RU2442140C1 - Microfluometer for studying the fluorescence of single cells - Google Patents

Microfluometer for studying the fluorescence of single cells Download PDF

Info

Publication number
RU2442140C1
RU2442140C1 RU2010125615/28A RU2010125615A RU2442140C1 RU 2442140 C1 RU2442140 C1 RU 2442140C1 RU 2010125615/28 A RU2010125615/28 A RU 2010125615/28A RU 2010125615 A RU2010125615 A RU 2010125615A RU 2442140 C1 RU2442140 C1 RU 2442140C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
fluorescence
diodes
single cells
emission
registrar
Prior art date
Application number
RU2010125615/28A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Александр Анатольевич Хохлов (RU)
Александр Анатольевич Хохлов
Анатолий Матвеевич Хохлов (RU)
Анатолий Матвеевич Хохлов
Владислав Владимирович Шугайло (RU)
Владислав Владимирович Шугайло
Станислав Сергеевич Колесников (RU)
Станислав Сергеевич Колесников
Original Assignee
Учреждение Российской академии наук Институт биологического приборостроения с опытным производством РАН (ИБП РАН)
Учреждение Российской Академии наук Институт биофизики клетки РАН (ИБК РАН)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Учреждение Российской академии наук Институт биологического приборостроения с опытным производством РАН (ИБП РАН), Учреждение Российской Академии наук Институт биофизики клетки РАН (ИБК РАН) filed Critical Учреждение Российской академии наук Институт биологического приборостроения с опытным производством РАН (ИБП РАН)
Priority to RU2010125615/28A priority Critical patent/RU2442140C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2442140C1 publication Critical patent/RU2442140C1/en

Links

Images

Abstract

FIELD: cell microfluorometry.
SUBSTANCE: microfluorometer used to study the fluorescence of single cells comprises a fluorescent microscope with a camera/a microphotometer, a monitor and a light source for fluorescence incitement. The light source is a set of extra bright light-emitting semiconductor diodes with fixed light waves length. The diodes are interconnected with the diode switch and the signal monitor.
EFFECT: measuring sensitivity increase through unwanted emission reduction; measurement accuracy increase.
3 dwg

Description

Изобретение относится к микрофлуориметрическим исследованиям одиночных клеток и может быть использовано в биофизике, биологии, физиологии и медицине для изучения действия биологически активных веществ, в том числе лекарственных препаратов, на одиночные клетки.The invention relates to microfluorimetric studies of single cells and can be used in biophysics, biology, physiology and medicine to study the effect of biologically active substances, including drugs, on single cells.

Наиболее близким аналогом данного изобретения является микроспектрофлуориметр RatioMaster™ фирмы Photon Technology International, Inc., США (http://www.pti-nj.com/RatioMaster/RatioMaster.htmt), предназначенный для измерения и визуализации концентраций различных ионов внутри клеток по уровню флуоресценции предварительно загруженных в эти клетки флуоресцирующих зондов (красителей), интенсивность эмиссии которых пропорциональна концентрации соответствующих ионов, и состоящий из флуоресцентного микроскопа, снабженного камерой/микрофотометром, регистратора и источника излучения возбуждения флуоресценции, выполненного на ксеноновой лампе сверхвысокого давления и управляемом сканирующем монохроматоре. Ксеноновая лампа обеспечивает непрерывное освещение входа монохроматора в широком спектральном диапазоне; излучение возбуждения установленной регистратором длины волны с выхода монохроматора, управляемого регистратором, передается флуоресцентным микроскопом на предварительно загруженные флуоресцирующим зондом клетки. Излучение эмиссии флуоресцентного зонда собирается флуоресцентным микроскопом и принимается камерой/микрофотометром, которые передают сигнал эмиссии клетки для записи и анализа на регистратор, роль которого выполняет компьютер со специализированным программным обеспечением для анализа флуоресценции. Известное устройство наряду со сложностью и дороговизной обладает следующими существенными недостатками:The closest analogue of this invention is a RatioMaster ™ microspectrofluorimeter from Photon Technology International, Inc., USA (http://www.pti-nj.com/RatioMaster/RatioMaster.htmt), designed to measure and visualize the concentration of various ions within cells by level fluorescence of pre-loaded into these cells fluorescent probes (dyes), the emission intensity of which is proportional to the concentration of the corresponding ions, and consisting of a fluorescence microscope equipped with a camera / microphotometer, a recorder and a radiation source excitation of fluorescence performed on an ultrahigh pressure xenon lamp and controlled by a scanning monochromator. Xenon lamp provides continuous illumination of the input of the monochromator in a wide spectral range; the excitation radiation of the wavelength set by the recorder from the output of the monochromator controlled by the recorder is transmitted by a fluorescence microscope to the cells previously loaded with a fluorescent probe. Emission from a fluorescent probe is collected by a fluorescence microscope and received by a camera / microphotometer, which transmits a cell emission signal for recording and analysis to a recorder, whose role is played by a computer with specialized software for fluorescence analysis. The known device along with the complexity and high cost has the following significant disadvantages:

1) использование монохроматора для возбуждения флуоресценции при работе на одиночных клетках не обеспечивает достаточной чувствительности измерения флуоресценции одиночной клетки из-за низкого энергетического соотношения сигнал/шум за счет высокого (сравнимого с сигналом эмиссии) уровня паразитного излучения монохроматора в спектральной области эмиссии (из-за рассеяния света на решетках и также наличия у решеток дифракционных максимумов выше 1-го порядка), вследствие чего поступающий на регистратор измеряемый сигнал эмиссии является нечетким, что не позволяет обеспечивать нормальную точность измерения;1) the use of a monochromator to excite fluorescence when working on single cells does not provide sufficient sensitivity for measuring the fluorescence of a single cell due to the low signal-to-noise energy ratio due to the high (comparable with the emission signal) level of spurious radiation of the monochromator in the emission spectral region (due to light scattering on the gratings and also the presence of grating diffraction maxima above the first order), as a result of which the measured emission signal arriving at the recorder is I am fuzzy, which does not allow for normal measurement accuracy;

2) высокий разброс регистрируемого таким устройством сигнала эмиссии флуоресцентного зонда за счет нестабильной яркости и непостоянства размера разряда в лампе сверхвысокого давления осветителя, уменьшение которого при помощи фильтрации принципиально невозможно, поскольку энергетические временные спектры шумов лампы и сигналов эмиссии частично перекрываются;2) a high spread of the emission signal of the fluorescent probe recorded by such a device due to the unstable brightness and inconstancy of the discharge size in the lamp of an ultrahigh pressure of the illuminator, which is essentially impossible to reduce by filtering, since the energy time spectra of the noise of the lamp and emission signals partially overlap;

3) возможности повышения энергетического соотношения сигнал/шум за счет повышения мощности излучения возбуждения при использовании этого устройства сильно ограничены мощностью лампы, низким (~1:100) выходным относительным отверстием монохроматора, конечными значениями квантового выхода и поглощательной способности загруженных в клетку флуоресцентных зондов, а также быстрым выгоранием зондов при непрерывном воздействии излучения на клетку, что приводит к снижению чувствительности и точности измерения.3) the possibilities of increasing the energy signal-to-noise ratio by increasing the excitation radiation power when using this device are strongly limited by the lamp power, the low (~ 1: 100) output of the monochromator, the final values of the quantum yield and absorption capacity of the fluorescent probes loaded into the cell, and also fast burnout of probes with continuous exposure to radiation on the cell, which leads to a decrease in sensitivity and measurement accuracy.

Задачей данного изобретения является повышение чувствительности измерения за счет снижения уровня паразитного излучения в спектральной области эмиссии и улучшение точности измерения путем снижения разброса регистрируемого сигнала эмиссии при микрофлуориметрических исследованиях одиночных клеток.The objective of the invention is to increase the sensitivity of the measurement by reducing the level of spurious radiation in the spectral region of the emission and improving the accuracy of the measurement by reducing the spread of the recorded emission signal during microfluorimetric studies of single cells.

Указанная цель достигается тем, что в микрофлуориметре для исследования флуоресценции одиночной клетки, содержащем флуоресцентный микроскоп, снабженный камерой/микрофотометром, регистратор и источник излучения возбуждения флуоресценции, согласно изобретению, последний выполнен в виде сверхярких излучающих полупроводниковых диодов с фиксированной длиной волны излучения, соединенных между собой устройством переключения диодов и связанных с регистратором, посредством которого осуществляется синхронизация включения диодов с регистрацией сигнала эмиссии.This goal is achieved by the fact that in a microfluorimeter for studying the fluorescence of a single cell containing a fluorescence microscope equipped with a camera / microphotometer, a recorder and a fluorescence excitation radiation source, according to the invention, the latter is made in the form of superbright emitting semiconductor diodes with a fixed radiation wavelength, interconnected a device for switching diodes and associated with the registrar, through which the synchronization of the inclusion of diodes with the register radio emission signal.

На Фиг.1 представлена схема реализации предлагаемого устройства.Figure 1 presents the implementation diagram of the proposed device.

Микрофлуориметр для исследования флуоресценции одиночной клетки содержит оптический канал 1, сверхяркий излучающий полупроводниковый диод 2, конденсор 3, фильтр 4, световод 5, фотометр 6, камеру 7, флуоресцентный микроскоп 8, препарат 9, микрообъектив 10, дихроичное зеркало 11, линзу 12, устройство переключения диодов 13, источник тока 14, регистратор 15, представляющий собой, как и в аналоге, компьютер со специализоварнным программным обеспечением для анализа флуоресценции.A microfluorimeter for studying the fluorescence of a single cell contains an optical channel 1, an ultra-bright emitting semiconductor diode 2, a condenser 3, a filter 4, a light guide 5, a photometer 6, a camera 7, a fluorescence microscope 8, a preparation 9, a micro lens 10, a dichroic mirror 11, a lens 12, a device switching diodes 13, a current source 14, a recorder 15, which, as in the analogue, is a computer with specialized software for fluorescence analysis.

Источник излучения возбуждения флуоресценции содержит пять идентичных оптических каналов 1, каждый из которых включает сверхяркий излучающий полупроводниковый диод 2 (длины волн максимума спектральной плотности/мощность излучения на ней каждого диода = 340/20, 380/50, 440/70, 480/70, 530/70 нм/мВт, соответственно) и конденсор 3 для согласования числовой апертуры входного торца световода 5 и диаграммы направленности излучения диода 2. Устранение второй гармоники излучения и сужение спектральной полосы излучающего диода достигается оптическим фильтром 4. Световоды всех оптических каналов конвергированы в единый световод с регулярной укладкой волокон, выходная ветвь которого установлена в эпифлуоресцентный порт микроскопа 8. Линза 12 проецирует торец выходной ветви световода 5 через дихроичное зеркало 11 в плоскость выходного зрачка микрообъектива 10, что обеспечивает равномерность освещения препарата 9. Излучающий диод 2 в каждом оптическом канале управляется источником тока 14 от устройства переключения диодов 13. Регистратор 15 осуществляет синхронизацию включения излучающих диодов с регистрацией сигнала эмиссии, полученного от камеры 7 и/или фотометра 6.The fluorescence excitation radiation source contains five identical optical channels 1, each of which includes an ultra-bright emitting semiconductor diode 2 (wavelengths of maximum spectral density / radiation power of each diode = 340/20, 380/50, 440/70, 480/70, 530/70 nm / mW, respectively) and a capacitor 3 for matching the numerical aperture of the input end of the fiber 5 and the radiation pattern of diode 2. Elimination of the second harmonic of radiation and narrowing of the spectral band of the emitting diode is achieved by an optical filter 4. The optical fibers of all optical channels are converged into a single optical fiber with regular laying of fibers, the output branch of which is installed in the epifluorescence port of the microscope 8. Lens 12 projects the end face of the output branch of the optical fiber 5 through the dichroic mirror 11 into the plane of the exit pupil of the micro-lens 10, which ensures uniform illumination of the drug 9. Radiating a diode 2 in each optical channel is controlled by a current source 14 from the switching device of the diodes 13. The registrar 15 synchronizes the inclusion of emitting diodes with istratsiey emission signal obtained from the camera 7 and / or 6 photometer.

Предлагаемое устройство работает следующим образом. Препарат 9 - живые одиночные клетки, предварительно нагруженные выбранным для измерения интересующего иона флуоресцирующим зондом, располагаются под микрообъективом 10 на флуоресцентном микроскопе 8. Затем на регистраторе 15 устанавливается длина волны возбуждения (или несколько длин волн при мультиволновом режиме возбуждения), соответствующая максимуму спектральной поглощательной способности выбранного флуоресцентного зонда. В процессе измерения эмиссии клетки регистратор обеспечивает периодическое включение диода с длиной волны максимума спектральной плотности излучения, равной установленной длине (длинам) волны возбуждения. Излучение возбуждения из оптического блока по световоду 5 передается во флуоресцентный микроскоп 8, отражается дихроичным зеркалом 11 в микробъектив 10, который фокусирует это излучение на расположенных под ним клетках препарата 9. Одновременно излучение эмиссии собирается микрообъективом 10 на камеру 7 и/или фотометр 6, сигнал от которых синхронно с включением диода 2 принимается регистратором 15 для хранения и анализа. При аппликации на клетку различных биологически активных веществ происходит изменение концентрации интересующего иона внутри нее. Это изменение оценивается регистратором по разнице сигналов эмиссии клетки в покое и при действии на нее апплицируемого вещества.The proposed device operates as follows. Preparation 9 — live single cells, previously loaded with a fluorescent probe selected for measuring the ion of interest, are located under the micro-lens 10 on a fluorescence microscope 8. Then, the excitation wavelength (or several wavelengths with multi-wave excitation mode) is set on the recorder 15, which corresponds to the maximum spectral absorption capacity selected fluorescence probe. In the process of measuring cell emission, the recorder provides periodic inclusion of a diode with a wavelength of maximum spectral radiation density equal to the set excitation wavelength (s). The excitation radiation from the optical unit through the optical fiber 5 is transmitted to a fluorescence microscope 8, is reflected by a dichroic mirror 11 into a micro lens 10, which focuses this radiation on the cells of the preparation 9 located below it. At the same time, the emission radiation is collected by a micro lens 10 to the camera 7 and / or photometer 6, the signal from which synchronously with the inclusion of the diode 2 is taken by the registrar 15 for storage and analysis. When various biologically active substances are applied to the cell, the concentration of the ion of interest inside it changes. This change is estimated by the registrar by the difference in the signals of cell emission at rest and when the applied substance acts on it.

Результаты сравнения прототипа и предлагаемого устройства в проведенных нами экспериментах по регистрации кальциевых сигналов эмиссии в цитоплазме одиночных клеток показаны на Фиг.2. Одиночные клетки линии COS-1, предварительно нагруженные кальциевым зондом Fluo-4 (Molecular Probes, США), располагались на стекле на микроскопе Axiovert-100 ("Zeiss", Германия) с микрообъективом Achroplan-40, NA=0.8 ("Zeiss", Германия) как в приборе прототипа, так и в заявленном микрофлуориметре. Флуоресценция возбуждалась на длине волны 480 нм при помощи монохроматора, входящего в состав прототипа RatioMaster™ (Photon Technology International, Inc., США), и при помощи сверхярких излучающих полупроводниковых диодов заявленного устройства. Сигнал эмиссии с ICCD-камеры IC-200 (Photon Technology International, Inc., США) и/или микроскопного фотометра М-40 (Photon Technology International, Inc., США), установленных на микроскопе, как в прототипе, так и в заявленном устройстве поступал на регистратор. В качестве регистратора в обоих случаях использовался персональный компьютер со специализированным программным обеспечением. Аппликация АТФ вызывала кратковременное повышение иона кальция Ca2+ в цитоплазме одиночной клетки COS-1, нагруженной кальциевым зондом Fluo-4 в обоих случаях. Ca2+-сигналы регистрировались от одной и той же клетки с помощью прототипа (Фиг.2А, В) и при помощи заявленного устройства (Фиг.2Б, Г). Линии над кривыми флуоресценции на графиках обоих экспериментов соответствуют аппликации АТФ, цифры - значению концентрации АТФ в наномолях.The results of comparing the prototype and the proposed device in our experiments on the registration of calcium emission signals in the cytoplasm of single cells are shown in Figure 2. Single cells of the COS-1 line, previously loaded with a Fluo-4 calcium probe (Molecular Probes, USA), were placed on a glass using an Axiovert-100 microscope (Zeiss, Germany) with an Achroplan-40 microscope, NA = 0.8 (Zeiss, Germany) both in the prototype device and in the claimed microfluorimeter. Fluorescence was excited at a wavelength of 480 nm using a monochromator, which is part of the RatioMaster ™ prototype (Photon Technology International, Inc., USA), and using ultra-bright emitting semiconductor diodes of the claimed device. The emission signal from the IC-camera IC-200 (Photon Technology International, Inc., USA) and / or the M-40 microscopic photometer (Photon Technology International, Inc., USA) mounted on a microscope, both in the prototype and in the claimed device entered the registrar. In both cases, a personal computer with specialized software was used as a registrar. ATP application caused a short-term increase in the calcium ion Ca 2+ in the cytoplasm of a single COS-1 cell loaded with a Fluo-4 calcium probe in both cases. Ca 2+ signals were recorded from the same cell using the prototype (Fig.2A, C) and using the claimed device (Fig.2B, D). The lines above the fluorescence curves in the graphs of both experiments correspond to ATP applications, and the numbers correspond to the ATP concentration in nanomoles.

При стимуляции клеток COS-1 агонистом пуринорецепторов - АТФ, регистрируемое относительное изменение интенсивности эмиссии (ΔF/F) в случае аналога было ниже (Фиг.2А, ΔF/F=2.0±0.3, n=3), чем в случае предлагаемого устройства (Фиг.2Б, ΔF/F=2.5±0.2, n=3). Энергетическое отношение сигнал/шум было 15 для предлагаемого устройства и 7 для монохроматора, соответственно. Это обусловлено наличием на выходе монохроматора паразитного излучения в спектральной области эмиссии из-за неидеальности его решеток и вызванного этим рассеяния света, а также наличия у решеток дифракционных максимумов выше 1-го порядка. Нестабильность яркости и непостоянство размера тела разряда в лампе сверхвысокого давления осветителя аналога приводили к девиации интенсивности излучения возбуждения флуоресценции и более высокому разбросу регистрируемого сигнала эмиссии (Фиг.2А), по сравнению с заявленным устройством (Фиг.2Б). Достигнутое в заявленном устройстве снижение уровня паразитного излучения и уменьшение разброса регистрируемого сигнала позволило увеличить чувствительность и улучшить точность измерения эмиссии одиночной клетки при аппликации минимальных (субмикромольных) концентраций АТФ, что не достигалось с помощью прототипа. Ответ клетки на 100 нМ АТФ является пороговым в случае регистрации прототипом (Фиг.2В), а в случае использования заявленного устройства такой ответ уверенно регистрируется (Фиг.2Г), при этом заявленное устройство способно регистрировать и более слабые сигналы флуоресценции. Синхронизация включения светоизлучающих диодов с камерой/микрофотометром в предложенном устройстве позволяет значительно снизить выгорание зонда, а быстрое переключение диодов - реализовать мультиволновое возбуждение на двух и более длинах волн.When COS-1 cells were stimulated with a purinoreceptor agonist, ATP, the recorded relative change in the emission intensity (ΔF / F) in the case of an analog was lower (Fig. 2A, ΔF / F = 2.0 ± 0.3, n = 3) than in the case of the proposed device ( Fig.2B, ΔF / F = 2.5 ± 0.2, n = 3). The energy signal-to-noise ratio was 15 for the proposed device and 7 for the monochromator, respectively. This is due to the presence of spurious radiation at the output of the monochromator in the spectral region of emission due to the non-ideality of its gratings and the resulting light scattering, as well as the presence of diffraction maxima above the first order in gratings. The instability of the brightness and the inconstancy of the size of the discharge body in the ultrahigh-pressure lamp of an analog illuminator led to a deviation in the fluorescence excitation radiation intensity and a higher dispersion of the recorded emission signal (Fig. 2A), compared with the claimed device (Fig. 2B). Achieved in the claimed device a reduction in spurious radiation and a decrease in the scatter of the recorded signal allowed us to increase the sensitivity and improve the accuracy of measuring the emission of a single cell with the application of the minimum (submicromole) concentrations of ATP, which was not achieved using the prototype. The response of the cell to 100 nM ATP is threshold in the case of registration by the prototype (Fig. 2B), and in the case of using the claimed device, such a response is confidently recorded (Fig. 2G), while the claimed device is also capable of detecting weaker fluorescence signals. The synchronization of the inclusion of light-emitting diodes with a camera / microphotometer in the proposed device can significantly reduce the burnout of the probe, and the fast switching of the diodes allows for multi-wave excitation at two or more wavelengths.

Достигнутые при помощи предложенного устройства высокая чувствительность и точность регистрации сигнала эмиссии позволяют проводить первичный отбор и испытания различных биологически активных веществ и новых лекарственных препаратов на одиночных клетках в биологии, медицине и фармакологии. Характерное время службы светоизлучающих диодов составляет примерно 30-50 тысяч часов против 1-2 тысяч часов у ксеноновых ламп, что является дополнительным преимуществом заявленного устройства согласно изобретению.Achieved with the proposed device high sensitivity and accuracy of registration of the emission signal allow for the initial selection and testing of various biologically active substances and new drugs on single cells in biology, medicine and pharmacology. The characteristic service life of light emitting diodes is approximately 30-50 thousand hours versus 1-2 thousand hours for xenon lamps, which is an additional advantage of the claimed device according to the invention.

Claims (1)

Микрофлуориметр для исследования флуоресценции одиночных клеток, содержащий флуоресцентный микроскоп с камерой/микрофотометром, регистратор и источник излучения возбуждения флуоресценции, отличающийся тем, что в качестве источника излучения возбуждения флуоресценции использованы сверхяркие излучающие полупроводниковые диоды с фиксированными длинами волн излучения, соединенные между собой устройством переключения диодов и связанные с регистратором, посредством которого осуществляется синхронизация включения диодов с регистрацией сигнала эмиссии. A microfluorimeter for studying the fluorescence of single cells, containing a fluorescence microscope with a camera / microphotometer, a registrar and a fluorescence excitation radiation source, characterized in that super bright emitting semiconductor diodes with fixed radiation wavelengths interconnected by a diode switching device are used as a fluorescence excitation radiation source associated with the registrar, through which synchronization of the inclusion of diodes from the registrar emission signal.
RU2010125615/28A 2010-06-22 2010-06-22 Microfluometer for studying the fluorescence of single cells RU2442140C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2010125615/28A RU2442140C1 (en) 2010-06-22 2010-06-22 Microfluometer for studying the fluorescence of single cells

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2010125615/28A RU2442140C1 (en) 2010-06-22 2010-06-22 Microfluometer for studying the fluorescence of single cells

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2442140C1 true RU2442140C1 (en) 2012-02-10

Family

ID=45853750

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2010125615/28A RU2442140C1 (en) 2010-06-22 2010-06-22 Microfluometer for studying the fluorescence of single cells

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2442140C1 (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US8068898B2 (en) Fluorescence lifetime spectrometer (FLS) and methods of detecting diseased tissues
US6219566B1 (en) Method of measuring concentration of luminescent materials in turbid media
Becker et al. Advanced time-correlated single photon counting techniques for spectroscopy and imaging in biomedical systems
van Munster et al. Fluorescence lifetime imaging microscopy (FLIM)
US6999173B2 (en) Method and apparatus for ratio fluorometry
US5337139A (en) Multichannel optical measuring system
Trigo et al. Laser photolysis of caged compounds at 405 nm: photochemical advantages, localisation, phototoxicity and methods for calibration
US5838435A (en) Calibration method for spectroscopic systems
WO2007004059A2 (en) Spectrophotometer with light emitting diode illuminator
Kricka et al. 9 Optical Techniques
JPH11511557A (en) Method and apparatus for characterizing a specimen under ambient light
US20100105022A1 (en) Analyzing biological cell material based on different interactions between illumination light and cell components
RU2442140C1 (en) Microfluometer for studying the fluorescence of single cells
US10677734B2 (en) Method and apparatus for optical measurement of liquid sample
Grygoryev et al. Multi-spectral clinical prototype for fluorophore detection
WO2022202723A1 (en) Fluorescence measuring device
Brockhinke et al. Analysis of the local conformation of proteins with two-dimensional fluorescence techniques
AU2008263711A1 (en) Method and system for characterizing a pigmented biological tissue.
Lagarto et al. Development of low-cost instrumentation for single point autofluorescence lifetime measurements
JP2022519845A (en) Sample analysis methods, analyzers and computer programs
RU2320980C1 (en) Method and device for spectral analysis and determination of concentration of components of turbid matter
US20220120656A1 (en) Compact optical virus detection analyzer of nano- and micro- size bio particles using light scattering and fluorescence
Deutsch et al. Fluorescence polarization as a functional parameter in monitoring living cells: theory and practice
Glanzmann et al. Tissue characterization by time-resolved fluorescence spectroscopy of endogenous and exogenous fluorochromes: apparatus design and preliminary results
Kask et al. Fluorescence intensity distribution analysis (FIDA) and related fluorescence fluctuation techniques: theory and practice

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20170623