушивают центрифугированием в течение 1 мин при скорости 1000 об/мин. После проведения анализа микрочипы сканируют на флуоресцентном сканере при длине волны 532 нм или 635 нм. Для анализа используют среднее значение интенсивности флуоресценции в пределах области печати для каждой точки массива. Определяют место локализации точек отрицательного контроля для каждого исследуемого образца. Определяют значение интенсивности флуоресценции для каждой точки массива. Положительным считают результат при превышении интенсивности флуоресценции точки массива в 2,5 раза интенсивности флуоресценции точек отрицательного контроля. Результат анализа считают валидным при наличии положительного результата в ячейке положительного контроля, при отрицательном результате в ячейке отрицательного контроля. Образец считают положительным на наличие антител к V. cholerae O1 серогруппы серовара Огава при положительном результате не менее чем в двух повторах в первом столбце массива (Фиг.3А). Образец считают положительным на наличие антител к V. cholerae O1 серогруппы серовара Инаба при положительном результате не менее чем в двух повторах во втором столбце массива (Фиг.3Б). Образец считают положительным на наличие антител к V. cholerae O139 серогруппы при положительном результате не менее чем в двух повторах в третьем столбце массива (Фиг.3В). Образец считают положительным на наличие антител к холерному токсину V. cholerae при положительном результате не менее чем в двух повторах в четвертом столбце массива (Фиг.3Г). Время анализа составляет 1,5 ч.Before staging the analysis from above, a stencil is applied and tightly clamped in a special frame to the designed biological microchip. The stencil contains 16 square-shaped cells (Figure 2), corresponding to 16 zones on a biological microchip (Figure 1A). When applying a stencil to a biological microchip, each cell is combined with the corresponding zone. 98 μl of buffer solution for washing the microchip from unbound BSA was added to each well and incubated on an immunoplate shaker with a platform rotation of 500 rpm at a temperature of 37 ° C for 2-3 min. After incubation, the contents from the cells are carefully selected using a vacuum aspirator, without damaging the central field of the cell, corresponding to the location of the array of biological molecules. Then, 90 μl of buffer solution for sample dilution is added to each well. From 1 to 14 cells of the biological microchip, 2 μl of the studied sera are added, 2 μl of the positive control (positive human serum) is added to the 15 cell, 2 μl of sample dilution buffer (negative control) to 16 cells. The biological microchips are covered and incubated on an immuno-plate shaker with a platform rotation of 500 rpm at a temperature of 37 ° C for 30 minutes. The contents of the cells are carefully selected using a vacuum aspirator. The microchips are washed twice with wash buffer, 100 μl of buffer solution are added to each well and incubated on an immunoplate shaker with a platform rotation of 500 rpm at a temperature of 37 ° C for 2-3 minutes. 100 μl of conjugate containing antibodies against human G / M class immunoglobulins labeled with a fluorescent dye having a maximum absorption at a wavelength of 532 nm or 635 nm was added to each well in working dilution. The microchips are covered and incubated on an immunoplate shaker with a platform rotation of 500 rpm at a temperature of 37 ° C for 30 minutes. The contents of the cells are carefully selected using a vacuum aspirator. The microchips are washed twice with wash buffer, adding 100 μl of buffer solution to each well, and incubated on an immuno-plate shaker with a platform rotation of 500 rpm at 37 ° C for 2-3 minutes. Remove the stencil from the microchip. The microchip is washed with distilled water and dried by centrifugation for 1 min at a speed of 1000 rpm. After analysis, the microarrays are scanned on a fluorescence scanner at a wavelength of 532 nm or 635 nm. For analysis using the average value of the fluorescence intensity within the print area for each point of the array. Determine the location of the points of negative control for each test sample. Determine the value of the fluorescence intensity for each point of the array. The result is considered positive if the fluorescence intensity of the array point is 2.5 times higher than the fluorescence intensity of the negative control points. The result of the analysis is considered valid if there is a positive result in the positive control cell, with a negative result in the negative control cell. The sample is considered positive for the presence of antibodies to V. cholerae O1 of the serogovar Ogawa serogroup with a positive result in at least two repetitions in the first column of the array (Fig. 3A). The sample is considered positive for the presence of antibodies to V. cholerae O1 serogroup Inaba serogroup with a positive result in at least two repetitions in the second column of the array (Fig.3B). The sample is considered positive for the presence of antibodies to V. cholerae O139 serogroup with a positive result in at least two repetitions in the third column of the array (Fig.3B). The sample is considered positive for the presence of antibodies to cholera toxin V. cholerae with a positive result in at least two repetitions in the fourth column of the array (Fig. 3G). Analysis time is 1.5 hours

Пример 2. Выявление и многопараметрический анализ противохолерных антител в сыворотке крови человека при проведении ретроспективной диагностики холеры (с определением титра и класса специфических антител)Example 2. The identification and multi-parameter analysis of cholera antibodies in human serum during a retrospective diagnosis of cholera (with the definition of the titer and class of specific antibodies)

Перед постановкой анализа сверху на биологический микрочип накладывают и плотно зажимают в специальной рамке трафарет. В каждую ячейку вносят по 100 мкл буферного раствора для отмывки микрочипа и инкубируют на шейкере для иммуноплашетов с вращением платформы 500 об/мин при температуре 37°C в течение 2-3 мин. После инкубации содержимое из ячеек аккуратно отбирают с помощью вакуумного отсасывателя, не повреждая центральное поле ячейки, соответствующее расположению массива биологических молекул. Исследуемую сыворотку разводят в лунках 96-луночного планшета в буферном растворе для разведения образцов в разведении от 1:20 до 1:1280 в двух повторностях. Для этого в первую лунку 96-луночного планшета вносят 190 мкл буферного раствора для разведения образцов, со второй по седьмую лунки вносят по 100 мкл буферного раствора для разведения образцов. В первую лунку вносят 10 мкл исследуемой сыворотки (конечное разведение 1:20) и титруют двукратно по 100 мкл до седьмой лунки (конечное разведение 1:1280). Процедуру повторяют в других 7-ми лунках 96-луночного планшета. Содержимое каждой лунки в объеме 100 мкл переносят в ячейки биологического микрочипа. В оставшиеся свободными две лунки вносят положительный и отрицательный контроль. Биологические микрочипы накрывают крышкой и инкубируют на шейкере для иммунопланшетов с вращением платформы 500 об/мин при температуре 37°C в течение 30 мин. Содержимое из ячеек аккуратно отбирают с помощью вакуумного отсасывателя. Микрочипы промывают два раза буферным раствором для отмывки микрочипа, внося в каждую ячейку по 100 мкл раствора и инкубируют на шейкере с вращением платформы 500 об/мин при температуре 37°C в течение 2-3 мин. С 1 по 8 ячейки микрочипа вносят в рабочем разведении по 100 мкл конъюгата, содержащего антитела против иммуноглобулинов класса G человека, меченные флуоресцентным красителем, с 9 по 16 ячейки микрочипа вносят в рабочем разведении по 100 мкл конъюгата, содержащего антитела против иммуноглобулинов класса M человека, меченные флуоресцентным красителем. Микрочипы накрывают крышкой и инкубируют на шейкере для иммунопланшетов с вращением платформы 500 об/мин при температуре 37°C в течение 30 мин. Содержимое из ячеек аккуратно отбирают с помощью вакуумного отсасывателя. Микрочипы промывают два раза буферным раствором для отмывки, внося в каждую лунку по 100 мкл буферного раствора, и инкубируют на шейкере для иммунопланшетов с вращением платформы 500 об/мин при температуре 37°C в течение 2-3 мин. Дальнейшую процедуру анализа и учет результатов осуществляют аналогично примеру 1. Определение титра и класса иммуноглобулинов проводят на основании положительных результатов с соответствующими антивидовыми конъюгатами. За титр специфической активности принимают максимальное разведение исследуемого образца, при котором наблюдается положительный результат. Время анализа составляет 2 ч.Before staging the analysis on top of the biological microchip impose and tightly clamped in a special frame stencil. 100 μl of buffer solution for washing the microchip are added to each well and incubated on an immunoplate shaker with a platform rotation of 500 rpm at a temperature of 37 ° C for 2-3 minutes. After incubation, the contents from the cells are carefully selected using a vacuum aspirator, without damaging the central field of the cell, corresponding to the location of the array of biological molecules. The test serum is diluted in the wells of a 96-well plate in a buffer solution for dilution of samples in a dilution of 1:20 to 1: 1280 in two replicates. To do this, 190 μl of sample dilution buffer is added to the first well of a 96-well plate, 100 μl of sample dilution buffer is added from the second to the seventh well. 10 μl of test serum (final dilution 1:20) was added to the first well and titrated twice 100 μl to the seventh well (final dilution 1: 1280). The procedure is repeated in the other 7 wells of a 96-well plate. The contents of each well in a volume of 100 μl are transferred to the cells of the biological microchip. The remaining two free holes contribute positive and negative control. The biological microchips are covered and incubated on an immuno-plate shaker with a platform rotation of 500 rpm at a temperature of 37 ° C for 30 minutes. The contents of the cells are carefully selected using a vacuum aspirator. The microchips are washed twice with a buffer solution for washing the microchip, adding 100 μl of solution to each well and incubated on a shaker with a platform rotation of 500 rpm at a temperature of 37 ° C for 2-3 minutes. From 1 to 8 microchip cells are added in working dilution of 100 μl of conjugate containing antibodies against human G class immunoglobulins labeled with fluorescent dye, from 9 to 16 microchip cells are added in working dilution of 100 μl of conjugate containing antibodies against human class M immunoglobulins, labeled with fluorescent dye. The microchips are covered and incubated on an immunoplate shaker with a platform rotation of 500 rpm at a temperature of 37 ° C for 30 minutes. The contents of the cells are carefully selected using a vacuum aspirator. The microchips are washed twice with wash buffer, adding 100 μl of buffer solution to each well, and incubated on an immuno-plate shaker with a platform rotation of 500 rpm at 37 ° C for 2-3 minutes. The further analysis procedure and the calculation of the results are carried out analogously to example 1. The titer and class of immunoglobulins are determined on the basis of positive results with the corresponding anti-species conjugates. For the titer of specific activity take the maximum dilution of the test sample, in which a positive result is observed. The analysis time is 2 hours.

Таким образом, применение биологических микрочипов позволяет повысить эффективность проведения серологического исследования и сократить время его проведения за счет одновременного параллельного анализа нескольких образцов сыворотки крови человека на наличие противохолерных антител к широкому спектру антигенов возбудителя холеры различной специфичности с определением иммуноглобулинов класса G и M. Использование биочипа обеспечивает достоверность результатов анализа, стандартизацию и автоматизацию проведения исследований. При проведении исследования с использованием заявляемого биочипа требуется минимальный объем исследуемого материала.Thus, the use of biological microarrays can increase the efficiency of serological testing and reduce its time due to the simultaneous parallel analysis of several samples of human blood serum for the presence of cholera antibodies to a wide range of cholera pathogen antigens of various specificity with the determination of class G and M immunoglobulins. reliability of the analysis results, standardization and automation of research. When conducting research using the inventive biochip requires a minimum amount of test material.

Источники информацииInformation sources

1. Лабораторная диагностика холеры: Методические указания МУК 4.2.2218-07. М.: Федеральный центр гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора; 2007.1. Laboratory diagnosis of cholera: Guidelines MUK 4.2.2218-07. M .: Federal Center for Hygiene and Epidemiology of Rospotrebnadzor; 2007.

2. Jin Da-Zhi, Xu Xiao-Jing, Chen Su-Hong, Wen Si-Yuan, Ma Xue-En, Zhang Zheng et al. Detection and identification of enterohemorrhagic Escherichia coli 0157:H7 and Vibrio choleras 0139 using oligonucleotide microarray. Infectious Agents and Cancer. 2007; 2: 23-33.2. Jin Da-Zhi, Xu Xiao-Jing, Chen Su-Hong, Wen Si-Yuan, Ma Xue-En, Zhang Zheng et al. Detection and identification of enterohemorrhagic Escherichia coli 0157: H7 and Vibrio choleras 0139 using oligonucleotide microarray. Infectious Agents and Cancer. 2007; 2: 23-33.

3. Panicker G., Call D.R., Krug M.J. Bej A.K. Detection of Pathogenic Vibrio spp.In Shellfish by Using Multiplex PCR and DNA Microarrays. Appl. and Environmental Microbiology. 2004; 70 (12): 7436-7444.3. Panicker G., Call D.R., Krug M.J. Bej A.K. Detection of Pathogenic Vibrio spp. In Shellfish by Using Multiplex PCR and DNA Microarrays. Appl. and Environmental Microbiology. 2004; 70 (12): 7436-7444.

4. Vora G.J., Meador C.E., Bird M.M., Bopp C.A., Andreadis J.D., Stenger D.A. Microarray-based detection of genetic heterogeneity, antimicrobial resistance, and the viable but nonculturable state in human pathogenic Vibrio spp.PNAS. 2005; 102 (52): 19109-19114.4. Vora G.J., Meador C.E., Bird M.M., Bopp C.A., Andreadis J.D., Stenger D.A. Microarray-based detection of genetic heterogeneity, antimicrobial resistance, and the viable but nonculturable state in human pathogenic Vibrio spp.PNAS. 2005; 102 (52): 19109-19114.

5. Pang В., Yan М., Cui Z., Ye X., Diao В., Ren Y. et al. Genetic Diversity of Toxigenic and Nontoxigenic Vibrio cholerae Serogroups 01 and 0139 Revealed by Array-Based Comparative Genomic Hybridization. J. Bacteriology. 2007; 189 (13): 4837-4849.5. Pang B., Yan M., Cui Z., Ye X., Diao B., Ren Y. et al. Genetic Diversity of Toxigenic and Nontoxigenic Vibrio cholerae Serogroups 01 and 0139 Revealed by Array-Based Comparative Genomic Hybridization. J. Bacteriology. 2007; 189 (13): 4837-4849.

6. Wingren С, Borrebaeck CA. Antibody-based microarrays. Methods Mol Biol. 2009:509:57-84.6. Wingren C, Borrebaeck CA. Antibody-based microarrays. Methods Mol Biol. 2009: 509: 57-84.

7. Пат. 2363955, Российская Федерация, МПК G01N 33/543. Биологический микрочип для множественного параллельного иммунологического анализа соединений и способы иммуноанализа, в которых он используется / Дарий Е.Л., Дементьева Е.И., Бутвиловская В.И., Рубина А.Ю., Стомахин А.А., Савватеева Е.Н., Заседателев А.С.; заявитель и патентообладатель Учреждение Российской академии наук Институт Молекулярной Биологии им. В.А. Энгельгардта РАН (ИМБ РАН). - №2007112882/15; заявл. 28.12.2004; опубл. 10.08.2009, Бюл. №22. - 68 с.: ил.7. Pat. 2363955, Russian Federation, IPC G01N 33/543. Biological microchip for multiple parallel immunological analysis of compounds and methods of immunoassay in which it is used / Dariy E.L., Dementieva E.I., Butvilovskaya V.I., Rubina A.Yu., Stomakhin A.A., Savvateeva E. N., Zasedatelev A.S .; applicant and patentee Institution of the Russian Academy of Sciences Institute of Molecular Biology V.A. Engelhardt RAS (IMB RAS). - No. 2007112882/15; declared 12/28/2004; publ. 08/10/2009, bull. Number 22. - 68 p.: Ill.

8. Пат. 2320994, Российская Федерация, МПК G01N 33/53. Способ количественного обнаружения биологических токсинов / Дементьева Е.И., Дюкова В.И., Заседателев А.С., Рубина А.Ю., Стомахин А.А., Несмеянов В.А., Гришин Е.В.; заявитель и патентообладатель Институт Молекулярной Биологии им. В.А. Энгельгардта Российской академии наук. Институт биоорганической химии им. M.M. Шемякина и Ю.А. Овчинникова Российской академии наук. - №2006125158/15; заявл. 24.11.2004; опубл. 27.03.2008, Бюл. №9. - 19 с.: ил.8. Pat. 2320994, Russian Federation, IPC G01N 33/53. A method for the quantitative detection of biological toxins / Dementieva E.I., Dyukova V.I., Zasedatelev A.S., Rubina A.Yu., Stomakhin A.A., Nesmeyanov V.A., Grishin E.V .; applicant and patentee Institute of Molecular Biology named after V.A. Engelhardt Russian Academy of Sciences. Institute of Bioorganic Chemistry M.M. Shemyakina and Yu.A. Ovchinnikov Russian Academy of Sciences. - No. 2006125158/15; declared 11/24/2004; publ. 03/27/2008, Bull. No. 9. - 19 p.: Ill.

9. Пат. 2451083, Российская Федерация, МПК C12Q 1/00, G01N 33/53, G01N 33/533. Способ определения антигенов бактерий / Афонюшкин В.П., Титова М.А., Филипенко М.Л., Юшков Ю.Г., Шкиль Н.А., Троменшлегер И.Н.; заявитель и патентообладатель Учреждение Российской академии наук Институт химической биологии и фундаментальной медицины Сибирского отделения РАН (ИХБФМ СО РАН), Государственное научное учреждение Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока Россельхозакадемии (ГНУ ИЭВСиДВ). - №2010150438/10; заявл. 08.12.2010; опубл. 20.05.2012, Бюл. №14. - 8 с.9. Pat. 2451083, Russian Federation, IPC C12Q 1/00, G01N 33/53, G01N 33/533. A method for determining bacterial antigens / Afonyushkin V.P., Titova M.A., Filipenko M.L., Yushkov Yu.G., Shkil N.A., Tromenschleger I.N .; applicant and patentee Institution of the Russian Academy of Sciences Institute of Chemical Biology and Fundamental Medicine of the Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences (IHBFM SB RAS), State Scientific Institution Institute of Experimental Veterinary Medicine of Siberia and the Far East of the Russian Agricultural Academy (GNU IEVSiDV). - No.2010150438 / 10; declared 12/08/2010; publ. 05/20/2012, Bull. Number 14. - 8 p.

10. Потапова А.А., Чеканова Т.А., Маркелов М.Л., Пудова Е.А., Кирдяшкина Н.П., Шипулин Г.А. и др. Верификационные возможности иммуночипов при выявлении в иммуноферментных тест-системах антител только к неструктурному протеину NS3 вируса гепатита С. Российский иммунологический журнал. 2012; 6 (15), 1:10. Potapova A.A., Chekanova T.A., Markelov M.L., Pudova E.A., Kirdyashkina N.P., Shipulin G.A. et al. Verification capabilities of immunochips in detecting antibodies to hepatitis C virus non-structural protein NS3 only in the enzyme immunoassay systems. Russian Immunological Journal. 2012; 6 (15), 1:

11. Манзенюк И.Н., Шипулин Г.А., Алексеева Ю.А., Браславская С.И., Сперанская А.С., Чеканова Т.А. и др. Разработка иммуночипа для раздельной детекции антител к вирусу гепатита С. Клиническая лабораторная диагностика. 2008; 6: 25-30.11. Manzenyuk I.N., Shipulin G.A., Alekseeva Yu.A., Braslavskaya S.I., Speranskaya A.S., Chekanova T.A. et al. Development of an immunochip for separate detection of antibodies to hepatitis C virus. Clinical laboratory diagnostics. 2008; 6: 25-30.

12. Чеканова Т.А., Маркелов М.Л., Манзенюк И.Н., Шипулин Г.А. Новый скрининговый и подтверждающий тест для серологической диагностики ВИЧ-инфекции в формате иммуночипа. Клиническая лабораторная диагностика. 2008; 9: 3.12. Chekanova T.A., Markelov M.L., Manzenyuk I.N., Shipulin G.A. New screening and confirmatory test for serological diagnosis of HIV infection in the format of an immunochip. Clinical laboratory diagnostics. 2008; 9: 3.

13. Смердова М.А., Маркелов М.Л., Судьина А.Е., Шишова А.В., Гущин А.Е., Шипулин Г.А. Иммуночип для серодиагностики сифилиса. 2-й Всерос. Конгресс дерматовенерологов. С-Пб, 2007.13. Smerdova M.A., Markelov M.L., Sudyina A.E., Shishova A.V., Gushchin A.E., Shipulin G.A. Immunochip for serodiagnosis of syphilis. 2nd All-Russian. Congress of Dermatovenerologists. St. Petersburg, 2007.

14. Смердова М. А., Маркелов М. Л., Манзенюк И. Н., Карань Л. С., Судьина А. Е., Шишова А. В. и др. Серологическая диагностика иксодового клещевого боррелиоза в новом формате иммуночипа. Клиническая лабораторная диагностика. 2008; 9: 4.14. Smerdova M. A., Markelov M. L., Manzenyuk I. N., Karan L. S., Sudyina A. E., Shishova A. V. et al. Serological diagnostics of tick-borne tick-borne borreliosis in the new immunochip format. Clinical laboratory diagnostics. 2008; 9: 4.

15. Чеканова Т.А., Пудова Е.А., Маркелов М.Л., Кирдяшкина Н.П., Гоптарь И.А., Шипулина О.Ю. и др. Разработка диагностической тест-системы в формате иммуночипа для серологической диагностики и мониторинга возбудителей внутриутробных инфекций, объединенных в группу TORCH. VII Всерос. Научно-практ. конф. с международным участием «Молекулярная диагностика 2010».15. Chekanova T.A., Pudova E.A., Markelov M.L., Kirdyashkina N.P., Goptar I.A., Shipulina O.Yu. et al. Development of a diagnostic test system in the format of an immunochip for serological diagnosis and monitoring of intrauterine pathogens, united in the TORCH group. VII All-Russian. Scientific and practical. conf. with international participation "Molecular Diagnostics 2010".

16. Пат. 2397178, Российская Федерация, МПК C07K 14/20, G01N 33/543, G01N 33/571. Диагностическая тест-система в формате иммуночипа и способ серологической дифференциальной диагностики сифилиса / Маркелов М.Л., Чеканова Т.А., Шипулин Г.А.; заявитель и патентообладатель Федеральное государственное учреждение науки "Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека. Общество с ограниченной ответственностью «ИнтерЛабСервис». - 2009106931/13; заявл. 27.02.2009; опубл. 20.08.2010, Бюл. №23. - 21 с.: ил.16. Pat. 2397178, Russian Federation, IPC C07K 14/20, G01N 33/543, G01N 33/571. Diagnostic test system in the format of an immunochip and a method for serological differential diagnosis of syphilis / Markelov M.L., Chekanova T.A., Shipulin G.A .; Applicant and patent holder Federal State Institution of Science "Central Research Institute of Epidemiology" of the Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Well-being. Limited Liability Company InterLabService. - 2009106931/13; declared 02/27/2009; publ. 08/20/2010, Bull. Number 23. - 21 p.: Ill.

17. ГОСТ 9284-75 Стекла предметные для микропрепаратов. Технические условия. Введен 01.01.1977.17. GOST 9284-75 Slides for micropreparations. Technical conditions Introduced on 01/01/1977.

18. Пат. 2143280, Российская Федерация, МПК A61K 39/106. Способ получения O-антигена холерного очищенного / Громова О.В., Джапаридзе М.Н., Дятлов И.А., Елисеев Ю.Ю., Киреев М.Н., Космаенко О.М.; заявитель и патентообладатель Федеральное государственное учреждение Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Министерства здравоохранения РФ. - 99110357/13; заявл. 26.05.1999; опубл. 27.12.1999.18. Pat. 2143280, Russian Federation, IPC A61K 39/106. The method of obtaining O-antigen of cholera purified / Gromova O.V., Dzhaparidze M.N., Dyatlov I.A., Eliseev Yu.Yu., Kireev M.N., Kosmaenko O.M .; Applicant and patent holder Federal State Institution Russian Research Anti-Plague Institute "Microbe" of the Ministry of Health of the Russian Federation. - 99110357/13; declared 05/26/1999; publ. 12/27/1999.

19. Пат. 2456996, Российская Федерация, МПК A61K 39/00, C07K 14/28, C12P 21/00, C12R 1/6. Способ получения очищенной В-субъединицы холерного токсина из рекомбинантного штамма Vibrio cholerae I. Захарова Т.Л., Киреев М.Н., Ливанова Л.Ф., Заднова С.П., Смирнова Н.И.; заявитель и патентообладатель Федеральное государственное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека ("РосНИПЧИ "Микроб"). - 2011123073/10; заявл. 07.06.2011; опубл. 27.07.2012, Бюл. №21. -7 с.: ил.19. Pat. 2456996, Russian Federation, IPC A61K 39/00, C07K 14/28, C12P 21/00, C12R 1/6. A method of obtaining a purified b-subunit of cholera toxin from a recombinant strain of Vibrio cholerae I. Zakharova T.L., Kireev M.N., Livanova L.F., Zadnova S.P., Smirnova N.I .; Applicant and patent holder Federal State Healthcare Institution "Russian Research Anti-Plague Institute" Microbe "of the Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Well-being (RosNIPCHI" Microbe "). - 2011123073/10; declared 06/07/2011; publ. 07/27/2012, Bull. No. 21. -7 p.: Ill.

Claims (3)

1. Биологический микрочип для выявления и многопараметрического анализа противохолерных антител в сыворотке крови человека, характеризующийся тем, что содержит массив дискретно нанесенных и иммобилизованных на поверхности подложки O-антигенов V. cholerae и холерного токсина, сгруппированных в отдельные зоны для проведения параллельного иммунологического анализа нескольких образцов.1. A biological microchip for the detection and multi-parameter analysis of anticholera antibodies in human blood serum, characterized in that it contains an array of V. cholerae O-antigens and cholera toxin discretely applied and immobilized on the surface of the substrate, grouped into separate zones for parallel immunological analysis of several samples . 2. Биологический микрочип по п.1, отличающийся тем, что подложка активирована альдегид-, эпокси- или аминогруппами.2. The biological microchip according to claim 1, characterized in that the substrate is activated by aldehyde, epoxy or amino groups. 3. Биологический микрочип по п.1, отличающийся тем, что на подложку наносят O-антигены V. cholerae O1 серогруппы сероваров Огава и Инаба и O139 серогруппы. 3. The biological microchip according to claim 1, characterized in that O-antigens of V. cholerae O1 of the serogroup Ogawa and Inaba and O139 serogroups are applied to the substrate.
RU2013129150/15A 2013-06-25 2013-06-25 Biological microchip for detection and multiparameter analysis of anticholeraic antibodies RU2528099C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2013129150/15A RU2528099C2 (en) 2013-06-25 2013-06-25 Biological microchip for detection and multiparameter analysis of anticholeraic antibodies

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2013129150/15A RU2528099C2 (en) 2013-06-25 2013-06-25 Biological microchip for detection and multiparameter analysis of anticholeraic antibodies

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2013129150A RU2013129150A (en) 2013-10-27
RU2528099C2 true RU2528099C2 (en) 2014-09-10

Family

ID=49446484

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2013129150/15A RU2528099C2 (en) 2013-06-25 2013-06-25 Biological microchip for detection and multiparameter analysis of anticholeraic antibodies

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2528099C2 (en)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101440403A (en) * 2008-11-27 2009-05-27 中国人民解放军军事医学科学院微生物流行病研究所 Method for detecting Vibrio cholerae O139 by using suspension chip technology
CN101487047A (en) * 2008-11-27 2009-07-22 中国人民解放军军事医学科学院微生物流行病研究所 Method for detecting Vibrio cholerae O1 by suspending chip technology
RU2401299C1 (en) * 2009-04-06 2010-10-10 Учреждение Российской академии наук Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН Animal mus musculus hybrid cell clone l-producer of monoclonal cholera toxin antibodies

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101440403A (en) * 2008-11-27 2009-05-27 中国人民解放军军事医学科学院微生物流行病研究所 Method for detecting Vibrio cholerae O139 by using suspension chip technology
CN101487047A (en) * 2008-11-27 2009-07-22 中国人民解放军军事医学科学院微生物流行病研究所 Method for detecting Vibrio cholerae O1 by suspending chip technology
RU2401299C1 (en) * 2009-04-06 2010-10-10 Учреждение Российской академии наук Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН Animal mus musculus hybrid cell clone l-producer of monoclonal cholera toxin antibodies

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Серологические методы в диагностике холеры. Дополнение к МУК 4.2.2218-07 Лабораторная диагностика холеры. Методические указания. МУК 4.2.2315-08 (утв. Роспотребнадзором 18.01.2008) с.1-7 [Найдено 07.04.2014] [он-лайн], Найдено из Интернет: URL: http://www.alppp.ru/law/bezopasnost-i-ohrana-pravoporjadka/21/serologicheskie-metody-v-diagnostike-holery--dopolnenie-k-muk-4-2-2218-07-laboratornaja-di.html. *

Also Published As

Publication number Publication date
RU2013129150A (en) 2013-10-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Hong et al. Single-stranded DNA aptamers against pathogens and toxins: Identification and biosensing applications
Delehanty et al. A microarray immunoassay for simultaneous detection of proteins and bacteria
Taitt et al. Detection of Salmonella enterica serovar typhimurium by using a rapid, array-based immunosensor
Du et al. Application of biosensors to detection of epidemic diseases in animals
Guan et al. Rapid detection of pathogens using antibody-coated microbeads with bioluminescence in microfluidic chips
Mehta et al. Detection of potential microbial antigens by immuno-PCR (PCR-amplified immunoassay)
Wadhwa et al. Opportunities for improved serodiagnosis of human tuberculosis, bovine tuberculosis, and paratuberculosis
Seia et al. Laser-induced fluorescence integrated in a microfluidic immunosensor for quantification of human serum IgG antibodies to Helicobacter pylori
JP2004309494A (en) Taxonomic identification of pathogenic microorganism and toxic protein of pathogenic microorganism
Wang et al. Simultaneous detection of three foodborne pathogens based on immunomagnetic nanoparticles and fluorescent quantum dots
Tang et al. Rapid and simultaneous detection of Ureaplasma parvum and Chlamydia trachomatis antibodies based on visual protein microarray using gold nanoparticles and silver enhancement
Widiyanti et al. Development of immunochromatography-based methods for detection of leptospiral lipopolysaccharide antigen in urine
Hans et al. Development and validation of immunoassay for whole cell detection of Brucella abortus and Brucella melitensis
Mustafakulov et al. Prospects of aptamer application in diagnostics of bacterial infections
KR101922234B1 (en) Kit for detection of antibody against classical swine fever virus, and detecting method of the antibody and/or antibody titer against classical swine fever virus using the same
Liebsch et al. Solid-phase microbead array for multiplex O-serotyping of Escherichia coli
US20230160887A1 (en) Flow Cytometry System and Methods for the Diagnosis of Infectious Disease
Zhang et al. Cell detection based on protein array using modified glass slides
CN1453588A (en) Reagent for colloidal gold chromatographic analysis of SARS coronavirus antigen
RU2528099C2 (en) Biological microchip for detection and multiparameter analysis of anticholeraic antibodies
Xia et al. A rapid detection of Escherichia coli O157: H7 by competition visual antigen macroarray
Lu et al. Novel Vertical Flow Immunoassay with Au@ PtNPs for Rapid, Ultrasensitive, and On-Site Diagnosis of Human Brucellosis
Alasel et al. Promising alternatives for one-tier testing of Lyme borreliosis
Gouriet et al. Multiplexed serology in atypical bacterial pneumonia
WO2016196323A1 (en) Serodiagnosis of melioidosis and glanders using polysaccharides

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20180626