RU2525658C2 - НАНОРАЗМЕРНЫЙ ФЕРМЕНТНЫЙ БИОКАТАЛИЗАТОР ДЛЯ ДЕТОКСИФИКАЦИИ ФОСФОРОРГАНИЧЕСКИХ СОЕДИНЕНИЙ in vivo - Google Patents

НАНОРАЗМЕРНЫЙ ФЕРМЕНТНЫЙ БИОКАТАЛИЗАТОР ДЛЯ ДЕТОКСИФИКАЦИИ ФОСФОРОРГАНИЧЕСКИХ СОЕДИНЕНИЙ in vivo Download PDF

Info

Publication number
RU2525658C2
RU2525658C2 RU2012139201/10A RU2012139201A RU2525658C2 RU 2525658 C2 RU2525658 C2 RU 2525658C2 RU 2012139201/10 A RU2012139201/10 A RU 2012139201/10A RU 2012139201 A RU2012139201 A RU 2012139201A RU 2525658 C2 RU2525658 C2 RU 2525658C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
biocatalyst
enzyme
block copolymer
enzymatic
covalent
Prior art date
Application number
RU2012139201/10A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2012139201A (ru
Inventor
Александр Викторович Кабанов
Елена Николаевна Ефременко
Наталья Львовна Клячко
Татьяна Карловна Бронич
Илья Владимирович Лягин
Сергей Дмитриевич Варфоломеев
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова" (МГУ)
Юниверсити оф Небраска Медикал Сентер (UNMC)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова" (МГУ), Юниверсити оф Небраска Медикал Сентер (UNMC) filed Critical Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова" (МГУ)
Priority to RU2012139201/10A priority Critical patent/RU2525658C2/ru
Publication of RU2012139201A publication Critical patent/RU2012139201A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2525658C2 publication Critical patent/RU2525658C2/ru

Links

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)

Abstract

Изобретение относится к биотехнологии. Предложен ферментный биокатализатор в виде наноразмерных частиц для детоксификации фосфорорганических соединений in vivo. Биокатализатор представляет собой нековалентные полиэлектролитные комплексы. Данные комплексы состоят из полигистидин-содержащего полипептида со свойствами органофосфатгидролазы и блок-сополимера полиэтиленгликоля и полиглутаминовой кислоты в зарядовом соотношении фермент:блок-сополимер в диапазоне от 2:1 до 1:5. Изобретение обеспечивает существенное упрощение технологии получения биокатализатора, увеличение его каталитической эффективности, снижение вводимой дозы, уменьшение иммунотоксичного эффекта, а также повышение активности в реакциях гидролиза пестицидов и отравляющих веществ. 3 з.п. ф-лы, 6 пр.

Description

Изобретение относится к биотехнологии, в частности к ферментным биокатализаторам в виде наноразмерных частиц, представляющих собой нековалентные полиэлектролитные комплексы, сформированные полигистидин-содержащим полипептидом с активностью органофосфатгидролазы и блок-сополимером полиэтиленгликоля с полианионом и предназначенных для детоксификации фосфорорганических соединений (ФОС) in vivo путем их гидролиза. Изобретение может быть использовано в качестве антидота для профилактики и элиминирования интоксикации, вызванной попаданием ФОС в организм человека или животных в результате чрезвычайных ситуаций (катастроф и террористических актов) или регулярного контакта с ФОС при их производстве, применении, хранении и утилизации.
ФОС представляют собой эфиры ортофосфорной и алкилфосфоновой кислот, а также их производных. К их числу относятся пестициды, широко применяемые в сельском, приусадебном и домашнем хозяйстве, а также ингибиторы коррозии, применяемые в теплоэнергетике, нефте- и газодобывающей промышленности, пластификаторы и стабилизаторы, используемые в строительной промышленности, в составе моющих и чистящих средств промышленного назначения, а также высокотоксичные боевые отравляющие вещества нервно-паралитического действия зоман, зарин, Vx и продукты их разложения (метилфосфоновая кислота и ее эфиры) [Kwong T.C. Organophosphate pesticides: biochemistry and clinical toxicology. // Ther. Drug. Monk., 2002, V.24(1), p.144-149; Юфит С.С. Яды вокруг нас. Вызов человечеству.// М.: Классик Стиль, 2002, 368 с.; Абрамов В.В. и др. (ред. Путилова В.Я.). Современные природоохранные технологии в электроэнергетике: Информационный сборник. // М.: Издат. дом МЭИ, 2007, 388 с.; Москвичев Ю.А., Фельдблюм В.Ш. Химия в нашей жизни (продукты органического синтеза и их применение). // Изд-во ЯГТУ, 2007, Ярославль, с.244-250].
Ежегодное производство, хранение и применение ФОС в объеме сотен тысяч тонн [Gold, R.S., Wales, M.E., Grimsly, J.K., Green solution for chemical problems. // Disarm. Technol., 2000, V.23, p.263-286] для нужд сельского хозяйства, а также низкие скорости разложения ФОС в условиях окружающей среды приводят к накоплению и обнаружению этих веществ первоначально в почве. Далее происходит попадание ФОС в грунтовые и речные воды, продукты питания, табачные и хлопчатобумажные изделия, домашнюю пыль [Obendorf, S.K., Lemley, A.T., Hedge, A., Kline, A.A., Tan, К., Dokuchaeva, Т., Distribution of pesticide residues within homes in central New York state. // Arch. Environ. Contam. Toxicol., 2006, V.50(1), p.31-44; Lemley, A., Hedge, A., Obendorf, S.K., Hong, S., Kim, J., Muss, T.M., Varner, C.J., Selected pesticide residues in house dust from farmers homes in central New York state. // Bull. Environ. Contamin. Toxicol., 2002, V.69(2), p.155-163]. Проникновение ФОС в организм животных и в том числе человека может происходить не только вместе с водой и продуктами питания (перорально), но и ингаляторно - при дыхании, а также трансдермально при непосредственном контакте с ними. ФОС оказывают на организм человека нейротоксичное воздействие, которое в зависимости от концентрации ФОС может быть острым или отдаленным. Также ФОС являются мутагенами, вызывающими хромосомную аберрацию, при этом негативный эффект, как правило, носит кумулятивный характер.
Согласно Международной конвенции о химическом разоружении [United Nation, Convention on the prohibition of the development, production, stockpiling and use of chemical weapons and on their destruction, corrected version in accordance with Depositary Notification C.N.246.1994. <http://www.opcw.org/html/db/cwc/eng/cwc_frameset.html>] на территории Российской Федерации и США должны быть уничтожены фосфорорганические боевые отравляющие вещества (зарин, зоман и Vx). Безопасность этого процесса может быть обусловлена наличием комплекса высокоэффективных защитных средств, включая те, что могут быть применены in vivo путем их введения непосредственно в организм для профилактики и элиминирования нейротоксичного эффекта ФОС.
Известно, что ферментные системы кожи, крови, внутренних органов участвуют в естественной защите человека от эндогенных и экзогенных ядов. Роль ферментов печени, легких и почек, цитохромов Р450, оксидаз, трансфераз и амидокарбоксилэстераз в метаболизме лекарств и ксенобиотиков хорошо известна. Признана также важность эстераз плазмы крови в инактивации многочисленных токсикантов. Эти ферменты формируют эндогенные барьеры, защищающие физиологические системы от отдельных токсикантов, и, несмотря на то, что процессы ферментативной детоксификации протекают в соответствии с разными механизмами, их часто называют «биоловушками» токсикантов [Массой П., Рошу Д. Каталитические «биоловушки» против токсических эфиров, альтернативный подход для профилактики и лечения отравлений. // Acta naturae, 2009, №1, с.68-78], поскольку большей частью, взаимодействуя с токсикантами, ферменты либо необратимо инактивируются при детоксификации ФОС, образуя с ними высокоустойчивые комплексы, либо эти ферменты проявляют низкую гидролитическую активность и, образуя фермент-субстратный комплекс, надолго выбывают из процесса детоксификации. В этой связи актуально применение в качестве основы для антидотных средств тех ферментов, что обладают широким гидролитическим субстратным спектром действия и высокой каталитической активностью по отношению к ФОС.
Детоксификация различных ФОС с помощью таких биокатализаторов, как ферменты, имеет ряд преимуществ, а именно она проходит в мягких условиях, и продукты гидролиза, как правило, являются биологически деградируемыми соединениями. На сегодняшний день наиболее высоко активным ферментом, осуществляющим биодеструкцию самого широкого спектра ФОС, является органофосфатгидролаза (ОРН, ЕС 3.1.8.1, арилдиалкилфосфатаза), катализирующая гидролиз эфирной связи в производных ортофосфорной и фосфоновой кислот [Ефременко Е.Н., Варфоломеев С.Д. Ферменты деструкции фосфорорганических нейротоксинов. // Успехи биол. химии, Т.44, 2004, с.307-340].
На сегодняшний день известно несколько ферментных биокатализаторов, созданных на основе ОРН, для использования в качестве антидотов против нейротоксичного действия ФОС in vivo.
Известен иммобилизованный биокатализатор, полученный для детоксификации ФОС in vivo в виде ОРН, модифицированной пэгилированием [Jun D., Musilová L., Link M., Loiodice M., Nachon F., Rochu D., Renault F., Masson P. Preparation and characterization of methoxy polyethylene glycol-conjugated phosphotriesterase as a potential catalytic bioscavenger against organophosphate poisoning. // Chem.-Biol. Interact., 2010, V.187, p.380-383; Trovaslet-Leroy M., Musilova L., Renault F., Brazzolotto X., Misik J., Novotny L., Froment M.T., Gillon E., Loiodice M., Verdier L., Masson P., Rochu D., Jun D., Nachon F. Organophosphate hydrolases as catalytic bioscavengers of organophosphorus nerve agents. // Toxicol. Lett., 2011, V. 206 (1), p.14-23]. Для этого ПЭГ с молекулярной массой 2 или 5 кг/моль посредством концевой альдегидной группы ковалентно пришивают к NH2-группам лизина, находящимся на поверхности молекулы ОРН. Полимер растворяют в 200 мМ боратном буфере (рН 8,5), содержащем 0,1 мМ CoCl2 и восстанавливающий агент - цианоборгидрид натрия, и смешивают с ферментом в оптимальном мольном соотношении ОРН:ПЭГ:NaBH3CN равном 1:1200:48000 для ПЭГ с молекулярной массой 2 кг/моль или 1:800:40000 для ПЭГ с молекулярной массой 5 кг/моль при температуре 25°С в течение 24 ч. Реакцию останавливают добавлением 10% масс. раствора глицина, после чего удаляют непрореагировавший полимер ультрафильтрацией. С 1 моль фермента связывается до 16 моль ПЭГ.
Период полуинактивации такого ферментного биокатализатора при 37°С составляет 12,3 ч при введении препарата внутримышечно в дозе 1,19 мг/кг самкам крыс марки Wistar. При внутримышечном введении клиренс препарата не определяется.
К недостаткам описанного биокатализатора следует отнести:
- развитие иммунного ответа у животных независимо от типа ПЭГ, используемого для модификации ОРН;
- используется длительная и трудоемкая процедура получения пэгилированного фермента, в результате которой теряется 50% ферментативной активности;
- отсутствие данных по каталитическим характеристикам и возможности детоксификации других ФОС, кроме Параоксона, а также отсутствие данных по диапазону рН и температурного действия данного биокатализатора не позволяет оценить потенциал его практического применения.
Известны биокатализаторы, представляющие собой конъюгаты ОРН с полиэтиленгликолем (ПЭГ), полученные в результате ковалентной модификации поверхности фермента [Novikov B.N., Grimsley J.K., Kern R.J., Wild J.R., Wales M.E. Improved pharmacokinetics and immunogenicity profile of organophosphorus hydrolase by chemical modification with polyethylene glycol. // J. Control. Release, 2010, V.146, p.318-325]. Для этого используют короткоцепочечные преполимеры с молекулярной массой от 333 до 686 г/моль, состоящие из 4, 8 или 12 звеньев этиленгликоля с концевой сукцинимидной группой, способной связываться с остатками лизина или аргинина на поверхности белка, или разветвленный полимер ПЭГ4-[ПЭГ12]3 (ПЭГ40) с наибольшей из всех молекулярной массой 2421 г/моль. Модификацию ОРН проводят в 10 мМ фосфатном буфере (рН 8,4), содержащем 20 мМ KCl и 50 мкМ CoCl2. Фермент в концентрации 1 г/л смешивают с полимером в мольном соотношении фермент:полимер, равном 1:800. Смесь выдерживают при +25°С в течение 30 мин, а затем экспонируют при +4°С в течение 12 ч. После этого модифицированный фермент диализуют против исходного буфера. Максимальная активность биокатализатора наблюдается при связывании 1 моль фермента с 6 моль ПЭГ40. Константа Михаэлиса наилучшего образца данного биокатализатора по Параоксону составляет 57±4 мкМ, каталитическая константа - 4629±23 с-1, а эффективность каталитического действия - 8,1×107 M-1c-1.
Основными недостатками этого биокатализатора являются:
- все образцы биокатализатора вызывают сильнейший иммунный ответ после внутривенного введения морским свинкам марки Dunkin Hartley в дозе 0,75 мг/кг, что подтверждено обнаружением специфических антител к ОРН в плазме крови исследованных животных;
- используется длительная и трудоемкая процедура получения пэгилированного фермента, в результате которой теряется до 75% ферментативной активности.
Известен ферментный биокатализатор на основе ОРН, нанокапсулированной в полиоксазолиновый разветвленный полимер и предназначенный для применения в качестве антидота [Petrikovics I., Wales М.Е., Jaszberenyi J.C., Budai M., Baskin S.I., Szilasi M., Logue B.A., Chapela P., Wild J.R. Enzyme-based intravascular defense against organophosphoms neurotoxins: Synergism of dendritic-enzyme complexes with 2-PAM and atropine. // Nanotoxicology, 2005, V.1(2), p.85-92]. Препарат получают в 50 мМ бис-трис-пропановом буфере (рН 8,5) путем смешивания полимера с ферментом в весовом соотношении 20:1. Конечная концентрация комплекса составляет 20 г/л, который далее лиофилизуют. Активность готового препарата составляет 1-5 Ед./мгпреп, или в пересчете на фермент - 48-238 Ед./гбелка. Внутривенное введение такого ферментного биокатализатора мужским особям мышей марки Balb/c в дозе 500-2500 мг/кг позволяет улучшить в 2,85 раза защиту животных от токсичного действия Параоксона, вводимого внутрибрюшинно через 1 ч после введения биокатализатора, по сравнению с результатом применения неинкапсулированного фермента в тех же условиях.
Вместе с этим описанный ферментный биокатализатор обладает рядом существенных недостатков, а именно:
- низкая удельная активность антидота приводит к необходимости введения его в огромных дозах для достижения целевого эффекта, что существенно усложняет саму процедуру введения, поскольку в расчете на 1 человека применяемая доза достигает 150 г сухого препарата внутривенно, а потому ставит вопрос об иммунотоксичности биокатализатора, экономической обоснованности и практической целесообразности использования подобного антидота;
- отсутствие данных по каталитическим характеристикам и возможности детоксификации других ФОС, кроме Параоксона, а также отсутствие данных по диапазону рН и температурного действия, термостабильности, фармакокинетических данных действия данного биокатализатора не позволяет оценить потенциал его практического применения.
Данное техническое решение как наиболее близкое к заявляемому по своему назначению и способу получения, а именно получению наноразмерного биокатализатора с органофосфатгидролазной активностью, представляющего собой нековалентный комплекс фермента с полимером и предназначенного для детоксификации ФОС, принято за прототип.
Задачей предлагаемого изобретения является разработка ферментного биокатализатора в виде наноразмерных частиц для детоксификации ФОС in vivo, представляющих собой высокоактивные и термостабильные нековалентные полиэлектролитные комплексы с широким субстратным спектром действия.
Поставленная задача решается тем, что ферментный биокатализатор в виде наноразмерных частиц для детоксификации фосфорорганических соединений in vivo получают в виде нековалентных полиэлектролитных комплексов, сформированных при рН 7,5-10,5 и температуре +8÷30°С полигистидин-содержащим полипептидом со свойствами органофосфатгидролазы и блок-сополимером полиэтиленгликоля с полианионом в виде полиглутаминовой кислоты разной степени полимеризации, взятыми в зарядовом соотношении фермент:блок-сополимер в диапазоне от 2:1 до 1:5.
В качестве основного каталитического начала в предлагаемом изобретении используется оригинальный полигистидин-содержащий полипептид с активностью органофосфатгидролазы, который характеризуется существенно улучшенными по отношению к исходному ферменту органофосфатгидролазе каталитическими характеристиками, позволяющими использовать его для гидролиза фосфорорганических отравляющих веществ в более широком диапазоне рН и температуры, а также проводить более эффективный и быстрый гидролиз различных ФОС [Патент РФ 2255975, МПК7 C12N 1/21, C12N 15/52, C12N 15/70. Рекомбинантная плазмидная ДНК pTES-His-OPH и продуцент олигогистидинсодержащей органофосфатгидролазы; Патент РФ 2296164, МПК7 C12S 13/00, A62D 3/00. Способ ферментативного гидролиза боевых отравляющих веществ. Вотчицева Ю.А., Ефременко Е.Н., Алиев Т.К., Варфоломеев С.Д. (2006) Свойства гексагистидин-содержащей органофосфатгидролазы» // Биохимия, Т.76 (2), с.216-222; Гудков Д.А., Вотчицева Ю.А., Ефременко Е.Н. (2006). Гидролиз параоксона, катализируемый органофосфатгидролазой, содержащей полигистидиновую последовательность на С-конце молекулы белка. // Вестник МГУ, сер. Хим., Т.47(1), с.15-20].
Наличие полигистидиновой последовательности в молекуле полипептида позволяет проводить быструю очистку и выделение такого фермента из клеток E.coli в одну стадию за счет образования множественных координационных связей между молекулой гибридного белка и металл-хелатирующими носителями [Efremenko E., Votchitseva Y., Plieva F., Galaev I., Mattiasson B. (2006). Purification of His6-organophosphate hydrolase using monolithic supermacroporous polyacrylamide cryogels developed for immobilized metal affinity chromatography. // Appl. Microb. Biotech., V.70 (5), p.558-563], и, следовательно, масштабирование процесса его наработки с целью использования при получении заявляемого ферментного биокатализатора легко реализуемо.
Ранее данный полипептид для целей его применения в качестве антидота не использовался.
Для стабилизации ферментативной активности полигистидин-содержащего пептида в крови при его непосредственном введении в организм, согласно заявляемому изобретению, формируют нековалентный полиэлектролитный комплекс, для чего ферментный раствор смешивают в определенном соотношении с раствором блок-сополимера полиэтиленгликоля и полианиона. Получение такого комплекса способствует формированию наноразмерных частиц, удобных для применения in vivo [Patent WO 2008/141155 A1, 2008; Compositions for protein delivery and methods of use thereof; A61K 38/16; A61K 38/28] и использования в процессе детоксификации нейротоксинов. Кроме того, поскольку такая модификация поверхности фермента способствует снижению его иммуногенности как чужеродного белка, вводимого в организм животных, в том числе человека, а также позволяет увеличить время пребывания фермента в организме в каталитически активной форме за счет увеличения его стабильности и снижения его доступности к гидролитическому воздействию литических ферментов крови.
В качестве блок-сополимера для модификации полигистидин-содержащего полипептида с активностью ОРН в заявляемом изобретении используется блок-сополимер полиэтиленгликоля и полиглутаминовой кислоты, имеющей разную степень полимеризации. Такое техническое решение обеспечивает формирование устойчивого полиэлектролитного комплекса между положительно заряженными функциональными группами, локализованными на стороне, противоположной активному центру фермента, и полианионом. При этом блок-сополимер не затрагивает активный центр фермента, позволяя сохранять его высокую активность, но при этом существенно стабилизирует активную конформацию белка. Физический метод стабилизации полипептида, используемый в заявляемом изобретении, в отличие от ковалентного метода, применяемого в аналогах, гарантирует максимальное сохранение исходных характеристик фермента.
Диапазон варьирования зарядового соотношения фермента и блок-сополимера (от 2:1 до 1:5), применяемый для получения заявляемого биокатализатора, выбран экспериментально и обеспечивает получение высокоактивного и термостабильного ферментного биокатализатора в виде наноразмерных частиц (в среднем 29±4 нм). Увеличение этого соотношения в сторону повышения доли фермента приводит к снижению стабильности его действия в диапазоне рН 7,0-12,0 и температуры 15-60°С, а увеличение доли полимера в соотношении фермент:полимер свыше 1:5 приводит к снижению каталитической активности биокатализатора и не приводит к заметному улучшению термостабильности ферментного биокатализатора.
Такое сочетание всех основных компонентов наноразмерного ферментного биокатализатора, которое указано в заявляемом техническом решении, да еще к тому же при заявляемых соотношениях фермента и блок-сополимера, эффективное взаимодействие которых осуществляется при рН 7,5-10,5 и температуре +8-30°С, ранее известно не было и позволяет характеризовать предлагаемое техническое решение как новое.
Ниже приводятся конкретные примеры реализации заявляемого технического решения.
Пример 1. Ферментный биокатализатор в виде наноразмерных частиц на основе His6-OPH и ПЭГ-ПГК50 в зарядовом соотношении 2:1.
К очищенному ферменту His6-OPH, находящемуся в 100 мМ карбонатном буфере (рН 10,5) в концентрации 1 г/л, добавляют 20 г/л водный раствор ПЭГ119-ПГК50 (MW=13 кг/моль) так, чтобы концентрация блок-сополимера составила 0,09 г/л. Приготовленную смесь оставляют при комнатной температуре на 30 мин для формирования ферментного биокатализатора в виде нековалентного полиэлектролитного комплекса с зарядовым соотношением фермента и блок-сополимера 2:1.
Полученный ферментный биокатализатор имеет размер частиц 29±4 нм, обладает каталитической константой действия по фосфорорганическому пестициду Параоксону 5010±60 с-1, константой Михаэлиса 16,7±0,9 мкМ и константой эффективности действия (3,0±0,2)×108 М-1с-1, функционирует в диапазоне рН 7,0-12,0 и температур 15-60°С. Каталитическая константа действия по фосфорорганическому пестициду Хлорпирифосу составляет 482±25 с-1, константа Михаэлиса - 150±10 мкМ и константа эффективности действия - (3,2±0,4)×106 М-1с-1. Снижение активности данного биокатализатора, выдержанного при 55°С в течение 15 мин, составляет менее 5%. Расчетный период полуинактивации биокатализатора при 37°С составляет как минимум 500 ч. При внутривенном введении ферментного биокатализатора в дозе 1 мг/кг клиренс у белых крыс (скорость выведения, CL) составляет 27,6 мл/ч. Специфические антитела к ферментному биокатализатору этого состава при его введении в указанной дозе в плазме крови исследованных животных отсутствуют.
Пример 2. Ферментный биокатализатор в виде наноразмерных частиц на основе His6-OPH и ПЭГ-ПГК10 в зарядовом соотношении 1:1.
К очищенному ферменту His6-OPH, находящемуся в 50 мМ фосфатно-солевом буфере (рН 7,5) в концентрации 1 г/л, добавляют 20 г/л водный раствор ПЭГ119-ПГК10 (MW=6.5 кг/моль) так, чтобы концентрация блок-сополимера составила 0,45 г/л. Приготовленную смесь оставляют при температуре +8°С на 40 мин для формирования ферментного биокатализатора в виде нековалентного полиэлектролитного комплекса с зарядовым соотношением фермента и блок-сополимера 1:1.
Полученный ферментный биокатализатор имеет размер частиц 30±5 нм, обладает каталитической константой действия по фосфорорганическому пестициду Паратиону 1040±80 с-1, константой Михаэлиса 20,1±1,7 мкМ и константой эффективности действия (5,2±0,8)×107 M-1c-1, функционирует в диапазоне рН 7,0-12,0 и температур 15-60°С. Каталитическая константа действия по фосфорорганическому пестициду Диазинону составляет 85,6±5,1 с-1, константа Михаэлиса - 202±13 мкМ и константа эффективности действия - (4,2±0,5)×105 М-1с-1. Снижение активности данного биокатализатора, выдержанного при 55°С в течение 15 мин, составляет менее 3%. При внутривенном введении ферментного биокатализатора в дозе 1 мг/кг клиренс у белых крыс (скорость выведения, CL) составляет 28,2 мл/ч. Специфические антитела к ферментному биокатализатору этого состава при его введении в указанной дозе в плазме крови исследованных животных отсутствуют.
Пример 3. Ферментный биокатализатор в виде наноразмерных частиц на основе His6-OPH и ПЭГ-ПГК50 в зарядовом соотношении 1:2.
К очищенному ферменту His6-OPH, находящемуся в 100 мМ карбонатном буфере (рН 9,5) в концентрации 1 г/л, добавляют 20 г/л водный раствор ПЭГ119-ПГК50 (MW=13 кг/моль) так, чтобы концентрация блок-сополимера составила 0,36 г/л. Приготовленную смесь оставляют при температуре 30°С на 20 мин для формирования ферментного биокатализатора в виде нековалентного полиэлектролитного комплекса с зарядовым соотношением фермента и блок-сополимера 1:2.
Полученный ферментный биокатализатор имеет размер частиц 28±3 нм, обладает каталитической константой действия по фосфорорганическому пестициду Метилпаратиону 309±15 с-1, константой Михаэлиса 34,5±1,9 мкМ и константой эффективности действия (9,0±0,9)×106 M-c-1, функционирует в диапазоне рН 7,0-12,0 и температур 15-60°С. Снижение активности данного биокатализатора, выдержанного при 55°С в течение 15 мин, составляет менее 4%. При внутривенном введении ферментного биокатализатора в дозе 1 мг/кг клиренс у белых крыс (скорость выведения, CL) составляет 32,2 мл/ч. Специфические антитела к ферментному биокатализатору этого состава при его введении в указанной дозе в плазме крови исследованных животных отсутствуют.
Пример 4. Ферментный биокатализатор в виде наноразмерных частиц на основе His6-OPH и ПЭГ-ПГК50 в зарядовом соотношении 1:5.
К очищенному ферменту His6-OPH, находящемуся в 50 мМ карбонатном буфере (рН 10,5) в концентрации 1 г/л, добавляют 20 г/л водный раствор ПЭГ119-ПГК50 (MW=13 кг/моль) так, чтобы концентрация блок-сополимера составила 0,9 г/л. Приготовленную смесь оставляют при температуре 20°С на 30 мин для формирования ферментного биокатализатора в виде нековалентного полиэлектролитного комплекса с зарядовым соотношением фермента и блок-сополимера 1:5.
Полученный ферментный биокатализатор имеет размер частиц 27±4 нм, обладает каталитической константой действия по фосфорорганическому пестициду Параоксону 4190±100 с-1, константой Михаэлиса 38,0±1,7 мкМ и константой эффективности действия (1,1±0,1)×10 М-1с-1, функционирует в диапазоне рН 7,0-12,0 и температур 15-60°С. Каталитическая константа действия по фосфорорганическому пестициду Кумафосу составляет 335±15 с-1, константа Михаэлиса - 350±20 мкМ и константа эффективности действия - (9,6±1,0)×10 М-1с-1. Снижение активности данного биокатализатора, выдержанного при 55°С в течение 15 мин, составляет менее 5%. При внутривенном введении ферментного биокатализатора в дозе 1 мг/кг клиренс у белых крыс (скорость выведения, CL) составляет 41,5 мл/ч. Специфические антитела к ферментному биокатализатору этого состава при его введении в указанной дозе в плазме крови исследованных животных отсутствуют.
Пример 5. Ферментный биокатализатор в виде наноразмерных частиц на основе His12-OPH и ПЭГ-ПГК50 в зарядовом соотношении 1:4.
К очищенному ферменту His12-OPH, находящемуся в 50 мМ фосфатном буфере (рН 8,0) в концентрации 1 г/л, добавляют 20 г/л водный раствор ПЭГ119-ПГК50 (MW=13 кг/моль) так, чтобы концентрация блок-сополимера составила 0,72 г/л. Приготовленную смесь оставляют при комнатной температуре на 30 мин для формирования ферментного биокатализатора в виде нековалентного полиэлектролитного комплекса с зарядовым соотношением фермента и блок-сополимера 1:4.
Полученный ферментный биокатализатор имеет размер частиц 30±5 нм, обладает каталитической константой действия по фосфорорганическому пестициду Параоксону 4008±235 с-1, константой Михаэлиса 253±40 мкМ и константой эффективности действия (1,6±0,3)×107 М-1с-1, функционирует в диапазоне рН 7,0-12,0 и температур 15-60°С. Снижение активности данного биокатализатора, выдержанного при 55°С в течение 15 мин, составляет менее 2%. При внутривенном введении ферментного биокатализатора в дозе 1 мг/кг клиренс у белых крыс (скорость выведения, CL) составляет 37,6 мл/ч. Специфические антитела к ферментному биокатализатору этого состава при его введении в указанной дозе в плазме крови исследованных животных отсутствуют.
Пример 6. Свойства заявляемого ферментного биокатализатора как антидота in vivo при детоксификации отравляющего вещества Vx.
Ферментный биокатализатор в виде нековалентного полиэлектролитного комплекса с зарядовым соотношением фермента и блок-сополимера 1:5, полученный как описано в Примере 1, вводят внутривенно белым крысам марки Sprague Dawley в дозе 1 мг/кг. Через 1 ч крысам внутривенно вводят вещество Vx в дозе LD50, фиксируют гибель 25,0% животных и наблюдают уменьшение количества погибших животных в 2 раза по сравнению с контрольной группой.
Ферментный биокатализатор в виде нековалентного полиэлектролитного комплекса с зарядовым соотношением фермента и блок-сополимера 1:5, полученный как описано в Примере 4, вводят внутривенно белым крысам марки Sprague Dawley в дозе 1 мг/кг. Через 1 ч крысам внутривенно вводят вещество Vx в дозе LD50, фиксируют гибель 16,7% животных и наблюдают уменьшение количества погибших животных в 3 раза по сравнению с контрольной группой.
Таким образом, заявляемое изобретение в сравнении с известными аналогами и прототипом характеризуется:
- существенным упрощением технологии получения, не требующей применения сшивающих химических агентов, формирующих ковалентные связи между функциональными группами фермента и полимера, модифицирующего белковую поверхность;
- получение нековалентных комплексов вместо ковалентных, как основы формирования заявляемого ферментного биокатализатора, а также применение более каталитически активного, чем ОРН, полигистидин-содержащего полипептида позволяет значительно увеличить каталитическую эффективность действия получаемых наночастиц;
- высокая активность заявляемого ферментного биокатализатора позволяет значительно снизить вводимую дозу, существенным образом улучшив экономическую сторону применения подобных антидотов и уменьшив возможность их иммунотоксичного эффекта;
- заявляемый ферментный биокатализатор характеризуется существенным снижением количества полимера, используемого для получения наноразмерных стабильных частиц (снижение соотношения фермент:полимер от 1:400-800, характерной для аналогов и прототипа до 1:5 в максимуме для предлагаемого решения), что также улучшает экономическую характеристику заявляемого ферментного биокатализатора;
- заявляемый ферментный биокатализатор обладает широким субстратным спектром действия в отношении ФОС и проявляет высокую активность в реакциях гидролиза пестицидов и отравляющих веществ (на примере вещества Vx) in vivo.

Claims (4)

1. Ферментный биокатализатор в виде наноразмерных частиц для детоксификации фосфорорганических соединений in vivo, отличающийся тем, что представляет собой нековалентные полиэлектролитные комплексы, состоящие из полигистидин-содержащего полипептида со свойствами органофосфатгидролазы и блок-сополимера полиэтиленгликоля и полиглутаминовой кислоты, взятых в зарядовом соотношении фермент:блок-сополимер в диапазоне от 2:1 до 1:5.
2. Ферментный биокатализатор по п.1, отличающийся тем, что полиэлектролитные комплексы представляют собой наночастицы размером 29±4 нм, сформированные при рН 7,5-10,5 и температуре +8-(+30)°С.
3. Ферментный биокатализатор по п.1, отличающийся тем, что молекулярная масса блок-сополимера находится в диапазоне 6,5-13 кг/моль.
4. Ферментный биокатализатор по п.1, отличающийся тем, что полиглутаминовая кислота имеет степень полимеризации 50-100, полиэтиленгликоль - 119.
RU2012139201/10A 2012-09-13 2012-09-13 НАНОРАЗМЕРНЫЙ ФЕРМЕНТНЫЙ БИОКАТАЛИЗАТОР ДЛЯ ДЕТОКСИФИКАЦИИ ФОСФОРОРГАНИЧЕСКИХ СОЕДИНЕНИЙ in vivo RU2525658C2 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2012139201/10A RU2525658C2 (ru) 2012-09-13 2012-09-13 НАНОРАЗМЕРНЫЙ ФЕРМЕНТНЫЙ БИОКАТАЛИЗАТОР ДЛЯ ДЕТОКСИФИКАЦИИ ФОСФОРОРГАНИЧЕСКИХ СОЕДИНЕНИЙ in vivo

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2012139201/10A RU2525658C2 (ru) 2012-09-13 2012-09-13 НАНОРАЗМЕРНЫЙ ФЕРМЕНТНЫЙ БИОКАТАЛИЗАТОР ДЛЯ ДЕТОКСИФИКАЦИИ ФОСФОРОРГАНИЧЕСКИХ СОЕДИНЕНИЙ in vivo

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2012139201A RU2012139201A (ru) 2014-03-27
RU2525658C2 true RU2525658C2 (ru) 2014-08-20

Family

ID=50342590

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2012139201/10A RU2525658C2 (ru) 2012-09-13 2012-09-13 НАНОРАЗМЕРНЫЙ ФЕРМЕНТНЫЙ БИОКАТАЛИЗАТОР ДЛЯ ДЕТОКСИФИКАЦИИ ФОСФОРОРГАНИЧЕСКИХ СОЕДИНЕНИЙ in vivo

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2525658C2 (ru)

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2575627C1 (ru) * 2014-12-18 2016-02-20 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова" (МГУ) ФЕРМЕНТНЫЙ БИОКАТАЛИЗАТОР ДЛЯ НЕЙТРАЛИЗАЦИИ ФОСФОРОРГАНИЧЕСКИХ СОЕДИНЕНИЙ in vivo
RU2615176C1 (ru) * 2015-12-24 2017-04-04 Елена Николаевна Ефременко Криосформированный ферментный биокатализатор для детоксификации фосфорорганических соединений
RU2648169C1 (ru) * 2017-01-16 2018-03-22 Елена Николаевна Ефременко Ферментный биокатализатор с антиоксидантной активностью для детоксификации фосфорорганических соединений

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2261911C1 (ru) * 2004-03-18 2005-10-10 Ефременко Елена Николаевна Способ получения биокатализатора и биокатализатор для детоксикации фосфорорганических соединений
RU2451077C1 (ru) * 2011-01-12 2012-05-20 Химический Факультет Московского Государственного Университета Имени М.В. Ломоносова Способ ферментативного гидролиза фосфорорганических соединений в почвогрунте

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2261911C1 (ru) * 2004-03-18 2005-10-10 Ефременко Елена Николаевна Способ получения биокатализатора и биокатализатор для детоксикации фосфорорганических соединений
RU2451077C1 (ru) * 2011-01-12 2012-05-20 Химический Факультет Московского Государственного Университета Имени М.В. Ломоносова Способ ферментативного гидролиза фосфорорганических соединений в почвогрунте

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
PETRIKOVICS I., et al., Enzyme-based intravascular defense against organophosphoms neurotoxins: Synergism of dendritic-enzyme complexes with 2-PAM and atropine. // Nanotoxicology, 2005, V.1(2), p.85-92. *
ЕФРЕМЕНКО Е.Н., Гетерогенные биокатализаторы на основе иммобилизованных клеток микроорганизмов: фундаментальные и прикладные аспекты, Автореферат, 2009, Москва, стр.28-33. ЛЯГИН И.В., Иммобилизованные биокатализаторы на основе полигистидинсодержащих производных органофосфатгидролазы: получение и свойства, Автореферат, 2009, Москва, стр.5-20 *

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2575627C1 (ru) * 2014-12-18 2016-02-20 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова" (МГУ) ФЕРМЕНТНЫЙ БИОКАТАЛИЗАТОР ДЛЯ НЕЙТРАЛИЗАЦИИ ФОСФОРОРГАНИЧЕСКИХ СОЕДИНЕНИЙ in vivo
RU2615176C1 (ru) * 2015-12-24 2017-04-04 Елена Николаевна Ефременко Криосформированный ферментный биокатализатор для детоксификации фосфорорганических соединений
RU2648169C1 (ru) * 2017-01-16 2018-03-22 Елена Николаевна Ефременко Ферментный биокатализатор с антиоксидантной активностью для детоксификации фосфорорганических соединений
RU2780376C2 (ru) * 2022-02-25 2022-09-22 Елена Николаевна Ефременко Самоочищающийся материал со свойствами химико-биологической защиты

Also Published As

Publication number Publication date
RU2012139201A (ru) 2014-03-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Efremenko et al. A simple and highly effective catalytic nanozyme scavenger for organophosphorus neurotoxins
Lenz et al. Stoichiometric and catalytic scavengers as protection against nerve agent toxicity: a mini review
Çokuğraş Butyrylcholinesterase: structure and physiological importance
Nachon et al. Progress in the development of enzyme-based nerve agent bioscavengers
Zhang et al. Butyrylcholinesterase nanocapsule as a long circulating bioscavenger with reduced immune response
CN107530285B (zh) 使用纳米粒子解毒
Wales et al. Organophosphorus hydrolase as an in vivo catalytic nerve agent bioscavenger
Iyengar et al. Organophosphate-hydrolyzing enzymes as first-line of defence against nerve agent-poisoning: perspectives and the road ahead
Katyal et al. Enhancing organophosphate hydrolase efficacy via protein engineering and immobilization strategies
Wong et al. Shielded α-nucleophile nanoreactor for topical decontamination of reactive organophosphate
Bajaj et al. Refolded recombinant human paraoxonase 1 variant exhibits prophylactic activity against organophosphate poisoning
Zou et al. Dual-modal nanoscavenger for detoxification of organophosphorus compounds
AU2007281998B2 (en) Long half-life recombinant butyrylcholinesterase
RU2525658C2 (ru) НАНОРАЗМЕРНЫЙ ФЕРМЕНТНЫЙ БИОКАТАЛИЗАТОР ДЛЯ ДЕТОКСИФИКАЦИИ ФОСФОРОРГАНИЧЕСКИХ СОЕДИНЕНИЙ in vivo
Atsmon et al. Preclinical and first-in-human evaluation of PRX-105, a PEGylated, plant-derived, recombinant human acetylcholinesterase-R
Petrikovics et al. Nano-intercalated organophosphorus-hydrolyzing enzymes in organophosphorus antagonism
Bird et al. Enzymes and bioscavengers for prophylaxis and treatment of organophosphate poisoning
Qin et al. Enzyme-armed nanocleaner provides superior detoxification against organophosphorus compounds via a dual-action mechanism
US20110064716A1 (en) Materials and methods for treating or preventing organophosphate exposure associated damage
Thakur et al. Packaging of diisopropyl fluorophosphatase (DFPase) in bacterial outer membrane vesicles protects its activity at extreme temperature
Lenz et al. Nerve agent bioscavengers: protection against high-and low-dose organophosphorus exposure
Mohamed et al. Transitioning from oxime to the next potential organophosphorus poisoning therapy using enzymes
Saxena et al. Novel approaches to medical protection against chemical warfare nerve agents
Mazor et al. Aging-resistant organophosphate bioscavenger based on polyethylene glycol-conjugated F338A human acetylcholinesterase
Ma et al. N-terminal PEGylation enhances organophosphorus hydrolase catalysis for a promising fast and long-acting prophylactic candidate