RU2411923C1 - Method of making alloimplant on basis of cartilaginous tissue - Google Patents
Method of making alloimplant on basis of cartilaginous tissue Download PDFInfo
- Publication number
- RU2411923C1 RU2411923C1 RU2009132218/14A RU2009132218A RU2411923C1 RU 2411923 C1 RU2411923 C1 RU 2411923C1 RU 2009132218/14 A RU2009132218/14 A RU 2009132218/14A RU 2009132218 A RU2009132218 A RU 2009132218A RU 2411923 C1 RU2411923 C1 RU 2411923C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- frozen
- cartilage
- hours
- alloimplant
- basis
- Prior art date
Links
Landscapes
- Materials For Medical Uses (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к медицине и может быть использовано в изготовлении медицинских изделий, применяемых в реконструктивной, пластической хирургии, травматологии и ортопедии. Может быть применено в работе тканевых банков РФ для обеспечения биологическим пластическим материалом учреждений здравоохранения.The invention relates to medicine and can be used in the manufacture of medical devices used in reconstructive, plastic surgery, traumatology and orthopedics. It can be applied in the work of tissue banks of the Russian Federation to provide biological plastic material for healthcare institutions.
В практике реконструктивной, пластической хирургии существует потребность в биологических пластических материалах, обладающих комплексом свойств, способных адекватно ситуации заместить дефект, в первую очередь хрящевой ткани. Областью их использования, как правило, являются ткани лицевого черепа (нос, ушные раковины и т.д.) и в области шеи (хрящи трахеи и т.д.). В послеоперационном периоде аллоимплантат должен служить матриксом для восстановления собственных тканей реципиента. В процессе подготовки материала к имплантации аллоимплантат должен обладать определенной пластичностью для придания ему необходимой формы и размера, а также выполнять каркасную функцию после своей имплантации.In the practice of reconstructive, plastic surgery, there is a need for biological plastic materials that have a set of properties that can adequately replace the defect in the situation, especially cartilage tissue. The area of their use, as a rule, is the tissue of the facial skull (nose, auricles, etc.) and in the neck (cartilage of the trachea, etc.). In the postoperative period, the allograft should serve as a matrix for the restoration of the recipient's own tissues. In the process of preparing the material for implantation, the allograft must have a certain plasticity to give it the necessary shape and size, and also perform a frame function after its implantation.
Известны способы консервации с одновременной стерилизацией с использованием только растворов формалина слабых концентраций (0,25-0,75%) (Парфентьева В.Ф. с соавт. Консервация костной ткани в растворах формалина слабых концентраций // Методическое письмо, ЦИТО. М, 1970). Также известен способ консервации хряща, отраженный в патенте РФ (Разиньков С.П. с соавт. Способ консервации хряща, патент РФ №2123259). Предложенный способ консервации хряща заключается в сохранении трансплантата в жидком консервирующем растворе. Хрящевую ткань берут во время операции, обрабатывают физиологическим раствором, помещают в стеклянную стерильную емкость с гречишным медом и хранят при температуре +4-5°С. Срок хранения при таком способе консервации ограничен 60 сутками.Known methods of conservation with simultaneous sterilization using only formaldehyde solutions of low concentrations (0.25-0.75%) (Parfentieva VF et al. Preservation of bone tissue in formalin solutions of low concentrations // Methodical letter, CITO. M, 1970 ) Also known is a method of preservation of cartilage, reflected in the patent of the Russian Federation (Razinkov S.P. et al. Method of preservation of cartilage, RF patent No. 2123259). The proposed method of preservation of cartilage is to preserve the transplant in a liquid preservation solution. Cartilage tissue is taken during surgery, treated with physiological saline, placed in a sterile glass container with buckwheat honey and stored at a temperature of + 4-5 ° C. The shelf life with this method of conservation is limited to 60 days.
Наиболее близким аналогом предлагаемого способа является способ изготовления хрящевого аллоимплантата, который заключается в последовательно проводимой механической очистке донорской хрящевой ткани и помещении ее в 0,2% раствор формальдегида и 0,05% глутарового альдегида с добавлением глицерина (1:4) в герметичный стеклянный сосуд с последующим хранением аллоимплантата в холодильнике при температуре +4°С до его клинического использования. Срок хранения ограничен 6-12 месяцами (Болтрукевич С.И. с соавт. Заготовка, консервация и хранение биологических тканей в жидких средах // Методические рекомендации. Гродно, 2000). Мы его приняли за прототип.The closest analogue of the proposed method is a method of manufacturing a cartilage allograft, which consists in sequentially mechanical cleaning of the donor cartilage tissue and placing it in a 0.2% solution of formaldehyde and 0.05% glutaraldehyde with glycerol (1: 4) in a sealed glass vessel followed by storage of the allograft in the refrigerator at a temperature of + 4 ° C until its clinical use. Shelf life is limited to 6-12 months (S. Boltrukevich et al. Procurement, preservation and storage of biological tissues in liquid media // Guidelines. Grodno, 2000). We took him for a prototype.
Недостатками указанного способа является то, что альдегиды, используемые в изготовлении аллоимплантатов, обладают цитотоксическим и канцерогенным эффектом, пропорционально концентрации применяемого формалина и длительности его воздействия на биологические объекты (см. сб.: Скрипнюк П.А. с соавт. Деминерализованные костные трансплантаты и их использование в восстановительной хирургии, С.-Пб., 1996, с.106-109, Фейгельман С.С. Ортопедия, травматология, 1980, №12, с.45-50). Использование формалина в качестве консерванта и стерилизатора влечет за собой ряд проблем, обусловленных ограничением времени хранения аллоимплантата (не более 6 месяцев), необходимостью длительной отмывки имплантата перед клиническим использованием, хранения с использованием низкотемпературных холодильников, стеклянной тары с соответствующими неудобствами при транспортировке.The disadvantages of this method is that the aldehydes used in the manufacture of allografts have a cytotoxic and carcinogenic effect in proportion to the concentration of formalin used and the duration of its effect on biological objects (see Sat: Skripnyuk P.A. et al. Demineralized bone grafts and their use in reconstructive surgery, S.-Pb., 1996, p.106-109, Feigelman S.S. Orthopedics, traumatology, 1980, No. 12, p.45-50). The use of formalin as a preservative and sterilizer entails a number of problems caused by the limited storage time of the allograft (no more than 6 months), the need for long-term washing of the implant before clinical use, storage using low-temperature refrigerators, glass containers with corresponding inconveniences during transportation.
Задачей заявленного способа является исключение вышеперечисленных недостатков, а именно исключение использования альдегидов, получение аллоимплантата с сохраненными механическими свойствами хряща, сокращение времени предоперационной подготовки, увеличение срока хранения.The objective of the claimed method is to eliminate the above disadvantages, namely the exclusion of the use of aldehydes, obtaining an allograft with preserved mechanical properties of the cartilage, reducing the time of preoperative preparation, increasing the shelf life.
Для решения поставленной задачи получения аллоимплантата на основе хрящевой ткани используется способ, включающий механическую очистку донорского реберного хряща, быстрое замораживание, нарезку замороженной заготовки в продольном направлении на пластины, лиофилизацию, последующую упаковку в герметичные стандартные двойные пакеты и радиационную стерилизацию потоком быстрых электронов. При этом замораживание заготовки производят при температуре -25-30°С в течение не менее 6 часов. Затем с помощью устройства, аналогичного микротому, замороженный материал нарезают пластинами в продольном направлении толщиной 0,5-1 мм. Нарезка замороженных образцов позволяет получить пластины необходимой толщины. Изготовление аллоимплантата в виде пластин толщиной 0,5-1 мм облегчает его использование, так как из него легче вырезать фрагменты необходимого размера и конфигурации, что позволяет сократить время их подготовки перед имплантацией. После нарезки материал хранят при температуре -25-30°С до этапа лиофилизации. Лиофилизацию проводят в лиофилизационной установке в течение 48 часов. Предложенная дегидратация материала путем лиофилизации позволяет полностью сохранить архитектонику хрящевой ткани, тем самым сохраняя механические характеристики аллоимплантата на основе реберного хряща. После лиофилизации материал упаковывают в двойной пластиковый пакет и стерилизуют потоком быстрых электронов. Необходимая для наиболее эффективной стерилизации доза радиационного облучения, как показали опыты, составляет 20-25 кГр, что делает материал безопасным в плане бактериальной и грибковой инфекции.To solve the task of obtaining an allograft based on cartilage tissue, a method is used that includes mechanical cleaning of the donor costal cartilage, quick freezing, slicing the frozen workpiece in the longitudinal direction into plates, lyophilization, subsequent packaging in sealed standard double packets and radiation sterilization with a stream of fast electrons. In this case, the workpiece is frozen at a temperature of -25-30 ° C for at least 6 hours. Then, using a device similar to a microtome, frozen material is cut into plates in the longitudinal direction with a thickness of 0.5-1 mm. Cutting frozen samples allows you to get plates of the required thickness. The manufacture of an allograft in the form of plates with a thickness of 0.5-1 mm facilitates its use, since it is easier to cut out fragments of the required size and configuration from it, thereby reducing the time for their preparation before implantation. After cutting, the material is stored at a temperature of -25-30 ° C until the lyophilization stage. Lyophilization is carried out in a lyophilization installation for 48 hours. The proposed dehydration of the material by lyophilization allows you to fully save the architectonics of the cartilage tissue, thereby preserving the mechanical characteristics of the allograft based on costal cartilage. After lyophilization, the material is packaged in a double plastic bag and sterilized by a stream of fast electrons. The radiation dose required for the most effective sterilization, experiments have shown, is 20-25 kGy, which makes the material safe in terms of bacterial and fungal infections.
Пример осуществления способа.An example implementation of the method.
Полученный от донора фрагмент реберного хряща очищают от мягких тканей и элементов крови.The rib cartilage fragment obtained from the donor is cleaned of soft tissues and blood elements.
Далее заготовку охлаждают до -25-30°С, затем с помощью устройства, аналогичного микротому, замороженный материал нарезают пластинами толщиной 0,5-1 мм. Через 7-10 дней проводят лиофилизацию материала в течение 48 часов.Next, the preform is cooled to -25-30 ° C, then using a device similar to a microtome, frozen material is cut into plates with a thickness of 0.5-1 mm. After 7-10 days, lyophilization of the material is carried out for 48 hours.
После дегидратации заготовки помещают в двойной пластиковый пакет и стерилизуют потоком быстрых электронов дозой облучения 20-25 кГр. В таком виде аллоимплантат готов к клиническому использованию. Предложенный способ консервации путем лиофилизации и способ стерилизации путем облучения потоком быстрых электронов продлевают срок хранения аллоимплантатов до 5 лет при комнатной температуре.After dehydration, the preforms are placed in a double plastic bag and sterilized by a stream of fast electrons with an irradiation dose of 20-25 kGy. In this form, the allograft is ready for clinical use. The proposed method of conservation by lyophilization and the method of sterilization by irradiation with a stream of fast electrons extend the shelf life of allografts to 5 years at room temperature.
Перед хирургической операцией аллоимплантат после вскрытия упаковки регидратируют в физиологическом растворе (можно в комбинации с растворами антибиотиков и гидрокортизона для создания дополнительного уровня профилактики послеоперационных осложнений) в течение 10-20 минут. Геометрическая форма аллоимплантата, созданная на этапе его изготовления, не требует его длительной подготовки и придания необходимой конфигурации перед имплантацией.After surgery, the allograft after opening the package is rehydrated in saline (can be combined with antibiotic and hydrocortisone solutions to create an additional level of prevention of postoperative complications) for 10-20 minutes. The geometric shape of the allograft created at the stage of its manufacture does not require its lengthy preparation and imparting the necessary configuration before implantation.
Пример клинического использования.An example of clinical use.
Больной П., 53 года, история болезни №15534, поступил в клинику челюстно-лицевой хирургии МОНИКИ по поводу перелома нижней стенки глазницы слева. На серии томограмм определялся дефект нижней стенки глазницы, размеры которого составили 12 мм по ширине и 20 мм по длине. Клинически отмечался выраженный гипо-энофтальм, ограничение подвижности левого глазного яблока, а также диплопия при взгляде кверху и книзу. Под эндотрахеальным наркозом проведена операция устранения гипо- и энофтальма эндоскопическим трансантральным доступом с пластикой нижней стенки глазницы фрагментированным аллоимплантатом на основе хрящевой ткани с предварительной репозицией жировой ткани и нижней прямой мышцы глаза в полость орбиты. Восстановление объема костных и мягких тканей глазницы позволило провести точную репозицию глазного яблока и устранить гипо-энофтальм.Patient P., 53 years old, medical history No. 15534, was admitted to the clinic of maxillofacial surgery MONICA about a fracture of the lower wall of the orbit on the left. On a series of tomograms, a defect of the lower wall of the orbit was determined, the dimensions of which were 12 mm in width and 20 mm in length. Clinically marked hypo-enophthalmos, limited mobility of the left eyeball, as well as diplopia when looking up and down. Under endotracheal anesthesia, an operation was performed to eliminate hypo- and enophthalmos by endoscopic transantral access with plastic surgery of the lower wall of the orbit with a fragmented allograft based on cartilage tissue with preliminary reposition of adipose tissue and lower rectus muscle into the orbit. The restoration of the volume of bone and soft tissues of the eye socket made it possible to accurately reposition the eyeball and eliminate hypo-enophthalmos.
При контрольных осмотрах через 1, 3 и 6 месяцев после хирургического вмешательства отмечалось полное отсутствие гипо- и энофтальма, движения глазного яблока в полном объеме. На контрольном рентгенологическом обследовании отмечалось правильное положение глазного яблока опорно-мышечных структур и имплантата. Жалоб у больного нет.During follow-up examinations 1, 3 and 6 months after surgery, there was a complete absence of hypo- and enophthalmos, the movement of the eyeball in full. On the control x-ray examination, the correct position of the eyeball of the musculoskeletal structures and the implant was noted. The patient has no complaints.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2009132218/14A RU2411923C1 (en) | 2009-08-27 | 2009-08-27 | Method of making alloimplant on basis of cartilaginous tissue |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2009132218/14A RU2411923C1 (en) | 2009-08-27 | 2009-08-27 | Method of making alloimplant on basis of cartilaginous tissue |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2411923C1 true RU2411923C1 (en) | 2011-02-20 |
Family
ID=46309953
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2009132218/14A RU2411923C1 (en) | 2009-08-27 | 2009-08-27 | Method of making alloimplant on basis of cartilaginous tissue |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2411923C1 (en) |
-
2009
- 2009-08-27 RU RU2009132218/14A patent/RU2411923C1/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
TSIRIDIS E. et al. In vitro and in vivo optimization of impaction allografting by demineralization and addition of rh-OP-1. J Orthop Res. 2007 Nov; 25(11): 1425-37 (Abstract). * |
Под ред. Н.П. НОВАЧЕНКО. Многотомное руководство по ортопедии и травматологии, т.1. - М.: Медицина, 1967, с.304, 305. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JP6964560B2 (en) | Micronized composition consisting of bone graft and its production and usage | |
US20210146011A1 (en) | Reinforced placental tissue grafts and methods of making and using the same | |
US11533906B2 (en) | Methods for collecting and processing autografts, processed autografts, kits for collecting and transporting autografts, and tools for preparing autografts | |
US9888999B2 (en) | Acellular dermal allografts and method of preparation | |
Fan et al. | Cryopreservation of autologous cranial bone flaps for cranioplasty: a large sample retrospective study | |
US20120195971A1 (en) | Method for Preparing Mechanically Macerated Demineralized Bone Materials and Compositions Comprising the same | |
US10905798B1 (en) | Methods and compositions for the repair and replacement of connective tissue | |
Popa et al. | The use of cadaveric skin allografts in the management of extensive wounds | |
US20130079889A1 (en) | Irradiated Cortical Bone Sheet Allografts and Method of Forming Irradiated Cortical Bone Sheet Allografts | |
RU2524618C1 (en) | Combined bone allograft and method for preparing it | |
RU2411923C1 (en) | Method of making alloimplant on basis of cartilaginous tissue | |
CN113164643A (en) | Method for obtaining freeze-dried animal skin, use and kit thereof | |
Nather | Musculoskeletal tissue banking in Singapore: 15 years of experience (1988–2003) | |
RU2630464C1 (en) | Combined method for bone implants sterilisation | |
Lee et al. | The effects of sterilization methods on lyophilized cartilage grafts in an experimental model | |
Sachkov et al. | Use of cadaver skin in the treatment of wounds | |
RU2343934C1 (en) | Method of obtaining of osteal autoimplant with high mechanical properties | |
RU2440730C1 (en) | Method of manufacturing spongy bone transplants | |
WO2024013571A1 (en) | Processing of human hyaline cartilage | |
Waikakul et al. | A New Recommendation for Handling and Care of Human Allogenic Bone Graft (at Siriraj Hospital) to Reduce Post-Operative Complication. | |
RU2235462C2 (en) | Liquid medium for low-temperature preserving biological transplants | |
RU2370031C2 (en) | Method of conservation of biological transplants in gel-containing sterilising medium | |
Saha et al. | Musculoskeletal tissue banking: in orthopaedic perspective | |
CN109069697A (en) | A kind of irradiation sterilization method and its sterilizing cornea of cornea | |
Santos et al. | Bacteriological evaluation of bone grafts stored by cryogenic freezing at-24° C from a canine (Canis familiaris) bone bank. |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20110828 |