RU2476598C2 - Method of quantitative determination of dehydrogenase activity of microorganisms - Google Patents
Method of quantitative determination of dehydrogenase activity of microorganisms Download PDFInfo
- Publication number
- RU2476598C2 RU2476598C2 RU2011116872/10A RU2011116872A RU2476598C2 RU 2476598 C2 RU2476598 C2 RU 2476598C2 RU 2011116872/10 A RU2011116872/10 A RU 2011116872/10A RU 2011116872 A RU2011116872 A RU 2011116872A RU 2476598 C2 RU2476598 C2 RU 2476598C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- methylene blue
- microorganisms
- dehydrogenase activity
- concentration
- activity
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к аналитическим способам определения ферментативной активности микроорганизмов и может быть использовано для оценки дегидрогеназной активности активного ила.The invention relates to analytical methods for determining the enzymatic activity of microorganisms and can be used to assess the dehydrogenase activity of activated sludge.
В настоящее время известен лишь один способ количественного определения дегидрогеназной активности микроорганизмов [Методические рекомендации по определению дегидрогеназной активности при технологическом контроле за работой аэротенков. - Министерство жилищно-коммунального хозяйства РСФСР Ордена Трудового Красного знамени, Академия коммунального хозяйства им. К.Д.Памфилова. - Москва, 1978]. Этот способ заключается в следующем: пробу микроорганизмов (активного ила) помещают в три центрифужные пробирки, доводят рН до 7 и центрифугируют. Затем из пробирок сливается надосадочная жидкость, и вместо нее добавляется водопроводная вода и неочищенная сточная вода. После перемешивания добавляют 0,5%-ный раствор 2,3,5-трифенилтетразол хлорида (ТТХ). Пробирки плотно закрывают, перемешивают и ставят в термостат на 55 минут при 37°С. Одновременно в термостат ставят четвертую пробирку с илом без ТТХ, служащую контролем. Через 55 минут пробы центрифугируются, надосадочная жидкость сливается и к осадку приливается 10 мл этанола. Содержимое пробирок перемешивается, а затем периодически встряхивается до полного обесцвечивания хлопьев ила, которое в зависимости от его качества происходит за 15-30 минут. После обесцвечивания пробы центрифугируются еще раз. Окрашенный спиртовой раствор из каждой пробы сливается в пробирку, перемешивается и колориметрируется на фотоэлектрическом колориметре (ФЭК) с синим светофильтром №5 (490 нм) в кювете с толщиной слоя 0,5 см. Дегидрогеназная активность выражается в миллиграммах восстановленного формазана на 1 г сухого или беззольного вещества ила (удельная активность), или на 1 л смеси (общая активность).Currently, there is only one known method for the quantitative determination of the dehydrogenase activity of microorganisms [Guidelines for the determination of dehydrogenase activity during technological monitoring of the operation of aeration tanks. - Ministry of Housing and Communal Services of the RSFSR Order of the Red Banner of Labor, Academy of Public Utilities named after K.D. Pamfilova. - Moscow, 1978]. This method consists in the following: a sample of microorganisms (activated sludge) is placed in three centrifuge tubes, the pH is adjusted to 7 and centrifuged. Then the supernatant is drained from the tubes, and tap water and untreated wastewater are added instead. After stirring, a 0.5% solution of 2,3,5-triphenyltetrazole chloride (TTX) was added. The tubes are tightly closed, mixed and placed in a thermostat for 55 minutes at 37 ° C. At the same time, a fourth tube with sludge without TTX is placed in the thermostat, which serves as a control. After 55 minutes, the samples are centrifuged, the supernatant is drained and 10 ml of ethanol is added to the precipitate. The contents of the tubes are mixed, and then periodically shaken until the sludge flakes are completely discolored, which, depending on its quality, takes 15-30 minutes. After bleaching, the samples are centrifuged again. The colored alcohol solution from each sample is poured into a test tube, mixed and colorimetric on a photoelectric colorimeter (FEC) with a blue light filter No. 5 (490 nm) in a cuvette with a layer thickness of 0.5 cm. Dehydrogenase activity is expressed in milligrams of reduced formazan per 1 g of dry or ashless sludge substance (specific activity), or per 1 liter of a mixture (total activity).
Данный способ определения дегидрогеназной активности принят в качестве прототипа и характеризуется следующими недостатками:This method of determining dehydrogenase activity is adopted as a prototype and is characterized by the following disadvantages:
1) длительность;1) duration;
2) трудоемкость;2) labor input;
3) многостадийность;3) multi-stage;
4) продолжительность культивирования (55 минут). За это время клетка может выработать дополнительное количество необходимых ферментов. В то же время количество дегидрогеназ может уменьшаться за счет действия протеаз;4) the duration of cultivation (55 minutes). During this time, the cell can develop an additional amount of necessary enzymes. At the same time, the amount of dehydrogenases may decrease due to the action of proteases;
5) не учитывается специфика питательной среды для микроорганизмов (активного ила), поскольку при условии недостаточного углеродного питания скорость дегидрогеназной реакции будет определяться не непосредственно дегидрогеназной активностью, а концентрацией субстрата;5) the specificity of the nutrient medium for microorganisms (activated sludge) is not taken into account, since under the condition of insufficient carbon nutrition, the rate of dehydrogenase reaction will be determined not directly by dehydrogenase activity, but by the concentration of the substrate;
6) за такое длительное время и в случае нелинейности процесса одно и то же количество ТТХ может быть восстановлено различным количеством фермента;6) for such a long time and in the case of nonlinearity of the process, the same amount of TTX can be restored with different amounts of enzyme;
7) не учитывается возможность содержания в микроорганизмах значительного количества веществ, способных восстанавливать ТТХ без наличия дегидрогеназ.7) does not take into account the possibility of the content in microorganisms of a significant amount of substances that can restore TTX without the presence of dehydrogenases.
Задачей, на решение которой направлено настоящее изобретение, является разработка способа, позволяющего оперативно количественно оценить дегидрогеназную активность микроорганизмов и обладающего хорошей воспроизводимостью.The problem to which the present invention is directed, is to develop a method that allows you to quickly quantify the dehydrogenase activity of microorganisms and has good reproducibility.
Это достигается тем, что при количественном определении дегидрогеназной активности микроорганизмов, предусматривающем их контакт с субстратом и акцептором водорода, в качестве акцептора водорода используют краситель метиленовый синий, а активность дегидрогиназ определяют по скорости изменения концентрации метиленового синего в линейной фазе ферментативной реакции.This is achieved by the fact that in the quantitative determination of the dehydrogenase activity of microorganisms, providing for their contact with a substrate and a hydrogen acceptor, methylene blue is used as a hydrogen acceptor, and the activity of dehydroginases is determined by the rate of change of the concentration of methylene blue in the linear phase of the enzymatic reaction.
О степени дегидрогеназной активности микроорганизмов в предлагаемом способе судят по убыли концентрации метиленового синего в ячейке, которую непрерывно регистрируют оптическим способом. Исследуемую суспензию микроорганизмов вводят в измерительную термостатируемую ячейку, включающую систему регистрации сигнала (светодиод, фотодатчик), в ячейке создаются анаэробные условия; сюда же вводят субстрат (например, глюкозу) и раствор метиленового синего в качестве акцептора водорода. Длительность эксперимента составляет 5-7 минут.The degree of dehydrogenase activity of microorganisms in the proposed method is judged by the decrease in the concentration of methylene blue in the cell, which is continuously recorded optically. The studied suspension of microorganisms is introduced into a thermostatic measuring cell, including a signal recording system (LED, photosensor), anaerobic conditions are created in the cell; a substrate (for example, glucose) and a solution of methylene blue as a hydrogen acceptor are also introduced there. The duration of the experiment is 5-7 minutes.
Иллюстративный пример реализации заявляемого способа включает выполнение следующих действий: в стакан измерительной ячейки на 100 мл вносили 60 мл дистиллированной воды, определенное количество тщательно перемешанной суспензии активного ила (1-2 мл), 1 мл 10%-ного раствора глюкозы. На стакан устанавливали крышку с встроенной системой регистрации сигнала измерительной ячейки. Доводили объем воды до метки (83 мл), обеспечивая анаэробные условия. После этого включали светодиод с фотодатчиком, мешалку. Помещали стакан в термостат и устанавливали требуемую температуру. После этого ожидали термостабилизации ячейки и стабилизации показаний фотодатчика, с помощью дозатора вводили 50 мкл 0,2%-ного раствора метиленового синего. Фотодатчик начинал фиксировать уменьшение концентрации метиленового синего в ходе ферментативной реакции.An illustrative example of the implementation of the proposed method includes the following steps: 60 ml of distilled water, a certain amount of a carefully mixed suspension of activated sludge (1-2 ml), 1 ml of a 10% glucose solution are added to a 100 ml beaker. A lid was installed on the glass with an integrated system for recording the signal of the measuring cell. The volume of water was adjusted to the mark (83 ml), providing anaerobic conditions. After that, they turned on an LED with a photosensor, a stirrer. Place the beaker in a thermostat and set the desired temperature. After that, the thermostabilization of the cell and stabilization of the photosensor readings were expected, and 50 μl of a 0.2% methylene blue solution was introduced using a dispenser. The photosensor began to detect a decrease in the concentration of methylene blue during the enzymatic reaction.
В условиях избытка субстрата и акцептора водорода ход реакции линеен в течение примерно 300 секунд, по истечении которых процесс измерения останавливали. Показания фотодатчика фиксировали один раз в секунду, поэтому аппроксимировали показания прибора от времени по линейной зависимости (фиг.1).Under conditions of excess substrate and hydrogen acceptor, the course of the reaction is linear for approximately 300 seconds, after which the measurement process is stopped. The readings of the photosensor were recorded once a second, therefore, the readings of the device were approximated by time in a linear manner (Fig. 1).
Далее, исходя из тангенса наклона указанной линейной зависимости, соответствующей линейной фазе ферментативной реакции, рассчитывали дегидрогиназную активность, составляющую в данном случаеFurther, based on the slope of the specified linear relationship corresponding to the linear phase of the enzymatic reaction, dehydroginase activity was calculated, which component in this case
На фиг.2 установлена взаимосвязь между показаниями прибора (фотодатчика) и количеством внесенного в ячейку метиленового синего, характеризующаяся уравнением у=-0,02512х+1137,2263. То есть определено, что в используемом диапазоне концентраций увеличение показаний прибора на 1 соответствует уменьшению содержания метиленового синего в ячейке на 0,02512 нмоля. Вносимые в ячейку микроорганизмы, как правило, значительно рассеивают и поглощают свет, увеличивая коэффициент 1137,2263, однако величина 0,02512 остается неизменной.Figure 2 shows the relationship between the readings of the device (photosensor) and the amount of methylene blue introduced into the cell, characterized by the equation y = -0.02512x + 1137.2263. That is, it is determined that in the concentration range used, an increase in the readings of the device by 1 corresponds to a decrease in the content of methylene blue in the cell by 0.02512 nmol. Microorganisms introduced into the cell, as a rule, significantly scatter and absorb light, increasing the coefficient of 1137.2263, however, the value of 0.02512 remains unchanged.
В целом приведенные расчеты поясняют, что скорость протекания реакции равна W=10,68·0,02512 нмоль/с и с учетом того, что для реакции взято 2 мл суспензии микроорганизмов активность ферментов А=10,68·0,02512·60/2=8,05 нмоль/(мин·мл), где 60 - перевод в минуты.In general, the above calculations explain that the reaction rate is W = 10.68 · 0.02512 nmol / s, and taking into account that 2 ml of a suspension of microorganisms were taken for the reaction, the enzyme activity A = 10.68 · 0.02512 · 60 / 2 = 8.05 nmol / (min · ml), where 60 is the conversion per minute.
Таким образом, исходя из тангенса наклона указанной линейной зависимости, соответствующей линейной фазе ферментативной реакции, рассчитывали дегидрогиназную активность, составляющую в данном случае 8,05 нмоль/(мин·мл).Thus, based on the slope of the indicated linear relationship corresponding to the linear phase of the enzymatic reaction, dehydroginase activity was calculated, which in this case was 8.05 nmol / (min · ml).
В целом формулу расчета дегидрогеназной активности, исходя из тангенса угла наклона зависимости (фиг.1) и концентрации метиленового синего, можно представить следующим образом:In general, the formula for calculating dehydrogenase activity, based on the slope of the dependence (Fig. 1) and the concentration of methylene blue, can be represented as follows:
где A - активность фермента, моль·мин-1·мл-1;where A is the activity of the enzyme, mol · min -1 · ml -1 ;
С - концентрация метиленового синего, моль·мл-1;C is the concentration of methylene blue, mol · ml -1 ;
Vp - объем реакционной ячейки (в примере 83 мл), мл;V p is the volume of the reaction cell (in the example, 83 ml), ml;
V - объем пробы микроорганизмов, мл;V is the sample volume of microorganisms, ml;
t - продолжительность ферментативной реакции, мин;t is the duration of the enzymatic reaction, min;
D - оптическая плотность реакционной смеси;D is the optical density of the reaction mixture;
К1 - коэффициент пропорциональности между С и D, равный произведению коэффициента экстинкции на длину пути света в растворе (закон Бугера-Ламберта-Бера (D=EL С)), мл·моль-1;To 1 is the coefficient of proportionality between C and D, equal to the product of the extinction coefficient and the path of light in solution (Bouguer-Lambert-Bera law (D = EL C)), ml · mol -1 ;
П - цифровые показания фотодатчика;P - digital readings of the photosensor;
К2 - коэффициент пропорциональности между П и D;K 2 is the coefficient of proportionality between P and D;
VpK2/K1 - коэффициент пропорциональности между С и П с учетом объема реакционной ячейки, моль; определяется экспериментально (фиг.2). В нашем случае равен -0,02512.V p K 2 / K 1 - the coefficient of proportionality between C and P, taking into account the volume of the reaction cell, mol; determined experimentally (figure 2). In our case, it is -0.02512.
dП/dt - скорость изменения показаний прибора во времени, с-1.dP / dt is the rate of change of the instrument readings in time, s -1 .
Коэффициент 10,68 в уравнении у=10,68х+37205 является тангенсом угла наклона прямой при изучении ферментативной реакции (фиг.1).The coefficient of 10.68 in the equation y = 10.68x + 37205 is the slope of the straight line when studying the enzymatic reaction (figure 1).
Итоговая формула может быть представлена:The final formula can be represented:
Средство (прибор) измерения оптической плотности, подходящее для определения, известны специалисту в данной области техники. В частности, может быть использован спектрофотометр (колориметр или аналоги), имеющий интерфейс с ЭВМ, обладающий термостатируемой ячейкой, обеспечивающий перемешивание раствора и определение оптической плотности или другой, связанной с ней, величины. Предварительно должна быть произведена калибровка между этой величиной и количеством метиленового синего в ячейке (что очевидно для специалиста в данной области техники).A means (instrument) for measuring optical density, suitable for determination, is known to a person skilled in the art. In particular, a spectrophotometer (colorimeter or analogs) can be used, having an interface with a computer, having a thermostatically controlled cell, providing mixing of the solution and determining the optical density or other value associated with it. A preliminary calibration must be performed between this value and the amount of methylene blue in the cell (which is obvious to a person skilled in the art).
Результаты экспериментов воспроизводимы, так как опираются не на одно-два измерения, а на несколько сотен. При этом погрешность составляет менее 5%.The experimental results are reproducible, since they are based not on one or two measurements, but on several hundred. Moreover, the error is less than 5%.
Существенными признаками предлагаемого способа по сравнению с прототипом являются следующие:The essential features of the proposed method in comparison with the prototype are the following:
1) в качестве акцептора водорода используют метиленовый синий;1) methylene blue is used as a hydrogen acceptor;
2) расходование метиленового синего определяют путем непрерывной регистрации концентрации метиленового синего фотометрическим способом;2) the consumption of methylene blue is determined by continuously recording the concentration of methylene blue by the photometric method;
3) регистрация изменения концентрации метиленового синего проводится в течение 5 минут;3) registration of changes in the concentration of methylene blue is carried out within 5 minutes;
4) количественно дегидрогеназная активность микроорганизмов выражается числом наномолей метиленового синего на единицу объема ила (массы сухого вещества микроорганизмов) в единицу времени.4) quantitatively, the dehydrogenase activity of microorganisms is expressed by the number of nanomoles of methylene blue per unit volume of sludge (dry matter mass of microorganisms) per unit time.
Преимуществами предлагаемого способа по сравнению с прототипом является следующее:The advantages of the proposed method compared to the prototype is the following:
1) быстрота (способ позволяет выполнить анализ за 5-7 минут);1) speed (the method allows you to perform analysis in 5-7 minutes);
2) значительное упрощение (меньше операций, автоматическая регистрация показаний, термостатирование);2) significant simplification (fewer operations, automatic recording of readings, temperature control);
3) исключение изменения концентрации дегидрогеназ, которое может происходить вследствие процессов, протекающих в живой клетке;3) the exclusion of changes in the concentration of dehydrogenases, which may occur due to processes occurring in a living cell;
4) исключение влияния цветности среды, так как проводится измерение не абсолютного значения оптической плотности, а кинетики ее изменения, что особенно важно в случае окрашенных жидкостей сточных вод.4) elimination of the influence of the color of the medium, since the measurement is not the absolute value of the optical density, but the kinetics of its change, which is especially important in the case of colored wastewater liquids.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2011116872/10A RU2476598C2 (en) | 2011-04-27 | 2011-04-27 | Method of quantitative determination of dehydrogenase activity of microorganisms |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2011116872/10A RU2476598C2 (en) | 2011-04-27 | 2011-04-27 | Method of quantitative determination of dehydrogenase activity of microorganisms |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2011116872A RU2011116872A (en) | 2012-11-10 |
RU2476598C2 true RU2476598C2 (en) | 2013-02-27 |
Family
ID=47321848
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2011116872/10A RU2476598C2 (en) | 2011-04-27 | 2011-04-27 | Method of quantitative determination of dehydrogenase activity of microorganisms |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2476598C2 (en) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
MD4465C1 (en) * | 2014-08-22 | 2017-08-31 | Государственный Университет Молд0 | Process for determining the dehydrogenase activity in fermentation biomass |
RU2735756C1 (en) * | 2020-03-24 | 2020-11-06 | Общество с ограниченной ответственностью "Газпром добыча Ямбург" | Method of identifying microbial contamination of an aqueous medium by analyzing enzyme dehydrogenase activity |
RU2762009C1 (en) * | 2020-11-19 | 2021-12-14 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт проблем химической физики Российской Академии наук (ФГБУН ИПХФ РАН) | Method for estimating the dehydrogenase activity of protein extracts produced from microorganisms |
RU2817282C1 (en) * | 2023-10-16 | 2024-04-12 | Федеральное Государственное Бюджетное Учреждение Науки Федеральный Исследовательский Центр Проблем Химической Физики И Медицинской Химии Российской Академии Наук (Фиц Пхф И Мх Ран) | Photocolorimetric method for assessing dehydrogenase activity of protein extracts |
Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
SU1165989A1 (en) * | 1981-03-21 | 1985-07-07 | Львовский государственный медицинский институт | Method of determining toxicity of watersoluble pesticides |
SU1474545A1 (en) * | 1987-03-02 | 1989-04-23 | Белгородский филиал Всесоюзного научно-исследовательского витаминного института | Method of monitoring quality of biochemical purification of waste water and condition of active silt |
SU1564193A1 (en) * | 1988-07-01 | 1990-05-15 | Всесоюзный научно-исследовательский институт биологического приборостроения | Method of checking process of microorganism cultivation |
SU1735366A1 (en) * | 1989-08-16 | 1992-05-23 | Всесоюзный Научно-Исследовательский Институт Биотехнологии | Method for preparation of inoculum material - a producer of aminoglycoside antibiotic complex of streptomyces cremeus subsp "nebramycini" |
RU2387996C1 (en) * | 2008-09-22 | 2010-04-27 | Общество с ограниченной ответственностью "Научно-исследовательский институт природных газов и газовых технологий - Газпром ВНИИГАЗ" (ООО "ВНИИГАЗ") | Method of monitoring cleaning of soil contaminated with hydrocarbons and neutralisation of hydrocarbon sludge through analysis of dehydrogenase activity |
-
2011
- 2011-04-27 RU RU2011116872/10A patent/RU2476598C2/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
SU1165989A1 (en) * | 1981-03-21 | 1985-07-07 | Львовский государственный медицинский институт | Method of determining toxicity of watersoluble pesticides |
SU1474545A1 (en) * | 1987-03-02 | 1989-04-23 | Белгородский филиал Всесоюзного научно-исследовательского витаминного института | Method of monitoring quality of biochemical purification of waste water and condition of active silt |
SU1564193A1 (en) * | 1988-07-01 | 1990-05-15 | Всесоюзный научно-исследовательский институт биологического приборостроения | Method of checking process of microorganism cultivation |
SU1735366A1 (en) * | 1989-08-16 | 1992-05-23 | Всесоюзный Научно-Исследовательский Институт Биотехнологии | Method for preparation of inoculum material - a producer of aminoglycoside antibiotic complex of streptomyces cremeus subsp "nebramycini" |
RU2387996C1 (en) * | 2008-09-22 | 2010-04-27 | Общество с ограниченной ответственностью "Научно-исследовательский институт природных газов и газовых технологий - Газпром ВНИИГАЗ" (ООО "ВНИИГАЗ") | Method of monitoring cleaning of soil contaminated with hydrocarbons and neutralisation of hydrocarbon sludge through analysis of dehydrogenase activity |
Non-Patent Citations (4)
Title |
---|
МУК 4.2.026-95. Экспресс метод определения антибиотиков в пищевых продуктах. Методические указания. * |
ХОДКЕВИЧ О.А. Разработка технологии биосинтеза ингибитора глюкозидаз актиномицета рода Streptomyces и применение комплексной добавки на его основе в хлебопечении: Автореф. на соискание ученой степени кандидата технических наук. - СПб., 2009. * |
ЧЕКАЛОВ В.П. Определение с помощью метиленового синего сорбционной способности и дегидрогеназной активности донных отложений. Экология моря, 72, 2006, с.103-109. * |
ЧЕКАЛОВ В.П. Определение с помощью метиленового синего сорбционной способности и дегидрогеназной активности донных отложений. Экология моря, 72, 2006, с.103-109. МУК 4.2.026-95. Экспресс метод определения антибиотиков в пищевых продуктах. Методические указания. * |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
MD4465C1 (en) * | 2014-08-22 | 2017-08-31 | Государственный Университет Молд0 | Process for determining the dehydrogenase activity in fermentation biomass |
RU2735756C1 (en) * | 2020-03-24 | 2020-11-06 | Общество с ограниченной ответственностью "Газпром добыча Ямбург" | Method of identifying microbial contamination of an aqueous medium by analyzing enzyme dehydrogenase activity |
RU2762009C1 (en) * | 2020-11-19 | 2021-12-14 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт проблем химической физики Российской Академии наук (ФГБУН ИПХФ РАН) | Method for estimating the dehydrogenase activity of protein extracts produced from microorganisms |
RU2817282C1 (en) * | 2023-10-16 | 2024-04-12 | Федеральное Государственное Бюджетное Учреждение Науки Федеральный Исследовательский Центр Проблем Химической Физики И Медицинской Химии Российской Академии Наук (Фиц Пхф И Мх Ран) | Photocolorimetric method for assessing dehydrogenase activity of protein extracts |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2011116872A (en) | 2012-11-10 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Jouanneau et al. | Methods for assessing biochemical oxygen demand (BOD): A review | |
Vanrolleghem et al. | On-line monitoring equipment for wastewater treatment processes: state of the art | |
Kocincová et al. | Multiplex bacterial growth monitoring in 24‐well microplates using a dual optical sensor for dissolved oxygen and pH | |
Jiang et al. | Optical biosensor for the determination of BOD in seawater | |
EP2597461A2 (en) | Process for directly measuring multiple biodegradabilities | |
Li et al. | Glucose biosensor based on the room-temperature phosphorescence of TiO2/SiO2 nanocomposite | |
RU2476598C2 (en) | Method of quantitative determination of dehydrogenase activity of microorganisms | |
JPS6114800B2 (en) | ||
JPH10512668A (en) | Device for measuring the partial pressure of gas dissolved in liquid | |
Bondyale-Juez et al. | Respiration: comparison of the Winkler technique, O 2 electrodes, O 2 optodes and the respiratory electron transport system assay | |
Pawar et al. | Current and future technologies for monitoring cultured meat: a review | |
Brasil et al. | Ethanol determination in fermented sugarcane substrates by a diffusive micro-distillation device. | |
JPH10123120A (en) | Inspection device of liquid | |
CN103940812A (en) | Method for rapidly detecting coliforms by means of spectrophotometry and application of method | |
Zhang et al. | Monitoring of methanogen density using near-infrared spectroscopy | |
Rodríguez-Duran et al. | Standard instruments for bioprocess analysis and control | |
Sohn et al. | Rapid estimation of biochemical oxygen demand using a microbial multi-staged bioreactor | |
CN112505122A (en) | Double-index enzyme electrode detection device and online test method for substrate and product in bioreactor | |
KR101158371B1 (en) | Ecotoxicity assay method using inhibition of dehydrogenase | |
Bogue | Optical chemical sensors for industrial applications | |
RU225914U1 (en) | Device for rapid analysis of biodegradable organic compounds in water bodies | |
RU2817282C1 (en) | Photocolorimetric method for assessing dehydrogenase activity of protein extracts | |
Vyrides et al. | Next generation techniques for anaerobic bioprocess optimization | |
CN103529021A (en) | Quick analyzing method of total sugar | |
Thomas et al. | Wastewater quality monitoring: On-line/on-site measurement |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20130428 |
|
NF4A | Reinstatement of patent |
Effective date: 20140810 |
|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20190428 |