RU2454247C1 - Method for prevention of acute graft-versus-host disease following marrow allografting - Google Patents

Method for prevention of acute graft-versus-host disease following marrow allografting Download PDF

Info

Publication number
RU2454247C1
RU2454247C1 RU2010150872/10A RU2010150872A RU2454247C1 RU 2454247 C1 RU2454247 C1 RU 2454247C1 RU 2010150872/10 A RU2010150872/10 A RU 2010150872/10A RU 2010150872 A RU2010150872 A RU 2010150872A RU 2454247 C1 RU2454247 C1 RU 2454247C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
patient
cells
prevention
bone marrow
allografting
Prior art date
Application number
RU2010150872/10A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Валерий Григорьевич Савченко (RU)
Валерий Григорьевич Савченко
Нина Иосифовна Дризе (RU)
Нина Иосифовна Дризе
Лариса Анатольевна Кузьмина (RU)
Лариса Анатольевна Кузьмина
Наталья Арнольдовна Петинати (RU)
Наталья Арнольдовна Петинати
Елена Николаевна Паровичникова (RU)
Елена Николаевна Паровичникова
Ирина Николаевна Шипунова (RU)
Ирина Николаевна Шипунова
Дарья Анатольевна Свинарева (RU)
Дарья Анатольевна Свинарева
Кира Сергеевна Момотюк (RU)
Кира Сергеевна Момотюк
Юлия Вячеславовна Ольшанская (RU)
Юлия Вячеславовна Ольшанская
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное учреждение "Гематологический научный центр" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации (ФГБУ ГНЦ Минздравсоцразвития России)
Государственное унитарное предприятие г. Москвы Международный научный и клинический центр "Интермедбиофизхим" (ГУП МНКЦ "Интермедбиофизхим")
Общество с ограниченной ответственностью "Гематолог" (ООО "Гематолог")
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное учреждение "Гематологический научный центр" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации (ФГБУ ГНЦ Минздравсоцразвития России), Государственное унитарное предприятие г. Москвы Международный научный и клинический центр "Интермедбиофизхим" (ГУП МНКЦ "Интермедбиофизхим"), Общество с ограниченной ответственностью "Гематолог" (ООО "Гематолог") filed Critical Федеральное государственное бюджетное учреждение "Гематологический научный центр" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации (ФГБУ ГНЦ Минздравсоцразвития России)
Priority to RU2010150872/10A priority Critical patent/RU2454247C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2454247C1 publication Critical patent/RU2454247C1/en

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: invention refers to medicine, more specifically to haematology, and is applicable for immune response modulation, particularly for prevention of acute graft-versus-host disease following marrow allografting. Donor multipotent mesenchymal stromal cells recovered from bone marrow, cultured on a human blood plasma medium enriched in platelet lysate are introduced intravenously in the amount of 1x106 grafted cells per one kg of patient's body weight at the moment of leukocyte recovery in patient's peripheral blood following marrow allografting min. 1.0×109/l.
EFFECT: method provides effective prevention of acute graft-versus-host disease following marrow allografting.
5 ex

Description

Изобретение относится к медицине, а именно к гематологии, и может быть использовано для модуляции иммунного ответа, в частности для профилактики острой реакции трансплантат против хозяина (оРТПХ) после трансплантации аллогенного костного мозга.The invention relates to medicine, namely to hematology, and can be used to modulate the immune response, in particular for the prevention of acute transplant versus host (GVHD) reaction after allogeneic bone marrow transplantation.

Трансплантация аллогенных гемопоэтических стволовых клеток (ТГСК) используется для лечения многих онкогематологических заболеваний, а также апластической анемии и солидных опухолей и является, зачастую, единственным методом полного излечения пациентов. Реакция трансплантат против хозяина (РТПХ) - это главное осложнение, возникающее после трансплантации аллогенных стволовых кроветворных клеток, связанное с повреждением органов и тканей реципиента иммунокомпетентными Т-лимфоцитами донора. Целью множества работ является достижение успешного приживления донорских кроветворных клеток, сопровождающегося противоопухолевым эффектом и при этом не приводящего к РТПХ. Несмотря на все усилия, у 10-80% пациентов после трансплантации аллогенных гемопоэтических стволовых клеток в течение первых 100 дней после ТГСК развивается острая РТПХ. Основные органы-мишени при этом осложнении: кожа, печень и желудочно-кишечный тракт. Реакция трансплантат против хозяина, особенно ее резистентная форма, остается основной причиной смерти реципиентов после ТГСК. Примерно половина пациентов с резистентными к лечению формами оРТПХ погибают, как правило, вследствие ассоциированных с этим процессом инфекций. Профилактика реакции трансплантат против хозяина с помощью иммуносупрессивной терапии или удаления донорских лимфоцитов из трансплантированных кроветворных клеток не всегда является полностью успешной. Лечение оРТПХ включает использование иммуносупрессивных препаратов, таких как глюкокортикоиды, циклоспорин/такролимус, антитимоцитарный глобулин, моноклональные антитела. Однако все эти средства увеличивают риск неприживления трансплантата, развития инфекционных осложнений и рецидивов исходного заболевания.Allogeneic hematopoietic stem cell transplantation (HSCT) is used to treat many oncohematological diseases, as well as aplastic anemia and solid tumors, and is often the only method to completely cure patients. The graft versus host (GVHD) reaction is the main complication that occurs after transplantation of allogeneic hematopoietic stem cells associated with damage to recipient organs and tissues by immunocompetent T-lymphocytes of the donor. The aim of many works is to achieve successful engraftment of donor hematopoietic cells, accompanied by an antitumor effect and at the same time not leading to GVHD. Despite all efforts, in 10-80% of patients after transplantation of allogeneic hematopoietic stem cells, acute GVHD develops during the first 100 days after HSCT. The main target organs in this complication are the skin, liver and gastrointestinal tract. The graft versus host reaction, especially its resistant form, remains the leading cause of death for recipients after HSCT. Approximately half of patients with treatment-resistant forms of GVHD die, usually due to infections associated with this process. Prevention of the graft versus host reaction using immunosuppressive therapy or removal of donor lymphocytes from transplanted hematopoietic cells is not always completely successful. Treatment of GVHD includes the use of immunosuppressive drugs such as glucocorticoids, cyclosporin / tacrolimus, antithymocyte globulin, monoclonal antibodies. However, all these agents increase the risk of transplant non-healing, the development of infectious complications and relapse of the original disease.

Хроническая реакция трансплантат против хозяина (хРТПХ) обычно развивается через 100-500 дней после ТГСК примерно у 50% пациентов и сопровождается симптомами, аналогичными аутоиммунным заболеваниям. Частота развития хРТПХ выше у больных, ранее перенесших острую РТПХ. Современная терапия хронической реакции трансплантат против хозяина включает в себя иммуносупрессоры и цитостатические препараты. Как и в случае с оРТПХ, длительное лечение иммуносупрессивными препаратами повышает риск развития инфекций и рецидивов заболевания. В связи с этим исключительно важным является применение новых методов терапии РТПХ.A chronic graft versus host (hRTP) reaction usually develops 100-500 days after HSCT in about 50% of patients and is accompanied by symptoms similar to autoimmune diseases. The incidence of hRTP is higher in patients previously undergoing acute GVHD. Modern therapy for the chronic transplant versus host reaction includes immunosuppressants and cytostatic drugs. As with GVHD, prolonged treatment with immunosuppressive drugs increases the risk of infections and relapses. In this regard, the use of new methods of treatment for GVHD is extremely important.

Для клеток человека было предложено определять мезенхимальные стволовые клетки (МСК) как прилипающие к пластику фибробластоподобные клетки костного мозга, способные дифференцироваться в костном, хрящевом и жировом направлениях под действием соотвествующих индукторов in vitro (Caplan, (1991) J.Orthop.Res., 9:641-650). Для клеток, отвечающих этому определению, невозможно доказать способность к самоподдержанию. В связи с этим было предложено называть подобные клетки мультипотентными мезенхимальными стромальными клетками (ММСК) (Horwitz et al., (2005) Cytotherapy., 7:393-395), а термин МСК использовать только для клеток, у которых доказана способность к самоподдержанию. В клеточной терапии используются мезенхимальные клетки-предшественники, являющиеся по сути ММСК.For human cells, it was proposed to define mesenchymal stem cells (MSCs) as fibroblast-like bone marrow cells that adhere to plastic and are able to differentiate in the bone, cartilage, and fat directions under the action of appropriate in vitro inducers (Caplan, (1991) J. Orthop.Res., 9 : 641-650). For cells that meet this definition, it is impossible to prove self-sustainability. In this regard, it was proposed to call such cells multipotent mesenchymal stromal cells (MMSCs) (Horwitz et al., (2005) Cytotherapy., 7: 393-395), and use the term MSCs only for cells that have proven self-sustainability. In cell therapy, mesenchymal progenitor cells are used, which are essentially MMSCs.

ММСК, выделенные из костного мозга, обладают иммуносупрессивными свойствами, что было продемонстрировано в исследованиях in vivo и in vitro. ММСК не экспрессируют маркеры кроветворных клеток, такие как CD45, CD34, CD3, CD14, тогда как CD29, CD90, CD73, CD105, CD106, CD146 и CD273 являются маркерами ММСК (Majumdar et al., (2003) J.Biomed. Sci., 10:228-241). ММСК - это мультипотентные клетки, способные дифференцироваться в различные линии мезенхимной дифференцировки, включая адипоциты, хондроциты и остеоциты (Pittenger et al., (1999) Science, 284:143-147). ММСК секретируют различные цитокины, ростовые факторы и молекулы внеклеточного матрикса, которые играют важную роль в пролиферации и созревании стволовых кроветворных клеток (Jones et al., (2008) Exp. Hematol., 36:733-741). Изучение свойств ММСК при культивировании в системе in vitro показало, что эти клетки не иммуногенны и обладают иммуносупрессивными свойствами. Возможность получить при культивировании большое количество ММСК, необходимое для терапевтических нужд, привело к быстрому переходу от экспериментального изучения in vitro к использованию этих клеток в Фазе П клинических протоколов (Jones et al., (2008) Exp. Hematol., 36:733-741).MMSCs isolated from bone marrow have immunosuppressive properties, as demonstrated in in vivo and in vitro studies. MMSCs do not express hematopoietic cell markers such as CD45, CD34, CD3, CD14, whereas CD29, CD90, CD73, CD105, CD106, CD146 and CD273 are markers of MMSCs (Majumdar et al., (2003) J. Biomed. Sci. 10: 228-241). MMSCs are multipotent cells capable of differentiating into various mesenchymal differentiation lines, including adipocytes, chondrocytes, and osteocytes (Pittenger et al., (1999) Science, 284: 143-147). MMSCs secrete various cytokines, growth factors, and extracellular matrix molecules that play an important role in the proliferation and maturation of hematopoietic stem cells (Jones et al., (2008) Exp. Hematol., 36: 733-741). The study of the properties of MMSCs during cultivation in the in vitro system showed that these cells are not immunogenic and possess immunosuppressive properties. The ability to obtain a large number of MMSCs needed for therapeutic needs during cultivation led to a rapid transition from an experimental in vitro study to the use of these cells in Phase P clinical protocols (Jones et al., (2008) Exp. Hematol., 36: 733-741 )

ММСК получают из различных эмбриональных и взрослых тканей, к которым относятся костный мозг, жировая ткань, дерма, клетки пуповинной крови, плаценты и амниотической жидкости. Основным способом их получения является выделение популяции фибробластоподобных клеток, прилипающих к пластику культуральной посуды (номера патентов RU 2331670 C1, 20.08.2008, RU 2323252 C1, 27.04.2008, RU 2303632 C1, 27.07.2007, RU 2280462 C2, 27.07.2006, RU 2252252 C1, 20.05.2005, WO 1999047163, 23.09.1999, WO 2005093044, 06.10.2005, WO 2007143139, 13.12.2007, WO 2009040666, 02.04.2009).MMSCs are obtained from various embryonic and adult tissues, which include bone marrow, adipose tissue, dermis, cord blood cells, placenta, and amniotic fluid. The main way to obtain them is to isolate a population of fibroblast-like cells adhering to the plastic of culture dishes (patent numbers RU 2331670 C1, 08.20.2008, RU 2323252 C1, 04.27.2008, RU 2303632 C1, 07.27.2007, RU 2280462 C2, 07.27.2006, RU 2252252 C1, 05.20.2005, WO 1999047163, 09/23/1999, WO 2005093044, 10/06/2005, WO 2007143139, 12/13/2007, WO 2009040666, 04/02/2009).

Было показано, что ММСК избегают аллогенного отторжения у человека (Aggarwal et al., (2005) Blood, 105:1815-1822), (Le Blanc et al., (2004) Scand.J.Immunol., 60:307-315) и могут быть трансплантированы без специальной иммуносупрессии (Majumdar et al., (2003) J.Biomed.Sci., 10:228-241).MMSCs have been shown to avoid allogeneic rejection in humans (Aggarwal et al., (2005) Blood, 105: 1815-1822), (Le Blanc et al., (2004) Scand.J. Immmunol., 60: 307-315 ) and can be transplanted without special immunosuppression (Majumdar et al., (2003) J. Biomed.Sci., 10: 228-241).

Наличие у ММСК иммуномодулирующих свойств позволяет их использовать для лечения аутоиммунных заболеваний (RU 2298410 C1, 10.05.2007, WO 2005093044, 06.10.2005, WO 2008042174, 10.04.2008). В некоторых работах использовали биотрансплантат для лечения аутоиммунных и ревматических заболеваний, содержащий мезенхимальные стволовые клетки (МСК), полученные из фетального, донорского или аутологичного материала, при этом ткань дезагрегировали, полученную клеточную суспензию ресуспендировали и культивировали на ростовой среде, содержащей трансферин, инсулин, фактор роста фибробластов и гепарин до накопления в культуре клеток зрелой стромы. Способ лечения аутоиммунных и ревматических заболеваний заключался во внутривенном капельном введении МСК от 50 до 500 млн в 50-100 мл физиологического раствора или инфукола (RU 2298410 C1, 10.05.2007). В других случаях МСК культивировали на ростовой среде, содержащей 10% эмбриональной телячьей сыворотки, до накопления в культуре необходимого количества клеток. Способ лечения заключался во внутривенном, внутрибрюшинном или локальном (непосредственно в орган) введении от 10 тыс. до 100 млн МСК (WO 2005093044, 06.10.2005, WO 2008042174, 10.04.2008).The presence of immunomodulatory properties in MMSCs allows them to be used for the treatment of autoimmune diseases (RU 2298410 C1, 05/10/2007, WO 2005093044, 10/06/2005, WO 2008042174, 04/10/2008). Some studies used a biograft for the treatment of autoimmune and rheumatic diseases containing mesenchymal stem cells (MSCs) obtained from fetal, donor or autologous material, the tissue was disaggregated, the resulting cell suspension was resuspended and cultured on a growth medium containing transferrin, insulin, factor growth of fibroblasts and heparin before the accumulation of mature stroma cells in the culture. A method for the treatment of autoimmune and rheumatic diseases consisted in the intravenous drip of MSCs from 50 to 500 million in 50-100 ml of physiological saline or infucol (RU 2298410 C1, 05/10/2007). In other cases, MSCs were cultured on growth medium containing 10% fetal calf serum until the required number of cells was accumulated in the culture. The treatment method consisted of intravenous, intraperitoneal, or local (directly to the organ) administration from 10 thousand to 100 million MSCs (WO 2005093044, 10/06/2005, WO 2008042174, 04/10/2008).

В последнее время были получены важные данные по изучению иммуномодулирующих свойств ММСК, с помощью которых эти клетки могут предотвращать или лечить РТПХ.Recently, important data have been obtained on the study of the immunomodulating properties of MMSCs, with the help of which these cells can prevent or treat GVHD.

На основании полученных данных ММСК начали использовать в клинике (Le Blanc et al., (2004) Lancet, 363:1439-1441), было пролечено большое количество пациентов с помощью ММСК и получены обнадеживающие результаты (Jorgensen С. et al., (2003) Gene Therapy, 10, 928-931). В работе Ле Бланк с соавторами (Ringden et al., (2006) Transplantation, 81:1390-1397) было показано, что введение ММСК связано со значительным улучшением состояния больных без достоверных побочных эффектов. Однако механизм действия ММСК, приводящий к клиническому улучшению состояния больных, остается неизвестным, а работы на моделях животных пока не дали однозначных результатов. В различных исследованиях на животных было установлено, что ММСК высокоэффективно предотвращают развитие РТПХ, однако, не являются предпочтительной терапией для лечения уже развившейся тяжелой РТПХ (Tisato et al., (2007) Leukemia, 21:1992-1999), (Sudres et al., (2006) J. Immunol., 176:7761-7767). Работа Toubai Т. et al., Mesenchymal Stem Cells for Treatment and Prevention of Graft-Versus-Host Disease After Allogeneic Hematopoietic Cell Transplantation, Current Stem Cell Research & Therapy, 2009, 4, 252-259, в которой приведены 6 работ по профилактике острой реакции трансплантат против хозяина на мышиных моделях, в частности работа (Tisato et al., (2007) Leukemia, 21:1992-1999), является ближайшим аналогом (прототипом) заявленного способа. В данном аналоге признаками, совпадающими с существенными признаками заявляемого изобретения, являются (1) использование ММСК для (2) профилактики развития оРТПХ. Однако работы выполнены на ММСК мыши либо на ММСК, полученных из пуповинной крови человека, в качестве реципиентов были использованы иммунодефицитные мыши, что препятствует получению технического результата, который обеспечивается представляемым изобретением. В настоящее время все опубликованные работы по профилактике острой реакции трансплантат против хозяина выполнены на мышах. Нет ни одной работы по профилактике острой реакции трансплантат против хозяина с помощью мезенхимальных клеток у человека.Based on the data obtained, MMSCs were started to be used in the clinic (Le Blanc et al., (2004) Lancet, 363: 1439-1441), a large number of patients were treated with MMSCs and encouraging results were obtained (Jorgensen C. et al., (2003 ) Gene Therapy, 10, 928-931). Le Blanck et al. (Ringden et al., (2006) Transplantation, 81: 1390-1397) have shown that the administration of MMSCs is associated with a significant improvement in the condition of patients without significant side effects. However, the mechanism of action of MMSC, leading to a clinical improvement in the condition of patients, remains unknown, and work on animal models has not yet yielded unambiguous results. Various animal studies have found that MMSCs highly effective in preventing the development of GVHD, however, are not the preferred treatment for the treatment of severe GVHD already developed (Tisato et al., (2007) Leukemia, 21: 1992-1999) (Sudres et al. , (2006) J. Immunol., 176: 7761-7767). Toubai T. et al., Mesenchymal Stem Cells for Treatment and Prevention of Graft-Versus-Host Disease After Allogeneic Hematopoietic Cell Transplantation, Current Stem Cell Research & Therapy, 2009, 4, 252-259, which lists 6 prevention works The acute transplant versus host reaction in mouse models, in particular the work (Tisato et al., (2007) Leukemia, 21: 1992-1999), is the closest analogue (prototype) of the claimed method. In this analogue, the signs that coincide with the essential features of the claimed invention are (1) the use of MMSC for (2) the prevention of the development of GVHD. However, the work was performed on MMSCs of mice or MMSCs obtained from human umbilical cord blood; immunodeficient mice were used as recipients, which impedes the achievement of the technical result provided by the present invention. Currently, all published work on the prevention of acute transplant versus host reaction has been performed in mice. There is no work on the prevention of an acute transplant versus host reaction with mesenchymal cells in humans.

Для лечения и профилактики РТПХ в зарубежных патентах в качестве иммуносупрессивного агента предлагается применять как сами ММСК, так и кондиционированную среду, в которой предварительно культивировали ММСК, а также лизаты этих клеток (WO 2001032189, 10.05.2001, WO 1999047163, 23.09.1999, WO 2009134429, 05.11.2009). В некоторых случаях применение ММСК сочетали со стандартной иммуносупрессивной терапией (WO 2007089627, 09.08.2007, WO 2007143139, 13.12.2007).For the treatment and prophylaxis of GVHD in foreign patents, it is proposed to use both MMSCs themselves and an air-conditioned environment in which MMSCs were pre-cultured, as well as lysates of these cells, as immunosuppressive agents (WO 2001032189, 05/10/2001, WO 1999047163, 09/23/1999, WO 2009134429, 11/05/2009). In some cases, the use of MMSCs was combined with standard immunosuppressive therapy (WO 2007089627, 08/09/2007, WO 2007143139, 12/13/2007).

Все описанные методы получения ММСК использовали либо бессыворочную среду, либо эмбриональную телячью сыворотку (ЭТС). Известно, что на бессывороточной среде клетки хуже растут и быстрее стареют. Использование ЭТС связано, во-первых, с соприкосновением клеток человека с продуктом животного происхождения, что может привести к различным осложнениям (Samuelsson et al., (2009) Cytotherapy., 11:129-136), а во-вторых, на остатки ЭТС, попадающие в организм пациентов, у них развивается иммунный ответ. Так, при лечении несовершенного остеогенеза у ребенка, получавшего несколько раз ММСК от отца, выращенные в среде с ЭТС, выработались антитела к ЭТС, которые нивелировали действие трансплантата (Horwitz et al., (1999) Nat.Med., 5:309-313).All the described methods for the preparation of MMSCs used either a serum-free medium or fetal calf serum (ETS). It is known that on a serum-free medium, cells grow worse and age faster. The use of ETS is associated, firstly, with the contact of human cells with a product of animal origin, which can lead to various complications (Samuelsson et al., (2009) Cytotherapy., 11: 129-136), and secondly, the remnants of ETS that enter the body of patients, they develop an immune response. Thus, in the treatment of osteogenesis imperfecta in a child who received MMSC from his father several times, grown in an environment with ETS, antibodies to ETS were developed that neutralized the effect of the graft (Horwitz et al., (1999) Nat.Med., 5: 309-313 )

Этих осложнений можно избежать, если использовать вместо ЭТС плазму, обогащенную тромбоцитами. В работе Ланге с соавторами (Lange et al., (2007) J.Cell Physiol, 213:18-26) показано, что добавление к среде культивирования 5% лизата тромбоцитов, полученного из концентрата тромбоцитов, обеспечивает рост ММСК с эффективностью, аналогичной росту в присутствии ЭТС.These complications can be avoided by using platelet-rich plasma instead of ETS. Lange et al. (2007) J. Cell Physiol, 213: 18-26) showed that the addition of 5% platelet lysate obtained from platelet concentrate to the culture medium provides MMSC growth with an efficiency similar to that in the presence of ETS.

Технический результат заявленного изобретения на основе разработанной клеточной технологии заключается в повышении эффективности профилактики оРТПХ за счет снижения осложнений при использовании ММСК из клеток костного мозга доноров.The technical result of the claimed invention based on the developed cell technology is to increase the effectiveness of the prophylaxis of GVHD by reducing complications when using MMSCs from donor bone marrow cells.

Задача профилактики оРТПХ решается за счет того, что используют мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки донора (ММСКД), выращенные на среде с плазмой крови человека, обогащенной лизированными тромбоцитами. При этом клетки вводят внутривенно в количестве 1×106 на кг веса больного в момент восстановления лейкоцитов в периферической крови больного после трансплантации аллогенного костного мозга более 1,0×109/л.The task of preventing GVHD is achieved by using multipotent mesenchymal stromal donor cells (MSCSD) grown on a medium with human blood plasma enriched in lysed platelets. In this case, the cells are injected intravenously in an amount of 1 × 10 6 per kg of patient weight at the time of recovery of leukocytes in the patient’s peripheral blood after transplantation of allogeneic bone marrow of more than 1.0 × 10 9 / L.

Плазму крови человека, обогащенную тромбоцитами (концентрация тромбоцитов 0,5-1.9×109/мл), получают, предпочтительно, в результате размораживания предварительно замороженного при -70°С аппаратного тромбоконцентрата с последующим осаждением лизата тромбоцитов при 12000 об/мин в течение 15 минут.The human blood plasma enriched with platelets (platelet concentration 0.5-1.9 × 10 9 / ml) is obtained, preferably, by thawing a platelet concentrate pre-frozen at -70 ° C, followed by precipitation of platelet lysate at 12,000 rpm for 15 minutes.

ММСКД могут быть получены из ядросодержащих клеток костного мозга донора.MSCDs can be obtained from nucleated donor bone marrow cells.

Ядросодержащие клетки костного мозга донора получают ресуспендированием костного мозга в питательной среде с 0,1% метилцеллулозы, инкубацией смеси при комнатной температуре в течение 40 минут и последующим центрифугированием фракции, не содержащей эритроцитов, при 1500 об/мин в течение 10 минут.Nucleating donor bone marrow cells are obtained by resuspending the bone marrow in a culture medium with 0.1% methylcellulose, incubating the mixture at room temperature for 40 minutes and then centrifuging the erythrocyte-free fraction at 1500 rpm for 10 minutes.

Ядросодержащие клетки культивируют в среде αМЕМ с 4% плазмы, обогащенной тромбоцитами, 200 мМ L-глутамина и антибиотиками в концентрации 120000 клеток на см2 площади дна флакона.Nucleated cells are cultured in αMEM medium with 4% platelet-rich plasma, 200 mM L-glutamine and antibiotics at a concentration of 120,000 cells per cm 2 of the bottom area of the vial.

Мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки донора, достигшие конфлуэнтности, снимают с подложки с помощью 0,025% трипсина и пассируют в концентрации 4500 клеток на 1 см2 дна флакона.Multipotent donor mesenchymal stromal cells that have reached confluence are removed from the substrate using 0.025% trypsin and passaged at a concentration of 4500 cells per 1 cm 2 of the bottom of the vial.

ММСКД после снятия с подложки могут быть центрифугированы при 1500 об/мин в течение 10 минут и ресуспендированы в полиглюкине в необходимом количестве.After removal from the substrate, the MMSCD can be centrifuged at 1500 rpm for 10 minutes and resuspended in polyglucin in the required amount.

ММСКД вводят в количестве 1×106/кг веса больного внутривенно в течение 10 мин.MSCD is administered in an amount of 1 × 10 6 / kg of patient weight intravenously for 10 minutes.

ММСКД могут быть использованы как непосредственно после их получения, так и после размораживания клеток, ранее замороженных в парах жидкого азота в среде с 10% диметилсульфоксида.MSCDs can be used both immediately after their preparation and after thawing of cells previously frozen in liquid nitrogen vapors in an environment with 10% dimethyl sulfoxide.

Мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки донора могут быть введены для профилактики оРТПХ в период восстановления кроветворения после трансплантации стволовых кроветворных клеток (ТСКК), определяемый по восстановлению количества лейкоцитов в его периферической крови более 1,0×109/л. Достигаемый результат заключается в получении совместимых с иммунной системой больного ММСКД в оптимальных условиях культивирования, а также введении их больному в необходимом количестве и в строго определенное время.Multipotent donor mesenchymal stromal cells can be introduced for the prevention of GVHD during the recovery of hematopoiesis after transplantation of stem hematopoietic cells (HSCT), determined by restoring the number of leukocytes in its peripheral blood to more than 1.0 × 10 9 / L. The achieved result is to obtain MMSCSD compatible with the patient’s immune system under optimal cultivation conditions, as well as to administer them to the patient in the required quantity and at a strictly defined time.

Пример 1.Example 1

Больная Б., 20 лет, диагноз - хронический миелолейкоз, вес 56 кг. Трансплантация аллогенного костного мозга выполнена 17.12.08. Через 27 дней в периферической крови больной было отмечено восстановление лейкоцитов до 1,4×109/л. ММСКД в дозе 70×106 (1,25×106/кг) введены 14.01.2009. Осложнений отмечено не было. Признаков реакции «трансплантат против хозяина» отмечено не было. Срок наблюдения составляет 1 год 9 месяцев.Patient B., 20 years old, diagnosed with chronic myelogenous leukemia, weight 56 kg. Allogeneic bone marrow transplantation was performed on 12/17/08. After 27 days in the patient’s peripheral blood, leukocyte recovery to 1.4 × 10 9 / L was noted. MSCSD in a dose of 70 × 10 6 (1.25 × 10 6 / kg) was introduced on January 14, 2009. No complications were noted. There were no signs of a graft versus host reaction. The observation period is 1 year 9 months.

Пример 2.Example 2

Больная К., 22 лет, диагноз - острый лимфобластный лейкоз, вес 48 кг. Трансплантация аллогенного костного мозга выполнена 10.02.09. Через 20 дней в периферической крови больной было отмечено восстановление лейкоцитов до 1,6×109/л. ММСКД перелиты 11.03.2009, доза 53×106 (1,1×106/кг). Отмечалось повышение температуры до 37,8°С. Признаков реакции «трансплантат против хозяина» отмечено не было. Срок наблюдения составляет 1 год 8 месяцев.Patient K., 22 years old, diagnosed with acute lymphoblastic leukemia, weight 48 kg. Allogeneic bone marrow transplantation was performed on 02.10.09. After 20 days in the patient’s peripheral blood, leukocyte recovery to 1.6 × 10 9 / L was noted. MSCSD was transfused on March 11, 2009, with a dose of 53 × 10 6 (1.1 × 10 6 / kg). An increase in temperature to 37.8 ° C was noted. There were no signs of a graft versus host reaction. The observation period is 1 year 8 months.

Пример 3.Example 3

Больная П., 29 лет, диагноз - острый миелобластный лейкоз, вес 60 кг. Трансплантация аллогенного костного мозга выполнена 20.02.09. Через 24 дня в периферической крови больной было отмечено восстановление лейкоцитов до 1,0×109/л. 23.03.2009 введены ММСКД в дозе 60×106 (1,0×106/кг). Отмечалось повышение температуры до 38,1°С с ознобом. Признаков РТПХ нет. Срок наблюдения составляет 1 год 8 месяцев.Patient P., 29 years old, diagnosed with acute myeloid leukemia, weight 60 kg. Allogeneic bone marrow transplantation was performed on 02.20.09. After 24 days in the patient’s peripheral blood, leukocyte recovery to 1.0 × 10 9 / L was noted. March 23, 2009 introduced MSCSD in a dose of 60 × 10 6 (1.0 × 10 6 / kg). There was an increase in temperature to 38.1 ° C with chills. There are no signs of GVHD. The observation period is 1 year 8 months.

Пример 4.Example 4

Больная Р., 46 лет, с диагнозом острый миелобластный лейкоз, вес 56 кг. Трансплантация аллогенного костного мозга проведена 27.03.09. Через 20 дней в периферической крови больной было отмечено восстановление лейкоцитов до 1,0×109/л. 20.05.2009 введены ММСКД в дозе 60×106 (1,07×106/кг). Отмечалось повышение температуры до 38,8°С с ознобом. Признаков РТПХ нет. Срок наблюдения составляет 1 год 7 месяцев.Patient R., 46 years old, with a diagnosis of acute myeloid leukemia, weight 56 kg. Allogeneic bone marrow transplantation was performed on 03/27/09. After 20 days in the patient’s peripheral blood, leukocyte recovery to 1.0 × 10 9 / L was noted. 05/20/2009 MMSKD was introduced at a dose of 60 × 10 6 (1.07 × 10 6 / kg). There was an increase in temperature to 38.8 ° C with chills. There are no signs of GVHD. The observation period is 1 year 7 months.

Пример 5.Example 5

Больной Р., 47 лет, с диагнозом миелодиспластический синдром, вес 70 кг. Трансплантация аллогенного костного мозга проведена 08.12.09. Через 23 дня в периферической крови больного было отмечено восстановление лейкоцитов до 1,2×109/л. 11.01.2010 введены ММСКД в дозе 65×106 (0,93×106/кг). Отмечалось повышение температуры до 37,8°С с ознобом. Признаков РТПХ нет. Срок наблюдения составляет 10 месяцев.Patient R., 47 years old, diagnosed with myelodysplastic syndrome, weight 70 kg. Allogeneic bone marrow transplantation was performed on 12/08/09. After 23 days in the patient’s peripheral blood, leukocyte recovery to 1.2 × 10 9 / L was noted. 01/11/2010 introduced MSCSD in a dose of 65 × 10 6 (0.93 × 10 6 / kg). There was an increase in temperature to 37.8 ° C with chills. There are no signs of GVHD. The observation period is 10 months.

Всего для профилактики оРТПХ вводили ММСКД 13 пациентам. У всех 13 не было отмечено развития оРТПХ - II и более степени, у двух пациентов до ведения ММСКД отмечались признаки острой реакции трансплантат против хозяина I ст, которые полностью регрессировали после введения мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток донора. Из 12 пациентов, которым не вводили ММСКД в период восстановления количества лейкоцитов в периферической крови более 1,0×109/л, у 9 развилась оРТПХ II и более степени. Не обнаружено разницы в инфекционных осложнениях, количестве рецидивов основного заболевания, случаев отторжения трансплантата и общей летальности в группах пациентов, которым проводилась и не проводилась профилактика оРТПХ с помощью ММСКД.In total, 13 patients were administered MMSCSD for the prevention of GVHD. All 13 did not show the development of GVHD - II or more, in two patients, prior to the management of MMSC, there were signs of an acute graft versus host I st reaction that completely regressed after administration of multipotent mesenchymal stromal donor cells. Of the 12 patients who were not injected with MMSCD during the period of recovery of the number of leukocytes in the peripheral blood of more than 1.0 × 10 9 / L, 9 developed advanced GVHD II and more. There was no difference in infectious complications, the number of relapses of the underlying disease, cases of transplant rejection and general mortality in the groups of patients who underwent and did not carry out the prophylaxis of GVHD with the help of MMSC.

Таким образом, своевременное введение ММСКД является эффективной профилактикой развития оРТПХ у больных после трансплантации гемопоэтических стволовых клеток.Thus, timely administration of MMSC is an effective prevention of the development of GVHD in patients after hematopoietic stem cell transplantation.

Claims (1)

Способ профилактики острой реакции трансплантат против хозяина при аллогенной трансплантации костного мозга, включающий введение больному мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток донора, полученных из костного мозга донора, отличающийся тем, что используют мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки донора, полученные из костного мозга донора, выращенные на среде с плазмой крови человека, обогащенной лизированными тромбоцитами, которые вводят внутривенно в количестве 1×106 трансплантируемых клеток на 1 кг веса больного в момент восстановления лейкоцитов в периферической крови больного после трансплантации аллогенного костного мозга более 1,0×109/л. A method for the prevention of an acute transplant versus host reaction during allogeneic bone marrow transplantation, comprising administering to a patient multipotent mesenchymal stromal donor cells obtained from donor bone marrow, characterized in that multipotent mesenchymal stromal donor stromal cells obtained from donor bone marrow grown on plasma medium are used human blood enriched lysed platelets, which is administered intravenously in an amount of 1 × 10 June transplantable cells per 1 kg of patient weight th at the time of restoration of leukocytes in the peripheral blood of a patient following transplantation of allogeneic bone marrow more 1,0 × 10 9 / L.
RU2010150872/10A 2010-12-14 2010-12-14 Method for prevention of acute graft-versus-host disease following marrow allografting RU2454247C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2010150872/10A RU2454247C1 (en) 2010-12-14 2010-12-14 Method for prevention of acute graft-versus-host disease following marrow allografting

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2010150872/10A RU2454247C1 (en) 2010-12-14 2010-12-14 Method for prevention of acute graft-versus-host disease following marrow allografting

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2454247C1 true RU2454247C1 (en) 2012-06-27

Family

ID=46681835

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2010150872/10A RU2454247C1 (en) 2010-12-14 2010-12-14 Method for prevention of acute graft-versus-host disease following marrow allografting

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2454247C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2538799C1 (en) * 2013-07-19 2015-01-10 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Гематологический научный центр" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ ГНЦ Минздрава России) Method of treating recurrent acute myeloid leukaemia following transplantation of allogenic haemopoietic stem cells

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2380105C1 (en) * 2008-07-29 2010-01-27 ЗАО "РеМеТэкс" Biotransplant, method for making thereof and method of treating degenerative and traumatic diseases of maxillofacial bone tissue
RU2394585C1 (en) * 2008-12-30 2010-07-20 Государственное учреждение здравоохранения Свердловской области "Центр организации специализированных видов медицинской помощи "Институт медицинских клеточных технологий" (ГУЗ СО "Институт медицинских клеточных технологий") Method of restoring myeloid tissue of old laboratory animals after influence of ionising irradiation

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2380105C1 (en) * 2008-07-29 2010-01-27 ЗАО "РеМеТэкс" Biotransplant, method for making thereof and method of treating degenerative and traumatic diseases of maxillofacial bone tissue
RU2394585C1 (en) * 2008-12-30 2010-07-20 Государственное учреждение здравоохранения Свердловской области "Центр организации специализированных видов медицинской помощи "Институт медицинских клеточных технологий" (ГУЗ СО "Институт медицинских клеточных технологий") Method of restoring myeloid tissue of old laboratory animals after influence of ionising irradiation

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
TOUBAI Т. et al. Mesenchymal stem cells for treatment and prevention of graft-versus-host disease after allogeneic hematopoietic cell transplantation// Curr. Stem. Cell Res. Ther. - 2009, v.4, n.4, p.252-259. LUCCHINI G. et al. Platelet-lysate-expanded mesenchymal stromal cells as a salvage therapy for severe resistant graft-versus-host disease in a pediatric population// Biol. Blood Marrow Transplant. - 2010, v.16, n.9, p.1293-1301. LANGE С. et al. Accelerated and safe expansion of human mesenchymal stromal cells in animal serum-free medium for transplantation and regenerative medicine// J. Cell Physiol. - 2007, v.213, n.1, p.18-26. ПОПОВ А.Ю. Прогнозирование эффективности мобилизации и сбора клеток предшественников гемопоэза у онкологических больных// Автореферат диссертации. - М.: 2008, с.36. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2538799C1 (en) * 2013-07-19 2015-01-10 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Гематологический научный центр" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ ГНЦ Минздрава России) Method of treating recurrent acute myeloid leukaemia following transplantation of allogenic haemopoietic stem cells

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Li et al. Allogeneic vs. autologous mesenchymal stem/stromal cells in their medication practice
Cohen Mesenchymal stem cell transplantation in multiple sclerosis
Das et al. Adult mesenchymal stem cells and their potency in the cell-based therapy
Sensebe et al. Mesenchymal stem cells for clinical application
Gonzaga et al. Mesenchymal stem cell benefits observed in bone marrow failure and acquired aplastic anemia
Crop et al. Potential of mesenchymal stem cells as immune therapy in solid‐organ transplantation
US20120014930A1 (en) Stem cells for treating lung diseases
US9415072B2 (en) Expansion of haemopoietic precursors
Pistoia et al. Potential of mesenchymal stem cells for the therapy of autoimmune diseases
Brouard et al. G-CSF increases mesenchymal precursor cell numbers in the bone marrow via an indirect mechanism involving osteoclast-mediated bone resorption
TW201130977A (en) Mesenchymal stem cells (MSCs) isolated from mobilized peripheral blood
JP2015526065A (en) Isolation and use of stem cells from adipose tissue by ultrasonic cavitation
WO2013067038A1 (en) Adult mesenchymal stem cell (msc) compositions and methods for preparing the same
Romieu-Mourez et al. The immune plasticity of mesenchymal stromal cells from mice and men: concordances and discrepancies
Larsen et al. Potential therapeutic applications of mesenchymal stromal cells
US9650608B2 (en) Activating adipose-derived stem cells for transplantation
KR101520536B1 (en) Differentiation method from tonsil-derived mesenchymal stem cells to hepatocytes and cell therapy composition comprising tonsil-derived mesenchymal stem cells for treatment of hepatopathy
Roh et al. Adult stem cell transplantation in stroke: its limitations and prospects
RU2454247C1 (en) Method for prevention of acute graft-versus-host disease following marrow allografting
Saidi et al. Utilization of Mesenchymal Stem Cells in Kidney Transplantation: From Bench to Bedside.
RU2741769C2 (en) Biomedical cell product, method for its production and application
US11674131B2 (en) Indirect ultrasonic cavitation-derived perivascular cells and methods of use thereof
Balint et al. A stem cell overview: From evolving hemobiological concepts to (auto) grafting in clinical practice
US20220202861A1 (en) Treatment of liver failure by ex vivo reprogrammed immune cells
US20200038451A1 (en) Stem cells as an individualized maternal therapy for prevention of prematurity