RU2492235C1 - Rubella virus strain "orlov" (u) for obtaining medicinal immuno-biological preparations (mibp) - Google Patents

Rubella virus strain "orlov" (u) for obtaining medicinal immuno-biological preparations (mibp) Download PDF

Info

Publication number
RU2492235C1
RU2492235C1 RU2012128778/10A RU2012128778A RU2492235C1 RU 2492235 C1 RU2492235 C1 RU 2492235C1 RU 2012128778/10 A RU2012128778/10 A RU 2012128778/10A RU 2012128778 A RU2012128778 A RU 2012128778A RU 2492235 C1 RU2492235 C1 RU 2492235C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
orlov
strain
rubella
virus
rubella virus
Prior art date
Application number
RU2012128778/10A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Ирина Николаевна Лаврентьева
Лариса Петровна Сухобаевская
Анатолий Борисович Жебрун
Original Assignee
Федеральное бюджетное учреждение науки "Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Пастера"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное бюджетное учреждение науки "Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Пастера" filed Critical Федеральное бюджетное учреждение науки "Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Пастера"
Priority to RU2012128778/10A priority Critical patent/RU2492235C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2492235C1 publication Critical patent/RU2492235C1/en

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: strain was deposited under number V-1 in the collection "SCPM-Obolensk". The strain may be used to produce monovalent rubella vaccine, associated combined vaccines comprising the vaccine strain of rubella virus, as well as for production of diagnostic products.
EFFECT: strain has a high reproductive, hemagglutinating and immunogenic activity.
3 tbl, 2 ex

Description

Изобретение относится к области медицинской биотехнологии и может быть использовано при получении моновакцины против краснухи и ассоциированных вакцин, содержащих краснушный компонент, а также для получения диагностических препаратов.The invention relates to the field of medical biotechnology and can be used to obtain a single rubella vaccine and associated vaccines containing the rubella component, as well as to obtain diagnostic drugs.

В настоящее время наиболее известен вакцинный штамм вируса краснухи Wistar RA27/3 S.Plotkin), который используется как для получения вакцин, так и для разработки диагностических препаратов. Установлено, что вакцины из штамма Wistar RA27/3 вызывают 40% артралгий у взрослых (Banatlava J.E., Brown D.W. Rubella/Lancet, 2004, v.3663 p.1127-1137). Установлено также, что штамм Wistar RA27/3 относится к вирусам краснухи 1-ой генетической линии, тогда как для территории РФ, по данным ВОЗ, эндемичными считаются штаммы 2-ой генетической линии, а именно генотип 2С (World Health Organization. Global distribution of measles and rubella genotypes-update/VWkly. Epidemiol. Rec. - 2006. - V.81(51/52). - P.474-479)Currently, the most known vaccine strain of the rubella virus Wistar RA27 / 3 S.Plotkin), which is used both for vaccines and for the development of diagnostic drugs. It was found that vaccines from the Wistar strain RA27 / 3 cause 40% arthralgia in adults (Banatlava J.E., Brown D.W. Rubella / Lancet, 2004, v. 3663 p.1127-1137). It was also established that the Wistar RA27 / 3 strain belongs to rubella viruses of the first genetic line, while for the territory of the Russian Federation, according to WHO, strains of the second genetic line, namely genotype 2C, are considered to be endemic (World Health Organization. Global distribution of measles and rubella genotypes-update / VWkly. Epidemiol. Rec. - 2006. - V.81 (51/52) .- P.474-479)

Известен также штамм вируса краснухи «Орлов-Д» и способ получения вакцины против краснухи на диплоидной линии клеток «М-22» (патент №2173344, приоритет от 28.06.1999 г.) Однако, штамм «Орлов-Д», адаптирован к фибробластам эмбриона человека. Полученные на его основе диагностические препараты высокой чувствительности (антигены для иммуноферментного и иммунофлуоресцентного анализа) могут вызывать ложно-положительные реакции из-за наличия в конечном продукте антигенов человеческого происхожденияAlso known is the strain of rubella virus "Orlov-D" and a method for producing a vaccine against rubella in the diploid cell line "M-22" (patent No. 2173344, priority from 06/28/1999) However, the strain "Orlov-D" is adapted to fibroblasts human embryo. Diagnostic preparations of high sensitivity obtained on its basis (antigens for enzyme immunoassay and immunofluorescence analysis) can cause false-positive reactions due to the presence of antigens of human origin in the final product

Наиболее близким к заявляемому является вакцинный штамм вируса краснухи "Орлов-В» (патент РФ №2081912, приоритет 22 мая 1995 г.). Штамм получен путем многократного пассирования в первичной культуре клеток почки кролика (ППК) с последующим клонированием методом предельных разведений и селекцией по признаку снижения репродукционной активности при температуре 40°C. Культурально-морфологические, физико-биологические признаки, антигенные свойства штамма раскрыты в описании к патенту. Однако данный штамм обладает недостаточно высокой иммуногенностью.Closest to the claimed vaccine strain of the rubella virus "Orlov-B" (RF patent No. 2081912, priority May 22, 1995). The strain was obtained by repeated passivation in primary culture of rabbit kidney cells (BPC), followed by cloning by limiting dilution and selection on the basis of a decrease in reproductive activity at a temperature of 40 ° C. Cultural-morphological, physico-biological characteristics, antigenic properties of the strain are disclosed in the patent description. However, this strain does not have a sufficiently high immunogenicity Strongly.

Изобретение направлено на создание универсального штамма, пригодного для использования в производстве краснушных вакцин и диагностических препаратов для диагностики краснухи на территории РФThe invention is aimed at creating a universal strain suitable for use in the production of rubella vaccines and diagnostic preparations for the diagnosis of rubella in the Russian Federation

Технический результат - повышенная репродуктивная, гемагглютинирующая и имуногенная активность штамма без реверсии патогенных свойств, а также расширение области его применения.EFFECT: increased reproductive, hemagglutinating and immunogenic activity of a strain without reversing pathogenic properties, as well as expanding the field of its application.

Для достижения указанного технического результата авторы внесли изменения в технологию культивирования штамма. В качестве продуцента МИБП использован штамм вируса краснухи "Орлов-В" после десятилетнего хранения. Авторы изменили условия заражения клеток-продуцентов и многократно пассировали вирус в измененных условиях.To achieve the specified technical result, the authors made changes to the technology of cultivation of the strain. As a producer of MIBP, the rubella virus strain Orlov-B was used after ten years of storage. The authors changed the conditions of infection of producer cells and repeatedly passaged the virus under modified conditions.

Вакцинный штамм «Орлов-В» получен при суспензионном способе заражения клеточной культуры ППК. В таких условиях заражения возможность для адсорбции на поверхности клеточных мембран имеют все вирусные частицы, не зависимо от их репродукционной активности, поскольку заражающий материал не удаляется. Следствием чего является получение популяции вирусных частиц, различающихся по репродукционным свойствам. Для получения однородной популяции с заданным свойством высокой репродукционной активности суспензионный способ заменен заражением клеток на сформированный монослой клеток с временем адсорбции, равным 20 мин. В этих условиях преимущество для прикрепления к клеточным рецепторам имеют вирусные частицы с наибольшей репродукционной активностью. В гетерогенной популяции исходного «дикого» вируса краснухи способность определенной доли вирусных частиц к активной репродукции в клетках хозяина обеспечивает реализацию патогенных свойств вируса. Для получения штамма «Орлов» (U) использовали штамм-продуцент «Орлов-В», аттенуированный многократным пассированием в иной системе хозяйских клеток (культура ППК). Это позволяет рассчитывать на высокую иммуногенную активность полученного штамма без реверсии патогенных свойств.The vaccine strain "Orlov-B" obtained by the suspension method of infection of the cell culture of the AUC. Under such infection conditions, all viral particles have the opportunity for adsorption on the surface of cell membranes, regardless of their reproductive activity, since the infectious material is not removed. The consequence of this is to obtain a population of viral particles that differ in reproductive properties. To obtain a homogeneous population with a given property of high reproductive activity, the suspension method is replaced by infection of the cells with a formed monolayer of cells with an adsorption time of 20 minutes. Under these conditions, viral particles with the highest reproductive activity have an advantage for attachment to cell receptors. In the heterogeneous population of the initial “wild” rubella virus, the ability of a certain proportion of viral particles to actively reproduce in the host cells ensures the realization of the pathogenic properties of the virus. To obtain the strain “Orlov” (U), the producer strain “Orlov-B” was used, attenuated by repeated passaging in another system of host cells (PPC culture). This allows you to count on the high immunogenic activity of the obtained strain without reversing the pathogenic properties.

В результате получен штамм «Орлов» (U) с измененными свойствами: высокими показателями репродуктивной, гемагглютинирующей и иммуногенной активности.As a result, the Orlov (U) strain was obtained with altered properties: high reproductive, hemagglutinating, and immunogenic activity.

Штамм «Орлов» (U) прошел лабораторные испытания на подлинность, специфическую активность и отсутствие контаминирующих агентов.Strain "Orlov" (U) passed laboratory tests for authenticity, specific activity and the absence of contaminating agents.

Штамм «Орлов» (U) депонирован в Государственную коллекцию патогенных микроорганизмов и клеточных культур «ГКПМ-Оболенск» для целей национальной патентной процедуры. Регистрационный номер V-1 от 18.01.2011 г. №169а.Strain "Orlov" (U) was deposited in the State collection of pathogenic microorganisms and cell cultures "GKPM-Obolensk" for the purposes of the national patent procedure. Registration number V-1 dated January 18, 2011 No. 169a.

Таксономическое положение штамма «Орлов» (U): семейство Togaviridae, род Rubivirus.Taxonomic position of the Orlov strain (U): Togaviridae family, genus Rubivirus.

Штамм "Орлов" (U) характеризуется следующими признаками.Strain "Eagles" (U) is characterized by the following features.

Культурально-морфологические признаки. При электронном микроскопировании популяция представляет однородные сферические частицы с диаметром 50-70 нм. Плавучая плотность в градиенте сахарозы 1,18-1,20 г/см3. Размножается с развитием цитодеструктивного действия до титра 5-6 lg ТЦД50/0,5 мл в клеточных культурах животных и человека. Слабо размножается в первичных тканевых культурах куриных и перепелиных фибробластов. При роллерном или суспензионном способах культивирования на клетках ВНК-21 выход вирусной биомассы 7-8 lg ТЦЦ50/0,5 мл. Не размножается при температуре ниже 20°C и выше 40°C. Оптимальная температура культивирования в тканевых культурах +35°C.Cultural and morphological characters. By electron microscopy, the population is homogeneous spherical particles with a diameter of 50-70 nm. A floating density in the sucrose gradient of 1.18-1.20 g / cm 3 . Propagated with the development of cyto-destructive action to a titer of 5-6 lg TCD 50 / 0.5 ml in cell cultures of animals and humans. It is poorly propagated in primary tissue cultures of chicken and quail fibroblasts. When using roller or suspension methods of culturing on BHK-21 cells, the output of viral biomass is 7-8 lg TCC 50 / 0.5 ml. Does not breed at temperatures below 20 ° C and above 40 ° C. The optimum cultivation temperature in tissue cultures is + 35 ° C.

Физиолого-биохимические признаки. Оптимум pH=7,4. Инактивируется в течение 30 мин при 56°C. Чувствителен к действию эфира и ацетона.Physiological and biochemical characteristics. Optimum pH = 7.4. Inactivated for 30 min at 56 ° C. Sensitive to ether and acetone.

Антигенные свойства. Гемагглютинирующая активность in vitro составляет 16-32 ГАЕ. Агглютинирует эритроциты голубей, 1-дневных цыплят, человека с группой крови 0.Antigenic properties. The in vitro hemagglutinating activity is 16-32 GAE. Agglutinates the red blood cells of pigeons, 1-day-old chickens, a person with a blood group of 0.

Токсичность. Штамм не токсичен при введении морским свинкам и мышам в дозе 1000 ТЦД50/0,5 мл /1 прививочная доза человека.Toxicity. The strain is not toxic when administered to guinea pigs and mice at a dose of 1000 TCD 50 / 0.5 ml / 1 human inoculation dose.

Штамм не обладает остаточной нейровирулентностью и контагиозностью.The strain does not have residual neurovirulence and contagiousness.

Иммуногенные свойства. При однократном внутримышечном введении препарата из штамма «Орлов» (U) обезьянам макака - резус наблюдается 100% сероконверсия с обратными значениями титра антител в РТГА от 640 до 1280 ГАЕ.Immunogenic properties. With a single intramuscular injection of the drug from the Orlov strain (U) to rhesus monkeys, rhesus monkeys exhibit 100% seroconversion with inverse antibody titer values in RTGA from 640 to 1280 GAE.

Пример 1. Способ получения штамма «Орлов» (U).Example 1. A method of obtaining a strain of "Eagles" (U).

Из 1-литровый матраца с сформированным монослоем тканевой культуры ППК удаляют ростовую среду 199, содержащую 10% сыворотки эмбрионов коров (ЭС), монослой 6-кратно отмывают от сыворотки раствором Хенкса pH 7,4, после чего вносят 5 мл среды 199, содержащей вирус краснухи шт."Орлов-В" в заражающей дозе 0,01 ТЦД50/кл. и оставляют при комнатной температуре на 20 мин, покачивая матрац каждые 2-3 мин для орошения вируссодержащей жидкости (ВСЖ) всей поверхности монослоя клеток. Через 20 мин. ВСЖ удаляют, зараженные клетки заливают 150 мл поддерживающей среды 199 и инкубируют в термостате при температуре 34°C в течение 2 суток для селекции вирусных частиц с высокой адсорбционной и репродукционной активностью. Через 2 суток, не дожидаясь ЦПД, характерных для вируса краснухи, ВСЖ из матраца удаляют и используют для последующего заражения монослоя новой партии клеток ППК, которое осуществляют по описанной выше схеме. Такую процедуру заражения повторяют четыре раза. При последнем, четвертом заражении клеток ППК вирусом время инкубации при 34°C продлевают до 18 суток. Через каждые 2-3 суток, по мере нарастания цитопатогенных изменений клеточного монослоя, характерных для вируса краснухи (наблюдают под микроскопом), вируссодержащую жидкость сливают во флаконы и хранят под резиновой пробкой при (-20)°C для последующего использования, а в матрац добавляют 150 мл свежей поддерживающей среды 199 и культивируют при тех же условиях. В данном примере осуществляют 4-5 полезных съема вируса (активность вируса не менее 4 lg ТЦЦ50/0,5 мл).Growth medium 199 containing 10% serum of cow embryos (ES) is removed from a 1-liter mattress with a monolayer of tissue culture PPC; the monolayer is washed 6 times from serum with Hanks pH 7.4, after which 5 ml of 199 medium containing the virus are added rubella piece "Orlov-V" in an infectious dose of 0.01 TCD 50 / cell. and left at room temperature for 20 minutes, shaking the mattress every 2-3 minutes to irrigate the virus-containing liquid (VSL) of the entire surface of the cell monolayer. In 20 minutes. The VSL is removed, infected cells are poured into 150 ml of support medium 199 and incubated in an incubator at a temperature of 34 ° C for 2 days to select viral particles with high adsorption and reproduction activity. After 2 days, without waiting for the CPP characteristic of the rubella virus, VSL is removed from the mattress and used for subsequent infection of the monolayer of a new batch of cells of PPC, which is carried out according to the scheme described above. This infection procedure is repeated four times. With the last, fourth infection of PPC cells with the virus, the incubation time at 34 ° C is extended to 18 days. Every 2-3 days, as cytopathogenic changes in the cell monolayer characteristic of the rubella virus increase (observed under a microscope), the virus-containing liquid is poured into vials and stored under a rubber stopper at (-20) ° C for subsequent use, and added to the mattress 150 ml of fresh support medium 199 and cultured under the same conditions. In this example, 4-5 useful virus removals are carried out (virus activity of at least 4 lg TCC 50 / 0.5 ml).

Все операции выполняют в стерильных условиях. Выход вируса на различных на различных рабочих съемах представлен в табл.1.All operations are performed under sterile conditions. The output of the virus at different at different working stages is presented in table 1.

Как видно из табл.1 и описания к патенту РФ №2081912, новый штамм «Орлов» (U) обеспечивает больший выход инфекционного вируса (на 0,4-1,0 ТЦД50/0,5 мл), чем прототипный штамм «Орлов-В».As can be seen from table 1 and the description of the patent of the Russian Federation No. 2081912, the new strain "Orlov" (U) provides a greater yield of infectious virus (0.4-1.0 TCD 50 / 0.5 ml) than the prototype strain "Orlov -AT".

Вируссодержащий материал из индивидуальных вирусных сборов объединяют в объединенный вирусный сбор (ОВС), добавляют стабилизатор (желатину с сахарозой из расчета конечной концентрации 1 об%.). Полученный полуфабрикат вакцины разливают по 0,5 мл в ампулы и подвергают лиофильной сушке. При этом 500 мл полуфабриката сохраняют в жидком виде при (-20)°C для проведения лабораторных контролей.Virus-containing material from individual viral collections is combined into a combined viral collection (OVS), a stabilizer (gelatin with sucrose based on a final concentration of 1 vol%) is added. The resulting semi-finished vaccine is poured into 0.5 ml ampoules and subjected to freeze drying. In this case, 500 ml of the semi-finished product is stored in liquid form at (-20) ° C for laboratory controls.

После контроля на специфичность, стерильность и отсутствие посторонних агентов препарат из штамма «Орлов» (U) испытали на отсутствие остаточной нейровирулентности и иммуногенную активность на обезьянах макака-резус. Препаратом сравнения являлся прототип - вакцинный штамм «Орлов-В».After checking for specificity, sterility and the absence of extraneous agents, the drug from the Orlov strain (U) was tested for the absence of residual neurovirulence and immunogenic activity in rhesus monkeys. The comparison drug was a prototype - the vaccine strain Orlov-B.

Определение остаточной нейровирулентности. Для контроля отсутствия остаточной нейровирулентности 10 серонегативных к краснухе обезьян макака-резус были разделены на 2 группы по 5 особей в каждой.Determination of residual neurovirulence. To control the absence of residual neurovirulence, 10 rubus-rhesus monkeys rubus-resistant monkeys were divided into 2 groups of 5 individuals each.

Одну группу животных заражали препаратом из штамма «Орлов» (U), другую - из штамма «Орлов-В». Заражение проводили интрацеребрально. Перед началом эксперимента животных погружали в глубокий наркоз, который достигался внутримышечным введением 10% раствора гексенала из расчета 1,0 мл на 1,0 кг массы животного.One group of animals was infected with the drug from the Orlov strain (U), and the other from the Orlov-B strain. Infection was carried out intracerebrally. Before the experiment, the animals were immersed in deep anesthesia, which was achieved by intramuscular injection of 10% hexenal solution at the rate of 1.0 ml per 1.0 kg of animal weight.

Вируссодержащий материал вводили в объеме 0,25 мл в зрительный бугор каждого полушария головного мозга. Интрацеребральная доза соответствовала 10 прививочным дозам для человека и составляла 10000 ТЦЦ50/0,5 мл.Virus-containing material was injected in a volume of 0.25 ml into the visual tubercle of each hemisphere of the brain. The intracerebral dose corresponded to 10 vaccination doses for humans and amounted to 10,000 SCC 50 / 0.5 ml.

Клиническое наблюдение за обезьянами проводили в течение 30 суток, на протяжении которых никаких клинических симптомов поражения центральной нервной системы не регистрировали.Clinical monitoring of the monkeys was carried out for 30 days, during which no clinical symptoms of damage to the central nervous system were recorded.

Морфологические и гистологические исследования тканей и органов обезьян.Morphological and histological studies of tissues and organs of monkeys.

Головной и спинной мозг фиксировали в 10% нейтральном формалине. Блоки фиксированной нервной ткани заливали в парафин и приготовляли серийные срезы толщиной 8-10 мк, которые окрашивали тионином по методу Ниссля. Исследованию подлежали передняя центральная извилина, задняя центральная извилина правого полушария головного мозга, зрительный бугор, продолговатый мозг; шейное и поясничное утолщение спинного мозга. Структуры ЦНС идентифицировали при микроскопическом исследовании по стереотаксическому атласу мозга обезьян (Spinder R.S., Lee С. Stereotaxic Atlas of Monkey Brain Macaca Mulatta/AJniversity of Chicago Press, Chicago, USA - 1961. - 287 p.). Тест считался действительным, если не менее чем у 80% зараженных обезьян через 28 суток после заражения регистрировали образование вирусспецифических антител.The brain and spinal cord were fixed in 10% neutral formalin. Blocks of fixed nerve tissue were embedded in paraffin and serial sections were prepared with a thickness of 8-10 microns, which were stained with thionine according to the Nissl method. The anterior central gyrus, the posterior central gyrus of the right hemisphere of the brain, the optic tubercle, the medulla oblongata were subject to research; cervical and lumbar thickening of the spinal cord. CNS structures were identified by microscopic examination of the stereotactic atlas of the brain of monkeys (Spinder R.S., Lee C. Stereotaxic Atlas of Monkey Brain Macaca Mulatta / AJniversity of Chicago Press, Chicago, USA - 1961. - 287 p.). The test was considered valid if the formation of virus-specific antibodies was recorded in at least 80% of infected monkeys 28 days after infection.

Морфологическое исследование. На вскрытии мозговых оболочек, а также ткани головного и спинного мозга с поверхности и на разрезе, как и при осмотре серозных полостей никаких патологических изменений ни у одного из животных каждой из двух групп обнаружено не было. При гистологическом исследовании в тканях головного и спинного мозга каждого подопытного животного патологических изменений в нейронах и глиальных клетках в исследованных областях ни в одном случае выявлено не было. Нервные клетки имели четкие контуры, светлое пузырьковидное ядро с крупной центрально расположенной нуклеолой и отчетливые глыбки нисслевского вещества в цитоплазме.Morphological study. At the dissection of the meninges, as well as the tissue of the brain and spinal cord from the surface and in the section, as well as during examination of the serous cavities, no pathological changes were found in any of the animals in each of the two groups. During histological examination in the tissues of the brain and spinal cord of each experimental animal, pathological changes in neurons and glial cells in the studied areas were not detected in any case. Nerve cells had clear contours, a light vesicular nucleus with a large centrally located nucleolus, and distinct lumps of Nisslev substance in the cytoplasm.

Таким образом, штаммы вируса краснухи «Орлов» (U) и «Орлов-В» не являются нейровирулентными, поскольку: у зараженных обезьян отсутствовали клинические признаки поражения неровной системы в течение всего периода наблюдения; при гистологическом исследовании тканей головного мозга зараженных обезьян отсутствовали поражения нейронов и глии вне зоны инокуляционной травмы; при исследовании сыворотки крови зараженных животных в РТГА в 100% случаев регистрировали антитела к вирусу краснухи, что подтверждает факт заражения. Следовательно, штамм «Орлов» (U) сохранил признак отсутствия нейровирулентности, присущий прототипу.Thus, the rubella virus strains Orlov (U) and Orlov-B are not neurovirulent because: the infected monkeys did not have clinical signs of damage to the uneven system during the entire observation period; a histological examination of the brain tissue of infected monkeys showed no damage to neurons and glia outside the zone of inoculation trauma; when examining the blood serum of infected animals in rtga in 100% of cases, antibodies to rubella virus were recorded, which confirms the fact of infection. Therefore, the strain "Eagles" (U) retained the sign of the absence of neurovirulence inherent in the prototype.

При испытании на иммуногенность 20 серонегативных к краснухе обезьян макака-резус были разделены на две группы по 10 животных в каждой. Одну группу животных прививали препаратом из штамма «Орлов», другую -из штамма «Орлов-В». Иммуногенную активность регистрировали через 28 суток после однократного внутримышечного введения обезьянам 0,5 мл препаратов из исследуемых штаммов. Прививочная доза соответствовала 1 прививочной дозе для человека - не менее 1000 ТЦД50. Определение титров антител в сыворотке крови иммунизированных обезьян проводили в РТГА. Все сыворотки крови были зашифрованы и исследовались одновременно. Результаты представлены в таблице 2. Как видно из таблицы, сероконверсии составляют 100% как в группе животных, привитых известным штаммом вируса краснухи «Орлов-В», так и предлагаемым штаммом «Орлов». Однако, титры антител у животных, привитых предлагаемым штаммом определялись в диапазоне 1:320-1:1280, тогда как у животных, привитых прототипным штаммом, титры антител накапливались до уровня 1:80 и выше, но не превышали значения 1:320. Средняя геометрическая титра антител составила в 1:559 для предлагаемого штамма против 1:215 для штамма-прототипа, то есть иммуногенная активность предлагаемого штамма существенно выше, чем у штамма-протипа.In an immunogenicity test, 20 rubella-rhesus monkeys rubella were divided into two groups of 10 animals each. One group of animals was inoculated with the drug from the Orlov strain, the other from the Orlov-B strain. Immunogenic activity was recorded 28 days after a single intramuscular injection of 0.5 ml of drugs from the studied strains to the monkeys. The vaccination dose corresponded to 1 vaccination dose for humans - at least 1000 TCD50. Determination of antibody titers in the blood serum of immunized monkeys was performed in rtga. All blood serums were encrypted and examined simultaneously. The results are presented in table 2. As can be seen from the table, seroconversion is 100% in the group of animals vaccinated with the known strain of rubella virus "Orlov-B", and the proposed strain of "Orlov". However, antibody titers in animals vaccinated with the proposed strain were determined in the range of 1: 320-1: 1280, whereas in animals vaccinated with the prototype strain, antibody titers accumulated to a level of 1:80 and higher, but did not exceed the value of 1: 320. The geometric mean antibody titer was 1: 559 for the proposed strain versus 1: 215 for the prototype strain, that is, the immunogenic activity of the proposed strain was significantly higher than that of the prototype strain.

Контагиозность штамма «Орлов» оценивали после 28 суток тесного контакта (нахождение в одной клетке) иммунизированных и не иммунных к краснухе обезьян. Как видно из таблицы 3, штамм «Орлов» утратил контагиозность, так как в сыворотке крови не привитых животных не определяли краснухо-специфичные антигемагглютинины.The contagiousness of the Orlov strain was evaluated after 28 days of close contact (being in the same cage) of monkeys immunized and not immune to rubella. As can be seen from table 3, the strain "Orlov" has lost contagiousness, since rubella-specific antihemagglutinins were not determined in the blood serum of unvaccinated animals.

Пример 2. Получение краснушного диагностикума для РТГА. Две партии клеток ППК использовали для заражения штаммом-прототипом «Орлов-В» и предлагаемым штаммом «Орлов» (U). Накопление вируссодержащего материала производили в литровых матрацах с монослоем клеток ППК, как описано в примере 1, заражая одну парию клеток штаммом «Орлов» (U), другую - штаммом «Орлов-В». Через 18 суток инкубации при 34°C матрацы с зараженной клеточной культурой 3-кратно замораживали в смеси сухого льда со спиртом с последующим оттаиванием при температуре 35°C. Культуральную среду вместе с клетками сливали во флаконы, центрифугировали при 2000 об/мин в течение 20 мин и титровали отдельные пробы надосадочной жидкости в РГА с использованием эритроцитов односуточных цыплят для определения титров гемагглютинина. Вируссодержащий материал с титром не менее 4 ГАЕ в 0,05 мл объединяли и помещали в плоскодонную колбу, куда добавляли предварительно разведенный в 10 раз дистиллированной водой твин-80 до конечной концентрации 2% и помещали на магнитную мешалку для перемешивания в течение 15 мин при +4°C. Затем к смеси добавляли эфир в объеме, равном ½ объема вируссодержащей жидкости и перемешивали далее в течение 15 мин в тех же условиях. Полученную суспензию центрифугировали при 2000 об/мин в течение 30 мин. После центрифугирования осторожно отсасывали пипеткой слой жидкости, находящийся под слоем эфирной желеобразной массы, переносили его в открытые емкости для удаления остатков эфира и в полученный материал добавляли мертиолят натрия до конечной концентрации 1:10000. Полученный таким образом полуфабрикат диагностикума подвергали лиофильной сушке. Титр гемагглютинина в полученном по описываемому методу диагностикуме составил: для препарата из предлагаемого штамма «Орлов» (U) - 128-256 ГАЕ. В препарате из штамма «Орлов-В» гемагглютинирующая активность осталась на уровне 4-8 ГАЕ. Штамм «Орлов-В» представлен популяцией с преобладанием частиц, дефектных по признаку гемагглютинирующей активности, что исключает возможность его использования для промышленного производства гемагглютинирующего антигена, в отличие от предлагаемого штамма «Орлов» (U).Example 2. Obtaining rubella diagnosticum for rtga. Two batches of PPC cells were used for infection with the Orlov-B prototype strain and the proposed Orlov strain (U). The accumulation of virus-containing material was carried out in liter mattresses with a monolayer of PPC cells, as described in Example 1, infecting one cell pair with the Orlov strain (U), and the other with the Orlov-B strain. After 18 days of incubation at 34 ° C, mattresses with infected cell culture were 3 times frozen in a mixture of dry ice with alcohol, followed by thawing at a temperature of 35 ° C. The culture medium together with the cells was poured into vials, centrifuged at 2000 rpm for 20 min, and individual samples of the supernatant were titrated in the RGA using red blood cells of one-day-old chickens to determine hemagglutinin titers. Virus-containing material with a titer of at least 4 GAE in 0.05 ml was combined and placed in a flat-bottomed flask, to which tween-80 previously diluted 10 times with distilled water was added to a final concentration of 2% and placed on a magnetic stirrer for stirring for 15 min at + 4 ° C. Then ether was added to the mixture in a volume equal to ½ the volume of the virus-containing liquid and stirred further for 15 minutes under the same conditions. The resulting suspension was centrifuged at 2000 rpm for 30 minutes. After centrifugation, a layer of liquid under a layer of ethereal jelly was carefully aspirated with a pipette, transferred to open containers to remove ether residues, and sodium merthiolate was added to the resulting material to a final concentration of 1: 10000. Thus obtained semi-finished diagnosticum was subjected to freeze drying. The hemagglutinin titer in the diagnosticum obtained by the described method was: for the drug from the proposed strain "Orlov" (U) - 128-256 GAE. In the preparation from the Orlov-B strain, the hemagglutinating activity remained at the level of 4-8 GAE. Strain "Orlov-B" is represented by a population with a predominance of particles defective in terms of hemagglutinating activity, which excludes the possibility of its use for the industrial production of hemagglutinating antigen, in contrast to the proposed strain "Orlov" (U).

Как видно из приведенных примеров, использование предлагаемого штамма вместо прототипа позволяет сохранить безопасность использования (отсутствие остаточной нейровирулентности и контагиозности) и вместе с тем, повысить иммуногенность вакцины против краснухи. А также позволяет расширить область применения прототипа, а именно использовать в качестве производственного штамма для получения краснушного антигенного диагностикума.As can be seen from the above examples, the use of the proposed strain instead of the prototype allows you to save the safety of use (lack of residual neurovirulence and contagiousness) and, at the same time, increase the immunogenicity of the rubella vaccine. And also allows you to expand the scope of the prototype, namely to use as a production strain for obtaining rubella antigenic diagnosticum.

Таблица 1Table 1 Титры штамма «Орлов» (U) к примеру 1Titles of the strain "Eagles" (U) for example 1 Номер съема вирусаVirus Removal Number 1one 22 33 4four 55 66 Титр вируса в lg ТЦД50/0,5 млVirus titer in lg TCD 50 / 0.5 ml 4,84.8 5,75.7 6,56.5 6,46.4 4,54,5 3,93.9

Таблица 2table 2 Результаты сравнительного испытания иммуногенности вакцин из предлагаемого и известного штаммов вируса краснухиThe results of a comparative test of the immunogenicity of vaccines from the proposed and known strains of rubella virus No. Штамм, использованный для иммунизацииThe strain used for immunization Титры антител в РТГАAntibody titers in rtga 1one «Орлов» (U)Orlov (U) 1:3201: 320 22 «Орлов» (U)Orlov (U) 1:3201: 320 33 «Орлов» (U)Orlov (U) 1:6401: 640 4four «Орлов» (U)Orlov (U) 1:6401: 640 55 «Орлов» (U)Orlov (U) 1:12801: 1280 66 «Орлов» (U)Orlov (U) 1:3201: 320 77 «Орлов» (U)Orlov (U) 1:6401: 640 88 «Орлов» (U)Orlov (U) 1:12801: 1280 99 «Орлов» (U)Orlov (U) 1:6401: 640 1010 «Орлов» (U)Orlov (U) 1:3201: 320 11eleven «Орлов-В»Orlov-V 1:1601: 160 1212 «Орлов-В»Orlov-V 1:3201: 320 1313 «Орлов-В»Orlov-V 1:1601: 160 14fourteen «Орлов-В»Orlov-V 1:3201: 320 15fifteen «Орлов-В»Orlov-V 1:3201: 320 1616 «Орлов-В»Orlov-V 1:3201: 320 1717 «Орлов-В»Orlov-V 1:1601: 160 18eighteen «Орлов-В»Orlov-V 1:1601: 160 1919 «Орлов-В»Orlov-V 1:3201: 320 20twenty «Орлов-В»Orlov-V 1:801:80

Таблица 3Table 3 Титры антител в сыворотке крови обезьян, иммунизированных и не иммунизированных штаммом «Орлов» (U)Antibody titers in the blood serum of monkeys immunized and not immunized with the Orlov strain (U) № клеткиCell number Штамм, использованный для иммунизацииThe strain used for immunization Титры антител в РТГАAntibody titers in rtga 4four «Орлов» (U)Orlov (U) 1:6401: 640 4four КонтактнаяContact <1:10<1:10 55 «Орлов» (U)Orlov (U) 1:12801: 1280 55 КонтактнаяContact <1:10<1:10 88 «Орлов» (U)Orlov (U) 1:6401: 640 88 КонтактнаяContact <1:10<1:10

Claims (1)

Штамм вируса краснухи, семейство Togaviridae, род Rubivirus, коллекция «ГКПМ-Оболенск», регистрационный номер V-1 для получения медицинских иммунобиологических препаратов. Rubella virus strain, Togaviridae family, genus Rubivirus, GKPM-Obolensk collection, registration number V-1 for receiving medical immunobiological preparations.
RU2012128778/10A 2012-07-09 2012-07-09 Rubella virus strain "orlov" (u) for obtaining medicinal immuno-biological preparations (mibp) RU2492235C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2012128778/10A RU2492235C1 (en) 2012-07-09 2012-07-09 Rubella virus strain "orlov" (u) for obtaining medicinal immuno-biological preparations (mibp)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2012128778/10A RU2492235C1 (en) 2012-07-09 2012-07-09 Rubella virus strain "orlov" (u) for obtaining medicinal immuno-biological preparations (mibp)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2492235C1 true RU2492235C1 (en) 2013-09-10

Family

ID=49164886

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2012128778/10A RU2492235C1 (en) 2012-07-09 2012-07-09 Rubella virus strain "orlov" (u) for obtaining medicinal immuno-biological preparations (mibp)

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2492235C1 (en)

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2081912C1 (en) * 1995-05-22 1997-06-20 Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им.Пастера Strain of measles virus "orlov-b" for vaccine preparing
RU2173344C2 (en) * 1999-06-28 2001-09-10 Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Пастера Vaccine strain of measles virus "orlov-d" and method of preparing vaccine against measles

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2081912C1 (en) * 1995-05-22 1997-06-20 Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им.Пастера Strain of measles virus "orlov-b" for vaccine preparing
RU2173344C2 (en) * 1999-06-28 2001-09-10 Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Пастера Vaccine strain of measles virus "orlov-d" and method of preparing vaccine against measles

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
J.M.BEST, Rubella vaccines: past, present and future, Epidemiol. Infect., 1991, Vol.107, p.p.17-30. К.L. HERRMANN, Rubella in the United States: toward a strategy for disease control and elimination, Epidemiol. Infect., 1991, Vol.107, p.p.55-61. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US6048537A (en) Method for preparing an influenza virus, antigens obtained and applications thereof
CN101869702B (en) Vaccine produced by suspended microcarrier cell culture system and method for producing vaccine
CN105582533B (en) Avian influenza virus and avian adenovirus bivalent inactivated vaccine
KR20220042369A (en) Method for Growing African Swine Fever Virus in Fetal Pig Lung Alveolar Macrophage Cells
CN108721615A (en) A kind of method and its vaccine preparing duck tembusu virus inactivated vaccine
CN102805862B (en) Preparation method for SFTS bunyavirus purification and inactivation vaccines through VERO cell culture
RU2665849C1 (en) Inactivated emulsion vaccine against foot-and-mouth disease type o
RU2675535C1 (en) Achs/vniizzh/cv-1 strain of african swine fever, with decreased virulence for pigs, for virologic, diagnostic, molecular-genetic and surveillance studies
RU2492235C1 (en) Rubella virus strain &#34;orlov&#34; (u) for obtaining medicinal immuno-biological preparations (mibp)
RU2682876C1 (en) Inactivated emulsion vaccine for o-type aphthous fever
RU2560569C2 (en) Alekseevskiy strain of swinepox virus for virological, molecular-genetic, monitoring studies, production of vaccines and diagnostic preparations
Schwartz et al. Chronic Herpes Simplex Virus Infection: Initiation in Hamsters Upon Implantation of Infected Nonpermissive Glial Cells
RU2081912C1 (en) Strain of measles virus &#34;orlov-b&#34; for vaccine preparing
CN105866424A (en) Testing method for potency of inactivated vaccine against duck Tembusu viral diseases
AU2005253864B2 (en) Q fever vaccine preparation and method of producing the vaccine
RU2796987C1 (en) Yamal strain of avian influenza virus of alphainfluenzavirus genus of influenza a virus subtype h5n1 species for the manufacture of biological products for the specific prevention of avian influenza type a subtype h5
RU2184567C1 (en) Strain feline calicivirus used for control of immunogenic activity of vaccines, preparing specific curative-prophylaxis and diagnostic biopreparations
RU2802251C1 (en) Vaccine composition for the prevention of enzootic abortion in sheep
RU2665850C1 (en) Inactivated emulsion vaccine against foot-and-mouth disease type a
RU2798283C1 (en) Chlamydia vnitibp-21 chlamydia abortus strain for the production of immunobiological medicinal products
RU2801949C1 (en) Classical swine fever virus pestivirus strain &#34;ck&#34; for the manufacture of biological products for the specific prevention of classical swine fever
Chang et al. Vaccination Against Marek's Disease and Infectious Bursal Disease: 1. Development of a Bivalent Live Vaccine by Co-Cultivating Turkey Herpesvirus and Infectious Bursal Disease Vaccine Viruses in Chicken Embryo Fibroblast Monolayers
RU2449013C2 (en) Nadl-arriah virus strain of bovine viral diarrhoea for making biopreparations for diagnosis, specific prevention and treatment of bovine viral diarrhoea
US2773800A (en) Rabies vaccine production
RU2681815C1 (en) Inactivated sorptive foot-and-mouth disease type a vaccine

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20160710