RU2451936C1 - Method of detecting conjugated xenobiotics during doping tests in athletes - Google Patents
Method of detecting conjugated xenobiotics during doping tests in athletes Download PDFInfo
- Publication number
- RU2451936C1 RU2451936C1 RU2011109872/15A RU2011109872A RU2451936C1 RU 2451936 C1 RU2451936 C1 RU 2451936C1 RU 2011109872/15 A RU2011109872/15 A RU 2011109872/15A RU 2011109872 A RU2011109872 A RU 2011109872A RU 2451936 C1 RU2451936 C1 RU 2451936C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- xenobiotics
- sample
- coli
- buffer solution
- athletes
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Other Investigation Or Analysis Of Materials By Electrical Means (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к области медицины, а точнее к клинической химии, в частности к способам определения уровня содержания ксенобиотиков в организме, и может быть использовано, например, при допинговом контроле спортсменов.The invention relates to medicine, and more specifically to clinical chemistry, in particular to methods for determining the level of xenobiotics in the body, and can be used, for example, in doping control of athletes.
Известен способ определения ксенобиотиков, например стероидов, методами колориметрического анализа [1].A known method for the determination of xenobiotics, such as steroids, by colorimetric analysis [1].
Способ этот относится к методам качественного анализа и соответственно позволяет определить только наличие стероидов, без определения их структурных характеристик и, собственно, природы. К тому же по указанному способу возможно анализировать объекты только с очень высоким содержанием стероидов.This method relates to methods of qualitative analysis and, accordingly, allows to determine only the presence of steroids, without determining their structural characteristics and, in fact, nature. In addition, according to the specified method, it is possible to analyze objects only with a very high content of steroids.
Известны также способы определения ксенобиотиков методом газовой хроматографии в сочетании с масс-спектрометрией [2-4].Also known are methods for determining xenobiotics by gas chromatography in combination with mass spectrometry [2-4].
Общим недостатком таких методов является трудоемкая и продолжительная во времени стадия получения летучих производных, что существенно усложняет ход анализа, увеличивает его продолжительность и удорожает проведение процесса.A common drawback of such methods is the time-consuming and time-consuming stage of obtaining volatile derivatives, which significantly complicates the analysis, increases its duration and increases the cost of the process.
Наиболее близким по своей технической сущности и достигаемому результату к заявляемому способу является ГХ-МС способ определения конъюгированных ксенобиотиков, в т.ч. стероидов, в моче человека методом газовой хроматографии в сочетании с масс-спектрометрией (ГХ-МС) [5].The closest in its technical essence and the achieved result to the claimed method is the GC-MS method for determining conjugated xenobiotics, including steroids in human urine by gas chromatography in combination with mass spectrometry (GC-MS) [5].
По указанному способу в образец мочи добавляют фосфатный буферный раствор, внутренний стандарт, а также фермент (β-глюкуронидаза E.coli). Смесь перемешивают и инкубируют и после гидролиза добавляют карбонатный буферный раствор и диэтиловый эфир, далее органический слой отделяют после центрифугирования, упаривают досуха, дериватизируют и анализируют методом ГХ/МС. Основным недостатком указанного способа является низкая степень достоверности определения ксенобиотиков и высокий порог чувствительности (например, для эпитестостерона до 25-50 нг/мл), поскольку указанный стероид выводится в мочу в виде как глюкуронидов, так и сульфатов, а анализу подвергаются только глюкурониды.According to this method, a phosphate buffer solution, an internal standard, as well as an enzyme ( E. coli β-glucuronidase ) are added to a urine sample . The mixture is stirred and incubated, and after hydrolysis, a carbonate buffer solution and diethyl ether are added, then the organic layer is separated after centrifugation, evaporated to dryness, derivatized and analyzed by GC / MS. The main disadvantage of this method is the low degree of xenobiotic determination reliability and a high sensitivity threshold (for example, for epitestosterone up to 25-50 ng / ml), since this steroid is excreted in the urine in the form of both glucuronides and sulfates, and only glucuronides are analyzed.
Техническим результатом, на достижение которого направлено создание данного изобретения, является повышение степени достоверности определения ксенобиотиков за счет снижения порога чувствительности определения и расширения номенклатуры определяемых ксенобиотиков (КБ).The technical result, the achievement of which the creation of this invention is directed, is to increase the degree of reliability of the determination of xenobiotics by reducing the sensitivity threshold for determining and expanding the range of determined xenobiotics (KB).
Поставленный технический результат достигается тем, что в процессе пробоподготовки гидролиз анализируемого образца мочи ведут смесью двух ферментов: β-глюкуронидазы E.coli и арилсульфатазы H.pomatia в объемном соотношении от 1:1 до 1:3, и в качестве буферного раствора используют цитратный буферный раствор.The technical result is achieved by the fact that in the process of sample preparation, the hydrolysis of the analyzed urine sample is carried out with a mixture of two enzymes: E. coli β-glucuronidase and H. pomatia aryl sulfatase in a volume ratio of 1: 1 to 1: 3, and citrate buffer is used as a buffer solution solution.
Известно, что при ГХ/МС анализе КБ необходимо провести несколько стадий пробоподготовки, поскольку выведение КБ в мочу происходит после фазы II метаболизма, а именно конъюгирования, во время которого образуются сложные эфиры соединений, причем КБ выводятся в мочу в виде глюкуронидов и сульфатов. Некоторые КБ образуют наиболее долгоживущие метаболиты именно в сульфатной фракции, поэтому их можно обнаружить в биологической жидкости в течение, например, не 8 часов, а в течение 18 или 24 часов, что должно повысить достоверность подтверждения приема допинга спортсменом. Тем не менее в настоящее время концентрации КБ, в том числе и стероидов, по нормативам WADA рассчитывают исходя из глюкуронидов соответствующих соединений [6].It is known that during GC / MS analysis of CB, it is necessary to carry out several stages of sample preparation, since excretion of CB in urine occurs after phase II of metabolism, namely conjugation, during which esters of compounds are formed, and CB is excreted in the urine in the form of glucuronides and sulfates. Some CBs form the most long-lived metabolites in the sulfate fraction, therefore, they can be found in biological fluid for, for example, not 8 hours, but within 18 or 24 hours, which should increase the reliability of confirmation of doping by an athlete. Nevertheless, at present, concentrations of CB, including steroids, according to WADA standards, are calculated on the basis of the glucuronides of the corresponding compounds [6].
При реализации заявляемого изобретения в качестве аппаратурного оформления процесса может быть использован, например, хроматограф Agilent 6890, соединенный с масс-селективным детектором Agilent 5973N с электронной ионизацией (70 eV), колонка Restek Rxi - 1ms (длина 12 м, внутренний диаметр 0.20 мм, толщина неподвижной фазы 0.33 мкм).When implementing the claimed invention as an instrumentation of the process, for example, an Agilent 6890 chromatograph connected to a mass selective Agilent 5973N electron-ionization detector (70 eV), Restek Rxi column - 1ms (length 12 m, internal diameter 0.20 mm, can be used) can be used the thickness of the stationary phase is 0.33 μm).
Температурная программа может быть установлена со следующими параметрами: подъем от 188 до 232°C со скоростью 2°C/мин, далее от 232 до 300°C по 12°C/мин, изотерма 5.33 мин при объеме вводимой пробы 2 мкл в режиме деления потока (1:20), температура инжектора - 280°С. Газ-носитель - гелий (0.6 мл/мин). Температура источника ионов - 230°С, температура переходной линии - 290°С, квадруполя - 150°С, скорость сканирования - 1.69 циклов/сек, диапазон масс в режиме полного сканирования - 50-600 а.е.м. The temperature program can be set with the following parameters: rise from 188 to 232 ° C at a speed of 2 ° C / min, then from 232 to 300 ° C at 12 ° C / min, isotherm 5.33 min with a sample volume of 2 μl in the division mode flow (1:20), the temperature of the injector is 280 ° C. The carrier gas is helium (0.6 ml / min). The temperature of the ion source is 230 ° C, the temperature of the transition line is 290 ° C, the quadrupole is 150 ° C, the scanning speed is 1.69 cycles / s, the mass range in the full scan mode is 50-600 amu.
В качестве реагентов и материалов могут быть использованы, например N-метил-N-(триметилсилил)-трифторацетамид (МСТФА), β-глюкуронидаза из H.pomatia, арилсульфатаза из H.pomatia и ацетат натрия (Sigma-Aldrich, США); стандартные образцы тербуталина, форместана, карведиолола, морфина, тимолола, андростендиона, эпиандростерона и станозолола (Steraloids, Newport, США); метанол, соляная кислота и уксусная кислота (Merck, ФРГ); дигидрофосфат калия, гидрофосфат натрия и йодид аммония (Riedel-de-Haën, ФРГ); карбонат калия, гидрокарбонат калия и сульфат натрия (ХимМед, РФ); диэтиловый эфир (МедХимПром, РФ); 1,4-дитио-DL-триэтол (ДТТ), имидазол (Fluka, Швейцария); цитрат калия (Alfa Aesar, США); внутренний стандарт - метилтестостерон (МТ), D4-андростерон-глюкуронид и D5-этиохоланолон (LGC Standards, Великобритания); деионизированная вода (MilliQ, ФРГ).As reagents and materials, for example, N- methyl - N - (trimethylsilyl) trifluoroacetamide (MSTFA), β-glucuronidase from H. pomatia, aryl sulfatase from H. pomatia and sodium acetate (Sigma-Aldrich, USA) can be used; standard samples of terbutaline, formestane, carvediolol, morphine, timolol, androstenedione, epiandrosterone and stanozolol (Steraloids, Newport, USA); methanol, hydrochloric acid and acetic acid (Merck, Germany); potassium dihydrogen phosphate, sodium hydrogen phosphate and ammonium iodide (Riedel-de-Haën, Germany); potassium carbonate, potassium hydrogen carbonate and sodium sulfate (ChemMed, RF); diethyl ether (MedChemProm, RF); 1,4-dithio-DL-triethol (DTT), imidazole (Fluka, Switzerland); potassium citrate (Alfa Aesar, USA); internal standard - methyltestosterone (MT), D4-androsterone-glucuronide and D5-ethiocholanolone (LGC Standards, UK); deionized water (MilliQ, Germany).
Разумеется, могут быть использованы оборудование, материалы и реактивы других производителей, однако с тем условием, что по качественным характеристикам они будут обеспечивать воспроизводимость результатов исследования в объеме заявляемых патентных притязаний.Of course, equipment, materials and reagents of other manufacturers can be used, however, on the condition that in terms of quality characteristics they will ensure reproducibility of the research results in the scope of the claimed patent claims.
В качестве вспомогательного оборудования могут быть использованы: автоматический шейкер фирмы Glas-Col®, США для ЖЖЭ; центрифуга марки Rotina 46R фирмы Hettich (ФРГ) для получения контрастной поверхности раздела между органической и водной фазами; упариватель фирмы Barnstead Inc. (США), совмещенный с генератором азота марки Mistral-4 фирмы Schmidlin-DBS AG (Чехия) для упаривания органического экстракта. В качестве экстрагента для ЖЖЭ может быть использован метилтретбутиловый эфир (МТБЭ). В качестве регуляторов рН могут быть использованы гидрокарбонат натрия и карбонат калия.As auxiliary equipment the following can be used: automatic shaker of Glas-Col ® company, USA for ZhEZh; a Hettich Rotina 46R centrifuge (Germany) to obtain a contrast interface between the organic and aqueous phases; evaporator of Barnstead Inc. (USA), combined with a Mistral-4 nitrogen generator from Schmidlin-DBS AG (Czech Republic) for evaporation of the organic extract. Methyl tert-butyl ether (MTBE) can be used as an extractant for LCE. Sodium bicarbonate and potassium carbonate can be used as pH adjusters.
Изобретение может быть осуществлено следующим образом.The invention can be implemented as follows.
Готовят образцы мочи, добавляют в них буферный раствор, внутренний стандарт (метилтестостерон, для конечной концентрации 500 нг/мл мочи), точные количества фермента или смеси ферментов. Смесь далее перемешивают и инкубируют при повышенной температуре в течение 1,0 -1,5 ч. По окончании гидролиза в смесь добавляют карбонатный буферный раствор (рН 10,4) и диэтиловый эфир, встряхивают в течение 3-10 мин, центрифугируют, отделяют органический слой и упаривают его досуха и дериватизируют раствором МСТФА/NH4I/ДТТ при нагревании в течение 20-40 минут, дериватизат переносят в виалу и анализируют методом ГХ/МС. Снимают и регистрируют хроматографические и масс-спектрометрические характеристики веществ-эталонов, а также всех растворов и проб (детектируют не менее трех характеристических ионов каждого эталонного вещества, определяют время удержания, молекулярную массу, прекурсор-ионы, характеристичные ионы, нижний предел обнаружения) и полученные результаты вводят в программное обеспечение, например ChemStation фирмы Agillent, США.Urine samples are prepared, a buffer solution, an internal standard (methyltestosterone, for a final concentration of 500 ng / ml urine), the exact amount of the enzyme or enzyme mixture are added to them. The mixture is further stirred and incubated at elevated temperature for 1.0-1.5 hours. After hydrolysis is completed, carbonate buffer solution (pH 10.4) and diethyl ether are added to the mixture, shaken for 3-10 minutes, centrifuged, the organic is separated layer and evaporated to dryness and derivatized with a solution of MSTFA / NH 4 I / DTT with heating for 20-40 minutes, the derivatizate was transferred to a vial and analyzed by GC / MS. The chromatographic and mass spectrometric characteristics of the reference substances, as well as all solutions and samples, are recorded and recorded (at least three characteristic ions of each reference substance are detected, the retention time, molecular weight, precursor ions, characteristic ions, and the lower detection limit are determined) and the obtained the results are entered into software, for example, ChemStation from Agillent, USA.
Для лучшего понимания изобретение может быть проиллюстрировано, но не исчерпано следующими примерами его конкретного осуществления.For a better understanding, the invention can be illustrated, but not exhausted by the following examples of its specific implementation.
Пример 1Example 1
Готовят стандартные растворы аналитов (1 мг/мл), в частности тербуталина, форместана, карведиолола, морфина, тимолола, андростендиона, эпиандростерона и станозолола. Рабочие растворы готовят растворением точной навески ксенобиотиков - эталонов в метаноле. Далее получают рабочие растворы разбавлением стандартных растворов до содержания 10 мкг/мл. Стандартные растворы каждого из КБ (1 мг/мл) готовят растворением точной навески в точном объеме метанола. К 3 мл мочи (из приготовленных ранее образцов) добавляют 1 мл буферного раствора, 30 мкл внутреннего стандарта (МТ, для конечной концентрации 500 нг/мл мочи), точные количества смеси ферментов. Смесь перемешивают и инкубируют при 55°С 1 час 10 минут. После гидролиза добавляют 1 мл карбонатного буферного раствора (рН 10.4) и 5 мл диэтилового эфира. Встряхивают в течение пяти минут, центрифугируют при 3000 об/мин в течение 20 мин; органический слой отделяют, упаривают досуха при 70°C в течение 40 минут и проводят дериватизацию - 50 мкл раствора МСТФА/NH4I/ДТТ (1000:3:2) при нагревании до 70°С в течение 30 минут, раствор переносят в виалу и анализируют далее методом ГХ/МС (параметры аналитической процедуры приведены выше).Prepare standard solutions of analytes (1 mg / ml), in particular terbutaline, formestane, carvediolol, morphine, timolol, androstenedione, epiandrosterone and stanozolol. Working solutions are prepared by dissolving an exact portion of xenobiotics - standards in methanol. Next, working solutions are obtained by diluting standard solutions to a content of 10 μg / ml. Standard solutions of each of the CBs (1 mg / ml) are prepared by dissolving the exact weight in the exact volume of methanol. To 3 ml of urine (from previously prepared samples) add 1 ml of buffer solution, 30 μl of the internal standard (MT, for a final concentration of 500 ng / ml of urine), the exact amount of the mixture of enzymes. The mixture is stirred and incubated at 55 ° C for 1 hour 10 minutes. After hydrolysis, add 1 ml of carbonate buffer solution (pH 10.4) and 5 ml of diethyl ether. Shake for five minutes, centrifuged at 3000 rpm for 20 minutes; the organic layer is separated, evaporated to dryness at 70 ° C for 40 minutes and derivatization is carried out - 50 μl of a solution of MSTFA / NH 4 I / DTT (1000: 3: 2) when heated to 70 ° C for 30 minutes, the solution is transferred to a vial and analyzed further by GC / MS (parameters of the analytical procedure are given above).
С разрешения этической комиссии и согласия добровольцев (5 человек) ими были приняты допинг (андростендион и тербуталин - 1-й; форместан и карведиолол - 2-й; морфин - 3-й; тестостерон - 4-й и станозолол - 5-й). Пробоподготовку образцов мочи допированных добровольцев проводят в описанном выше порядке (добавляют буферный раствор, внутренний стандарт, точные количества фермента или смеси ферментов, далее смеси перемешивают и инкубируют при повышенной температуре в течение 1,0 -1,5 ч) и далее проводят ГХ/МС анализ. КБ в пробах мочи определяют в том же порядке и при тех же параметрах, что и в стандартных растворах. Результаты анализов представлены в Таблице 1. With the permission of the ethics committee and the consent of the volunteers (5 people), they took doping (androstenedione and terbutaline - 1st; formestane and carvediolol - 2nd; morphine - 3rd; testosterone - 4th and stanozolol - 5th) . Sample preparation of urine samples of doped volunteers is carried out in the manner described above (add buffer solution, internal standard, exact amounts of enzyme or enzyme mixture, then mix the mixture and incubate at elevated temperature for 1.0-1.5 h) and then carry out GC / MS analysis. CB in urine samples is determined in the same order and with the same parameters as in standard solutions. The analysis results are presented in Table 1.
Тербуталин, 430Androstenedione, 120
Terbutaline, 430
Карведиолол, 120Formestanan, 260
Carvediolol 120
Одновременно эти же образцы мочи исследуют по методике, предписанной в прототипе (фермент E. Coli, фосфатный буфер). Результаты анализов представлены в Таблице 2.At the same time, these same urine samples are examined according to the method prescribed in the prototype (E. Coli enzyme, phosphate buffer). The analysis results are presented in Table 2.
Тербуталин, 180Androstenedione not detected
Terbutaline, 180
Карведиолол, 120Formestan, 100
Carvediolol 120
Из представленных в Таблице 1 результатов становится очевидным, что использование для гидролиза смеси ферментов E.coli + helix pomatia в цитратном буфере позволяет расширить номенклатуру определяемых КБ, а также существенно понизить порог определения указанных соединений.From the results presented in Table 1, it becomes obvious that the use of E. coli + helix pomatia enzymes for the hydrolysis of a mixture in citrate buffer allows us to expand the range of detectable CBs, as well as significantly lower the threshold for the determination of these compounds.
В частности, это видно из сопоставления полученных результатов в Таблице 2 (количество определенных в пробе КБ - нг/мл).In particular, this can be seen from a comparison of the results obtained in Table 2 (the number of KB detected in the sample is ng / ml).
Для сравнения проводят анализы образцов мочи, подвергнутых гидролизу при различных сочетаниях ферментов и буферов (см. Таблицу 3).For comparison, analyzes of urine samples subjected to hydrolysis with various combinations of enzymes and buffers (see Table 3).
На рис.1-5 представлены результаты анализов для исследованной серии КБ в зависимости от природы фермента(ов) и буфера.Figure 1-5 shows the results of the analyzes for the investigated series of CBs, depending on the nature of the enzyme (s) and buffer.
Из представленных иллюстративных материалов вытекает, что при использовании в качестве гидролизующей среды смеси ферментов (Е.coli + helix pomatia) в цитратном буфере нижний предел обнаружения исследованных КБ по сравнению с известным (единица, или 100%) понижается по меньшей мере до 0,8-0,35 (т.е. в 1,2-1,65 раза)From the presented illustrative materials, it follows that when using a mixture of enzymes (E. coli + helix pomatia) as a hydrolyzing medium in a citrate buffer, the lower detection limit of the studied KB compared with the known one (unit, or 100%) is reduced to at least 0.8 -0.35 (i.e. 1.2-1.65 times)
Пример 2Example 2
Готовят образец мочи, добавляют в него буферный раствор, внутренний стандарт (МТ, для конечной концентрации 500 нг/мл мочи), точные количества фермента или смеси ферментов. Смесь далее перемешивают и инкубируют при повышенной температуре в течение 1,0-1,5 ч и далее процедуру проводят, как в Примере 1, включая технику и условия проведения ГХ/МС анализа, за исключением того, что образец мочи разделяют на пять аликвот и каждую аликвоту подвергают гидролизу при следующих условиях (Таблица 4):A urine sample is prepared, a buffer solution, an internal standard (MT, for a final concentration of 500 ng / ml urine), the exact amount of the enzyme or enzyme mixture are added to it. The mixture is further mixed and incubated at elevated temperature for 1.0-1.5 hours and then the procedure is carried out as in Example 1, including the technique and conditions for GC / MS analysis, except that the urine sample is divided into five aliquots and each aliquot is hydrolyzed under the following conditions (table 4):
На рис.6 приведены результаты определения карведиолола в зависимости от соотношения объемов смеси используемых ферментов.Figure 6 shows the results of the determination of carvediolol depending on the ratio of the volume of the mixture of enzymes used.
Из рис.6 следует, что оптимальное соотношение объемов используемых ферментов составляет 1:2 - 1:3. Выход соотношения за заявленные пределы снижает ожидаемый результат определения ЭС.From Fig. 6 it follows that the optimal ratio of the volumes of enzymes used is 1: 2 - 1: 3. Going beyond the stated limits reduces the expected result of determining the ES.
Как видно из описания и приведенных примеров осуществления способа и сравнительных примеров, изобретение обеспечивает снижение порога чувствительности определения ЭС, а также расширение номенклатуры определяемых соединений.As can be seen from the description and examples of the implementation of the method and comparative examples, the invention provides a decrease in the sensitivity threshold for determining ES, as well as expanding the range of defined compounds.
Источники информацииInformation sources
1. RU 2190853 С2, G01N 33/74, 2002 г.1. RU 2190853 C2, G01N 33/74, 2002
2. Хим. фарм. Журнал, 1988, т.22, с.622.2. Chem. farm. Journal, 1988, v. 22, p. 622.
3. RU 2313086 C2, G01N 30/72, 2007.3. RU 2313086 C2, G01N 30/72, 2007.
4. J.Anal. Toxicol., 2005, v.29, №4, p.217.4. J. Anal. Toxicol., 2005, v.29, No. 4, p. 217.
5. WADA Technical Document - TD2004EAAS - прототип.5. WADA Technical Document - TD2004EAAS - Prototype.
6. Wada Prohibited List, Version 5.0, 2010.6. Wada Prohibited List, Version 5.0, 2010.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2011109872/15A RU2451936C1 (en) | 2011-03-16 | 2011-03-16 | Method of detecting conjugated xenobiotics during doping tests in athletes |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2011109872/15A RU2451936C1 (en) | 2011-03-16 | 2011-03-16 | Method of detecting conjugated xenobiotics during doping tests in athletes |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2451936C1 true RU2451936C1 (en) | 2012-05-27 |
Family
ID=46231758
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2011109872/15A RU2451936C1 (en) | 2011-03-16 | 2011-03-16 | Method of detecting conjugated xenobiotics during doping tests in athletes |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2451936C1 (en) |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2190853C2 (en) * | 1998-11-11 | 2002-10-10 | Российский государственный медицинский университет | Method for detecting total 17- ketosteroids in biological liquids |
RU2384846C1 (en) * | 2008-07-10 | 2010-03-20 | Федеральное государственное унитарное предприятие "Антидопинговый центр" | Method of determining use of corticotropins for during doping tests in athletes |
RU2390773C2 (en) * | 2008-06-05 | 2010-05-27 | Федеральное государственное унитарное предприятие "Антидопинговый центр" | Method of detecting xenobiotics in human urine during doping tests |
-
2011
- 2011-03-16 RU RU2011109872/15A patent/RU2451936C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2190853C2 (en) * | 1998-11-11 | 2002-10-10 | Российский государственный медицинский университет | Method for detecting total 17- ketosteroids in biological liquids |
RU2390773C2 (en) * | 2008-06-05 | 2010-05-27 | Федеральное государственное унитарное предприятие "Антидопинговый центр" | Method of detecting xenobiotics in human urine during doping tests |
RU2384846C1 (en) * | 2008-07-10 | 2010-03-20 | Федеральное государственное унитарное предприятие "Антидопинговый центр" | Method of determining use of corticotropins for during doping tests in athletes |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
CATLIN D.H. et al. Control of Doping with Anabolic Agents. Proceedings of the Scientific Meeting of the 4 Permanent world Conference on Anti-Doping in Sport, London, 1993, p.2. КОЧНОВА E.A. и др. Хромато-масс-спектрометрический анализ стероидного профиля спортсмена // Заводская лаборатория, 2010, т.76, № 8, с.20-25. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Fernández-Peralbo et al. | Preparation of urine samples prior to targeted or untargeted metabolomics mass-spectrometry analysis | |
Shackleton et al. | GC/MS in recent years has defined the normal and clinically disordered steroidome: will it soon be surpassed by LC/tandem MS in this role? | |
Johansen et al. | Simultaneous determination of γ-hydroxybutyrate (GHB) and its analogues (GBL, 1.4-BD, GVL) in whole blood and urine by liquid chromatography coupled to tandem mass spectrometry | |
Schänzer et al. | Expanding analytical possibilities concerning the detection of stanozolol misuse by means of high resolution/high accuracy mass spectrometric detection of stanozolol glucuronides in human sports drug testing | |
Caron et al. | A chromatography/tandem mass spectrometry method for the simultaneous profiling of ten endogenous steroids, including progesterone, adrenal precursors, androgens and estrogens, using low serum volume | |
Warth et al. | Direct quantification of deoxynivalenol glucuronide in human urine as biomarker of exposure to the Fusarium mycotoxin deoxynivalenol | |
Choi et al. | Determination of estrone and 17β-estradiol in human hair by gas chromatography–mass spectrometry | |
Thomas et al. | Dried blood spots (DBS) for doping control analysis | |
Ingels et al. | Screening and confirmation methods for GHB determination in biological fluids | |
Morini et al. | Ethyl glucuronide and ethyl sulphate determination in serum by liquid chromatography–electrospray tandem mass spectrometry | |
Leinonen et al. | Liquid-phase microextraction for sample preparation in analysis of unconjugated anabolic steroids in urine | |
Zhang et al. | Determination of serum glucose by isotope dilution liquid chromatography-tandem mass spectrometry: a candidate reference measurement procedure | |
CN111239267B (en) | Method for detecting short-chain fatty acids in serum and lymph tissue based on GC-MS | |
Moeller et al. | The development and validation of a turbulent flow chromatography–tandem mass spectrometry method for the endogenous steroid profiling of equine serum | |
Etter et al. | Clinical determination of 17-hydroxyprogesterone in serum by LC–MS/MS: Comparison to Coat-A-Count™ RIA method | |
Ingels et al. | Determination of gamma-hydroxybutyric acid in biofluids using a one-step procedure with “in-vial” derivatization and headspace-trap gas chromatography–mass spectrometry | |
Mouskeftara et al. | Analysis of urinary organic acids by gas chromatography tandem mass spectrometry method for metabolic profiling applications | |
O’Keeffe et al. | Validation of a multiresidue liquid chromatography–tandem mass spectrometric method for the quantitation and confirmation of corticosteroid residues in urine, according to the proposed SANCO 1085 criteria for banned substances | |
Fragkaki et al. | Determination of anabolic androgenic steroids as imidazole carbamate derivatives in human urine using liquid chromatography–tandem mass spectrometry | |
Song et al. | Quantitative MALDI-MS assay of steroid hormones in plasma based on hydroxylamine derivatization | |
Dong et al. | Quantitative analysis of glycerol levels in human urine by liquid chromatography–tandem mass spectrometry | |
Yao et al. | Development of a sensitive method for the quantification of urinary 3-hydroxybenzo [a] pyrene by solid phase extraction, dansyl chloride derivatization and liquid chromatography-tandem mass spectrometry detection | |
RU2451936C1 (en) | Method of detecting conjugated xenobiotics during doping tests in athletes | |
KR101159064B1 (en) | Quantification of active androgens in urine and blood by isotope dilution-mass spectrometry | |
RU2467331C1 (en) | Method for steroid profiling in dope test of sportsmen |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20150317 |