RU2485182C1 - Method of indirect estimation of strains virulence of pathogenic burkholderia on grounds of cytopathogenicity - Google Patents

Method of indirect estimation of strains virulence of pathogenic burkholderia on grounds of cytopathogenicity Download PDF

Info

Publication number
RU2485182C1
RU2485182C1 RU2012102204/10A RU2012102204A RU2485182C1 RU 2485182 C1 RU2485182 C1 RU 2485182C1 RU 2012102204/10 A RU2012102204/10 A RU 2012102204/10A RU 2012102204 A RU2012102204 A RU 2012102204A RU 2485182 C1 RU2485182 C1 RU 2485182C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
strains
virulence
degree
cytopathogenicity
maceration
Prior art date
Application number
RU2012102204/10A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Елена Владимировна Молчанова
Наталья Петровна Агеева
Original Assignee
Федеральное казенное учреждение здравоохранения Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт Роспотребнадзора
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное казенное учреждение здравоохранения Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт Роспотребнадзора filed Critical Федеральное казенное учреждение здравоохранения Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт Роспотребнадзора
Priority to RU2012102204/10A priority Critical patent/RU2485182C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2485182C1 publication Critical patent/RU2485182C1/en

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: as an object for indirect estimation apparently healthy leaves of the plant Peireskia aculeate are used, on which sterile surface the notches are made, the infecting doses of the strains Burkholderia pseudomallei and Burkholderia mallei under study in different concentrations are applied, placed on a wet swab and incubated at 32°C for 24-48 h. The extent of their cytopathogenicity is evaluated visually according to the damage to the leaf blade - maceration, ulceration and blackening. Simultaneously the level of virulence of strains of pathogens for laboratory animals is determined, and the extent of cytopathogenicity for P. aculeata is correlated with virulence for laboratory animals.
EFFECT: invention provides high sensitivity, reproducibility, versatility, ease and accessibility of the study.
5 tbl, 4 ex

Description

Изобретение относится к медицине, а конкретно микробиологии, и касается оценки вирулентности штаммов возбудителя мелиоидоза и сапа.The invention relates to medicine, and specifically to microbiology, and for assessing the virulence of strains of the causative agent of melioidosis and glanders.

Как известно, мелиоидоз и сап относятся к особо опасным инфекциям, а возбудители их Burkholderia pseudomallei и Burkholderia mallei вызывают тяжелое заболевание у людей и многих видов животных. В реализации патогенности этих близкородственных видов микроорганизмов имеют значение многие факторы, такие как экзотоксин, термостабильный летальный токсин, антиген 8, а также внеклеточно секретируемые ферменты, как протеазы, фосфолипазы, щелочная фосфатаза, гемолизины (1,3-5).Melioidosis and glanders are known to be particularly dangerous infections, and the pathogens Burkholderia pseudomallei and Burkholderia mallei cause serious illness in humans and many animal species. Many factors, such as exotoxin, thermostable lethal toxin, antigen 8, as well as extracellularly secreted enzymes like proteases, phospholipases, alkaline phosphatase, hemolysins, are important in the realization of the pathogenicity of these closely related types of microorganisms (1,3-5).

В генетических исследованиях часто возникает необходимость одновременного и быстрого изучения большого количества штаммов, отбора среди них вирулентных и авирулентных вариантов, клонового анализа популяции по степени патогенности.In genetic studies, it is often necessary to simultaneously and quickly study a large number of strains, select among them virulent and avirulent variants, and clone the analysis of the population according to the degree of pathogenicity.

Общепринятым способом определения вирулентности микроорганизмов является заражение чувствительных лабораторных животных с расчетом LD50. Наиболее близким аналогом предлагаемому способу являются «Методические рекомендации по лабораторной диагностике мелиоидоза», где описана соответствующая методика (2). Однако использование животных сопряжено со многими сложностями и ограничениями: длительностью эксперимента, опасностью контакта с инфицированными животными, относительно высокой стоимостью и сложностью их разведения и содержания.A common method for determining the virulence of microorganisms is infection of sensitive laboratory animals with the calculation of LD 50 . The closest analogue to the proposed method are the “Methodological recommendations for laboratory diagnosis of melioidosis”, which describes the corresponding technique (2). However, the use of animals is fraught with many difficulties and limitations: the duration of the experiment, the danger of contact with infected animals, the relatively high cost and complexity of their breeding and keeping.

Цель изобретения - разработка менее дорогого и ускоренного способа косвенной оценки вирулентности штаммов возбудителя мелиоидоза и сапа на растительной модели Peireskia aculeata (Пейреския шиповатая).The purpose of the invention is the development of a less expensive and accelerated method of indirectly assessing the virulence of strains of the causative agent of melioidosis and glanders in the plant model Peireskia aculeata (prickly Peireskia).

P.aculeata - неприхотливое комнатное растение из семейства кактусовых, характеризуется быстрым ростом, устойчивое к болезням. В отличие от других растительных моделей жизненный цикл Р.aculeata составляет многие годы. При ее использовании не требуется проращивать семена, применять специальные питательные смеси. Листья этого растения длительное время сохраняют первоначальный вид во влажной камере. Применение Р.aculeata характеризуется низкой себестоимостью, поскольку для изучения одного штамма достаточно одной листовой пластинки.P.aculeata is an unpretentious houseplant from the cactus family, characterized by rapid growth, resistant to disease. Unlike other plant models, the P. aculeata life cycle is many years. When using it, it is not required to germinate the seeds, apply special nutritional mixtures. The leaves of this plant for a long time retain their original appearance in a humid chamber. The use of P. aculeata is characterized by low cost, since one leaf blade is enough to study one strain.

Подготовка растенияPlant preparation

На начальном этапе молодой побег, имеющий 5-6 междоузлий (черенок), срезают по косой острым стерильным ножом над почкой, удаляют нижние листья, ставят в чистую воду, в которую добавляют активированный уголь, после появления корней сажают в почву на глубину один-два сантиметра. В работе используют растение возрастом не менее 1 года, выращенное в комнатных условиях, имеющее здоровый вид. Отбирают листья длиной 3,5-4,0 см, промывают их дистиллированной водой, помещают в чашку Петри на ватный тампон, смоченный дистиллированной водой, нижней стороной вверх. Все компоненты (дистиллированная вода, чашка Петри, ватный тампон, скальпель) должны быть стерильными.At the initial stage, a young shoot having 5-6 internodes (cuttings) is cut obliquely with a sharp sterile knife above the kidney, the lower leaves are removed, put in clean water, into which activated carbon is added, after the roots appear, they are planted in the soil to a depth of one or two centimeter. A plant is used in the work for at least 1 year old, grown in room conditions, having a healthy appearance. Leaves with a length of 3.5-4.0 cm are selected, washed with distilled water, placed in a Petri dish on a cotton swab moistened with distilled water, bottom side up. All components (distilled water, Petri dish, cotton swab, scalpel) must be sterile.

Подготовка бактериальной культуры для заражения растений и животныхPreparing a bacterial culture to infect plants and animals

Штаммы В.pseudomallei и В.mallei выращивают на питательном агаре (Difco) или на агаре на основе гидролизата казеина в течение 48 ч при 32°С, готовят взвеси концентрацией 1×109 м.к./мл в 0,15 М NaCl по стандартному образцу мутности ООО «Ормет» (СОП №1-98) и делают десятикратные разведения до 1×101 м.к./мл. Для заражения используются все полученные разведения.Strains of B. pseudomallei and B. mallei are grown on nutrient agar (Difco) or on agar based on casein hydrolyzate for 48 h at 32 ° C. Suspensions of 1 × 10 9 m.k./ml in 0.15 M NaCl are prepared. according to the standard sample turbidity LLC "Ormet" (SOP No. 1-98) and make ten-fold dilutions to 1 × 10 1 MK./ml For infection, all dilutions obtained are used.

Инфицирование растенийPlant infection

Нижнюю сторону листовой пластинки обрабатывают 70% этиловым спиртом, скальпелем с обеих сторон от центральной жилки делают по 3-4 насечки длиной 2 см, затем наносят 1 стандартную бактериологическую петлю взвеси В.pseudomallei и В.mallei в 0.15 М NaCl в различных концентрациях в зависимости от целей и задач исследования. В качестве контроля используют стерильный 0.15 М NaCl. Чашки с посевами инкубируют при 32°С. Инфицированные образцы просматривают через 24 и 48 ч. Уровень цитопатогенности штаммов оценивают визуально по степени повреждения листовой пластинки (мацерация, изъязвление и почернение листовой пластинки, табл.1). Параллельно определяют вирулентность для животных.The lower side of the leaf blade is treated with 70% ethanol, with a scalpel on both sides of the central vein, make 3-4 notches 2 cm long, then apply 1 standard bacteriological loop of a suspension of B. pseudomallei and B. mallei in 0.15 M NaCl in various concentrations, depending from the goals and objectives of the study. As a control, sterile 0.15 M NaCl is used. Cups with crops are incubated at 32 ° C. Infected samples are examined after 24 and 48 hours. The level of cytopathogenicity of the strains is assessed visually by the degree of damage to the leaf blade (maceration, ulceration and blackening of the leaf blade, table 1). In parallel, virulence for animals is determined.

Заражение животныхAnimal infection

Для исследования используют золотистых хомячков весом 75 г. Заражение культурами В.pseudomallei и В.mallei проводят подкожно в область внутренней поверхности бедра, в дозах 1×100-1×108 м.к. (по 5 животных на дозу) и учитывают динамику гибели в группах. Вирулентные свойства оценивают по количеству павших животных, рассчитывая LD50 по Керберу. В течение срока наблюдения (21 день) проводят вскрытие, оценивают характер патоморфологических изменений внутренних органов павших животных, выделяют и идентифицируют бактериальные культуры.For the study, golden hamsters weighing 75 g are used. Infection with cultures of B. pseudomallei and B. mallei is carried out subcutaneously in the area of the inner thigh, in doses of 1 × 10 0 -1 × 10 8 mk. (5 animals per dose) and take into account the dynamics of death in groups. Virulent properties are estimated by the number of dead animals, calculating LD 50 according to Kerber. During the observation period (21 days) an autopsy is performed, the nature of the pathomorphological changes in the internal organs of the dead animals is assessed, bacterial cultures are isolated and identified.

Степень цитопатогенности В.pseudomallei и В.mallei для Р.aculeata сопоставляют с уровнем вирулентности для золотистых хомячков.The degree of cytopathogenicity of B. pseudomallei and B. mallei for P. aculeata is compared with the level of virulence for golden hamsters.

Таким образом, предлагаемый метод заключается в предварительном отборе внешне здоровых листьев Р.aculeata, приготовлении десятикратных разведений от 1×109 до 1×101 м.к./мл взвесей штаммов В.pseudomallei и В.mallei, выращенных на питательном агаре Difco при 32°С в течение 48 часов, нанесении полученной суспензии из каждой заражающей дозы в объеме одной бактериологической петли на стерильные насечки пластинки листа, помещении листьев с культурами на стерильный влажный тампон в чашку Петри и инкубации при 32°С 24-48 часов, определении уровня цитопатогенности по степени изменения листовой пластинки: 4 степень, когда через 48 часов мацерация, изъязвление и почернение листа шире зоны нанесения культуры, 3 степень, когда мацерация, изъязвление и почернение листовой пластинки в пределах зоны нанесения культуры, 2 степень, когда мацерация отсутствует, изъязвление и почернение листовой пластинки в пределах зоны нанесения культуры, возможен рост культуры, 1 степень, когда мацерация отсутствует, изъязвление и потемнение листовой пластики по ходу насечек, возможен рост культуры, в контроле - стерильный лист с нанесенными насечками без добавления культуры - отсутствуют изменения листовой пластинки.Thus, the proposed method consists in preliminary selection of apparently healthy P. aculeata leaves, preparation of ten-fold dilutions from 1 × 10 9 to 1 × 10 1 m.k. / ml of suspensions of B. pseudomallei and B. mallei strains grown on Difco nutrient agar at 32 ° C for 48 hours, applying the resulting suspension from each infectious dose in the amount of one bacteriological loop to the sterile notches of the leaf plate, placing the leaves with the cultures on a sterile wet swab in a Petri dish and incubating at 32 ° C for 24-48 hours, determining level of cytopathogenicity according to art Degree of change in leaf blade: 4 degree, when maceration, ulceration and blackening of the leaf is wider after 48 hours after application, 3 degree when maceration, ulceration and blackening of the leaf within the application area, 2 degrees when maceration is absent, ulceration and blackening leaf blade within the area of application of the culture, culture growth is possible, 1 degree, when maceration is absent, ulceration and darkening of the plastic sheet along the notches, culture growth is possible, in the control - a sterile leaf with anesennymi notches culture without addition - no change lamina.

Пример 1. Сравнительный анализ цитопатогенности штаммов В.pseudomallei и В.mallei для Р.aculeataExample 1. A comparative analysis of the cytopathogenicity of strains of B. pseudomallei and B. mallei for P. aculeata

Лист Р.aculeata промывают дистиллированной водой, помещают в чашку Петри на ватный тампон, смоченный дистиллированной водой, нижней стороной вверх, которую обрабатывают 70% этиловым спиртом, скальпелем с обеих сторон от центрального сосуда делают по 3-4 насечки длиной 2-3 см, затем наносят взвеси В.pseudomallei и В.mallei в растворе 0.15 М NaCl в различных концентрациях от 1×109 м.к./мл соответственно стандартному образцу мутности ООО «Ормет» (СОП №1-98) и ниже в объеме одной стандартной бактериологической петли. Чашки с посевами инкубируют при 32°С. Инфицированные образцы просматривают через 24 и 48 ч. Уровень цитопатогенности штаммов оценивают визуально по степени повреждения листовой пластинки (мацерация, изъязвление и почернение листовой пластинки, табл.1). Результаты представлены в таблице 2.A sheet of P. aculeata is washed with distilled water, placed in a Petri dish on a cotton swab moistened with distilled water, the bottom side up, which is treated with 70% ethanol, with a scalpel on both sides of the central vessel, make 3-4 notches 2-3 cm long, Then, suspensions of B. pseudomallei and B. mallei are applied in a solution of 0.15 M NaCl in various concentrations from 1 × 10 9 m.k. / ml, respectively, to the standard sample of turbidity of LLC Ormet (SOP No. 1-98) and lower in the amount of one standard bacteriological loop. Cups with crops are incubated at 32 ° C. Infected samples are viewed after 24 and 48 hours. The level of cytopathogenicity of the strains is assessed visually by the degree of damage to the leaf blade (maceration, ulceration and blackening of the leaf blade, table 1). The results are presented in table 2.

Пример 2. Сравнительный анализ вирулентности штаммов В.pseudomallei и В.mallei для золотистых хомячковExample 2. Comparative analysis of the virulence of strains of B. pseudomallei and B. mallei for golden hamsters

Животных заражают культурами В.pseudomallei и В.mallei в дозах 1×100-1×108 м.к./мл (по 5 животных на дозу) и учитывают динамику гибели в группах. В течение срока наблюдения (21 день) проводят вскрытие, оценивают характер патоморфологических изменений внутренних органов павших животных, выделяют и идентифицируют бактериальные культуры. Результаты представлены в таблице 3.The animals are infected with cultures of B. pseudomallei and B. mallei in doses of 1 × 10 0 -1 × 10 8 m.k. / ml (5 animals per dose) and the dynamics of death in the groups is taken into account. During the observation period (21 days) an autopsy is performed, the nature of the pathomorphological changes in the internal organs of the dead animals is assessed, bacterial cultures are isolated and identified. The results are presented in table 3.

Пример 3. Сравнительный анализ вирулентности и цитопатогенности штаммов В.pseudomallei и В.malleiExample 3. Comparative analysis of virulence and cytopathogenicity of strains of B. pseudomallei and B. mallei

Степень цитопатогенности для растительной модели Р.aculeata коррелирует с уровнем вирулентности изученных штаммов для золотистых хомячков.The degree of cytopathogenicity for the plant model of P. aculeata correlates with the level of virulence of the studied strains for golden hamsters.

Штаммы В.pseudomallei, вирулентные для золотистых хомячков (LD50 1×100-1 м.к.), дают 3-4 степень поражения листовой пастинки Р.aculeata, штаммы с низкой вирулентностью не вызывают ее повреждения, с промежуточными значениями вирулентности (LD50 1×102-3 м.к.) - поражают листовую поверхность до 1-2 степени.Strains of B. pseudomallei virulent for golden hamsters (LD 50 1 × 10 0-1 mk) give a 3-4 degree of damage to the leaf plate P. aculeata, strains with low virulence do not cause damage, with intermediate values of virulence ( LD 50 1 × 10 2-3 m.k.) - affect the leaf surface to 1-2 degrees.

В случае В.mallei, характеризующегося более низкой ферментативной активностью, наблюдается иная закономерность. Вирулентные штаммы (LD50 1×100-1 м.к.) дают 1-2 степень поражения листовой пластинки, со сниженной вирулентностью (LD50 1×105 м.к.) - не вызывают ее повреждения.In the case of B. mallei, characterized by lower enzymatic activity, a different pattern is observed. Virulent strains (LD 50 1 × 10 0-1 mk) give a 1-2 degree of damage to the leaf blade, with reduced virulence (LD 50 1 × 10 5 mk) - do not cause damage.

Пример 4. Определение уровня цитопатогенности штамма В.pseudomallei VPA** (ревертант)Example 4. Determination of the level of cytopathogenicity of strain B. pseudomallei VPA ** (revertant)

Листья Р.aculeata помещают в стерильные чашки Петри на ватные тампоны, смоченные стерильной дистиллированной водой. Нижнюю сторону листовых пластинок протирают 70% раствором этилового спирта, делают насечки стерильным скальпелем с обеих сторон центральной жилки и наносят взвеси культуры B.pseudomallei VPA** (ревертант) в концентрации 1×108-102 м.к./мл в объеме одной бактериологической петли. Инкубация составляет 48 ч при 32°С. В качестве контроля используют стерильный 0.15 М NaCl. О цитопатогенности штамма судят по зоне мацерации, изъязвления и почернения листовой пластинки и дозе, вызвавшей эти изменения. Результаты представлены в таблице 5.P. aculeata leaves are placed in sterile Petri dishes on cotton swabs moistened with sterile distilled water. The lower side of the leaf blades is wiped with a 70% ethanol solution, incisions are made with a sterile scalpel on both sides of the central vein, and B.pseudomallei VPA ** culture suspension (revertant) is applied at a concentration of 1 × 10 8 -10 2 m.c. / ml in volume one bacteriological loop. Incubation is 48 hours at 32 ° C. As a control, sterile 0.15 M NaCl is used. The cytopathogenicity of the strain is judged by the zone of maceration, ulceration and blackening of the leaf blade and the dose that caused these changes. The results are presented in table 5.

Приведенные данные свидетельствуют о довольно высокой чувствительности метода и возможности использования его в различных вариантах: для косвенной оценки вирулентности, выбора дозы заражения животных для окончательного определения вирулентности, сравнительного анализа вирулентности большого количества штаммов по признаку цитопатогенности, отбора вирулентных штаммов и со сниженной вирулентностью, для более тонкого анализа изменения вирулентности отдельных штаммов В.pseudomallei и В.mallei.The data presented indicate a rather high sensitivity of the method and the possibility of using it in various ways: for an indirect assessment of virulence, the choice of animal infection dose for the final determination of virulence, a comparative analysis of the virulence of a large number of strains based on cytopathogenicity, selection of virulent strains and with reduced virulence, for more a thin analysis of changes in virulence of individual strains of B. pseudomallei and B. mallei.

Таким образом, предложенный способ обладает высокой производительностью, чувствительностью, воспроизводимостью, универсальностью, простотой и доступностью проведения и может применяться для предварительной оценки вирулентности штаммов В.pseudomallei и В.mallei.Thus, the proposed method has high performance, sensitivity, reproducibility, versatility, simplicity and accessibility and can be used for a preliminary assessment of the virulence of strains of B. pseudomallei and B. mallei.

ЛитератураLiterature

1. Мелиоидоз. Сб.научн.тр. Под ред. Н.Г.Тихонова. - Волгоград: Ниж. - Волж.кн.изд-во, 1995. - 224 с.1. Melioidosis. Sat scientific Ed. N.G. Tikhonova. - Volgograd: Lower. - Volzh.kn.izd-vo, 1995 .-- 224 p.

2. МУ 4.2.2787-10.4.2 Методы контроля. Биологические и микробиологические факторы. Лабораторная диагностика мелиоидоза. Методические указания (утв.Роспотребнадзором 06.12.2010).2. MU 4.2.2787-10.4.2 Control methods. Biological and microbiological factors. Laboratory diagnosis of melioidosis. Guidelines (approved by Rospotrebnadzor on December 6, 2010).

3. Пивень Н.Н., Смирнова В.И., Каплиев В., Позолкова Г.М., Храпова Н.П. Роль поверхностных антигенов Pseudomonas pseudomallei в патогенезе мелиоидоза // Журн.микробиол. - 1991. - №10. - С.8-12.3. Piven N.N., Smirnova V.I., Kapliev V., Pozolkova G.M., Khrapova N.P. The role of surface antigens of Pseudomonas pseudomallei in the pathogenesis of melioidosis // Journal of Microbiol. - 1991. - No. 10. - S.8-12.

4. Сап.Сб.научн.тр. Под ред. Н.Г.Тихонова. - Волгоград: Ниж. - Волж. кн. изд-во, 1995. - 128 с.4. Sap. SB.scientific. Ed. N.G. Tikhonova. - Volgograd: Lower. - Volzh. Prince Publishing House, 1995 .-- 128 p.

5. Dejsilbert S., Butraporn R., Chiewsilp D. High activity of acid phosphatase of Pseudomonas pseudomallei as a possible attribute relating to its pathogenesity // Jap.J.Med.Sci.Biol. - 1989. - vol.42, №2. - p.39-49.5. Dejsilbert S., Butraporn R., Chiewsilp D. High activity of acid phosphatase of Pseudomonas pseudomallei as a possible attribute relating to its pathogenesity // Jap.J. Med.Sci.Biol. - 1989. - vol. 42, No. 2. - p. 39-49.

Figure 00000001
Figure 00000002
Figure 00000003
Figure 00000004
Figure 00000005
Figure 00000001
Figure 00000002
Figure 00000003
Figure 00000004
Figure 00000005

Claims (1)

Способ косвенной оценки вирулентности штаммов патогенных буркхольдерий по признаку цитопатогенности, включающий приготовление взвесей клеток исследуемых штаммов Burkholderia pseudomallei и Burkholderia mallei разной концентрации с последующим их введением лабораторным животным, отличающийся тем, что в качестве объекта для косвенного определения вирулентности применяют листья Peireskia aculeata, на которые наносят в разной концентрации заражающие дозы исследуемых штаммов В.pseudomallei и В.mallei, для чего первоначально отбирают внешне здоровые листья, готовят десятикратные разведения от 1×109 до 1×101 м.к./мл взвесей штаммов В. pseudomallei и В.mallei, выращенных на питательном агаре Difco при 32°С в течение 48 ч, после чего из каждой заражающей дозы наносят взвесь в объеме одной стандартной бактериологической петли на предварительно нанесенные насечки на стерильной пластинке листа, помещают на стерильный влажный тампон в чашку Петри, инкубируют при 32°С 24-48 ч, о цитопатогенности судят по степени изменения листовой пластинки - 4-я степень, когда через 48 ч мацерация, изъязвление и почернение листа шире зоны нанесения культуры, 3-я степень, когда мацерация, изъязвление и почернение листовой пластинки в пределах зоны нанесения культуры, 2-я степень, когда мацерация отсутствует, изъязвление и почернение листовой пластинки в пределах зоны нанесения культуры, возможен рост культуры, 1-я степень, когда мацерация отсутствует, изъязвление и потемнение листовой пластики по ходу насечек, возможен рост культуры, контролем опыта служит стерильный лист с нанесенными насечками без добавления бактерий на котором отсутствуют изменения листовой пластинки, степень цитопатогенности для Р. aculeata соотносят с вирулентностью для лабораторных животных. A method for indirectly assessing the virulence of pathogenic burkholderia strains based on cytopathogenicity, which includes preparing cell suspensions of the studied strains of Burkholderia pseudomallei and Burkholderia mallei of different concentrations, followed by their administration to laboratory animals, characterized in that Peratia leaves are used as an object for indirect virulence determination. in different concentrations, the infecting doses of the studied strains of B. pseudomallei and B. mallei, for which initially apparently healthy leaves are selected, ten tnye dilution of 1 × 10 9 to 1 × 10 January microbial cells / ml suspensions strains of B. pseudomallei and B. mallei grown on Difco nutrient agar at 32 ° C for 48 hours, after which from each infection dose applied slurry in the volume of one standard bacteriological loop on previously applied notches on a sterile leaf plate, they are placed on a sterile wet swab in a Petri dish, incubated at 32 ° C for 24-48 hours, cytopathogenicity is judged by the degree of change of the leaf blade - 4th degree, when through 48 h maceration, ulceration and blackening of the leaf wider than the area of application of crops s, 3rd degree, when maceration, ulceration and blackening of the leaf blade within the zone of application of culture, 2nd degree, when maceration is absent, ulceration and blackening of the leaf blade within the zone of application of culture, culture growth is possible, 1st degree, when maceration is absent, ulceration and darkening of the leaf plasty along the incisions, culture growth is possible, the control of the experiment is a sterile sheet with incisions without the addition of bacteria on which there are no changes in the lamina, the degree of cytopathology Values for P. aculeata correlate with virulence for laboratory animals.
RU2012102204/10A 2012-01-23 2012-01-23 Method of indirect estimation of strains virulence of pathogenic burkholderia on grounds of cytopathogenicity RU2485182C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2012102204/10A RU2485182C1 (en) 2012-01-23 2012-01-23 Method of indirect estimation of strains virulence of pathogenic burkholderia on grounds of cytopathogenicity

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2012102204/10A RU2485182C1 (en) 2012-01-23 2012-01-23 Method of indirect estimation of strains virulence of pathogenic burkholderia on grounds of cytopathogenicity

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2485182C1 true RU2485182C1 (en) 2013-06-20

Family

ID=48786294

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2012102204/10A RU2485182C1 (en) 2012-01-23 2012-01-23 Method of indirect estimation of strains virulence of pathogenic burkholderia on grounds of cytopathogenicity

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2485182C1 (en)

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
МУ 4.2.2787-10.4.2. Методы контроля. Биологические и микробиологические факторы. Лабораторная диагностика мелиоидоза. Методические указания. Утв. Роспотребнадзором 06.12.2010. МОЛЧАНОВА Е.В. Фенотипическая и генотипическая характеристика мутантов патогенных видов рода Burkholderia с измененной чувствительностью к антибиотикам// Автореферат на соиск. уч. ст. к.б.н. - & *
МУ 4.2.2787-10.4.2. Методы контроля. Биологические и микробиологические факторы. Лабораторная диагностика мелиоидоза. Методические указания. Утв. Роспотребнадзором 06.12.2010. МОЛЧАНОВА Е.В. Фенотипическая и генотипическая характеристика мутантов патогенных видов рода Burkholderia с измененной чувствительностью к антибиотикам// Автореферат на соиск. уч. ст. к.б.н. - Волгоград: 2011. ПИВЕНЬ Н.Н., СМИРНОВА В.И. и др. Роль поверхностных антигенов Pseudomonas pseudomallei в патогенезе мелиодиоза// Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. - М.: С-Инфо, 1991, с.8-12. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN112680380B (en) Preparation and application of biocontrol bacillus beleisi and microcapsule microbial inoculum
CN112143658B (en) Beauveria bassiana strain MQ-08 and application and microbial preparation thereof
CN111793566B (en) China fir endophytic fungi and biological control application thereof
CN105296386B (en) The interior raw bacillus amyloliquefaciens of one plant height production antagonism tobacco bacterial wilt active material
Milijašević-Marčić et al. First report of Pseudomonas tolaasii on Agaricus bisporus in Serbia
CN101985606B (en) Rice rhizosphere burkholderia and application thereof in prevention and control of rice sheath blight disease
RU2485182C1 (en) Method of indirect estimation of strains virulence of pathogenic burkholderia on grounds of cytopathogenicity
CN109055236B (en) Isaria pinicola WSWM1171 and application thereof in prevention and control of potato corm moth pupae
CN115851476A (en) Rice root endophytic bacillus altitudinis 258R-7 and biological agent and application thereof
CN113481108A (en) Nutrient medium for stimulating growth of nematode-trapping fungi on trunk and preparation method and application thereof
Kim et al. Risk of Erwinia amylovora transmission in viable but nonculturable (VBNC) state via contaminated pruning shears
Panova et al. Population dynamics of Pythium aphanidermatum and response of tomato plants as affected by root-zone temperature/Die Populationsdynamik von Pythium aphanidermatum und die Reaktion der Tomate in Abhängigkeit von der Wurzelraumtemperatur
Samanta et al. Isolation and characterization of Xanthomonas oryzae isolates from different regions of Midnapore district of West Bengal and their ecofriendly management by some medicinal plant extracts
Mansour et al. OCCURRENCE AND PREVALENCE OF THE BACTERIAL ONION BULB ROT PATHOGENS IN EGYPT.
Agrawal et al. Survey of Beauveria bassiana from cadaver of Indarbela quadrinotata and its virulence against the Plutella xylostella (Diamond back moth) in various places of Allahabad and Koushambi District
CN112522112B (en) Fungus strain for preventing and treating alfalfa aphids and application thereof
Muradashvili et al. Phenotypic Properties of Georgian isolates of Ralstonia solanacearum
Ikrom et al. Study of Fungus Beauveria Tenella Biological Struggle with Termites of The Genus Anacanthotermes
RU2288953C1 (en) Method for differentiating allergic responses for bcg-tuberculin for mammals
RU2757227C1 (en) LABORATORY EXPRESS METHOD THAT ALLOWS DIFFERENTIATING VARIETIES OF WINTER CEREALS BY RESISTANCE TO THE PATHOGEN OF PINK SNOW MOLD (THE PATHOGEN IS THE FUNGUS Microdochium nivale (Fr.)Samuels & C. I. Hallet)
Hastings Comparative resistance of bacteria from native habitats and from artificial cultures
Chirilă et al. Microorganisms Found in the Tannery Air
Largo et al. Antimicrobial and Growth-Promoting Properties of Cultured Seaweeds Confer Resistance and Attraction to Ice-Ice Disease-Causing Bacteria: A Proposed Seaweed-Bacteria Pathosystem Model
Жуматаева et al. SCREENING OF COLLECTION STRAINS (COLLECTIONS) OF ENTOMOPATHOGENIC FUNGI AGAINST ASIAN LOCUSTS FOR SIGNS OF VIRULENCE
CN113621678A (en) Method for conveniently and rapidly identifying salmonella in farm

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20140124